PL237299B1 - Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej - Google Patents
Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej Download PDFInfo
- Publication number
- PL237299B1 PL237299B1 PL424555A PL42455518A PL237299B1 PL 237299 B1 PL237299 B1 PL 237299B1 PL 424555 A PL424555 A PL 424555A PL 42455518 A PL42455518 A PL 42455518A PL 237299 B1 PL237299 B1 PL 237299B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- purification
- chromatography
- asc
- separation
- aqueous buffer
- Prior art date
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/10—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features
- B01D15/18—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to flow patterns
- B01D15/1892—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to flow patterns the sorbent material moving as a whole, e.g. continuous annular chromatography, true moving beds or centrifugal chromatography
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/10—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features
- B01D15/18—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to flow patterns
- B01D15/1807—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to flow patterns using counter-currents, e.g. fluidised beds
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/26—Conditioning of the fluid carrier; Flow patterns
- G01N30/38—Flow patterns
- G01N30/42—Flow patterns using counter-current
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
- C07K1/145—Extraction; Separation; Purification by extraction or solubilisation
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/26—Conditioning of the fluid carrier; Flow patterns
- G01N30/38—Flow patterns
- G01N2030/381—Flow patterns centrifugal chromatography
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny za pomocą technik Chromatografii Przeciwprądowej (ang. Countercurrent Chromatography, CCC), np. za pomocą Odśrodkowej Chromatografii Podziałowej (ang. Centrifugal Partiton Chromatography, CPC), będącej hydrostatycznym wariantem CCC, w układach faz z użyciem wodnych roztworów buforowych, ciekłych alkoholi alifatycznych i ciekłych węglowodorów alifatycznych, w których homologi wykazują współczynniki podziału od 0,1 do 10. Sposób oczyszczania surfaktantów lipopeptydowych pochodzenia naturalnego za pomocą technik Chromatografii Przeciwprądowej, np. Odśrodkowej Chromatografii Podziałowej, można ponadto prowadzić bez rozdzielania na homologi lub z rozdzielaniem na homologi.
Surfaktanty lipopeptydowe pochodzenia naturalnego są substancjami organicznymi produkowanymi przez wiele różnych grup organizmów, jak również znajdują się w otoczkach niektórych wirusów. Wydajność ich produkcji przez różne grupy organizmów jest jednak zmienna. Obecnie wydaje się, że największą wydajnością charakteryzują się niektóre bakterie w specyficznych warunkach. Np. Bacillus sp. (np. Bacillus subtilis) produkujący różne formy surfaktyny (zarówno jej analogi jak i homologi), czy też Pseudomonas sp. (np. Pseudomonas fluorescens BD5) produkujące różne formy pseudofaktyny.
Surfaktanty lipopeptydowe pochodzenia naturalnego są bardzo wydajnymi środkami powierzchniowo czynnymi oraz bardzo wydajnymi emulgatorami. W odróżnieniu jednak od np. mydeł są dużo skuteczniejsze. Natomiast w odróżnieniu od detergentów syntetycznych, są w pełni biodegradowalne, więc nie są aż tak uciążliwe dla środowiska naturalnego jak detergenty syntetyczne. Jak do tej pory nie stwierdzono ich wysokiej toksyczności w stosunku do organizmu ludzkiego, natomiast wykazują działanie bakteriostatyczne, a czasami bakterio- i grzybobójcze. Cechy te sprawiają, że mogą mieć zastosowanie jako emulgator w kremach, obniżając wymaganą ilość konserwantów lub wręcz eliminując ich konieczność, albo np. zastosowanie w nowoczesnych środka do mycia naczyń i innych powierzchni.
Biosurfaktanty są izolowane (i oczyszczane) od wielu lat różnymi metodami, nie zawsze wydajnymi. Np. surfaktyna z Bacillus subtilis często jest izolowana za pomocą kwaśnej precypitacji. Ta najpowszechniejsza metoda otrzymywania surfaktyny powoduje straty sięgające 50% oraz niekiedy pojawia się zanieczyszczenie od np. wolnych kwasów tłuszczowych.
