PL127026B1 - Method of obtaining alpha-galoctosidase enzyme - Google Patents

Method of obtaining alpha-galoctosidase enzyme Download PDF

Info

Publication number
PL127026B1
PL127026B1 PL1981229117A PL22911781A PL127026B1 PL 127026 B1 PL127026 B1 PL 127026B1 PL 1981229117 A PL1981229117 A PL 1981229117A PL 22911781 A PL22911781 A PL 22911781A PL 127026 B1 PL127026 B1 PL 127026B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
enzyme
raffinose
hydrolysis
var
cells
Prior art date
Application number
PL1981229117A
Other languages
English (en)
Other versions
PL229117A1 (pl
Inventor
Vincenza Vitobello
Paulo Branduzzi
Nadia Cimini
Original Assignee
Eni Ente Naz Idrocarb
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Eni Ente Naz Idrocarb filed Critical Eni Ente Naz Idrocarb
Publication of PL229117A1 publication Critical patent/PL229117A1/xx
Publication of PL127026B1 publication Critical patent/PL127026B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2465Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1) acting on alpha-galactose-glycoside bonds, e.g. alpha-galactosidase (3.2.1.22)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/12Disaccharides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/94Saccharomyces
    • Y10S435/942Saccharomyces cerevisiae

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia enzymu alfa-galaktozydazy (E.C.3.2.1.2.2) przez hodowanie drobnoustrojów rodzaju Saccharomyces, uzytecznej do hydrolizy rafinozy.Rafinoza, trójsacharyd wystepujacy w znacznych ilosciach ,w. burakach cukrowych, utrudnia kry¬ stalizacje sacharozy, powodujac tym samym ob¬ nizenie wydajnosci ekstrakcji. Zjawisko to stano¬ wi powazny problem ekonomiczny przemyslu cu¬ krowniczego, wiec hydroliza rafinozy staje sie ko¬ niecznoscia, gdyz umozliwia poprawienie zarówno pod wzgledem ilosci jak i wydajnosci procesu kry¬ stalizacji ekstrahowanego cukru.W wielu artykulach opisano procesy enzymatycz¬ nej [hydrolizy rafinozy, w których stosowano en¬ zymy ekstrahowane z wielu szczepów drobnoutro- jów z rodzaju Absidia, Aspergillus, Bacillus, Circinella, Escherichia, Micrococcus, Mortierella, Penicillium i innych.Jednak podczas hodowania wielu drobnoustro¬ jów zauwazono, ze wyciag komórkowy zawiera nie tylko alfa-galaktozydaze ale równiez inwertaze a na. skutek tego podczas traktowania melas bu¬ raków cukrowych hydrolizie rafinozy towarzyszy niepozadana hydroliza sacharozy...Najwazniejsza zaleta sposobu wedlug wynalazku jest to, ze drobnoustroje stosowane do hodowli, -nalezace do rodzaju Saccharomyces szczesliwym trafem lacza korzystny czas hodowli, zdecydowa¬ nie obnizony w stosunku do wlasciwego dla tej plesni, z wysoka aktywnoscia alfa-galaktozydaso- wa przy braku aktywnosci inwertazowej.Drobnoustroje te, które wyizolowano ze scieków wytwórni oliwy na terenie Monterotondo (Rzym, Wlochy), zostaly sklasyfikowane jako Saccharomy¬ ces cerevisiae, var. oleaceous i Saccharomyces cerevisiae, var. oleaginosus i odpowiednio zdepono¬ wane w Nerthern Regional Center Departamentu Rolnictwa Stanów Zjednoczonych Ameryki, Peoria, Illinois, gdzie nadano im odpowiednio ' numery NRRLY 12056 i NRRLY 12057.Ponizej zestawiono charakterystyki hodowlane, morfologiczne i fizjologiczne tych drobnoustro¬ jów.A. Charakterystyki hodowlane: 1. Pozywka stala (3 dni):agar slodowy; iolonie sa . maslane, zabarwione kremowo i lsniace. 