KR101695830B1 - 사이코스 에퍼머화 효소의 발현 시스템 및 이를 이용한 사이코스의 생산 - Google Patents

사이코스 에퍼머화 효소의 발현 시스템 및 이를 이용한 사이코스의 생산 Download PDF

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Abstract

본 발명은 사이코스 에퍼머화 효소를 높은 안정성과 발현율로 생산할 수 있는 유전자 발현 시스템, 이를 이용한 GRAS(Generally recognized as safe) 미생물, 상기 GRAS 미생물 또는 상기 미생물로부터 얻어진 효소를 이용한 사이코스 생산방법에 관한 것이다.

Description

사이코스 에퍼머화 효소의 발현 시스템 및 이를 이용한 사이코스의 생산{Expression system for psicose epimerase and production for psicose using the same}
본 발명은 사이코스 에퍼머화 효소를 높은 발현율과 안정성으로 생산할 수 있는 발현 시스템, 이를 이용한 GRAS(Generally recognized as safe) 미생물, 및 상기 발현 시스템을 이용한 미생물 및 효소를 포함하는 사이코스 생산방법에 관한 것이다.
다양한 생합성 산물이 자연 대상 과정에 의해 세포에서 생산되며, 식료품, 사료, 화장품, 먹이, 식품 및 제약 산업을 비롯한 수많은 산업 분야에서 사용되고 있다. 이들은, 가장 편리하게는, 각각의 경우에 요구되는 특정 물질을 다량으로 생산 및 분비하도록 개발된 세균 균주 또는 다른 미생물의 성장에 의해 대규모로 생산된다. 현재 코리네박테리움 균주는 산업적으로 아미노산 생산에 가장 많이 이용되는 미생물로 1950년대 중반에 글루탐산을 효율적으로 생산하는 코리네박테리움 글루타미쿰이 발견되어 산업화가 이루어졌고, 코리네박테리움 글루타미쿰의 영양 요구성 변이주를 이용하여 발효법을 통해 산업적으로 다양한 아미노산을 생산하고 있다.
세포를 엔지니어링하는 데에는 다양한 관련 유전자의 발현 정도를 확실히 조절할 필요가 있고, 이러한 유전자 발현 조절은 다양한 효율적인 발현 시스템을 요구한다. 세포의 조절 서열의 다양한 구성 성분은 당업자에게 공지되어 있다. 이들은 오퍼레이터(operator)에 대한 결합 부위, -35 및 -10 영역으로 지칭되는 RNA 폴리머라제 효소에 대한 결합 부위, 및 리보좀 결합 부위 또는 샤인-달가노(Shine-Dalgarno) 서열로 지칭되는 리보좀 16S RNA에 대한 결합 부위로 구분되어 있다.
발현 시스템을 개발하는 데에는 프로모터의 선택이 가장 중요하게 여겨지는데 프로모터가 유전자의 발현정도와 발현조절에 상당히 크게 관여하기 때문이다. 코리네박테리움 글루타미쿰에서 이용가능한 프로모터로는 몇 가지가 보고되어 있는데 주로 코리네박테리움 유래 또는 대장균 유래의 프로모터들이다 (J. Biotechnol., 104:311-323, 2003).
그러나, 대장균 유래의 프로모터는 발현유도인자의 낮은 투과성과 유전자 발현 억제 물질의 부재 등의 이유로 코리네박테리움에서 상대적으로 낮은 활성을 나타낸다. 또한 같은 프로모터라 하더라도 목적단백질을 코딩하는 유전자에 따라 발현 효율이 제각각이며, 코리네박테리움에서 사용할 수 있는 프로모터들의 세기 또한 선택의 폭이 작아서 목적에 맞게 발현시스템을 제작하는 것이 용이하지 않다. 특히 대사경로의 구축과 같이 다양한 유전자들의 발현을 함께 조절해야 할 경우에 코리네박테리움에서는 대장균에서와 같이 다양한 선택을 할 수 있지 못한 것이 현실이다.
사이코스는 다이어트 감미료로서 각광을 받고 있지만, 자연계에 극히 드물게 존재하는 희소당에 속하기 때문에, 식품 산업에 적용하기 위해서는 사이코스를 효율적으로 대량 생산하는 기술의 개발이 필요하다. 종래의 사이코스 제조 방법은 주로 화학적 합성 과정을 거쳐 제조하는 방법이 대부분이었다. 효소적 방법에 의한 사이코스 제조방법에 관한 기술로는, 한국등록특허 10-0744479호 형질전환 대장균을 이용하여 아그로박테리움 투메패시엔스 유래의 사이코스 에피머화 효소를 대량 생산하고, 생산된 효소를 이용하여 과당으로부터 사이코스를 제조하는 방법을 기재하고 있다. 효소 정제의 과정을 생략하여 제조원가가 낮고 사이코스를 높은 효율로 생산할 수 있는 균주를 이용하여 사이코스를 생산하는 방법에 관한 연구가 진행되고 있으며, 예를 들면 한국등록특허 10-1106253에는 아그로박테리움 투메파시엔스 유래 사이코스-3-에피머라제를 발현하며 특정 유전자가 불활성화된 형질전환 대장균을 제조하고, 이들 균주를 과당 포함배지에 접종하여 배지내 과당을 사이코스로 전환하는 방법에 관한 기술을 개시하고 있다.
상기 한국등록특허 10-1106253에 기재된 기술은 대장균을 균주로 사용하여 산업적으로 사용하고자 할 때 배양이 어려우며 일반적으로 안전하다고 인증받은 물질(GRAS, Generally Recognized As Safe)로 인정받은 균주가 아니기 때문에 식품 소재를 생산하는 균주로서 사용하기에 적합하지 않다는 문제점이 있다. 아그로박테리움 투메패시엔스 유래의 사이코스 에피머화 효소를 사용하여 효소의 활성이 낮고 열안정성이 좋지 않다는 단점이 있다.
따라서, 높은 활성을 가지는 사이코스 에피머화 효소를, GRAS 균주에서, 높은 안정성을 가지면서도 고수율로 생산하는 발현 시스템, 이를 이용한 사이코스 에피머화 효소의 생산방법, 및 상기 생산된 효소 또는 형질전환 GRAS 균주를 이용한 사이코스 생산방법이 여전히 필요한 실정이다.
