PL206312B1 - Roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji - Google Patents

Roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji

Info

Publication number
PL206312B1
PL206312B1 PL367837A PL36783702A PL206312B1 PL 206312 B1 PL206312 B1 PL 206312B1 PL 367837 A PL367837 A PL 367837A PL 36783702 A PL36783702 A PL 36783702A PL 206312 B1 PL206312 B1 PL 206312B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
carnitine
solution
solution according
acid
perfusion
Prior art date
Application number
PL367837A
Other languages
English (en)
Other versions
PL367837A1 (pl
Inventor
Arduino Arduini
Tommaso Aureli
Original Assignee
Sigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spasigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spasigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spa filed Critical Sigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spasigma Tau Industrie Farmaceutiche Riunite Spa
Publication of PL367837A1 publication Critical patent/PL367837A1/pl
Publication of PL206312B1 publication Critical patent/PL206312B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0226Physiologically active agents, i.e. substances affecting physiological processes of cells and tissue to be preserved, e.g. anti-oxidants or nutrients
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy roztworu mającego zastosowanie do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji.
W ciągu ostatnich dziesięciu lat. ortotopowy przeszczep narządów stał się niezastąpioną metodą terapeutyczną dla pacjentów cierpiących na specyficzne, znajdujące się w zaawansowanych stadiach choroby narządów, do których należą choroby serca, krwi, trzustki, płuc i nerek.
W dalszym cią gu jednak, problemem pozostaje odrzut transplantowanych organów. Przykł adowo, odrzut narządu, w przypadku przeszczepu wątroby, przyczynia się w pierwszym roku po operacji do wzrostu śmiertelności na poziomie 15%-25% (Strasberg S.M. et al, Hepatology 1994. 20:829).
Fazy, w których wątroba przeznaczona do przeszczepu ulega uszkodzeniu zostały opisane następująco:
1. niedokrwienie cieplne podczas pobierania od dawcy;
2. niedokrwienie zimne podczas hipotermicznej fazy przechowywania.
3. reperfuzja organu u biorcy;
(Transplantation 53:957-978. 1992)
Podstawową strategią opracowaną dla przechowywania organów przeznaczonych do przeszczepu, jest spowolnienie katabolicznych procesów komórkowych poprzez obniżenie temperatury narządu z 37°C do około 4-6°C (hipotermia).
Hipotermia obniża prędkość procesów metabolicznych oraz prędkość hydrolizy katalizowanej przez różne enzymy międzykomórkowe, jednak nie zahamowuje całkowicie metabolizmu komórkowego. Może to stać się przyczyną uaktywnienia procesów prowadzących do zmian komórkowych zarówno w przedziałach komórkowych śródbłonka sinusoidalnego, jak i hepatocytów.
W artykule opublikowanym w Cryobiology, vol. 20, nr 3, 1983, str. 290-297, S.Skrede et al: „Coenzyme A in dog kidneys Turing hypothermic perfusion” opisano zagadnienie perfuzji hipotermicznej.
Istotnie, chłodzenie odizolowanej wątroby bez perfuzji wywołuje gwałtowną redukcję w poziomie adenozyno-5'-trifosforanu (ATP) i adenozyno-5'-difosforanu (ADP) (J. Surg. Res. 23:339-437, 1977; Cryobiology 31:441-452. 1994). Odbywa się to w stopniu, w którym wymogi energetyczne komórek zmuszają do uruchomienia aktywności prowadzącej do generowania adenozyno-5'-trifosforanu (ATP) w procesie tlenowej glikolizy z rezerw glikogenu, co w konsekwencji przyczynia się do gromadzenia się kwasu mlekowego i międzykomórkowej kwasicy.
Rozpad adenozyno-5'-trifosforanu (ATP) do adenozyno-5'-difosforanu (ADP) i w końcu do adenozyno-5'-monofosforanu (AMP) i adeniny powoduje, podczas hipotermii, gromadzenie się hipoksantyny oraz towarzyszącą temu konwersję dehydrogenazy ksantyny do oksydazy ksantyny. Jest również związany ze wzrostem aktywności międzykomórkowego wapnia oraz proteazy (McCord J. M., N. Engl. J. Med. 1985, 312:158).
W zgłoszeniu mię dzynarodowym WO 9640167 opisano rolę adenozyno-5'-trifosforanu i jego metabolizmu w leczeniu m.in. niedokrwienia.
W stanie reperfuzji powyż szy proces powoduje w efekcie rozpad hipoksantyny do ksantyny, a nastę pnie do kwasu moczowego, z jednoczesną produkcją reaktywnych tlenowych produktów pośrednich (ROI) i uszkodzeniem poprzez utlenianie.
Co więcej, słabnąca aktywność enzymów takich jak Na/K ATP-azy powoduje zachwianie równowagi jonowej, co prowadzi do wdzierania się wody do wnętrza komórek i ich nabrzmiewania.
W ostatnich latach, wykazano bezpoś redni zwią zek pomię dzy zawartoś cią adenozyno-5'-trifosforanu (ATP) podczas hipotermicznego przechowywania organów przeznaczonych do transplantacji, a pomyślnym przeszczepem narządów u ludzi (Hepatology 1988, 8:471).
W celu pokonania powyż szych przeszkód zastosowano roztwór do przechowywania, którego skład badano pod kątem neutralizacji niebezpiecznych skutków hipotermii anoksycznej (w trakcie fazy przechowywania) i reperfuzji upośledzającej funkcje zachowania prawidłowej ciepłoty (w trakcie fazy reimplantacji).
Proces tworzenia takiego roztworu podlega ciągłej ewolucji i ma na celu poprawę stanu witalnego organu oraz wydłużenie czasu przechowywania.
Roztwory użyteczne do przechowywania organów przeznaczonych do przeszczepów są już powszechnie znane.
W międzynarodowym zgłoszeniu patentowym WO 9618293 ujawniono zrównoważone izotoniczne roztwory jonowe użyteczne w transplantologii.
PL 206 312 B1
Roztwory ochronne zostały opisane w European Surgical Research, vol. 24, nr 6, 1992, str. 339-348, Reckendorfer H. et al.: „Hepatic energy metabolism during hypothermic storage and reperfusion using different protecting solutions”.
W publikacji zamieszczonej w Transplantation z kwietnia 2000 15; 69(7):1261-5) ujawniono, ż e roztwór z Uniwersytetu Wisconsin, znany jako roztwór UW, umożliwia opóźnienie procesów katabolicznych i daje gwarancję korzystnego przechowywania organów oczekujących na transplantację.
