PL184497B1 - Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej - Google Patents

Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej

Info

Publication number
PL184497B1
PL184497B1 PL97333901A PL33390197A PL184497B1 PL 184497 B1 PL184497 B1 PL 184497B1 PL 97333901 A PL97333901 A PL 97333901A PL 33390197 A PL33390197 A PL 33390197A PL 184497 B1 PL184497 B1 PL 184497B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
submucosal tissue
cylinder
tissue
edge
stylet
Prior art date
Application number
PL97333901A
Other languages
English (en)
Inventor
Hiles@Michael@C
Patel@Umesh@H
Geddes@Leslie@A
Badylak@Stephen@F
Original Assignee
Purdue Research Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Purdue Research Foundation filed Critical Purdue Research Foundation
Publication of PL184497B1 publication Critical patent/PL184497B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02Prostheses implantable into the body
    • A61F2/04Hollow or tubular parts of organs, e.g. bladders, tracheae, bronchi or bile ducts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02Prostheses implantable into the body
    • A61F2/04Hollow or tubular parts of organs, e.g. bladders, tracheae, bronchi or bile ducts
    • A61F2/06Blood vessels
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14Macromolecular materials
    • A61L27/22Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/24Collagen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/3629Intestinal tissue, e.g. small intestinal submucosa
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3683Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment
    • A61L27/3687Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment characterised by the use of chemical agents in the treatment, e.g. specific enzymes, detergents, capping agents, crosslinkers, anticalcification agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2310/00Prostheses classified in A61F2/28 or A61F2/30 - A61F2/44 being constructed from or coated with a particular material
    • A61F2310/00005The prosthesis being constructed from a particular material
    • A61F2310/00365Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Graft Or Block Polymers (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Cylindryczna proteza z tkanki podslu-zówkowej, znamienna tym, ze zawiera pierw- szy plat (60) tkanki podsluzówkowej, uformo- wany w ksztalt cylindra tkanki podsluzówko wej i zaopatrzony w pierwszy brzeg (64) i przeciwny drugi brzeg (65), przy czym prze- ciwny drugi brzeg (65) pierwszego plata (60) jest wysuniety nad pierwszym brzegiem (64) pierwszego plata (60), tworzac wielowarstwo- wy obszar nakladania (62) tkanki podsluzów kowej na siebie z zakladka, zas warstwy tkanki podsluzówkowej w obszarze nakladania (62) sa do siebie wzajemnie przytwierdzone, i drugi plat (70) tkanki podsluzówkowej, zaopatrzony w pierwszy brzeg (74) i przeciwny drugi brzeg (76), przy czym drugi plat (70) przylega do cylindra tkanki podsluzówkowej, i pierwszy brzeg (74) i przeciwny drugi brzeg (76) drugie- go plata (70) sa zeszyte razem wzdluz cylindra tkanki podsluzówkowej bez powodowania per- foracji lezacego pod spodem cylindra tkanki podsluzówkowej. F I G . 1 PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem niniejszego wynalazku jest cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej.
Zastosowanie protez tkankowych obejmuje wszczepy tętnicze i żylne, protezy moczowodu i cewki moczowej i protezy innych przewodów oraz przetoki.
Badacze w dziedzinie chirurgii od wielu lat pracują nad opracowaniem nowych technik i materiałów do zastosowania jako wszczepy, służące do zastąpienia lub naprawy uszkodzonych lub objętych chorobą, struktur tkankowych, zwłaszcza kości i tkanki łącznej, na przykład więzadeł i ścięgien, i do przyśpieszenia gojenia się złamań. Obecnie na przykład ortopedzi często stosują więzadło rzepki pochodzenia autogennego lub allogennego do zastąpienia zerwanego więzadła krzyżowego. Znane są chirurgiczne sposoby przeprowadzenia takiego zabiegu. Ponadto wśród chirurgów upowszechniło się zastosowanie wszczepialnych protez, wykonanych z materiałów plastykowych, metalowych lub ceramicznych, do odtwarzania lub zastępowania struktur fizjologicznych. Jednakże, mimo ich szerokiego zastosowania, dostępne obecnie protezy wszczepiane chirurgicznie niosą za sobą istotne ryzyko dla pacjenta. Chirurdzy potrzebują zatem nieimmunogennego materiału do wszczepów o dużej wytrzymałości na rozciąganie do zastosowania do chirurgicznej naprawy kości, ścięgien, więzadeł i innych funkcjonalnych struktur tkankowych.
Ostatnio przeprowadzono szereg badań nad opracowaniem tkanek biologicznych do zastosowania jako wszczepy i do naprawy uszkodzonych lub objętych chorobą tkanek, ponieważ materiały plastykowe i polimerowe wyk^i^y^i w tych medycznych zastosowaniach istotne wady. Jakkolwiek materiały plastykowe i polimerowe wykazują pewne korzystne właściwości mechaniczne (na przykład wytrzymałość na rozciąganie), stwierdzono, że materiały plastykowe ulegają zakażeniu; ponadto opisywano, że przy zastosowaniu materiałów plastykowych do naczyń krwionośnych dochodzi do powstania zakrzepicy.
Ostatnio szeroko stosuje się protezy cylindryczne wytworzone z tkanek naturalnych do chirurgicznej naprawy i zastępowania objętych chorobą, lub uszkodzonych naczyń krwionośnych u ludzi. Protezy z tkanek naturalnych dzielą się na trzy główne klasy: autogenne, homologiczne i heterologiczne. Protezy tkankowe z materiału autogennego wytwarza się z tkanek pobranych od samego pacjenta (na przykład, przeszczepy z żyły odpiszczelowej). Zastosowanie takich protez wyklucza możliwość odrzucenia wszczepionej protezy, wymaga jednak szerszej i bardziej czasochłonnej interwencji chirurgicznej, co powoduje zwiększenie zagrożenia pacjenta. Homologiczne protezy z tkanek naturalnych wytwarza się z tkanek pobranych od innego człowieka, natomiast heterologiczne protezy z tkanek naturalnych wytwarza się z tkanek pobranych od zwierząt. Zastosowanie homologicznych i heterologicznych naczyń pępowinowych jako na przykład protez naczyniowych i moczowodowych opisano w patentach Stanów Zjednoczonych nr 3894530; 3974526 i 3988782.
Ponadto opisano autogenne protezy naczyniowe, wytworzone z płatów tkanki osierdzia - Yoshio Sako, Prevention of Dilation in Autogenous Venous and Pericardial Grafts in the Thoracic Aorta, Surgery 30, str. 148 - 160 (1951) i Robert G. Allen i Francis H. Cole, Jr., „Modified Blalock Shunts Utilizing Pericardial Tube Grafts, Jour. Pediatr. Surg. 12(3), str. 287 - 294 (1977). Opisano również heterologiczne protezy naczyniowe wytwarzane z płatów świńskiej tkanki osierdzia - Ornvold K. i wsp., „Structural Changes of Stabilized Porcine Pericardium after Experimental and Clinical Implantation, w: Proc. Eur. Soc. For Artif. Organs, t. VI, Genewa, Szwajcaria (1979).
Cechami niezbędnymi dla cylindrycznej protezy naczyniowej są: zgodność biologiczna, odpowiednia wytrzymałość, oporność na zakażenie, oporność na rozpad biologiczny, brak
184 497 zdolności do wywoływania zakrzepicy i tworzenia tętniaków. W rozumieniu niniejszego opisu, pojęcie „zgodności bilogicznej oznacza, że proteza jest nietoksyczna w środowisku jej zamierzonego zastosowania in vivo i nie ulega odrzuceniu przez układ fizjologiczny pacjenta (to znaczy nie ma właściwości antygenowych). Ponadto korzystne jest, aby możliwe było wytwarzanie protezy w umiarkowanej cenie, w dużym wyborze długości, średnicy i kształtu (na przykład prosta, zakrzywiona, rozwidlona), tak aby łatwo można ją było połączyć ze strukturami organizmu pacjenta i z innymi protezami cylindrycznymi tego samego lub innego rodzaju, i aby wykazywała stabilność rozmiarów przy jej zastosowaniu.
Jak to opisano w patencie Stanów Zjednoczonych nr 4902508, uprzednio już opisywano i stosowano do zastępowania uszkodzonych lub objętych chorobą tkanek naczyniowych wszczepy zawierające jelitową tkankę podśluzówkową. Protezy naczyniowe wytwarzano poprzez wprowadzenie szklanego prętu o odpowiedniej średnicy do światła tkanki pośluzówkowej i ręczne wykonanie szwu w tkance podśluzówkowej. Wszczepy naczyniowe z tkanki podśluzówkowej wytwarza się w warunkach jałowych w czasie zabiegu operacyjnego; wytworzenie takiego wszczepu zajmuje chirurgowi około pół godziny. Tak więc, dla zaoszczędzenia czasu, poświęcanego na wytwarzanie protezy w czasie zabiegu operacyjnego, korzystne byłyby gotowe wyjałowione protezy o różnej średnicy.
Wytworzenie cylindrycznej protezy o odpowiedniej długości i kształcie ułatwia wszczepienie i zwiększa funkcjonalność wszczepu. Na przykład, proteza cylindryczna za długa do zamierzonego zastosowania może załamać się po wszczepieniu, natomiast wszczepienie zbyt krótkiej protezy powoduje działanie zbyt dużych sił rozciągających na szwy na jej końcach i uraz w miejscu połączenia wszczepu z tkankami własnymi pacjenta. Tak więc bardzo korzystne byłoby wytwarzanie wyrobu protez cylindrycznych o różnej średnicy, które możnaby przycinać poprzecznie do odpowiedniej długości w dowolnym miejscu między końcami protezy, bez powodowania innego uszkodzenia protezy.
Tkankę podśluzówkową można wytwarzać z rozmaitych tkanek pobranych od zwierząt hodowanych na mięso, na przykład od świń, bydła i owiec, lub od innych kręgowców stałocieplnych. Bardziej szczegółowo, tkankę podśluzówkową izoluje się z rozmaitych źródeł tkankowych, takich jak przewód pokarmowy, układ oddechowy, jelita, drogi moczowe lub narządy rozrodcze kręgowców stałocieplnych. Ogólnie, tkankę podśluzówkową wytwarza się z tych źródeł tkankowych poprzez oddzielenie tkanki podśluzówkowej od warstwy mięśni gładkich i od warstwy śluzówki. Wytwarzanie podśluzówkowej tkanki jelitowej opisano i zastrzeżono w patencie Stanów Zjednoczonych nr 4902508. Tkankę podśluzówkową pęcherza moczowego i jej wytwarzanie opisano w patencie Stanów Zjednoczonych nr 5554389. Wytwarzano również tkankę podśluzówkową z żołądka, z zastosowaniem podobnych sposobów obróbki tkanek. Takie sposoby opisano w zgłoszeniu patentowym Stanów Zjednoczonych nr 60/032683 pod tytułem „Stomach Submucosal Derived Tissue Graft” („Przeszczep tkankowy pochodzący z tkanki podśluzówkowej żołądka”), złożonym 10 grudnia 1996. Pokrótce, tkankę podśluzówkową żołądka wytwarza się z odcinka żołądka sposobem podobnym do wytwarzania jelitowej tkanki podśluzówkowej. Odcinek tkanki żołądka poddaje się najpierw ścieraniu podłużnym ruchem ścierającym dla usunięcia warstw zewnętrznych (zwłaszcza warstwy mięśni gładkich) i części warstwy błony śluzowej, znajdującej się od strony światła naczynia. Wytworzona tkanka podśluzówkową ma grubość około 100-200 mikrometrów i składa się głównie (ponad 98%) z bezkomórkowego, barwiącego się kwasochłonnie (w barwieniu hematoksylmąi eozyną) pozakomórkowego materiału macierzowego.
Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że zawiera pierwszy płat tkanki podśluzówkowej uformowany w kształt cylindra tkanki podśluzówkowej i zaopatrzony w pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, przy czym przeciwny drugi brzeg pierwszego płata jest wysunięty nad pierwszym brzegiem pierwszego płata, tworząc wielowarstwowy obszar nakładania tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, zaś warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania są do siebie wzajemnie przytwierdzone, i płat drugi tkanki podśluzówkowej, zaopatrzony w pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, przy czym drugi płat przylega do cylindra tkanki podśluzówkowej, i pierwszy brzeg i drugi przeciwny brzeg drugiego płata są zeszyte razem wzdłuż cylindra tkanki podśluzów184 497 kowej bez powodowania perforacji leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej.
Pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej są do siebie równoległe.
Cylinder tkanki podśluzówkowej zawiera dwie warstwy tkanki podśluzówkowej, a wielowarstwowy obszar nakładania zawiera trzy warstwy tkanki podśluzówkowej.
Wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie za pomocą środka usieciowującego.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
Środek usieciowujący stanowi aldehyd glutarowy.
Wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie szwami, a obszar nakładania jest przesunięty w stosunku do szwów wytworzonych w drugim płacie tkanki podśluzówkowej.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
Tkanka podśluzówkowa zawiera jelitową tkankę podśluzówkową, oddzieloną od leżącej w kierunku światła (abluminalnie) warstwy mięśniowej i co najmniej od części luminalnej błony mięśniowej kręgowca stałocieplnego.
Powierzchnia abluminalna cylindra tkanki podśluzówkowej znajduje się na zewnątrz cylindra.
Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że zawiera pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, uformowany w kształt cylindra tkanki podśluzówkowej i zaopatrzony w pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, przy czym przeciwny drugi brzeg pierwszego płata jest wysunięty nad pierwszym brzegiem pierwszego płata, tworząc wielowarstwowy obszar nakładania tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, zaś warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania są do siebie wzajemnie przytwierdzone, i drugi płat tkanki podśluzówkowej, zaopatrzony w pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, przy czym drugi płat przylega do cylindra tkanki podśluzówkowej, i przeciwny drugi brzeg drugiego płata jest wysunięty nad pierwszym brzegiem drugiego płata i jest przyszyty do drugiego płata tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej.
Pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej są do siebie równoległe.
Wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie środkiem usieciowującym.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
Środek usieciowujący stanowi aldehyd glutarowy.
Wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie szwami, a obszar nakładania jest przesunięty w stosunku do szwów wytworzonych w drugim płacie tkanki podśluzówkowej.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
Tkanka podśluzówkowa zawiera jelitową tkankę podśluzówkową, oddzieloną od leżącej w kierunku światła (abluminalnie) warstwy mięśniowej i co najmniej od części luminalnej błony mięśniowej kręgowca stałocieplnego.
Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, po czym na ten mandryn nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający brzeg pierwszy i przeciwny drugi brzeg, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej, następnie przytwierdza się warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania się wzajemnie do siebie, i nakłada się drugi płat tkanki podśluzówko8
184 497 wej, posiadający brzeg pierwszy i przeciwny drugi brzeg, na cylinder tkanki podśluzówkowej, po czym zezzywa się przeciwny drugi brzeg drugiego płata tkanki podśluzówkowej z nałożonym drugim płatem tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, i cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu, w warunkach odwodnienia.
Przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, a po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
Pierwszy i drugi przeciwne brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej zszywa się razem wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej.
Przeciwny drugi brzeg drugiego płata rozciąga się nad pierwszym brzegiem drugiego płata tkanki podśluzówkowej i ten przeciwny drugi brzeg drugiego płata zszywa się wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej.
Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na mandryn, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, styka się cylinder tkanki podśluzówkowej z roztworem zawierającym środek usieciowujący, nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na cylinder tkanki podśluzówkowej, zszzywa się razem pierwszy i drugi przeciwne do siebie brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, i poddaje się kompresji cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
Przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, przy czym po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
Po zetknięciu cylindra tkanki podśluzówkowej z środkiem usieciowującym, a przed nałożeniem drugiego płata tkanki podśluzówkowej na cylinder tkanki podśluzówkowej, cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
Stosuje się roztwór usieciowujący zawierający od około 0,1 do około 1,0% aldehydu glutarowego.
Stosuje się mandryn w postaci wydrążonego porowatego cylindra, pustego w środku, zaś kompresję tkanki biologicznej przeprowadza się poprzez podłączenie podciśnienia do światła mandrynu.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej ogrzewa się w czasie kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej.
Kompresję cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej przeprowadza się w komorze kompresyjnej.
Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, po czym nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na materiał przepuszczalny dla wody, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten drugi przeciwny brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej, następnie cylinder tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając go do mandrynu w warunkach odwodnienia i zszywa się razem warstwy
184 497 obszaru nakładania, po czym na cylinder tkanki podśluzówkowej nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg boczny i przeciwny drugi brzeg i zezywa się pierwszy i drugi przeciwne brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, a następnie cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
Przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, przy czym po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
Stosuje się mandryn w postaci wydrążonego porowatego cylindra, pustego w środku, zaś kompresję tkanki biologicznej przeprowadza się poprzez podłączenie podciśnienia do światła mandrynu.
Cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej ogrzewa się w czasie kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej.
Etap kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej przeprowadza się w komorze kompresyjnej.
Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, według wynalazku charakteryzuje się tym, że na mandryn nakłada się płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszą część brzeżną i drugą część brzeżną, przy czym pierwsza i druga część brzeżna płata tkanki podśluzówkowej nakładają się, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, następnie styka się nakładające się części brzeżne pierwszą i drugą ze środkiem usieciowującym, i poddaje się kompresji te nakładające się części brzeżne pierwszą i drugą w warunkach odwodnienia.
Nakładające się części pierwszą i drugą poddaje się kompresji próżniowej.
