상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 유효성분으로 함유하는 면역조절제를 제공한다.
상기 식에서, R1/R2는 9-옥타데세노일(올레오일)/헥사데카노일(팔미토일), 헥사데카노일(팔미토일)/9-옥타데세노일(올레오일), 헥사데카노일(팔미토일)/9,12-옥타데카디에노일(리놀레오일), 헥사데카노일(팔미토일)/9,12,15-옥타데카트리에노일(리놀레노일) 또는 헥사데카노일(팔미토일)/5,8,11,14-에이코사테트라에노일(아라키도노일)을 나타낸다.
여기서, 상기 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 다음 화학식 2로 기재되는 화합물인 것이 바람직하다.
또한 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 유효성분으로 함유하는 후천성 면역결핍증 치료제, 패혈증 치료제, 및 항암제를 제공한다. 또한 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 유효성분으로 함유하는 면역조절용 또는 항암 건강식품을 제공한다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명은 상기 화학식 1로 기재되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 유효성분으로 함유하는 면역조절제, 후천성 면역결핍증 치료제, 패혈증 치료제 및 항암제를 제공한다. 본 발명에 따른 상기 화학식 1의 화합물은 구체적으로 다음과 같은 5 가지 화합물들이 언급될 수 있다:
1) 1-올레오일(oleoyl)-2-팔미토일(palmitoyl)-3-아세틸글리세롤(acetylglycerol) (R1/R2=9-옥타데세노일(octadecenoyl/헥사데카노일(hexadecanoyl); 이하 "화합물 1"이라 함)
2) 1-팔미토일(palmitoyl)-2-올레오일(oleoyl)-3-아세틸글리세롤(acetylglycerol) (R1/R2=헥사데카노일(hexadecanoyl)/9-옥타데세노일(octadecenoyl); 이하 "화합물 2"라 함)
3) 1-팔미토일(palmitoyl)-2-리놀레오일(linoleoyl)-3-아세틸글리세롤(acetylglycerol) (R1/R2=헥사데카노일(hexadecanoyl)/9,12-옥타데카디에노일(octadecadienoyl); 이하 "화합물 3", "모노아세틸디글리세라이드-3" 또는 "MADG-3"이라 함, 분자량: 634.99)
4) 1-팔미토일(palmitoyl)-2-리놀레노닐(linolenoyl)-3-아세틸글리세롤(acetylglycerol) (R1/R2=헥사데카노일(hexadecanoyl)/9,12,15-옥타데카트리에노일(octadecatrienoyl) 이하 "화합물 4"라 함)
5) 1-팔미토일(palmitoyl)-2-아라키도노일(arachidonyl)-3-아세틸글리세 롤(acetylglycerol) (R1/R2=헥사데카노일(hexadecanoyl)/5,8,11,14-에이코사테트라에노일(icosatetraenoyl); 이하 "화합물 5"라 함)
상기 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 특히 상기 화학식 2로 기재되는 화합물 3인 것이 바람직하다. 본 발명에 따른 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 녹용으로부터 추출되거나 공지의 유기합성법으로부터 제조될 수 있다. 녹용으로부터 상기 화합물을 추출하는 방법을 예시하면, 먼저, 녹용을 헥산으로 추출하고, 그 추출잔사를 다시 클로로포름으로 추출한 다음, 수득된 추출액을 감압증류하여 녹용의 클로로포름 추출물을 수득한다. 상기 추출에서 사용되는 추출용매인 헥산 및 클로로포름의 양은 각각 사용된 녹용이 잠길 정도의 양이며 충분하며, 일반적으로는 녹용 1kg에 대하여 헥산 및 클로로포름을 각각 4~5ℓ정도의 비로 사용할 수 있다. 이러한 방법으로 수득한 녹용의 클로로포름 추출물을 계속해서 일련의 실리카겔 칼럼 크로마토그래피 및 TLC 방법에 의해 더 분획화하고 정제하여 본 발명에 사용되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 얻을 수 있다. 상기 크로마토그래피 정제 단계의 용리액으로는 클로로포름/메탄올, 헥산/에틸아세테이트, 헥산/에틸아세테이트/아세트산 등을 사용할 수 있다. 본 발명에 사용되는 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물을 화학적으로 합성하기 위해서는, 예를 들면, 글리세롤과 팔미틱산의 반응으로 생성된 생성물 중에서 1-팔미토일글리세린을 칼럼을 통하여 분리한 후, 이를 순차적으로 아세트산, 리놀레산 등 해당하는 카르복실산 화합물과 에스테르화 반응시키고, 필요에 따라 정제하여, 목적하는 모노아세틸디아실글 리세롤류 화합물을 합성할 수 있으며, 다른 방법으로는 포스파티딜콜린을 가아세트산 분해(acetolysis)하여 얻을 수도 있다.
본 발명에 따른 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물은 면역조절제로서 유용하다. 본 발명에 있어서, "면역조절" 이란 비정상적으로 저하된 면역력을 증진시키거나, 비정상적으로 증가한 면역력의 균형을 유지하게 하는 것을 모두 포함한다. 따라서, 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물은 면역 세포의 활성을 증가시켜 각종 면역체계의 기능 저하로 비롯되는 질환의 예방 및 치료, 각종 암에 대한 예방 및 치료 뿐만 아니라, 관절염, 아토피, 치매, 패혈증 등 자가면역작용에 의한 세포손상(자가면역질환)의 억제, 예방 및 치료 효능을 가진다.
면역기능의 조절은 단순히 면역을 담당하는 T 세포의 증가로만 판별할 수 없으며, 이들 T 세포의 활성화된 정도 및 T4와 T8 세포의 비율과 이들이 어떤 사이토카인(cytokine)들을 주로 분비하는지가 매우 중요하다. 본 발명자들은 상기 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물의 면역조절효과를 조사하기 위하여, 본 발명의 화합물을 T-4 림파구 및 T-8 림파구에 처리한 결과, 이들 세포로부터 사이토카인의 일종인 IL-2 분비가 증가되는 것을 확인하였다(도 1 참조). 또한 많은 종류의 사이토카인의 양을 한번에 측정할 수 있는 바이오-플렉스(Bio-plex)를 이용하여 본 발명의 화합물을 처리하였을 때의 T 세포의 사이토카인 분비 변화를 관찰하였다. 그 결과, 대조군에 비하여 화합물 3을 처리한 그룹에서 IL-2, IL-4 및 IL-5의 양이 현 저히 증가함을 확인하였다(도 2 참조). 여기서 가장 많이 증가하는 사이토카인(cytokine)인 IL-4는 항염증 사이토카인이라고도 불리는 다기능 사이토카인으로서, T4 세포에서 분화된 Th2에서 주로 분비되며, T4가 Th1으로 분화되는 것을 억제함으로써, 항종양 효과 및 면역반응의 조절에 매우 중요한 역할을 수행하여 자가면역작용에 의한 세포손상도 억제할 수 있게 된다(Annu. Rev. Immunol. 1999. 17: 701~738). 본 발명의 화합물들은 IL-2의 분비촉진을 통한 면역증강의 효과와 함께 IL-4 등의 분비를 동시에 촉진하여 면역조절제로서의 효과를 나타내며, T4 뿐만 아니라 세포독성 면역세포(cytotoxic immune cell)인 T8 세포를 동시에 증가 및 활성화시켜, T4 세포 및 T8 세포의 비를 정상시와 유사하게 유지시킴으로써, 면역체계의 이상 감소 또는 증가에 기인하는 부작용 및 질환의 치료에 유용하다. 구체적으로 패혈성 쇼크모델에서는 이들 면역증진의 효과가 IL-4의 분비촉진 및 T 세포의 아포토시스(apoptosis)를 억제하는 방향으로 일어나 패혈증에서의 치사율을 현저히 낮출 수 있다. 따라서, 본 발명에 따른 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 IL-4 사이토카인의 분비를 증가시키므로, 패혈증의 예방 및 치료 등, 자가면역 치료제로서 유용하다.
