PL200145B1 - Sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym - Google Patents
Sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnymInfo
- Publication number
- PL200145B1 PL200145B1 PL353160A PL35316000A PL200145B1 PL 200145 B1 PL200145 B1 PL 200145B1 PL 353160 A PL353160 A PL 353160A PL 35316000 A PL35316000 A PL 35316000A PL 200145 B1 PL200145 B1 PL 200145B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- protein
- stored
- cysteine
- insulin
- microorganism
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/575—Hormones
- C07K14/62—Insulins
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2319/00—Fusion polypeptide
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Endocrinology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób przechowywania bia lka w rozpuszczalniku wodnym, w którym zmniejszanie w czasie skutecznego st ezenia bia lka jest opó zniane, charakteryzu- j acy si e tym, ze do wodnego rozpuszczalnika wprowadza si e cystein e, przy czym stezenie cysteiny w wodnym roztworze bia lka jest w zakresie od 150 do 220 mM, a jako bia lko stosuje si e insulin e, po- chodn a insuliny i/lub jej prekursor. Wprowadzenie cysteiny opó znia zmniejszanie w czasie skuteczne- go stezenia bia lka. Sposób nadaje si e do zastosowania przy wytwarzaniu bia lek w mikroorganizmach. PL PL PL PL
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym.
Stan chemiczny grup SH białek lub innych struktur wrażliwych na utlenianie wpływa często na identyczność, aktywność lub skuteczne stężenie białek. Identyczność oznacza określone fałdowanie białka. Aktywność oznacza aktywność enzymatyczną. Skuteczne stężenie białka oznacza taką zawartość białka w roztworze, która została prawidłowo fałdowana pod względem jego funkcji biologicznej in-vivo.
Z literatury wiadomo, że utlenianie zmieniające strukturę białek można stłumić przez zastosowanie odczynników tiolowych, na przykład 2-merkaptoetanolu lub cysteiny.
Można na przykład stabilizować tiolami oksydazę D-aminokwasową (DAO). Flawoproteina DAO katalizuje stereospecyficzne dezaminowanie D-aminokwasów do odpowiednich α-ketonokwasów i amoniaku (P. Golini i inni, Enzyme and Microbial Technology, 17, 1995, 324-329). Wprowadzenie tioli, na przykład cysteiny, może także spowodować zmniejszenie aktywności białek. Ten efekt można wyjaśnić także obecnością reszt cysteiny. Przykładem jest aminoacylaza. Aminoacylaza jest dimerycznym enzymem zawierającym 1 atom Zn2+ na każdą podjednostkę. Każda podjednostka enzymu zawiera dwie cysteinowe grupy SH i dwa wiązania disiarczkowe. Chemiczne modyfikowanie grup SH, na przykład przez rozrywanie wiązań disiarczkowych, może spowodować dezaktywację enzymu. Stwierdzono, że wprowadzenie 2-merkaptoetanolu zmniejsza aktywność aminoacylazy, natomiast usunięcie 2-merkaptoetanolu w wyniku dializy lub filtracji żelowej może prawie całkowicie przywrócić początkową aktywność enzymatyczną. (W. Kordel i F. Schneider, Biochem. Biophys. Acta 445, 1976, 446-457).
W przypadku cysteiny i kilku jej pochodnych w pewnym zakresie dla określonych preparatów i ich specjalnych zastosowań stwierdzono aktywność przeciwbakteryjną, przeciwwirusową lub przeciwgrzybiczą. Stwierdzono na przykład, że wprowadzenie cysteiny chroni w pewnej mierze artykuły żywnościowe przed psuciem się (opis patentowy US nr 4937085 A).
Metodami transformacji genowej można wytwarzać rekombinantowe białka, na przykład insulinę lub jej prekursory, a także pochodne insuliny, które mają składy aminokwasów różniące się od wprowadzonej sekwencji genowej (na przykład ludzkiej sekwencji genowej) w mikroorganizmach modyfikowanych metodami transformacji genowej, na przykład w bakteriach Escherichia coli.
