PL184927B1 - Sposób wytwarzania proszkowego izolatu białkowego - Google Patents
Sposób wytwarzania proszkowego izolatu białkowegoInfo
- Publication number
- PL184927B1 PL184927B1 PL97328086A PL32808697A PL184927B1 PL 184927 B1 PL184927 B1 PL 184927B1 PL 97328086 A PL97328086 A PL 97328086A PL 32808697 A PL32808697 A PL 32808697A PL 184927 B1 PL184927 B1 PL 184927B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- protein
- fat
- aqueous
- solution
- protein solution
- Prior art date
Links
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 112
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 112
- 238000000605 extraction Methods 0.000 title claims description 8
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 claims abstract description 54
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 claims abstract description 23
- 235000014698 Brassica juncea var multisecta Nutrition 0.000 claims abstract description 18
- 235000006008 Brassica napus var napus Nutrition 0.000 claims abstract description 18
- 235000006618 Brassica rapa subsp oleifera Nutrition 0.000 claims abstract description 18
- 238000010790 dilution Methods 0.000 claims abstract description 18
- 239000012895 dilution Substances 0.000 claims abstract description 18
- 235000013305 food Nutrition 0.000 claims abstract description 18
- 239000000693 micelle Substances 0.000 claims abstract description 16
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 claims abstract description 14
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 claims abstract description 12
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000000843 powder Substances 0.000 claims abstract description 3
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 73
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 claims description 64
- 244000188595 Brassica sinapistrum Species 0.000 claims description 17
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 238000001816 cooling Methods 0.000 claims description 8
- 238000011038 discontinuous diafiltration by volume reduction Methods 0.000 claims description 8
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 6
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 claims description 5
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 claims description 5
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 claims description 5
- 238000010908 decantation Methods 0.000 claims description 3
- 238000000151 deposition Methods 0.000 claims description 3
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 3
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 3
- 238000007865 diluting Methods 0.000 claims description 2
- 239000012071 phase Substances 0.000 claims 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 abstract description 16
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 abstract description 6
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 abstract description 6
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 abstract description 6
- 238000000926 separation method Methods 0.000 abstract description 4
- 239000004465 oilseed meal Substances 0.000 abstract 3
- 240000000385 Brassica napus var. napus Species 0.000 abstract 1
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 abstract 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 44
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 description 19
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 14
- 239000000463 material Substances 0.000 description 13
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 9
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 9
- 238000005238 degreasing Methods 0.000 description 7
- 239000000047 product Substances 0.000 description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 4
- 238000000164 protein isolation Methods 0.000 description 4
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 4
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 4
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 3
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 3
- VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N n-Hexane Chemical compound CCCCCC VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 3
- 230000007925 protein solubilization Effects 0.000 description 3
- 238000001799 protein solubilization Methods 0.000 description 3
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 3
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M Potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 2
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 2
- 239000000828 canola oil Substances 0.000 description 2
- 235000019519 canola oil Nutrition 0.000 description 2
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 239000010685 fatty oil Substances 0.000 description 2
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 2
- 239000013627 low molecular weight specie Substances 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 229920000715 Mucilage Polymers 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 230000002730 additional effect Effects 0.000 description 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 238000004061 bleaching Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 1
- 238000000641 cold extrusion Methods 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 description 1
- 238000000113 differential scanning calorimetry Methods 0.000 description 1
- 238000002845 discoloration Methods 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012510 hollow fiber Substances 0.000 description 1
- 229930195733 hydrocarbon Natural products 0.000 description 1
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000012263 liquid product Substances 0.000 description 1
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 239000011236 particulate material Substances 0.000 description 1
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 230000004845 protein aggregation Effects 0.000 description 1
- 238000000751 protein extraction Methods 0.000 description 1
- 230000006920 protein precipitation Effects 0.000 description 1
- 238000007670 refining Methods 0.000 description 1
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 1
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 1
- 239000012465 retentate Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 230000003381 solubilizing effect Effects 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 239000000829 suppository Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 238000001291 vacuum drying Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/14—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Fats And Perfumes (AREA)
- Seeds, Soups, And Other Foods (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Edible Oils And Fats (AREA)
Abstract
1. Sposób wytwarzania proszkowego izolatu bialkowego o zawartosci bialka co naj- mniej 90% wagowych, obejmujacy ekstrahowanie maki z nasion oleistych wodnym roz- tworem soli klasy spozywczej o sile jonowej co najmniej 0,2 i przy pH od 5 do 6,8 w tem- peraturze od 5° do 35°C; oddzielanie otrzymanego wodnego roztworu bialka od pozostalo- sci maki z nasion oleistych; zatezanie bialka w roztworze bialka z zachowaniem zasadni- czo stalej jego sily jonowej; rozcienczanie stezonego roztworu bialka do sily jonowej poni- zej 0,2, z wytworzeniem dyskretnych czastek bialka w fazie wodnej co najmniej czesciowo w postaci micelli bialka; osadzanie micelli bialka z wytworzeniem masy izolatu bialkowe- go co najmniej czesciowo w postaci amorficznej, lepkiej galaretowatej glutenopodobnej masy micelarnej bialka; oddzielanie izolatu bialka od cieczy sklarowanej i suszenie go, znamienny tym, ze ekstrahuje sie make z nasion oleistych, w której zawartosc tluszczu wynosi do 10 wagowych w przeliczeniu na mase maki i z wytworzonego roztworu tluszczu oraz bialka usuwa sie tluszcz z wodnego roztworu bialka przez ochlodzenie wodnego roztworu bialka az do oddzielenia sie tluszczu od fazy wodnej, a nastepnie rozdziela sie tluszcz od fazy wodnej, przed lub po etapie oddzielania wodnego roztworu bialka od pozo- stalosci maki z nasion oleistych. PL PL PL PL
Description
Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania proszkowego izolatu białkowego z nasion oleistych i mąk białkowych.
Współczesne przemysłowe sposoby przetwarzania nasion oleistych skierowane są na wytwarzanie jasnego, superodśluzowanego oleju, co wymusza usuwanie z oleju żywic, sopstoków, ziemi bielących i barwników, które są substancjami ubocznymi i ponownie dodawanymi do mąki pozostałej po wyciskaniu nasion oleistych w celu usunięcia oleju. Mąka ta zwykle stosowana jest jako pasza dla zwierząt.
Dodawanie takich substancji do mąki z nasion oleistych powoduje, że za pomocą technik wyodrębniania nieszkodliwych dla środowiska naturalnego wyekstrahowanie z takich mąk izolatów białkowych zawierających ponad około 90% białka staje się niemożliwe. Obecność tłuszczu w mąkach przemysłowych spowodowane jest tym, że w typowych technikach przetwarzania zwykle zatęża się tłuszcz razem z białkiem.
Przy użyciu konwencjonalnych technik przetwarzania uzyskiwany poziom białka zasadniczo nie przekracza około 70 do 75% wagowych, i ich przydatność jest gorsza z uwagi na obecność tłuszczu. Ponadto obecność tłuszczu w suchym produkcie białkowym może prowadzić do jełczenia i innych problemów związanych z tłuszczem, włączając w to słabą rozpuszczalność, zbrylanie się oraz odbarwienie wynikające ze współprzetwarzania barwników w mące wraz tłuszczem.
Jedną ze spraw, na którą kładzie się nacisk w programie hodowli roślin o nasionach oleistych jest zwiększenie wydajności oleju z nasion oleistych i opracowano nawet odmiany np. kanoli (rzepaku) o wyższej wydajności oleju. Jednak taka zwiększona produkcja oleju wpływa na zwiększenie ilości tłuszczu obecnego w mące z nasion oleistych w wyniku dodania produktów ubocznych przy rafinacji oleju do mąki z nasion oleistych.
Chociaż tłuszcz z mąk z nasion oleistych może być, przynajmniej częściowo, usunięty za pomocą ekstrakcji rozpuszczalnikami organicznymi, to jednakże stosowanie rozpuszczalników organicznych, zwłaszcza w podwyższonych temperaturach, może powodować denaturację białka, osłabiając tym samym przydatność produktu, a ponadto powstają problemy związane z usuwaniem i odzyskiem rozpuszczalników szkodliwych dla środowiska naturalnego.
