PL244888B1 - Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) - Google Patents

Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) Download PDF

Info

Publication number
PL244888B1
PL244888B1 PL440930A PL44093022A PL244888B1 PL 244888 B1 PL244888 B1 PL 244888B1 PL 440930 A PL440930 A PL 440930A PL 44093022 A PL44093022 A PL 44093022A PL 244888 B1 PL244888 B1 PL 244888B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
sativa
pair
sterilis
tam
subline
Prior art date
Application number
PL440930A
Other languages
English (en)
Other versions
PL440930A1 (pl
Inventor
Edyta Paczos-Grzęda
Sylwia Sowa
Joanna Toporowska
Aneta Koroluk
Krzysztof Kowalczyk
Original Assignee
Univ Przyrodniczy W Lublinie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Przyrodniczy W Lublinie filed Critical Univ Przyrodniczy W Lublinie
Priority to PL440930A priority Critical patent/PL244888B1/pl
Publication of PL440930A1 publication Critical patent/PL440930A1/pl
Publication of PL244888B1 publication Critical patent/PL244888B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/6895Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/13Plant traits

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Przedmiot zgłoszenia stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa o sekwencjach nr 1 i 2 przedstawionych na liście sekwencji. Przedmiotem zgłoszenia jest ponadto sposób identyfikacji allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa, w którym polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, a parę starterów stanowi para oligonukleotydowych starterów o sekwencjach nr 1 i 2 przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 127+853 przedstawiony na Fig. 1 - 3. W wyniku PCR amplifikowany jest fragment DNA o długości 520 par zasad o sekwencji nr 3 przedstawionej na liście sekwencji.