Syntezę rekombinacyjną mikroorganizmów przeprowadza się za pomocą wektorów ekspresji. Wektory ekspresji składają się z plazmidu wektorowego, który powinien zawierać sekwencję kontrolną dla replikacji plazmidu, a także gen selekcyjny (gen odporności na antybiotyki, znacznik wymiany materii i inne), w którym zastosowano kodujący obszar genu interesującego białka (na przykład insuliny) pod kontrolą promotora aktywnego w wybranych mikroorganizmach (na przykład promotora lac dla B. coli).
Sposób wytwarzania białek rekombinantowych (na przykład insuliny, pochodnych insuliny i innych) przez współdziałanie transgenicznie modyfikowanych mikroorganizmów składa się z serii etapów tego sposobu, które zachodzą na siebie i muszą być odpowiednio dostosowane do siebie.
Na przykład sposób - wytwarzania insuliny ludzkiej może obejmować następujące etapy: fermentację mikroorganizmów - rozdzielenie komórek - roztwarzanie komórek - izolację i przekładanie warstwy białka fuzyjnego z wstecznym fałdowaniem cysteiny do rodzimej struktury przestrzennej z jednoczesnym wytwarzaniem się mostków disiarczkowych i z następnym oddzieleniem obcych białek niezawierających surowców wtórnych - rozszczepienie enzymatyczne do insuliny argininowej - podstawowe oczyszczanie wodnego roztworu białka - pierwsze oczyszczanie chromatograficzne rozszczepienie enzymatyczne do ludzkiej insuliny - drugie oczyszczanie chromatograficzne - dokładne oczyszczanie metodą HPLC - przekrystalizowanie - suszenie.
Duża liczba przeprowadzanych pojedynczych operacji zwykle powoduje znaczne pogorszenia wydajności ogólnej, ponieważ na żadnym etapie nie można uniknąć strat związanych z wydajnością danego wybranego etapu sposobu.
Wydajność ogólną można poprawić przez optymalizację etapów pośrednich. Takie sposoby budzą szczególne zainteresowanie, ponieważ pozwalają bardziej ekonomicznie wykorzystać stosowane zasoby oraz zmniejszyć obciążenia środowiska.
Opis patentowy EP nr 0906918 ujawnia na przykład ulepszony sposób wytwarzania prekursora insuliny lub pochodnych insuliny z właściwie związanymi mostkami cystyny w obecności cysteiny lub chlorowodorku cysteiny oraz chaotropowego środka pomocniczego.
PL 200 145 B1
Pochodnymi insuliny są pochodne występujących w naturze insulin lub pochodnych insuliny, a mianowicie insuliny ludzkiej i insulin zwierzęcych. Te pochodne insuliny poza tym różnią się od identycznej insuliny występującej w naturze brakiem i/lub zamianą co najmniej jednej reszty aminokwasowej znajdującej się w występującej w naturze insulinie na inną genetycznie kodowaną resztę aminokwasową i/lub różnią się addycją co najmniej jednej genetycznie kodowanej reszty aminokwasowej.
Podczas przechowywania białek zwykle ma miejsce zmniejszenie ich skutecznych stężeń.
Przechowywanie wytworzonych produktów między poszczególnymi etapami sposobu może być konieczne z różnych powodów. Tak na przykład może się zdarzyć, że zdolność przerobowa włączonych później technicznych etapów przerobu nie wystarcza do objęcia nimi całej ilości produktu z poprzedniego etapu sposobu.
Zapotrzebowanie w czasie na przechowywanie pośrednie może mieć różny czas trwania. Wynika ono ze zdolności produkcyjnej, ze stopnia dopasowania poszczególnych zespołów technicznych, z potrzeby dodatkowego dostarczania ś rodków chemicznych lub urzą dzeń albo z innych powodów i wymagane przechowywanie poś rednie moż e przedł u ż y ć się do kilku tygodni.