Chromatografia przeciwprądowa (ang. Countercurrent Chromatography, CCC) jest preparatywną techniką chromatograficzną bazującą na rozdzielaniu pomiędzy dwie niemieszające się ciecze. Jednym z technicznych rozwiązań, tzw. typu hydrostatycznego, jest Odśrodkowa Chromatografia Podziałowa (ang. Centrifugal Partition Chromatography, CPC), gdzie retencja fazy stacjonarnej jest utrzymywana dzięki ciśnieniu hydrostatycznemu generowanemu za pomocą wirówki jednoosiowej z uszczelkami rotacyjnymi. Odśrodkowa chromatografia podziałowa, jak inne metody chromatografii przeciwprądowej, uchodzi za technikę bezstratną lub niskostratną. Brak efektów adsorpcyjnych na złożu gwarantuje wysokie odzyski z aparatu (pow. 90%). Jednocześnie jest to metoda chromatograficzna, umożliwiająca pozbycie się niechcianych zanieczyszczeń w wydajny sposób.
Odmiennym zagadnieniem jest rozdzielanie mieszaniny biosurfaktantów na składowe (np. homologi strukturalne). Jak do tej pory udawało się to wykonać za pomocą techniki preparatywnej wysokosprawnej chromatografii cieczowej (prepHPLC), która nie jest techniką wydajną. Jest to technika kosztowna, wymagająca dużej ilości rozpuszczalników o wysokiej klasie czystości. Techniki chromatografii przeciwprądowej zużywają mniej rozpuszczalników w przeliczeniu na gram czystej substancji, a ponadto mogą korzystać z rozpuszczalników o niższej klasie czystości. W przypadku odśrodkowej chromatografii podziałowej, ponadto brak jest strat rozdzielczości chromatograficznej w przypadku przechodzenia na większą skalę, a fenomen ten jest mocno zaznaczony w przypadku preparatywnej wysokosprawnej chromatografii cieczowej. Odśrodkowa chromatografia podziałowa jest z roku na rok coraz popularniejszą techniką wśród nowoczesnych metod oczyszczania. W 1993 roku Andre Durand et al. [WO 1994021622] zgłosili metodę oczyszczania taksoidów, za pomocą CPC. W 2010 roku Matthieu Giraud et al. [WO 2011157803] zgłosili metodę oczyszczania związków amfoterycznych metodą z użyciem specyficznych wymieniaczy jonowych. W 2013 roku została zgłoszona do opatentowania metodyka oczyszczania oligonukleotydów spośród ich mieszaniny za pomocą technik chromatografii przeciwprądowej, w tym CPC [WO 2013030263]. Ostatnio coraz częściej pojawiają kolejne patenty na oczyszczanie kolejnych związków chemicznych, np. w 2017 roku firma Rotachrom zgłosiła do patentu kolejne metody oczyszczania, np. baccatyny III, czy też cyklosporyny A za pomocą CPC [WO 2017072542 A1, WO 2017098291]. Metoda oczyszczania surfaktantów lipopeptydowych pochodzenia
PL 237 299 B1 naturalnego za pomocą Odśrodkowej Chromatografii Podziałowej wpisuje się w trend coraz większej ilości zgłaszanych wniosków z wykorzystaniem techniki CPC.
Istotą wynalazku jest sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej (ang. Countercurrent Chromatography, CCC) charakteryzujący się tym, że: oczyszczanie odbywa się w systemie dwóch częściowo mieszających się faz rozpuszczalnikowych sporządzonych z rozpuszczalników wybranych z grupy wodnych roztworów buforowych, ciekłych alkoholi alifatycznych i ciekłych węglowodorów alifatycznych, przy czym roztwory buforowe mają stabilizowane pH w granicach od 2 do 10 a stężenia jonów buforujących zawierają się w zakresie od 2 do 800 mM; węglowodory alifatyczne mają od 5 do 12 atomów węgla, przy czym w tych układach rozpuszczalników, surfaktant, o którym mowa, wykazuje współczynnik podziału w zakresie 0,1 do 10; przy czym obie fazy rozpuszczalnikowe sporządzone są z rozpuszczalnika składającego się z mieszaniny: wodnego roztworu buforowego, metanolu; n-Butanolu oraz n-Heksanu zmieszanych w proporcji odpowiednio 3:2:3:2, objętościowo, a wodny roztwór buforowy zawiera fosforan dwusodowy, chlorek sodowy i wersenian dwusodowy.