세포와 세포의 상호작용은 다양한 조혈세포 및 면역세포를 자극한다고 알려져 있으며, 특히 수상돌기세포는 면역체계에 매우 중요한 것으로 알려져 있다. 이에 본 발명자들은 본 발명의 화합물이 분리ㆍ유도된 수상돌기세포의 상호작용에 어떠한 영향을 미치는지 알아보았다. 이를 위해, 화합물 3의 처리시 세포의 상호작 용을 매개하는 부착 분자들의 발현 변화를 RT-PCR로 측정한 결과, Vcam-1, Icam-1, Icam-2, VLA-4, VLA-5 및 LFA-1과 같은 부착분자의 발현이 대조군에 비해 증가함을 확인하였다(도 5 참조). 상기의 결과로부터 본 발명의 화합물은 T 세포를 활성화할 뿐만 아니라, 암세포의 항원을 인식하여 T 세포가 이를 인식할 수 있게 하는 수상돌기세포를 활성화시키는 기능을 함으로써, 특이적인 항암효과를 나타낼 수 있다는 것을 알 수 있었다.
이상의 결과로부터, 본 발명에 따른 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물은 T 세포를 활성화시켜 사이토카인의 분비를 증가시키고, 세포 간 부착분자 발현을 증가시켜, 조혈 세포 및 면역 세포의 증식 및 자극을 촉진하므로, 면역력을 증가시키는 효과가 있음을 확인하였으며, 이로 인하여 다양한 질병에 대한 면역요법으로서의 사용가능성을 확인하였다. 예를 들어, 본 발명에 따른 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 T4 및 T8의 T-세포 증식효과로 후천성 면역결핍증(AIDS) 환자의 면역력을 증진시키는 치료제 또는 건강식품으로 사용될 수 있다. 에이즈 환자에 있어서 초기에는 T4의 감소를 가져오지만 이때까지는 심각한 발병을 보이지 않으며, 후기에 T8의 감소를 보일 때 에이즈의 심각한 발병을 보이게 된다. 따라서 이때에도 T4/T8의 비율이 중요한 요인이 되며 이들의 절대적 숫자도 중요한 요인이 된다. 또한 IL-4 분비의 증가로 인한 면역기능의 조절로 각종 자가면역질환에도 효과가 있음을 알 수 있었다. 본 발명에 따른 화합물의 패혈성 쇼크 예방 및 치료제로서의 용도를 알아보기 위하여, 마우스의 맹장 결찰 및 천공(Cecal Ligation and Puncture: CLP)모델로 시험을 행하여 본 결과, 실험한 마우스 모두 120시간까지 생존하는 우수한 결과를 나타내어, 본 발명에 따른 화합물을 패혈성 쇼크(패혈증) 예방 및 치료에 유용하게 사용할 수 있음을 확인하였다. 이러한 결과로부터 본 발명자들은 상기 모노아세틸디아실글리세롤 화합물이 면역증진을 시키면서도 면역기능이 조절되는 이상적인 면역조절제로서 유용함을 확인할 수 있었다.
또한, 본 발명자들은 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤 화합물들의 암의 예방 및 치료제로서의 용도를 알아보기 위하여, 우선 치료가 매우 어려운 암으로 알려진 담도암 및 악성흑색종에 대한 항암효과를 조사하였다. 우선 담도암 세포인 KIBG-5를 햄스터에 정맥주사 및 피하주사하여 암 발생을 유도하고, RPMI, BMSC, 아데노바이러스/ΔE1, 수상돌기세포(DC) + 종양 분해질, 화합물 3, 아데노바이러스/IL-2를 각각 또는 혼합하여 주입한 결과, 4 주 후에 수상돌기세포 + 종양 분해질 주입군, 화합물 3 주입군 및 아데노바이러스/IL-2 주입군의 경우는 육안이나 현미경 상으로 모두 종양이 형성되지 않았음을 확인하였다(도 6 참조). 또한, 종양을 정맥주사하고 8주 후에 관찰한 결과, 다른 군에서는 다발적 전이성(metastatic) 폐 병변(lung lesion)이 형성되었지만, BMSC + 아데노바이러스/IL-2 주입군의 경우는 폐에서 어떠한 징후도 나타나지 않았으며 조직검사에서는 수상돌기세포 + 종양분해질 주입군, 화합물 3 주입군에서 미세한 병소가 한 부분 관찰되었다(도 7, 도 8 및 도 9 참조). 또한, 종양을 피하주입하고 12주 후에 관찰한 결과, 다른 군에서는 종양이 형성되었지만, BMSC + Ad/hIL-2 주입군 및 BMSC + Ad/hIL-2 + 화합물 3 주 입군의 경우는 종양이 형성되지 않음을 확인하였다(도 10). 화합물 3의 농도를 다르게 처리한 경우에는 처리한 화합물 3의 농도가 높을수록 종양 형성이 줄어드는 것으로 관찰되었다(도 11 및 12 참조). 상기와 같이 햄스터에 담도암세포(KIBG-5)를 주입하여 암의 발생을 유도한 후, 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물을 투입한 결과, 암 발생이 유의하게 억제됨을 확인하였다.
또한, 본 발명자들은 악성 흑색종을 생쥐의 꼬리 정맥으로 주입하여 암 발생을 유도한 뒤, RPMI, 수상돌기세포(DC) + 종양 분해질 주입군, 화합물 3을 각각 또는 혼합하여 주입하였다. 그 결과 대조군인 RPMI 주입군은 다발적 전이성 (metastatic) 폐 병변 (leison)이 형성되었고, 화합물 3 주입군과 수상돌기세포 + 종양 분해질 주입군은 폐에서 어떠한 징후도 나타나지 않았다(도 13 및 14 참조). 또한 화합물 3 주입군과 수상돌기세포 + 종양 분해질 주입군은 종양세포주입 후 6 주간 관찰한 결과 90% 생존율을 나타내었다(도 15 참조). 이에, 본 발명자들은 상기 화합물 3이 T 세포 (T4 및 T8)를 활성화시켜 상기와 같은 항암효과를 나타내었다고 판단하고 이를 화합물 3으로 활성화시킨 T-세포의 악성 흑색종에 대한 세포독성 검사를 실시하였다. 그 결과, 화합물 3을 T-세포에 처리하지 않았을 때보다 화합물 3을 T-세포에 처리하였을 때, 그리고 악성 흑색종에 대한 T-세포의 비율이 높을수록 세포독성이 증가하는 것을 관찰하였다(도 16 참조). 이상의 결과로부터, 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물은 암 발생을 억제시키며, T 세포를 활성화시켜 암세포에 대한 독성을 나타내므로 항암제로 유용하게 사용할 수 있 음을 확인하였다. 본 발명의 화합물이 적용되는 암에는 특별한 제한이 없으나, 본 발명의 화합물은 담도암, 신장암, 악성흑색종 등의 예방 및 치료에 특히 유용하다.