2. Pozywka ciekla (3 dni): ekstrakt slodowy; tworzy sie osad (w S. cerevisiae, var. oleagino¬ sus wystepuje niewyrazny pierscien).B, Charakterystyki morfologiczne: 1. Charakterystyki komórek Wegetatywnych: ko¬ mórki sa elipsoidalne, cylindryczne i czasami 25 wydluzone. 2. Tworzenie grzybni pozornej lub grzybni rzeczy¬ wistej: szczatkowa grzybnia pozorna wystepuje w warunkach beztlenowych.C Charakterystyki plciowe: w Komórki wegetatywne sa bezposrednio przeksztal- 10 15 20 127 02612T 026 cone w grzybnie, które zawieraja od jednego do czterech kulistych zarodników.D. Charakterystyki fizjologiczne: 1. Wykorzystanie zródel wegla: a) Fermentacja Glikoza Galaktoza Maltoza Trealoza Melibioza Rafinoza b) Przyswaj; Glikoza Galaktoza Maltoza Trealoza Melibioza Rafino*za D-mannit D-glucit Etanol Glicerol Kwas DL- S. 4 var, anie S. i var mlekowy cerevisiae . oleaceus + — — — .+ cerevisiae , oleaceus + ± — ± + ± ± '"' ± ± ± ± S. var.S. var. cerevisiae oleaginosus + + + — + ¦ + cerevisiae oleaginosus + + + ± + ± — - — + ± — 19 15 20 Inne zwiazki wegla nie sa przyswajane. 2. Przyswajanie zwiazków azotu: Azotan potasu: negatywnie 3. Wzrost w temperaturze 37°C: pozytywny W celu klasyfikacji przydatny jest schemat z opisem opracowany przez J. P. Van der Walta w „The Yeasts", wydanie 2, wydawnictwo J. Lod- der.Hodowle szczepów stosowanych w sposobie wed¬ lug wynalazku moga byc otrzymywane w warun¬ kach beztlenowych dowolna znana metoda, na przyklad w hodowli powierzchniowej lub korzys¬ tnie w hodowlach podpowierzchniowyeh w ka¬ dziach fementacyjnych z mieszaniem.Pozywka hodowlana,, która moze byc stala lub ciekla, zawiera zródlo przyswajalnego wegla, zró¬ dlo azotu i sole mineralne.Jako zródlo wegla moga byc stosowane glikoza, melibioza, rafinoza, jak równiez inne cukry, gli¬ cerol i octan sodu.Jako zródla azotu moga byc stosowane nieorga¬ niczne i organiczne zwiazki azotu, takie jak wy¬ ciag miesny, wyciag drozdzowy, pepton, tripton, aminokwasy hydrolizatów kazeiny, maka sojowa i sole amonowe.Inna wybitna zaleta sposobu wedlug wynalazku wynikajaca ze stosowania drobnoustrojów opisa¬ nych powyzej jest to, ze enzym otrzymuje sie podczas hodowania na glukozie (enzym jest ele¬ mentem konstytuujacym).Odpowiednia pozywka hodowlana ma przykla¬ dowo nastepujacy sklad: Wyciag drozdzowy — 5—20 g/l glikoza — 10 g/l Siady NaHjP04 — MgSOf (NHi)aSOi ~ 1 g/l 35 40 45 50 55 60 Zakres wartosci pH dla hodowli wynosi 4—7, a korzystnie 5,0—5,5, natomiast temperatura za¬ warta jest miedzy 20°C i 40GC, korzystnie miedzy 25°C i 28°C.Produkcja enzymu