W opisie patentowym USA nr 4208323 opisano sposób wytwarzania izolatu białkowego ze źródeł roślinnych, w tym z mąki pochodzącej z nasion oleistych. Substancję ze źródła roślinnego ekstrahuje się wodnym roztworem soli kuchennej, a następnie powstały roztwór białka, który może być wcześniej zatężony co do zawartości białka, przy utrzymywaniu takiego samego stężenia soli, rozcieńcza się do siły jonowej poniżej około 0,1, aby spowodować wytworzenie się micelli białkowych, które osadza się. Powstałą micelarną masę białkową odzyskuje się i suszy. Sposób ten można stosować do wyodrębniania białka z różnych źródeł. Jako źródła białka mogą być stosowane w tym sposobie różne substancje, w tym nasiona oleiste. Mąki z nasion oleistych dostępne w 1980, a więc w czasie udzielenia tego patentu, nie miały takiego poziomu zanieczyszczenia tłuszczem jak obecne mąki z nasion oleistych i, dlatego, sposobem opisanym w tym patencie, nie można wytworzyć z obecnych mąk z nasion oleistych, produktów białkowych o zawartości białka ponad 90%, co jest właściwością substancji białkowej wytwarzanej sposobem przedstawionym w patencie. Aby możliwe było
184 927 wytwarzanie takich produktów z dzisiejszych mąk z nasion oleistych, włączając w to mąki prasowane na zimno, konieczne jest wprowadzenie do tego sposobu znaczących zmian.
Sposób wytwarzania zasadniczo niezdenaturowanego proszkowego izolatu białkowego o zawartości białka co najmniej 90% wagowych, według wynalazku, obejmuje ekstrahowanie mąki z nasion oleistych wodnym roztworem soli klasy spożywczej o sile jonowej co najmniej 0,2 i przy pH od 5 do 6,8 w temperaturze od 5° do 35°C; oddzielanie otrzymanego wodnego roztworu białka od pozostałości mąki z nasion oleistych; zatężanie białka w roztworze białka z zachowaniem zasadniczo stałej jego siły jonowej; rozcieńczanie stężonego roztworu białka do siły jonowej poniżej 0,2, z wytworzeniem dyskretnych cząstek białka w fazie wodnej co najmniej częściowo w postaci micelli białka; osadzanie micelli białka z wytworzeniem masy izolatu białkowego co najmniej częściowo w postaci amorficznej, lepkiej galaretowatej glutenopodobnej masy micelarnej białka; oddzielanie izolatu białka od cieczy sklarowanej i suszenie go, przy czym jego istotną cechąjest to, że ekstrahuje się mąkę z, nasion oleistych, w której zawartość tłuszczu wynosi do 10% wagowych w przeliczeniu na masę mąki i z wytworzonego roztworu tłuszczu oraz białka usuwa się tłuszcz z wodnego roztworu białka, przed lub po etapie oddzielania wodnego roztworu białka od pozostałości mąki z nasion oleistych.
Tak więc dzięki wynalazkowi unika się problemu występującego w stanie techniki przez dostarczenie sposobu, dzięki któremu można otrzymać izolat oczyszczonego białka o wysokiej zawartości białka z obecnej mąki z nasion oleistych zanieczyszczonej tłuszczem.
W niniejszym wynalazku niezbędne jest wykonanie etapu lub etapów usunięcia tłuszczu przed etapem rozcieńczania, który wytwarza micelle białka, ponieważ w przeciwnym przypadku białko i tłuszcz współoczyszczają się podczas tworzenia micelli, i następnie nie jest możliwe wykonanie izolatu białka o wymaganej czystości ponieważ tłuszcz rozcieńcza białko.
Figura 1 jest schematycznym diagramem procedury wyodrębnienia białka według jednego wykonania wynalazku zastosowanej do mąki kanoli, lecz ogólnie biorąc także do innych mąk z nasion oleistych; a
Figura 2 jest schematycznym diagramem procedury wyodrębnienia białka według innego wykonania wynalazku zastosowanej do mąki kanoli, lecz ogólnie biorąc także do innych mąk z nasion oleistych;
Etapy procesu według wynalazku podano w formie schematów blokowych procesu na fig. 1 i 2.
Początkowy etap procesu według tego wynalazku obejmuje solubilizację substancji białkopodobnych z mąki z nasion oleistych, w szczególności mąki z kanoli, chociaż proces można zastosować do innych mąk z nasion oleistych, takich jak mąka z soi i mąka z rzepaku. Takimi materiałami białkopodobnymi mogą być białka naturalnie występujące w nasionach kanoli lub innych nasionach oleistych lub też materiałami białkopodobnymi mogą być białka wprowadzone przez operacje genetyczne lecz mające charakterystyczne właściwości hydrofobowe i polarne białka. Mąką z kanoli może być mąka z kanoli uzyskana przez usunięcie oleju kanolowego z nasion kanoli o różnych poziomach niezdenaturowanej białka, uzyskanej np. metodami ekstrakcji gorącym heksanem lub wytłaczania oleju na zimno. Jak omawiano powyżej, taka mąka z nasion oleistych zawiera znaczną ilość tłuszczu, do około 10%o wag. mąki.
Do solubilizacji białka stosuje się roztwór soli klasy spożywczej, a solą klasy spożywczej jest zwykle chlorek sodu chociaż można zastosować inne sole, takie jak chlorek potasu. Roztwór soli klasy spożywczej ma siłę jonową co najmniej około 0,2, by umożliwić solubilizację znacznych ilości białka W miarę jak siła jonowa roztworu soli wzrasta, początkowo rośnie stopień solubilizacji białka w materiale źródłowym do osiągnięcia wartości maksymalnej.
Jakikolwiek dalszy wzrost siły jonowej nie zwiększa całkowitej ilości solubilizowanej białka. Siła jonowa roztworu soli klasy spożywczej, która powoduje maksymalną solubilizację białka zmienia się w zależności od rozpatrywanej soli i wybranego źródła białka.
Ze względu na większy stopień rozcieńczenia wymagany dla wytrącenia białka wraz ze wzrastającymi siłami jonowymi, zazwyczaj korzystnie jest stosować siłę jonową o wartości mniejszej od około 0,8, bardziej korzystnie o wartości od 0,3 do 0,6. Jednakże stosowano również siłę jonową o wartościach do 5,0. W wykonaniu niniejszego wynalazku zilustrowanym na fig. 1 i 2 do solubilizacji białka w mące z kanoli zastosowano 0,5M roztwór NaCl.
184 927
Solubilizację białka solą prowadzi się w temperaturze od około 5° do około 35°, korzystnie przy towarzyszącym mieszaniu, by obniżyć czas solubilizacji, który zwykle wynosi około 10 do około 60 minut. Korzystne jest wykonanie solubilizacji, tak by wyekstrahować zasadniczo maksymalną ilość białka z materiału źródłowego.
Wybrano dolną granicę temperatur około 5°C ponieważ solubilizacja poniżej tej temperatury jest zbyt powolna z punktu widzenia praktyki, podczas gdy górną granicę temperatury wybrano na około 35°C ponieważ wzrost mikroorganizmów staje się powyżej tej temperatury niedopuszczalnie wysoki. Wodny roztwór soli klasy spożywczej i mąka z nasion oleistych mają naturalne pH około 5 do około 6,8, by umożliwić utworzenie izolatu białka poprzez micelle, jak opisano bardziej szczegółowo poniżej. Optymalna wartość pH dla maksymalnej wydajności izolatu białka zmienia się w zależności od wybranego materiału - źródła białka.
Na granicach i blisko granic zakresu pH, tworzenie izolatu białka następuje jedynie częściowo. drogą, micelamą i przy niższych wydajnościach niż można osiągnąć w innym przypadku w zakresie pH. Z tego względu korzystne są wartości pH około 5,3 do 6,2. pH roztworu soli klasy spożywczej można dostosować do jakiejkolwiek żądanej wartości w zakresie około 5 do około 6,8 dla zastosowania w etapie ekstrakcji przez użycie jakiegokolwiek dogodnego kwasu klasy spożywczej, zwykle kwasu solnego, zasady klasy spożywczej, zwykle wodorotlenku sodu, jak to jest wymagane.
Zatężenie materiału - źródła białka w roztworze soli klasy spożywczej podczas etapu solubilizacji może się zmieniać w szerokim zakresie. Typowe wartości stężenia wynoszą około 5 do 15% wag./obj.