이러한 결과로부터 본 발명에서는 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물을 유효성분으로 함유하는 연질 캅셀 및 정제를 제조함으로써 본 발명을 완성하였다. 본 발명의 면역조절제, 후천성 면역결핍증 치료제, 패혈증 치료제 및 항암제는 상기와 같은 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물을 총중량에 대해 20 내지 100 중량% 함유하는 것이 바람직하며, 30 내지 100 중량%로 함유하는 것이 보다 바람직하다. 상기 화합물의 함량이 너무 적거나 많으면, 복용이 불편할 뿐 특별한 이익이 없다. 또한, 본 발명의 화합물을 패혈증 치료제, 항암제, 면역조절제 등으로서 경구투여할 때에는 1일 1회 내지 3회, 1회 4 내지 50 ㎎/㎏의 농도로 투여하는 것이 바람직하다. 본 발명에 따른 화합물은 본 발명의 화합물에 약제학적으로 허용되는 1종 이상의 담체를 첨가하여 약제로 제조할 수 있다. 상기 담체로는 식염수, 완충 식염수, 물, 글리세롤 및 에탄올 등이 있으나 이에 한정되지 않으며, 당해 기술 분야에 알려진 적합한 제제(Remingtons's Pharmaceutical Science(최근판), Mack Publishing Company, Easton PA)를 모두 사용 가능하다. 본 발명의 제제는 임상 투여시에 경구로 투여가 가능하여 일반적인 의약품 제제의 형태로 사용될 수 있으며, 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 본 발명의 제제는 대상의 연령, 성별, 상태, 체내에서 활성 성분의 흡수도, 불활성율 및 배설속도, 병용되는 약물에 따라 달리 적용될 수 있으며, 예컨대 체중이 60kg인 경우 1일에 0.24 내지 9.0 g을 경구투여할 수 있으나 이에 한정되지는 않는다. 본 발명은 또한 투약 단위의 제형들을 포함한다. 제형은 개별 투약 형태, 예를 들면 정제, 피복 정제, 캡슐제, 환제, 좌약 및 앰플제로 존재하고, 약제 중 유효 화합물의 함량은 개별 투약량의 분율 또는 배수에 해당한다. 투약 단위는, 예를 들면 개별 투여량의 1, 2, 3 또는 4배로, 또는 1/2, 1/3 또는 1/4배를 함유할 수 있다. 개별 투여량은 바람직하기로는 유효 화합물이 1회에 투여되는 양을 함유하며, 이는 통상 1일 투여량의 전부, 1/2, 1/3 또는 1/4배에 해당한다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 경구투여를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드, 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 본 발명에 따른 화합물은 상술한 경구투여용 제제 뿐만 아니라, 주사용 제제로 제공될 수 있다. 예를 들면 멸균주사용 수성 또는 유성 현탁액은 공지된 기술에 따라 적합한 분산제, 습윤제, 또는 현탁제를 사용하여 제조될 수 있으며, 약제학적으로 허용되는 용매는 물, 링거액, 등장성 NaCl 용액 등이 있으며, 멸균 고정오일은 통상적으로 용매 또는 현탁매질로서 사용된다. 상기 멸균 고정오일은 모노글리세라이드, 디글리세라이드, 폴리프로필렌글리콜 등을 포함하는 무자극성 고정오일을 사용할 수 있으며, 또한 올레산과 같은 지방산이 사용될 수도 있다.
아울러, 본 발명은 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물을 유효성분으로 함 유하는 면역조절 또는 항암 기능성 건강식품을 제공한다. 본 명세서에 있어서, "건강식품"이란 각종 질병의 치료 또는 예방, 신체기능의 균형적인 유지를 위한 각종 식품, 영양제, 건강보조제 등을 포함하는 것으로서, 상기 건강식품에 있어서 본 발명에 따른 화합물의 함량은 필요에 따라 0.02 내지 100중량%의 범위로 조절될 수 있다. 본 발명의 화합물을 건강식품으로 사용할 경우, 상기 화합물을 그대로 사용하거나, 다른 식품 또는 식품 성분과 함께 혼합하여 사용하는 등, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용할 수 있다. 유효 성분의 혼합양은 그의 사용 목적 (예방, 건강 또는 치료적 처치)에 따라 적합하게 결정될 수 있으며, 예방목적으로 사용할 경우, 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물의 첨가량은 건강식품 총중량에 대해 0.02 내지 2 중량%인 것이 바람직하며, 0.2 내지 0.6 중량% 포함하는 것이 더욱 바람직하다. 상기 화합물의 첨가량이 너무 적거나 많으면, 복용이 불편할 뿐 특별한 이익이 없다. 이들 화합물을 건강 및 위생을 목적으로 하거나 또는 건강 조절을 목적으로 하는 경우, 장기간 섭취하게 되므로 유효성분은 독성측면에서 매우 안전하여야 한다. 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤류 화합물은 독성 검사 결과 안전성 면에서 아무런 문제가 없기 때문에 장기간 복용이 가능한 것으로 판명되었다. 본 발명의 화합물을 유효성분으로 첨가하는 식품의 종류에는 특별한 제한이 없으며, 예를 들면, 육류, 소세지, 빵, 각종 스프, 음료수, 차, 드링크제, 알콜 음료 및 비타민 복합제 등이 있다. 상기 건강식품이 질병의 치료 또는 예방을 목적으로 하는 영양제, 건강보조제 등의 용도로 사용될 경우, 상기 화합물의 함량은 바람직하게는 20 내지 100 중량%, 더욱 바람직하게는 30 내지 100 중량%, 더더욱 바람직하게는 30 내지 95중량%이다. 이 경우 1일 섭취량은 0.18 내지 9.0g을 섭취할 수 있으나 이에 한정되지는 않는다. 제형은 정제, 캡슐제 모두 가능하다.