Skuteczny sposób zwiększania wydajności uzyskuje się wtedy, gdy w przypadku nieuniknionego pośredniego przechowywania produktów z poszczególnych etapów sposobu przed ich dalszym przerobem udaje się utrzymać w możliwie wąskich granicach występujące straty skutecznego białka.
Dotychczas nie ujawniono zastosowania cysteiny lub jej pochodnych do ograniczania strat skutecznych wydajności białek podczas pośredniego przechowywania wyników produkcyjnych o różnym składzie i do dostosowania stanu z poszczególnych etapów przemysłowych sposobów wytwarzania z włączeniem skł adników biologicznych, na przykł ad z udział em katalizatorów enzymatycznych lub zmienionych genetycznie mikroorganizmów. Sposoby takie stosuje się na przykład do wytwarzania insuliny.
Przechowywane pośrednie wytworzone produkty w zależności od etapu sposobu mogą składać się z różnej liczby wielu kompleksowo złożonych makrocząsteczek o charakterze biologicznym (białek, DNA, tłuszczów), mikroorganizmów, substancji buforowych, produktów wyjściowych i innych.
Celem sposobu wytwarzania jest z reguły wytwarzanie możliwie jednorodnej substancji, a w przypadku produkcji insuliny - wytwarzanie insuliny. Jeśli wytworzone produkty muszą być przechowywane, to w przypadku wytwarzania białka, na przykład insuliny, zwykle ma miejsce zmniejszenie skutecznego stężenia tego białka. Termin „przechowywanie białka” dotyczy wszelkiego przechowywania białka niezależnie od objętości, w jakiej występuje białko, od czasu trwania samego przechowywania lub od warunków temperaturowych, w jakich się odbywa. Przechowywanie białek zwykle odbywa się w roztworach wodnych. Wodny roztwór biał ka obok skł adników poż ywek do hodowania mikroorganizmów w określonej postaci lub jako pełnych pożywek zawierających w szczególności źródła węgla lub źródła azotu, może zawierać aminokwasy i sole nieorganiczne i pierwiastki śladowe, oraz składniki różnego rodzaju buforów chemicznych, a także makrocząsteczki pochodzenia biologicznego, jak DNA lub tłuszcze, a ponadto związki organiczne lub nieorganiczne, na przykład dodecylosiarczan sodu lub octan potasu, a także składniki rozpuszczalnika różnego ważności, jak metanol lub eter naftowy.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym, w którym zmniejszanie w czasie skutecznego stężenia białka jest opóźniane, charakteryzujący się tym, że do wodnego rozpuszczalnika wprowadza się cysteinę, przy czym stężenie cysteiny w wodnym roztworze białka jest w zakresie od 150 do 220 mM a jako białko stosuje się insulinę, pochodną insuliny i/lub jej prekursor.
Sposób nadaje się do stabilizowania spowalniania zmniejszania się w czasie skutecznego stężenia białka podczas przechowywania go w roztworach wodnych. Sposób można zastosować na przykład do wytwarzania białek przez mikroorganizmy. Jako mikroorganizmy można między innymi zastosować przede wszystkim bakterie, a zwłaszcza Escherichia coli, drożdże, przede wszystkim Saccharomyces cerevisiae lub Pichia pastoris, a także komórki owadów. Te mikroorganizmy można w korzystnej odmianie wykonania wynalazku transformować za pomocą konstruktów wektorów ekspresji do indukowanej lub do konstytutywnej ekspresji omawianego białka. Mikroorganizmy hoduje się wstępnie i roztwarza po syntezie białka. Roztwarzanie można wykonać zasadniczo wszystkimi sposobami odpowiednimi do uwalniania białka z bakterii. Jako sposób roztwarzania można zastosować na przykład ultradźwięki, sposoby chemiczne z użyciem octanu potasu, dodecylosiarczanu sodu lub lizozymu, ogrzewanie mikroorganizmów lub prasę francuską. Roztwarzanie mikroorganizmu można pominąć, jeśli otrzymywane białko jest wydzielane bezpośrednio do pożywki. Sposób można w zasadzie stosować także w przypadku białek wydzielanych.