Korzystnie, oczyszczanie i/lub rozdzielanie surfaktantów lipopeptydowych pochodzenia naturalnego odbywa się za pomocą Odśrodkowej Chromatografii Podziałowej (ang. Centrifugal Partition Chromatography, CPC), będącej jedną z wersji hydrostatycznego typu Chromatografii Przeciwprądowej (ang. Countercurrent Chromatography, CCC).
W odśrodkowej chromatografii podziałowej, jak w każdej technice chromatografii przeciwprądowej, stosuje się system (rozpuszczalników), który stanowi unikalna kompozycja dwóch faz ciekłych będących względem siebie w stanie równowagi, pomiędzy którymi możliwy jest proces chromatografii przeciwprądowej.
Oczyszczanie surfaktyn z podziałem na homologi lub bez można prowadzić w kilku trybach pracy: tryb wznoszący (skrót: ASC, ang. ascending mode) jest to tryb pracy, który umożliwia stosowanie cięższej cieczy jako fazy stacjonarnej i lżejszej cieczy jako fazy ruchomej. Wówczas, w CPC, przepływ przez komórki podziałowe odbywa się w stronę do osi obrotu rotora, czyli ze zwrotem przeciwnym sile odśrodkowej.
Tryb opadający (skrót: DSC, ang. descending) jest to tryb pracy, który umożliwia stosowanie fazy lżejszej jako fazy stacjonarnej i cięższej jako fazy ruchomej. Wówczas, w CPC, przepływ przez komórki podziałowe odbywa się w stronę od osi obrotu rotora, czyli ze zwrotem zgodnym z siłą odśrodkową.
Dual-mode (skrót: DM, polskiego tłumaczenia brak) jest to tryb pracy polegający na zamianie miejscami fazy ruchomej i stacjonarnej w celu np. zwiększenia rozdzielczości chromatograficznej (czyli: najpierw ASC, później DSC (lub na odwrót)).
Multiple dual-mode (skrót: MDM, polskiego tłumaczenia brak) jest to tryb pracy polegający na kilkukrotnej zamianie miejscami fazy ruchomej i stacjonarnej. Jako rozpuszczalniki stosowane do sporządzenia systemu rozpuszczalników do oczyszczania surfaktantów lipopetydowych pochodzenia naturalnego stosuje się roztwory buforowe, które mają stabilizowane pH w granicach od 2 do 10 a stężenia jonów buforujących zawierają się w zakresie od 2 do 500 mM, przy czym wodne roztwory buforowe mogą zawierać dodatkowe składniki stabilizujące, korzystnie sole pomocnicze (wprowadzające odpowiednie stężenie jonów towarzyszących i moderujące siłę jonową, np. NaCl); węglowodory alifatyczne proste, rozgałęzione lub cykliczne, o ilości węgli od 1 do 10.
Wynalazek został bliżej przedstawiony w poniższych przykładach wykonania oraz na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia przykładowy chromatogram oczyszczania surfaktyny otrzymanej z bakterii Bacillus subtilis, bez rozdzielania na homologi oraz fig. 2 przedstawia oczyszczanie surfaktyny otrzymanej z bakterii Bacillus subtilis, z rozdzielaniem na homologi.
P r z y k ł a d 1. Oczyszczanie surfaktyny otrzymanej z bakterii Bacillus subtilis, bez rozdzielania na homologi:
Używane komponenty systemu:
1. Wodny roztwór buforowy zawierający stężeniach: 20 mM fosforanu dwusodowego, 50 mM chlorku sodowego i 5 mM wersenianu dwusodowego (EDTA dwusodowy),
2. Metanol,
3. n-Butanol,
4. n-Heksan.
System rozpuszczalników przygotowano w proporcji odpowiednio 3:2:3:2., w kolejności komponentów powyżej.
PL 237 299 Β1
Sporządzenie preparatu:
Około 1,2 g oczyszczanego preparatu zawieszono w 40 ml powyższego systemu rozpuszczalników (po tej samej ilości fazy górnej i dolnej) i odwirowano pozostałości przez 10 min przy przyspieszeniu nie mniejszym niż 1500 g i nie większym niż 2500 g, a supernatant przeniesiono do czystego pojemnika. Ponownie żwirowano, tym razem krótko (około minuty, 1500 g), aby fazy się odseparowały.