본 발명의 일예는 GRAS 균주에서, 높은 안정성을 가지면서도 고수율로 사이코스 에피머화 효소를 생산할 수 있는 전사 프로모터를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 예는 상기 코리네박테리움속 균주 발현용 전사 프로모터와 사이코스 에피머화 효소의 코딩 서열을 포함하는 유전자 발현 카세트를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 예는 상기 코리네박테리움속 균주 발현용 전사 프로모터와 사이코스 에피머화 효소의 코딩 서열을 포함하는, 코리네박테리움속 균주용 발현 카세트를 포함하는 벡터를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 예는 상기 발현 카세트로 형질전환되거나, 또는 상기 발현 카세트를 포함하는 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 코리네박테리움속 숙주세포를 제공한다.
본 발명의 다른 예는 상기 코리네박테리움속 균주를 이용하여 얻어진 사이코스 에피머화 효소, 상기 균주의 균체, 상기 균주의 배양물, 상기 균주의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는, 사이코스 생산용 조성물을 제공한다.
다른 예는 상기 코리네박테리움속 균주를 이용하여 얻어진 사이코스 에피머화 효소, 상기 균주의 균체, 상기 균주의 배양물, 상기 균주의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 이용하여, 과당-함유 원료로부터 사이코스를 생산하는 방법을 제공한다.
본 발명은 사이코스 에퍼머화 효소를 높은 안정성과 발현율로 생산할 수 있는 발현 시스템, 이를 이용한 GRAS(Generally recognized as safe) 미생물, 상기 형질전환 GRAS(Generally recognized as safe) 미생물을 이용한 효소의 제조방법, 및 상기 발현 시스템을 이용한 미생물 및 효소를 포함하는 사이코스 생산방법에 관한 것이다.
대장균 유래의 프로모터는 발현유도인자의 낮은 투과성과 유전자 발현 억제 물질의 부재 등의 이유로 코리네박테리움속 균주에서 상대적으로 낮은 활성을 나타내며, 또한 코리네박테리움속 균주에서 생산하고자 하는 사이코스 에피머화 효소의 발현에 적합한 발현 시스템을 제공하자 한다.
본 발명은 코리네박테리움속 균주에서 높은 발현율로 안정적으로 사이코스 에피머화 효소를 발현할 수 있는 프로모터, 및 상기 프로모터를 포함하는 유전자 발현 카세트를 제공하여, 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 높은 발현율로 안정적으로 대량으로 생산할 수 있다. 또한, 본 발명자들은 식품에 적용 가능한 사이코스를 대량 생산을 하기 위해, GRAS (Generally recognized as safe) 균주에서 안정적이고 높은 효소 생산활성을 갖는 사이코스 에피머화 효소를 다량 발현하기 위하여, 상기 프로모터와 조합시 더욱 우수한 발현율을 나타내는 사이코스 에피머화 효소 및 이의 코딩 핵산서열을 제공하고자 한다.
본 명세서에서, "프로모터", "프로모터 활성을 갖는 핵산분자" 또는 "프로모터 서열"은 전사대상의 목적 핵산서열에 기능적으로 연결되어 상기 목적 핵산서열의 전사를 조절하는 핵산을 의미한다.
전사대상 핵산서열은 화학적 의미에서 반드시 프로모터에 직접 연결을 필요로 하는 것은 아니며, 추가적인 유전자 조절 서열 및/또는 링커 핵산서열 등을 포함할 수 있다. 전사대상 목적 핵산서열이 프로모터 서열의 하부에 (즉, 프로모터 서열의 3' 말단에) 위치하는 배열이 바람직하다. 프로모터 서열과 전사대상 핵산서열 사이의 거리는 바람직하게는 200개 염기 미만, 특히 바람직하게는 100개 염기 미만이다.
본 발명에 따라 "리보좀 결합 부위" (RBS)의 서열 (또는 샤인-달가노 서열로도 칭함)은 A/G 풍부 폴리뉴클레오티드 서열을 의미한다.
본 명세에서 "조절 서열"은 프로모터를 포함하고 발현대상 핵산서열 또는 유전자에 기능적으로 연결된 후에 상기 핵산 또는 상기 유전자의 발현, 즉 전사 및 번역을 조절하는 발현 활성을 갖는 핵산을 의미한다. 따라서, 이와 관련하여 상기 핵산 서열은 "조절 핵산 서열"로도 불린다.
"발현 카세트"는 발현대상 핵산서열, 예를 들면 사이코스 에피머화 효소의 코딩 핵산서열에 기능적으로 연결된 조절 서열을 의미한다. 따라서, 발현 유닛과 달리, 발현 카세트는 전사 및 번역을 조절하는 핵산 서열뿐만 아니라 전사 및 번역의 결과로서 단백질로서 발현되는 핵산 서열을 포함한다.
본 발명에 따른 모든 핵산 분자는 바람직하게는 자연에 존재하지 않는 형태이며(non-naturally occurring), 단리된 핵산 분자의 형태 또는 합성된 또는 재조합 방법에 의해서 제조되는 핵산분자이다. "단리된" 핵산 분자는 상기 핵산의 천연 공급원에 존재하는 다른 핵산 분자로부터 제거되고, 추가로, 재조합 기술에 의해 제조될 경우 본질적으로 다른 세포성 물질 또는 배양 배지가 존재하지 않거나, 화학적으로 합성될 경우에는 화학적 전구체 또는 다른 화학물질이 존재하지 않을 수 있다.
본 발명의 일예는 코리네박테리움속 균주 발현용 전사 프로모터의 핵산분자에 관한 것으로서, 높은 안정성과 활성을 가지는 사이코스 에피머화 효소를, GRAS 균주에서 높은 안정성을 가지면서도 고수율로 생산할 수 있도록 한다.
본 발명의 또 다른 일예는 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열과, 그 상류(upstream)에 작동 가능하도록 연결되며 코리네박테리움속 균주에서 상기 사이코스 에피머화 효소의 발현을 조절하는 조절서열을 포함하는, 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화제를 발현하는 유전자 발현 카세트(gene expression cassette)를 제공한다.
