RU1836421C - Способ получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела к фикомицетам рода РнYторнтоRа, штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый дл получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа, способ получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа - Google Patents
Способ получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела к фикомицетам рода РнYторнтоRа, штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый дл получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа, способ получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRаInfo
- Publication number
- RU1836421C RU1836421C SU884356286A SU4356286A RU1836421C RU 1836421 C RU1836421 C RU 1836421C SU 884356286 A SU884356286 A SU 884356286A SU 4356286 A SU4356286 A SU 4356286A RU 1836421 C RU1836421 C RU 1836421C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- phycomycetes
- phytophtora
- geni
- antibodies against
- receiving
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/395—Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/14—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from fungi, algea or lichens
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
- C12N5/12—Fused cells, e.g. hybridomas
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/577—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor involving monoclonal antibodies binding reaction mechanisms characterised by the use of monoclonal antibodies; monoclonal antibodies per se are classified with their corresponding antigens
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Использование: сельскохоз йственна биотехнологи , диагностика заболеваний растений. Сущность изобретени : получают гибридный штамм Balb Maus/Sp2 Myelom # РН 4830, продуцирующий моноклональные антитела (МКА) к антигенам фикомицетов Phytophtora megasperma f.sp. medlcagmls. Самок мышей линии Balb/c.1 в возрасте 4-5 нед. иммунизируют антигенными препаратами мицели P. megasperma f. sp. megicaginis, иммунные спленоциты сливают с клетками миеломы 2-0 Ад 14 и отбирают необходимую гибридому путем иммуноферментного анализа. Клонирование гибридомы осуществл ют методом лимитирующих разведений. МКА относ тс к подклассу lgC2b. Их выдел ют из культу- ральной и асцитной жидкости на хроматог- рафической колонке с протеин А-сефарозой. Концентраци МКА в асцитной жидкости составл ет 3 мкг/мл, в культуральной 16 мг/мл, 3 с. п. ф-лы, 1 табл. In
Description
Изобретение относитс к области биотехнологии и может быть использовано дл диагностики заболеваний растений.
Дл получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела (МКА) к фи- комицетам рода Phytophtora, мышей линии Вз1Ь/с иммунизируют антигенным препаратом мицели гриба Phytophtora megasperma f. sp. glycinea, затем выдел ют иммуноком- петентные клетки селезенки, сливают их с клетками миеломы Sp 2-0-Ag.14, осуществл ют скрининг гибридом с помощью иммуноферментного метода и отбирают нужную
гибридому. Гибридные клетки выращивают в культуральной среде или в организме животных , затем культуральную среду или ас- цитную жидкость очищают на колонке с протеин А-сефарозой и выдел ют lgG2b,
Штамм Baib Maus/Sp Myelom#PH 4830 получают следующим образом.
Самок мышей линии Batb/c.l в возрасте 4-5 нед. иммунизируют антигенными препаратами мицели грибов Phytophtora vmegasperma f. sp.glycinea. Первую инъекцию провод т интраперитонеально в объеме 0,2 мл с добавлением адьюванта
00
ы о
4
го
со
Фрейнда, вторую - через 11 мес. аналогичным образом. Спуст 7 дней после последней инъекции животное умерщвл ют путем перелома шейного отдела позвоночника. Селезенку удал ют и помещают в 20 мл модифицированной Дульбекко среды Игла (DMEM). Далее селезенку расправл ют на стерильном решетчатом сите (80 меш), разрезают , ополаскивают DMEM и затем слегка массируют с помощью одноразового шприца емкостью 10 см3.
Во врем экстракции клеток селезенки решетчатое сито посто нно ополаскивают DMEM. Суспензию клеток внос т в одноразовые пробирки дл центрифугировани емкостью 50 мл и центрифугируют при 1200 об/мин в течение 10 мин (центрифугирование осуществл ют при комнатной температуре ).