Używany moduł do CPC:
Wirówka z rotorem o pojemności 1 litr i ilością komórek podziałowych nie mniej niż 1800, np.: Armen SCPC 1 L.
Przygotowanie kolumny chromatograficznej zostało przedstawione w tabeli 1.
Tabela 1
| Czas akcji [min : s] | Tryb elucji (pozycja zaworu) | Faza cięższa (udział) % | Faza lżej sza (udział) % | Przepływ [ml/min] | Obroty rotora [RPM] |
| 0:00 | ASC | 100 | 0 | 100 | 500 |
| 13:00 | ASC | 100 | 0 | 100 | 500 |
| 13:03 | ASC | 0 | 100 | 30 | 1500 |
| 35:00 | ASC | 0 | 100 | 30 | 1500 |
| 38:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 40:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
Na tak przygotowaną kolumnę nastrzyknąć około 20 ml preparatu rozpuszczonego w fazach systemu.
Programu elucyjny, wersja z napełnianiem rotora i bez ekstruzii według poniższej tabeli 2:
PL 237 299 Β1
Tabela 2
| Czas akcji [h : min : s] | Tryb elucji (pozycja zaworu) | Faza cięższa (udział) % | Faza lżej sza (udział) % | Przepływ [ml/min] | Obroty rotora [RPM] |
| 0:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 5:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 35:00 | ASC | 0 | 100 | 15 | 1500 |
| 1:02:00 | ASC | 0 | 100 | 15 | 1500 |
| 1:02:03 | DSC | 100 | 0 | 12 | 1500 |
| 2:40:00 | DSC | 100 | 0 | 12 | 1500 |
Należy zbierać frakcje w kolektorze w zakresie czasu od 1:35:00 do 2:40:00, monitorując absorbancję przy którejś z długości fal z zakresu 205 do 220 nm, np. przy 207 nm.
Czystość uzyskanej w ten sposób surfaktyny wynosi >90%, przy czym jest to mieszanina homologów.
Przykład 2. Oczyszczanie surfaktyny otrzymanej z bakterii Bacillus subtilis, z rozdzielaniem na homologi:
Homologi to grupa podobnych związków chemicznych tworzących tzw. „szereg homologiczny”, w którym następne związki różnią się od poprzednich ugrupowaniem (łącznikiem) metylenowym (CH2).
Używane komponenty systemu:
1. Wodny roztwór buforowy zawierający stężeniach: 20 mM fosforanu dwusodowego, 50 mM chlorku sodowego i 5 mM wersenianu dwusodowego (EDTA dwusodowy),
2. Metanol,
3. n-Butanol,
4. n-Heksan.
System rozpuszczalników należy wykonać w proporcji odpowiednio 3:2:3:2, w kolejności komponentów powyżej.
Sporządzenie preparatu:
Należy zawiesić około 1,2 g preparatu oczyszczanego w 40 ml systemu (po tej samej ilości fazy górnej i dolnej). Po zawieszeniu odwirować pozostałości 10 min. W przyspieszeniu nie mniejszym niż 1500 g i nie większym niż 2500 g, a supernatant przenieść do czystego pojemnika. Ponownie żwirować, tym razem krótko, aby fazy się odseparowały.
Używany moduł do CPC:
Wirówka z rotorem o pojemności 1 litr i ilością komórek podziałowych nie mniej niż 1800, np.: Armen SCPC 1 L.
Przygotowanie kolumny chromatograficznej według poniższej tabeli 3:
PL 237 299 Β1
Tabela 3
| Czas akcji [min : sj | Tryb elucji (pozycja zaworu) | Faza cięższa (udział) % | Faza lżejsza (udział) % | Przepływ [ml/min] | Obroty rotora [RPMJ |
| 0:00 | ASC | 100 | 0 | 100 | 500 |
| 13:00 | ASC | 100 | 0 | 100 | 500 |
| 13:03 | ASC | 0 | 100 | 30 | 1500 |
| 35:00 | ASC | 0 | 100 | 30 | 1500 |
| 38:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 40:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
Na tak przygotowaną kolumnę nastrzyknąć około 5 ml preparatu, preferowana jest przy nastrzyku faza górna.