본 발명에 따른 조절서열은, GRAS 균주, 예를 들면 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열을 발현하는 전사 프로모터를 포함한다. 일구체예에서, 상기 전사 프로모터는 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열을 발현하는 핵산분자일 수 있으나, tac1, tac2, trc, sod 프로모터일 수 있다. sod 프로모터는 코리네박테리움 글루타리쿰에서 유래된 것이며, 바람직하게는 서열번호 1의 핵산서열을 코어영역으로 포함한다. trc 프로모터는 대장균 유래 프로모터로서 trp 프로모터과 lac UV5 프로모터의 조합으로 제조된 것이다. Tac1 프로모터는 대장균 유래 프로모터로서, trp 프로모터과 lac UV5 프로모터의 조합으로 제조된 것이다. Tac2 프로모터는 대장균 유래 프로모터로서, trp 프로모터과 lac UV5 프로모터의 조합으로 제조된 것으로서 상기 Tac1 프로모터의 서열을 변형하여 최적화한 형태이다.
본 발명에 따른 전사 프로모터의 예는 서열번호 1의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 8 의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 12의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 및 서열번호 16의 핵산서열을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택된 전사 프로모터(transcription promoter)를 포함할 수 있다.
상기 조절서열은 리보좀 결합 영역(ribosome binding region) 및 스페이서(spacer)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 핵산분자를 추가로 포함할 수 있다. 본 발명에 따른 조절서열에서 전사프로모터에 더하여 RBS, 스페이서 서열, 및 링커 서열로 이루어지는 군에서 1종 이상을 추가로 포함함으로써 사이코스 전환 효소의 발현이 향상될 수 있다. 예를 들면, 본 발명에 따른 조절서열은 다음과 같은 조합으로 구성될 수 있으며, 이에 한정되는 것은 아니다.
(1) 프로모터 핵산서열을 포함하는 것,
(2) 프로모터 핵산서열의 3' 말단에 단연결된 제1 링커 서열을 포함하는 것 (예, 프로모터-제1 링커),
(3) 포르모터 핵산서열의 3' 말단에 직접 또는 제1 링커 서열을 통해 연결된 1개 이상의 리보좀 결합영역을 포함하는 것(예, 프로모터-제1링커-리보좀 결합영역 또는 프로모터-리보솜 결합영역),
(4)프로모터 핵산서열의 3' 말단에 직접 또는 제1 링커 서열을 통해 연결된리보좀 결합영역과 제 2 링커 서열을 포함하는 것(예, 프로모터-제1링커-리보좀 결합영역-제2링커, 또는 프로모터-리보솜 결합영역-제2링커),
(5) 프로모터 핵산서열의 3' 말단에 직접 또는 링커를 통해 연결된 리보좀 결합영역과 스페이서 서열을 포함하는 것(예, 프로모터-제1링커-리보좀 결합영역-스페이서, 또는 프로모터-리보솜 결합영역-스페이서), 및
(6) 프로모터 핵산서열의 3' 말단에 직접 또는 링커를 통해 연결된 리보좀 결합영역과 스페이서 서열을 2회 이상 반복하여 포함하는 것(예, 프로모터-제1링커-리보좀 결합영역-스페이서--리보좀 결합영역-스페이서, 또는 프로모터-리보솜 결합영역-스페이서-리보솜 결합영역-스페이서), 또는 2회 이상 반복되는 리보좀 결합영역과 스페이서 서열 사이에 제3 링커를 추가로 포함하는 것(예, 프로모터-제1링커-리보좀 결합영역-스페이서 서열- 링커 서열-리보좀 결합영역-스페이서, 또는 프로모터-리보솜 결합영역-스페이서 서열-제3 링커서열-리보좀 결합영역-스페이서 서열).
상기 리보좀 결합 영역과 스페이서는 화학적으로 직접 연결되거나 그 중간에 링커 핵산서열을 개재하여 간적접으로 연결될 수 있다. 본 발명의 일예에서 리보좀 결합 영역(ribosome binding region) 및 스페이서 서열은 5'-말단에서 3'-말단으로 순차적으로 연결된 하나의 올리고뉴클레오타이드를 포함할 수 있다.
상기 리보좀 결합 영역, 스페이서 서열 및 링커서열로 이루어지는 군에서 선택된 것은, 조절서열내에 동일한 또는 상이한 서열이 1회 또는 2회 이상 반복하여 포함될 수 있다. 예를 들면, 리보좀 결합 영역, 스페이서 서열 및 링커서열로 이루어지는 군에서 선택된 것이 조절서열내에 동일한 또는 상이한 서열이 1회 또는 2회 이상 반복하여 포함될 수 있으며, 추가 핵산서열은 화학적으로 직접 연결되거나 그 중간에 링커 핵산서열을 개재하여 간접적으로 연결될 수 있다.
상기 조절서열에 포함되는 제1 링커서열, 제2 링커서열 및 제3 링커서열은 1개 내지 100개의 염기, 예를 들면 5개 내지 80 염기를 가지는 핵산서열일 수 있으며, 상기 조절서열의 예는 서열번호 17의 핵산서열을 포함하는 핵산분자일 수 있다. 상기 제1링커서열은 상기 조절서열의 전사 프로모터의 3' 말단에 연결되며 리보점 결합 영역의 5'-말단에 연결되며, 1개 내지 100개 염기, 예를 들면 5 내지 80개 염기를 가지는 핵산서열일 수 있으며, 구체적인 예로서, 서열번호 10 내지 서열번호 11의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 및 서열번호 14 내지 서열번호 15의 핵산서열을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택되는 젓일 수 있다.
본 발명의 일예에서, 상기 조절서열에 포함되는 스페이서 서열은 리보좀 결합 영역과 유전자 코딩 서열의 사이에 위치하며, 통상 3 내지 15 염기를 가지는 핵산분자이며 다양한 종류의 염기 및 길이로 제조될 수 있으며, 스페이서 서열을 조절서열에 포함시킴으로써 하부에 위치하는 유전자의 발현효율을 증가시킬 수 있다. 또한, 발현하고자 하는 단백질의 코딩서열과 대상 숙주세포의 종류 등을 고려하여 다양한 종류의 핵산조성 및 크기로 제조하여 사용할 수 있다. 본 발명에 따른 스페이서 서열의 예는 바람직하게는 TTACAAA (서열번호 19)일 수 있으나 이에 한정되는 의도는 아니다.
본 발명에 있어서, 상기 프로모터 서열은 서열번호 1의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 8 의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 12의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 및 서열번호 16의 핵산서열을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택된 전사 프로모터(transcription promoter)일 수 있다.