Skład roztworu UW jest oparty na farmakologicznej strategii, której celem jest:
1) sprzyjanie ponownej syntezie adenozyno-5'-trifosforanu (ATP) poprzez dodanie prekursorów takich, jak adenina i fosforany;
2) niedopuszczenie do kwasicy poprzez zastosowanie bufora fosforanowego;
3) zahamowanie aktywności oksydazy ksantynowej poprzez allopurynol;
4) zminimalizowanie redystrybucji jonów dzięki zastosowaniu kompozycji podobnej do kompozycji występującej między komórkami (wysoki poziom K+); a przede wszystkim
5) niedopuszczenie do nabrzmiewania komórek na skutek ciśnienia osmotycznego, poprzez dodanie laktobionianu, rafinozy i koloidów o wysokiej masie cząsteczkowej, takich jak skrobia.
Zasadnicza strategia tej kompozycji jest empiryczna i opiera się na hipotezie, że jej skutek działania to fenomen zwany „sumą czynników ochronnych” (Southard J.H. et al., Transplantation 1990, 49:251).
W publikacji w Transplant Proc. 1999, August 31(5): 2069-70 przedstawiono roztwór Celsior, użyteczny do przechowywania narządów przeznaczonych do transplantacji. Roztwór fizjologiczny soli EuroCollins jest kolejnym znanym roztworem, użytecznym do przechowywania organów, jego skład przedstawiono w tabeli 1.
T a b e l a 1
Stężenie
K2HPO4OH2O 32 mM
KH2PO4 15 mM
KCl 15 mM
NaHCOa 10 mM
Glukoza 194 mM
Roztwór ten przez wiele lat był uważany w Europie za standartowy roztwór do przechowywania narządów, a w szczególności nerek. Założenia przy formułowaniu składu roztworu dotyczyły otrzymania elektrolitycznej kompozycji, która stymuluje środowisko wewnątrzkomórkowe. Następnie, hipertoniczność (420 mOsmol) roztworu osiąga się przez dodanie glukozy o wysokim stężeniu (około 190 mM).
Wyżej wspomniane roztwory nie pozostają bez zastrzeżeń i w dalszym ciągu stanowią przedmiot licznych modyfikacji.
Podstawowe niekorzystne cechy roztworu UW to jego kleistość, stwarzająca zagrożenie uszkodzenia przede wszystkim komórek endotelialnych podczas perfuzji narządu, oraz wysokie koszty każdego ze składników, których konieczność użycia podlega wielu wątpliwościom (Transplant Proc. 1999; August; 31(5): 2069-70).
Roztwór Celsior porównany z roztworem UW okazuje się posiadać wiele niekorzystnych cech w kontekście przechowywania wątroby (Transplant. 2000; Oct. 27; 70(8): 1140-2). Roztwór EuroCollins również charakteryzują liczne wady:
- roztwór cechuje wysokie stężenie glukozy, co sprzyja wystąpieniu problemu kwasicy na skutek zwiększonej produkcji mleczanu podczas hipotermicznego niedotlenienia tkanek.
- nie chroni przed nabrzmiewaniem komórek podczas przechowywania organów;
- nie jest w ż adnym aspekcie lepszy od roztworu UW (Transplantation 2000 Apr. 15; 69(7): 1261-5).
W dziedzinie medycyny jest już powszechnie znane zastosowanie związków z grupy karnityn.
W Ann. Thorac. Surg. 2001: 71: 254-9 opisano zastosowanie L-karnityny do leczenia niedokrwienia kardioplegicznego w wyizolowanym sercu króliczym. W niniejszej pracy przedstawiono efekt ochronny działania L-karnityny na przywrócenie funkcji sercowych w wyizolowanym sercu królika, podczas perfuzji krwią, do której dodano L-karnitynę.
PL 206 312 B1
Podobnie, w zgłoszeniu międzynarodowym WO 0030637 zostało opisane zastosowanie L-karnityny, fumaranu alkanoilo-L-karnityny lub ich pochodnych w leczeniu niedokrwienia mózgu i nerek.
Zastosowanie L-karnityny zostało ujawnione m.in. w Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery, vol. 99. nr 6. 1990, str. 1048-1058, Klepetko W. et al.: „Pulmonary surfaktant in bronchoalveolar lavage after panine lung transplantation effect of L-carnitine application”, Kidney International, vol. 61, nr 3, marzec 2002 (2002-03), str. 1064-1078, Mister Marilena et al.: „Propionyl-L-carnitine prevents renal function deterioration due to ischemia/reperfusion”. Transplantation Proceedings, vol. 33, 2001, str. 2523-2524, U.Puetz et al.: „Effects of L-Carnitine-Hydrochloride in the Cold Ischemic Preservation of Fatty Liver Grafts”. Urological Research, vol. 29, nr 3, 11 czerwca 2001, str. 186-189, O.Ergiin et al: „Carnitine as preventive agent in experimental renal ischemia-reperfusion injury”, The Thoracic and Cardiovascular Surgeon., vol. 42, nr 2, kwiecień 1994, str. 85-89, Nakagawa T. et al.: „The effect of L-carnitine on myocardial protection in cold cardioplegia followed by reperfusion”.
Zastosowanie L-karnitny do przygotowania roztworu wykorzystanego do przechowywania organów przeznaczonych do transplantacji nie zostało nigdy wcześniej opisane. Odkryto, że dodanie karnityny lub alkanoilo L-karnityny do roztworu do przechowywania izolowanych narządów ujawnia jego zaskakujące własności służące przechowywaniu i perfuzji narządów, ulepszone w stosunku od znanych, wcześniej wymienionych roztworów.
Roztwór według niniejszego wynalazku, różni się od wcześniej poznanych obecnością L-karnityny i/lub alkanoilo L-karnityny.
Roztwór według niniejszego wynalazku jest odpowiedni do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji. Do przykładów takich narządów należą serce, wątroba, trzustka, płuco, nerka.
Przedmiotem wynalazku jest roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji zawierający:
a) izotonicznie zrównoważony roztwór zawierający fizjologicznie dopuszczalną ilość potasu, jednokwaśnego fosforanu, dwukwaśnego fosforanu, chlorek, jony sodu i jony dwuwęglanu.
b) 50-250 mM glukozy;
c) wodę; znamienny tym, że ponadto zawiera
d) 0.2-20 mM alkanoilo L-karnityny lub jedną z jej fizjologicznie dopuszczalnych soli; i/lub
e) 1-100 mM L-karnityny lub jedną z jej fizjologicznie dopuszczalnych soli. Korzystnie, roztwór według niniejszego wynalazku zawiera izotonicznie zrównoważony roztwór jonowy obejmujący związki wybrane z grupy zawierającej: Κ2ΗΡΟ4·3Η2Ο; KH2PO4; KCl; NaHCO3.