Etap ekstrakcji białka przy użyciu wodnego roztworu soli wywiera dodatkowy efekt w postaci solubilizacji pewnych tłuszczy w mące z kanoli, co prowadzi do obecności tłuszczy w fazie wodnej.
Roztwór białka ma zasadniczo stężenie białka około 10 do około 100 g/l, korzystnie około 30 do około 70 g/l, wraz z około 1 do około 10 g/l solubilizowanego tłuszczu. Roztwór białka można analizować na zawartość tłuszczu standardowymi metodami badania całkowitej zawartości tłuszczu.
Jak widać na fig. 1 całość fazy wodnej pochodzącej z etapu ekstrakcji można następnie oddzielić od resztkowej mąki z kanoli w jakikolwiek dogodny sposób, taki jak zastosowanie prasy wulkanizacyjnej, a następnie odwirowanie, by usunąć resztkową mąkę. Oddzieloną pozostałość mąki można suszyć dla zagospodarowania. Alternatywnie, resztkową mąkę można oddzielić po pierwszym etapie usuwania tłuszczu opisanym poniżej, jak zilustrowano w wykonaniu z fig. 2.
Następnie roztwór jest poddawany operacji odtłuszczania, by usunąć z niej co najmniej część tłuszczu. Operację odtłuszczania można wykonać przez chłodzenie wodnego roztworu białka do temperatury poniżej około 15°, korzystnie poniżej około 10°C, a zwłaszcza w zakresie od około 3° do około 7°C, zasadniczo bez mieszania, by spowodować oddzielenie się tłuszczu, tak by było możliwe jego usunięcie jakąkolwiek dogodną operacją rozdziału, taką jak przez dekantację, odwirowanie i/lub dokładne sączenie, np. stosując filtr workowy. Ochłodzony roztwór białka można analizować na zawartość tłuszczu, by oznaczyć tłuszcz usunięty przez chłodzenie. W zilustrowanych wykonaniach, tłuszcz jest poddany dekantacji z powierzchni roztworu, tak jak przez użycie pompy, i odtłuszczony roztwór może być dokładnie przesączony, by usunąć resztkowy wytrącony tłuszcz, jak widać na fig. 1. Alternatywnie, w wykonaniu z fig. 2, oddzielenie resztkowej mąki można wykonać po etapie ochładzania przez odwirowanie odtłuszczonego roztworu białka. Operację odtłuszczania zasadniczo przeprowadza się, by usunąć około 30 do około 90%, korzystnie około 70 do około 90%, tłuszczu zawartego w wodnym roztworze białka i umożliwia ona, by odtłuszczony roztwór białka, był dalej przetwarzany, by wytworzyć izolat białka o wysokiej zawartości białka. Odtłuszczony wodny roztwór białka jest następnie zatężany, by zwiększyć stężenie białka przy zachowaniu zasadniczo stałej jego siły jonowej.
Etap zatężania można wykonać jakąkolwiek dogodną techniką selektywnej membrany, takąjak, ultrafiltracja lub diafiltracja. Etap zatężania ma korzystny efekt polegający na zwięk6
184 927 szeniu wydajności micelarnego izolatu białka, który można otrzymać z procesu, tym samym zwiększając całkowitą, wydajność procesu wyodrębniania białka.
Stopień zatężenia roztworu białka można określić jako „czynnik zmniejszenia objętości”. Gdy czynnik zmniejszenia objętości, wyrażony jako stosunek objętości roztworu przed zatężeniem do objętości roztworu zatężonego, a zatem i stężenie białka wzrasta od 1,0, osiągalna wydajność wzrasta do osiągnięcia maksimum.
Gdy osiągnie się maksymalną osiągalną wydajność, dalsze obniżenie objętości zatężonego roztworu jest korzystne jedynie względem objętości cieczy wymaganej dla następującego po tym rozcieńczenia podczas etapu wyodrębnienia białka.
Czynnik zmniejszenia objętości, przy którym jest osiągnięta maksymalna osiągalna wydajność jest zależny od konkretnego materiału - źródła białka i pH roztworu białka. Korzystne jest stosowanie czynnika zmniejszenia objętości od około 3,0 do około 10, ponieważ maksymalna osiągalna objętość często wynika z użycia tych wartości. Czynnik zmniejszenia objętości co najmniej około 1,1 jest zwykle stosowany i jako że czynniki zmniejszenia objętości są całkiem wysokie, lepkość roztworu białka staje się dość wysoka, co może prowadzić do trudności w przetwarzaniu, tym samym uniemożliwiając stosowanie większych wartości.
Zatężenie można wykonać w jakiejkolwiek dogodnej temperaturze, w typowym przypadku od około 20° do około 45°C, i przez taki okres czasu, by uzyskać żądany proces zatężenia. Temperatura i inne zastosowane warunki zależą w pewnym stopniu od użytego wyposażenia membranowego, by uzyskać zatężenie i stężenie białka w roztworze.
Zatężanie roztworu białka w tym etapie nie tylko zwiększa całkowitą wydajność procesu, lecz także zmniejsza stężenie soli końcowego izolatu białka po suszeniu. Zdolność do kontrolowania stężenia soli izolatu jest ważna w zastosowaniach izolatu, gdzie zmiany stężeń soli wpływają na właściwości funkcjonalne i organoleptyczne w konkretnym zastosowaniu spożywczym.
Jak dobrze wiadomo, ultrafiltracja i podobne techniki selektywnych membran umożliwiają przechodzenie przez nie indywiduów o niskich ciężarach cząsteczkowych przy zapobieganiu przechodzeniu przez indywidua o wyższych ciężarach cząsteczkowych. Indywidua o niskich ciężarach cząsteczkowych obejmują nie tylko indywidua jonowe soli klasy spożywczej lecz także materiały niskocząsteczkowe wyekstrahowane z materiału - źródła, takie jak węglowodory, barwniki itd. Próg ciężaru cząsteczkowego dla membrany jest zwykle wybierany tak, by zapewnić retencję zasadniczo wszystkich białek w roztworze.
Wyeliminowanie indywiduów o niskim ciężarze cząsteczkowym z wyekstrahowanego roztworu podczas etapu zatężania umożliwia zwiększenie stężenia białka bez jego wytrącenia, znacznie powyżej maksymalnego stężenia osiągalnego podczas etapu ekstrakcji.
Zatężony roztwór białka można poddać etapowi dalszego usuwania tłuszczu przez ochładzanie zatężonego roztworu białka do temperatury poniżej około 15°C, korzystnie poniżej około 10°C, zwłaszcza w zakresie od około 3° do około 7°C, by spowodować oddzielenie tłuszczu od fazy wodnej i usunięcie oddzielanego tłuszczu z zatężonego roztworu białka. Można zastosować jakąkolwiek z procedur oddzielania tłuszczu opisanych powyżej do pierwszego etapu odtłuszczania, samą lub w połączeniu, dla usunięcia tłuszczu z ochłodzonego zatężonego roztworu białka. Dalsza operacja odtłuszczania prowadzi zasadniczo do usunięcia około 30 do około 90% resztkowego tłuszczu, korzystnie około 70 do około 90%, do resztkowej zawartości tłuszczu około 1 do około 10 g/l zatężonego roztworu białka.
Roztwór białka można analizować na zawartość tłuszczu, by oznaczyć tłuszcz usunięty przez ochłodzenie. Tłuszcz jest poddany dekantacji z powierzchni roztworu, tak jak przez użycie pompy, a odtłuszczony roztwór jest dokładnie sączony, by usunąć resztkowy wytrącony tłuszcz.
Zatężony roztwór białka uzyskany z etapów zatężenia i odtłuszczania, zasadniczo mający stężenie białka około 40 do około 200 g/l, zależnie od początkowego stężenia białka i użytego czynnika zmniejszenia objętości, jest rozcieńczany do siły jonowej mniej niż około 0,2, zasadniczo przez dodanie zatężonego roztworu białka do całości wody o objętości wymaganej do osiągnięcia żądanego spadku siły jonowej.
184 927
Masa wody do której jest wprowadzany zatężony roztwór białka ma temperaturę poniżej około 25°C, a korzystnie ma temperaturę od około 3° do około 15°C, ponieważ przy użyciu tych niższych temperatur osiąga się zwiększone wydajności izolatu białkowego.