상기에서 살펴본 바와 같이 본 발명의 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물은 T 세포를 활성화시켜 사이토카인의 분비를 증가시키고, 세포 간 부착분자 발현을 증가시켜 면역 세포에의 자극을 촉진함으로서 면역력을 증가시킬 뿐만 아니라, 자가면역질환 및 암의 예방 및 치료에 유용하다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
[실시예 1] 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물이 T 세포 증식 및 단핵구 세포 증식에 미치는 영향
[실시예 1-1] 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물이 T 세포 증식에 미치는 영향
C57BL/6 생쥐 비장으로부터 비장세포를 분리하였다. 비장세포는 흡인(aspiration)과 플러싱(flushing)을 통해 단일 세포로 만들었다. 암모늄 클로라이드(amomonium chloride)를 사용하여 적혈구 세포를 제거하였으며, 나일론 울을 통과시키면서 세포 찌꺼기(debris)와 응괴(clump)를 제거하였다. 다음으로 항-염소 IgG(Miltenyi Biotec, bergich gladbach, Germany), 항-생쥐 CD4(Miltenyi Biotec, bergich gladbach, Germany) 또는 항-생쥐 CD8 항체(Miltenyi Biotec, bergich gladbach, Germany)를 포함하는 자석 비드(MACS bead, Miltenvi Biotec, bergich gladbach, Germany)를 이용하여 T 세포를 분리하였다(Turner and Dockrell (1996) Immunology, 87: 339-342).
분리한 T 세포는 IMDM 배지(Isocove's modified dulbecco's medium)(Gibco, Grand Island, NY) 및 10% 우태아혈청(Fetal Bovine serum; 이하, 'FBS'라 약칭함)(Gibco, Grand Island, NY)을 포함하는 배지로 현탁한 뒤 96 웰 플레이트의 각 웰에 5 x 104 세포수로 접종하였으며, 접종된 세포에 1 ㎍/㎖의 화합물 1, 2, 4 및 5와 0.01, 0.1 및 1 ㎍/㎖ 농도의 화합물 3 및 20 ng/㎖ 농도의 IL-2를 처리하여 배양하였다. 배양 6일째 3H-싸이미딘을 각 세포 배양 웰당 1 μCi 농도로 처리하여 24시간 동안 반응시켰다. 배양 7일째 세포를 수득한 뒤 3H-싸이미딘 인코퍼레이션(incorporation) 정도를 측정하여 하기 수학식 1의 계산법으로 자극 수치(Stimulation Index; 이하 'SI'라 약칭함)를 계산하였다.
<수학식 1>
SI = 실험군 웰에서 흡수한 3H-싸이미딘(실험군의 CPM) / 대조군의 웰에서 흡수한 3H-싸이미딘(대조군의 CPM)
그 결과, 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물 3을 1㎍/㎖ 처리한 그룹에서 는 T 세포의 SI가 2.05로 나타나 IL-2를 20ng/㎖ 처리한 그룹과 유사하였다(표 1).
처리군 |
SI |
IL-2 (20 ng/㎖)* |
2.05 ± 0.24 |
화합물 1 (1 ㎍/㎖)* |
2.01 ± 0.43 |
화합물 2 (1 ㎍/㎖)* |
2.03 ± 0.54 |
화합물 3 (0.01 ㎍/㎖)** |
1.83 ± 0.32 |
화합물 3 (0.1 ㎍/㎖)* |
1.96 ± 0.18 |
화합물 3 (1 ㎍/㎖)* |
2.05 ± 0.64 |
화합물 4 (1 ㎍/㎖)* |
1.98 ± 0.26 |
화합물 5 (1 ㎍/㎖)* |
2.02 ± 0.38 |
상기 표에서 *P<0.05, **P<0.005이고, 각 수치는 3회 수행한 실험 결과이다.
[실시예 1-2] 모노아세틸디아실글리세롤류의 화합물이 단핵구 세포 증식에 미치는 영향
히스토파크 1077을 사용하여 인간의 전혈(whole blood)로부터 단핵구를 분리하였다. 분리한 단핵구 세포를 5 x 106 세포수/㎖ 농도로 조직 배양 플라스크에 접종한 뒤 3시간 동안 5% CO2 배양기에서 배양하였다. 3시간 동안 배양하고 난 뒤 흡착된 세포를 수득하여 10% FBS을 포함하는 RPMI 1640 배지(GIBCO, Grand Island, NY)로 현탁하였다. 각 웰당 생존하는 세포 5 x 104개를 1 ㎍/㎖ 농도의 화합물 1 내지 5 각각과 함께 96웰 플레이트에서 배양하였다. 배양 6일째에 각 배양 웰마다 1 μCi 3H-싸이미딘을 첨가하여 24시간 동안 배양하였다. 최종적으로 배양 7일째에 세포를 수득한 뒤 인코퍼레이션된 3H-싸이미딘을 정량하였다. 정량한 수치를 이용하여 SI를 상기 수학식 1에 따라 계산하였다. 그 결과, 화합물 1 내지 5 각각을 처리한 경우는 무처리 대조군에 비해 단핵구의 SI 수치가 10.68배나 증가하여 단핵구를 자극시킴을 알 수 있었다(표 2).
처리군 |
SI(± S.E) |
무처리 대조군 |
1 |
화합물 1 (1 ㎍/㎖)* |
9.97 ± 0.10 |
화합물 2 (1 ㎍/㎖)* |
10.42 ± 0.15 |
화합물 3 (1 ㎍/㎖)* |
10.68 ± 0.13 |
화합물 4 (1 ㎍/㎖)* |
10.21 ± 0.18 |
화합물 5 (1 ㎍/㎖)* |
9.75 ± 0.09 |
상기에서 *P<0.001이고, 각 수치는 2회 수행한 실험 결과이다.
[실시예 2] 화합물 3이 T 세포 활성에 미치는 영향
[실시예 2-1] 엘리스팟(Elispot)를 이용한 사이토카인 측정
엘리스팟(Elispot) 분석은 Elispot (ESAT-6 enzyme-linked immunospot assay) 플레이트의 각 웰의 바닥에는 사이토카인에 특이적인 캡쳐 항체로 코팅되어 있으므로, 사이토카인을 정량할 수 있는 매우 민감한 분석방법이다. 이에, T 세포의 활성을 측정하기 위해 사이토카인 양을 보다 높은 감도로 정량할 수 있는 Elispot 분석을 수행하였다. T 세포를 24웰 멸균 조직 배양 플레이트(Nunc, Denmark)에 2 x 106 세포수/㎖ 농도로 접종하고, 화합물 3을 0.01, 0.1, 1 ㎍/㎖ 농도로 처리하거나 또는 IL-2를 20 ng/㎖ 농도로 처리하여 배양하였다. 배양 7일째 세포를 수득한 뒤 생쥐 IL-2를 일차 항체로 코팅된 멀티 테스트 플레이트(Elispot system kit, AID, Straberg, Germany)에 5 x 105 세포수/㎖ 농도로 접종하였다. 상기 플레이트를 24시간 동안 5% CO2 배양기에서 배양한 뒤 T 세포에 의해 분비되는 IL-2의 양을 IL-2 엘리스팟(Elispot) 킷트를 사용하여 제조사의 지침에 따라 분석하였다. 각 샘플에 대해서 두 번 실험을 하였고, 엘리스팟(Elispot) 판독기(AID Elispot Reader System)를 이용하여 엘리스팟(Elispot) 분석에 의해 세포가 생산하는 IL-2의 양을 측정하였다. 그 결과, 화합물 3을 처리한 그룹에서는 T 세포의 활성이 무처리한 대조군에 비해 1.5배 증가하였다(도 1).