Jako środek usieciowujący stosuje się aldehyd glutarowy.
Przedmiotem mniejszego wynalazku jest więc wszczepialna proteza cylindryczna, zawierająca tkankę podśluzówkową, wytwarzana w kształcie cylindra.
Tkanka podśluzówkową, wytwarzana według niniee szego wynalazku, stanowi zgodny biologicznie, nie powodujący powstawania zakrzepicy, materiał do wszczepów, pobudzający naprawę uprzednio uszkodzonych lub objętych chorobą tkanek gospodarza. W licznych badaniach wykazano, że tkanka podśluzówkową kręgowców stałocieplnych jest zdolna do pobudzania proliferacji tkanki gospodarza oraz remodelowania i odnowy struktur tkankowych po wszczepieniu do różnego rodzaju mikrośrodowisk in vivo, takich jak dolne odcinki dróg moczowych, powłoki ciała, ścięgna, więzadła, kości, tkanki układu sercowo-naczyniowego i ośrodkowy układ nerwowy. Po wszczepieniu obserwuje się naciek komórkowy i szybkie powstanie nowych naczyń krwionośnych, po czym materiał podśluzówkowy ulega remodelowaniu do zastępczej tkanki gospodarza o swoistych dla miejsca wszczepienia właściwościach strukturalnych i czynnościowych.
Proteza cylindryczna zawiera pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, zwinięty w kształt wielowarstwowego cylindra tkanki podśluzówkowej, i drugi płat tkanki podśluzówkowej, owinięty wokół cylindra z tkanki podśluzówkowej. Drugi płat tkanki podśluzówkowej pokrywa cylinder z tkanki podśluzówkowej tak, że brzeg pierwszy pozostaje w kontakcie z tkanką podśluzówkową a drugi, przeciwny brzeg jest przyszyty do brzegu pierwszego lub wystaje ponad pierwszy brzeg i jest przyszyty do drugiego płata tkanki podśluzówkowej. Wielowarstwową protezę cylindryczną według niniejszego wynalazku kształtuje się tak, aby miała nieprzepuszczalne dla płynów złącza i aby można ją było kształtować tak, aby pasowała do miejsca po tkance endogennej, który zastępuje się protezą.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest również sposób wytwarzania wszczepialnej protezy tkankowej, wytworzonej w kształcie cylindra, ze szwem biegnącym wzdłuż wszczepu, przy czym szew ten jest zamknięty dla zapobieżenia wyciekania płynów ze światła przez szew na zewnątrz cylindra.
Niniejszy wynalazek umożliwia wytwarzanie wielowarstwowych protez cylindrycznych z płatów tkanki podśluzówkowej, przy czym ściany wytworzonej cylindrycznej protezy nie zawierają żadnych perforacji, które stanowiłyby bezpośrednie połączenie ze światłem naczy10
184 497 nia a powierzchnią zewnętrzną. Wielowarstwowa proteza cylindryczna według niniejszego wynalazku wykazuje dostateczną wytrzymałość i trwałość do zastosowania jako proteza naczyniowa bez niebezpieczeństwa wyciekania płynów ani zużycia protezy cylindrycznej.
Wszczepialne cylindryczne protezy z tkanek biologicznych są korzystne w wielu zastosowaniach medycznych.
Przykłady możliwych zastosowań stanowią wszczepy tętnicze i żylne, protezy moczowodu i cewki moczowej i rozmaite przewody i przetoki.
Przedmiot wynalazku uwidoczniono w przykładach wykonania na rysunku, którego fig. 1 stanowi rzut perspektywiczny komory kompresyjnej, w której świetle umieszczono mandryn pokryty tkanką podśluzówkową, fig. 2 stanowi przekrój tej komory kompresyjnej, fig. 3 stanowi rzut perspektywiczny pojedynczego paska tkanki podśluzówkowej, spiralnie owiniętego dookoła mandrynu, fig. 4 stanowi przekrój mandrynu pokrytego tkanką, podśluzówkową, przy czym jeden koniec mandrynu zamknięto i przez przeciwny, otwarty koniec usunięto powietrze, tworząc warunki próżni, fig. 5a stanowi rzut perspektywiczny pojedynczego paska materiału przepuszczalnego dla wody, owiniętego dookoła mandrynu zaopatrzonego w wiele otworów, fig. 5b stanowi rzut perspektywiczny mandrynu z wieloma otworami, owiniętego pojedynczym paskiem materiału przepuszczalnego dla wody i pierwszym płatem tkanki podśluzówkowej, fig. 5c stanowi rzut perspektywiczny mandrynu z wieloma otworami, owiniętego pojedynczym paskiem materiału przepuszczalnego dla wody, pierwszym płatem tkanki podśluzówkowej i drugim płatem tkanki podśluzówkowej.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest wielowarstwowa proteza z tkanki biologicznej o arbitralnie ustalonej długości i średnicy. Produkt można modyfikować tak, aby był odpowiedni do różnych zastosowań w medycynie, gdzie korzystne jest zastosowanie cylindrycznej protezy lub przewodu. Wytwarzanie protez cylindrycznych według ninieeszego wynalazku obejmuje wytwarzanie płata tkanki podśluzówkowej, na przykład sposobem według patentu Stanów Zjednoczonych 4902508 i owijanie tkanki wokół mandrynu o odpowiedniej średnicy dla wytworzenia cylindra tkanki podśluzówkowej. Płat tkanki podśluzówkowej można wielokrotnie owijać wokół mandrynu dla wytworzenia wielowarstwowego cylindra tkanki podśluzówkowej. Następnie wokół wytworzonego cylindra tkanki podśluzówkowej owija się drugi płat tkanki podśluzówkowej, i jeden koniec drugiego płata tkanki podśluzówkowej przyszywa się do protezy w celu wytworzenia nieprzepuszczalnego dla wody połączenia, ciągnącego się wzdłuż cylindra. Tkankę podśluzówkową poddaje się następnie kompresji w warunkach odwodnienia, i ewentualnie ogrzewa w celu wytworzenia jednostkowej protezy cylindrycznej według niniejszego wynalazku.
Tkanka podśluzówkowa korzystna w zastosowaniu do wytwarzania wszczepu według niniejszego wynalazku zawiera naturalnie związane białka macierzy zewnątrzkomórkowej, glikoproteiny i inne czynniki. Bardziej szczegółowo, do tkanek podśluzówkowych odpowiednich do zastosowania według niniejszego wynalazku należą tkanka podśluzówkowa jelit, żołądka, pęcherza moczowego i macicy. Korzystny materiał stanowi tkanka podśluzówkowa jelit, zwłaszcza jelita cienkiego.
Korzystna jelitowa tkanką podśluzówkowa obejmuje typowo błonę podśluzówkową, oddzieloną od błony mięśniowej i co najmniej od części błony śluzowej, znajdującej się od strony światła naczynia. W jednym z wykonań niniejszego wynalazku jelitowa tkanka podśluzówkowa zawiera błonę podśluzówkową i część podstawną błony śluzowej, w tym blaszkę mięśniową błony śluzowej i warstwę zbitą; wiadomo, że warstwy te mają różną grubość i definicję w zależności od gatunku kręgowca.
Odcinek jelita kręgowca, korzystnie, pobrany od świni, owcy lub gatunku bydła, jednak bez wyłączania innych gatunków, poddaje się ścieraniu podłużnym ruchem ścierającym dla usunięcia warstw zewnętrznych (w tym mięśni gładkich) i warstwy najbardziej wewnętrznej, to znaczy części błony śluzowej, znajdującej się od strony światła naczynia. Tkankę podśluzówkową płucze się solą fizjologiczną i ewentualnie wyjaławia. Tkanka podśluzówkowa jako wszczep tkankowy ulega remodelowaniu i pobudza wzrost tkanek endogennych po wszczepieniu do organizmu gospodarza. Tkankę tę z powodzeniem stosowano do wszczepów naczyniowych, w operacjach naprawczych pęcherza moczowego i przepuklin, zastępowaniu i naprawie
184 497 ścięgien i więzadeł oraz w przeszczepach skórnych. W takich zastosowaniach proteza, jak się wydaje, służy nie tylko jako macierz do odrostu tkanek, zastępowanych przeszczepem, lecz również sprzyja lub pobudza odrost tkra^iki endogennej. Przy takim procesie remodelowania często dochodzi do bardzo szybkiego i rozległego powstawania nowych naczyń krwionośnych, proliferacji komórek mezenchymalnych granulacji, rozpadu biologicznego/resorpeji wszczepionej jelitowej tkanki podśluzówkowej i brak jest odrzucenia immunologicznego.
Cylindryczne protezy z tkanki podśluzówkowej według niniej szego wynalazku można wyjaławiać konwencjonalnymi sposobami wyjaławiania, takimi jak obróbka aldehydem glutarowym, obróbka formaldehydem w kwaśnym pH, obróbka tlenkiem propylenu lub tlenkiem etylenu, wyjaławianie plazmą gazową, promieniowaniem gamma, promieniowaniem wiązką elektronów, wyjaławianie kwasem nadoctowym. Korzystne są sposoby wyjaławiania nie wpływające niekorzystnie na wytrzymałość mechaniczną, strukturę i właściwości biotropowe tkańci podśluzówkowej. Na przykład, silne promieniowanie gamma może spowodować zmniejszenie wytrzymałości płatów tkanki podśluzówkowej. Do korzystnych sposobów wyjaławiania należy ekspozycja wszczepu na działanie kwasu nadoctowego, 1-4 MRad promieniowania gamma (korzystnie, 1-2,5 MRad promieniowania gamma), obróbka tlenkiem etylenu lub wyjaławianie plazmą gazową. Najbardziej korzystnym sposobem wyjaławiania jest wyjaławianie kwasem nadoctowym. Typowo, tkankę podśluzówkową poddaje się wyjaławianiu dwoma lub więcej sposobami. Po wyjałowieniu tkanki podśluzówkowej, na przykład przez obróbkę chemiczną, tkankę można pakować w opakowania plastykowe lub foliowe i ponownie wyjaławiać wiązką elektronów lub promieniowaniem gamma.
Tkankę podśluzówkową można przechowywać w stanie nawodnionym lub odwodnionym. Liofilizowaną lub wysuszoną na powietrzu tkankę podśluzówkową można nawadniać i stosować według niniejszego wynalazku bez żadnego pogorszenia jej właściwości biotropowych i mechanicznych.
Płaty tkanki podśluzówkowej można kondycjonować (jak to opisano w patencie Stanów Zjednoczonych nr 5275826) w celu zmiany właściwości lepkościowo-elastycznych tkanki podśluzówkowej. Według jednego z wykonań wynalazku, tkankę podśluzówkową, oddzieloną od błony mięśniowej i części błony śluzowej znajdującej się od strony światła naczynia, poddaje się kondycjonowaniu tak, aby jej rozciągliwość nie przekraczała 20%. Tkankę podśluzówkową kondycjonuje się poprzez rozciąganie i obróbkę chemiczną, enzymatyczną lub ekspozycje tkanki na inne czynniki środowiskowe. W jednym z wykonań wynalazku paski jelitowej tkanki podśluzówkowej kondycjonuje się poprzez rozciąganie w kierunku podłużnym lub bocznym, tak, aby rozciągliwość pasków jelitowej tkanki podśluzówkowej nie przekraczała 20%.
W jednym z wykonań wynalazku tkankę podśluzówkową poddaje się kondycjonowaniu poprzez podłużne rozciąganie protezy do długości większej, niż długość tkanki podśluzówkowej, z której protezę wytworzono. Jeden ze sposobów kondycjonowania tkanki przez rozciąganie obejmuje przyłożenie określonego obciążenia do tkanki podśluzówkowej na czas 3-5 cykli. Każdy cykl polega na przyłożenie obciążenia do materiału wszczepu na 5 sekund, po czym następuje dziesięciosekundowa faza relaksacji. Po przeprowadzeniu 3-5 cykli uzyskuje się kondycjonowany przez rozciąganie materiał do wszczepów o zmniejszonej podatności na rozciąganie. Materiał do wszczepów nie powraca natychmiast do pierwotnych rozmiarów; jego rozmiary pozostają „rozciągnięte”. Materiał do wszczepów można ewentualnie poddawać kondycjonowaniu wstępnemu poprzez rozciąganie w płaszczyźnie bocznej.
W jednym z wykonań tkankę podśluzówkową rozciąga się stosując 50% przewidywanego obciążenia ostatecznego. „Obciążenie ostateczne” stanowi obciążenie maksymalne, które można przyłożyć do tkanki podśluzówkowej bez spowodowania jej uszkodzenia (to znaczy, jest to punkt pękania tkanki). Dla danego paska tkanki podśluzówkowej można przewidywać obciążenie ostateczne w oparciu o pochodzenie i grubość materiału. W związku z tym jeden ze sposobów kondycjonowania tkanki przez rozciąganie obejmuje przyłożenie 50% przewidywanego obciążenia ostatecznego do tkanki podśluzówkowej na czas 3-10 cykli. Każdy cykl obejmuje przyłożenie do materiału do wszczepów obciążenia na czas 5 sekund, po których następuje dziesięciosekundowa faza relaksacji. Wytworzona w ten sposób kondycjo12
184 497 nowana tkanka podśluzówkową wykazuje rozciągliwość poniżej 30%, korzystnie, od około 20 do około 28%. W korzystnym wykonaniu kondycjonowana tkanka podśluzówkową wykazuje rozciągliwość nie przekraczającą 20%. Pojęcie „rozciągliwość”, w rozumieniu niniejszego opisu, oznacza maksymalne wydłużenie tkanki przed jej pęknięciem przy rozciąganiu tkanki przez przyłożenie obciążenia. Rozciągliwość wyraża się jako odsetek długości tkanki przed przyłożeniem obciążenia. Kondycjonowane paski tkanki podśluzówkowej można stosować dla wytworzenia cylindrycznych protez lub, zamiast tego, cylindryczne protezy można poddawać kondycjonowaniu już po ich wytworzeniu.
Protezy cylindryczne według niniejszego wynalazku wytwarza się jako protezy wielowarstwowe, przy czym pierwszy płat tkanki podśluzówkowej formuje się w kształt cylindra z tkanki podśluzówkowej i na ten cylinder tkanki podśluzówkowej nakłada się drugi płat. Wymiary poszczególnych płatów tkanki podśluzówkowej nie mają kluczowego znaczenia i pojęcie „płat tkanki podśluzówkowej” oznacza tkankę podśluzówkową, pochodzącą od jednego lub kilku kręgowców, z jednego lub kilku narządów, przy czym rozmiar i kształt takiego płata może być różny. Po nałożeniu na mandryn drugiego płata tkanki podśluzówkowej na nakładające się części wywiera się ciśnienie w celu kompresji tkanki podśluzówkowej w kierunku przeciwnym do mandrynu. W korzystnych wykonaniach powierzchnie mandrynu są przepuszczalne dla wody. Termin „powierzchnia przepuszczalna dla wody”, w rozumieniu mniejszego opisu, obejmuje powierzchnie absorbujące wodę, mikroporowate lub makroporowate. Do materiałów makroporowatych należą perforowane płytki lub sita, wytwarzane z plastyku, metalu, materiałów ceramicznych lub drewna.
W jednym z korzystnych wykonań wiele warstw tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji w warunkach odwodnienia. Pojęcie „warunki odwodnienia” w rozumieniu niniejszego opisu oznacza dowolne warunki mechaniczne lub środowiskowe, sprzyjające lub pobudzające usuwanie wody z tkanki podśluzówkowej. W celu nasilenia odwodnienia sprasowanej tkanki podśluzówkowej, co najmniej jedna z dwóch powierzchni wywierających kompresję na tkankę jest przepuszczalna dla wody. Odwodnienie tkanki można ewentualnie jeszcze nasilać poprzez przykładanie materiału o typie bibuły, ogrzewanie tkanki lub przepuszczanie powietrza w kierunku prostopadłym do powierzchni zewnętrznej powierzchni poddawanych kompresji.
Tkanka podśluzówkową ma, typowo, dwie powierzchnie, abluminalną i luminalną. Powierzchnia łuminalna jest to powierzchnia tkanki podśluzówkowej, znajdująca się od strony światła narządu, który jest źródłem tkanki, typowo, przylegającą do wewnętrznej warstwy błony śluzowej in vivo, natomiast powierzchnia abluminalna stanowi powierzchnię tkanki podśluzówkowej przeciwległą do światła narządu, który jest źródłem tkanki podśluzówkowej, in vivo zazwyczaj pozostającą w kontakcie z tkanką mięśni gładkich. W jednym z wykonań wokół mandrynu owija się jeden lub więcej płatów tkanki podśluzówkowej, tak, aby powierzchnia luminalna tkanki podśluzówkowej pozostawała w kontakcie z powierzchnią mandrynu. Tak więc powierzchnia luminalna płata tkanki podśluzówkowej znajduje się od strony światła wytworzonego cylindra tkanki podśluzówkowej. Jednakże cylinder tkanki podśluzówkowej można również wytwarzać z jednego lub kilku płatów tkanki podśluzówkowej tak, aby od strony światła wytworzonej protezy cylindrycznej znajdowała się powierzchnia abluminalna.
Według jednego z wykonań niniejszego wynalazku, wytwarza się protezę cylindryczną zawierającą pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, wytworzony w kształcie cylindra tkanki podśluzówkowej, i drugi płat tkanki podśluzówkowej, owinięty wokół i pozostający w kontakcie z cylindrem tkanki podśluzówkowej, przy czym złącze wytworzone przez końcową część drugiego płata tkanki podśluzówkowej zaszywa się, wytwarzając szew nieprzepuszczalny dla wody. Cylinder tkanki podśluzówkowej zawiera pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i drugi, przeciwny brzeg, przy czym tkanka uformowana jest na kształt cylindra, w którym drugi, przeciwny brzeg pierwszego płata rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata, tworząc wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej. W rozumieniu niniejszego opisu „obszar nakładania się” oznacza część wielowarstwowego cylindra, zdefiniowany przez kąt nakładania się rozciągający się między pierwszym a drugim brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ukształtowanej jako cylinder (por. fig. 5b). Warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładającym się przymocowuje się do siebie na184 497 wzajem rutynowymi sposobami znanymi specjalistom. Zamiast tego, warstwy tkanki podśluzówkowej można przymocowywać do siebie poprzez obróbkę tkanki aldehydem glutarowym i działanie podciśnieniem na nakładające się warstwy tkanki, jak to opisano poniżej.
W jednym z wykonań, wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania przymocowuję się do siebie poprzez obróbkę środkiem usieciowującym, na przykład aldehydem, na przykład formaldehydem lub, korzystnie, aldehydem glutarowym. W jednym z wykonań złącze wytworzone w cylindrze z tkanki podśluzówkowej można „spawać punktowo” dla zapewnienia tego, żeby część końcowa nie obluzowała się. Według tego wykonania wynalazku, zachodzący obszar tworzący złącze pociera się wzdłuż pałeczką zwilżoną χ% aldehydem glutarowym (lub innym środkiem usieciowującym lub adhezyjnym). Wartość χ wynosi od około 0,1 do około 1,0%, korzystnie, około 0,5%, jednak istnieje związek między szerokością złączą, stężeniem aldehydu glutarowego i liczbą zwojów, określający ciśnienie rozrywające. W jednym z wykonań całość protezy zanurza się w rozcieńczonym roztworze aldehydu glutarowego (zawierającym około od około 0,1 do około 1,0%o aldehydu glutarowego) i następnie poddaje kompresji w warunkach odwodnienia w celu przytwierdzenia do siebie wielu warstw cylindra tkanki podśluzówkowej. Ponadto, wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania się można do siebie wzajemnie przyszyć i w jednym z wykonań warstwy obszaru nakładania przytwierdza się szwami, jeśli nie stosuje się obróbki środkiem usieciowującym.
W jednym z korzystnych wykonań cylinder tkanki podśluzówkowej, wytworzony z pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, kształtuje się w taki sposób, że pierwszy i drugi przeciwne brzegi pierwszego płata tkanki podśluzówkowej są w zasadzie równoległe do siebie, jak to przedstawiono na fig. 1 i fig. 5b. W tym wykonaniu płat tkanki podśluzówkowej zwija się w kształt warstwowego cylindra. Typowo, cylinder z tkanki podśluzówkowej zawiera dwie warstwy tkanki podśluzówkowej, a obszar nakładania się zawiera trzy warstwy tkanki podśluzówkowej.
Proteza według niniejszego wynalazku zawiera drugi płat tkanki podśluzówkowej, przy czym drugi płat pozostaje w ścisłym kontakcie z powierzchnią zewnętrzną cylindra tkanki podśluzówkowej. W jednym z wykonań pierwszy i drugi przeciwne brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej zszywa się ze sobą wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez perforowania leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej. W innym wykonaniu drugi przeciwny brzeg drugiego płata rozciąga się nad pierwszym brzegiem drugiego płata i przyszywa się go do drugiego płata tkanki podśluzówkowej bez perforowania leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej.