Spadek siły jonowej powoduje tworzenie, podobnej do „chmury”, masy wysoce zagregowanych cząsteczek białkowych w dyskretnych kroplach białkowych w postaci micelarnej. Micelle białkowe pozostawia się do osadzenia - utworzenia zagregowanej, skoagulowanej gęstej amorficznej, lepkiej glutenopodobnej masy izolatu białkowego. Osadzanie można wspomagać, tak jak przez odwirowanie. Takie indukowane ustawianie zmniejsza zawartość cieczy w masie izolatu białkowego, tym samym obniżając zawartość wilgoci zasadniczo od około 70% wagowo do około 95% wagowo do wartości zasadniczo od około 50% wagowo do około 80% wagowo całkowitej masy izolatu. Obniżenie zawartości wilgoci w masie i zolatu w ten sposób zmniejsza także zawartość soli zaokludowanej w izolacie i tym samym zawartość soli w osuszonym izolacie.
Siła jonowa, do której jest rozcieńczany zatężony roztwór białka poniżej 0,2 wpływa na skuteczność micelizacji i tym samym na osiągniętą wydajność izolatu. Z tego powodu siła jonowa jest zwykle obniżana do wartości poniżej około 0,15, korzystnie poniżej około 0,1. Zdolność do uzyskania dobrych wydajności izolatu białkowego w zakresie siły jonowej około 0,1 do około 0,2 w tym wynalazku wyraźnie kontrastuje z wyżej wspomnianą procedurą według stanu techniki, gdzie siłę jonową należy obniżyć poniżej 0,1, by osiągnąć sensowne wydajności. Rozcieńczanie korzystnie przeprowadza się do siły jonowej od około 0,06 do około 0,12, ponieważ optymalne wydajności osiąga się w tym zakresie, a nadmierne objętości wody przy braku dodatkowej korzyści są wymagane dla siły jonowej poniżej około 0,06. Dolna granica siły jonowej rozcieńczonego roztworu białka jest podyktowana bardziej praktycznymi względami ekonomicznymi dotyczącymi objętości cieczy niż rozważaniami dotyczącymi warunków prowadzenia procesu. W zilustrowanym wykonaniu, zatężony roztwór białka jest rozcieńczony w stosunku około 1:15 wody.
Uzyskany izolat, w postaci amorficznej, zagregowanej, lepkiej galaretowatej glutenopodobnej masy białkowej, zwanej „masą micelarną białka” lub PMM jest oddzielany od resztkowej fazy wodnej, tak jak przez dekantację resztkowej fazy wodnej z uzyskanej masy. PMM można stosować w postaci mokrej lub może być osuszony jakąkolwiek dogodną techniką, taką jak suszenie rozpryskowe, liofilizacja lub suszenie próżniowo na suszarce bębnowej, do postaci suchej. Suchy PMM ma dużą zawartość białka, zwykle ponad około 90% białka (obliczoną jako kjeldahl N x 6,25), i jest zasadniczo niezdenaturowany (jak oznaczono przez różnicową kalorymetrię skaningową) . Suchy PMM wyodrębniony z mąki z nasion olejów tłuszczowych ma także niską resztkową zawartość tłuszczu, która może być poniżej około 1%.
Zdolność do uzyskania wysokich poziomów niezdenaturowanego białka wyraźnie kontrastuje z poziomami białka osiągniętymi za pomocą technik konwencjonalnych. Wysoka zawartość niezdenaturowanego białka osiągana przez zastosowanie procesu według wynalazku do obecnych mąk z nasion oleistych olejów tłuszczowych jest porównywalna do osiągalnej przez proces z USP 4208323 dla materiałów - źródeł białka jak opisano w opisie patentowym.
Jedyne w swoim rodzaju operacje odtłuszczania, przeprowadzane jak opisano zgodnie z niniejszym wynalazkiem, umożliwiają uzyskanie wysokiego poziomu białka w procesie niedenaturującym z mąki z nasion oleistych zanieczyszczonej tłuszczem. Procedura wynalazku umożliwia dostarczenie wyłącznego ciekłego produktu - masy zmodyfikowanej micelamego białka - zwanego tu MPMMLE.
Wynalazek jest zilustrowany przez następujące przykłady:
Przykład 1
Przykład ten ilustruje wytwarzanie izolatu białkowego z mąki z nasion oleistych kanoli według jednego wykonania wynalazku według procedury z fig. 1.
Handlową mąkę z kanoli (50 kg) dodano do 500 litrów wodnego roztworu chlorku sodu (0,5 M) wykonanego z wody wodociągowej, zawartej w układzie 600 l. Mieszaninę mieszano przez 4 h w 8°C mieszają: przy 76,0 obr/min przy użyciu mieszadła łopatkowego. Całą mieszaninę poddano następnie etapowi prasowania przy użyciu prasy wulkanizacyjnej typu Wilmesa. Ciecz odzyskaną z prasy następnie odwirowano w odstojniku Westphalia, wytwarzając
184 927 ekstrakt nie oczyszczonej soli/ białka o 13 mg białka/ml ekstraktu i końcowej objętości całkowitej 477 litrów.
Następnie nie oczyszczony roztwór sól/ białko ochłodzono do 6°C przez 16 h, po czym warstwa tłuszczu wydostała się na wierzch roztworu. Tę górną warstwę odpompowano i pozostały roztwór białkopodobny przesączono przez filtr typu workowego o porowatości 5 mikronów, by usunąć pozostałe cząstki łusek oraz materiału ścianek komórkowych i resztkowych cząstek tłuszczu.
Ciecz sklarowaną zatężono w układzie ultrafiltracji z włóknami drążonymi o progu ciężaru cząsteczkowego 30000 do końcowej objętości 50 litrów przy stężeniu białka około 120 mg/l. Uzyskane 50 litrów koncentratu ponownie ochłodzono do 6°C przez 16 h i na powierzchni roztworu utworzyła się mała warstewka tłuszczu, przy czym tę warstewkę zebrano i odrzucono.
Ekstrakt ciekły o dużej zawartości białka rozcieńczono 15-krotnie wodą wodociągową (6°C). Bezpośrednio po rozcieńczeniu zauważono powstanie małego zmętnienia. Nie stosując mieszania, to zmętnienie białkopodobne (spowodowane przez agregację białka wskutek asocjacji hydrofobowej białka w mące z kanoli) pozostawiono do osadzenia w naczyniu do rozcieńczania. Górną warstwę wody rozcieńczającej odpompowano i wytrącono, a lepką masę białka zebrano i osuszono rozpryskowo. Za pomocą różniczkowej kaiorymetrii skaningowej stwierdzono, że uzyskany izolat białkowy (91% białka, w odniesieniu do izolatu tak jak go otrzymano) jest rodzimy z wysokim stopniem funkcjonalności w rozmaitych zastosowaniach spożywczych. Końcowy poziom tłuszczu w izolacie wyniósł 0,93%.
Przykład 2:
Przykład ten ilustruje wytwarzanie izolatu białkowego z mąki rzepakowej wyekstrahowanej rozpuszczalnikiem zgodnie z dalszym wykonaniem wynalazku stosując procedurę z fig. 2.
Mąkę z dostępnego handlowo polskiego rzepaku zawierającego 32,5% białka (w odniesieniu do izolatu tak jak go otrzymano), 10,1% tłuszczu i 6,1% wilgoci wyekstrahowano przy stosunku 10% wag./obj. w wodzie zawierającej 1,46 % wag. soli. Układ ekstrakcyjny mieszano przez 2 h w 25°C, poddano obróbce jak opisano w przykładzie 1, by usunąć resztkową mąkę, a następnie ochłodzono do 8°C i odstawiono na 1 h. Po tym czasie, zebrano około 200 g tłuszczu z wierzchu układu do osadzania, następnie układ wodny odwirowano, by usunąć materiał w postaci cząstek. Następnie ciecz sklarowaną diafiltrowano, a potem zatężono na membranie o progu ciężaru cząsteczkowego 30000 daltonów. Ten złożony etap z użyciem mebrany wymagał 4,5 h i wytworzył ekstrakt białkowy o całkowitej zawartości substancji stałych 4,1% (43,9% białka, w odniesieniu do suchej masy). Ekstrakt białkowy rozcieńczono 15-krotnie zimną wodą wodociągową (2°C); bezpośrednio po rozcieńczeniu utworzyło się białe zmętnienie („chmura”) micelli zagregowanych białka. Tę masę micelarną pozostawiono do osadzenia na 14 h w 3°C, górną warstwę wody rozcieńczającej zdekantowano, a lepką masę białkową zebrano z dołu i osuszono tworząc końcowy produkt białkopodobny.