[실시예 2-2] (바이오-플렉스)Bio-plex를 이용한 사이토카인 측정
바이오-플렉스(Bio-plex)의 분석은 하나의 웰(well)에서 많은 종류의 사이토카인의 양을 한번에 측정할 수 있다는 장점을 가지고 있다. 이에 T세포가 활성화 되었을 때 분비되는 Th1/Th2 경로의 8가지의 사이토카인을 한번에 정량하여 분석하기 위하여 바이오-플렉스 킷트(bio-plex kit)를 이용하였다. 24웰 멸균 조직 배양 플레이트(Nunc, Denmark)에 anti-CD3, anti-CD28를 처리한 후, T 세포를 2 x 106 세포수/㎖ 농도로 접종하고, T 세포를 활성화시키기 위해서 0.1, 1 ㎍/ml 화합물 3을 처리하여 5일간 배양하였다. 배양한지 5일째, 각 조건별로 배양액을 회수하여 원심분리한 후 조심스럽게 상층액만을 모아 분비된 사이토카인의 양을 바이오-플렉스 킷트를 사용하여 제조사(Bio-rad)의 지침에 따라 분석하였다. 그 결과 화합물 3을 처리한 그룹에서 8가지 사이토카인(IL-2, IL-4, IL-5, IL-10, IL-12, INF-γ, GM-CSF, TNF-α)중 3가지의 사이토카인(IL-2, IL-4, IL-5)이 화합물 3을 처리하지 않은 대조군에 비해 많은 양이 분비되었다(도 2).
[실시예 3] T 세포 증식 분석(proliferation assay)
상기 화합물 3이 인간 AIDS 환자의 면역세포에 미치는 영향을 확인하기 위하여 다음과 같은 실험을 수행하였다. 먼저, AIDS 환자의 말초 혈액으로부터 HISTOPAQUE 1077에 의하여 단핵세포를 수득하였고, 염화암모늄(ammonium chloride)을 사용하여 적혈구를 제거한 다음, 나일론 울(nylon wool)을 통과시켜 세포찌거기(debris)와 응괴(clump)를 제거하였다. 다음으로, T 세포들은 항-인간 CD3 MACS 마그네틱 비드(magnetic bead, Miltenvi Biotec)로 분리하고, 분리한 T 세포를 10% 우태아 혈청(Fetal Bovine serum, FBS, GIBCO)이 첨가된 IMDM 배지(Iscove's modified dulbecco's medium, GIBCO)에서 배양하였다. 96-웰 플레이트의 각 웰에 5 x 104 개의 살아있는 T 세포를 접종하고, 1 ㎍/ml 농도의 화합물 3 또는 20ng/ml 농도의 IL-2 를 처리하여 세 세트씩 배양하였다. 배양 6일째에 각 세포 배양 웰당 1 μCi 3H-싸이미딘을 첨가하여 24시간 동안 정온배치하였다. 7일째에 세포들을 회수하여, 3H-싸이미딘 인코포레이션 정도를 측정하고, 상기 수학식 1에 따라 자극지수(Stimulation lndex, SI)를 계산하였으며, 그 결과를 표 3에 나타내었다. 표 3으로부터, 모든 환자(4명 중 4명)에서 화합물 3을 처리한 그룹의 T 세포 자극지수가 대조군에 비해 1.5 내지 3.9배 증가하므로, 화합물 3에 의한 자극은 IL-2에 의한 자극과 유사할 정도로 효과적임을 알 수 있다.
|
자극지수(Stimulation Index, SI) |
1 |
2 |
3 |
4 |
IL-2(20ng/ml) |
1.41 |
4.17 |
1.29 |
6.54 |
화합물3 (1㎍/ml) |
2.23 |
3.87 |
1.48 |
3.49 |
[실시예 4] 화합물 3이 수상돌기(Dendritic) 세포의 부착 분자 발현에 미치는 영향
[실시예 4-1] 수상돌기세포 배양
골수(bone marrow) 세포는 Balb/c AnN 생쥐의 대퇴골과 정강이뼈로부터 공지된 방법으로 분리하였다(Park, J. et al. (2003) J. Korean Med. Sci., 18: 372-380). 분리한 세포를 RPMI 배지로 3회 세척한 뒤, 단핵구 세포(mononuclear cell)만을 분리하였으며, 분리한 단핵구 세포를 RPMI 배지와 10% FBS를 포함하는 배지를 이용하여 조직 배양 플라스크에 접종하여 3시간 동안 배양하면서 부착배양할 수 있도록 하였다. 배양하고 난 뒤, 부착배양한 단핵세포(monocyte)를 제거한 뒤 부착하지 않은 세포를 100 mm 조직 배양 디쉬에 접종하였다. 접종시 세포 농도는 1 x 105 세포수/㎖로 하였으며, RPMI 배지에 10% FBS를 첨가하고, 여기에 추가로 생쥐 rGM-CSF(R&D systems, minneapolis, MN, USA) 20 ng/㎖, 생쥐 IL-4(R&D systems) 10 ng/㎖ 및 생쥐 TNF-α(R&D systems) 2.5 ng/㎖을 첨가한 배지를 사용하였다. 배양 디쉬의 배지는 매 3일마다 교환해주었다. 배양 6일째 되는날 TNF-α를 첨가해 주었으며, 그로부터 11일이 될 때까지 3일마다 첨가해 주었다. 성숙 수상돌기세포는 부착 분자 연구를 위한 RT-PCR 분석에 사용하였다. 그 결과, 둥근형태의 과립세포를 3일 동안 배양하였을 때 상기 세포가 클러스터를 형성하고, 세포배양 웰의 바닥에 부착하여 배양된 형태를 나타내었으며, 배양 6 내지 7일째 성숙 수상돌기세포가 군집하여 자라나는 형태를 나타내었으며, 배양 9일째에 수상돌기세포가 특이적으로 길고 작은 전골(protrusion)의 형태를 나타냄을 확인하였다(도 3).
[실시예 4-2] 수상돌기세포의 표현형 결정
트리판 블루 염색에 대해 음성이고, 크기가 큰 세포를 살아있는 세포로 계수하였고, 이들의 각각의 형태를 확인하였다. 1 x 106개의 세포를 배양한 뒤, 세척하고 1% 파라포름알데히드 용액으로 고정하였다. 고정된 세포는 FACScan(Beckton Dickinson, Mountain View, CA, U.S.A)을 이용하여 유세포 분석(Flow cytometric analysis)함으로써 하기 마커에 대한 항체로 표현형을 결정하였다; 햄스터 IgG에 대한 동종형(isotype) 대조군, 쥐 IgG 2a, DC 마커:DEC 205(NLDC-145) 및 CD 11C, 동시-촉진/흡착(Co-stimutatory/ adhesion) 분자: CD 80(B7-1) 및 CD 86(B7-2), 대식세포 마커: CD 14 및 F4/80, 과립백혈구(Granulocyte) 마커: Gr-1(Pharmingen, Hamburg, Germany).