W korzystnych wykonaniach obszar nakładania się cylindra tkanki podśluzówkowej jest przesunięty w stosunku do szwów wytworzonych w drugim płacie tkanki podśluzówkowej (to znaczy, obszar nakładania się nie kontaktuje się z obszarem zaszytym drugiego płata. W jednym z wykonań szwy wytworzone w drugim płacie tkanki podśluzówkowej są umieszczone o 90180° wzdłuż obwodu cylindra tkanki podśluzówkowej w stosunku do obszaru nakładania, a w jednym wykonaniu szwy umieszczone są o 180° wzdłuż obwodu cylindra tkanki podśluzówkowej w stosunku do obszaru nakładania (por. fig. 5c).
Według jednego z wykonań proteza cylindryczna zawiera pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, którego brzegi pierwszy i drugi, w zasadzie równoległe do siebie, są zwinięte na kształt wielowarstwowego cylindra z obszarem nakładania się, przy czym brzegi pierwszy i drugi pozostają w zasadzie równoległe do siebie w wytwarzanym cylindrze, i warstwy obszaru nakładania się są przytwierdzone do siebie szwami lub poprzez obróbkę środkiem usieciowującym. Cylinder zawiera ponadto drugi płat tkanki podśluzówkowej, przylegający do zewnętrznej powierzchni wytwarzanego cylindra tkanki podśluzówkowej, przy czym płat drugi, posiadający brzegi pierwszy i drugi w zasadzie równoległe do siebie jest owinięty wokół cylindra tkanki podśluzówkowej, a brzegi pierwszy i drugi są przytwierdzone do siebie szwami.
W jednym z wykonań protezę cylindryczną według niniejszego wynalazku wytwarza się w następujących etapach: dobiera się mandryn o średnicy odpowiadającej korzystnej średnicy produktu końcowego. Mandryn jest typowo kształtu cylindrycznego i w korzystnych wykonaniach zawiera wydrążony cylinder przepuszczalny dla wody. Następnie na mandryn nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający przeciwne brzegi pierwszy i drugi, dla
184 497 wytworzenia cylindra z tkanki podśluzówkowej, przy czym drugi, przeciwny brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, tworząc wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej. Warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania się przytwierdza się następnie do siebie, tworząc złącze, które rozciąga się wzdłuż wytworzonego cylindra. Następnie na cylinder tkanki podśluzówkowej nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający przeciwne brzegi pierwszy i drugi, i następnie drugi, przeciwny brzeg drugiego płata tkanki podśluzówkowej przyszywa się do nałożonego drugiego płata tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej. W jednym z wykonań brzegi pierwszy i drugi drugiego płata tkanki podśluzówkowej zezzywa się ze sobą w celu wytworzenia jednowarstwowego drugiego cylindra, obejmującego pierwszy cylinder tkanki podśluzówkowej. Warstwy tkanki podśluzówkowej poddaje się następnie kompresji w kierunku przeciwnym do mandrynu w warunkach odwodnienia.
Wynalazek opisano poniżej w odniesieniu do korzystnych wykonań przedstawionych na figurach rysunku. Na fig. 1 przedstawiono korzystne wykonanie mandrynu 10, na którym owija się następnie płaty tkanki biologicznej. Mandryn 10 stanowi wydrążony cylinder metalowy lub plastykowy, zawierający otwory 12 w ścianie cylindra, wzdłuż części lub też wzdłuż całej długości cylindra metalowego. Wielkość otworów wmandrynie 10 nie ma kluczowego znaczenia, pod warunkiem, że mandryn jest dostatecznie porowaty dla umożliwienia odwodnienia tkanki podśluzówkowej w czasie kompresji owiniętej tkanki podśluzówkowej 14. W jednym z korzystnych wykonań mandryn stanowi cylinder metalowy, korzystniej, cylinder metalowy wytworzony z aluminium. Na mandryn 10 nakłada się tkankę podśluzówkową 14, tworząc wielowarstwowy cylinder tkanki podśluzówkowej. Mandryn pokryty tkanką podśluzówkową wprowadzą się następnie do światła komory kompresyjnej 20, stosowanej w jednym z wykonań w celu wytworzenia protez cylindrycznych według niniejszego wynalazku. Komora kompresyjna 20 zawiera powłokę zewnętrzną 22, dętkę 24 i port ciśnieniowy 26. Dętkę 24 można przytwierdzać do wewnętrznej ściany powłoki zewnętrznej 22 różnymi sposobami, na przykład spajaniem adhezyjnym lub cieplnym. Jak to pokazano na fig. 2, owinięty mandryn 10 wprowadza się do komory kompresyjnej 20, w której wewnętrzna błona 18 dętki 24 kontaktuje się i powoduje kompresję tkanki podśluzówkowej 14, kiedy wprowadza się płyn do portu ciśnieniowego 26 w celu napełnienia dętki 24. Dętkę. 24 napełnia się do pożądanego ciśnienia i ciśnienie utrzymuje się aż do dostatecznego odwodnienia tkanki podśluzówkowej.
Proces kompresji i suszenia można ewentualnie nasilić, stosując ogrzewanie w niskiej temperaturze (na przykład poniżej około 50°C) protezy tkankowej. Ponadto przez światło mandrynu można wprowadzać powietrze lub gaz obojętny (na przykład N2) jako środek zastępczy lub dodatkowy, w celu nasilenia procesu suszenia. Powiętrze/gaz wprowadzane do światła można ewentualnie ogrzewać w celu dalszego przyśpieszenia procesu odwodnienia. Otwory 12, wytworzone w ścianach mandrynu 10, wspomagają proces suszenia tkanki podśluzówkowej 14, jednakże struktura ta jest tylko jednym z wykonań mandrynu, korzystnym w zastosowaniu według niniejszego wynalazku (por. fig. 1). Mandryn można również wytwarzać jako lity cylinder lub jako rurę bez otworów. W jednym z wykonań mandryn zawiera wydrążony cylinder, z otworami wytworzonymi w ścianach mandrynu, i kompresji tkanki podśluzówkowej towarzyszy usunięcie powietrza (stworzenie warunków próżni) w świetle mandrynu.
Zamiast tego, kompresję tkanki podśluzówkowej można uzyskać poprzez ciągłe obracanie mandrynu, z owiniętymi wokół niego płatami tkanki biologicznej, w bezpośrednim kontakcie z druga powierzchnią, dla zapewnienia bezpośredniej siły kompresji. Ponadto, w jednym z korzystnych wykonań, jak to przedstawiono na fig. 4, zastosowanie próżni może zapewnić jedyną siłę kompresyjną do kompresji zachodzących na siebie części wielu pasków tkanki podśluzówkowej (działanie podciśnienia). W tym wykonaniu mandryn 30, wytworzony jako wydrążony cylinder, z wieloma otworami 32, wytworzonymi w ścianie mandrynu 30, pokrywa się wieloma warstwami tkanki podśluzówkowej 34. Zapewnia się mandryn 30 z zatyczką 36 do zamknięcia pierwszego końca mandrynu 30 i port końcowy 40 do usuwania powietrza ze światła mandrynu. Port końcowy 40 łączy się ze źródłem wytwarzającym próżnię i ze światła mandrynu 30 usuwa się powietrze, które
184 497 przechodzi przez wiele warstw tkanki podśluzówkowej, powodując wzajemną kompresję tkanek. Wokół wielu warstw tkanki podśluzówkowej można owinąć warstwę nieprzepuszczalną (na przykład mandryn można umieścić w worku plastykowym 44, zamkniętym zaciskiem 46 w porcie próżni) dla zapewnienia drugiej powierzchni, współpracującej z mąndrynem 30 w celu spowodowania kompresji wielu warstw tkanki podśluzówkowej 34 między drugą powierzchnią mandrynem 30. Stosuję się próżnię, na ogółodl 35,6do 177,8 cm Hg, 0,49-2,46 kg/cm2, koizystaiej , około 129,5 cm Hg (1,76 kg/cm2). Ewentualnie na szczycie urządzenia można umieścić koc grzejny w celu ogrzewania tkanki podśluzówkowej w czasie kompresji. Po kompresji tkanki podśluzówkowej przez odpowiednio długi czas, poddana kompresji tkankę podśluzówkową usuwa się z mandrynu jako jednostkową podatną protezę.
Wiele pasków tkanki podśluzówkowej typowo poddaje się kompresji przez 12-48 godzin w temperaturze pokojowej, jakkolwiek można również stosować ogrzewanie. Na przykład, na zewnętrzną powierzchnię prasującą można nakładać koc grzejny w celu podwyższenia temperatury poddawanej kompresji tkanki do wartości około 40-50°C. Nakładające się części poddaje się zwykle kompresji przez czas, którego długość zależy od stopnia odwodnienia tkanki. Zastosowanie ciepła zwiększa prędkość odwadniania, skracając czas konieczny do kompresji nakładających się części tkanki. Typowo, tkankę poddaję się kompresji przez czas wystarczający do wytworzenia sztywnego, lecz giętkiego materiału. Wskaźnikiem odpowiedniego stopnia odwodnienia tkanki jest również wzrost impedancji prądu elektrycznego przepływającego przez tkankę. Kiedy impedancja rośnie o 100-200 omów, stopień odwodnienia tkanki jest dostateczny i można zaprzestać stosowania ciśnienia.
W jednym z korzystnych wykonań, przedstawionym na fig. 5a, mandryn 50 owija się najpierw przepuszczalnym dla wody, usuwalnym, porowatym materiałem taśmowym 52, przed nałożeniem na mandryn 50 płatów tkanki podśluzówkowej. Korzystnie, usuwalny materiał taśmowy 52 stanowi materiał przepuszczalny dla wody, oporny na rozdzieranie, w tym porowaty materiał plastykowy lub inny materiał, nie przywierający do tkanki podśluzówkowej ani mandrynu. W jednym z wykonań porowaty materiał taśmowy 52 stanowi pępowina. Następnie nakłada się warstwę tkanki podśluzówkowej bezpośrednio na materiał taśmowy i suszy dla wytworzenia jednostkowej protezy. Po wysuszeniu tkanki podśluzówkowej porowaty materiał taśmowy 52 zdejmuje się z mandrynu 50 poprzez pociągnięcie za pierwszy koniec 54 i drugi koniec 56 przepuszczalnego dla wody materiału taśmowego 52 (por. fig. 5a). Usunięcie taśmy przepuszczalnego dla wody materiału 52 pozostawia przestrzeń pomiędzy protezą z tkanki podśluzówkowej a mandrynem 50, umożliwiając usuniecie protezy z mandrynu.
Według jednego z wykonań, jak to przedstawiono na fig. 5a-5c, sposób wytwarzania protezy obejmuje dobranie przepuszczalnego dla wody wydrążonego mandrynu 50 o odpowiedniej średnicy i spiralne nawinięcie na mandryn 50 paska porowatego materiału taśmowego 52, na przykład pępowiny. Mandryn jest, korzystnie, przepuszczalny dla wody i w jednym z wykonań zaopatrzony w liczne otwory. Następnie nakłada się odpowiednią liczbę warstw pierwszego płata 60 tkanki podśluzówkowej, przy czym „warstwę tkanki podśluzówkowej” definiuje się jako kawałek tkanki podśluzówkowej, owinięty 360° dookoła mandrynu. Typowo, jedna lub dwie warstwy zapewniają, wytrzymałość na rozerwanie około 1200 mm Hg po wytworzeniu według poniższego opisu. Na mandryn 50 nakłada się ruchem owijania pierwszy płat 60 tkanki podślusówkowęj, określoną liczbę warstw (typowo dwie), wytwarzając obszar nakładania 62 (definiowany jako kąt nakładania Θ między pierwszym 64 a przeciwnym drugim brzegiem 65 pierwszego płata 60 tkanki podśluzówkowej wytworzenia cylindra tkanki podśluzówkowej o rozciągającym się wzdłuż podłużnie obszarze nakładania 62, tworzącym złącze cylindra (fig. 5b). Kąt nakładania wynosi typowo około 90°, korzystnie, od około 20 do około 40°; w jednym z wykonań kąt nakładania wynosi około 30°. Tkankę podśluzówkową owija się wokół mandrynu, pozostawiając niepokryty pierwszy koniec 54 i drugi koniec 56 przepuszczalnego dla wody materiału.
W jednym z wykonań złącze owijanej tkanki można „spawać punktowo”, żeby przeciwny drugi brzeg 65 nie obluzował się. Według tego wykonania wynalazku, pociera się wzdłuż powierzchnię części tkanki podśluzówkowej, tworzącej obszar nakładania 62, pałeczką zwilżoną χ% aldehydem glutarowym (lub innym środkiem usieciowującym lub adhezyjnym). Wartość χ wynosi od około 0,1 do około 1,0°%, korzystnie około 0,5%, jednak istnieje związek między
184 497 szerokością obszaru nakładania 62, stężeniem aldehydu glutarowego i liczbą zwojów, określający ciśnienie rozrywające. Warstwy tkanki podśluzówkowej tworzące obszar nakładania się można również usieciowywać, aby koniec nie obluzował się, poprzez zanurzenie całego cylindra tkanki podśluzówkowej w roztworze środka usieciowującego, na przykład aldehydu glutarowego. Cylinder tkanki podśluzówkowej potraktowany aldehydem glutarowym można ewentualnie poddawać kompresji w warunkach odwodnienia przed nałożeniem drugiego płata tkanki podśluzówkowej na cylinder tkanki podśluzówkowej (włączając w to zastosowanie podciśnienia) w celu dalszego wzajemnego spojenia warstw tkanki podśluzówkowej.
Zamiast tego, złącze cylindra tkanki podśluzówkowej można przytwierdzić poprzez zeszycie wielu warstw cylindra tkanki podśluzówkowej wzdłuż obszaru nakładania. Zastosowanie szwów czyni zbędnym usieciowywanie warstw tkanki podśluzówkowej obszaru nakładania.
Według niniejszego wynalazku, pierwszy płat tkanki podśluzówkowej można owijać na mandrynie w różnych orientacjach. W jednym z wykonań szerokość płatów jest równa długości mandrynu, tak że pojedynczy płat całkowicie pokrywa mandryn przy owijaniu go 360° dookoła mandrynu (por. fig. 5b).
Można stosować inne sposoby owijania dla utworzenia pierwszego płata tkanki podśluzówkowej w kształt cylindra tkanki podśluzówkowej, pod warunkiem, że nie ma przerw między złączami nakładających się tkanek. W jednym z wykonań szerokość płata tkanki podśluzówkowej może być mniejsza od pożądanej długości wytworzonego cylindra tkanki podśluzówkowej. W tym alternatywnym wykonaniu na mandryn 82 wielokrotnie nawija się wąski płat 80 tkanki podśluzówkowej, przy czym płat co najmniej częściowo nakłada się przy pokrywaniu nim mandrynu, tak że żadna część mandrynu nie jest odsłonięta (por. fig. 3). Mandryn jest przepuszczalny dla wody i w jednym z wykonań posiada wiele otworów 84. Nakładanie się takich częściowo nakładających się płatów tkanki podśluzówkowej wynosi od 10 do 60% szerokości pojedynczego płata, korzystniej, nakładanie wynosi 50%. W jednym z wykonań mandryn może być pokryty wieloma kawałkami tkanki podśluzówkowej, pod warunkiem, że co najmniej część każdego kawałka tkanki podśluzówkowej pokrywa część innego kawałka tkanki podśluzówkowej, owiniętego na mandrynie. W innym wykonaniu, na mandryn spiralnie nawija się długi, wąski płat tkanki podśluzówkowej, stosując nakładanie i następnie spiralne owinięcie w kierunku przeciwnym. Zapewnia to cztery warstwy tkanki podśluzówkowej podtrzymujące ciśnienie wewnętrzne. W tym wykonaniu złącza utworzone przez nakładające się płaty tkanki podśluzówkowej powinny nakładać się o 0,5-3 cm, korzystnie, o 1-2 cm. W wykonaniach, w których szerokość pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, stosowanego do wytworzenia cylindra tkanki podśluzówkowej, jest mniejsza od długości pożądanego cylindra tkanki podśluzówkowej, złącza cylindra osadza się w miejscu, korzystnie, przez ekspozycję na działanie środka usięciowującego.
Po wytworzeniu cylindra tkanki podśluzówkowej nakłada się następnie okrężnie drugi płat 70 tkanki podśluzówkowej wokół zewnętrznej powierzchni cylindra tkanki podśluzówkowej utworzonego z pierwszego płata 60. W jednym z wykonań drugi płat 70 tkanki podśluzówkowej nakłada się na cylinder tkanki podśluzówkowej 60, owija jeden raz wokół cylindra i pierwszy koniec i drugi przeciwny koniec 76 drugiego płata tkanki podśluzówkowej zeszywa się wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej szwami 78 bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej utworzonego z pierwszego płata 60 - por. fig. 5c. Zamiast tego, drugi płat tkanki podśluzówkowej nakłada się na cylinder tkanki podśluzówkowej, nawija wokół cylindra co najmniej jeden raz, przy czym drugi, przeciwny koniec drugiego płata rozciąga się nad pierwszym końcem drugiego płata tkanki podśluzówkowej i ten drugi, przeciwny koniec drugiego płata przyszywa się wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej.
Ponadto, kiedy drugi płat tkanki podśluzówkowej nakłada się na cylinder tkanki podśluzówkowej wytworzony z pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, drugi płat można nakładać tak, aby w kontakcie z cylindrem tkanki podśluzówkowej pozostawała jego powierzchnia abluminalna lub powierzchnia luminalna. Każda z tych kombinacji nakładania się płatów tkanki podśluzówkowej od tego samego lub od różnych kręgowców lub narządów daje w wyniku jednostkową protezę tkanki podśluzówkowej w kształcie cylindra, przy kompresji co najmniej nakładających się części w warunkach umożliwiających odwodnienie tkanki.
184 497
Po owinięciu mandrynu drugim płatem tkanki podśluzówkowej, tkankę podśluzówkową poddaje się kompresji w warunkach odwodnienia. W jednym z wykonań tkankę traktuje się podciśnieniem, przy czym jeden koniec mandrynu jest zamknięty, a wnętrze mandrynu pokrytego tkanką podśluzówkową jest połączone z pompą próżniową. Próżnia powoduje, że ciśnienie atmosferyczne wywiera działanie kompresyjne na warstwy tkanki podśluzówkowej i w wykonaniach, w których stosuje się środek usieciowujący do wzajemnego usieciowania warstw tkanki podśluzówkowej, zastosowanie podciśnienia powoduje, że środek usieciowujący penetruje do całej grubości złącza. Zamykanie próżnią/suszenie dokonuje się typowo w ciągu około 4 godzin.
Po zakończeniu zamykania/suszenia, końce pierwszy i drugi (odpowiednio, 54 i 56) przepuszczalnego dla wody porowatego materiału taśmowego 52 (na przykład pępowina) chwyta się i ciągnie wzdłuż. Taśma łatwo rozwija się pod cylindrem tkanki podśluzówkowej i cylinder tkanki podśluzówkowej łatwo zsuwa się z mandrynu. W wyniku powstaje cylinder bez złączy, wyglądający jak słomka do napojów.
W jednym z wykonań cylinder tkanki podśluzówkowej można wytwarzać z jednego lub kilku płatów tkanki podśluzówkowej poprzez owijanie jednego lub więcej płatów tkanki podśluzówkowej wokół obwodu mandrynu, ekspozycję owiniętej tkanki podśluzówkowej na działanie środka usieciowującego i kompresję owiniętej tkanki w warunkach odwodnienia. Płaty tkanki można nakładać na mandryn różnymi sposobami owijania, pod warunkiem, że nie ma przerw między złączami nakładających się płatów tkanki podśluzówkowej. W jednym z wykonań pojedynczy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszą część końcową i drugą część końcową nakłada się na mandryn tak, że pierwsza i druga część końcowa płata tkanki podśluzówkowej nakładają się, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej. W jednym z wykonań drugi brzeg płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem płata tkanki podśluzówkowej, przy czym pierwszy brzeg jest w zasadzie równoległy do drugiego brzegu, i tworzą heterolaminarny cylinder, przedstawiony na fig. 5b. Zamiast tego, pojedynczy wąski płat tkanki podśluzówkowej można spiralnie owijać wokół mandrynu, jak to przedstawiono na fig. 3. Nakładające się części płata tkanki podśluzówkowej kontaktuje się następnie z czynnikiem usięciowującym. W jednym z wykonań protezę w całości zanurza się w roztworze usieciowującym. Korzystny środek usieciowujący stanowi aldehyd glutarowy w stężeniu od około 0,1 do około 1,0% aldehydu glutarowego. Po obróbce nakładających się warstw tkanki podśluzówkowej środkiem usieciowującym, nakładające się warstwy poddaję się kompresji w warunkach odwodnienia. W jednym z wykonań, nakładające się warstwy tkanki podśluzówkowej poddaje się działaniu podciśnienia, przy czym jeden koniec mandrynu jest zamknięty i wnętrze tkanki podśluzówkowej podłącza się do pompy próżniowej. Próżnia powoduje, że ciśnienie atmosferyczne wywołuje kompresję warstw tkanki podśluzówkowej; zastosowanie podciśnienia powoduje, że środek usieciowujący penetruje do całej grubości protezy.