Надосадочную жидкость отбрасывают, клеточный осадок промывают 10 мл лизиру- ющего эритроциты раствора (0,83 % NH4CI, 0,01 М КНСОз, 0,1 мМоль EDTA) в течение 90 с при комнатной температуре.
Реакцию лизировани останавливают разбавлением раствора с помощью 40 мл DMEM.
Пробу оставл ют на 3 мин и затем наса- дочную жидкость пипеткой внос т в 50 мл пробирки дл центрифугировани . После центрифугировани осадок клеток промывают 50 мл DMEM и снова центрифугируют. Оставл ют небольшую пробу клеток селезенки дл подсчета и определени жизнеспособности . Получают 7xf09 клеток селезенки в 5 мл раствора. Клетки миеломы SP2-O-Ag t4 перенос т из культуры в стерильные одноразовые полипропиленовые пробирки емкостью 50 мл (7х106 клеток). Затем их центрифугируют в течение 10 мин при комнатной температуре и 1200 об/мин. После центрифугировани надосадочную жидкость помещают в чистый стекл нный стакан, клетки промывают DMEM и снова центрифугируют. В пробирки с промытыми клетками миеломы добавл ют клетки селезенки . Затем клетки миеломы и селезенки осторожно с помощью пипетки на 10 мл снова суспендируют и центрифугируют tO мин при 1200 об/мин и комнатной температуре , Надосадочную жидкость отбрасывают . Среду дл сли ни и ПЭГ 1500 подогревают до 37°С. Ј мл среды дл сли ни по капл м добавл ют в пробирку с ре- суспендированными клетками миеломы и селезенки. В последние 7 мин реакции сли ни ПЭГ постепенно разбавл ют с по- мощью DMEM. По окончании разбавлени общий объем жидкости в пробирке составл ет примерно 30 мл.
Во врем всей процедуры сли ни пробирку слегка перемещают дл того, чтобы обеспечить перемешивание наход щегос в ней материала.
5Затем пробирку центрифугируют (1200
об/мин, 10 мин при комнатной температуре ) и надосадочную жидкость удал ют. В пробирку добавл ют 33 мл подогретой ГАТ- среды (ГАТ от гуанин, аминоптерин, тими- 0 дин) и снова ресуспендируют клеточное содержимое с помощью пипетки емкостью 10 мл. Клетки распредел ют в 9б-луночных панел х дл микротитровани . В каждую лунку внос т 150 мкл суспензии клеток. За- 5 тем лунки заполн ют ГАТ-средой. Панели дл микротитровани инкубируют во влажной атмосфере 7%-ного СОа при температуре 37°С. Затем клетки в течение 4 дней выращивают в свежей ГАТ-среде с едующе:- 0 го состава:
DMEM766 мл
L-глутамат10 мл
пенициллин или
стрептомицин (10 000 5 единиц) 100 мл ГАТ10 мл
аминоптерин (2x10-5М
раствор)4 мл
гипоксантин/
тимидин10 мл
0 1 н. NaOH тимидин38,8мг
гипоксантин136,1 мг
в 100 мл стерильной
воды эмбриональна
сыворотка крупного 5 рогатого скота200 мл.
Первые клоны гибридных клеток начинают по вл тьс спуст 7-10 дней. Скрининг гибридом осуществл ют следующим образом. 20 мкл содержащего глутаровый 0 альдегид буфера помещают в каждую лунку культуральной панели и инкубируют 3 ч при 55°С/
Панель охлаждают до комнатной температуры и оставшийс буфер отбрасывают. 5 Панели промывают 4 раза дистиллированной водой. 200 мкл антигена, разбавленного в PBS, рН 7,2 (концентраци антигена 10 мкг/мл) распредел ют по отдельным лункам и инкубируют 24 ч при 4°С. Оставшийс 0 раствор отбрасывают, панели промывают 8 раз с помощью PBS. Затем в каждую лунку внос т 200 мкл раствора моноэтаноламина и инкубируют следующие 20 ч при 4°С.