PL 200 145 B1
Kompleksowe mieszaniny białek, które tworzą się podczas roztwarzania mikroorganizmów lub podczas wydzielania białka bezpośrednio do pożywki, znajdują się zwykle w roztworze wodnym. Białka mogą być rozpuszczone lub mieć postać suspensji. Te roztwory białek przechowuje się zwykle w zakresie temperatury od 0°C do 50°C, lub od 5°C do 30°C lub w temperaturze 5°C. W celu opóź nienia dezaktywacji wprowadza się cysteinę do tej mieszaniny białek. Stężenie cysteiny w mieszaninie białek może wynosić od 150 mM do 220 mM. Korzystnie wprowadza się 170 mM. Białka w kompleksowych roztworach cząsteczek można w ten sposób przechowywać w ciągu kilku tygodni z jedynie nieznacznym zmniejszeniem skutecznego stężenia białka. Sposób można zastosować do syntezy białek heterologicznych, zwłaszcza w mikroorganizmach, po ich roztwarzaniu, z następnym oczyszczaniem i z ewentualną renaturacją, korzystnie do wytwarzania insuliny i jej prekursorów.
Jako białka przechowywane sposobem według wynalazku stosuje się insulinę lub pochodne insuliny.
Sposób wytwarzania tego białka heterologicznego obejmuje ekspresję białka heterologicznego lub jego prekursora w transformowanym mikroorganizmie, w którym przechowuje się potem białko heterologiczne sposobem według niniejszego wynalazku.
To białko heterologiczne lub jego prekursor następnie ewentualnie renaturuje się, oczyszcza do sekwencji lidera lub przerabia w szczególny sposób i w końcu po oczyszczaniu i izolowaniu otrzymuje się pożądany produkt.
P r z y k ł a d y
Podczas przeprowadzania sposobu wytwarzania insuliny stwierdzono, że dzięki wprowadzeniu cysteiny do białka fuzyjnego otrzymuje się produkt trwały podczas przechowywania w ciągu miesięcy. Natomiast produkt niepoddany takiej obróbce już po kilku dniach nieodwracalnie traci część aktywności.
W podanych przykł adach zastosowano cząsteczki prekursora ludzkiej insuliny, a takż e pochodnej insuliny. Strukturę i sekwencję aminokwasów ujawniono w protokołach sekwencji zamieszczonych w opisie patentowym EP 906 918. Prekursor ludzkiej insuliny ma sekwencję ludzkiej insuliny występującej w naturze. Prekursor pochodnej insuliny zawiera w położeniu 21 łańcucha A glicynę zamiast argininy i na terminalnym węglu końca łańcucha B w położeniach 31 i 32 zawiera dwie cząsteczki argininy.
Białka fuzyjne insulin można wytwarzać w wyniku fermentacji modyfikowanych genetycznie komórek Escherichia coli według opisów patentowych EP 0 489 780 i EP 0 906 918. Otrzymuje się przy tym suspensję białka, która zawiera od około 20% wagowych do około 25% wagowych stałej substancji i od okoł o 40% wagowych do okoł o 50% wagowych fał dowanej insuliny.
Dla zamierzonego stabilizowania białka za pomocą cysteiny wprowadzono do około 2500 kg tej suspensji białka (odpowiadającej szarży fermentacyjnej) w ciągu 20 minut z jednoczesnym silnym mieszaniem 75 kg monohydratu chlorowodorku cysteiny. pH obniżyło się przy tym od wartości 7,0 do wartości 2,5. Suspensja miała przy wartości pH około 5 i postać gęstej pasty, ale przy wartości pH poniżej 4 można ją było znowu z łatwością mieszać. W takich warunkach próby w suspensji białka ustaliło się stężenie 170 mM chlorowodorku cysteiny. Suspensję białka mieszano jeszcze w ciągu 60 minut i nastę pnie pozostawiano bez dodatkowego mieszania aż do przerobu.