Programu elucyjny, wersja z napełnianiem rotora i bez ekstruzji według poniższej tabeli 4:
Tabela 4
| Czas akcji [h : min : s] | Tryb elucji (pozycja zaworu) | Faza cięższa (udział) % | Faza lżejsza (udział) % | Przepływ [ml/min] | Obroty rotora [RPM] |
| 0:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 5:00 | ASC | 0 | 100 | 8 | 1500 |
| 35:00 | ASC | 0 | 100 | 15 | 1500 |
| 1:02:00 | ASC | 0 | 100 | 15 | 1500 |
| 1:02:03 | DSC | 100 | 0 | 12 | 1500 |
| 1:54:00 | DSC | 100 | 0 | 12 | 1500 |
| 1:54:03 | ASC | 0 | 100 | 12,0 | 1500 |
| 3:20:00 | ASC | 0 | 100 | 21,5 | 1500 |
PL 237 299 B1
Należy zbierać frakcje w kolektorze w zakresie czasu od 2:20:00 do 3:10:00, monitorując absorbancję przy którejś z długości fal z zakresu 205 do 220 nm, np. przy 207 nm. Wielkość zbieranych frakcji powinna mieścić się w zakresie 15-20 ml.
Rozdzielone w ten sposób homologi surfaktyny nadal są zanieczyszczone sobą wzajemnie. Tylko niektóre, wybrane frakcje uzyskują czystość 80% danego homologu. Dotyczy to głównie homologów C13, C14 i C15. Dlatego należy zbadać analityczne wybrane frakcje, które (po oglądzie chromatogramu CPC) wydają się interesujące i wybrać do dalszych prac tylko te, których czystość (od innych homologów) jest zadowalająca (np. > 75%).
Należy przy tym pamiętać, że czystość uzyskanej w ten sposób surfaktyny jako całości (bez uwzględnienia podziału na homologi) wynosi > 90%.
Claims (2)
1. Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej (ang. Countercurrent Chromatography, CCC), znamienny tym, że oczyszczanie odbywa się w systemie dwóch częściowo mieszających się faz rozpuszczalnikowych sporządzonych z rozpuszczalników wybranych z grupy wodnych roztworów buforowych, ciekłych alkoholi alifatycznych i ciekłych węglowodorów alifatycznych, przy czym roztwory buforowe mają stabilizowane pH w granicach od 2 do 10 a stężenia jonów buforujących zawierają się w zakresie od 2 do 800 mM; węglowodory alifatyczne mają od 5 do 12 atomów węgla, przy czym w tych układach rozpuszczalników, surfaktant, o którym mowa, wykazuje współczynnik podziału w zakresie 0,1 do 10; przy czym obie fazy rozpuszczalnikowe sporządzone są z rozpuszczalnika składającego się z mieszaniny: wodnego roztworu buforowego, metanolu; n-Butanolu oraz n-Heksanu zmieszanych w proporcji odpowiednio 3:2:3:2, objętościowo, a wodny roztwór buforowy zawiera fosforan dwusodowy, chlorek sodowy i wersenian dwusodowy.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że odbywa się za pomocą Odśrodkowej Chromatografii Podziałowej (ang. Centrifugal Partition Chromatography, CPC).