Оставшийс раствор отбрасывают, а па- 5 нели 8 раз промывают с помощью PBS. 100 мкл над осадочной жидкости гибридомы, содержащий антитела, помещают в каждую лунку и инкубируют 2 ч при 33°С и высокой влажности воздуха. Оставшийс раствор отбрасывают , а панели 8 раз промывают PBS.
Затем в каждую лунку добавл ют 100 мкл биотинированного коньюгата, содержащего tg козы к антителам мыши и стрептови- динпероксидазу. Инкубируют при 37°С и высокой влажности воздуха в течение 0,5 ч, далее раствор отбрасывают и панели 8 раз промывают PBS.
Надосадочный раствор сливают и панель промывают 8 раз с помощью PBS. В каждую лунку помещают 200 мкл субстрата ортофенилендиамина и инкубируют в течение 0,5 ч при комнатной температуре. Затем определ ют абсорбционную емкость в красной области спектра при 405 нм. Показатель менее 0,2 считают отрицательной реакцией. Результаты исследований свидетельствуют о том, что полученные гибридные клетки продуцируют МКА к антигенам фикомицетов рода Phytophtora. особенно к Р. megasperma f. sp. medicaginls, P. capsici, P. megasperma f. sp. glucinea. P. citricola и Р. megasperma. Штамм, продуцирующий антитела необходимой специфичности, вывод т в массовую культуру и обозначают как Balb Maus/Sp2 Myelom PH 4830. Клонирование и субклонирование штамма осуществл ют методом лимитирующих разведений. Штамм характеризуетс следующими признаками .
Культуральные признаки. Дл выращивани гибридомы используют среду DMEM с добавлением эмбриональной тел чьей сыворотки , L-глутамина, антибиотиков, тими- дина, гипоксантина, 125 мл среды наливают в культуральный флакон объемом 750 мл, внос т 10x108 клеток гибридомы и инкубируют в горизонтальном положении в атмосфере 6%-ного С02 при 37°С. Среда истощаетс через 10-14 дней. Дл получени МКА в виде асцитной жидкости самок мышей линии Balb/c возраст от 6 до 8 недель внутрибрюшинно иммунизируют клетками гибридомы (O.SxIO6), которые ресуспендируют в 0,5 мл среды DMEM. За две недели до этого мышам ввод т 0,5 мл пристана. Асцит образуетс втечение 10-14 дней. Затем животным дают наркоз и в результате пункции отбирают 3 мл асцитной жидкости. Общее количество асцитной жидкости , которое можно собрать от каждого животного составл ет 5-6 мл. Продуктивность штамма. Концентраци МКА в асцитной жидкости составл ет 3 мкг/мл, в культуральной - 16 мкг/мл.
Характеристика полезного продукта. МКА относ тс к подклассу lgG2b. Аффинность МКА составл ет 4,3 мкг/мл антигена при 50% максимального значени оптической плотности. Антитела специфически реагируют с антигенами фикомицетов P.megasperma f. sp. medicaglnis.
Использование изобретени иллюстрируетс следующими примерами.
П ример 1. Самок мышей линии Balb/c
возрастом от 6 до 8 недель подготавливают внутрибрюшинной инъекцией 0,5 мл пристана дл последующей инъекции клеток гибридомы. Затем чеоез 2 нед. животным
0 ввод т 0,5x10 клеток гибридомы в 0,5 мл ДМЕМ. Через 10-14 дней животным дают наркоз и собирают асцитную жидкость. Антитела класса lgG2b получают путем хроматографии на протеин А-сефарозе при
5 следующих параметрах:
1.Протеин А/сефароза (6,0 мл)
2.Трис/HCI уравновешивающе-св зы- вающий буфер, рН 8.6.
3.Ацетатный отмывающий буфер, рН 0 4,3
4.Глицин/HCI рёгенерационный буфер, рН2.3.