Korzystnie, roztwór według wynalazku (dalej określany także jako „Roztwór Carnival”) posiada skład przedstawiony w tabeli 2 i zawiera:
T a b e l a 2
K2HPO4-3H2O 10-60 mM
KH2PO4 3-50 mM
KCl 3-50 mM
NaHCO3 2-50 mM
Glukoza 50-250 mM
Alkanoilo L-karnityna lub jej fizjologicznie dopuszczalna sól 0.2-20 mM
L-karnityna lub jej fizjologicznie dopuszczalna sól 1-100 mM
Przez fizjologicznie dopuszczalną sól L-karnityny lub alkanoilo L-karnityny jest rozumiana każda sól zawierająca kwas. który nie wywołuje niepożądanych efektów toksycznych. Kwasy te są dobrze znane farmakologom i ekspertom technologii farmaceutycznych.
Liczne przykłady powyższych soli to chlorek, bromek, orotan, kwaśny asparaginian, kwaśny cytrynian, cytrynian magnezowy, kwaśny fosforan, fumaran, kwaśny fumaran, fumaran magnezowy, mleczan, maleinian i kwaśny maleinian, mukonian, kwaśny szczawian, pamoanian, kwaśny pamoanian, kwaśny siarczan, fosforan glukozy, winian, kwaśny winian, winian magnezowy, 2-amino etanosiarczan, 2-amino etanosiarczan magnezowy, winian choliny i trichlorooctan.
PL 206 312 B1
Korzystnie, gdy zawarta w roztworze według wynalazku alkanoilo-L karnityna jest wybrana z grupy obejmują cej acetyl, propionyl, waleryl, izowaleryl, butyryl lub izobutyryl L-karnityny.
Korzystnie, alkanoilo L-karnityną w roztworze według wynalazku jest izowalerylo L-karnityna. Korzystnie, wynalazek dotyczy roztworu zawierającego fizjologicznie dopuszczalną sól
L-karnityny lub alkanoilo L-karnityny, wybraną z grupy obejmującej: chlorek, bromek, orotan, kwaśny asparaginian. kwaśny cytrynian, cytrynian magnezowy, kwaśny fosforan, fumaran, kwaśny fumaran, fumaran magnezowy, mleczan, maleinian i kwaśny maleinian, mukonian, kwaśny szczawian, pamonian (pamoate). kwaśny pamonian (pamoate), kwaśny siarczan, glukozofosforan, winian, kwaśny winian, winian magnezowy, 2-amino etanosiarczan, 2-amino etanosiarczan magnezowy, cholinowinian i trójchlorooctan. Korzystnie, fizjologicznie dopuszczalną solą L-karnityny lub alkanoilo L-karnityny jest fumaran.
Korzystnie, roztwór według wynalazku zawiera skład przedstawiony w tabeli 3:
T a b e l a 3
Κ2ΗΡθ4·3Η2θ 32 mM
KH2PO4 15 mM
KCl 15 mM
NaHCOa 10 mM
Glukoza 187.5 mM
Fumaran izowalerylo L-karnityny 2 mM
L-karnityna (sól wewnętrzna) 10 mM
Będący przedmiotem wynalazku roztwór służy utrzymaniu i perfuzji narządu przeznaczonego do transplantacji, korzystnie narząd ten jest wybrany z grupy obejmującej serce, wątrobę, trzustkę, płuco lub nerkę.
Roztwór według wynalazku korzystnie charakteryzuje się tym, że narządem utrzymywanym w roztworze jest wą troba.
Roztwór według niniejszego wynalazku może dodatkowo zawierać:
1) jeden lub więcej przeciwutleniaczy, w ilości odpowiedniej do zapobiegania tworzeniu się wolnych rodników pochodzących z tlenu. Do licznych przykładów antyutleniaczy należą: allopurynol, glutation. beta-karoten, katalaza, dysmutaza ponadtlenkowa, dimetylotiomocznik (DMTU), N,N'-difenylo-p-fenylenodiamina (DPPD), manitol, cjanidanol; witamina E i/lub
2) kwas dichlorooctowy do redukcji mleczanu, który formuje się podczas przechowywania.
Ilość w jakiej przeciwutleniacze i/lub kwasu dichlorooctowy są stosowane, jest dobrze znana ekspertom w tej dziedzinie i jest szeroko opisywana w literaturze. Korzystnie, roztwór według wynalazku zawiera dodatkowo przynajmniej jeden antyutleniacz w ilości wystarczającej do zahamowania tworzenia się pochodzących od tlenu wolnych rodników.
Korzystnie, antyutleniacz stosowany w roztworze według wynalazku wybrany jest z grupy obejmującej: allopurynol, glutation, betakaroten, katalazę, dysmutazę ponadtlenkową, dimetylotiomocznik (DMTU). N,N'-difenylo-p-fenylenodiaminę (DPPD), mannitol, cyjanidanol.
Korzystnie, roztwór według wynalazku charakteryzuje się tym, że zawiera dodatkowo kwas dichloroocowy.
Roztwór według wynalazku korzystnie przeciwdziała mechanizmom uszkadzającym narządy i dlatego jest roztworem, który a) chroni przed lub redukuje wewnątrzkomórkową kwasicę; b) zapobiega uszkodzeniom powstającym na skutek działania wolnych rodników tlenowych, zwłaszcza podczas perfuzji; c) pozwala na odnowienie podczas perfuzji bogatych w energię fosforanów; d) chroni przed rozszerzeniem się przestrzeni wewnątrzkomórkowych; e) spełnia wymagania metaboliczne komórki. Ochronne własności roztworu według wynalazku, zostały zbadane na podstawie odpowiednich modeli eksperymentalnych, w odniesieniu do znanych roztworów mających zastosowanie w przechowywaniu narządów.
Niniejszy wynalazek został zilustrowany za pomocą poniższych przykładów.
P r z y k ł a d 1
Na podstawie licznych badań znaleziono związek pomiędzy zdolnością przeszczepianego narządu do regeneracji bogatych w energię ufosforylowanych cząstek, takich jak ATP, a pomyślnym
PL 206 312 B1 wynikiem transplantacji. W istocie, jednym z najważniejszych aspektów, w przechowywaniu przykładowo wątroby, jest zdolność do regenerowania po przeszczepie bogatych w energię cząsteczek, np. ATP.
Wysokoenergetyczne, ufosforylowane związki muszą być dostępne dla dużej liczby mechanizmów regulujących, które chronią komórkę przed uszkodzeniem.
Przykładowo, poziom NTP (trifosforanów nukleozydu) w wątrobie musi być utrzymany na poziomie na tyle wysokim, aby umożliwić przywrócenie zasadniczych procesów komórkowych, do których należą utrzymanie gradientów regulujących wymianę jonów między plazmą a błonami mitochondriom, syntezę białek, produkcję żółci i cykl kwasu moczowego.
W celu wykazania skutecznoś ci roztworu wedł ug wynalazku, w eksperymentach wykorzystano wyizolowane wątroby szczurów, w których analizowano, za pomocą techniki spektroskopii 31P-NMR (J. Lab. Clin. Med. 1992. 120:559 Transplantation 1994, 57:1576), poziom zmian w ATP, ADP i pozostałych nukleotydach adeninowych (NTP). Próbki badano na etapie niedokrwienia zimnego, okresu przechowywania i podczas reperfuzji.