Jak na to wskazują dane z przykładu 4, cylinder tkanki podśluzówkowej, poddany obróbce roztworem aldehydu glutarowego w stężeniu co najmniej 1% wykazuje istotną trwałość w pulsacyjnych testach ciśnieniowych. Ponadto, cylinder tkanki podśluzówkowej, wytworzony przez owijanie płatów tkanki podśluzówkowej z utworzeniem heterolaminarnego cylindra, potraktowany aldehydem glutarowym i podciśnieniem, zapewnia cylinder tkanki podśluzówkowej o gładkiej powierzchni luminalnej.
Wiadomo, że obróbka materiałów biologicznych aldehydem glutarowym sprzyja powstawaniu zwapnień, osłabieniu włączania do tkanek organizmu gospodarza i na koniec mechanicznemu uszkodzeniu protez biologicznych. W celu zminimalizowania szkodliwego wpływu obróbki materiałów biologicznych aldehydem glutarowym protezy cylindryczne według niniejszego wynalazku poddaje się działaniu względnie rozcieńczonych roztworów aldehydu glutarowego, to znaczy około 0,1% aldehydu glutarowego. Protezy cylindryczne, potraktowane aldehydem glutarowym, wytworzone według niniejszego wynalazku przez obróbkę roztworem zawierającym poniżej 1% aldehydu glutarowego, można stosować w różnych zastosowaniach nienaczyniowych, na przykład do zastępowania moczowodu i cewki moczowej, różnych przewodów i przetok. Ponadto, cylinder tkanki podśluzówkowej, posiadający złącza cylindra tkanki podśluzówkowej, zamknięte środkiem usieciowującym, można spajać z drugim płatem
184 497 tkanki podśluzówkowej w celu wzmocnienia spojonych aldehydem glutarowym złączy. W jednym z wykonań cylinder tkanki podśluzówkowej poddaje się ponownemu nawodnieniu i wokół cylindra tkanki podśluzówkowej nawija się drugi płat tkanki podśluzówkowej i poddaje kompresji w kierunku przeciwnym do cylindra tkanki podśluzówkowej w warunkach odwodnienia. W jednym z wykonań z płata tkanki podśluzówkowej wytwarza się cylinder tkanki podśluzówkowej i poddaje się go kontaktowi z roztworem aldehydu glutarowego (przy czym stężenie aldehydu glutarowego wynosi poniżej 1%, korzystnie poniżej 0,5%), działaniu podciśnienia, i następnie owija drugim płatem tkanki podśluzówkowej, zeszytym wzdłuż, jak to pokazano na fig. 5c. Drugi płat tkanki podśluzówkowej w tym wykonaniu zapewnia dostateczne podtrzymanie leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej, tak że protezę można stosować w zastosowaniach naczyniowych, w tym do zastępowania naczyń tętniczych i żylnych, mimo niskiego stężenia czynnika usieciowującego, zastosowanego do zamknięcia cylindra tkanki podśluzówkowej.
W jednym z wykonań sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej obejmuje nałożenie pierwszego paska przepuszczalnego dla wody materiału wokół obwodu mandrynu i następnie nałożenie drugiego paska przepuszczalnego dla wody materiału na pierwszy pasek przepuszczalnego dla wody materiału. Pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, nakłada się następnie na spiralnie owinięty materiał w celu wytworzenia cylindra tkanki podśluzówkowej, przy czym drugi przeciwny brzeg rozciąga się nad pierwszym brzegiem, tworząc wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej. Cylinder tkanki podśluzówkowej poddaje się następnie kompresji w kierunku przeciwnym do powierzchni mandrynu w warunkach odwodnienia, w celu wytworzenia cylindrycznej protezy. Drugi pasek przepuszczalnego dla wody materiału usuwa się następnie z mandrynu dla uwolnienia cylindrycznej protezy z mandrynu. Warstwę tkanki podśluzówkowej obszaru nakładania uwolnionego cylindra tkanki podśluzówkowej zs&ywa się następnie szwem ciągłym w celu zapewnienia, że cylinder nie rozejdzie się. Protezę umieszcza się następnie z powrotem na mandrynie poprzez przesunięcie cylindra na pierwszym pasku materiału przepuszczalnego dla wody, pokrywającym mandryn. Następnie na cylinder z tkanki podśluzówkowej nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający przeciwne końce pierwszy i drugi. Przeciwne końce pierwszy i drugi drugiego płata tkanki podśluzówkowej zeszywa się wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej i wiele warstw tkanki podśluzówkowej poddaje się razem kompresji w warunkach odwodnienia. Pierwszy pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się następnie z mandrynu w celu uwolnienia cylindrycznej protezy z mandrynu. W korzystnym wykonaniu szwy drugiego płata tkanki podśluzówkowej nie zachodzą na szwy wytworzone w obszarze nakładania się cylindra tkanki podśluzówkowej.
Wielowarstwowy wszczep tkankowy można wytwarzać tak, aby wykazywał on właściwości w zasadzie izotropowe. Takie wszczepy w zasadzie izotropowe (pseudoizotropowe) wytwarza się z co najmniej dwóch płatów jelitowej tkanki podśluzówkowej, oddzielonej od błony mięśniowej części luminalnej błony śluzowej kręgowca stałocieplnego. Każdy z tych płatów jelitowej tkanki podśluzówkowej ma oś długą, odpowiadającą dominującej orientacji włókien kolagenowych w płatach tkanki podśluzówkowej. Sposób wytwarzania pseudoizotropowych wszczepów obejmuje umieszczenie pierwszego płata tkanki podśluzówkowej na mandrynie, pokrycie tego pierwszego płata co najmniej jednym dodatkowym płatem tkanki podśluzówkowej, tak aby osie długie każdego z płatów tkanki podśluzówkowej tworzyły kąt około 90° z osią podłużną drugiego płata tkanki podśluzówkowej, tworząc wszczep heterolaminarny.
Wszczepy lub protezy z tkanki biologicznej, wytwarzane według niniejszego wynalazku, zapobiegają problemowi wycieku płynów wokół otworów po szwach zeszytych tkanek biologicznych. Wytworzenie dwóch koncentrycznych cylindrów tkanki podśluzówkowej, przy czym zeszyte złącza obu cylindrów są przesunięte względem siebie, i następnie spojenie razem obu cylindrów tkanki podśluzówkowej, zapewnia to, że otwory po szwach nie będą powodowały wycieku z wytworzonej protezy. Ponadto, wykonania z zastosowaniem obróbki środkiem usieciowującym dla zamknięcia złącza pierwszego cylindra oczywiście nie mają
184 497 żądnych perforacji wytworzonych w ścianie cylindra i w związku z tym nie będą przeciekały. Cylindry wytworzone według niniejszego wynalazku stanowią w zasadzie pozbawione złącza cylindry, przez które nie przecieka płyn, i nie wymagają one dodatkowych środków związanych z wyciekiem płynów. Właściwość ta jest szczególnie ważna przy stosowaniu protez jako wszczepów naczyniowych do zastępowania moczowodu lub jako przetoki. Protezą można dalej manipulować (to znaczy ciąć, zginać, zszywać i tak dalej) tak, aby nadawała się do rozmaitych zastosowań medycznych, gdzie korzystne jest zastosowanie materiału podśluzówkowego według niniejszego wynalazku.
Inne cechy i aspekty niniejszego wynalazku specjalista oceni po zapoznaniu się z niniejszym opisem. Takie cechy, aspekty i oczekiwane odmiany i modyfikacje pozost^aą w zakresie niniejszego wynalazku.
Przykład 1
Wytwarzanie cylindrycznych protez z tkanki podśluzówkowej
W jednym z wykonań sposób wytwarzania protezy obejmuje dobranie przepuszczalnego dla wody wydrążonego mandrynu o odpowiedniej średnicy i spiralne owinięcie mandrynu pępowiną. Następnie nakłada się określoną liczbę warstw tkanki podśluzówkowej, przy czym „warstwę tkanki podśluzówkowej” definiuje się jako kawałek tkanki podśluzówkowej, owinięty 360° wokół mandrynu. Typowo, jedna lub dwie warstwy zapewniają wytrzymałość na rozerwanie około 1000-2000 mm Hg po wytworzeniu w sposób opisany poniżej.
Płat tkanki podśluzówkowej umieszcza się na gładkiej powierzchni warstwą błony śluzowej do góry. Owinięty pępowiną mandryn układa się na tym płacie tak, aby jego oś długa była równoległa do osi długiej tkanki podśluzówkowej. Następnie stosuję się żyletkę do przecięcia tkanki podśluzówkowej równolegle do osi mandrynu w celu wytworzenia Unijnego brzegu tkanki podśluzówkowej. Tkankę podśluzówkową nakłada się na mandryn ruchem nawijania, wytwarzając pożądaną liczbę warstw (typowo, dwie) i obszar nakładania (zdefiniowany przez kąt nakładania się (Θ) około 30°, rozciągający się między dwoma brzegami bocznymi tkanki podśluzówkowej, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej o złączu podłużnym.
Po całkowitym owinięciu mandrynu, jeden koniec mandrynu zamyka się i wnętrze mandrynu pokrytego tkanką podśluzówkową łączy się z pompą próżniową. Próżnia powoduje, że ciśnienie atmosferyczne wywiera działanie kompresyjne na warstwy tkanki podśluzówkowej i przyśpiesza odwodnienie tkanki podśluzówkowej. Proces zamykania próżnią/suszenia dokonuje się typowo w ciągu około 4 godzin. Po zakończeniu suszenia i zamykania chwyta się i ciągnie wzdłuż końce pępowiny. Pępowina łatwo odwija się pod cylindrem tkanki podśluzówkowej, który następnie łatwo zsuwa się z mandrynu. W wyniku powstaje cylinder bez złączy, wyglądający jak słomka do napojów.
Można stosować inne typy szczeliwa, stężenie i sposób owijania. Na przykład, sposób taki stanowi spiralne owijanie długiego, wąskiego paska tkanki podśluzówkowej na mandrynie z obszarem nakładania i następnie spiralne owijanie w kierunku przeciwnym. Zapewnia to cztery warstwy tkanki podśluzówkowej, podtrzymujące ciśnienie wewnątrz. Tę podwójną spiralę można łączyć ze sposobem owijania pokazanym na fig. 3. Według niniejszego wynalazku tkankę podśluzówkową można owijać na mandrynie w różnych orientacjach. Jedynym ograniczeniem jest to, aby nie było przerw między złączami nakładających się tkanek. W korzystnych wykonaniach złącza wytworzone przez nakładające się paski tkanki podśluzówkowej powinny zachodzić na siebie o 0,5-3 cm i więcej, korzystnie, od 1 do 2 cm.
Przykład 2
Spawanie punktowe złączy z tkanki podśluzówkowej
W jednym z wykonań złącze owiniętej tkanki można „spawać punktowo” dla zapewnienia tego, żeby część końcowa nie obluzowała się. Według tego wykonania wynalazku, zachodzący obszar tworzący złącze pociera się wzdłuż pałeczką zwilżoną χ% aldehydem glutarowym (lub innym środkiem usieciowującym lub adhezyjnym). Wartość χ wynosi od około 0,1 do około 1,0%, korzystnie około 0,5%, jednak istnieje związek między szerokością złącza, stężeniem aldehydu glutarowego i liczbą zwojów, określający ciśnienie rozrywające. Zamiast tego, złącze można spawać punktowo laserem.
184 497
W innym wykonaniu złącze cylindra z tkanki podśluzówkowej można spawać punktowo termicznie w celu dalszego zamknięcia złączą tkanki, do wytworzenia jednostkowego cylindra tkanki podśluzówkowej. Za jakość termicznego spawania punktowego tkanki podśluzówkowej odpowiadają cztery czynniki: 1) temperatura 2) siła 3) czas przykładania siły i 4) kształt narzędzia do spawania termicznego, narzędzie ostro zakończone daje spawanie z wytworzeniem otworu. Narzędzie zakończone tępo nie wytwarza otworu, a zakończenie soczewkowe może tworzyć mały otwór.
Stosując małą lutownicę z zakończeniem kalibrowanym temperaturowo, można wtopić tkankę podśluzówkową dla wytworzenia punktów „spawania” pomiędzy dwoma kawałkami tkanki podśluzówkowej. Umieszczając próbkę tkanki podśluzówkowej na płytce szklanej (w celu uniknięcia rozpraszania ciepła), ogrzane zakończenie przykłada się do tkanki podśluzówkowej w celu określenia temperatury i czasu przyłożenia, niezbędnego do stopnia tkanki. Badania prowadzono na paskach tkanki podśluzówkowej o szerokości 1 cm, nałożonych na siebie o 1 cm, w celu określenia liczby termicznych spawów punktowych niezbędnych do złączenia dwóch kawałków tkanki podśluzówkowej. Pięć spawań punktowych w nakładającym się obszarze o wymiarach 1x1 cm zapewnia połączenie bardziej wytrzymałe, niż siła potrzebna do rozerwania pojedynczej grubości paska o szerokości 1 cm. Zakończenie ostre daje małe, punktowe połączenie z wytworzeniem otworu, tak więc zadaniem jest zidentyfikowanie parametrów, pozwalających zapewnić najsilniejsze spawanie z wytworzeniem możliwie najmniejszego otworu.
W celu optymalizacji warunków spawania punktowego przeprowadzono poniższe doświadczenia. Zastosowano kawałki tkanki podśluzówkowej o szerokości 1 cm i długości 10 cm; wytworzono 50 próbek i badano je przy utrzymywaniu na stałym poziomie trzech z czterech parametrów (temperatura, czas, siła i kształt zakończenia) i zmianie jednego parametru, w tych pierwszych badaniach stosowano zakończenie zaostrzone. Następnie badania powtórzono z zakończeniem soczewkowatym 0,5 mm, i potem z zakończeniem tępym o średnicy 1 mm. Wyniki wskazują, w jaki sposób uzyskać najsilniejsze spawanie z wytworzeniem najmniejszego otworu, mierzonego pod mikroskopem. Określiliśmy również wytrzymałość na rozerwanie wybranych próbek, stosując urządzenie MTS.
b) Model zwierzęcy
Do badania odpowiedzi organizmu gospodarza na spawane punktowo paski tkanki podśluzówkowej zastosowano model szczurów odstawionych od matki. Szczury znieczulono i utrzymywano w znieczuleniu metafanem, podawanym przez maskę na pysk. Powierzchnię brzuszną zwierzęcia przygotowano do zabiegu chirurgicznego w warunkach jałowych, w każdym z kwadrantów skóry brzucha wykonano podłużne nacięcia skóry. Następnie w tkance podskórnej każdego szczura wykonano dwustronne kieszenie podskórne poprzez rozwarstwienie na tępo. W każdej z kieszeni umieszczono podskórnie jedną próbkę badaną o powierzchni 1 cm2 i przytwierdzono w tym położeniu jednym szwem z polipropylenu 5-0 do leżącej poniżej powięzi, nacięcia skórne zamknięto pojedynczym przerywanym szwem nicią polipropylenową 5-0. Do badania zastosowano 24 szczury.
Po określonym czasie dokonano uśmiercenia zwierząt dosercowym wstrzyknięciem chlorku potasu (1, 2, 4 i 8 tygodni po wszczepieniu).
C) Analiza morfologiczna
Próbki pobrane do oceny morfologicznej utrwalano w utrwalaczu Trumpa przez 24 godziny i następnie umieszczano w buforze fosforanowym. Próbki do oceny w mikroskopie świetlnym zatapiano w parafinie i wykonywano z nich skrawki o grubości 2-3 pm. Skrawki zabarwiano hematoksyliną i eozyną do oceny ogólnej morfologii i barwieniem VonKossa do oceny zwapnień.
Przykład 3
Wytwarzanie i badanie cylindra tkanki podśluzówkowej
Celem tego badania było wytworzenie wszczepów o średnicy zewnętrznej 5,0 mm. Wydrążony mandryn o średnicy 4 mm, zaopatrzony w wiele otworów, spiralnie owinięto niezachodzącą na siebie pępowiną. Następnie nałożono dwie i pół warstwy tkanki podśluzówkowej dla wytworzenia cylindra tkanki podśluzówkowej i część zachodzącą przytwierdzono aldehy184 497 dem glutarowym w jednej grupie i szwami w drugiej grupie. Następnie wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej owinięto drugi płat tkanki podśluzówkowej i zeszyto razem przeciwległe brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej. Po owinięciu jeden z końców mandrynu połączono z pompą próżniową, a drugi koniec mandrynu zamknięto. Powstała w mandrynie próżnia powoduje, że ciśnienie atmosferyczne ściska mocno razem warstwy, tkanki podśluzówkowej i usuwa wilgoć z tkanki podśluzówkowej, co wymaga około 24 godzin.
Po wysuszeniu warstw tkanki podśluzówkowej końce pępowiny chwyta się i pociąga wzdłuż. Pępowina równo i łatwo rozwija się pod cylindrem tkanki podśluzówkowej, który następnie łatwo zsuwa się z mandrynu.
e) Badanie statyczne
Przed badaniem oporności na rozrywanie każdy wszczep z tkanki podśluzówkowej namoczono w 0,9% roztworze soli fizjologicznej w temperaturze 37°C na 24 godziny. Celem tego badania było określenie trwałości złączy.
W celu określenia wytrzymałości na rozrywanie jeden z końców cylindra tkanki podśluzówkowej przymocowano do łącznika, używanego do zastosowania ciśnienia powietrza. Drugi koniec cylindrycznego wszczepu z tkanki podśluzówkowej zamknięto szwem i podano rosnące ciśnienie powietrza. Ciągły zapis ciśnienia względem czasu umożliwia dokładne określenie ciśnienia rozerwania. Naszym celem jest uzyskanie ciśnienia rozerwania wynoszącego co najmniej 1000 mm Hg. Korzystnym sposobem wytwarzania jest sposób powodujący rozerwanie (przy dowolnym ciśnieniu) bez rozejścia się warstw. Cylindryczne wszczepy z tkanki podśluzówkowej, które przeszły test statyczny, poddano testowi pulsacyjnemu.
f) Test pulsacyjny
Okresem krytycznym dla cylindrycznego wszczepu z tkanki podśluzówkowej jest pierwsze kilka tygodni po wszczepieniu, kiedy wszczep jest we wstępnej fazie remodelowania i poddany, jest działaniu ciepłej krwi, z ciśnieniem statycznym (rozkurczowym) i pulsacyjnym. W tym czasie najistotniejsze jest to, czy wszczep zachowa wytrzymałość w okresie wczesnego remodelowania. W związku z tym przeprowadziliśmy badanie pulsacyjnym ciśnieniem wszczepów w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C. Stosowano ciśnienie pulsacyjne 200/150 mm Hg z częstotliwością,. 1,'sek. Badanie prowadzono przez 2 tygodnie, po których przeprowadzono statyczne badanie na rozerwanie.
Przykład 4
Badanie pulsacyjne cylindrów tkanki podśluzówkowej
W celu zbadania trwałości cylindrów tkanki podśluzówkowej, wytworzonych z płatów tkanki podśluzówkowej według niniejszego wynalazku, opracowano sposób badania pulsacyjnego. Dołączono pompę ciśnieniową pulsacyjną, podającą pulsy ciśnienia o regulowanej intensywności przy 4,5 Hz. Płynem w systemie była woda jałowa. Ciśnienie podawano na wytworzone cylindryczne wszczepy z tkanki podśluzówkowej, przymocowane do wylotu pompy. Cylindry zanurzono w wodzie o temperaturze 37°C, co miało naśladować warunki fizjologiczne. Typowo, system badania pulsacyjnego stosowano przy ciśnieniu 150/50 mm Hg lub 400/200 mm Hg. Spadek podawanego ciśnienia wskazuje na uszkodzenie wszczepu.
Wyniki badania cylindrów wytworzonych z tkanki podśluzówkowej
Cylindry tkanki podśluzówkowej poddane obróbce aldehydem
Wokół zaopatrzonego w wiele otworów wydrążonego mandrynu owinięto nawodnioną tkankę podśluzówkową jelita cienkiego (dwa i pół obrotu), i zanurzono w rozcieńczonym roztworze aldehydu glutarowego (GA), i wysuszono w próżni, jak to opisano uprzednio. Te potraktowane GA cylindry tkanki podśluzówkowej badano następnie na urządzeniu do badania pulsacyjnego.
Wszczepy potraktowane > 1 % roztworem GA (wagowo) wykazywały istotną trwałość w ciśnieniu pulsacyjnym (400/200), i pozostawały nieuszkodzone przez ponad 5,5 miliona cyklów pulsacyjnych. Wszczepy potraktowane <1% roztworem GA (wagowo) wykazywały trwałość znamiennie mniejszą; przetrwały one mniej niż 500000 cykli w podobnych warunkach. W związku z tym obróbka cylindrów tkanki podśluzówkowej 1 % (wagowo) lub bardziej stężonym roztworem GA umożliwia wytworzenie jednostkowego cylindra tkanki podśluzówkowej o pożądanej trwałości i oporności na ciśnienie pulsacyjne.
184 497
Niepoddane obróbce, zaszyte ręcznie cylindry tkanki podśluzówkowej
Wokół zaopatrzonego w wiele otworów wydrążonego mandrynu owinięto nawodnioną tkankę podśluzówkową jelita cienkiego, złącze zeszyto i następnie owinięto dodatkową warstwą tkanki podśluzówkowej jelita i cienkiego i zaszyto ręcznie wzdłuż, jak to przedstawiono na fig. 5b i 5c. Te niepoddane obróbce, zaszyte ręcznie cylindry badano następnie na urządzeniu do badania pulsacyjnego.
Wyniki tych badań wykazały, że cylindry zaszyte ręcznie przetrwały ponad 6 milionów cykli pulsacyjnych; wówczas badanie celowo przerwano; granice trwałości pozostają nadal do ustalenia.