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL424555A PL237299B1 (pl) | 2018-02-09 | 2018-02-09 | Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej |
| EP19714780.4A EP3749429B1 (en) | 2018-02-09 | 2019-02-08 | Method of purifying and/or separating lipopeptide surfactants of natural origin using countercurrent chromatography |
| PCT/IB2019/051017 WO2019155411A1 (en) | 2018-02-09 | 2019-02-08 | Method of purifying and/or separating lipopeptide surfactants of natural origin using countercurrent chromatography |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL424555A PL237299B1 (pl) | 2018-02-09 | 2018-02-09 | Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL424555A1 PL424555A1 (pl) | 2019-08-12 |
| PL237299B1 true PL237299B1 (pl) | 2021-04-06 |
Family
ID=65995792
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL424555A PL237299B1 (pl) | 2018-02-09 | 2018-02-09 | Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP3749429B1 (pl) |
| PL (1) | PL237299B1 (pl) |
| WO (1) | WO2019155411A1 (pl) |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6696412B1 (en) * | 2000-01-20 | 2004-02-24 | Cubist Pharmaceuticals, Inc. | High purity lipopeptides, Lipopeptide micelles and processes for preparing same |
| KR20110119071A (ko) * | 2010-04-26 | 2011-11-02 | 한국과학기술연구원 | 원심분리 분배 크로마토그래피를 사용하여 해조류에서 푸코잔틴을 분리하는 방법 |
| CN105367615B (zh) * | 2014-08-29 | 2019-03-19 | 上海医药工业研究院 | 一种大豆苷的分离纯化方法 |
| HUP1500502A2 (en) * | 2015-10-26 | 2017-04-28 | Rotachrom Tech Kft | Process for the purification of cyclosporin-a |
-
2018
- 2018-02-09 PL PL424555A patent/PL237299B1/pl unknown
-
2019
- 2019-02-08 EP EP19714780.4A patent/EP3749429B1/en active Active
- 2019-02-08 WO PCT/IB2019/051017 patent/WO2019155411A1/en not_active Ceased
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP3749429A1 (en) | 2020-12-16 |
| EP3749429B1 (en) | 2025-03-12 |
| EP3749429C0 (en) | 2025-03-12 |
| WO2019155411A1 (en) | 2019-08-15 |
| PL424555A1 (pl) | 2019-08-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2323200C2 (ru) | Способ извлечения 1,3-пропандиола из ферментативного бульона (варианты) | |
| JP6900378B2 (ja) | ポリエーテルブロックコポリマーの精製方法 | |
| Chen et al. | Recovery of surfactin from fermentation broths by a hybrid salting-out and membrane filtration process | |
| JPH11188201A (ja) | ベタインの回収方法 | |
| EP0815122B1 (en) | Process for preparation of pure cyclosporin chromatographically using an eluent consisting essentially of high pressure carbon dioxide | |
| JP7261943B2 (ja) | カンナビジバリンとカンナビゲロールを同時に分離する方法 | |
| PL237299B1 (pl) | Sposób oczyszczania i/lub rozdzielania surfaktyny z wykorzystaniem Chromatografii Przeciwprądowej | |
| Biehl et al. | Use of a macrocyclic crown ether in an emulsion (liquid surfactant) membrane to effect rapid separation of Pb2+ from cation mixtures | |
| Chaos et al. | Enhancing hexachlorocyclohexane solubility with surfactants and ionic liquids | |
| CN103288870B (zh) | 一种注射级高纯度磷脂酰胆碱的制备方法 | |
| Lau et al. | Solid‐phase extraction for oil and grease analysis | |
| CN113049690B (zh) | 一种多肽脱盐的方法 | |
| Blakeburn et al. | Surfactant-enhanced carbon regeneration | |
| Grzywaczyk et al. | Nanofiltered saponin-rich extract of Saponaria Officinalis–Adsorption and Aggregation properties of Particular fractions | |
| CN1740180A (zh) | 一种高纯度蛋黄卵磷脂和脑磷脂的同时制备方法 | |
| CN108186790A (zh) | 一种地黄提取物、制备方法及在促进cik细胞体外增殖方面的应用 | |
| KR100629772B1 (ko) | 1,3-프로판디올, 1,2-프로판디올, 글리세롤 및 포도당을포함하는 혼합물로부터 1,3-프로판디올, 또는1,3-프로판디올 및 1,2-프로판디올을 분리하는 방법 | |
| US20030205525A1 (en) | Method of soil extraction | |
| CN108250272A (zh) | 卡泊芬净高效分离纯化方法 | |
| PL80560B1 (pl) | ||
| CN1206009A (zh) | 脱水河豚毒素的提取方法 | |
| CN101372506B (zh) | 一种纯化制备爱啡肽的新工艺 | |
| Rasmussen et al. | Preparative low-pressure chromatography of antibiotics on a column of diol-bonded silica gel | |
| Chew et al. | Polymer–polymer interaction | |
| Svensson et al. | Fractionation of thylakoid membrane components by extraction in aqueous polymer two-phase systems containing detergent |