Przykład 3:
Przykład ten ilustruje użycie mąki wytworzonej przez prasowanie (wytłaczanie) na zimno nasion kanoli.
Nienaruszone nasiona kanoli wprowadzono i rozgniatano w prasie do wytłaczania na zimno (typ Monfort), uzyskane „czopki” rozgnieciono, zbite szczątki nasion (po wytłoczeniu oleju) rozdrobniono w standardowym młynie (typ Fitz) uzyskując konsystencję podobną do handlowej mąki z kanoli. Materiał ten następnie przetwarzano przez ekstrakcję białka i proces odzysku jak opisano w przykładzie 2. Po rozcieńczeniu utworzyło się typowe zmętnienie micelli białkowych i lepką masę micelarną zebrano oraz osuszono tworząc końcowy produkt białkopodobny.
Przykład 4:
Przykład ten ilustruje zastosowanie procedury według niniejszego wynalazku do handlowej mąki z soi. Handlową mąkę z soi (10 kg) z urządzenia do wyciskania na zimno bez użycia rozpuszczalników organicznych, zawierającą 46% białka wyekstrahowano w 0,35 M chlorku sodu przy pH 6,5 po 30 min mieszania. Wyjściowa mąka zawierała 6,0% tłuszczu. Dla tego materiału z soi wykonano wszystkie procedury przedstawione szczegółowo w przykładzie 2,
184 429 włączając w to etapy ochładzania, by usunąć tłuszcz z faz wodnych, oprócz tego że stosunek ilościowy rozcieńczania ustalono na 1:3,5. Po rozcieńczeniu retentatu o dużej zawartości białka zimną wodą wodociągową natychmiast utworzyło się białe zmętnienie („chmura”) białkopodobne. Micelle białkowe osadzono stosując odwirowywanie, a lepką masę białkową zebrano z dna naczynia do rozcieńczania i osuszono tworząc końcowy produkt białkopodobny.
Claims (20)
1. Sposób wytwarzania proszkowego izolatu białkowego o zawartości białka co najmniej 90% wagowych, obejmujący ekstrahowanie mąki z nasion oleistych wodnym roztworem soli klasy spożywczej o sile jonowej co najmniej 0,2 i przy pH od 5 do 6,8 w temperaturze od 5° do 35°C; oddzielanie otrzymanego wodnego roztworu białka od pozostałości mąki z nasion oleistych; zatężanie białka w roztworze białka z zachowaniem zasadniczo stałej jego siły jonowej; rozcieńczanie stężonego roztworu białka do siły jonowej poniżej 0,2, z wytworzeniem dyskretnych cząstek białka w fazie wodnej co najmniej częściowo w postaci micelli białka; osadzanie micelli białka z wytworzeniem masy izolatu białkowego co najmniej częściowo w postaci amorficznej, lepkiej galaretowatej glutenopodobnej masy micelamej białka; oddzielanie izolatu białka od cieczy sklarowanej i suszenie go, znamienny tym, że ekstrahuje się mąkę z nasion oleistych, w której zawartość tłuszczu wynosi do 10 wagowych w przeliczeniu na masę mąki i z wytworzonego roztworu tłuszczu oraz białka usuwa się tłuszcz z wodnego roztworu białka przez ochłodzenie wodnego roztworu białka aż do oddzielenia się tłuszczu od fazy wodnej, a następnie rozdziela się tłuszcz od fazy wodnej, przed lub po etapie oddzielania wodnego roztworu białka od pozostałości mąki z nasion oleistych.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że tłuszcz rozdziela się od fazy wodnej za pomocą dekantacji, odwirowywania i/lub dokładnego sączenia.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wodny roztwór białka ochładza się do temperatury poniżej 15°C.
4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, że wodny roztwór białka ochładza się do temperatury 3° do 7°C.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przed etapem rozcieńczania zatężony odtłuszczony roztwór białka poddaje się dodatkowemu etapowi usuwania tłuszczu przez ochładzanie zatężonego odtłuszczonego roztworu białka aż do oddzielenia się tłuszczu od fazy wodnej, a następnie rozdziela się tłuszcz od fazy wodnej.
6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że tłuszcz rozdziela się za pomocą dekantacji, odwirowywania i/lub dokładnego sączenia.
7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że wodny roztwór białka ochładza się do temperatury poniżej 15°C.
8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że zatężony odtłuszczony roztwór białka ochładza się do temperatury 3° do 7°C.
9. Sposób według zastrz. 1, albo 5, znamienny tym, że stosuje się wodny roztwór soli klasy spożywczej o sile jonowej od 0,3 do 0,6.
10. Sposób według zastrz. 1 albo 5, znamienny tym, że etap ekstrakcji prowadzi się w ciągu 10 do 60 minut.
11. Sposób według zastrz. 1 albo 5, znamienny tym, że wodny roztwór soli klasy spożywczej ma pH 5,3 do 6,2.
12. Sposób według zastrz. 1 albo 5, znamienny tym, że doprowadza się stężenie w wodnym roztworze białka od 10 do 100 g/l.
13. Sposób według zastrz. 1 albo 5, znamienny tym, że odtłuszczony roztwór białka zatęża się przy zachowaniu jego siły jonowej przez użycie techniki selektywnej membrany.
14. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że odtłuszczony roztwór białka zatęża się o czynnik zmniejszenia objętości od 3,0 do 10.
15. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że zatężanie prowadzi się w temperaturze 20°C do 45°C.
16. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że etap rozcieńczania prowadzi się w temperaturze poniżej 25°C.
184 927
17. Sposób według zastrz. 16, znamienny tym, że etap rozcieńczania wykonuje się za pomocą wprowadzania zatężonego roztworu białka do ochłodzonej masy wody o temperaturze 3° do l5°C.
18. Sposób według zastrz. 16 albo 17, znamienny tym, że rozcieńczanie wykonuje się do uzyskania siły jonowej 0,06 do 0,12.
19. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że micelle białka osadza się za pomocą odwirowywania.
20. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako mąkę z nasion oleistych stosuje się mąkę z kanoli, rzepaku lub soi.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US08/594,909 US5844086A (en) | 1996-01-31 | 1996-01-31 | Oil seed protein extraction |
| PCT/CA1997/000057 WO1997027761A1 (en) | 1996-01-31 | 1997-01-29 | Oil seed protein extraction |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL328086A1 PL328086A1 (en) | 1999-01-04 |
| PL184927B1 true PL184927B1 (pl) | 2003-01-31 |
Family
ID=24380925
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL97328086A PL184927B1 (pl) | 1996-01-31 | 1997-01-29 | Sposób wytwarzania proszkowego izolatu białkowego |
Country Status (14)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US5844086A (pl) |
| EP (1) | EP0886476B1 (pl) |
| JP (1) | JP2977286B2 (pl) |
| CN (1) | CN1060024C (pl) |
| AT (1) | ATE188349T1 (pl) |
| AU (1) | AU706698B2 (pl) |
| CA (1) | CA2244398C (pl) |
| DE (1) | DE69701086T2 (pl) |
| DK (1) | DK0886476T3 (pl) |
| ES (1) | ES2142659T3 (pl) |
| GR (1) | GR3032970T3 (pl) |
| PL (1) | PL184927B1 (pl) |
| PT (1) | PT886476E (pl) |
| WO (1) | WO1997027761A1 (pl) |
Families Citing this family (130)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5844086A (en) * | 1996-01-31 | 1998-12-01 | Stilts Corporation | Oil seed protein extraction |
| US6415342B1 (en) * | 1999-07-27 | 2002-07-02 | Hewlett-Packard Company | Universal serial bus controlled connect and disconnect |
| US6845326B1 (en) | 1999-11-08 | 2005-01-18 | Ndsu Research Foundation | Optical sensor for analyzing a stream of an agricultural product to determine its constituents |
| US6624888B2 (en) | 2000-01-12 | 2003-09-23 | North Dakota State University | On-the-go sugar sensor for determining sugar content during harvesting |
| US6955831B2 (en) * | 2000-05-09 | 2005-10-18 | Her Majesty The Queen In Right Of Canada As Represented By The Minister Of Fisheries And Oceans | Protein and lipid sources for use in aquafeeds and animal feeds and a process for their preparation |
| BR0209314A (pt) * | 2001-05-04 | 2005-01-18 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Produção de isolado de proteìna de semente oleaginosa |
| US8741356B2 (en) * | 2001-05-04 | 2014-06-03 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of oil seed protein isolate |
| US7687087B2 (en) * | 2001-05-04 | 2010-03-30 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of oil seed protein isolate |
| NZ529510A (en) * | 2001-05-04 | 2005-09-30 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Canola protein isolate functionality I |
| EP1950305A1 (en) | 2001-05-09 | 2008-07-30 | Monsanto Technology, LLC | Tyr a genes and uses thereof |
| US6548102B2 (en) | 2001-05-25 | 2003-04-15 | Sunrich, Inc. | Reduced-fat soy compositions and preparative processes thereof |
| DE60237501D1 (de) * | 2001-06-20 | 2010-10-14 | Dainippon Printing Co Ltd | Batterieverpackungsmaterial |
| NZ530165A (en) * | 2001-07-18 | 2004-08-27 | Dsm Ip Assets B | Process for the hydrolysis of milk proteins |
| WO2003030655A1 (en) * | 2001-10-10 | 2003-04-17 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Animal feed composition |
| US20030109679A1 (en) * | 2001-10-10 | 2003-06-12 | Green Brent Everett | Flax protein isolate and production |
| US7001990B2 (en) * | 2001-10-23 | 2006-02-21 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Canola protein isolate functionality II |
| CA2467746C (en) * | 2001-11-20 | 2012-10-02 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Continuous process for production of oil seed protein isolate |
| CA2363451C (en) * | 2001-11-20 | 2005-05-10 | Mcn Bioproducts Inc. | Oilseed processing |
| BR0214946B1 (pt) * | 2001-12-13 | 2013-09-10 | processo de preparaÇço de um isolado de proteÍna de canola | |
| WO2003070018A2 (en) * | 2002-02-22 | 2003-08-28 | Nutri Pharma Asa | Food products comprising soy protein |
| AU2003206049A1 (en) * | 2002-02-23 | 2003-09-09 | Nutri Pharma Asa | Novel soy protein products |
| DE60329661D1 (de) * | 2002-03-12 | 2009-11-26 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Canolaproteinisolat funktionalität iii |
| BR0308614A (pt) | 2002-03-21 | 2005-02-09 | Monsanto Technology Llc | Construções de ácidos nucléicos e processos para a produção de composições oleosas de sementes alteradas |
| US7566813B2 (en) | 2002-03-21 | 2009-07-28 | Monsanto Technology, L.L.C. | Nucleic acid constructs and methods for producing altered seed oil compositions |
| JP4663989B2 (ja) * | 2002-04-15 | 2011-04-06 | バーコン ニュートラサイエンス (エムビー) コーポレイション | カノーラタンパク質単離物の組成物 |
| WO2003088759A1 (en) * | 2002-04-15 | 2003-10-30 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Flavour-enhanced food product |
| EP2216405A1 (en) | 2002-05-03 | 2010-08-11 | Monsanto Technology LLC | Speed specific USP promoters for expressing genes in plants |
| EP1519947A1 (de) * | 2002-06-12 | 2005-04-06 | Fraunhofer-Gesellschaft Zur Förderung Der Angewandten Forschung E.V. | Pflanzliche proteinpräparate und deren verwendung |
| EP1513415B1 (en) * | 2002-06-20 | 2009-05-06 | Burcon Nutrascience (MB) Corp. | Colour reduction in canola protein isolate |
| AU2003236760B2 (en) * | 2002-06-21 | 2009-01-22 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Protein extraction from canola oil seed meal |
| US7288768B2 (en) * | 2002-07-18 | 2007-10-30 | Purdue Research Foundation | Method for measuring the amount of an organic substance in a food product with infrared electromagnetic radiation |
| US7989017B2 (en) * | 2002-10-22 | 2011-08-02 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Canola protein isolate functionality II |
| US6998466B2 (en) | 2002-11-26 | 2006-02-14 | Nutrex Wellness, Inc. | Process for extracting flax protein concentrate from flax meal |
| US7078234B2 (en) | 2002-12-18 | 2006-07-18 | Monsanto Technology Llc | Maize embryo-specific promoter compositions and methods for use thereof |
| EP1613730A4 (en) | 2003-03-28 | 2007-12-05 | Monsanto Technology Llc | NEW PLANT PROMOTORS FOR USE IN THE EARLY SEED DEVELOPMENT PHASE |
| US7122216B2 (en) * | 2003-06-16 | 2006-10-17 | I.P. Holdings, L.L.C. | Vegetable oil extraction methods |
| WO2004112493A1 (en) * | 2003-06-20 | 2004-12-29 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Oil seed meal preparation |
| US7842330B2 (en) | 2003-08-01 | 2010-11-30 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Process for preparation of flax protein isolate |
| US8470385B2 (en) | 2004-01-20 | 2013-06-25 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Beverage having purified or isolate protein component |
| US8460741B2 (en) * | 2004-01-20 | 2013-06-11 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Process for the preparation of a canola protein isolate |
| ZA200606733B (en) * | 2004-01-20 | 2007-12-27 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Novel canola protein isolat |
| KR101199965B1 (ko) * | 2004-02-17 | 2012-11-12 | 버콘 뉴트라사이언스 (엠비) 코포레이션 | 카놀라 단백질 분리물의 제조 및 수중생물배양에의 용도 |
| CN1988811B (zh) * | 2004-05-07 | 2011-11-16 | 伯康营养科学(Mb)公司 | 用于减少肌醇六磷酸的蛋白质分离方法 |
| WO2005107492A1 (en) | 2004-05-07 | 2005-11-17 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Protein isolation procedures for reducing phytic acid |
| US7105732B1 (en) * | 2005-03-24 | 2006-09-12 | Wu-Hong Hsieh | Musical instrument stand with a self-locking neck lock assembly |
| AR053269A1 (es) | 2005-05-16 | 2007-04-25 | Monsanto Technology Llc | Plantas y semillas de maiz con mejoramiento de asparagina y proteina |