moze byc zwiekszona prze& dodanie malych ilosci melibiozy, która jak wiado¬ mo jest dwusacharydem pochodzacym z czesciowej hydrolizy rafinozy. Melibioze mozna dodac bezpo¬ srednio do pozywki hodowlanej przed zaszczepie¬ niem lub po zakonczeniu stadium wzrostu logaryt¬ micznego. Czas indukcji moze zmieniac sie w za* kresie 16—72 godzin, korzystnie w zakresie 40—48 godzin.Komórki zebrane podczas fermentacji albo po jej zakonczeniu mozna stosowac jako takie w po¬ staci suchego proszku.Alternatywnie mozna stosowac surowe lub oczyszczone wyciagi tych komórek. W tym celu komórki rozdrabnia sie dowolnym znanym sposo¬ bem i stosuje sie surowy lub oczyszczony wyciag zawierajacy enzym.Wreszcie dalsze ulepszenie techniczne i ekono¬ miczne procesu mozna uzyskac przez unierucho¬ mienie enzymu' na drodze polaczenia go ze zwiaz¬ kami wieloczasteczkowymi przez utworzenie wia¬ zan chemicznych z podlozem lub przez wiazanie jonowe albo takze przez fizyczne unieruchomienie enzymu lub zawierajacych go komórek.Komórki otrzymane w opisany sposób dodaje sie jako takie lub po unieruchomieniu do mieszaniny reakcyjnej, która zawiera melasy, przy wartosci pH w zakresie od 4 do 7 i w temperaturze od 30°C do 60°C. Rafinoza zawarta w melasach ule¬ ga dzieki temu hydrolizie do galaktozy i sacharozy, przy czym wydajnosc sacharozy jest wyzsza.Nastepujace przyklady ilustruja inne drogi po¬ stepowania zgodnie ze sposobem wedlug wyna^ lazku.Przyklad I. Przygotowano pozywke hodowla¬ na o nstepujacym skladzie: (NH4)2S04 MgS04-7H20 Na2HP04-12H20 KH2P04 — 5 g/l — 5 g/l — 4,6 g/l — 3 g/l — 0,1 g/l — 0,05 g/l — 10 g/l — 10 g/l NaCl CaCl2 wyciag drozdzowy Melibioza Wymienione zwiazki rozpuszczono w odjonizo¬ wanej wodzi©, i zakwaszono do wartosci pH 3,5 kwasem solnym. Otrzymana w ten sposób pozywke hodowlana rozlano do kolb Erlenmayera o poje¬ mnosci 500 ml z szerokimi szyjami (100 ml pozyw¬ ki na kolbe, wyjalowienie trwa 30 minut w tem¬ peraturze 116°C). Kolby szczepiono 1 ml kultury szczepu Sacharomyces cerevisiae, var. oleaceus w 250 ml kolbach zawierajacych 50 ml tej samej pozywki i wzrost hodowli promotowano w tem¬ peraturze 25°G w ciagu 16 godzin podczas miesza¬ nia (180 obrotów na minute).Kolby fermentacyjne inkubowano mieszajac (180 obrotów na minute) w temperaturze 2i5°C.Po 40 godzinach liczac od zaszczepienia, komórki kultur hodowlanych oddzielono przez odwirowa¬ nie i przemyto buforem fosforanowym (0,1 M,127 026 pH—5,6). Ze 100 ml pozywki hodowlanej otrzy¬ mano 0,55 g suchych komórek.Wilgotne komórki oddzielone ze 100 ml pozywki zawieszono ponownie w 100 ml buforu fosforano¬ wego {0,1 M, pH=5,6) i okreslono aktywnosc enzy¬ matyczna. Wig suchych komórek zawarte bylo okolo 1-107 jed Mostek enzymatycznych. Aktywnosc enzymatyczna mierzono wedlug nastepujacej pro¬ cedury.Do 1 ml buforowej zawiesiny komórek dodano 4 ml buforu fosforanowego (0,1 M, pH=5,6) i kilka kropli toluenu w celu przerwania scian komórek. Po 15 minutach inkubacji z mieszaniem w