P r z y k ł a d 1
W celu doświadczalnego potwierdzenia konserwującego działania cysteiny wykonano następujące próby laboratoryjne:
Białko fuzyjne ludzkiej insuliny i białko fuzyjne pochodnej insuliny wytwarzane według opisu patentowego EP 906 918 przechowywano, z cysteiną i bez cysteiny, w temperaturze 5°C i w temperaturze pokojowej, w ciągu do 2 miesięcy. Z szarż pobierano próbki podczas próby. Białko fuzyjne zamieniono metodą redukcyjnego fałdowania w prepro-postać ludzkiej insuliny lub w prepro-postać pochodnej insuliny (patrz opis EP 906 918). Do szarż przechowywanych bez monohydratu chlorowodorku cysteiny wprowadzono ilość cysteiny potrzebną do fałdowania w czasie około 1 h przed początkiem fałdowania. W przypadku innych szarż, które zawierały cysteinę w postaci środka konserwującego, nie było to konieczne.
Przebieg reakcji do prepro-postaci ludzkiej insuliny lub do prepro-postaci pochodnej insuliny oznaczano metodą HPLC.
Analiza HPLC.
0,5 g białka rozpuszczano w 40 ml roztworu zawierającego 6 M chlorowodorku guanidyny, 50 mM Tris, pH 8,5 mM etylenodiaminotetraoctanu (EDTA), 1% 2-merkaptoetanolu, 10 mM ditiotreitolu w temperaturze 95°C w cią gu 2 minut i nastę pnie wirowano przy 14 000 G w cią gu 20 minut. Z klaPL 200 145 B1 rownej górnej cieczy pobrano próbkę 0,02 ml i wprowadzono ją na kolumnę chromatografii wysokociśnieniowej.
Kolumna: ®Nucleogel RN 300 - 5/46 (Macherey & Nagel, Akwizgran, Niemcy).
Gradient: bufor A: 0,1% kwas trifluorooctowy (TFA) bufor B: 0,09% TFA w acetonitrylu.
Temperatura: 55°C.
Całkowity czas przepływu: 40 minut.
Gradient wykazywał następującą ilość buforu B po odpowiednich czasach przepływu: 10 minut - 25%, 12 minut - 60%, 13 minut - 90%, 15 minut - 100%.
Przepływ 1 ml/minuta.
Detekcja: 215 nm.
Wyniki prób.
T a b e l a 1
Przechowywanie fuzyjnego białka ludzkiej insuliny w temperaturze 5°C, ilość substancji, mg/l, po fałdowaniu (substancją jest fałdowana ludzka insulina).
| 1. dzień | 1 tydzień | 2 tygodnie | 4 tygodnie | 8 tygodni | |
| z cysteiną | 850 | 831 | 867 | 845 | 825 |
| bez cysteiny | 879 | 827 | 790 | 712 | 625 |
T a b e l a 2
Przechowywanie fuzyjnego białka ludzkiej insuliny w temperaturze pokojowej, ilość substancji, mg/l, po fałdowaniu
| 1. dzień | 1 tydzień | 2 tygodnie | 4 tygodnie | 8 tygodni | |
| z cysteiną | 792 | 817 | 800 | 785 | 790 |
| bez cysteiny | 812 | 654 | 312 | %* | %* |
*ocena niemożliwa z powodu wyraźnego gnicia
T a b e l a 3
Przechowywanie fuzyjnego białka pochodnej insuliny w temperaturze 5°C, ilość substancji, mg/l, po fałdowaniu (substancją jest fałdowana pochodna insuliny).
| 1. dzień | 1 tydzień | 2 tygodnie | 4 tygodnie | 8 tygodni | |
| z cysteiną | 590 | 553 | 540 | 573 | 552 |
| bez cysteiny | 612 | 580 | 549 | 518 | 404 |
T a b e l a 4
Przechowywanie fuzyjnego białka pochodnej insuliny w temperaturze pokojowej, ilość substancji, mg/l, po fałdowaniu.