그 결과, 공동자극 특이적 분자 마커인 CD80 및 CD86이 높은 수치로 나타났고, 수상돌기세포 특이적 마커인 CD11c 및 DEC-205가 높은 수치로 나타났다. 그러나, 단핵구 특이적 마커인 CD14 및 F4/80과 과립구 특이적 마커인 Gr-1에 대해서는 낮은 수치를 나타내어 본 발명에서 분리한 수상돌기세포는 수상돌기세포의 표현형을 정확히 나타내고, 97 내지 98%의 순도를 나타냄을 알 수 있었다(도 4).
[실시예 4-3] 화합물 3의 처리 및 부착 분자의 발현 분석
세포와 세포의 상호작용은 다양한 조혈 세포 및 면역 세포를 자극한다고 알려져 있다. 이에, 화합물 3이 상기 세포의 다양한 부착 분자에 영향을 미치는지 확인하고자 하였다. 구체적으로 상기 실시예에서 배양한 수상돌기세포에 화합물 3을 1 ㎍/㎖ 농도로 처리한 뒤 세포를 수득하여 RT-PCR을 수행하였다.
구체적으로, RT-PCR에 사용한 프라이머로는 Icam-1(서열번호 1 및 서열번호 2), Icam-2(서열번호 3 및 서열번호 4), Vcam-1(서열번호 5 및 서열번호 6), VLA-4(서열번호 7 및 서열번호 8), VLA-5(서열번호 9 및 서열번호 10), LFA-1(서열번호 11 및 서열번호 12) 및 GAPDH(서열번호 13 및 서열번호 14)를 사용하였고, 프라이머 세트는 2 ㎕의 DNA, 10x 완충액, 1.5 ㎕의 MgCl2, 2 ㎕의 dNTP, 0.5 ㎕의 정방향(forward) 프라이머, 0.5 ㎕의 역방향(reverse) 프라이머, 0.2 ㎕의 폴리머라제(polymerase) 및 15.8 ㎕의 증류수로 구성되는 혼합액을 이용하였다.
올리고(dt)-프라이머를 이용하여 배양된 낮은 밀도 세포인 MS-5 및 수상돌기세포로부터 분리된 전체 RNA를 역전사시키고, 94℃에서 30초, 65℃에서 30초 및 72℃에서 50초 반응시킴으로써 PCR을 수행하였다. PCR 실행 횟수는 총 34회를 실행하고, PCR 수행당 2배씩 증가하는 산물의 생성을 확인하였다. RT-PCR 수행시 부착 분자로는 Vcam-1, Icam-1, Icam-2, VLA-4, VLA-5, LFA-1 분자의 발현을 확인하였고, 비교 정량하기 위해 GAPDH에 대한 PCR 반응을 수행하여 상응하는 cDNA의 존재를 확인하였다. 그 결과, 화합물 3을 처리한 수상돌기세포는 무처리한 대조군에 비해 부착 분자 Icam-2, VLA-5, LFA-1의 발현이 증가하였다(도 5).
[실시예 5] 피하 종양 이식법 (국소 모델) 및 정맥주사 종양 주입법 (전신 모델)을 통한 항암 효과 분석
[실시예 5-1] 담도암(KIGB) 햄스터 모델
6주령의 암컷 시리안 골든 햄스터(Syrian golden hamster)(Harlan, Indianapolis, India, USA)를 특정 병원균 부재 사육장에서 사육하였다. 담도암 세포인 KIBG-5 세포(Molcular therapy, Vol.3, No4, pp431-437) 5 x 105개를 무혈청 RPMI 1640 배지 100 ㎕에 현탁한 뒤 곧바로 대퇴부 혈관으로 정맥주사(intravenously inject, I.V)하였다. 또한, KIGB-5 세포 1 x 105개를 무혈청 RPMI 1640 배지 100 ㎕에 현탁한 뒤 측복부에 피하주사(subcutaneously inject, S.C)하였다. 이때 KIBG-5 세포를 주입한 햄스터는 하기의 7개 그룹으로 나누었다; 1) RPMI 배지를 처치한 대조군, 2) 변형되지 않은 BMSC 세포(2.5 x 106개)(Leukemia & Lymphoma, Vol.44, No11, pp1973-1978) 처치군, 3) Ad/ΔE1 50 MOI로 변형한 BMSC 세포처치군(Leukemia & Lymphoma, Vol.44, No11, pp1973-1978), 4) DC + 종양 분해질(5 x 106개) 처치군, 5) Ad/hIL-2 50 MOI로 변형한 BMSC 세포처치군 (Leukemia & Lymphoma, Vol.44, No11, pp1973-1978), 6) Ad/hIL-2 50 MOI로 변형한 BMSC 세포처치군 + 화합물 3 (25 ㎎/kg/일) 처치군 및 7) 화합물 3, 25 ㎎/kg/일 처치군. BMSC 세포 주입군의 경우 일주일의 종양 세포 주입 후 또는 피하이식 후에 햄스터 마리당 2.5 x 106개의 BMSC를 단 1회 주입하였다. DC + 종양 분해질 처치군의 경우 국소적 이식 그룹 또는 정맥주사 주입그룹에서 모두 1, 2, 3, 4, 6, 8주마다 햄스터당 5 x 106개 DC + 종양 분해질을 주입하고 12주 동안 관찰하였다. 화합물 3 처치군은 햄스터당 25 ㎎/㎏을 주입하였으며, 담도암세포 주입 7일전부터 7일후까지 2주간 처치하고 1주간의 휴식의 형식으로 8주 동안 처치하였다.
그 결과, 종양을 주입한지 4주째에 대조군인 RPMI 주입군, BMSC 세포 단독 주입군 및 BMSC + Ad/ΔE1 주입군의 경우는 종양이 형성되었지만(도 6), DC + 종양 분해질 주입군, 화합물 3 주입군 및 BMSC + Ad/IL-2 주입군의 경우는 종양이 관찰되지 않았다. 또한, 종양을 주입한지 8주 후에 대조군인 RPMI 주입군, BMSC 세포 단독 주입군 및 BMSC + Ad/ΔE1 주입군에서는 다발적 전이성(metastatic) 폐 병변(lung lesion)이 형성되었고, BMSC + Ad/IL-2 주입군의 경우는 폐에서 어떠한 징후도 나타나지 않았고, DC + 종양 분해질 주입군, 화합물 3 주입군의 경우는 폐 조직검사에서 미세한 병소 하나가 각각 관찰되었다(도 7, 도 8 및 도 9). 또한, 종양을 피하주입한지 12 주후에 대조군인 RPMI 주입군, BMSC 세포 단독 주입군, BMSC + Ad/ΔE1 주입군 및 DC + 종양 분해질 주입군, 화합물 3 주입군은 주입 부위에서 종양이 형성되었지만, BMSC+Ad/hIL-2 주입군에서는 1마리에서 5mm이하의 종양이 발견되었으나 BMSC+Ad/hIL-2 + 화합물 3 주입군의 경우는 종양이 전혀 형성되지 않았다(도 10).