Description

Opis wynalazku
Przedmiot wynalazku stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Rdza koronowa jest obok mączniaka prawdziwego i rdzy źdźbłowej najpowszechniej występującą chorobą grzybową owsa. Patogenem wywołującym chorobę jest grzyb Puccinia coronata Cda. f. sp. avenae P. Syd. & Syd. infekujący wiele gatunków traw, ale nie porażający innych, poza owsem, gatunków zbóż (Chong, J, 2003, Disease of Oat, W: Bailey, K., Gossen, B., Gugel, R., Morrall, R. (Red), Diseases of Field Crops, The Canadian Phytotpathological Society, ss. 74-88). Rdza koronowa atakuje głównie liście, na których pojawiają się rdzawo zabarwione uredinia ograniczające powierzchnię asymilacyjną rośliny i niekorzystnie wpływające na proces transpiracji znacząco zmniejszając plon (Simons, M.D., 1985, Crown rust. W: Roelfs, A.P., Bushnel, W.R. (Red.), The cereal rust Vol. 2 Diseases, Distribution, Epidemiology, and Control. Academic Press, Orlando, 131-172).
Polskie odmiany owsa charakteryzują się wysoką plennością, jednak ich odporność na rdzę koronową jest bardzo niska (Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2020. A study of crown rust resistance in historical and modern oat cultivars representing 120 years of Polish oat breeding. Euphytica 216, 1-10). Wprowadzanie genetycznie warunkowanej odporności do polskich materiałów hodowlanych jest obecnie jednym z ważniejszych celów, proces ten jest jednak pracochłonny i wymaga długoletniego procesu selekcji. Gen odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 jest genem wysoce efektywnym w polskich warunkach i może być wykorzystany w hodowli odpornościowej A. sativa. (Paczos-Grzęda, E., Róg, S., Koroluk. A., Okoń, S., Ostrowska. A., Ociepa, T., Erdzik, P., Chrząstek, M., Kowalczyk, K., 2014. Virulence structure of Puccinia coronata f. sp. avenae in Central and South Eastern Poland 2020; Paczos-Grzęda, E., Sowa, S., 2019. Virulence structure and diversity of Puccinia coronata f sp. avenae P. syd. & syd, in Poland during 2013 to 2015. Plant Dis. 103, 1559-1564; Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2017, Puccinia coronata f. sp. avenue virulence in southeastern Poland in 2014. Folia Pomer. Univ. Technol. Stetin., Agric., Aliment. Pisc., Zootech, 336:43, 157—166; Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2021. Virulence structure of Puccinia coronata f. sp. avenae and effectiveness of Pc resistance genes in Poland during 2017-2019, Phytopathology Vol. 111, No. 7 s. 1158-1165). Efektywne wprowadzenie tego genu do polskiej hodowli wymaga wykorzystywania markerów molekularnych. Silnie sprzężone markery DNA zapewnią obiektywną ocenę fenotypu, ułatwią i przyspieszą proces otrzymania nowych, wysoko plonujących odmian owsa zwyczajnego odpornych na rdzę koronową (Niedziela, A., Jarska, W., Bednarek, P.T., 2015. Wybrane elementy nowoczesnych rozwiązań wpływające na skuteczność programów hodowlanych. Biul. Inst. Hod. i Aklim. Roślin 275, 3-16).
Celem wynalazku było znalezienie takiej pary oligonukleotydów, które umożliwiłyby identyfikację allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 zarówno w stadium siewki, jak i rośliny dorosłej.
Przedmiot wynalazku stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Sposób identyfikacji allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa, w którym to sposobie polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, charakteryzuje się tym, że parę starterów stanowi para oligonukleotydów o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 127+853, przedstawiony na Fig. 1-3, o długości 520 pz związany z obecnością allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa (sekwencja nr 3).
Fig. 1 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 707 ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
‘Kasztan’, Pc59K - A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 - formy rodzicielskie badanej populacji; 1-90 - numery roślin populacji ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) zaznaczone pod względem fenotypu: litera A - homozygoty odporne; litera B - homozygoty wrażliwe na porażenie; litera C - heterozygoty.
PL 244888 Β1
Fig. 2 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 990 ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
‘Kasztan’, Pc59K-A. sterilis PI 296244 x A sativa TAM-O-312 - formy rodzicielskie badanej populacji; 1-125 - numery roślin populacji ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) zaznaczone pod względem fenotypu: litera A - homozygoty odporne; litera B - homozygoty wrażliwe na porażenie; litera C - heterozygoty.
Fig. 3 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 707.2 ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
‘Kasztan’, Pc59K-A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 - formy rodzicielskie badanej populacji; 2-154 - numery roślin populacji ‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312) zaznaczone pod względem fenotypu: litera A - homozygoty odporne; litera B - homozygoty wrażliwe na porażenie; litera C - heterozygoty.