| 1. dzień | 1 tydzień | 2 tygodnie | 4 tygodnie | 8 tygodni | |
| z cysteiną | 643 | 667 | 680 | 649 | 653 |
| bez cysteiny | 597 | 547 | 420 | 271 | %* |
*ocena niemożliwa z powodu wyraźnego gnicia
Wprowadzenie cysteiny lub chlorowodorku cysteiny umożliwia uzyskanie czasów przechowywania do 2 miesięcy bez znacznej straty aktywności.
Claims (15)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym, w którym zmniejszanie w czasie skutecznego stężenia białka jest opóźniane, znamienny tym, że do wodnego rozpuszczalnika wpro6PL 200 145 B1 wadza się cysteinę, przy czym stężenie cysteiny w wodnym roztworze białka jest w zakresie od 150 do 220 mM a jako białko stosuje się insulinę, pochodną insuliny i/lub jej prekursor.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przechowuje się białko, które jest białkiem heterologicznym wytwarzanym w mikroorganizmie.
- 3. Sposób wedł ug zastrz. 2, znamienny tym, ż e przechowuje się białko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym bakterię.
- 4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, ż e przechowuje się biał ko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym bakterię Escherichia coli.
- 5. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że przechowuje się białko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym drożdże.
- 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, ż e przechowuje się białko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym drożdże Saccharomyces cerevisiae.
- 7. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że przechowuje się białko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym drożdże Pichia pastoris.
- 8. Sposób wedł ug zastrz. 2, znamienny tym, ż e przechowuje się białko wytwarzane w mikroorganizmie stanowiącym komórki owadów.
- 9. Sposób wedł ug zastrz. 2 albo 3 albo 4 albo 5 albo 6 albo 7 albo 8, ż e przechowuje się biał ko wytwarzane przez mikroorganizm za pomocą konstruktu wektora ekspresji.
- 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że białko występuje w postaci rozpuszczonej.
- 11. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że białko występuje w postaci suspensji.
- 12. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stężenie cysteiny w wodnym roztworze białka wynosi 170 mM.
- 13. Sposób według zastrz, 1, znamienny tym, że białko przechowuje się w temperaturze od 0°C do 50°C.
- 14. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że białko przechowuje się w temperaturze od 5°C do 30°C.
- 15. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że białko przechowuje się w temperaturze 5°C.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19930676A DE19930676B4 (de) | 1999-07-02 | 1999-07-02 | Verfahren zur Stabilisierung von Insulin, Insulinderivaten und/oder deren Vorläufer in komplexen Mischungen bei deren Lagerung in wäßrigen Lösungsmitteln |
| PCT/EP2000/005666 WO2001002435A1 (de) | 1999-07-02 | 2000-06-20 | Verfahren zur stabilisierung von proteinen in komplexen mischungen bei deren lagerung in wässrigen lösungsmitteln |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL353160A1 PL353160A1 (pl) | 2003-10-20 |
| PL200145B1 true PL200145B1 (pl) | 2008-12-31 |
Family
ID=7913515
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL353160A PL200145B1 (pl) | 1999-07-02 | 2000-06-20 | Sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym |
Country Status (25)
| Country | Link |
|---|---|
| US (3) | US6339061B1 (pl) |
| EP (1) | EP1196447B1 (pl) |
| JP (1) | JP4555525B2 (pl) |
| KR (1) | KR100754235B1 (pl) |