또한 6주령의 암컷 시리안 골든 햄스터의 대퇴부정맥으로 담도암세포 KIGB-5(5 x 105개)를 무혈청 RPMI 1640 배지 100㎕ 에 현탁하여 주입하였다. 암세포 주입 1주 전에 4군으로 나누어 다음의 처치를 각각 하였다. 1) 인산완충용액 주입군, 2) 화합물 3 (10 mg/㎏/일) 주입군, 3) 화합물 3 (25 mg/㎏/일) 주입군, 4) 화합물 3 (50 mg/㎏/일) 주입군. 화합물 3 주입군은 상기와 같은 여러 용량으로 담도암세포 주입 7일 전부터 7일 후 까지 2주간 처치하고 1주간 휴식의 형식으로 12주 동안 처치하였다. 그 결과, 종양을 주입한지 4주 후에 인산완충용액 주입군에서 종양주입부위에 종양이 형성되었지만, 화합물 3 (10, 25, 50 mg/㎏/일) 주입군에서는 종양이 관찰되지 않았다. 또한, 종양을 주입한지 8주 후에 대조군인 인산완충용액 주입군의 경우는 양쪽 폐부위에 다발적 전이성 폐 병변이 관찰되었다. 화합물 3 주입군에서는 화합물 3 (50 mg/㎏/일) 주입군은 폐에서 어떠한 징후도 나타나지 않았으나, 화합물 3 (25 mg/㎏/일) 주입군에서는 폐에서 종양을 육안으로 관찰할 수 없었으나, 폐 조직 검사에서 미세한 병소 하나가 관찰되었고, 화합물 3 (10 mg/㎏/일) 주입군에서는 좌측 폐부위에 종양이 형성되었다(도 11, 도 12).
[실시예 5-2] 악성 흑색종 생쥐 모델
6 주령의 암컷 C57BL/6(아산생명과학연구소, 서울, 한국)를 무균 사육장에서 사육하였다. 악성흑색종 B16F10(2 x 104)을 무혈청 RPMI 1640 배지 100㎕에 현탁하여 꼬리 정맥으로 주입하였다. 암세포 주입 1 주 전에 3군으로 나누어 각각 다음의 처치를 하였다.
1) RPMI 주입군,
2) 수상돌기세포(DC)(5 x 105 세포수/일) + 종양 분해질 주입군,
3) 화합물 3 (50 mg/㎏/일) 주입군.
수상돌기세포 + 종양 분해질 주입군의 경우, 악성 흑색종세포 주입 1주일 전부터 1 주 간격으로 5 x 105 세포수를 복강에 접종하였다. 화합물 3 주입군은 악성 흑색종세포 주입 7일 전부터 2주간 처치하고 1주간 휴식의 형식으로 종양세포 주입 후 6주 동안 (총 7주) 경구투여 하였다. 그 결과, 종양을 주입한지 4주 후에 대조군인 RPMI 주입군의 경우는 다발적 전이성 (metastatic) 폐 병변 (leison)이 형성되었다. 화합물 3 주입군과 수상돌기세포 + 종양 분해질 주입군은 폐에서 어떠한 징후도 나타나지 않았고(도 13 및 14) 종양세포 주입 후 6 주간 관찰한 결과 90% 생존율을 나타내었다 (도 15).
이러한 항암효과가 화합물 3의 T 세포의 활성화로 인한 것으로 추정하여 화합물 3으로 활성화 시킨 T 세포가 악성 흑색종에 대한 세포독성 검사를 실시하였다. 그 결과 화합물 3 처리군에서 활성화시킨 T 세포와 흑색종세포의 비율이 100:1 일때 42% 세포독성이 증가하는 것을 관찰할 수 있었다(도 16).
[실시예 6] 화합물 3의 독성실험
유기 화학적으로 합성한 화합물 3의 시료를 에탄올 5% 용액으로 녹여 사용하였으며, 체중 20 g당 0.1 ㎖ 용량으로 경구 투여 (p.o.)하였다. 대조군은 에탄올 5% 용액을 투여하였다. SPF 조건하에서 분양, 사육되고 있는 ICR 생쥐를 사용하였다. 시료를 경구투여하기 시작한 1일 전날 밤에 절식(fasting)시켰으며 물과 사료는 자유로이 섭취하게 하였다. 실험동물은 체중 25-30 g 내외의 ICR 생쥐 수컷 8-10 마리를 한 군으로 하였고, 용량은 62.5 ㎎/㎏, 125 ㎎/㎏, 250 ㎎/㎏, 500 ㎎/㎏, 1 g/㎏, 2 g/㎏의 용량으로 1회 경구투여 하고 죽는 마우스의 수 및 육안적인 이상여부를 투여 후 14일간 관찰하였다. LD50은 리치필드-윌콕손(Lichfield-Wilcoxon)법으로 계산하였으며 (白須, 泰彦, 吐山, 豊秋 : 新毒性 試驗法 - 方法 と 評價 - 급성독성 시험, Realize Inc., Tokyo, 1988), 체중 증가율은 다음의 수학식에 따라 산출하였다.
<수학식 2>
체중 증가율(%)= 14일째 체중 - 0일째 체중 ㆇ 0일째 체중 x 100
그 결과, 표 4에서 보는 바와 같이 생쥐에 화합물 3을 62.5㎎/㎏ 내지 2g/㎏의 용량으로 경구 투여하여도 전혀 독성이 없었으며, 이를 통해 LD50은 모두 2g/㎏ 이상임을 알 수 있었다. 또한, 약물 투여 후 14일간 관찰했을 때 육안 이상여부는 관찰되지 않았다. 시료를 투여한 동물의 체중은 투여하지 않은 동물 군과 같이 대체적으로 꾸준히 증가하였으며, 표 5에서 보는 바와 같이 특별한 체중증가 혹은 체중 감소효과는 관찰되지 않았다.
화합물 3 투여량에 따른 사망률(%)
화합물 3의 투여량 (㎎/㎏) |
0 |
62.5 |
125 |
250 |
500 |
1000 |
2000 |
사망생쥐수/ 경구투여 생쥐수 |
0/10 |
1/8 |
0/8 |
1/8 |
2/9 |
0/9 |
0/9 |
LD50 |
0 |
12.5 |
30 |
12.5 |
22.2 |
0 |
0 |
화합물 3 경구 투여 14일 후의 체중 증가
화합물 3 투여량 (㎎/㎏) |
0 |
63 |
125 |
250 |
500 |
1000 |
2000 |
투여 14일 후 체중(g) |
38.7 ± 1.1 |
34.3 ± 0.1 |
38.1 ± 1.3 |
35.6 ± 1.4 |
36.5 ± 1.9 |
35.5 ± 1.1 |
35.9 ± 2.7 |
체중 증가율(%) |
16.9 |
11.9 |
17.3 |
11.2 |
10.1 |
9.5 |
14.4 |
화합물 3 100 mg/Kg/day를 쥐에 4 주간 경구한 투여한 후 간기능검사, 혈중지질검사, 싸이토크롬 C-450 활성도 및 간조직 검사 등으로 간독성 유무를 검사하였으나 특이한 독성은 관찰 되지 않았다.