temperaturze 40°C zawiesine uzupelniono 10 ml 1% (wagowo/objetosciowo) roztworem melibiozy w buforze fosforanowym (0,1 M, pH=5,6).Reakcje inkubowano w temperaturze 40°C w ciagu 2 godzin w mieszanej lazni wodnej a na¬ stepnie^ przerwano przez trwajace 15 minut goto¬ wanie i pobierano próbki mieszaniny reakcyjnej.Stezenie glikozy otrzymanej przez hydrolize melibiozy podczas reakcji oznaczono kolorymetry¬ cznie metoda GOD-Perid, Boehringer Mannheim GmbH.Gestosc optyczna barwnych próbek mierzono w temperaturze pokojowej w spektrofotometrze 55 Perkin-Elmer Coleman. Droga optyczna lódeczki jest równa 0,1 dm przy dlugosci fali 436.Jezeli okresla sie jedna jednostke ilosciowa en¬ zymu, która wytwarza 1-10-6 g glikozy w ciagu 2 godzin w podanych powyzej warunkach badaw¬ czych, mozna obliczyc z nastepujacego wzoru jednostki enzymu na gram suszonych komórek: U gramy suszonych komórek E2h^EohM8,2-15-100 E *C standard ^ w którym E2h jest gestoscia optyczna próbki pobranej po 2 godzinach; Eon jest gestoscia opty¬ czna próbki pobranej w godzinie 0; Egtandard jest gestoscia optyczna standardowego roztworu gli¬ kozy, który zawiera 18,2* 10-6 g glikozy w mili- litrze; C jest iloscia gramów suszonych komórek w 100 ml pozywki hodowlanej.Przyklad II. Przygotowana pozywke hodo¬ wlana o nastepujacych skladzie: (NH4)2S04 - 5 g/1 MgS04-7H20 — 4,6 g/l Na2HP04-12H20 — 4,6 g/l KH2P04 — 3 g/1 NaCl — 0,1 g/l CaCl2 — 0,05 g/l wyciag drozdzowy — 10 g/l glikoza — 10 g/l Wymienione zwiazki rozpuszczono w odjonizowa¬ nej wodzie a nastepnie wartosc pH doprowadzo¬ no kwasem solnym do 5,3.Kultury w takich pozywkach szczepu Saccharo- myces cerevisiae, var. oleaceus otrzymane w sposób opisany w przykladzie I inkubowano mieszajac (orbital, 180 obrotów na minute) w tem¬ peraturze 27°C. Po uplywie 39 godzin od zaszcze¬ pienia komórki pozywki hodowlanej oddzielono 35 przez wirowanie i -przemyto buforem fosforano¬ wym (0,1 M, pH=5,6). ; Ze 100 ml pozywki hodowlanej otrzymano 0,-546 g suszonych komórek. Komórki oddzielone ze 100 5 ml pozywki zawieszono po lownie w 100 ml buforu fosforanowego (0,1 M, pH =5,6) i badano na akty¬ wnosc enzymatyczna; 1 g suszonych komórek za¬ wieral 9,4* 106 jednostek enzymatycznych.Przyklad III. Przygotowano srodowisko ho- 10 dowlane o nastepujacym skladzie: (NH4)2S04 — 5,00 g/1 MgS04-7H20 — 0,5 g/l Na2HPO4-12H20 — 4,6 g/l KH2P04 — 3,00 g/1 15 NaCl — 0,1 g/l CaCl2 — 0,05 g/l wyciag drozdzowy — 10 g/l glikoza — 10 g/l Melibioza — 1 g/l 20 Wymienione zwiazki rozpuszczono w odjonizo- wanej wodzie a nastepnie wartosc pH doprowa¬ dzono kwasem solnym do 5,3.Kultury szczepu Saccharomyces cerevisiae, var. oleaceus otrzymane w sposób opisany w przykla- 25 dzie I inkubowano podczas mieszania orbitalnego (180 obrotów na minute) w temperaturze 27°C.Po uplywie 43 godzin od zaszczepienia komórki pozywki hodowlanej oddzielano przez wirowanie i przemywano buforeim fosforanowym (0,1 M, 20 pH=5,6). Ze 100 ml pozywki hodowlanej otrzy¬ mano 0,594 