Przeprowadzenie powyższych eksperymentów wymagało rozwiązania następujących problemów:
1) skonstruowania komory perfuzyjnej zaadaptowanej do pracy wewnątrz magnesu NMR oraz wywołania odpowiedniej cyrkulacji perfuzyjnej.
2) skonstruowania generatora częstości radiowej (RF) wykorzystanego w komorze perfuzyjnej.
3) zdefiniowania czasów (trwania perfuzji, konserwacji i fazy reperfuzji, interwałów czasowych dla pomiarów spektrometrycznych każdej z faz, minimalnego czasu trwania pojedynczego spektrum, optymalizacji upływu czasu przy przejściu z jednej fazy do drugiej.
Obieg perfuzji i komora perfuzyjna
Schemat obiegu perfuzji jest przedstawiony na figurze 1.
W trakcie konstruowania obiegu został wzię ty pod uwag ę wymóg utrzymania odpowiedniej temperatury i warunków tlenowych w narządzie, umieszczonym w odległości kilku metrów od systemu perfuzyjnego, zbudowanego z pomp i termostatu. W istocie, powyższe instrumenty muszą być usytuowane na zewnątrz pola magnetycznego przyrządów pomiarowych, w tym przypadku w minimalnej odległości 6 metrów.
Medium perfuzyjne KH (Krebs-Henseleit + glukoza + BSA) (400 ml) (Krebs H. A. 1930; Biochem. J. 98, 720; Henseleit K. 1932; Hoppe-Seylerr's Z. physiol. Chem. 210, 33.) umieszczone w termostatycznym pojemniku, z dala od magnesów, poddane było mieszaniu za pomocą mieszadła magnetycznego.
Termostatyzację przeprowadzano do momentu osiągnięcia temperatury 37 ± 0.5°C, w komorze perfuzyjnej, zawierającej narząd umieszczony wewnątrz magnesów. Natlenianie medium odbywało za pomocą oksygenatora membranowego. Poziom wysycenia tlenem został obliczony na podstawie czynnika przepuszczalności użytego silikonu, kalibru i grubości rury, stosunku przepływu i długości rury zwiniętej w spiralę wewnątrz aparatu oksygenacyjnego i termostatującego. Obliczone wielkości odpowiadały 30 do 50% tlenu.
Roztwór perfuzyjny został wprowadzony w obieg za pomocą pompy perystaltycznej o szybkości przepływu 25 ml/min.
W przebiegu perfuzyjnym wykorzystano rury polietylenowe o wewnę trznej ś rednicy 1 mm i dł ugości 6 metrów, stanowiącej odległość od magnesów.
W celu utrzymania pod kontrolą temperatury wewną trz komory perfuzyjnej w magnesie, zarówno krążenie termostatujące, jak i perfuzyjne zostały dobrane tak, aby połączone przepłynęły wewnątrz termoizolowanej rury neoprenowej.
Krążenie było aktywowane i stabilizowane przynajmniej na godzinę przed perfuzją narządu, po to aby zapewnić ustalenie wymaganej temperatury i stopnia natlenienia.
Komora perfuzyjna, skonstruowana w Perspex została przymocowana do podpory PVS aby umożliwić umieszczenie wewnątrz magnesu, który miał postać cylindra, średnicę 34 mm x 65 mm wysokości.
Wątrobę umieszczono na odpowiedniej wysokości dzięki przymocowaniu cewki z wspomagającymi krążkami, umożliwiającymi zachowanie odpowiedniej odległości.
Drenaż przeprowadzono przez zebranie perfuzyjnej cieczy na dnie w kształcie lejka, po którym nastąpiło wsysanie cieczy do zbiornika zbierającego.
PL 206 312 B1
Zaburzenie w utrzymaniu odpowiedniej ciepłoty na skutek niedokrwienia i reperfuzji jest czynnikiem determinującym w patogenezie uszkodzeń wątroby, które pojawiają się podczas czynności chirurgicznych, takich jak resekcja i transplantacja wątroby.
W celu zminimalizowania, w moż liwie największym stopniu, czasu niedokrwienia ciepłego zastosowano odchylenia od standardowych czynności chirurgicznych wykonywanych podczas usunięcia wątroby. Wykorzystane zostały w szczególności zwierzęta niegłodzone; w przypadku modeli zwierzęcych, badania in vivo i in vitro wykazały, że post pogłębia uszkodzenie na skutek zaburzenia ciepłoty wywołanego niedokrwieniem i redukcją zapasów glikogenu.
Wykorzystano osobniki męskie Wistar o wadze wyjściowej 150 g. Zwierzęta zostały uśpione wewnątrzotrzewnowym zastrzykiem (i.p.) z tiopentalu sodu, następnie przeprowadzono nacięcie środkowe i otwarto pomyślnie otrzewną.
Odsłonięto żyłę wejściową i żyłę główną dolną, następnie usunięto możliwie największe ilości tłuszczu i złogów, aby szybko wyciągnąć narząd i zminimalizować czas niedokrwienia.
Przygotowano ligatury dla żyły głównej dolnej i żyły wejściowej.
Zamknięto żyłę główną dolną i niezwłocznie żyłę wejściową.
Do żyły wejściowej wprowadzono cewnik (Abbocath-T 20G; Abbott), który przymocowany przygotowanym wcześniej szwem został połączony ze strzykawką zawierającą zimny roztwór mleczanu Ringers'a (Dawson R.M.C. (ed.), Eliot D.C., Elliot W.H. and Jones K.M. (1969) Dane do badań biochemicznych, 2 end. Clarendon Press, Oxford.) przeznaczony do pierwszej perfuzji krwią. Żyła główna została ucięta, tak by umożliwić wypływ cieczy perfuzyjnej.
Organ usunięto z ciała stosunkowo szybko.
Od momentu zamknięcia naczyń krwionośnych do rozpoczęcia perfuzji wewnątrz magnesów upłynęło nie więcej niż dziesięć minut, z 1-2 minutowym niedokrwieniem ciepłym.
Cewnik pozostawiony in situ był następnie wykorzystany do reperfuzji.
Przebieg protokołu eksperymentu przedstawiono na poniższym diagramie I.
PL 206 312 B1
Wątrobę przemywano in situ roztworem mleczanu Ringers'a w temperaturze 4°C w celu usunięcia krwi oraz zminimalizowania, w stopniu możliwie najwyższym, czasu niedokrwienia zaburzającego utrzymanie prawidłowej ciepłoty.
Następnie, narząd poddano perfuzji wewnątrz magnesów, w odpowiednim bioreaktorze, odżywiano go roztworem Krebsa-Henseleita o temperaturze 37°C, 35% O2 w celu zarejestrowania wyjściowego widma 31P NMR (czas 0) służącego jako odnośnik.