Claims (37)

1. Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej, znamienna tym, że zawiera pierwszy płat (60) tkanki podśluzówkowej, uformowany w kształt cylindra tkanki podśluzówkowej i zaopatrzony w pierwszy brzeg (64) i przeciwny drugi brzeg (65), przy czym przeciwny drugi brzeg (65) pierwszego płata (60) jest wysunięty nad pierwszym brzegiem (64) pierwszego płata (60), tworząc wielowarstwowy obszar nakładania (62) tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, zaś warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania (62) są do siebie wzajemnie przytwierdzone, i drugi płat (70) tkanki podśluzówkowej, zaopatrzony w pierwszy brzeg (74) i przeciwny drugi brzeg (76), przy czym drugi płat (70) przylega do cylindra tkanki podśluzówkowej, i pierwszy brzeg (74) i przeciwny drugi brzeg (76) drugiego płata (70) są zeszyte razem wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej.
2. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że pierwszy brzeg (64) i przeciwny drugi brzeg (65) pierwszego płata (60) tkanki podśluzówkowej są do siebie równoległe.
3. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej zawiera dwie warstwy tkanki podśluzówkowej, a wielowarstwowy obszar nakładania (62) zawiera trzy warstwy tkanki podśluzówkowej.
4. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania (62) jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie za pomocą środka usieciowującego.
5. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat (70) tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
6. Cylindryczna proteza według zastrz. 4, znamienna tym, że środek usieciowujący stanowi aldehyd glutarowy.
7. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania (62) jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie szwami, a obszar nakładania (62) jest przesunięty w stosunku do szwów wytworzonych w drugim płacie (70) tkanki podśluzówkowej.
8. Cylindryczna proteza według zastrz. 7, znamienna tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat (70) tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
9. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że tkanka podśluzówkowa zawiera jelitową tkankę podśluzówkową, oddzieloną od leżącej w kierunku światła (abluminalnie) warstwy mięśniowej i co najmniej od części luminalnej błony mięśniowej kręgowca stałocieplnego.
10. Cylindryczna proteza według zastrz. 1, znamienna tym, że powierzchnia abluminalna cylindra tkanki podśluzówkowej znajduje się na zewnątrz cylindra.
11. Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej, znamienna tym, że zawiera pierwszy płat (60) tkanki podśluzówkowej, uformowany w kształt cylindra tkanki podśluzówkowej i zaopatrzony w pierwszy brzeg (64) i przeciwny drugi brzeg (65), przy czym przeciwny drugi brzeg (65) pierwszego płata (60) jest wysunięty nad pierwszym brzegiem (64) pierwszego płata (60), tworząc wielowarstwowy obszar nakładania (62) tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, zaś warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania są do siebie wzajemnie przytwierdzone, i drugi płat (70) tkanki podśluzówkowej, zaopatrzony w pierwszy brzeg (74) i przeciwny drugi brzeg (76), przy czym drugi płat (70) przylega do cylindra tkanki podśluzówkowej, i przeciwny drugi brzeg (76) drugiego płata (70) jest wysunięty nad pierwszym brzegiem (74) drugiego płata (70) i jest przyszyty do drugiego płata (70) tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji leżącego pod spodem cylindra tkanki podśluzówkowej.
184 497
12. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że pierwszy brzeg (64) i przeciwny drugi brzeg (65) pierwszego płata (60) tkanki podśluzówkowej są do siebie równoległe.
13. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania (62) jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie środkiem usieciowującym.
14. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
15. Cylindryczna proteza według zastrz. 13, znamienna tym, że środek usieciowujący stanowi aldehyd glutarowy.
16. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że wiele warstw tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania (62) jest przytwierdzonych do siebie wzajemnie szwami, a obszar nakładania (62) jest przesunięty w stosunku do szwów wytworzonych w drugim płacie (70) tkanki podśluzówkowej.
17. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat (70) tkanki podśluzówkowej są połączone ze sobą za pomocą kompresji.
18. Cylindryczna proteza według zastrz. 11, znamienna tym, że tkanka podśluzówkowa zawiera jelitową tkankę podśluzówkową, oddzieloną od leżącej w kierunku światła (abluminalnie) warstwy mięśniowej i co najmniej od części luminalnej błony mięśniowej kręgowca stałocieplnego.
19. Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, znamienny tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, po czym na ten mandryn nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający brzeg pierwszy i przeciwny drugi brzeg, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej, następnie przytwierdza się warstwy tkanki podśluzówkowej w obszarze nakładania się wzajemnie do siebie, i nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający brzeg pierwszy i przeciwny drugi brzeg, na cylinder tkanki podśluzówkowej, po czym zezywa się przeciwny drugi brzeg drugiego płata tkanki podśluzówkowej z nałożonym drugim płatem tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, i cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu, w warunkach odwodnienia.
2θ.
Sposób według zastrz. 19, znamienny tym, że przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, a po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
21. Sposób według zastrz. 20, znamienny tym, że pierwszy i drugi przeciwne brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej zszywa się razem wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej.
22. Sposób według zastrz. 19, znamienny tym, że przeciwny drugi brzeg drugiego płata rozciąga się nad pierwszym brzegiem drugiego płata tkanki podśluzówkowej i ten przeciwny drugi brzeg drugiego płata zszzywa się wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej.
23. Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, znamienny tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na mandryn, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten przeciwny drugi brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej na siebie z zakładką, styka się cylinder tkanki podśluzówkowej z roztworem zawierającym środek usieciowujący, nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na cylinder tkanki podśluzówkowej, zezzywa się razem pierwszy i drugi przeciwne do siebie brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra
184 497 tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, i poddaje się kompresji cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
24. Sposób według zastrz. 23, znamienny tym, że przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, przy czym po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
25. Sposób według zastrz. 24, znamienny tym, że po zetknięciu cylindra tkanki podśluzówkowej z środkiem usieciowującym, a przed nałożeniem drugiego płata tkanki podśluzówkowej na cylinder tkanki podśluzówkowej, cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
26. Sposób według zastrz. 23, znamienny tym, że stosuje się roztwór usieciowujący zawierający od około 0,1 do około 1,0% aldehydu glutarowego.
27. Sposób według zastrz. 24, znamienny tym, że stosuje się mandryn w postaci wydrążonego porowatego cylindra, pustego w środku, zaś kompresję tkanki biologicznej przeprowadza się poprzez podłączenie podciśnienia do światła mandrynu.
28. Sposób według zastrz. 24, znamienny tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej ogrzewa się w czasie kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej.
29. Sposób według zastrz. 24, znamienny tym, że kompresję cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej przeprowadza się w komorze kompresyjnej.
30. Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, znamienny tym, że dobiera się mandryn o określonej średnicy, po czym nakłada się pierwszy płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg i przeciwny drugi brzeg, na materiał przepuszczalny dla wody, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, przy czym ten drugi przeciwny brzeg pierwszego płata tkanki podśluzówkowej rozciąga się nad pierwszym brzegiem pierwszego płata tkanki podśluzówkowej, ograniczając wielowarstwowy obszar nakładania się tkanki podśluzówkowej, następnie cylinder tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając go do mandrynu w warunkach odwodnienia i zezywa się razem warstwy obszaru nakładania, po czym na cylinder tkanki podśluzówkowej nakłada się drugi płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszy brzeg boczny i przeciwny drugi brzeg i zszywa się pierwszy i drugi przeciwne brzegi drugiego płata tkanki podśluzówkowej wzdłuż cylindra tkanki podśluzówkowej, bez powodowania perforacji cylindra tkanki podśluzówkowej, a następnie cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej poddaje się kompresji, dociskając je do mandrynu w warunkach odwodnienia.
31. Sposób według zastrz. 30, znamienny tym, że przed nałożeniem na mandryn pierwszego płata tkanki podśluzówkowej nakłada się na mandryn pasek materiału przepuszczalnego dla wody, przy czym po wytworzeniu protezy cylindrycznej pasek materiału przepuszczalnego dla wody usuwa się z mandrynu, ułatwiając zsuwanie cylindrycznej protezy z mandrynu.
32. Sposób według zastrz. 3l, znamienny tym, że stosuje się mandryn w postaci wydrążonego porowatego cylindra, pustego w środku, zaś kompresję tkanki biologicznej przeprowadza się poprzez podłączenie podciśnienia do światła mandrynu.
33. Sposób według zastrz. 30, znamienny tym, że cylinder tkanki podśluzówkowej i drugi płat tkanki podśluzówkowej ogrzewa się w czasie kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej.
34. Sposób według zastrz. 30, znamienny tym, że etap kompresji cylindra tkanki podśluzówkowej i drugiego płata tkanki podśluzówkowej przeprowadza się w komorze kompresyjnej.
35. Sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej, znamienny tym, że na mandryn nakłada się płat tkanki podśluzówkowej, posiadający pierwszą część brzeżną i drugą część brzeżną, przy czym pierwsza i druga część brzeżna płata tkanki podśluzówkowej nakładają się, tworząc cylinder tkanki podśluzówkowej, następnie styka się nakładające się części brzeżne pierwszą i drugą ze środkiem usieciowującym, i poddaje się kompresji tę nakładające się części brzeżne pierwszą i drugą w warunkach odwodnienia.
184 497
36. Sposób według zastrz. 35, znamienny tym, że nakładające się części pierwszą i drugą poddaje się kompresji próżniowej.
37. Sposób według zastrz. 35, znamienny tym, że jako środek usieciowujący stosuje się aldehyd glutarowy.
PL97333901A 1996-12-10 1997-12-10 Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej PL184497B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US3267996P 1996-12-10 1996-12-10
PCT/US1997/022040 WO1998025543A1 (en) 1996-12-10 1997-12-10 Tubular submucosal graft constructs