본 발명에 있어서, 발현적 폴리뉴클레오타이드 전사를 시키는 것이 가능한 폴리뉴클레오타이드를 포함한 단리핵산 분자를 제공한다. 상기 단리핵산 분자는 서열번호 1, 8, 12, 및 16의 핵산서열을 포함하는 핵산분자와 기능 변이체에서 선택되는 폴리뉴클레오타이드를 포함한다. 본 발명의 다른 예에서, 상기 기능 변이체는, 서열번호 1, 8, 12, 및 16의 핵산서열의 서열과의 동일성이, 적어도 90%, 즉,99%, 98%, 97%, 96%, 95%, 94%, 93%, 92%, 91%, 90% 이상이다.
상기 프로모터와 그 하부에 위치하는 리보솜 결합 영역을 포함하는 조절서열은 서열번호 2 내지 서열번호 7의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 9 내지 서열번호 11의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 및 서열번호 13 내지 서열번호 15을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택된 것일 수 있다.
본 발명의 일구체예에 따른 리보좀 결합 영역은 서열번호 18의 핵산서열을 포함하는 핵산분자일 수 있고, 상기 스페이서 서열은 서열번호 19의 핵산서열을 포함하는 핵산분자일 수 있다. 상기 조절서열은, 5'-말단에서 3'-말단쪽으로 순차적으로 연결된 서열번호 8의 핵산서열을 갖는 리보좀 결합 영역과 서열번호 9의 핵산서열을 갖는 스페이서 서열로 이루어지는 올리고뉴클레오타이드를 포함하는 것일 수 있다. 구체적으로, 상기 조절서열은 서열번호 6 내지 서열번호 7의 핵산서열을 포함하는 핵산분자, 서열번호 11의 핵산서열을 포함하는 핵산분자 및 서열번호 15을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택된 것일 수 있다.
본 발명에 따른 구체적인 전사 프로모터를 하기 표 1에 예시적으로 기재한다. 서열번호 1 내지 서열번호 19의 핵산서열을 포함하는 핵산분자로 이루어지는 군에서 선택된 폴리뉴클레오타이드를 포함하며, 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화제를 발현하는 전사 프로모터일 수 있다.
서열
번호
서열(5' 에서 3' 방향) 명명
1 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac Sod promoter (1)
2 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga
Sod promoter
(2)
3 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga ttttttaccc
Sod promoter
(3)
4 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga ttttttaccc atggctg tatacgaact cccagaactc gactacgcat acgac
Sod promoter
(4)
5 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga ttttttaccc atggctg tatacgaact cccagaactc gactacgcat acgac
gaaagga
Sod promoter
(5)
6 aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga ttttttaccc atggctg tatacgaact cccagaactc gactacgcat acgac
gaaagga ttacaaa
Sod promoter
(6)
7 tcagaattggttaattggttgtaacactggcagtgaattctcaagtctccacaccaccattcgaaacttacaagtgtgaactctggcggatcaactagtgaaaagcgtaactacatggtccttcttgagtatctactacgcgtactgggaacaatcactagtgaattcgcggccgcgc
aagcgcc tcatcagcgg taaccatca cgggttcgggt gcgaaaaacc atgccataac aggaatgttc ctttcgaaaa ttgaggaagc cttatgccct tcaaccctac ttagctgcca attattccgg gcttgtgacc cgctacccgataaataggtc ggctgaaaaa tttcgttgca atatcaacaa aaaggcctat cattgggaggtgtcgcacca agtacttttg cgaagcgcca tctgacggat tttcaaaaga tgtatatgct cggtgcggaa acctac
gaaagga ttttttaccc atggctg tatacgaact cccagaactc gactacgcat acgac
gaaagga ttacaaa
Sod promoter
(7)
8 tgacaattaatcatcggctcgtatattgt tac1 promoter(1)
9 Tgacaattaatcatcggctcgtatattgt
gaaagga
tac1 promoter
(2)
10 tgacaattaatcatcggctcgtatattgt gtggaattgtgagcggataacaatttcacacaggaaacagaattcccggg gaaagga tac1 promoter
(3)
11 tgacaattaatcatcggctcgtatattgt gtggaattgtgagcggataacaatttcacacaggaaacagaattcccggg gaaagga ttacaaa tac1 promoter
(4)
12 tgacaattaatcatccggctcgtataatgt Tac2 promoter
(1)
13 Tgacaattaatcatccggctcgtataatgt
gaaagga
Tac2 promoter
(2)
14 Tgacaattaatcatccggctcgtataatgt
taacaatttgtggaattgtgagcggacacacaggaaa cagaccatgg aattcgagct cggtacccggg gaaagga
Tac2 promoter
(3)
15 Tgacaattaatcatccggctcgtataatgt taacaatttgtggaattgtgagcggacacacaggaaacagaccatggaattcgagctcggtacccggg gaaagga ttacaaa Tac2 promoter
(4)
16 tgacaattaatcatcggcctcgtataatgt trc promoter
(1)
17 tgacaattaatcatcggcctcgtataatgt gtggaattgtgagcggataacaatttcacacaggaaacagacccatgg trc promoter
(2)
18 gaaagga Ribosome binding region
19 ttacaaa Spacer sequence
상기 표 1에서 진하게 표시된 부분은 조절서열중, 리보솜 결합 영역, 스페이서 서열, 링커 서열등을 나타낸다.
본 발명에 따른 코리네박테리움속 균주 발현용 프로모터는 그 하부에 연결된 사이코스 에피머라제를 코리네박테리움속 균주에서 발현할 수 있도록 조절하는 것이다. 대장균 유래의 프로모터는 발현유도인자의 낮은 투과성과 유전자 발현 억제 물질의 부재 등의 이유로 코리네박테리움에서 상대적으로 낮은 활성을 나타낸다. 또한 같은 프로모터라 하더라도 목적단백질을 코딩하는 유전자에 따라 발현 효율이 상이하며, 코리네박테리움에서 사용할 수 있는 프로모터들의 세기 또한 선택의 폭이 작아서 목적에 맞게 발현시스템을 제작하는 것이 용이하지 않다. 또한, 코리네박테리움속 균주 발현용 전사 프로모터일 지라도 특정 목적 단백질에 따라 그 전사조절 활성이 상이할 수 있으며, 이에 본 발명에 따른 전사 프로모터, 조절서열 또는 유전자 발현 카세트는 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 것이 적합하다.
상기 목적 단백질은 코리네박테리움속 균주 발현용 핵산분자의 3'말단에 직접 연결되거나, 링커를 통해 연결될 수 있다.