| CN (1) | CN1220703C (pl) |
| AR (1) | AR024621A1 (pl) |
| AT (1) | ATE423137T1 (pl) |
| AU (1) | AU768443B2 (pl) |
| BR (1) | BRPI0012150B8 (pl) |
| CA (1) | CA2377794C (pl) |
| CY (1) | CY1109050T1 (pl) |
| DE (2) | DE19930676B4 (pl) |
| DK (1) | DK1196447T3 (pl) |
| ES (1) | ES2321373T3 (pl) |
| HK (1) | HK1047115B (pl) |
| HU (1) | HU228936B1 (pl) |
| IL (2) | IL147250A0 (pl) |
| MX (1) | MXPA01012836A (pl) |
| NO (1) | NO329429B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ516372A (pl) |
| PL (1) | PL200145B1 (pl) |
| PT (1) | PT1196447E (pl) |
| SI (1) | SI1196447T1 (pl) |
| WO (1) | WO2001002435A1 (pl) |
| ZA (1) | ZA200110507B (pl) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10224111A1 (de) * | 2002-05-29 | 2003-12-18 | November Ag Molekulare Medizin | Verfahren zum Assemblieren von Untereinheiten zu Kapsoiden |
| US20060201877A1 (en) * | 2005-03-10 | 2006-09-14 | Baldridge John W | Septic system cleaning |
| US8116073B2 (en) * | 2010-01-26 | 2012-02-14 | Amtek System Co., Ltd. | Display structure of slip-cover-hinge electronic device |
| CN108404194A (zh) * | 2018-04-20 | 2018-08-17 | 朱清 | 一种快速止血纱布的制备方法 |
Family Cites Families (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4371523A (en) * | 1980-12-29 | 1983-02-01 | The Regents Of The University Of California | Reducing the aggregation of insulin in solution |
| FI78616C (fi) * | 1982-02-05 | 1989-09-11 | Novo Industri As | Foerfarande foer framstaellning av en foer infusionsaendamaol avsedd stabiliserad insulinloesning, som har en foerhoejd zinkhalt. |
| EP0158487B1 (en) * | 1984-04-09 | 1991-08-28 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Stable composition of interleukin-2 |
| DK129385A (da) * | 1985-03-22 | 1986-09-23 | Novo Industri As | Peptider og fremstilling deraf |
| US4937085A (en) * | 1986-08-15 | 1990-06-26 | Agra-Research, Inc. | Discoloration preventing food preservative and method |
| GB8806893D0 (en) * | 1988-03-23 | 1988-04-27 | Unilever Plc | Cosmetic composition |
| KR900003362A (ko) * | 1988-08-24 | 1990-03-26 | 전학제 | 유전공학기법을 이용한 인체 인슈린 유사체의 제조방법 |
| JPH0341033A (ja) * | 1989-07-07 | 1991-02-21 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | 安定なモチリン類含有製剤 |
| IL95495A (en) | 1989-08-29 | 1996-10-16 | Hoechst Ag | Fusion proteins their preparation and use |
| US5227293A (en) | 1989-08-29 | 1993-07-13 | The General Hospital Corporation | Fusion proteins, their preparation and use |
| US5288931A (en) * | 1991-12-06 | 1994-02-22 | Genentech, Inc. | Method for refolding insoluble, misfolded insulin-like growth factor-I into an active conformation |
| US5663304A (en) * | 1993-08-20 | 1997-09-02 | Genentech, Inc. | Refolding of misfolded insulin-like growth factor-I |
| IL139335A (en) * | 1994-01-03 | 2005-08-31 | Genentech Inc | Mpl ligand polypeptides, nucleic acids encoding them, vectors and host cells comprising such nucleic acids, processes for producing such polypeptides pharmaceutical compositions containing them and use thereof in the preparation of medicaments for treating thrombocytopenia |
| DE4405179A1 (de) * | 1994-02-18 | 1995-08-24 | Hoechst Ag | Verfahren zur Gewinnung von Insulin mit korrekt verbundenen Cystinbrücken |
| US6165981A (en) * | 1995-03-07 | 2000-12-26 | Dade Behring Inc. | Stabilizing solutions for proteins and peptides |
| US5780431A (en) * | 1996-09-20 | 1998-07-14 | Neurobiological Technologies, Inc. | Pharmaceutical formulations of corticotropin releasing factor having improved stability in liquid form |