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL184497B1 true PL184497B1 (pl) 2002-11-29

Family

ID=21866244

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL97333901A PL184497B1 (pl) 1996-12-10 1997-12-10 Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej

Country Status (15)

Country Link
US (2) US6187039B1 (pl)
EP (2) EP0954254B1 (pl)
JP (3) JP4084420B2 (pl)
KR (2) KR100646121B1 (pl)
AT (1) ATE249182T1 (pl)
AU (2) AU743779B2 (pl)
BR (1) BR9712671A (pl)
CA (2) CA2273077C (pl)
CZ (1) CZ189099A3 (pl)
DE (2) DE69731553T2 (pl)
DK (1) DK0954254T3 (pl)
ES (2) ES2208971T3 (pl)
PL (1) PL184497B1 (pl)
SK (1) SK71399A3 (pl)
WO (2) WO1998025543A1 (pl)

Families Citing this family (272)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040067157A1 (en) * 1993-07-22 2004-04-08 Clearant, Inc. Methods for sterilizing biological materials
US6334872B1 (en) 1994-02-18 2002-01-01 Organogenesis Inc. Method for treating diseased or damaged organs
US6485723B1 (en) * 1995-02-10 2002-11-26 Purdue Research Foundation Enhanced submucosal tissue graft constructs
US20020095218A1 (en) 1996-03-12 2002-07-18 Carr Robert M. Tissue repair fabric
US8716227B2 (en) 1996-08-23 2014-05-06 Cook Biotech Incorporated Graft prosthesis, materials and methods
US6666892B2 (en) * 1996-08-23 2003-12-23 Cook Biotech Incorporated Multi-formed collagenous biomaterial medical device
US6206931B1 (en) * 1996-08-23 2001-03-27 Cook Incorporated Graft prosthesis materials
SK71399A3 (en) * 1996-12-10 2000-05-16 Purdue Research Foundation Tubular submucosal graft constructs
US6696270B2 (en) * 1996-12-10 2004-02-24 Purdue Research Foundation Gastric submucosal tissue as a novel diagnostic tool
US6254627B1 (en) 1997-09-23 2001-07-03 Diseno Y Desarrollo Medico S.A. De C.V. Non-thrombogenic stent jacket
EP1083843A4 (en) * 1998-06-05 2005-06-08 Organogenesis Inc BIOTECHNICALLY MANUFACTURED VACUUM IMPLANT
MXPA00012064A (es) * 1998-06-05 2003-04-22 Organogenesis Inc Protesis de injerto tubular biodisenadas.
ATE424164T1 (de) * 1998-06-05 2009-03-15 Organogenesis Inc Verfahren zur herstellung einer gefässprothese
CA2334435C (en) * 1998-06-05 2010-10-05 Organogenesis Inc. Bioengineered vascular graft prostheses
US6398814B1 (en) * 1998-09-14 2002-06-04 Bionx Implants Oy Bioabsorbable two-dimensional multi-layer composite device and a method of manufacturing same
JP2002531181A (ja) * 1998-12-01 2002-09-24 クック・バイオテック・インコーポレーテッド 多型コラーゲン性バイオマテリアル医療装置
US8882850B2 (en) * 1998-12-01 2014-11-11 Cook Biotech Incorporated Multi-formed collagenous biomaterial medical device
US20100318174A1 (en) * 1998-12-11 2010-12-16 Endologix, Inc. Implantable vascular graft
EP1207819B1 (en) 1999-08-06 2009-03-04 Cook Biotech, Inc. Tubular graft construct
US6475235B1 (en) * 1999-11-16 2002-11-05 Iowa-India Investments Company, Limited Encapsulated stent preform
US6579538B1 (en) 1999-12-22 2003-06-17 Acell, Inc. Tissue regenerative compositions for cardiac applications, method of making, and method of use thereof
US6576265B1 (en) 1999-12-22 2003-06-10 Acell, Inc. Tissue regenerative composition, method of making, and method of use thereof
US6613082B2 (en) 2000-03-13 2003-09-02 Jun Yang Stent having cover with drug delivery capability
US6379382B1 (en) 2000-03-13 2002-04-30 Jun Yang Stent having cover with drug delivery capability
US6736838B1 (en) 2000-03-22 2004-05-18 Zuli Holdings Ltd. Method and apparatus for covering a stent
KR20030011279A (ko) * 2000-03-23 2003-02-07 클리어런트, 인코포레이티드 생물학적 성분의 살균방법
US20040086420A1 (en) * 2000-03-23 2004-05-06 Macphee Martin J. Methods for sterilizing serum or plasma
CZ301649B6 (cs) * 2000-06-28 2010-05-12 Ed. Geistlich Soehne Ag Fur Chemische Industrie Incorporated Under The Laws Of Switzerland Trubice pro regeneraci nervu a zpusob jejich výroby
US6638312B2 (en) * 2000-08-04 2003-10-28 Depuy Orthopaedics, Inc. Reinforced small intestinal submucosa (SIS)
US8366787B2 (en) 2000-08-04 2013-02-05 Depuy Products, Inc. Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
WO2002022184A2 (en) * 2000-09-18 2002-03-21 Organogenesis Inc. Bioengineered flat sheet graft prosthesis and its use
US6682695B2 (en) * 2001-03-23 2004-01-27 Clearant, Inc. Methods for sterilizing biological materials by multiple rates
KR20020094074A (ko) * 2001-06-07 2002-12-18 (주)에이치비메디컬스 체내 이식관
US20070038244A1 (en) * 2001-06-08 2007-02-15 Morris Edward J Method and apparatus for sealing access
US7993365B2 (en) 2001-06-08 2011-08-09 Morris Innovative, Inc. Method and apparatus for sealing access
AU2002310364B2 (en) * 2001-06-08 2006-02-23 Morris Innovative Research, Inc. Method and apparatus for sealing access
US20060004408A1 (en) * 2001-06-08 2006-01-05 Morris Edward J Method and apparatus for sealing access
US7560006B2 (en) * 2001-06-11 2009-07-14 Boston Scientific Scimed, Inc. Pressure lamination method for forming composite ePTFE/textile and ePTFE/stent/textile prostheses
US6696060B2 (en) 2001-06-14 2004-02-24 Clearant, Inc. Methods for sterilizing preparations of monoclonal immunoglobulins
WO2003007786A2 (en) 2001-07-16 2003-01-30 Depuy Products, Inc. Porous delivery scaffold and method
US7163563B2 (en) * 2001-07-16 2007-01-16 Depuy Products, Inc. Unitary surgical device and method
JP4294474B2 (ja) 2001-07-16 2009-07-15 デピュイ・プロダクツ・インコーポレイテッド 半月板再生装置
WO2003007787A2 (en) 2001-07-16 2003-01-30 Depuy Products, Inc. Cartilage repair and regeneration device and method
AU2002322567B2 (en) 2001-07-16 2007-09-06 Depuy Products, Inc. Devices form naturally occurring biologically derived
EP1425024A4 (en) 2001-07-16 2007-04-18 Depuy Products Inc SCAFFOLD OF POROUS EXTRACELLULAR MATRIX AND METHOD THEREOF
EP1416874A4 (en) * 2001-07-16 2007-04-18 Depuy Products Inc BIOLOGICAL / SYNTHETIC POROUS EXTRACELLULAR HYBRID MATRIX SCUFF
AU2002313694B2 (en) 2001-07-16 2007-08-30 Depuy Products, Inc. Cartilage repair apparatus and method
US8025896B2 (en) 2001-07-16 2011-09-27 Depuy Products, Inc. Porous extracellular matrix scaffold and method
US7819918B2 (en) * 2001-07-16 2010-10-26 Depuy Products, Inc. Implantable tissue repair device
US6579307B2 (en) * 2001-07-19 2003-06-17 The Cleveland Clinic Foundation Endovascular prosthesis having a layer of biological tissue
AU2002326451B2 (en) * 2001-07-26 2008-04-17 Cook Biotech Incorporated Vessel closure member and delivery apparatus
US8465516B2 (en) * 2001-07-26 2013-06-18 Oregon Health Science University Bodily lumen closure apparatus and method
US20030031584A1 (en) * 2001-08-10 2003-02-13 Wilson Burgess Methods for sterilizing biological materials using dipeptide stabilizers
US6946098B2 (en) 2001-08-10 2005-09-20 Clearant, Inc. Methods for sterilizing biological materials
US20040137066A1 (en) * 2001-11-26 2004-07-15 Swaminathan Jayaraman Rationally designed therapeutic intravascular implant coating
US6749851B2 (en) * 2001-08-31 2004-06-15 Clearant, Inc. Methods for sterilizing preparations of digestive enzymes
US7252799B2 (en) * 2001-08-31 2007-08-07 Clearant, Inc. Methods for sterilizing preparations containing albumin
US20070112358A1 (en) * 2001-09-06 2007-05-17 Ryan Abbott Systems and Methods for Treating Septal Defects
US20080015633A1 (en) * 2001-09-06 2008-01-17 Ryan Abbott Systems and Methods for Treating Septal Defects
US20050267495A1 (en) * 2004-05-17 2005-12-01 Gateway Medical, Inc. Systems and methods for closing internal tissue defects
US20060052821A1 (en) * 2001-09-06 2006-03-09 Ovalis, Inc. Systems and methods for treating septal defects
US6702835B2 (en) * 2001-09-07 2004-03-09 Core Medical, Inc. Needle apparatus for closing septal defects and methods for using such apparatus
US20090054912A1 (en) * 2001-09-06 2009-02-26 Heanue Taylor A Systems and Methods for Treating Septal Defects
US6776784B2 (en) * 2001-09-06 2004-08-17 Core Medical, Inc. Clip apparatus for closing septal defects and methods of use
US20070129755A1 (en) * 2005-12-05 2007-06-07 Ovalis, Inc. Clip-based systems and methods for treating septal defects
US20030185702A1 (en) * 2002-02-01 2003-10-02 Wilson Burgess Methods for sterilizing tissue
US20110091353A1 (en) * 2001-09-24 2011-04-21 Wilson Burgess Methods for Sterilizing Tissue
US6783968B2 (en) * 2001-09-24 2004-08-31 Clearant, Inc. Methods for sterilizing preparations of glycosidases
US20030095890A1 (en) * 2001-09-24 2003-05-22 Shirley Miekka Methods for sterilizing biological materials containing non-aqueous solvents
US7318833B2 (en) * 2001-12-19 2008-01-15 Nmt Medical, Inc. PFO closure device with flexible thrombogenic joint and improved dislodgement resistance
EP1467661A4 (en) 2001-12-19 2008-11-05 Nmt Medical Inc SEPTAL SHUTTER AND ASSOCIATED METHODS
AU2002364228B2 (en) * 2001-12-21 2007-06-28 Organogenesis Inc. System and method for forming bioengineered tubular graft prostheses
US20030124023A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-03 Wilson Burgess Method of sterilizing heart valves
US8308797B2 (en) 2002-01-04 2012-11-13 Colibri Heart Valve, LLC Percutaneously implantable replacement heart valve device and method of making same
JP2005525843A (ja) * 2002-01-14 2005-09-02 エヌエムティー メディカル インコーポレイテッド 卵円孔開存(pfo)閉塞方法および器具
US20030180181A1 (en) * 2002-02-01 2003-09-25 Teri Greib Methods for sterilizing tissue
US8529956B2 (en) 2002-03-18 2013-09-10 Carnell Therapeutics Corporation Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom
US20100254900A1 (en) * 2002-03-18 2010-10-07 Campbell Phil G Biocompatible polymers and Methods of use
US20070003653A1 (en) * 2002-03-21 2007-01-04 Ahle Karen M Automated manufacturing device and method for biomaterial fusion
US7163556B2 (en) * 2002-03-21 2007-01-16 Providence Health System - Oregon Bioprosthesis and method for suturelessly making same
US7166124B2 (en) * 2002-03-21 2007-01-23 Providence Health System - Oregon Method for manufacturing sutureless bioprosthetic stent
EP1487353A4 (en) * 2002-03-25 2008-04-16 Nmt Medical Inc FORAMEN OVAL PERSISTENT CLOSURE CLAMPS (PFO)
WO2003092546A2 (en) * 2002-04-30 2003-11-13 Cook Urological Inc. Sling for supporting tissue
JP2005524699A (ja) 2002-05-02 2005-08-18 パーデュー・リサーチ・ファウンデーション 血管新生が促進された移植片構成物
CA2483913C (en) * 2002-05-02 2014-07-15 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs comprising basement membrane
ATE472938T1 (de) * 2002-05-02 2010-07-15 Purdue Research Foundation Transplantatkonstrukte mit verbesserter vaskularisierung
EP1585426A4 (en) 2002-05-02 2006-09-20 Cook Biotech Inc WITH CELLS VACCINATED EXTRACELLULAR MATRIX TRANSPLANTS
EP1509144A4 (en) * 2002-06-03 2008-09-03 Nmt Medical Inc DEVICE FOR REINFORCING BIOLOGICAL TISSUE FOR THE FILLING OF INTRACARDIAL FAULTS
WO2003103476A2 (en) 2002-06-05 2003-12-18 Nmt Medical, Inc. Patent foramen ovale (pfo) closure device with radial and circumferential support
US20040166169A1 (en) * 2002-07-15 2004-08-26 Prasanna Malaviya Porous extracellular matrix scaffold and method
US20040013561A1 (en) * 2002-07-18 2004-01-22 David Mann Methods for sterilizing recombinant or transgenic material
US6908591B2 (en) * 2002-07-18 2005-06-21 Clearant, Inc. Methods for sterilizing biological materials by irradiation over a temperature gradient
US7550004B2 (en) 2002-08-20 2009-06-23 Cook Biotech Incorporated Endoluminal device with extracellular matrix material and methods
GB2407511B (en) * 2002-09-06 2006-11-08 Cook Biotech Inc Tissue graft prosthesis devices containing juvenile or small diameter submucosa
WO2004037333A1 (en) 2002-10-25 2004-05-06 Nmt Medical, Inc. Expandable sheath tubing
US7682392B2 (en) 2002-10-30 2010-03-23 Depuy Spine, Inc. Regenerative implants for stabilizing the spine and devices for attachment of said implants
CA2503349A1 (en) * 2002-11-06 2004-05-27 Nmt Medical, Inc. Medical devices utilizing modified shape memory alloy
US20040098121A1 (en) * 2002-11-07 2004-05-20 Nmt Medical, Inc. Patent foramen ovale (PFO) closure with magnetic force
ATE377398T1 (de) * 2002-11-22 2007-11-15 Cook Inc Stentgefässtransplantat
WO2004052213A1 (en) * 2002-12-09 2004-06-24 Nmt Medical, Inc. Septal closure devices
US9125733B2 (en) 2003-01-14 2015-09-08 The Cleveland Clinic Foundation Branched vessel endoluminal device
AU2004206815C1 (en) * 2003-01-14 2008-05-29 The Cleveland Clinic Foundation Branched vessel endoluminal device
US7407509B2 (en) 2003-01-14 2008-08-05 The Cleveland Clinic Foundation Branched vessel endoluminal device with fenestration
US20040156878A1 (en) * 2003-02-11 2004-08-12 Alireza Rezania Implantable medical device seeded with mammalian cells and methods of treatment
US7658747B2 (en) * 2003-03-12 2010-02-09 Nmt Medical, Inc. Medical device for manipulation of a medical implant
US7998188B2 (en) 2003-04-28 2011-08-16 Kips Bay Medical, Inc. Compliant blood vessel graft
US20050131520A1 (en) 2003-04-28 2005-06-16 Zilla Peter P. Compliant blood vessel graft
WO2005002601A1 (en) 2003-06-25 2005-01-13 Badylak Stephen F Conditioned matrix compositions for tissue restoration
ES2428967T3 (es) * 2003-07-14 2013-11-12 W.L. Gore & Associates, Inc. Dispositivo tubular de cierre de foramen oval permeable (FOP) con sistema de retención
US8480706B2 (en) * 2003-07-14 2013-07-09 W.L. Gore & Associates, Inc. Tubular patent foramen ovale (PFO) closure device with catch system
US9861346B2 (en) 2003-07-14 2018-01-09 W. L. Gore & Associates, Inc. Patent foramen ovale (PFO) closure device with linearly elongating petals
JP4673305B2 (ja) * 2003-08-11 2011-04-20 ウィルソン−クック・メディカル・インコーポレーテッド 外科処置用移植片
DE602004017750D1 (de) * 2003-08-19 2008-12-24 Nmt Medical Inc Expandierbarer Schleusenschlauch
GB0322145D0 (en) * 2003-09-22 2003-10-22 Howmedica Internat S De R L Apparatus for use in the regeneration of structured human tissue
US20050071012A1 (en) * 2003-09-30 2005-03-31 Hassan Serhan Methods and devices to replace spinal disc nucleus pulposus
JP4406649B2 (ja) * 2003-10-10 2010-02-03 ザ クリーブランド クリニック ファウンデイション 相互接続モジュール関連適用の管腔内プロテーゼ
US7056337B2 (en) * 2003-10-21 2006-06-06 Cook Incorporated Natural tissue stent
US6976679B2 (en) * 2003-11-07 2005-12-20 The Boeing Company Inter-fluid seal assembly and method therefor
US20050149166A1 (en) 2003-11-08 2005-07-07 Schaeffer Darin G. Branch vessel prosthesis with anchoring device and method
US20050273119A1 (en) * 2003-12-09 2005-12-08 Nmt Medical, Inc. Double spiral patent foramen ovale closure clamp
US8262694B2 (en) * 2004-01-30 2012-09-11 W.L. Gore & Associates, Inc. Devices, systems, and methods for closure of cardiac openings
AU2005212334B2 (en) * 2004-02-09 2011-06-16 Cook Medical Technologies Llc Stent graft devices having collagen coating
WO2005082289A1 (en) * 2004-02-20 2005-09-09 Cook Incorporated Prosthetic valve with spacing member
EP1737349A1 (en) * 2004-03-03 2007-01-03 NMT Medical, Inc. Delivery/recovery system for septal occluder
US20050234509A1 (en) * 2004-03-30 2005-10-20 Mmt Medical, Inc. Center joints for PFO occluders
DE602005020754D1 (de) * 2004-03-31 2010-06-02 Cook Inc Transplantatmaterial und gefässprothese mit extrazellulärer kollagenmatrix und dessen herstellungsverfahren
AU2005231781A1 (en) * 2004-03-31 2005-10-20 Cook Incorporated ECM-based graft material
US20050267524A1 (en) * 2004-04-09 2005-12-01 Nmt Medical, Inc. Split ends closure device
US8361110B2 (en) * 2004-04-26 2013-01-29 W.L. Gore & Associates, Inc. Heart-shaped PFO closure device
US20050249772A1 (en) * 2004-05-04 2005-11-10 Prasanna Malaviya Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
US7569233B2 (en) * 2004-05-04 2009-08-04 Depuy Products, Inc. Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
US8308760B2 (en) * 2004-05-06 2012-11-13 W.L. Gore & Associates, Inc. Delivery systems and methods for PFO closure device with two anchors
US7842053B2 (en) 2004-05-06 2010-11-30 Nmt Medical, Inc. Double coil occluder
US7704268B2 (en) * 2004-05-07 2010-04-27 Nmt Medical, Inc. Closure device with hinges