본 발명에 따른 사이코스 에피머화 효소는 효소활성 및 열안정성이 우수한 것이 바람직하고, 이에 본 발명의 구체예에서, 전사 프로모터 또는 조절서열은 사이코스 에피머화 효소를 코딩하는 유전자와의 조합이 중요하며, 본 발명에 사용된 사이코스 에피머화 효소와는 tac1, tac2, trc, sod 프로모터 모두 적정 이상의 단백질 발현을 제공할 수 있으며, sod 프로모터를 사용한 경우에는 단백질의 폴딩(folding)이 견고하여 열안정성이 높게 나타나는 결과를 얻을 수 있어 더욱 바람직하다.
본 발명의 일예에서, 상기 사이코스 에피머라제는 클로스트리디움 신댄스(Clostridiun scidens), 트로포네마 프리미샤(Treponema primitia), 엔시퍼 아드해렌스(Ensifer adhaerens) 또는 루미노코코스 토르크 (Ruminococcus torques)에서 유래된 것일 수 있으며, 바람직하게는 서열번호 20의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드, 서열번호 23의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드, 서열번호 26의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드 또는 서열번호 29의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 포함하는 사이코스 에퍼머화 효소일 수 있다.
상기 사이코스 에피머화 효 과당을 사이코스로 전환하는 활성이 유지되는 한, 서열번호 20, 서열번호 23, 서열번호 26 또는 서열번호 29의 아미노산 중 일부가 치환, 삽입 및/또는 결실된 것일 수 있다. 예컨대, 상기 단백질은 서열번호 20, 서열번호 23, 서열번호 26 또는 서열번호 29의 아미노산 서열과 70% 이상, 80% 이상, 90% 이상, 95% 이상, 또는 99% 이상의 상동성을 갖는 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은 클로스트리디움 신댄스(Clostridiun scidens), 트로포네마 프리미샤(Treponema primitia), 엔시퍼 아드해렌스(Ensifer adhaerens) 또는 루미노코코스 토르크 (Ruminococcus torques)에서 얻어진 사이코스 에피머화 효소의 암호화 핵산서열이거나, 대장균 또는 코리네박테리움속 균주에서 발현에 최적화할 수 있도록 변형된 핵산서열일 수 있다.
예를 들면, 상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은, 서열번호 20의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 23의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 26의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열 또는 서열번호 29의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열일 수 있다. 구체적으로, 상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은, 서열번호 21, 서열번호 22, 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 27, 서열번호 28, 서열번호 30 및 서열번호 31로 이루어지는 군에서 선택된 핵산서열을 포함하는 핵산분자일 수 있다. 또는 상기 상기 염기서열에 대하여 실질적 동일성을 갖는 서열을 갖는 것일 수 있다. 상기의 실질적인 동일성은 서열번호 2의 염기 서열과 임의의 다른 서열을 최대한 대응되도록 정렬하고, 그 서열을 분석하여, 상기 임의의 다른 서열이 서열번호 2의 염기 서열과 70% 이상, 90% 이상, 또는 98% 이상의 서열 상동성을 갖는 것을 의미한다.
당해 분야의 통상의 지식을 가진 기술자는 당해 분야에 공지된 유전자 재조합 기술 등을 이용하여 상기 폴리뉴클레오타이드의 염기서열 중 하나 또는 그 이상의 염기를 치환, 부가 또는 결실시킴으로써 상기 실질적 상동성을 갖는 범위에서 동일한 활성을 갖는 효소 단백질을 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 제조할 수 있음을 용이하게 이해할 수 있을 것이다. 이러한 상동성의 비교는 시판되는 컴퓨터 프로그램을 이용하여 2개 이상의 서열간의 상동성을 백분율(%)로 계산하여 수행될 수 있다.
본 발명의 일 예에서, 클로스트리디움 신댄스 (Clostridiun scidens)에서 유래한 것으로, 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 단백질(CDPE)이 제공된다. 예컨대, 상기 단백질은 서열번호 20의 아미노산 서열을 가지며 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 것일 수 있다. 상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 20의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 암호화하는 핵산서열, 서열번호 21의 핵산서열 및 서열번호 22의 핵산서열을 포함할 수 있다.
상기 단백질은 소디움 도데실 설페이트 폴리아크릴아미드 젤 전기영동 법(SDS-PAGE)으로 측정된 단량체의 분자량이 30 내지 37 kDa, 예컨대 30 내지 35 kDa인 것일 수 있다. 상기 단백질의 최적 온도는 40 내지 65℃, 구체적으로 50 내지 65℃ 일 수 있다. 상기 최적 온도는, 예컨대, pH 7.0, 1mM Co2+ 존재 하에서 5분간 반응 진행 시의 결과일 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다. 또한 상기 단백질의 최적 pH는 pH 6 내지 9, pH 7 내지 9, pH 7 내지 8.5, 또는 pH 7 내지 8일 수 있다. 상기 최적 pH는 예컨대, 60℃, 1mM Co2+ 존재 하에서 5분간 반응 진행의 결과일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 일 예에서, 트로포네마 프리미샤(Treponema primitia)에서 유래한 것으로, 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 단백질(TDPE)이 제공된다. 예컨대, 상기 단백질은 서열번호 23 의 아미노산 서열을 가지며 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 것일 수 있다.
상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 23 의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 암호화하는 핵산서열, 서열번호 24의 핵산서열 및 서열번호 25의 핵산서열을 포함할 수 있다.
본 발명의 일 예에서, 엔시퍼 아드해렌스(Ensifer adhaerens)에서 유래한 것으로, 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 단백질(EDPE)이 제공된다. 예컨대, 상기 단백질은 서열번호 26 의 아미노산 서열을 가지며 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 것일 수 있다.
상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 26 의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 암호화하는 핵산서열, 서열번호 27의 핵산서열 및 서열번호 28의 핵산서열을 포함할 수 있다.
본 발명의 일 예에서, 루미노코코스 토르크 (Ruminococcus torques)에서 유래한 것으로, 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 단백질(RDPE)이 제공된다. 예컨대, 상기 단백질은 서열번호 29 의 아미노산 서열을 가지며 과당으로부터 사이코스를 생산하는 활성을 가지는 것일 수 있다.