| AU2011218665B2 (en) * | 2005-07-01 | 2012-11-08 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of canola protein |
| KR101321360B1 (ko) * | 2005-07-01 | 2013-10-28 | 버콘 뉴트라사이언스 (엠비) 코포레이션 | 카놀라 단백질의 생산 |
| AU2011218663B2 (en) * | 2005-07-01 | 2013-06-13 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of canola protein |
| WO2007033481A1 (en) * | 2005-09-21 | 2007-03-29 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Preparation of canola protein isolate involving isoelectric precipitation |
| ATE542912T1 (de) | 2005-10-03 | 2012-02-15 | Monsanto Technology Llc | Transgene pflanzensamen mit erhöhtem lysin |
| BRPI0617352A2 (pt) * | 2005-10-14 | 2011-07-26 | Archer Daniels Midland Co | composiÇÕes fertilizantes e mÉtodos de uso |
| US7868228B2 (en) | 2006-01-31 | 2011-01-11 | Monsanto Technology Llc | Phosphopantetheinyl transferases from bacteria |
| EP1991047B1 (en) | 2006-03-01 | 2012-09-26 | Pioneer Hi-Bred International Inc. | Compositions related to the quantitative trait locus 6 (qtl6) in maize and methods of use |
| US20070207254A1 (en) * | 2006-03-03 | 2007-09-06 | Specialty Protein Producers, Inc. | Methods of separating fat from soy materials and compositions produced therefrom |
| US20070207244A1 (en) * | 2006-03-03 | 2007-09-06 | Specialty Protein Producers, Inc. | Methods of separating fat from non-soy plant materials and compositions produced therefrom |
| BR122018075948B1 (pt) | 2006-03-10 | 2023-05-16 | Monsanto Technology Llc | Métodos de produzir uma planta de soja com teor de ácidos graxos de semente alterados |
| US7908414B2 (en) * | 2006-04-25 | 2011-03-15 | Lexmark International, Inc. | Detecting by USB client device a connection to host USB device wherein power is not supply from host USB device to USB client device |
| KR20090021368A (ko) * | 2006-06-30 | 2009-03-03 | 프라운호퍼 게젤샤프트 쭈르 푀르데룽 데어 안겐반텐 포르슝 에. 베. | 고농축 식물 단백질 제제 및 이를 제조하기 위한 방법 |
| EP2041275B1 (en) | 2006-07-19 | 2011-05-04 | Monsanto Technology, LLC | Fatty acid desaturases from tetraselmis suecica |
| US7764145B2 (en) * | 2006-11-30 | 2010-07-27 | Nihon Dempa Kogyo Co., Ltd. | Piezoelectric resonator, method of manufacturing the same and electronic part using the same |
| US20080269053A1 (en) * | 2007-04-26 | 2008-10-30 | Less John F | Amino Acid Compositions and Methods of Using as Fertilizer |
| US8557963B2 (en) | 2007-06-01 | 2013-10-15 | Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of Agriculture And Agri-Food | Process of aqueous protein extraction from Brassicaceae oilseeds |
| CA2724391C (en) * | 2008-05-16 | 2017-10-31 | Bioexx Specialty Proteins Ltd. | Oilseed protein concentrates and isolates, and processes for the production thereof |
| US8821955B2 (en) | 2008-05-16 | 2014-09-02 | Siebte Pmi Verwaltungs Gmbh | Protein concentrates and isolates, and processes for the production thereof |
| US8623445B2 (en) | 2008-05-16 | 2014-01-07 | Bio-Extraction Inc. | Protein concentrates and isolates, and processes for the production thereof |
| US20100036099A1 (en) | 2008-07-11 | 2010-02-11 | Martin Schweizer | Soluble canola protein isolate production ("nutratein") |
| EP2826382B1 (en) * | 2008-07-11 | 2017-05-10 | Burcon Nutrascience (MB) Corp. | Soluble canola protein isolate production |
| CN102202518B (zh) * | 2008-08-18 | 2017-08-08 | 伯康营养科学(Mb)公司 | 无需热处理生产油菜蛋白分离物 |
| NZ591789A (en) * | 2008-08-18 | 2012-11-30 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Preparation of canola protein isolate from canola oil seeds ("blendertein") |
| NZ591364A (en) * | 2008-08-19 | 2013-03-28 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Soluble canola protein isolate production from protein micellar mass |
| DE102008044814B4 (de) * | 2008-08-28 | 2016-11-24 | Emsland-Stärke GmbH | Verfahren zur Gewinnung von Leguminosenprotein und Verwendung desselben |
| CN101363783B (zh) * | 2008-09-10 | 2010-12-15 | 东北农业大学 | 乳浊液预处理澄清剂及其制备方法 |
| CH699553A1 (de) * | 2008-09-16 | 2010-03-31 | Resag Renewable En Switzerland | Verfahren zur Verwertung von Ölpflanzen. |
| EP2337460A1 (en) * | 2008-09-17 | 2011-06-29 | Burcon Nutrascience (MB) Corp. | Emulsified foods |
| CN102186876B (zh) | 2008-10-14 | 2014-06-11 | 孟山都技术公司 | 来自半片藻属的脂肪酸脱饱和酶的利用 |
| US8563071B2 (en) * | 2008-10-21 | 2013-10-22 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of soluble protein solutions from soy (“S701” CIP) |
| MX2011004373A (es) * | 2008-10-21 | 2011-11-04 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Produccion de soluciones de proteina soluble a partir de soya ("s701"). |
| EP2362723A1 (en) * | 2008-11-04 | 2011-09-07 | Dow Agrosciences LLC | Omega-9 quality brassica juncea |
| NZ594806A (en) * | 2009-01-26 | 2012-12-21 | Burcon Nutrascience Mb Corp | PRODUCTION OF SOLUBLE SOY PROTEIN PRODUCT FROM SOY PROTEIN MICELLAR MASS ("S200Ca") |
| EP2395855A4 (en) * | 2009-02-11 | 2014-08-13 | Burcon Nutrascience Mb Corp | PREPARATION OF A SOY PROTEIN PRODUCT BY WATER EXTRACTION (S803) |
| JP6154097B2 (ja) * | 2009-02-11 | 2017-06-28 | バーコン ニュートラサイエンス (エムビー) コーポレイションBurcon Nutrascience (Mb) Corp. | 塩化カルシウム抽出を使用した大豆タンパク質製品(「s702/s7300/s7200/s7301」)の製造 |
| AU2010246845B2 (en) | 2009-05-14 | 2014-05-08 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of canola protein product without heat treatment ("C200CaC") |
| US9155323B2 (en) | 2009-05-15 | 2015-10-13 | Siebte Pmi Verwaltungs Gmbh | Aqueous process for preparing protein isolate and hydrolyzed protein from an oilseed |
| EP2912952B1 (en) | 2009-06-30 | 2017-11-08 | Burcon Nutrascience (MB) Corp. | Production of acid soluble soy protein isolates ("s800") |
| US9700066B2 (en) | 2009-06-30 | 2017-07-11 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Preparation of soy protein isolate using calcium chloride extraction (“S703 cip”) |
| US8389040B2 (en) * | 2009-06-30 | 2013-03-05 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of acid soluble soy protein isolates (“S700”) |
| KR101828360B1 (ko) * | 2009-06-30 | 2018-02-12 | 버콘 뉴트라사이언스 (엠비) 코포레이션 | 염화칼슘 추출을 사용한 콩 단백질 분리물의 제조방법 및 그 제품(“s703”) |
| US8404299B2 (en) | 2009-06-30 | 2013-03-26 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Preparation of soy protein isolate using calcium chloride extraction (“S703 CIP”) |
| US8936824B2 (en) | 2009-06-30 | 2015-01-20 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of acid soluble soy protein isolates (“S700”) |
| CA2801536C (en) | 2009-11-11 | 2018-10-23 | Siebte Pmi Verwaltungs Gmbh | Protein concentrates and isolates, and processes for the production thereof from macroalgae and/or microalgae |
| EP2498619B1 (en) * | 2009-11-11 | 2017-06-14 | Siebte PMI Verwaltungs GmbH | Protein concentrates and isolates, and processes for the production thereof from toasted oilseed meal |
| ES2830153T3 (es) | 2009-12-22 | 2021-06-03 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Aislado de proteína de soja con pH ajustado y sus usos |
| US8404884B2 (en) * | 2010-03-26 | 2013-03-26 | University Of Saskatchewan | Process for the extraction of macromolecules from a biomass using thin stillage |
| US10506821B2 (en) | 2010-05-07 | 2019-12-17 | Burcon Mutrascience (Mb) Corp. | Production of soluble protein solutions from pulses |
| JP5077461B2 (ja) | 2010-06-07 | 2012-11-21 | 不二製油株式会社 | 減脂豆乳及び大豆乳化組成物、並びにそれらの製造法 |
| EP2605666B1 (en) | 2010-08-18 | 2022-02-16 | Burcon Nutrascience (MB) Corp. | Improved production of protein solutions from soy |
| WO2012079161A1 (en) | 2010-12-16 | 2012-06-21 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Soy protein products of improved water-binding capacity |
| CN102221527A (zh) * | 2011-03-17 | 2011-10-19 | 河南农业大学 | 一种乳澄清剂的制备方法及其应用 |