Rejestrowanie widma NMR przeprowadzono w celu wyeliminowania biologicznej niezgodności pomiędzy organami, w ten sposób, istotnie, odchylenia obserwowane po przechowywaniu mogą być porównywane z wartościami określonymi w tym samym narządzie, niezwłocznie po usunięciu z organizmu zwierzę cia oraz po stabilizowaniu perfuzja przez 40 min. Pod koniec upł ywu 40 minut procesu stabilizowania narządy poddano perfuzji z zastosowaniem różnych roztworów.
Testy doświadczalne przeprowadzono używając, według wynalazku, roztworu Carnival oraz dwóch poniżej podanych roztworów przeznaczonych do utrzymywania narządów:
1) Roztwór UW z dodatkiem insuliny (40 I.U./L) i deksametazonu (8 mg/L);
2) Roztwór EuroCollins
W tabeli 4 przedstawiono skł ad roztworów Carnival, EoroCollins i UW.
T a b e l a 4
Roztwór Carnival Roztwór EuroCollins Roztwór UW
K2HPO4OH2O 32 mM 32 mM 2.5 mM
KH2PO4 15 mM 15 mM -
KCl 15 mM 15 mM -
NaHCOa 10 mM 10 mM -
Glukoza 187.5 mM 194 mM -
Fumaran izowalerylo L-karnityny 2 mM
L-karnityna (sól wewnętrzna) 10 mM - -
Glicyna - - 15 mM
Allopurynol - - 1 mM
Adenozyna - - 2.5 mM
Laktobionian - - 100 mM
MgSO^HhO - - 5 mM
rafinoza - - 30 mM
PEG/ - - +
„-” oznacza nieobecny „+” oznacza obecny
W niektórych doświadczeniach widma zerejstrowano na zimno, niezwłocznie po perfuzji narządu roztworem według wynalazku, po to aby określić kinetykę rozpadu ufosforylowanych produktów przemiany materii w trakcie pierwszej godziny.
Otrzymane wyniki przedstawiono w tabelach 8-10.
Dla każdego widma odnotowano:
1) całkowity poziom ufosforylowanych metabolitów;
2) poziom nieorganicznego fosforanu i fosomonoestrów (Pi +PME);
3) poziom trifosforanów nukleozydu (NTP);
4) poziom NAD jako sumę sygnałów α-NTP+NAD.
Spektra odczytywano w dziesięciominutowych odstępach czasowych przez ponad godzinę. Wątroby były zanurzone w kilku roztworach o temperaturze 4°C przez całkowity okres 26 godzin.
PL 206 312 B1
Czas przechowywania w roztworze został wybrany pod kątem oszacowania zdolności podjęcia czynności przez narząd po czasie znacznie dłuższym od zazwyczaj ustalanego w praktyce klinicznej lub w doświadczeniach.
Pod koniec okresu przechowywania (26 godzin), wątroby umieszczono ponownie wewnątrz magnesów zanurzonych w roztworze KH o temperaturze 37°C, 35% O2, w celu zbadania obecności ufosforylowanych produktów przemiany materii.
Widma 31P-NMR odczytywano co 15 min przez łączny okres 140 minut.
Rezultaty badań zebrano w tabeli 5-7.
Warunki doświadczalne badania spektroskopowego NMR eksperymentu wybranego do perfuzji narządu, mającego na celu otrzymanie widm o optymalnym stosunku sygnał/szum.
Pod uwagę były brane następujące trudności:
i) konieczność przeprowadzenia analizy dla nieprecyzyjnych czasów skaningu;
ii) optymalizacja warunków operacyjnych systemu magnetycznego rezonansu jądrowego;
iii) heterogeniczność struktury i składu próbek;
Eksperyment przeprowadzono w następujących warunkach:
- czę stość radiowa widma 8.33 KHz;
- pobieranie próbek 2048 punktowe
- rejestrowanie 900;
- pusty skan 2;
- cykl fazy 2 etapowy;
- impuls przy 90°;
- 2 sekundowe odstę py powtórze ń .
Widma, w odniesieniu do różnych warunków doświadczalnych, otrzymano przez zgromadzenie 450 skanów wykonanych w warunkach perfuzji lub reperfuzji, oraz 300 skanów w warunkach hipotermii. zawsze wykonywanych w powtórzeniach co 2 sekundy. Otrzymane widmo 31P-NMR przedstawia sygnały odpowiadające fosforanowi α, β, γ trójfosforanów nukleotydu, odpowiednio w zakresie przesunięć -9.7, -18.35 i -4.2 ppm, reprezentowanych w głównej mierze przez adenozynotrifosforan (ATP) i w mniejszych iloś ciach przez guanozynotrifosforan (GTP), urydynotrifosforan (UTP) i cytydynotrifosforan (CTP).
Synał odpowiadający aNTP pochodzi z rezonansu dinukleotydów nikotynoamidoadeniny (NTP) oraz dinukleotydu nikotynoamidoadeniny
Sygnały odpowiadające fosforanom α i β nukleotydu difosforanu pochodzą przede wszystkim od adenozynodifosforanu (ADP), kolejno w zakresie przesunięć obejmującym -8.9 i -4.4 ppm. Ostatni sygnał jest częściowo zasłaniany przez sygnał pochodzący od yNTP.
Sygnały w zakresie przesunięć obejmującym -11.5 ppm, odpowiadające związkom zawierającym dwie diestryfikowane grupy fosforanowe (DPDE), są reprezentowane przede wszystkim przez urydynodifosfoglukozę i urydynodifosfoglukuronian. Sygnały, które pochodzą od fosfolipidowych produktów pośrednich występują w zakresie przesunięć obejmującym obszar widma pomiędzy 5.8 a 4 ppm, gdzie ma miejsce rezonowanie jądra grup fosforowych pochodzących z monofosforowych estrów (PME). Jako substancję wzorcową użyto 300 mM metylenodifosforanu umieszczonego w kapilarze (0.5 ml) przymocowanej do komory perfuzyjnej.
Pole sygnału oszacowano za pomocą jednego ze znanych programów przeznaczonych do rekonstrukcji widma rezonansu (program SPEC ANA; SMIS).
Wyniki doświadczeń
Początkową perfuzję roztworem KH (37°C, 35%, O2) po usunięciu i przemyciu wątroby za pomocą roztworu mleczanu Ringers'a (4°C) przez 40 min uznano za wystarczającą do ustabilizowania się poziomu metabolitów fosforanowych.
Poziom początkowy (przed przechowywaniem) β-ATP ustalił się kolejno w zakresie 8.3 ± 3.1, a dla α-ATP w zakresie 22.6 ± 5.4 (wartości zestawione w tabelach są wyrażone w procentach względem odnośnika).
Stosunki β-ATP/Pi + PME, α-ATP/Pi + PME i β-ATP/a-ATP odpowiadają kolejno wartościom 8.4 ± 5, 23.4 ± 10.2 i 35.7 ± 11.