g suszonych komórek.Komórki oddzielone ze 100 ml pozywki hodowla¬ nej zawieszano ponownie w 100 ml buforu fosfo¬ ranowego (0,1 M, pH=5,6) i badano na aktywnosc enzymatyczna; 1 g suszonych komórek zawieral 1,6-107 jednostek enzymatycznych.Przyklad IV. Przygotowano pozywke hodo¬ wlana o nastepujacym skladzie: 40 (NH4)2S04 — 5,00 g/1 MgS04-7H20 — 0,05 g/l Na2HP04-121^0 — 4,6 g/l KH2P04 — 3,0 g/1 NaCl — 0,1 g/l 45 CaCl2 — 0,05 g/l Wyoiag drozodzowy — 10,0 g/l glikoza — 5,0 g/l Melibioza — 5,0 g/l Wymienione zwiazki rozpuszczono w odjonizo- 50 wanej wodzie a nastepnie wartosc pH doprowa¬ dzono kwasem solnym do 5,3.Kultury Saccharomyces cerevisiae, var. oleaceus w takiej pozywce otrzymane w sposób opisany w przykladzie I inkubowano podczas mieszania 55 orbitalnego (180 obrotów na minute) w tempera¬ turze 29°C. Po uplywie 48 godzin od zaszczepienia komórki pozywki hodowlanej oddzielono przez wirowanie i przemywano buforem fosforanowym (0,1 M, pH=5,6). Ze 100 ml pozywki hodowla- 60 nej otrzymano 0,36-5 g suszonych komórek.Do 50 ml melas o 3i5° Brix zawierajacych 1,6% wagowych rafinozy w stosunku do calkowitej ilosci suchej masy dodano 6 ml pozywki hodowla¬ nej i wartosc pH doprowadzono do 5,2 stosujac « HgSC4. Obróbke prowadzono w temperaturze 40°C127 026 1 8 podczas mieszania w ciagu 16 godzin. Stezenie Zastrzezenie patentowe galaktozy, produktu hydrolizy rafinozy podczas Sposób wytwarzania enzymu alfa-galaktozydazy, reakcji, okreslano metoda Lactose (galastose UV- znamienny tym, ze prowadzi sie fermentacje, dro¬ zdzy rodzaju Saccharomyces cerevisiae, var. olea- Test Boehringer Mannheim GmbH. W podanych § cgqus NRRLy 12Q56 ,/lub SacchaMmyces cerevi_ warunkach otrzymano 153 mikromole galaktozy, co siae, Var. oleaceous NRRLY 12057 w zakresie jest równowazne hydrolizie 30% calkowitej ilosci ph 4—7 i w temperaturze zawartej pomiedzy 20°C obecnej w roztworzerafinozy. i40°C.LZGraf. Z-d Nr 2 — 388/85 80-h20 egz. A4 Cena 100 zl PL PL PL PL PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe galaktozy, produktu hydrolizy rafinozy podczas Sposób wytwarzania enzymu alfa-galaktozydazy, reakcji, okreslano metoda Lactose (galastose UV- znamienny tym, ze prowadzi sie fermentacje, dro¬ zdzy rodzaju Saccharomyces cerevisiae, var. olea- Test Boehringer Mannheim GmbH. W podanych § cgqus NRRLy 12Q56 ,/lub SacchaMmyces cerevi_ warunkach otrzymano 153 mikromole galaktozy, co siae, Var. oleaceous NRRLY 12057 w zakresie jest równowazne hydrolizie 30% calkowitej ilosci ph 4—7 i w temperaturze zawartej pomiedzy 20°C obecnej w roztworzerafinozy. i40°C. LZGraf. Z-d Nr 2 — 388/85 80-h20 egz. A4 Cena 100 zl PL PL PL PL PL
PL1981229117A 1980-02-01 1981-01-08 Method of obtaining alpha-galoctosidase enzyme PL127026B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IT19618/80A IT1130242B (it) 1980-02-01 1980-02-01 Procedimento per la produzione dell'enzima alfa-galattosidasi e per l'idrolisi del raffinosio mediante l'impiego dell'enzima stesso