5.Скорость прохождени через колонку - 1 мл/мин.
5 6. Загрузка колонки - 2,5 мл неочищенной асцитной жидкости.
Асцитную жидкость пропускают через колонку и элюируют фракцию tgG2b при рН 4,3. Активность полученных антител опреде0 л ют иммуноферментным методом.
П р и м е р 2. Выделенные из асцитной жидкости МКА конъюгируютс пероксидазой хрена и используют дл вы влени антигенов P. megasperma f. sp. medicaginls в тка5 н х растений сои. Дл этого пробы выращиваемых в грунте соевых растений как с симптомами, так и без симптомов корневой и стеблевой гнили, эстрагируют и испытывают иммунологическим путем в
0 реакции с конъюгатом МКА-пероксидаза хрена, как описано выше.
Результаты исследований представлены в таблице.
Результаты, приведенные в таблице,
5 свидетельствуют о том, что полученный штамм Balb Maus/SP2 MyelomtfpH 4830 продуцирует МКА, специфически реагирующие с антигенами Phytophtora megasperma f. sp. medicaglnls. Такие антитела могут быть эф0 фективно использованы дл быстрой диагностики заболеваний растений и распознавани скрытых видов патогенных фикомицетов в растени х.
Claims (1)
- Формула изобретени5 1. Способ получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела к фи- комицетам рода Phytophtora, заключающийс в том, что мышей линии Balb/c иммунизируют экстрактом мицели Phytophtora megasperma f. sp, glyclnea, выдел ют иммунекомпетентные клетки селезенки, сливают их с клетками миеломы, провод т скрининг, отбирают гйбридрму ATGC НВ 9353 и при необходимости ее клонируют и реклонируют.1. Штамм гибридных культивируемых клеток Mus muscufus L. АТСС НВ 9353, используемый дл получени моноклональ- ных антител к фикомицетам рода Phytophtora.3. Способ получени моноклинальных антител к фикомицетам рода Phytophtora, заключающийс в том, что гибридому АТСС НВ 9353 выращивают в культуре или в живом организме, а моноклональные антитела , относ щиес к. подклассу lgG2b, выдел ют из культуральной или асцитной жидкости путем хроматографической очистки .
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US7761687A | 1987-07-24 | 1987-07-24 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU1836421C true RU1836421C (ru) | 1993-08-23 |
Family
ID=22139121
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU884356286A RU1836421C (ru) | 1987-07-24 | 1988-07-22 | Способ получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела к фикомицетам рода РнYторнтоRа, штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый дл получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа, способ получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа |
Country Status (25)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0302011B1 (ru) |
| JP (1) | JP2714619B2 (ru) |
| KR (1) | KR970009892B1 (ru) |
| AR (1) | AR243932A1 (ru) |
| AT (1) | ATE118032T1 (ru) |
| AU (1) | AU612675B2 (ru) |
| BR (1) | BR8803673A (ru) |
| CA (1) | CA1339582C (ru) |
| DD (1) | DD281815A5 (ru) |
| DE (1) | DE3852914D1 (ru) |
| DK (1) | DK410888A (ru) |
| ES (1) | ES2067485T3 (ru) |
| GR (1) | GR3015489T3 (ru) |
| HU (1) | HU212722B (ru) |
| IE (1) | IE64905B1 (ru) |
| IL (1) | IL87194A (ru) |
| MA (1) | MA21332A1 (ru) |
| MY (1) | MY104917A (ru) |