| US20130331551A1 (en) * | 2011-03-22 | 2013-12-12 | Kevin I. Segall | Preparation of canola protein isolate from canola oil seeds ("blendertein") |
| KR20140030248A (ko) | 2011-05-19 | 2014-03-11 | 버콘 뉴트라사이언스 (엠비) 코포레이션 | 용해가능한 콩단백질 제품(“s704”)의 제조방법 |
| KR101576797B1 (ko) | 2011-06-07 | 2015-12-11 | 후지세유 그룹 혼샤 가부시키가이샤 | 신규의 대두 유화조성물의 대두 유래 원료 함유 음식물에 대한 용도 |
| CN103596442B (zh) | 2011-06-07 | 2016-06-08 | 不二制油株式会社 | 降脂大豆蛋白材料在含有来自大豆原料的饮食品中的新用途 |
| WO2013000066A1 (en) * | 2011-06-29 | 2013-01-03 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Canola protein product with low phytic acid content ("c702") |
| BR112015001964A2 (pt) | 2012-08-02 | 2019-12-17 | Burcon Nutrascience Mb Corp | Produção de produtos de proteína de cânhamo solúvel ("h701") |
| US20150233797A1 (en) * | 2012-08-28 | 2015-08-20 | Florida State University Research Foundation | Simplified extraction methods for the rapid determination of species content of adipose tissue based on the detection of tni in immunoassays |
| US20180002374A1 (en) * | 2013-03-14 | 2018-01-04 | Green Recovery Technologies, LLC | Non-Denatured Proteins Derived From a Biomass Source |
| JP2016512702A (ja) | 2013-03-18 | 2016-05-09 | ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. | 油料種子からタンパク質を抽出するための方法 |
| US9635875B2 (en) | 2013-05-30 | 2017-05-02 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Production of pulse protein products with reduced astringency |
| US9809619B2 (en) * | 2014-01-14 | 2017-11-07 | Pulse Holdings, LLC | Pulse combustion drying of proteins |
| TW202222169A (zh) | 2014-07-28 | 2022-06-16 | 加拿大商柏康營養科學公司 | 豆類蛋白質產品(「yp810」)的製備 |
| US10433571B2 (en) | 2014-08-27 | 2019-10-08 | Burcon Nutrascience (Mb) Corp. | Preparation of soy protein products (“S810”) |
| CN107072243A (zh) * | 2014-09-18 | 2017-08-18 | 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 | 生产含油种子蛋白质混合物的方法 |
| ES2781115T3 (es) | 2014-12-11 | 2020-08-28 | Napiferyn Biotech Sp Z O O | Proceso y dispositivo para fraccionamiento suave de aislados funcionales derivados de granos y semillas oleaginosas |
| CN104938765B (zh) * | 2015-07-17 | 2018-07-17 | 东北农业大学 | 一种高稳定性大豆蛋白乳液的制备方法 |
| WO2017102535A1 (en) | 2015-12-17 | 2017-06-22 | Dsm Ip Assets B.V. | Rapeseed protein isolate, food comprising the isolate and use as foaming or emulsifying agent |
| WO2017134601A1 (en) | 2016-02-02 | 2017-08-10 | Cellectis | Modifying soybean oil composition through targeted knockout of the fad3a/b/c genes |
| CN105925368B (zh) * | 2016-06-13 | 2019-08-30 | 油谷生物科技南京有限公司 | 一种通过水法破乳核桃油体制备核桃油的方法 |
| WO2018007493A1 (en) | 2016-07-07 | 2018-01-11 | Dsm Ip Assets B.V. | Rapeseed protein isolate, food comprising the isolate and use as foaming or emulsifying agent |
| CN109788777B (zh) | 2016-07-07 | 2023-04-04 | 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 | 包含油菜籽蛋白质分离物的乳剂 |
| WO2018007492A1 (en) | 2016-07-07 | 2018-01-11 | Dsm Ip Assets B.V. | Process for obtaining a rapeseed protein isolate and protein isolate thereby obtained |
| US11856968B2 (en) * | 2017-03-28 | 2024-01-02 | Max Dietz | Method for economical removal/fractionation of constituents of vegetal starting materials |
| RU2019144058A (ru) * | 2017-07-10 | 2021-08-10 | Напиферин Биотек Сп. Зо.О | Способ выделения белка из растительного материала |
| US20210212351A1 (en) * | 2017-12-05 | 2021-07-15 | Dsm Ip Assets B.V. | Sweet rapeseed protein isolate |
| WO2019110555A1 (en) * | 2017-12-05 | 2019-06-13 | Dsm Ip Assets B.V. | Decolored rapeseed protein isolate |
| US20230000100A1 (en) * | 2021-07-02 | 2023-01-05 | Climax Foods Inc. | Food products from plant protein isolates |
| EP4408195A1 (en) * | 2021-09-30 | 2024-08-07 | DSM IP Assets B.V. | Rapeseed protein isolate |
| DE102021128016A1 (de) | 2021-10-27 | 2023-04-27 | Brökelmann & Co. Ölmühle GmbH & Co. | Verfahren zur Gewinnung von Proteinen aus Rapspresskuchen |
| EP4521949A1 (en) | 2022-05-11 | 2025-03-19 | Aarhus Universitet | Processing of whole oilseeds for manufacturing protein concentrates |
| EP4539688A4 (en) | 2022-06-16 | 2026-03-25 | Climax Foods Inc | STRUCTURED PROTEIN ISOLATES AND ASSOCIATED PROCESSES |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4285862A (en) * | 1976-09-30 | 1981-08-25 | General Foods, Limited | Protein isolate product |
| JPS54122743A (en) * | 1978-03-10 | 1979-09-22 | Takara Shuzo Co | Production of vegetable protein |
| CA1099576A (en) * | 1978-03-23 | 1981-04-21 | Chester D. Myers | Improved process for isolation of proteins |
| JPS5525815A (en) * | 1978-08-09 | 1980-02-23 | Mitsubishi Electric Corp | Record player |
| US4366097A (en) * | 1981-03-16 | 1982-12-28 | General Foods, Inc. | Novel protein isolation procedure |
| US4889921A (en) * | 1987-04-29 | 1989-12-26 | The University Of Toronto Innovations Foundation | Production of rapeseed protein materials |
| US5844086A (en) * | 1996-01-31 | 1998-12-01 | Stilts Corporation | Oil seed protein extraction |
-
1996
- 1996-01-31 US US08/594,909 patent/US5844086A/en not_active Expired - Lifetime
-
1997
- 1997-01-29 US US08/930,389 patent/US6005076A/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-01-29 PT PT97900909T patent/PT886476E/pt unknown
- 1997-01-29 DE DE69701086T patent/DE69701086T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1997-01-29 CA CA002244398A patent/CA2244398C/en not_active Expired - Fee Related
- 1997-01-29 AU AU14341/97A patent/AU706698B2/en not_active Ceased
- 1997-01-29 ES ES97900909T patent/ES2142659T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1997-01-29 AT AT97900909T patent/ATE188349T1/de active
- 1997-01-29 DK DK97900909T patent/DK0886476T3/da active
- 1997-01-29 EP EP97900909A patent/EP0886476B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-01-29 PL PL97328086A patent/PL184927B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1997-01-29 CN CN97193452A patent/CN1060024C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1997-01-29 JP JP9527197A patent/JP2977286B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1997-01-29 WO PCT/CA1997/000057 patent/WO1997027761A1/en not_active Ceased
-
2000
- 2000-03-16 GR GR20000400670T patent/GR3032970T3/el unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| HK1019543A1 (en) | 2000-02-18 |
| CN1214614A (zh) | 1999-04-21 |
| WO1997027761A1 (en) | 1997-08-07 |
| EP0886476B1 (en) | 2000-01-05 |
| US5844086A (en) | 1998-12-01 |
| GR3032970T3 (en) | 2000-07-31 |
| JP2977286B2 (ja) | 1999-11-15 |
| CA2244398C (en) | 2002-09-03 |
| ATE188349T1 (de) | 2000-01-15 |
| ES2142659T3 (es) | 2000-04-16 |
| DK0886476T3 (da) | 2000-12-04 |
| DE69701086D1 (de) | 2000-02-10 |
| EP0886476A1 (en) | 1998-12-30 |
| JPH11506619A (ja) | 1999-06-15 |
| PL328086A1 (en) | 1999-01-04 |
| DE69701086T2 (de) | 2000-07-13 |
| CN1060024C (zh) | 2001-01-03 |
| CA2244398A1 (en) | 1997-08-07 |
| AU706698B2 (en) | 1999-06-24 |
| AU1434197A (en) | 1997-08-22 |
| PT886476E (pt) | 2000-06-30 |
| US6005076A (en) | 1999-12-21 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL184927B1 (pl) | Sposób wytwarzania proszkowego izolatu białkowego | |
| US7087720B2 (en) | Enhanced oil seed protein recovery | |
| JP4383345B2 (ja) | カノーラ油料種子粕からのタンパク質の抽出 | |
| JP4406286B2 (ja) | 油料種子蛋白質単離物の連続製造方法 | |
| JP4263097B2 (ja) | 亜麻タンパク質単離物および製造 | |
| JP4330627B2 (ja) | 亜麻タンパク質単離物の調製方法 | |
| HK1077711B (en) | Enhanced oil seed protein recovery | |
| HK1083726B (en) | Protein extraction from canola oil seed meal | |
| ZA200410097B (en) | Protein extraction from canola oil seed meal |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20140129 |