US8257389B2 (en) 2004-05-07 2012-09-04 W.L. Gore & Associates, Inc. Catching mechanisms for tubular septal occluder
FR2870450B1 (fr) * 2004-05-18 2007-04-20 David Jean Marie Nocca Bandelette prothesique ajustable
EP1746952A1 (en) * 2004-05-20 2007-01-31 Cook Incorporated Endoluminal device with extracellular matrix material and methods
WO2005117757A2 (en) * 2004-05-27 2005-12-15 St. John Health Capsulated stent and its uses
EP1768612A1 (en) * 2004-07-07 2007-04-04 Cook Incorporated Graft, stent graft and method for manufacture
US8313524B2 (en) * 2004-08-31 2012-11-20 C. R. Bard, Inc. Self-sealing PTFE graft with kink resistance
CA2581677C (en) * 2004-09-24 2014-07-29 Nmt Medical, Inc. Occluder device double securement system for delivery/recovery of such occluder device
US7513866B2 (en) * 2004-10-29 2009-04-07 Depuy Products, Inc. Intestine processing device and associated method
WO2006062976A2 (en) * 2004-12-07 2006-06-15 Cook Incorporated Methods for modifying vascular vessel walls
WO2006065665A1 (en) * 2004-12-13 2006-06-22 Robert Hunt Carpenter, Dvm, Pc Multi-wall expandable device capable of drug delivery
US8864819B2 (en) * 2004-12-17 2014-10-21 Cook Medical Technologies Llc Stented side branch graft
US7354627B2 (en) * 2004-12-22 2008-04-08 Depuy Products, Inc. Method for organizing the assembly of collagen fibers and compositions formed therefrom
US20060206139A1 (en) * 2005-01-19 2006-09-14 Tekulve Kurt J Vascular occlusion device
WO2006099016A2 (en) * 2005-03-09 2006-09-21 Providence Health System A composite multi-layered vascular graft prosthesis
US8277480B2 (en) 2005-03-18 2012-10-02 W.L. Gore & Associates, Inc. Catch member for PFO occluder
JP2009501027A (ja) 2005-06-17 2009-01-15 シー・アール・バード・インコーポレイテツド 締付後のよじれ耐性を有する血管移植片
US8579936B2 (en) * 2005-07-05 2013-11-12 ProMed, Inc. Centering of delivery devices with respect to a septal defect
US20070135910A1 (en) * 2005-07-12 2007-06-14 Eugene Bell Vascular prosthesis
WO2007126411A2 (en) 2005-07-28 2007-11-08 Carnegie Mellon University Biocompatible polymers and methods of use
EP1928512B1 (en) * 2005-09-01 2012-11-14 Cook Medical Technologies LLC Attachment of material to an implantable frame by cross-linking
US7846179B2 (en) * 2005-09-01 2010-12-07 Ovalis, Inc. Suture-based systems and methods for treating septal defects
US9259267B2 (en) 2005-09-06 2016-02-16 W.L. Gore & Associates, Inc. Devices and methods for treating cardiac tissue
WO2007030433A2 (en) * 2005-09-06 2007-03-15 Nmt Medical, Inc. Removable intracardiac rf device
ATE536140T1 (de) 2005-09-30 2011-12-15 Cook Medical Technologies Llc Beschichtete gefässverschlussvorrichtung
WO2007120186A2 (en) * 2005-10-24 2007-10-25 Nmt Medical, Inc. Radiopaque bioabsorbable occluder
WO2007053592A2 (en) * 2005-10-31 2007-05-10 Cook Incorporated Composite stent graft
CA2626598A1 (en) 2005-11-09 2007-05-18 C.R. Bard Inc. Grafts and stent grafts having a radiopaque marker
US8163002B2 (en) * 2005-11-14 2012-04-24 Vascular Devices Llc Self-sealing vascular graft
GB0524087D0 (en) * 2005-11-25 2006-01-04 Symetis Ag Biodegradable scaffold
US20070167981A1 (en) * 2005-12-22 2007-07-19 Nmt Medical, Inc. Catch members for occluder devices
WO2007079081A1 (en) * 2005-12-29 2007-07-12 Med Institute, Inc. Endoluminal device including a mechanism for proximal or distal fixation, and sealing and methods of use thereof
US7815923B2 (en) 2005-12-29 2010-10-19 Cook Biotech Incorporated Implantable graft material
US20070166396A1 (en) 2006-01-06 2007-07-19 University Of Pittsburgh Extracellular matrix based gastroesophageal junction reinforcement device
US20070168021A1 (en) * 2006-01-17 2007-07-19 Holmes David R Jr Porous three dimensional nest scaffolding
WO2007115125A2 (en) * 2006-03-31 2007-10-11 Nmt Medical, Inc. Deformable flap catch mechanism for occluder device
US8551135B2 (en) * 2006-03-31 2013-10-08 W.L. Gore & Associates, Inc. Screw catch mechanism for PFO occluder and method of use
US8870913B2 (en) 2006-03-31 2014-10-28 W.L. Gore & Associates, Inc. Catch system with locking cap for patent foramen ovale (PFO) occluder
CA2649705C (en) * 2006-04-19 2015-12-01 William A. Cook Australia Pty. Ltd Twin bifurcated stent graft
US7790273B2 (en) * 2006-05-24 2010-09-07 Nellix, Inc. Material for creating multi-layered films and methods for making the same
US9259336B2 (en) 2006-06-06 2016-02-16 Cook Medical Technologies Llc Stent with a crush-resistant zone
US8974542B2 (en) 2006-06-27 2015-03-10 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Biodegradable elastomeric patch for treating cardiac or cardiovascular conditions
JP5392655B2 (ja) * 2006-08-18 2014-01-22 クック・メディカル・テクノロジーズ・リミテッド・ライアビリティ・カンパニー ステントグラフティングシステム
US20080082083A1 (en) * 2006-09-28 2008-04-03 Forde Sean T Perforated expandable implant recovery sheath
US8029532B2 (en) * 2006-10-11 2011-10-04 Cook Medical Technologies Llc Closure device with biomaterial patches
WO2008063780A2 (en) 2006-10-12 2008-05-29 C.R. Bard Inc. Vascular grafts with multiple channels and methods for making
US8529958B2 (en) 2006-10-17 2013-09-10 Carmell Therapeutics Corporation Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom
US7871440B2 (en) * 2006-12-11 2011-01-18 Depuy Products, Inc. Unitary surgical device and method
JP2008154844A (ja) * 2006-12-25 2008-07-10 Gunze Ltd 自動縫合器用縫合補強材
US8343536B2 (en) 2007-01-25 2013-01-01 Cook Biotech Incorporated Biofilm-inhibiting medical products
WO2008094691A2 (en) * 2007-02-01 2008-08-07 Cook Incorporated Closure device and method for occluding a bodily passageway
US8617205B2 (en) 2007-02-01 2013-12-31 Cook Medical Technologies Llc Closure device
WO2008094706A2 (en) * 2007-02-01 2008-08-07 Cook Incorporated Closure device and method of closing a bodily opening
WO2008109407A2 (en) 2007-03-02 2008-09-12 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Extracellular matrix-derived gels and related methods
US9005242B2 (en) 2007-04-05 2015-04-14 W.L. Gore & Associates, Inc. Septal closure device with centering mechanism
WO2008131167A1 (en) 2007-04-18 2008-10-30 Nmt Medical, Inc. Flexible catheter system
US20080279833A1 (en) 2007-05-10 2008-11-13 Matheny Robert G Laminate sheet articles for tissue regeneration
US9283302B2 (en) 2011-12-16 2016-03-15 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Extracellular matrix encasement structures and methods
US20090024106A1 (en) * 2007-07-17 2009-01-22 Morris Edward J Method and apparatus for maintaining access
US8747455B2 (en) 2007-08-08 2014-06-10 The Cleveland Clinic Foundation Branched stent graft system
US8734483B2 (en) * 2007-08-27 2014-05-27 Cook Medical Technologies Llc Spider PFO closure device
US20090062838A1 (en) * 2007-08-27 2009-03-05 Cook Incorporated Spider device with occlusive barrier
US8025495B2 (en) * 2007-08-27 2011-09-27 Cook Medical Technologies Llc Apparatus and method for making a spider occlusion device
US8308752B2 (en) * 2007-08-27 2012-11-13 Cook Medical Technologies Llc Barrel occlusion device
US20090082816A1 (en) 2007-09-20 2009-03-26 Graham Matthew R Remodelable orthopaedic spacer and method of using the same
US8226701B2 (en) 2007-09-26 2012-07-24 Trivascular, Inc. Stent and delivery system for deployment thereof
US8066755B2 (en) 2007-09-26 2011-11-29 Trivascular, Inc. System and method of pivoted stent deployment
US8663309B2 (en) 2007-09-26 2014-03-04 Trivascular, Inc. Asymmetric stent apparatus and method
EP2194921B1 (en) 2007-10-04 2018-08-29 TriVascular, Inc. Modular vascular graft for low profile percutaneous delivery
CZ301086B6 (cs) * 2007-10-17 2009-11-04 Bio-Skin, A. S. Sterilní autologní, allogenní nebo xenogenní implantát a zpusob jeho výroby
CA2703732A1 (en) * 2007-11-07 2009-05-14 Ovalis, Inc. Systems, devices and methods for achieving transverse orientation in the treatment of septal defects
US8083789B2 (en) 2007-11-16 2011-12-27 Trivascular, Inc. Securement assembly and method for expandable endovascular device
US8328861B2 (en) 2007-11-16 2012-12-11 Trivascular, Inc. Delivery system and method for bifurcated graft
US8257434B2 (en) 2007-12-18 2012-09-04 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Prosthetic tissue valve
US8679176B2 (en) 2007-12-18 2014-03-25 Cormatrix Cardiovascular, Inc Prosthetic tissue valve
US20130165967A1 (en) 2008-03-07 2013-06-27 W.L. Gore & Associates, Inc. Heart occlusion devices
EP2113262B1 (en) 2008-04-29 2013-11-06 Proxy Biomedical Limited A Tissue Repair Implant
EP2326256A1 (en) * 2008-05-20 2011-06-01 Ovalis, Inc. Wire-like and other devices for treating septal defects and systems and methods for delivering the same
WO2009155236A1 (en) 2008-06-16 2009-12-23 Morris Innovative Research, Inc. Method and apparatus for sealing access
AU2009313554B2 (en) * 2008-11-04 2015-08-27 Inregen Cell-scaffold constructs
US8734502B2 (en) 2008-12-17 2014-05-27 Cook Medical Technologies Llc Tapered stent and flexible prosthesis
WO2010085449A1 (en) 2009-01-23 2010-07-29 Cook Incorporated Vessel puncture closure device
AU2010216095B2 (en) * 2009-02-18 2015-10-08 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Compositions and methods for preventing cardiac arrhythmia
WO2010129162A1 (en) 2009-05-06 2010-11-11 Hansa Medical Products, Inc. Self-adjusting medical device
US8956389B2 (en) 2009-06-22 2015-02-17 W. L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
US20120029556A1 (en) 2009-06-22 2012-02-02 Masters Steven J Sealing device and delivery system
BRPI0902410B8 (pt) * 2009-07-01 2021-07-27 Sin Sist De Implante Nacional Ltda processo de fabricação de membrana colagênica biocompatível para aplicação médico-odontológica e produto obtido
US8652500B2 (en) 2009-07-22 2014-02-18 Acell, Inc. Particulate tissue graft with components of differing density and methods of making and using the same
US8298586B2 (en) 2009-07-22 2012-10-30 Acell Inc Variable density tissue graft composition
ES2644599T3 (es) * 2009-09-02 2017-11-29 Lifecell Corporation Injertos vasculares procedentes de matrices de tejido acelular
US20110098799A1 (en) 2009-10-27 2011-04-28 Medtronic Vascular, Inc. Stent Combined with a Biological Scaffold Seeded With Endothelial Cells
US20110135706A1 (en) * 2009-12-03 2011-06-09 Lifecell Corporation Nerve treatment devices and methods
EP3028672A1 (en) 2010-03-01 2016-06-08 Colibri Heart Valve LLC Percutaneously deliverable heart valve and method associated therewith
CA2806544C (en) 2010-06-28 2016-08-23 Colibri Heart Valve Llc Method and apparatus for the endoluminal delivery of intravascular devices
CA2747610C (en) 2010-08-13 2014-09-16 Cook Medical Technologies Llc Precannulated fenestration
US9101455B2 (en) 2010-08-13 2015-08-11 Cook Medical Technologies Llc Preloaded wire for endoluminal device
US9421307B2 (en) 2010-08-17 2016-08-23 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Biohybrid composite scaffold
CA2808225C (en) 2010-08-24 2019-02-12 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for cardiac therapy
WO2012051489A2 (en) 2010-10-15 2012-04-19 Cook Medical Technologies Llc Occlusion device for blocking fluid flow through bodily passages
US8765039B1 (en) * 2010-10-29 2014-07-01 Walter J. Ledergerber Implantable micro-textured scar inducing ePTFE structures
SG191008A1 (en) 2010-12-14 2013-07-31 Colibri Heart Valve Llc Percutaneously deliverable heart valve including folded membrane cusps with integral leaflets
US9198787B2 (en) 2010-12-31 2015-12-01 Cook Medical Technologies Llc Conformable prosthesis delivery system and method for deployment thereof
KR20140024905A (ko) 2011-05-27 2014-03-03 코매트릭스 카디오바스컬라 인코포레이티드 멸균된 무세포성 세포외 기질 조성물 및 이의 제조 방법
US9549715B2 (en) 2011-08-09 2017-01-24 Cook Regentec Llc Vial useable in tissue extraction procedures
US9770232B2 (en) 2011-08-12 2017-09-26 W. L. Gore & Associates, Inc. Heart occlusion devices
WO2013070670A1 (en) 2011-11-10 2013-05-16 Lifecell Corporation Device for tendon and ligament treatment
EP2985007B1 (en) 2011-12-22 2019-11-13 Cook Medical Technologies LLC Preloaded wire for endoluminal device
US10940167B2 (en) 2012-02-10 2021-03-09 Cvdevices, Llc Methods and uses of biological tissues for various stent and other medical applications
US8992595B2 (en) 2012-04-04 2015-03-31 Trivascular, Inc. Durable stent graft with tapered struts and stable delivery methods and devices
US9498363B2 (en) 2012-04-06 2016-11-22 Trivascular, Inc. Delivery catheter for endovascular device
WO2014015212A1 (en) 2012-07-20 2014-01-23 Cook Medical Technologies Llc Implantable medical device having a sleeve
US20140148839A1 (en) * 2012-11-27 2014-05-29 Dusan Pavcnik Bodily Lumen Closure Apparatus and Method
EP2745813A1 (en) 2012-12-18 2014-06-25 Cook Medical Technologies LLC Preloaded wire for endoluminal device
KR101941941B1 (ko) * 2013-01-08 2019-01-24 케이엠 바이올로직스 가부시키가이샤 탈세포화 혈관 시트를 사용한 인공혈관
US10828019B2 (en) 2013-01-18 2020-11-10 W.L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
AU2014214700B2 (en) 2013-02-11 2018-01-18 Cook Medical Technologies Llc Expandable support frame and medical device
AU2013379744A1 (en) 2013-03-01 2015-09-17 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Anchored cardiovascular valve
EP2809264A4 (en) 2013-03-01 2015-09-09 Cormatrix Cardiovascular Inc PROSTHETIC VALVE IN TWO PARTS
EP4176841A1 (en) 2013-05-03 2023-05-10 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Prosthetic tissue valves
AU2014296053B2 (en) 2013-08-01 2018-09-06 Cook Biotech Incorporated Tissue adjustment implant
US9878071B2 (en) 2013-10-16 2018-01-30 Purdue Research Foundation Collagen compositions and methods of use
WO2015143310A1 (en) 2014-03-21 2015-09-24 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods for preparation of a terminally sterilized hydrogel derived from extracellular matrix
US9808230B2 (en) 2014-06-06 2017-11-07 W. L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
WO2016044762A1 (en) * 2014-09-18 2016-03-24 Humacyte, Inc. Methods and apparatuses for forming fibrous tubes
US20170246344A1 (en) * 2014-10-06 2017-08-31 Proxy Biomedical Inc. Tissue integration devices and methods of making the same
US9238090B1 (en) 2014-12-24 2016-01-19 Fettech, Llc Tissue-based compositions
WO2016143746A1 (ja) 2015-03-12 2016-09-15 一般財団法人化学及血清療法研究所 脱細胞化組織を用いた癒着防止材及び代用生体膜
JP6568299B2 (ja) * 2015-03-31 2019-08-28 レボテック カンパニー,リミティド バイオ印刷のための回転装置およびその使用方法
US11919941B2 (en) 2015-04-21 2024-03-05 Purdue Research Foundation Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same
WO2018013361A1 (en) 2016-07-11 2018-01-18 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Prosthetic tissue valves
US10500079B2 (en) 2016-10-27 2019-12-10 Cook Medical Technologies Llc Preloaded branch wire loop constraint
CA3052489A1 (en) 2017-03-02 2018-09-07 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Ecm hydrogel for treating esophageal inflammation
ES2931299T3 (es) 2017-03-02 2022-12-28 Univ Pittsburgh Commonwealth Sys Higher Education Hidrogel de matriz extracelular (ECM) y fracción soluble del mismo para su utilización en el tratamiento del cáncer
US11739291B2 (en) 2017-04-25 2023-08-29 Purdue Research Foundation 3-dimensional (3D) tissue-engineered muscle for tissue restoration
ES2945740T3 (es) 2017-05-05 2023-07-06 Univ Pittsburgh Commonwealth Sys Higher Education Aplicaciones oculares de vesículas unidas a matriz (MBV)
US10350095B2 (en) 2017-08-17 2019-07-16 Incubar, LLC Prosthetic vascular valve and methods associated therewith
WO2019051476A1 (en) 2017-09-11 2019-03-14 Incubar, LLC SEALING DEVICE FOR USE AS A VASCULAR DUCT IMPLANT FOR REDUCING ENDOFUCTION
EP4237025A1 (en) * 2020-10-30 2023-09-06 Biotronik Ag Process for seamless connecting/joining of tissue comprising crosslinkable groups
US11826490B1 (en) 2020-12-29 2023-11-28 Acell, Inc. Extracellular matrix sheet devices with improved mechanical properties and method of making