Wartości otrzymane w ten sposób były wykorzystane jako wzorcowe dla czasu 0 dla kolejnych obliczeń.
W tabeli 5 zamieszczono wyniki odpowiadające otrzymanemu wcześniej spektrum podczas i po przechowywaniu w roztworze Carnival.
PL 206 312 B1
T a b e l a 5
Czas β γ α
Stabilizacja poziomów; (pomiary NMR po eksplantacji, przepłukaniu, perfuzji w KH w temperaturze 37°C
40' 8.9 10.3 27.5
Perfuzja za pomocą roztworu Carnival i przechowywanie w temp. 4°C; pomiarów NMR dokonano w 4°C w punktach czasowych wyszczególnionych poniżej
10' n.d. n.d. 58%
20' n.d. n.d. 74%
30' n.d. n.d. 69%
40' n.d. n.d. 65%
50' n.d. n.d. 67%
60' n.d. n.d. 71%
Narządy były konserwowane przez zanurzenie w roztworze Carnival w temperaturze 4°C przez dalsze 25 godzin
Następnie, narządy zostały poddane perfuzji w temperaturze 37°C w roztworze KH; pomiarów NMR dokonano w 37°C w następujących punktach czasowych
30' 84% 68% 90%
45' 81% 81% 87%
60' 109% 75% 99%
75' 112% 97% 83%
90' 71% 83% 70%
105' 99% 85% 87%
120' 101% 68% 68%
135' 72% 69% 75%
Wartości otrzymane po eksplantacji wyrażone są jako stosunek względem sygnału wzorcowego. Wszystkie inne wartości wyrażone są w procentach
W tabeli 6 zamieszczono dane otrzymane w relatywnie podobnych warunkach, co poprzednie, z wyjątkiem zastosowania roztworu UW do przetrzymywania narządu.
T a b e l a 6
czasy β γ α
Stabilizacja poziomów; (pomiary NMR po eksplantacji. przepłukaniu, perfuzji w KH w temperaturze 37°C)
40' 4.8 21.8
Perfuzja za pomocą roztworu UW i przechowywanie w temp. 4°C; Analizy NMR dokonano w 4°C w punktach czasowych wyszczególnionych poniżej
10' 51% 71% 117%
20' 28% 56% 96%
30' n.d. 64% 95%
40' n.d. 80% 128%
50' n.d. 44% 75%
60' n.d. n.d. 81%
PL 206 312 B1 ciąg dalszy Tabeli 6
Narządy były konserwowane przez zanurzenie w roztworze UW w temperaturze 4°C przez dalsze 25 godzin
Następnie, narządy zostały poddane perfuzji w temperaturze 37°C w roztworze KH; pomiarów NMR dokonano w 37°C w następujących punktach czasowych
30' 51% 49% 79%
45' 45% 56% 70%
60' 91% 74% 90%
75' 79% 62% 81%
90' 65% 94% 75%
105' 58% 58% 86%
120' 56% 91% 83%
135' 44% 73% 64%
Wartości otrzymane po eksplantacji wyrażone są jako stosunek względem sygnału wzorcowego. Wszystkie inne wartości wyrażone są w procentach
W tabeli 7 zamieszczono wyniki otrzymane podczas przechowywania i po przechowywaniu w roztworze EuroCollins.
T a b e l a 7
czasy β γ α
Stabilizacja poziomów;
(pomiary NMR po eksplantacji, przemyciu, perfuzji w KH w temperaturze 37°C)
40' 7.9 6.1 25.6
Perfuzja za pomocą roztworu EuroCollins i przechowywanie w temp . 4°C;
pomiarów NMR dokonano w 4°C w puntach czasowych wyszczególnionych poniżej
10' n.d. n.d. 96%
20' n.d. n.d. 69%
30' n.d. n.d. 67%
40' n.d. n.d. 58%
50' n.d. n.d. 65%
60' n.d. n.d. 51%
Narządy były przechowywane zanurzone w roztworze EuroCollins w temperaturze 4°C przez dalsze 25 godzin
Następnie, narządy zostały poddane perfuzji w temperaturze 37°C w roztworze KH;
pomiarów NMR dokonano w 37°C w następujących punktach czasowych
30' 0% 0% 0%
Wartości otrzymane po eksplantacji wyrażone są jako stosunek względem sygnału wzorcowego. Wszystkie inne wartości wyrażone są w procentach
W tabeli 7, dane otrzymane z pojedynczego widma reperfuzji (30') zostały wyszczególnione ze względu na fakt. że w tym czasie i w kolejnych nie zaobserwowano resyntezy związków fosforanów.
Kinetyka rozpadu ufosforylowanych produktów przemiany materii obserwowana w ciągu pierwszych 60 minut zimnego przechowywania wskazuje, że sygnał pochodzący z α-ATP + α-ADP + NAD jest obecny aż do zakończenia pomiarów w przypadku wszystkich roztworów służących przechowaniu narządu, ale jest różny dla różnych organów.
PL 206 312 B1
Sygnał pochodzący od β-ATP był widoczny do upływu trzydziestej minuty tylko w wypadku zastosowania roztworu UW, podczas gdy nie zaobserwowano go nawet w pierwszym spektrum otrzymanym w przypadku roztworów EuroCollins i Carnival. Sygnały pochodzące od γ-ATP + β-ADP były widoczne przez 50 minut, jednak tylko do czasu, kiedy był obecny ADP.
Ilość ufosforylowanych produktów przemiany materii w 60 minucie nie jest skorelowana ze zdolnością ATP do resyntezy w warunkach normotermicznej reperfuzji po 26 godzinach przechowywania w różnych roztworach.
W tabelach 8, 9 i 10 przedstawiono wartości wraz z ich standardowymi odchyleniami odpowiadające β-ATP i α-ATP. otrzymane w 80 i 140 minucie normotermicznej reperfuzji po perfuzji oraz na początku procesu przechowywania w temperaturze 4°C (widma zimne, analizę NMR przeprowadzono po upływie 2 h od usunięcia organu), w roztworach kolejno Carnival, UW i EuroCollins.
T a b e l a 8
Roztwór czas (min) β-ATP (n=8) a-ATP(n=8)
Carnival 80 62.4 ± 24 62.4 ± 14
Carnival 140 55.2 ± 25.2 53.5 ± 15.6
n oznacza liczbę zwierząt wykorzystanych do eksperymentu
T a b e l a 9
Roztwór czas (min) β-ATP (n=8) a-ATP(n=8)
UW 80 64.2 ± 13.1 55.2 ± 17
UW 140 57.2 ± 13.5 63.4 ± 19
n oznacza liczbę zwierząt wykorzystanych do eksperymentu
T a b e l a 10
Roztwór czas (min) β-ATP (n=8) a-ATP(n=8)
EuroCollins 80 15 ± 13.7 52 ± 14.4
EuroCollins 140 N.D. 25.4 ± 21
n oznacza liczbę zwierząt wykorzystanych do eksperymentu
Wartości podane są w procentach i odnoszą się do jednego sygnału otrzymanego w temperaturze 37°C po eksplantacji.