상기 사이코스 에피머라제를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 29 의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 암호화하는 핵산서열, 서열번호 30의 핵산서열 및 서열번호 31의 핵산서열을 포함할 수 있다.
본 발명에 따른 발현 카세트는 복제 기점, 리더(leader), 선택 가능한 마커, 클로닝 부위 및 제한효소 인식부위로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 서열을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 추가 예는, 본 발명에 따른 코리네박테리움속 균주 발현용 전사 프로모터, 이를 포함하는 조절서열, 또는 상기 조절서열과 및 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 포함하는, 코리네박테리움속 균주용 유전자 발현 카세트를 제공한다.
상기 코리네박테리움속 균주 발현용 핵산분자, 및 조절 서열과 사이코스 에피머화 효소는 상술한 바와 같다.
본 발명의 일예에서, 상기 발현 카세트는 발현을 위한 폴리뉴클레오티드 서열로서, 복제 기점, 리더(leader), 선택 가능한 마커, 클로닝 부위 및 제한효소 인식부위로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 서열을 추가로 포함할 수 있다. 본 발명은 또한 본 발명의 상기한 발현 카세트를 포함하는 발현 벡터에 관한 것이다.
본 발명은 특히 바람직하게는 본 발명의 적어도 하나의 발현 카세트를 운반하는 벡터, 특히 셔틀 벡터 또는 플라스미드 벡터를 포함하는 유전적으로 변형된 미생물, 특히 코리박테리움속 균주에 관한 것이다.
상기 재조합 벡터는 당업계에 널리 알려진 방법을 통해 클로닝을 위한 벡터 또는 발현을 위한 벡터로서 구축될 수 있다(Francois Baneyx, current Opinion Biotechnology 1999, 10:411-421). 상기 재조합 벡터는 유전자 재조합에 이용되어온 벡터라면 모두 사용이 무방하며, 예컨대, 플라스미드 발현벡터, 바이러스 발현벡터 (예, 복제결함 레트로바이러스, 아데노바이러스, 및 아데노 연관 바이러스) 및 이들과 동등한 기능을 수행할 수 있는 바이러스 벡터 등으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있으나, 이들에 한정되는 것은 아니다.
예컨대, 상기 재조합 벡터는 pET, pKK223-3, pTrc99a, pKD, pXMJ19, pCES208 벡터 등으로 이루어진 군에서 선택된 것으로부터 제작된 것일 수 있으며, 바람직하게는 E.coli-corynebacterium shuttle vector (pCES208, J. Microbiol. Biotechnol., 18:639-647, 2008)일 수 있다.
상기 폴리뉴클레오타이드는 그 자체로, 또는 상기 폴리뉴클레오타이드를 포함하는 재조합 벡터의 형태로 사용될 수 있다. 상기 재조합 벡터란 작동 가능하도록 연결된 목적 폴리뉴클레오타이드를 전달할 수 있는 재조합 핵산 분자를 의미하며, 상기 목적 폴리뉴클레오타이드는 프로모터 및 전사 종결인자 등으로 이루어지는 하나 이상의 전사 조절 요소와 작동 가능하게 연결되어 있는 것일 수 있다.
상기 전사 종결인자는 rrnB, rrnB_T1, rrnB_T2, T7 terminator 등 일수 있으며, 바람직하게는 pET21a vector로부터 PCR된 T7 전사 종결인자일 수 있다.
본 발명의 일예는 상기 유전자 발현 카세트를 포함하거나, 상기 발현 카세트를 포함하는 벡터로 형질전환된 재조합 코리네박테리움속 숙주세포일 수 있다.
상기 재조합 벡터로 숙주 세포를 형질전환시키는 방법은 당업계에 공지된 모든 형질전환 방법 특별한 제한 없이 선택하여 사용할 수 있으며, 예컨대, 세균 원형질체의 융합, 전기 천공법, 추진체 포격 (projectile bombardment), 및 바이러스 벡터를 사용한 감염 등 선택된 것일 수 있다.
본 발명에 따른 형질전환 코리네박테리움속 균주는 높은 안정성을 가지며, 도입된 사이코스 에피머화 효소를 과발현할 수 있으며, 따라서 장기간 안정적으로 높은 사이코스 전환능을 제공할 수 있다. 따라서, 상기 형질전환 코리네박테리움속 균주는 사이코스 제조에 유용하게 적용될 수 있으며, 사이코스 생산 수율을 보다 증진시킬 수 있다.
바람직한 코리박테리움속 균주는 코리네박테리움 속, 특히 코리네박테리움 글루타미쿰, 코리네박테리움 아세토글루타미쿰 (acetoglutamicum), 코리네박테리움 아세토아시도필룸 (acetoacidophilum), 코리네박테리움 써모아미노제네스 (thermoaminogenes), 코리네박테리움 멜라쎄콜라 (melassecola) 및 코리네박테리움 에피시엔스 (efficiens) 종 세균이다.
본 발명에 따른 형질전환된 재조합 코리네박테리움속 숙주세포는 재조합 코리네박테리움 글루타미쿰일 수 있으며, 예컨대 대한민국 서울시 서대문구 홍제내2가길 25에 주소를 둔 한국미생물보존센터(Korea Culture Center of Microorganisms, KCCM) 2014년 10월 29일에 기탁하여 기탁번호 KCCM11593P을 받은 재조합 코리네박테리움 글루타미쿰 균주이다.
상기 코리네박테리움속 균주의 배양은 적당한 배지에서 당업계에서 알려진 다양한 배양 방법으로 수행될 수 있다. 상기 배양 방법의 예에는, 회분식, 연속식 및 유가식 배양이 포함된다. 상기 유가식 배양에는 주입 배치 및 반복 주입 배치 배양이 포함되나, 여기에 한정되는 것은 아니다.