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL229117A1 PL229117A1 (pl) 1981-09-04
PL127026B1 true PL127026B1 (en) 1983-09-30

Family

ID=11159686

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981229117A PL127026B1 (en) 1980-02-01 1981-01-08 Method of obtaining alpha-galoctosidase enzyme

Country Status (24)

Country Link
US (2) US4376167A (pl)
JP (1) JPS56121485A (pl)
BE (1) BE887293A (pl)
BG (1) BG42525A3 (pl)
CA (1) CA1163939A (pl)
CS (1) CS248014B2 (pl)
DD (1) DD157564A5 (pl)
DE (1) DE3049308C2 (pl)
DK (1) DK153410C (pl)
FI (1) FI70596C (pl)
FR (1) FR2481315A1 (pl)
GB (1) GB2068972B (pl)
HU (1) HU183303B (pl)
IE (1) IE51009B1 (pl)
IT (1) IT1130242B (pl)
LU (1) LU83094A1 (pl)
NL (1) NL8100476A (pl)
NO (1) NO162347C (pl)
PL (1) PL127026B1 (pl)
RO (1) RO80915A (pl)
SE (1) SE453836B (pl)
SU (1) SU1090262A3 (pl)
TR (1) TR21577A (pl)
YU (1) YU42232B (pl)

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1140312B (it) * 1981-12-03 1986-09-24 Anic Spa Procedimento per la produzione di alfa-galattosidasi e impieghi dell'enzima cosi' ottenuto
US4643901A (en) * 1983-06-10 1987-02-17 Universal Foods Corporation Yeast strains, method of production and use in baking
JPS61231993A (ja) * 1985-04-09 1986-10-16 Oriental Yeast Co Ltd 新規パン酵母
US5055401A (en) * 1987-04-10 1991-10-08 Alko Ltd. Construction of new α-galactosidase producing yeast strains and the industrial application of these strains
NZ233582A (en) 1989-05-16 1992-05-26 Akpharma Inc Formerly Aek Dev Oral composition comprising alpha-galactosidase
JPH07102138B2 (ja) * 1989-07-19 1995-11-08 日本甜菜製糖株式会社 新規組換えプラスミド
US5401650A (en) * 1990-10-24 1995-03-28 The Mount Sinai School Of Medicine Of The City University Of New York Cloning and expression of biologically active α-galactosidase A
US5356804A (en) * 1990-10-24 1994-10-18 Mount Sinai School Of Medicine Of The City Of New York Cloning and expression of biologically active human α-galactosidase A
US8889127B2 (en) * 2004-07-01 2014-11-18 Icahn School Of Medicine At Mount Sinai Targeted protein replacement for the treatment of lysosomal storage disorders
DK2753346T3 (da) 2011-09-07 2020-05-25 Sinai School Medicine Ceramidase og celledifferentiering
EP2854910B1 (en) 2012-06-01 2020-04-15 Icahn School of Medicine at Mount Sinai Ceramide levels in the treatment and prevention of infections
EP3659619A1 (en) 2013-03-14 2020-06-03 Icahn School of Medicine at Mount Sinai Therapeutic acid ceramidase compositions and methods of making and using them
JP7515848B2 (ja) * 2020-02-05 2024-07-16 学校法人帝京大学 スクリーニング用培地及びスクリーニング方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1485502A (en) * 1974-06-05 1977-09-14 Aarhus Oliefabrik As Process for removal of water-soluble carbohydrates in the production of plant protein products
CH627626A5 (fr) * 1978-01-04 1982-01-29 Nestle Sa Procede d'elimination des sucres flatulents du soja.