| NZ (1) | NZ225537A (ru) |
| PL (1) | PL273796A1 (ru) |
| PT (1) | PT88077B (ru) |
| RU (1) | RU1836421C (ru) |
| TN (1) | TNSN88077A1 (ru) |
| ZA (1) | ZA885334B (ru) |
| ZW (1) | ZW9888A1 (ru) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ATE148162T1 (de) * | 1990-06-29 | 1997-02-15 | Ciba Geigy Ag | Monoklonale antikörper gegen mycosphaerella-arten |
| US5217871A (en) * | 1990-08-21 | 1993-06-08 | Ciba-Geigy Corporation | Monoclonal antibodies to leptosphaeria nodorum |
| KR20050087613A (ko) * | 2004-02-27 | 2005-08-31 | 디아이케이(주) | 금속제 용기의 형성방법 및 제조공정 |
-
1988
- 1988-01-01 ZW ZW98/88A patent/ZW9888A1/xx unknown
- 1988-07-09 MY MYPI88000760A patent/MY104917A/en unknown
- 1988-07-15 DE DE3852914T patent/DE3852914D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1988-07-15 EP EP88810487A patent/EP0302011B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1988-07-15 ES ES88810487T patent/ES2067485T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1988-07-15 AT AT88810487T patent/ATE118032T1/de not_active IP Right Cessation
- 1988-07-20 PL PL27379688A patent/PL273796A1/xx unknown
- 1988-07-21 AR AR88311473A patent/AR243932A1/es active
- 1988-07-22 DD DD88318211A patent/DD281815A5/de not_active IP Right Cessation
- 1988-07-22 PT PT88077A patent/PT88077B/pt not_active IP Right Cessation
- 1988-07-22 MA MA21575A patent/MA21332A1/fr unknown
- 1988-07-22 DK DK410888A patent/DK410888A/da not_active Application Discontinuation
- 1988-07-22 ZA ZA885334A patent/ZA885334B/xx unknown
- 1988-07-22 AU AU19740/88A patent/AU612675B2/en not_active Ceased
- 1988-07-22 IL IL87194A patent/IL87194A/xx not_active IP Right Cessation
- 1988-07-22 NZ NZ225537A patent/NZ225537A/en unknown
- 1988-07-22 BR BR8803673A patent/BR8803673A/pt not_active Application Discontinuation
- 1988-07-22 RU SU884356286A patent/RU1836421C/ru active
- 1988-07-22 CA CA000572824A patent/CA1339582C/en not_active Expired - Fee Related
- 1988-07-22 HU HU883884A patent/HU212722B/hu not_active IP Right Cessation
- 1988-07-22 IE IE225088A patent/IE64905B1/en not_active IP Right Cessation
- 1988-07-23 KR KR1019880009320A patent/KR970009892B1/ko not_active IP Right Cessation
- 1988-07-25 JP JP63185339A patent/JP2714619B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1988-07-26 TN TNTNSN88077A patent/TNSN88077A1/fr unknown
-
1995
- 1995-03-20 GR GR950400620T patent/GR3015489T3/el unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE3852914D1 (de) | 1995-03-16 |
| JPS6471483A (en) | 1989-03-16 |
| ES2067485T3 (es) | 1995-04-01 |
| BR8803673A (pt) | 1989-02-14 |
| GR3015489T3 (en) | 1995-06-30 |
| DK410888A (da) | 1989-01-25 |
| EP0302011A3 (en) | 1990-03-21 |
| AU1974088A (en) | 1989-01-27 |
| DK410888D0 (da) | 1988-07-22 |
| IL87194A0 (en) | 1988-12-30 |
| ZW9888A1 (en) | 1989-02-22 |
| CA1339582C (en) | 1997-12-16 |
| IL87194A (en) | 1993-02-21 |
| EP0302011B1 (de) | 1995-02-01 |
| PT88077B (pt) | 1995-03-01 |
| JP2714619B2 (ja) | 1998-02-16 |
| KR890001587A (ko) | 1989-03-27 |
| TNSN88077A1 (fr) | 1990-07-10 |
| MY104917A (en) | 1994-07-30 |
| AU612675B2 (en) | 1991-07-18 |
| NZ225537A (en) | 1991-04-26 |
| AR243932A1 (es) | 1993-09-30 |