본 발명에 따라 사용될 수 있는 배지는 일반적으로 하나 이상의 탄소 공급원, 질소 공급원, 무기염, 비타민 및(또는) 미량 원소를 포함한다. 바람직한 탄소 공급원은 단당류, 이당류 또는 다당류와 같은 당류이다. 질소 공급원은 일반적으로 유기 또는 무기 질소 화합물, 또는 이들 화합물을 포함하는 물질이다. 질소 공급원의 예로는 암모니아 기체 또는 암모늄 염, 예컨대 황산암모늄, 염화암모늄, 인산암모늄, 탄산암모늄 또는 질산암모늄, 니트레이트, 우레아, 아미노산, 또는 복합 질소 공급원, 예컨대 옥수수 침지액, 대두 분말, 대두 단백질, 효모 추출물, 육류 추출물 등이 있다. 질소 공급원은 단독으로 또는 혼합물로 사용할 수 있다. 배지에 존재할 수 있는 무기염 화합물은 칼슘, 마그네슘, 나트륨, 코발트, 몰리브데늄, 칼륨, 망간, 아연, 구리 및 철의 염화물, 인산염 또는 황산염을 포함한다. 인 공급원으로서, 인산, 인산2수소 칼륨 또는 인산수소 2칼륨, 또는 대응하는 나트륨-함유 염을 사용할 수 있다. 용액 중 금속 이온을 유지시키기 위해 배지에 킬레이팅제를 첨가할 수 있다. 배지의 모든 성분은 가열 (1.5 bar 및 121℃에서 20분) 또는 멸균 여과에 의해 멸균시킨다. 이 성분들은 함께, 또는 필요에 따라 개별적으로 멸균시킬 수 있다. 배지의 모든 성분은 배양 시작시에 존재할 수 있거나, 임의로는 연속 또는 배치식으로 첨가될 수 있다.
본 발명의 또 다른 일예는, 형질전환 코리네박테리움속 균주를 이용하여 얻어진 사이코스 에피머화 효소, 상기 균주의 균체, 상기 균주의 배양물, 상기 균주의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는, 사이코스 생산용 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 재조합 코리네박테리움속 숙주세포를 이용하여 얻어진 사이코스 에피머화 효소, 상기 세포의 균체, 상기 세포의 배양물, 상기 세포의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는 사이코스 생산용 조성물을 과당-함유 원료와 접촉하여 사이코스를 생산하는 방법을 제공한다.
상기 배양물은 상기 코리네박테리움속 균주로부터 생산된 효소를 포함하는 것으로, 상기 균주의 상기 균주를 포함하거나, 균주를 포함하지 않는 무세포(cell-free) 형태일 수 있다. 상기 파쇄물은 상기 코리네박테리움속 균주를 파쇄한 파쇄물 또는 상기 파쇄물을 원심분리하여 얻어진 상등액을 의미하는 것으로, 상기 코리네박테리움속 균주로부터 생산된 효소를 포함하는 것이다. 본 명세서에 있어서, 별도의 언급이 없는 한, 사이코스의 제조에 사용되는 코리네박테리움속 균주는 상기 균주의 균체, 상기 균주의 배양물 및 상기 균주의 파쇄물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 의미하는 것으로 사용된다.
상기 사이코스 생산 방법은 상기 코리네박테리움속 균주를 과당-함유 원료와 반응시키는 단계를 포함한다. 일 구체예에서, 상기 코리네박테리움속 균주를 과당과 반응시키는 단계는 상기 코리네박테리움속 균주의 균체를 과당이 포함된 배양 배지에서 배양하는 단계에 의하여 수행될 수 있다. 다른 구체예에서, 상기 코리네박테리움속 균주를 과당과 반응시키는 단계는 상기 균주(균체, 균주의 배양물, 및/또는 균주의 파쇄물)를 과당과 접촉시키는 단계, 예컨대, 상기 균주를 과당과 혼합하는 단계 또는 상기 균주가 고정화된 담체에 과당을 접촉시키는 단계에 의하여 수행될 수 있다. 이와 같이 코리네박테리움속 균주를 과당과 반응시킴으로써 과당을 사이코스로 전환하여 과당으로부터 사이코스를 생산할 수 있다.
상기 사이코스 생산 방법에 있어서, 효율적인 사이코스 생산을 위하여, 기질로서 사용되는 과당의 농도는 전체 반응물 기준으로 40 내지 75%(w/v), 예컨대, 50 내지 75%(w/v)일 수 있다. 과당의 농도가 상기 범위보다 낮으면 경제성이 낮아지고, 상기 범위보다 높으면 과당이 잘 용해되지 않으므로, 과당의 농도는 상기 범위로 하는 것이 좋다. 상기 과당은 완충용액 또는 물(예컨대 증류수)에 용해된 용액 상태로 사용될 수 있다.
상기 사이코스 생산방법에 있어서, 상기 반응은 pH 6 내지 9.5, 예컨대, pH 7 내지 9, pH 7 내지 8 또는 pH 8 내지 9의 조건 하에서 수행될 수 있다. 또한, 상기 반응은 30℃ 이상, 예컨대 40℃ 이상의 온도 조건 하에서 수행될 수 있다. 온도가 80℃ 이상이 되면 기질인 과당의 갈변 현상이 일어날 수 있으므로, 상기 반응은 40 내지 80℃, 예컨대, 50 내지 75℃, 60 내지 75℃, 또는 68 내지 75℃의 조건 하에서 수행될 수 있다. 또한 상기 반응 시간이 길수록 사이코스 전환률이 높아진다. 예컨대, 상기 반응 시간은 1시간 이상, 예컨대 2시간 이상, 3시간 이상, 4시간 이상, 5시간 이상 또는 6시간 이상으로 하는 것이 좋다. 반응시간이 48 시간을 넘어가면 사이코스 전환률의 증가율이 미미하거나 오히려 감소하므로, 반응시간은 48 시간을 넘기지 않는 것이 좋다. 따라서 상기 반응 시간은 1 내지 48시간, 2 내지 48시간, 3 내지 48시간, 4 내지 48시간, 5 내지 48시간, 또는 6 내지 48시간으로 할 수 있으며, 산업적 및 경제적 측면을 고려하여, 1 내지 48시간, 2 내지 36 시간, 3 내지 24 시간, 3 내지 12시간, 또는 3 내지 6시간 정도로 할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 상기 조건은 과당에서 사이코스로의 전환 효율이 최대화되는 조건으로서 선정된 것이다.
또한, 상기 사이코스 생산 방법에 있어서, 사용되는 균주의 균체 농도는 전체 반응물 기준으로 5 mg(dcw: 건조세포중량)/ml 이상, 예컨대, 5 내지 100mg(dcw)/ml, 10 내지 90mg(dcw)/ml, 20 내지 80mg(dcw)/ml, 30 내지 70 mg(dcw)/ml, 40 내지 60 mg(dcw)/ml, 또는 45 내지 55 mg(dcw)/ml일 수 있다. 균체 농도가 상기 범위 미만인 경우에는 사이코스 전환 활성이 낮거나 거의 없고, 상기 범위를 초과하면 균체가 너무 많아져서 사이코스 전환 반응의 전체적인 효율이 낮아지므로, 균체 농도는 상기 범위로 하는 것이 좋다.