Also Published As

Publication number Publication date
PL229117A1 (pl) 1981-09-04
FR2481315A1 (fr) 1981-10-30
FR2481315B1 (pl) 1984-10-12
DE3049308A1 (de) 1981-09-24
US4376167A (en) 1983-03-08
YU5881A (en) 1983-10-31
DK153410C (da) 1989-06-05
US4450238A (en) 1984-05-22
TR21577A (tr) 1984-10-16
DD157564A5 (de) 1982-11-17
JPS56121485A (en) 1981-09-24
IE51009B1 (en) 1986-09-03
LU83094A1 (fr) 1981-09-10
IE802742L (en) 1981-08-01
SU1090262A3 (ru) 1984-04-30
BG42525A3 (en) 1987-12-15
BE887293A (fr) 1981-07-29
RO80915A (ro) 1983-02-01
CS248014B2 (en) 1987-01-15
DK153410B (da) 1988-07-11
DK557080A (da) 1981-08-02
FI804090L (fi) 1981-08-02
SE453836B (sv) 1988-03-07
FI70596C (fi) 1986-09-24
NO810306L (no) 1981-08-03
CA1163939A (en) 1984-03-20
SE8100741L (sv) 1981-08-02
NO162347B (no) 1989-09-04
GB2068972B (en) 1983-04-13
FI70596B (fi) 1986-06-06
NO162347C (no) 1989-12-13
GB2068972A (en) 1981-08-19
IT8019618A0 (it) 1980-02-01
JPH0253029B2 (pl) 1990-11-15
IT1130242B (it) 1986-06-11
YU42232B (en) 1988-06-30
NL8100476A (nl) 1981-09-01
DE3049308C2 (de) 1982-11-11
HU183303B (en) 1984-04-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zimmermann et al. Genetics of carbon catabolite repression in Saccharomyces cerevisiae: genes involved in the derepression process
Updegraff Utilization of cellulose from waste paper by Myrothecium verrucaria
CA1214407A (en) Maltogenic amylase enzyme, preparation and use thereof
US4403034A (en) Ethanol Production
CA1191801A (en) Process for the production of alpha-galactoxidase and uses of the enzyme thus obtained
PL127026B1 (en) Method of obtaining alpha-galoctosidase enzyme
Barron et al. Studies on the use of a thermotolerant strain of Kluyveromyces marxianus in simultaneous saccharification and ethanol formation from cellulose
JPS62500422A (ja) 熱安定性β−アミラ−ゼ
WO1987001388A1 (en) Method of preparing a yeast-cell lytic enzyme system
US3697378A (en) Dextrinization of starch with alph-amylase from bacillus coaculans
US4473645A (en) Process for producing thermally stable alpha-amylase
Bates et al. Comparative inductive responses of two β-galactosidases of Neurospora
Müller Utilization of gluconate by Aspergillus niger.: II. Enzymes of degradation pathways and main end products
DK158234B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af alfa-isopropylaeblesyre
Oliveira et al. Relationships between trehalose metabolism and maltose utilization in Saccharomyces cerevisiae
JP2002543773A (ja) アスペルギルス・ニガー培養物を得るための方法およびフェルラ酸とバニリン酸を生産するためのそれらの使用
SCHWEINGRUBER et al. Modulation of a cell surface glycoprotein in yeast: acid phosphatase
Lakshmi et al. Rapid relase of protoplasts from Eremothecium ashbyii in comparison with Trichoderma reesei and Penicillium chrysogenum using Novozyme and Funcelase
Bezbaruah et al. Amylase production by three Bacillus strains active at alkaline pH
de Oliveira et al. Relationships between trehalose metabolism and maltose utilization in Saccharomyces cerevisiae: II. Effect of Constitutive MAL Genes
Odunfa et al. Saccharification of cassava peels waste for microbial protein enrichment
El-Diwany et al. Effect of chemical treatments on the saccharification of rice hulls and yeast growth
Beloved Dedicated To My Beloved Bapu Ji
JPH0632612B2 (ja) アルカリセルラ−ゼ製造法
Treat et al. Production of β-glucosidase (cellobiase) by Pisolithus tinctorius