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2127903A (en) 1936-05-05 1938-08-23 Davis & Geck Inc Tube for surgical purposes and method of preparing and using the same
AT261800B (de) * 1966-08-22 1968-05-10 Braun Internat Gmbh B Verfahren zur Herstellung von röhrenförmigen, glatten bzw. mit einem Gewinde versehenen Gewebe-Blutgefäß-Prothesen
US3988782A (en) 1973-07-06 1976-11-02 Dardik Irving I Non-antigenic, non-thrombogenic infection-resistant grafts from umbilical cord vessels and process for preparing and using same
US3974526A (en) 1973-07-06 1976-08-17 Dardik Irving I Vascular prostheses and process for producing the same
US3894530A (en) 1973-07-06 1975-07-15 Irving I Dardik Method for repairing, augmenting, or replacing a body conduit or organ
AU529411B2 (en) * 1980-07-01 1983-06-02 Wilkracht Pty. Ltd. Vascular prosthesis
US4502159A (en) * 1982-08-12 1985-03-05 Shiley Incorporated Tubular prostheses prepared from pericardial tissue
US5266480A (en) * 1986-04-18 1993-11-30 Advanced Tissue Sciences, Inc. Three-dimensional skin culture system
US4740207A (en) * 1986-09-10 1988-04-26 Kreamer Jeffry W Intralumenal graft
US4902508A (en) * 1988-07-11 1990-02-20 Purdue Research Foundation Tissue graft composition
US5100429A (en) * 1989-04-28 1992-03-31 C. R. Bard, Inc. Endovascular stent and delivery system
US5281422A (en) * 1991-09-24 1994-01-25 Purdue Research Foundation Graft for promoting autogenous tissue growth
CA2134090C (en) * 1992-05-08 1997-03-25 Liann M. Johnson Esophageal stent and delivery tool
DE69431302T2 (de) * 1993-08-18 2003-05-15 Gore & Ass Rohrfoermiges intraluminal einsetzbares gewebe
US5460962A (en) * 1994-01-04 1995-10-24 Organogenesis Inc. Peracetic acid sterilization of collagen or collagenous tissue
ATE250901T1 (de) * 1994-02-18 2003-10-15 Organogenesis Inc Bioumbaubare collagentransplantat prothese
CA2188563C (en) * 1994-04-29 2005-08-02 Andrew W. Buirge Stent with collagen
US5711969A (en) * 1995-04-07 1998-01-27 Purdue Research Foundation Large area submucosal tissue graft constructs
US5554389A (en) 1995-04-07 1996-09-10 Purdue Research Foundation Urinary bladder submucosa derived tissue graft
CA2178541C (en) * 1995-06-07 2009-11-24 Neal E. Fearnot Implantable medical device
US5788625A (en) * 1996-04-05 1998-08-04 Depuy Orthopaedics, Inc. Method of making reconstructive SIS structure for cartilaginous elements in situ
US6206931B1 (en) * 1996-08-23 2001-03-27 Cook Incorporated Graft prosthesis materials
SK71399A3 (en) * 1996-12-10 2000-05-16 Purdue Research Foundation Tubular submucosal graft constructs

Also Published As

Publication number Publication date
KR20000057496A (ko) 2000-09-15
JP4084420B2 (ja) 2008-04-30
DE69731553T2 (de) 2005-11-24
AU5603798A (en) 1998-07-03
JP2008029866A (ja) 2008-02-14
CZ189099A3 (cs) 1999-08-11
WO1998025543A1 (en) 1998-06-18
AU728848B2 (en) 2001-01-18
CA2267408C (en) 2007-02-06
US6358284B1 (en) 2002-03-19
AU5791498A (en) 1998-07-03
KR100645120B1 (ko) 2006-11-13
US6187039B1 (en) 2001-02-13
JP2001505466A (ja) 2001-04-24
BR9712671A (pt) 1999-10-19
JP2001509701A (ja) 2001-07-24
ES2208971T3 (es) 2004-06-16
EP0961595B1 (en) 2003-09-10
DK0954254T3 (da) 2005-01-31
CA2273077A1 (en) 1998-06-18
ES2230627T3 (es) 2005-05-01
SK71399A3 (en) 2000-05-16
CA2273077C (en) 2007-11-20
ATE249182T1 (de) 2003-09-15
AU743779B2 (en) 2002-02-07
WO1998025546A1 (en) 1998-06-18
EP0954254A1 (en) 1999-11-10
CA2267408A1 (en) 1998-06-18
KR20000052653A (ko) 2000-08-25
DE69724827T2 (de) 2004-08-12
EP0954254B1 (en) 2004-11-10
JP4074666B2 (ja) 2008-04-09
DE69731553D1 (de) 2004-12-16
EP0961595A1 (en) 1999-12-08
KR100646121B1 (ko) 2006-11-17
DE69724827D1 (de) 2003-10-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL184497B1 (pl) Cylindryczna proteza z tkanki podśluzówkowej i sposób wytwarzania cylindrycznej protezy z tkanki podśluzówkowej
JP3765828B2 (ja) 生体再編成可能なコラーゲングラフト補綴物
ES2426668T3 (es) Injertos de ICL no antigénicos reticulados con ácido peracético
JP4341050B2 (ja) 生体工学により作成した血管移植片補綴
JP4356053B2 (ja) 生物工学により作成した血管移植片支持体補綴
US4502159A (en) Tubular prostheses prepared from pericardial tissue
JP2002516701A (ja) 生物工学により作成したチューブ状移植片補綴
AU2004216679B2 (en) Tubular submucosal graft constructs
MXPA99004526A (en) Tubular submucosal graft constructs
MXPA97007655A (en) Tej repair fabric

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20071210