Jak można zauważyć, roztwór według wynalazku odgrywa rolę ochronną w zachowaniu witalności komórkowej podczas normotermicznej reperfuzji odizolowanej wątroby, umożliwiając w ten sposób syntezę ATP porównywalną, podczas fazy normotermicznej reperfuzji, do syntezy obserwowanej w przypadku UW. Istotnym jest fakt, że ponowne pojawienia się sygnału, tym samym zdolność do resyntezy, jest szybsza dla narządów przechowywanych w roztworze Carnival w stosunku do narządów przechowywanych w roztworze UW, gdzie nie obserwuje się korzystnej resyntezy aż do upływu 60 minut.
Vice versa, w przypadku organów przechowywanych w roztworze EuroCollins nie obserwuje się w rozważanym przedziale czasowym znacznego wzrostu poziomu ATP. Co więcej, podkreśla się, że stężenie metabolitów utrzymywało się na porównywalnym poziomie zarówno dla roztworu UW, jak i Carnival, aż do upływu 140 minut.
Roztwór według wynalazku, w fazie hipotermicznego przechowywania, chroni następnie komórki przed nabrzmiewaniem na skutek zjawiska osmozy, analogicznie do roztworu UW z dodatkiem laktobionianu. rafinozy i glicyny, co stwierdzono dzięki analizie jakościowej.
Roztwór według wynalazku sprzyja utrzymaniu hepatycznej bioenergetycznej integralności, nawet po upływie 26 godzin hipotermicznego przechowywania, zapewniając, przy niskich nakładach finansowych, rezultaty porównywalne z droższym roztworem UW.

Claims (13)

1. Roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji zawierający:
a) izotonicznie zrównoważony roztwór zawierający fizjologicznie dopuszczalną ilość potasu, jednokwaśnego fosforanu, dwukwaśnego fosforanu, chlorek, jony sodu i jony dwuwęglanu.
b) 50-250 mM glukozy;
c) wodę; znamienny tym, ż e ponadto zawiera
d) 0.2-20 mM alkanoilo L-karnityny lub jedną z jej fizjologicznie dopuszczalnych soli; i/lub
e) 1-100 mM L-karnityny lub jedn ą z jej fizjologicznie dopuszczalnych soli.
2. Roztwór według zastrz. 1, znamienny tym, że izotonicznie zrównoważony roztwór jonowy obejmuje związki wybrane z grupy zawierającej: K2HPO4-3H2O; KH2PO4; KCl; NaHCO3.
3. Roztwór według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że zawiera:
K2HPO4OH2O 10-60 mM KH2PO4 3-50 mM KCl 3-50 mM NaHICO3 2-50 mM Glukoza 50-250 mM Alkanoilo L-karnityna lub jej fizjologicznie dopuszczalna sól 0.2-20 mM L-karnityna lub jej fizjologicznie dopuszczalna sól 1-100 mM
4. Roztwór według dowolnego z poprzednich zastrzeżeń, znamienny tym, że alkanoilo-L karnityna jest wybrana z grupy obejmującej acetyl, propionyl, waleryl, izowaleryl, butyryl lub izobutyryl L-karnityny.
5. Roztwór według zastrz. 4, znamienny tym, że alkanoilo L-karnityną jest izowalerylo L-karnityna.
6. Roztwór według dowolnego z poprzednich zastrzeżeń, znamienny tym, że fizjologicznie dopuszczalna sól L-karnityny lub alkanoilo L-karnityny jest wybrana z grupy obejmującej: chlorek, bromek, orotan. kwaśny asparaginian, kwaśny cytrynian, cytrynian magnezowy, kwaśny fosforan, fumaran, kwaśny fumaran, fumaran magnezowy, mleczan, maleinian i kwaśny maleinian, mukonian, kwaśny szczawian, pamoate, kwaśny pamoate, kwaśny siarczan, glukozofosforan, winian, kwaśny winian, winian magnezowy, 2-amino etanosiarczan, 2-amino etanosiarczan magnezowy, cholinowinian i trójchlorooctan.
7. Roztwór według zastrz. 6, znamienny tym, że fizjologicznie dopuszczalną solą L-karnityny lub alkanoilo L-karnityny jest fumaran.
8. Roztwór według dowolnego z powyższych zastrzeżeń, znamienny tym, że obejmujący K2HPO4OH2O 32 mM KH2PO4 15 mM KCl 15 mM NaHCO3 10 mM Glukoza 187.5 mM Fumaran izowalerylo L-karnityny 2 mM L-karnityna (sól wewnętrzna) 10 mM
9. Roztwór według dowolnego z powyższych zastrzeżeń, znamienny tym, że służący utrzymaniu i perfuzji narządu przeznaczonego do transplantacji, przy czym narząd jest wybrany z grupy obejmującej serce, wątrobę, trzustkę, płuco lub nerkę.
10. Roztwór według zastrz. 9, znamienny tym, że narządem przetrzymywanym w roztworze jest wątroba.
PL 206 312 B1
11. Roztwór według dowolnego z poprzednich zastrzeżeń, znamienny tym, że zawiera dodatkowo przynajmniej jeden antyutleniacz w ilości wystarczającej do zahamowania tworzenia się pochodzących od tlenu wolnych rodników.
12. Roztwór według zastrz. 11, znamienny tym, że antyutleniacz wybrany jest z grupy obejmującej: allopurynol, glutation. betakaroten. katalazę, dysmutazę ponadtlenkowa, dimetylotiomocznik (DMTU). N, N'-difenylo-p-fenylenodiaminę (DPPD), mannitol, cyjanidanol.
13. Roztwór według dowolnego z poprzednich zastrzeżeń, znamienny tym, że zawiera dodatkowo kwas dichloroocowy.
PL367837A 2001-06-14 2002-06-13 Roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji PL206312B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IT2001RM000337A ITRM20010337A1 (it) 2001-06-14 2001-06-14 Soluzione per la conservazione e perfuzione di organi in attesa che vengano trapiantati.