| DE19735711C2 (de) * | 1997-08-18 | 2001-04-26 | Aventis Pharma Gmbh | Verfahren zur Herstellung eines Vorläufers von Insulin oder Insulinderivaten mit korrekt verbundenen Cystinbrücken |
-
1999
- 1999-07-02 DE DE19930676A patent/DE19930676B4/de not_active Expired - Lifetime
-
2000
- 2000-06-20 AU AU58164/00A patent/AU768443B2/en not_active Expired
- 2000-06-20 PT PT00943838T patent/PT1196447E/pt unknown
- 2000-06-20 DE DE50015562T patent/DE50015562D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 AT AT00943838T patent/ATE423137T1/de active
- 2000-06-20 IL IL14725000A patent/IL147250A0/xx unknown
- 2000-06-20 JP JP2001508222A patent/JP4555525B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 KR KR1020027000032A patent/KR100754235B1/ko not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 BR BRPI0012150A patent/BRPI0012150B8/pt not_active IP Right Cessation
- 2000-06-20 EP EP00943838A patent/EP1196447B1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 DK DK00943838T patent/DK1196447T3/da active
- 2000-06-20 PL PL353160A patent/PL200145B1/pl unknown
- 2000-06-20 WO PCT/EP2000/005666 patent/WO2001002435A1/de not_active Ceased
- 2000-06-20 CN CNB008091773A patent/CN1220703C/zh not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 NZ NZ516372A patent/NZ516372A/xx not_active IP Right Cessation
- 2000-06-20 ES ES00943838T patent/ES2321373T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 HK HK02108639.8A patent/HK1047115B/zh not_active IP Right Cessation
- 2000-06-20 HU HU0202264A patent/HU228936B1/hu unknown
- 2000-06-20 CA CA2377794A patent/CA2377794C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-20 SI SI200031027T patent/SI1196447T1/sl unknown
- 2000-06-20 MX MXPA01012836A patent/MXPA01012836A/es active IP Right Grant
- 2000-06-29 AR ARP000103312A patent/AR024621A1/es active IP Right Grant
- 2000-06-30 US US09/608,297 patent/US6339061B1/en not_active Expired - Lifetime
-
2001
- 2001-11-26 US US09/991,964 patent/US6734164B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-12-12 NO NO20016071A patent/NO329429B1/no not_active IP Right Cessation
- 2001-12-21 ZA ZA200110507A patent/ZA200110507B/xx unknown
- 2001-12-23 IL IL147250A patent/IL147250A/en active IP Right Grant
-
2004
- 2004-03-10 US US10/796,160 patent/US7514403B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2009
- 2009-05-11 CY CY20091100502T patent/CY1109050T1/el unknown
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE69434919T2 (de) | Faltung von Polypeptiden | |
| DE69131834T2 (de) | Serinproteasevarianten mit peptidligase aktivität | |
| HK1010457B (en) | Process to obtain insulin with correct cystin bridges | |
| NO309153B1 (no) | Fremgangsmåte for ökning ved sekresjon av disulfidbrodannede proteiner | |
| CA2444480C (en) | Methods and compositions for production of recombinant peptides | |
| PL200145B1 (pl) | Sposób przechowywania białka w rozpuszczalniku wodnym | |
| US9505802B2 (en) | Method for protein isolation in anoxic conditions | |
| US7189811B2 (en) | Process for solubilization of recombinant proteins expressed as inclusion body | |
| LT3328B (en) | Process for the preparation of insulin | |
| US6841658B2 (en) | Purification of human Troponin I | |
| NO864206L (no) | Derivat av interleukin-2, dets fremstilling og anvendelse. | |
| Phue et al. | Improved refolding of recombinant human proinsulin from Escherichia coli in a two-stage reactor system | |
| Christensen et al. | Postbiosynthesis Modification: Human Growth | |
| US20030105017A1 (en) | Purification of human Troponin I |