W pierwszym etapie wytworzono 3 populacje mieszańcowe 707, 707.2 oraz 990 (‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312)), w których dawcą genu odporności na rdzę koronową owsa jest forma mieszańcowa A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312. Następnie za pomocą testu fizjologicznego zidentyfikowano rośliny homozygotyczne, dominujące - odporne; rośliny homozygotyczne, recesywne - wrażliwe na porażenie oraz rośliny heterozygotyczne - segregujące pod względem odporności na rdzę koronową. Po wyizolowaniu DNA roślin o przeciwstawnych fenotypach poddano je komercyjnej analizie polimorfizmu DArTseq polegającej na sekwencjonowaniu zredukowanej reprezentacji genomu. Wyniki uzyskano w postaci macierzy binarnych. Po przyporządkowaniu segregacji fenotypów i genotypów zidentyfikowano sekwencje silicoDArT, które stały się podstawą do zaprojektowania odpowiednich par starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Z udziałem oligonukleotydowych starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, uzyskano dominujący marker 127+853 (Fig.1-3), który w prosty i szybki sposób identyfikuje rośliny owsa posiadające allel dominujący genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312. Marker 127+853 został opracowany w oparciu o wyniki analizy segregacji produktu 127+853 o masie 520 pz, wykazywał sprzężenie genetyczne z locus genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312, ma charakter specyficzny, bazuje na reakcji PCR oraz generuje łatwe w interpretacji i powtarzalne wyniki umożliwiając jego zastosowanie w selekcji wspomaganej markerami.
Przeprowadzone badania markera 127+853 wykazały, że jest on znacznikiem allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w owsie zwyczajnym.
Zastosowanie markera 127+853 może być przydatne do identyfikacji genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 obecnego w materiałach hodowlanych owsa. Podstawową zaletą opracowanego systemu identyfikacji jest możliwość analizy roślin w bardzo wczesnym stadium rozwojowym, a wynik uzyskiwany jest w krótkim czasie i jest niezależny od warunków środowiska wzrostu i rozwoju rośliny.
Sposób identyfikacji markera 127+853
Materiał:
DNA izolowane z liści owsa przy wykorzystaniu komercyjnie dostępnych zestawów.
Skład mieszaniny reakcji PCR (Polymerase chain rection):
DNA 10-50 ng
2x JumpStart™Taq ReadyMix™ lx
Starter l27_F2a (sekwencja nr 1) 0,1-0,5 μΜ
Starter 853 R3 (sekwencja nr 2) 0,1-0,5 μΜ
H2O W zależności od objętości końcowej mieszaniny PCR
PL 244888 Β1
Sekwencje starterów:
Sekwencja nr 1:127 _F2a 5’ CTTCCTGCAGGAGGGCC 3’
Sekwencja nr 2: 853_R3 5’ CAAACAGGAGCAGCAAGC 3’
Startery projektowano przy użyciu programu Primer 3.0.
Warunki amplifikacji DNA
Reakcję PCR przeprowadzono w termocyklerach: SimpliAmp (Applied Biosystems) lub ProFlex (Applied Biosystems).
Profil termiczny reakcji PCR: 94°C-4min., 37 cykli (94°C-30 s, 62°C-30 s, 72°C-45s), 72°C-7 min. Identyfikacja markera 127+853:
Elektroforeza na 1,5 % żelu agarozowym zawierającym 0,5 μg/ml bromku etydyny w buforze TBE (pH 8,0) przy napięciu 100 V przez 2 godziny. Jako wzorzec długości fragmentów DNA użyto GeneRuler™ 100 bp plus DNA Ladder (ThermoFisher). Wizualizacji markera dokonano wykorzystując system DigiGeminus (Syngene).
Wyniki:
Testowanie markera 127+853 na osobnikach populacji 707 (‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312)) wykazało wysoką zgodność segregacji markera z odpornością na rdzę koronową owsa (Fig. 1). Na 44 testowane rośliny 100% zostało właściwie zakwalifikowanych na podstawie detekcji markera 127+853. Spośród 94 osobników populacji 990 (‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312)) liczba niedopasować wyniosła 3, czyli 3,2% niewłaściwie zakwalifikowanych genotypów (Fig. 2). W populacji 707.2 (‘Kasztan’ x (A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312)) wśród 46 testowanych genotypów 3 (6,5%) zostały zakwalifikowane niewłaściwie (Fig. 3). Na elektroforegramach przedstawiono amplifikowane fragmenty DNA po włączeniu do analizy pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, świadczące o obecności w badanych genotypach allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312.
LISTA SEKWENCJI
Sekwencja nr 1 (Starter 127_F2a)
5’ CTTCCTGCAGGAGGGCC 3’
Sekwencja nr 2 (Starter 853 R3)
5’ CAAACAGGAGCAGCAAGC 3’
Sekwencja nr 3
5’
TCTTCCTGCAGGAGGGCCGTCCTGGCACTTATAGAAGTATGTTGACACTTGAA ATTTCTCACTGTCCTAAGTTGTTTCTGCCTCACACTTCCACGGTAACTCATATTG ATGTGCCTGCTAGTCCTTCGGGGAGTGCCGGTGCATTTCAAGCTGGATCAAAA ATCCCATGGGTGCAGGCACAACTCCCAATGCTGACCTCCCTCAGGGAACTTAC GATTAGGGGAGAGCCAAGATTTATGTCAATGGCCCTGCTCTCGAATCTTGCAT CTCTCACCTGTCTAGAACTAGTGGATTGCAAGAATTTAACAGTAGATGGGTTC AATCCTCTCATCACAGCTGTCAGACTCAAGAAATTTAAAGTCTACAACTGGGA
ATATGGTCCTCGCTCTGTAGCTGCGAATCTTCTCTCGGAATTGGTGGTGGCAAG
TAGTGCCAAACTATTGTCACCTTCTGCAGGCTGCTTCCAGCTGGAATATCTTGA
AGTGGATAGCATCGCAGCGGTGCTTGCTGCTCCTGTTTG 3 ’