PCT/IT2002/000391 WO2002102149A1 (en) 2001-06-14 2002-06-13 Solution for the storage and perfusion of organs awaiting transplantation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL367837A1 PL367837A1 (pl) 2005-03-07
PL206312B1 true PL206312B1 (pl) 2010-07-30

Family

ID=11455594

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL367837A PL206312B1 (pl) 2001-06-14 2002-06-13 Roztwór do utrzymywania i perfuzji organów przeznaczonych do transplantacji

Country Status (15)

Country Link
US (3) US7422844B2 (pl)
EP (1) EP1401270B1 (pl)
JP (1) JP4268036B2 (pl)
KR (1) KR100844191B1 (pl)
AT (1) ATE336166T1 (pl)
CA (1) CA2450623C (pl)
CY (1) CY1106202T1 (pl)
DE (1) DE60213990T2 (pl)
DK (1) DK1401270T3 (pl)
ES (1) ES2271290T3 (pl)
IT (1) ITRM20010337A1 (pl)
MX (1) MXPA03011461A (pl)
PL (1) PL206312B1 (pl)
PT (1) PT1401270E (pl)
WO (1) WO2002102149A1 (pl)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ITRM20010337A1 (it) * 2001-06-14 2002-12-16 Sigma Tau Ind Farmaceuti Soluzione per la conservazione e perfuzione di organi in attesa che vengano trapiantati.
JP2005095152A (ja) * 2003-08-29 2005-04-14 Japan Tissue Engineering:Kk 培養組織の保存方法
WO2006026304A1 (en) * 2004-08-25 2006-03-09 Ivax Corporation Cardioprotective formulations and uses thereof
TWI388318B (zh) * 2005-03-10 2013-03-11 Sigma Tau Ind Farmaceuti 具有改良之生物相容性的含有肉毒鹼之腹膜透析溶液
JP2006347935A (ja) * 2005-06-15 2006-12-28 Masanori Ogata 炎症性サイトカインの産生が関与する疾患の予防及び/又は治療のための医薬
GB0612877D0 (en) * 2006-06-29 2006-08-09 Univ Edinburgh Organ preservation solution
CN101790306A (zh) * 2007-02-17 2010-07-28 哈佛学院董事会 用于进行组织保存的组合物以及方法
EP2252281A4 (en) 2008-02-15 2011-08-24 Harvard College BLOOD SUBSTITUTION SOLUTION
WO2010147111A1 (ja) 2009-06-15 2010-12-23 トヨタ自動車株式会社 無細胞タンパク質合成溶液、無細胞タンパク質合成キット及びタンパク質合成方法
RU2707532C1 (ru) * 2018-10-11 2019-11-27 Российская Федерация, от имени которой выступает ФОНД ПЕРСПЕКТИВНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Способ повышения безопасности и эффективности хранения и транспортировки трансплантируемого органа под давлением консервирующей газовой смеси и устройство на его основе
CN109511650B (zh) * 2018-11-21 2021-06-15 嘉兴莱普晟医疗科技有限公司 一种可以扩大供肝来源的常温机械灌注液
IT201900007446A1 (it) * 2019-05-29 2020-11-29 Giuseppe Castellano Composizione comprendente citrato e carnitina in grado di attivare la produzione della proteina klotho

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5498427A (en) 1990-11-20 1996-03-12 Pasteur Merieux Serums Et Vaccines Solutions for the perfusion, preservation and reperfusion of organs
IT1261695B (it) * 1993-06-02 1996-05-29 Sigma Tau Ind Farmaceuti Impiego di l-carnitina e alcanoil l-carnitine nella conservazione del sangue per trasfusioni e soluzioni stabilizzatrici che le contengono.
CA2207324A1 (en) 1994-12-12 1996-06-20 Richard M. Raymond Organ transplant solutions and method for transplanting an organ
US5707971A (en) * 1995-06-07 1998-01-13 Life Resuscitation Technologies, Inc. Modulation of glycolytic ATP production
US5834178C1 (en) * 1997-07-09 2002-04-23 Univ Wayne State Flush-storage solution for donor organs
EP1133289A1 (en) * 1998-11-26 2001-09-19 Sigma-Tau Industrie Farmaceutiche Riunite S.p.A. Use of fumarate salt of l-carnitine or its alkanoyl derivatives in ischaemia
ATE336243T1 (de) 1999-10-11 2006-09-15 Sigma Tau Ind Farmaceuti Verwendung von l-carnitin und seinen alkanoyl- derivaten als osmotisches mittel in lösungen für medizinische verwendung
ITRM20010337A1 (it) 2001-06-14 2002-12-16 Sigma Tau Ind Farmaceuti Soluzione per la conservazione e perfuzione di organi in attesa che vengano trapiantati.

Also Published As

Publication number Publication date
DE60213990T2 (de) 2007-03-15
US20040156990A1 (en) 2004-08-12
ATE336166T1 (de) 2006-09-15
WO2002102149A1 (en) 2002-12-27
CA2450623C (en) 2011-05-10
US20080166695A1 (en) 2008-07-10
US7422844B2 (en) 2008-09-09
EP1401270A1 (en) 2004-03-31
JP2004529205A (ja) 2004-09-24
PL367837A1 (pl) 2005-03-07
MXPA03011461A (es) 2004-07-01
KR20040010712A (ko) 2004-01-31
US8007993B2 (en) 2011-08-30
US20080199844A1 (en) 2008-08-21
DK1401270T3 (da) 2006-12-27
PT1401270E (pt) 2006-10-31
CY1106202T1 (el) 2011-06-08
KR100844191B1 (ko) 2008-07-04
DE60213990D1 (de) 2006-09-28
ES2271290T3 (es) 2007-04-16
US7989158B2 (en) 2011-08-02
EP1401270B1 (en) 2006-08-16
ITRM20010337A0 (it) 2001-06-14
CA2450623A1 (en) 2002-12-27
JP4268036B2 (ja) 2009-05-27
ITRM20010337A1 (it) 2002-12-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7989158B2 (en) Solution containing carnitine for the storage and perfusion of organs awaiting transplantation
US9049857B2 (en) Flush preservation solution
US6524785B1 (en) Perfusion and/or preservation and/or re-perfusion solution during organ transplant
Dutkowski et al. Hypothermic oscillating liver perfusion stimulates ATP synthesis prior to transplantation
RU2397641C2 (ru) Раствор для перфузии и/или консервации органов и способы его применения
US8288084B2 (en) Composition and method for flushing and cold/cryo preserving organs, tissues, and cells
Yamada et al. Energy metabolism and tissue blood flow as parameters for the assessment of graft viability in rat small bowel transplantation
US20210092947A1 (en) Solution for preserving and/or rinsing an organ to be transplanted
KR100304594B1 (ko) 이식용 장기 및 혈액세포 보존제의 조성물
EP3651576A1 (en) Preservation solutions
US20220087252A1 (en) Solution for preserving and/or rinsing an organ to be transplanted
JPH08325101A (ja) 動物組織保存方法
ES2232505T3 (es) Solucion para la preservacion de corazones.
So et al. Metabolic Effects of Citrate in Liver during Cold Hypoxia Studied by1H NMR Spectroscopy
AU2008201676A1 (en) Flush preservation solution
Kallerhoff et al. A New Method for Renal Perfusion Fixation
BRETSCHNEIDER et al. A New Method for Renal Perfusion Fixation

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20120613