| KR970009892B1 (ko) | 1997-06-19 |
| ZA885334B (en) | 1989-03-29 |
| IE64905B1 (en) | 1995-09-20 |
| PL273796A1 (en) | 1989-03-20 |
| ATE118032T1 (de) | 1995-02-15 |
| IE882250L (en) | 1989-01-24 |
| DD281815A5 (de) | 1990-08-22 |
| PT88077A (pt) | 1989-06-30 |
| HUT47315A (en) | 1989-02-28 |
| EP0302011A2 (de) | 1989-02-01 |
| HU212722B (en) | 1996-10-28 |
| MA21332A1 (fr) | 1989-04-01 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN105087497B (zh) | 杂交瘤细胞株zjeb8-01、抗埃博拉病毒gp蛋白单克隆抗体及其制备和应用 | |
| Boscia et al. | Production, characterization and use of monoclonal antibodies to grapevine virus A | |
| JPS60110289A (ja) | ジゴキシンに対し高い親和性を有するモノクロ−ナル抗体 | |
| CN105112375B (zh) | 杂交瘤细胞株zjed0-02、抗埃博拉病毒gp蛋白单克隆抗体及其制备和应用 | |
| CN101597334A (zh) | 蓝舌病病毒单克隆抗体及制备方法和应用 | |
| Jiang et al. | Production of monoclonal antibodies to peach eastern X-disease agent and their use in disease detection | |
| RU1836421C (ru) | Способ получени гибридомы, продуцирующей моноклональные антитела к фикомицетам рода РнYторнтоRа, штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый дл получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа, способ получени моноклональных антител к фикомицетам рода РнYторнтоRа | |
| CN101620231A (zh) | 一种检测去甲氯胺酮的elisa测试盒及制备方法 | |
| CN101671655B (zh) | 一种艾滋病毒p24的单克隆抗体杂交瘤细胞及应用 | |
| CN114805579B (zh) | 一种抗人ace2蛋白单克隆抗体、核酸分子及应用 | |
| Gumpf, DJ, Zheng, G. Moreno, P. and Diaz | Production and evaluation of specific monoclonal antibodies to citrus tristeza virus strains | |
| CN114213541B (zh) | 一种全能核酸酶的单克隆抗体及其制备方法 | |
| CN102181402B (zh) | 高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒单克隆抗体及其制备 | |
| FR2606421A1 (fr) | Anticorps monoclonaux antigram (-) procede de preparation et applications | |
| CN114276456A (zh) | 分泌鼠抗人IgG单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其分泌的单克隆抗体和应用 | |
| CN105132376A (zh) | 一个能特异性识别HBsAg多个抗原表位的单克隆抗体及其应用 | |
| RU2012594C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus l - продуцент моноклональных антител к 146s-компоненту вируса ящура азия-1 | |
| EP0084344A2 (en) | Anti-urokinase monoclonal antibodies and process for preparing the same | |
| RU2583306C1 (ru) | Штамм гибридных культивированных клеток животных mus musculus хт 2е5 - продуцент моноклональных антител изотипа g 1 к в-субъединице холерного токсина | |
| RU2031117C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus - продуцент моноклональных антител к вирусу простого герпеса i типа | |
| CN102391993A (zh) | 布鲁氏菌检测用杂交瘤细胞株17c8及其产生的单克隆抗体 | |
| Valdés et al. | Production of a monoclonal antibody by ascites, hollow fiber system, and transgenic plants for vaccine production using CB. Hep-1 mAb as a study case | |
| RU2265658C2 (ru) | Штамм гибридных клеток животного mus musculus l. 9e2, используемый для получения моноклональных антител к белку e вируса западного нила штамм wnv/leiv-vig99-27889 | |
| RU2117700C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus l. - продуцент моноклональных антител к вирусу везикулярной болезни свиней штамм т-75 | |
| RU2004589C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток MUS MUSCULUS - продуцент моноклональных антител, используемых дл диагностики болезни Ибараки |