Claims (3)

1. Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
2. Sposób identyfikacji allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego, w którym to sposobie polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, znamienny tym, że parę starterów stanowi para oligonukleotydowych starterów o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 127+853, przedstawiony na Fig. 1-3.
3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że w wyniku PCR amplifikowany jest fragment DNA o długości 520 par zasad o sekwencji nr 3, przedstawionej na liście sekwencji.
PL440930A 2022-04-13 2022-04-13 Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) PL244888B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL440930A PL244888B1 (pl) 2022-04-13 2022-04-13 Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL440930A PL244888B1 (pl) 2022-04-13 2022-04-13 Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL440930A1 PL440930A1 (pl) 2023-10-16
PL244888B1 true PL244888B1 (pl) 2024-03-18

Family

ID=88372925

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL440930A PL244888B1 (pl) 2022-04-13 2022-04-13 Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL244888B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL440930A1 (pl) 2023-10-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hashmi et al. RAPD analysis of somaclonal variants derived from embryo callus cultures of peach
Gill et al. Development of sex-linked PCR markers for gender identification in Actinidia
PL245140B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL233477B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu Pc39 odporności na rdzę koronową w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL245142B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL243633B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa ‚Pendek’ x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
KR102358788B1 (ko) 저온 내성 양배추 품종 선별용 분자마커 및 이의 용도
PL233478B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc39 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL244512B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa ’Pendek’ x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
KR101922420B1 (ko) 남평벼 유래 dna 마커를 포함하는 키다리병 저항성 벼 품종 선별용 조성물 및 상기 dna 마커를 이용한 키다리병 저항성 벼 품종 선별 방법
Moodley et al. Development of Potato virus Y (PVY) resistant pepper (Capsicum annuum L.) lines using marker-assisted selection (MAS)
CN107201395B (zh) 水稻抗褐飞虱主效基因Bph30的分子标记及其应用
Patzak Assessment of somaclonal variability in hop (Humulus lupulus L.) in vitro meristem cultures and clones by molecular methods
PL233476B1 (pl) Dwie pary oligonukleotydowych starterów do wykrywania obecności alleli dominującego lub recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc39 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.), kombinacja dwóch par starterów oraz sposób wykrywania układu alleli genu Pc39
CN113046461B (zh) 鉴定水稻粒长QTL qGL5-27.3上长粒等位基因的特异性DNA标记及其应用
RU2718584C2 (ru) Молекулярные маркеры гена rlm4 резистентности к черной ножке brassica napus и способы их применения
PL244888B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
KR102024212B1 (ko) DNA 마커를 포함하는 벼 키다리병 저항성 유전자 qBK1WD를 가진 벼 품종 선별용 조성물 및 이를 이용한 저항성 벼 품종 선별 방법
Liu et al. Analysis of DNA methylation patterns and levels in maize hybrids and their parents
PL244887B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL243632B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania obecności allelu dominującego i recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa ‚Pendek’ x Avena sterilis CW-486 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
PL243634B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa ‚Pendek’ x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
AL-MUSAWI et al. Molecular Characterization Based on Genetic Diversity Analysis For Fertility Restorer Genes in Rice (Oryza Sativa, L.) Using Microsatellite Markers.
PL245141B1 (pl) Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)
RU2740404C1 (ru) ДНК-маркер для селекции сортов ярового ячменя, устойчивых к темно-бурой пятнистости