[실시예 7] 맹장 결찰 및 천공(Cecal Ligation and Puncture; CLP) 모델시험
상기 화합물 3의 패혈성 쇼크에 대한 예방 및 치료 효과를 확인하기 위하여 CLP 모델 (인위적으로 맹장을 결찰 및 천공하여 복막염을 유발하여 패혈성 쇼크를 유발시킨 동물 모델)을 이용하여 다음과 같이 시험하였다. 시험은 각 시험 군당 10마리의 male inbred C3H/HeN mice (7-10주, 체중 20 ~ 25g)를 사용하여 이들에게 3주전부터 2주간 50mg/kg/day의 용량으로 처치하고 1주간 휴식의 형식으로 p.o.로 화합물 3을 경구투여 하였고, 케타민(ketamine) 80mg/kg 및 롬펀(rompun) 16mg/kg을 사용하여 마취시킨 후 CLP방법에 의하여 패혈성 쇼크를 유발시켰다. 1시간 후 화합물 3을 50mg/kg의 용량으로 접종하고, 그 후 24시간 간격으로 동일 용량으로 3일 동안 접종하였다. 대조군은 PBS + 5% 에탄올을 경구투여 하였다. 시간이 경과함에 따른 실험군과 대조군의 마우스의 생존율을 조사한 결과 다음의 표 6에서와 같이, 실험군은 120시간 이후에도 100%의 생존율을 보여주었다.
패혈성 쇼크에서의 생존율
|
0시간 생존율 |
24시간 생존율 |
48시간 생존율 |
72시간 생존율 |
96시간 생존율 |
120시간 생존율 |
PBS 처리군 |
100% |
60% |
40% |
40% |
40% |
40% |
화합물 3 (50mg/kg) |
100% |
100% |
100% |
100% |
100% |
100% |
[제조예 1] 화합물 3을 유효성분으로 함유하는 의약품의 제조
본 발명자들은 상기 실험예를 통해 화합물 3이 면역조절 및 항암 활성이 뛰어남을 확인하여 이를 유효성분으로 함유하는 치료제를 하기와 같이 제조하였다. 또한, 하기 치료제의 제조예는 치료제 뿐만 아니라 건강식품의 제조에도 응용하여 사용될 수 있다. 하기 예에서 %는 별도의 언급이 없으면 중량%를 나타낸다.
[제조예 1-1] 연질캅셀(soft gelatin capsules)의 제조
[제조예 1-1-1]
화합물 3 30%
비타민 C 4.5%
비타민 D3 0.001%
황산망간 0.1%
밀납 10%
팜유 25%
홍화씨유 30.399%
[제조예 1-1-2]
화합물 3 31.25%
달맞이꽃 종자유 59.75%
대두유 6.7%
비타민 E 초산에스테르(DL-알파토코페롤초산염) 2.1%
대두레시틴 0.2%
[제조예 1-1-3]
화합물 3 98.0%
비타민 E 초산에스테르(DL-알파토코페롤초산염) 2.0%
[제조예 1-2] 정제(tablet)의 제조
화합물 3 30%
비타민 C 10%
비타민 D3 0.001%
황산망간 0.1%
결정셀룰로오즈 25.0%
유당 32.999%
스테아린산마그네슘 2%
[제조예 1-3] 주사용 제제의 제조
화합물 3 2%
프로필렌글리콜 35%
모노글리세라이드 8%
에탄올 5%
물 50%
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 주사용제제를 제조하였다.
[제조예 2] 화합물 1, 2, 4 및 5를 각각 유효성분으로 함유하는 의약품의 제조
상기 제조예 1에서 화합물 3 대신에 각각 화합물 1, 2, 4 및 5를 동일한 양으로 사용한 것을 제외하고는, 상기 제조예 1과 동일한 조성으로 연질캅셀, 정제, 및 주사제 현탁액을 제조하였다.
[제조예 3] 화합물 3을 유효성분으로 함유하는 기능성 건강 식품의 제조
본 발명자들은 상기 실험예를 통해 화합물 3이 면역조절효과, 패혈성 쇼크 및 암에 대한 활성이 뛰어남을 확인하여 이를 유효성분으로 함유하는 기능성 건강 식품을 하기와 같이 제조하였다.
[제조예 3-1] 음료의 제조
꿀 522 ㎎
치옥토산아미드 5 ㎎
니코틴산아미드 10 ㎎
염산리보플라빈나트륨 3 ㎎
염산피리독신 2 ㎎
이노시톨 30 ㎎
오르트산 50 ㎎
화합물 3 0.48 ∼ 1.28 ㎎
물 200 ㎖
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 음료를 제조하였다.
[제조예 3-2] 츄잉껌의 제조
껌베이스 20 %
설탕 76.36 ∼ 76.76 %
화합물 3 0.24 ∼ 0.64 %
후르츠향 1 %
물 2 %
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 츄잉껌을 제조하였다.
[제조예 3-3] 캔디의 제조
설탕 50 ∼ 60 %
물엿 39.26 ∼ 49.66 %
화합물 3 0.24 ∼ 0.64 %
오렌지향 0.1 %
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 캔디를 제조하였다.
[제조예 3-4] 비스켓의 제조
박력1급 88 ㎏
중력1급 76.4 ㎏
정백당 16.5 ㎏
식염 2.5 ㎏
포도당 2.7 ㎏
팜쇼트닝 40.5 ㎏
암모 5.3 ㎏
중조 0.6 ㎏
중아황산나트륨 0.55 ㎏
쌀가루 5.0 ㎏
비타민 B1 0.003 ㎏
비타민 B2 0.003 ㎏
밀크향 0.16 ㎏
물 71.1 ㎏
전지분유 4 ㎏
대용분유 1 ㎏
제일인산칼슘 0.1 ㎏
살포염 1 ㎏
분무유 25 ㎏
화합물 3 0.2 ∼ 0.5 ㎏
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 비스켓을 제조하였다.
[제조예 3-5] 아이스크림의 제조
유지방 10.0 %
무지유고형분 10.8 %
설탕 12.0 %
물엿 3.0 %
유화안정제(스팬, span) 0.5 %
향료(스트로베리) 0.15 %
물 63.31 ∼ 62.91 %
화합물 3 0.24 ∼ 0.64 %
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 아이스크림을 제조하였다.
[3-6] 쵸코렛의 제조
설탕 34.36 ∼ 34.76 %
코코아 버터 34 %
코코아 매스 15 %
코코아 파우다 15 %
레시틴 0.5 %
바닐라향 0.5 %
화합물 3 0.24 ∼ 0.64 %
상기 조성 및 함량으로 하여 통상적인 방법을 사용하여 초코렛을 제조하였다.
[제조예 4] 화합물 1, 2, 4 및 5를 유효성분으로 함유하는 건강식품의 제조
상기 화합물 3 대신 화합물 1, 2, 4 및 5를 이용하여, 상기 제조예 3에서와 같은 방법으로 각각 음료, 츄잉껌, 캔디, 비스켓, 아이스크림 및 쵸코렛을 제조하였다.