상기 과당을 사이코스로 전환시키는 효소(예컨대, 에피머레이즈)는 금속 이온에 의하여 활성화가 조절될 수 있으므로, 상기 사이코스 생산에 있어서, 금속 이온을 첨가하면 과당에서 사이코스로의 전환 효율, 즉 사이코스 생산률이 증가될 수 있다.
따라서, 상기 코리네박테리움속 균주를 포함하는 사이코스 생산용 조성물은 금속 이온을 추가로 포함하는 것일 수 있다. 또한, 상기 코리네박테리움속 균주를 이용한 사이코스 생산 방법은 금속 이온을 첨가하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 일 구현예에서, 상기 금속 이온은 상기 배양 단계의 배양 배지에 첨가되거나, 상기 배양 단계가 상기 금속 이온이 첨가된 배양 배지에서 수행되는 것일 수 있다. 다른 구현예에서, 상기 금속 이온은 과당에 첨가되거나, 상기 코리네박테리움속 균주와 과당과의 혼합물에 첨가될 수 있다. 또 다른 구현예에서, 상기 코리네박테리움속 균주가 고정화된 담체에 첨가되거나(과당 첨가 전), 상기 코리네박테리움속 균주가 고정화된 담체와 과당과의 혼합물에 첨가되거나(과당 첨가 후), 또는 과당 첨가시에 과당과 혼합물의 형태로 또는 각각 첨가될 수 있다.
상기 금속 이온은 구리 이온, 망간 이온, 칼슘 이온, 마그네슘 이온, 아연 이온, 니켈 이온, 코발트 이온, 철 이온, 알루미늄 이온 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있다. 예컨대, 상기 금속 이온은 망간 이온, 마그네슘 이온, 니켈 이온, 코발트 이온 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있으며, 일 예에서 상기 금속 이온은 망간 이온, 코발트 이온, 또는 이들의 혼합물일 수 있다. 상기 금속 이온의 첨가량이 0.5mM 미만인 경우에는 사이코스 생산 수율 증진 효과가 미미하므로, 상기 금속 이온의 첨가량은 0.5mM 이상으로 할 수 있다. 한편, 상기 금속 이온의 첨가량이 5mM을 초과하면 그 초과량에 비하여 효과가 미미하기 때문에, 상기 금속 이온의 첨가량은 5mM 이하로 할 수 있다. 예컨대, 상기 금속 이온의 첨가량은 0.5mM 내지 5mM, 예컨대, 0.5 mM 내지 2mM 범위로 할 수 있다.
상기 담체는 고정된 균주, 또는 상기 균주로부터 생산되는 효소의 활성이 장기간 유지될 수 있는 환경을 조성할 수 있는 것으로, 효소 고정화 용도로 사용할 수 있는 공지된 모든 담체일 수 있다. 예컨대, 상기 담체로서 알긴산나트륨(soduim alginate)을 사용할 수 있다. 알긴산나트륨은 해조류의 세포벽에 풍부하게 존재하는 천연 콜로이드성 다당류로, 만누로닉산(β-D-mannuronic acid)과 글루로닉산(α-L-gluronic acid)이 조성되어 있고, 함량면에서는 무작위로 베타-1,4 결합을 이루어 형성되어, 균주 또는 효소가 안정적으로 고정되어 우수한 사이코스 수율을 나타내는 데 유리할 수 있다.
일 구체예에서, 사이코스의 수율을 보다 증진시키기 위하여 1.5 내지 4.0%(w/v) 농도의 알긴산나트륨 용액(예컨대, 알긴산나트륨 수용액), 예컨대 약 2.5%의 (w/v) 농도의 알긴산나트륨 용액을 균주의 고정화에 사용할 수 있다. 예컨대, 균주의 균체, 상기 균주가 생산한 효소를 포함하는 배양액, 또는 상기 균주의 파쇄물의 1 내지 2 부피배의 알긴산나트륨 수용액에 상기 균주의 균체, 상기 균주가 생산한 효소를 포함하는 배양물, 또는 상기 균주의 파쇄물을 첨가하여 혼합한 후, 상기 얻어진 혼합액을 주사기 펌프와 진공 펌프를 사용하여 약 0.2M 칼슘 이온 용액에 떨어뜨려 비드가 생성되도록 함으로써, 알긴산나트륨 담체에 균주의 균체, 상기 균주가 생산한 효소를 포함하는 배양물, 또는 상기 균주의 파쇄물이 고정화시킬 수 있다. 상기 효소는 상기 균주, 균주 배양물 또는 상기 균주의 파쇄물로부터 통상의 방법, 예컨대 투석, 침전, 흡착, 전기영동, 친화 크로마토그래피, 이온교환 크로마토그래피 등의 방법에 의하여 정제된 것일 수 있다.
일 구체예에서, 상기 효소 단백질 등을 과당과 반응시키는 단계는 상기 효소 단백질을 과당과 접촉시키는 단계에 의하여 수행될 수 있다. 일 구체예에서, 상기 효소 단백질 등을 과당과 접촉시키는 단계는, 예컨대, 상기 효소 단백질 등을 과당과 혼합하는 단계 또는 상기 효소 단백질 등이 고정화된 담 체에 과당을 접촉시키는 단계에 의하여 수행될 수 있다. 또 다른 예에서 상기 효소 단백질 등을 과당과 반응시키는 단계는 상기 재조합 균주의 균체를 과당-함유 원료화 접촉하여 적정온도에서 반응을 시켜 수행할 수 있다. 이와 같이 상기 효소 단백질 등을 과당과 반응시킴으로써 과당을 사이코스로 전환하여 과당으로부터 사이코스를 생산할 수 있다.
상기 효율적인 사이코스 생산을 위하여, 사용되는 효소 단백질의 양은 전체 반응물 기준으로 0.001 mg/ml 내지 1.0mg/ml, 0.005mg/ml 내지 1.0mg/ml, 0.01 mg/ml 내지 1.0mg/ml, 0.01 mg/ml 내지 0.1 mg/ml, 또는 0.05mg/ml 내지 0.1mg/ml일 수 있다. 효소의 사용량이 상기 농도보다 낮으면 사이코스 전환 효율이 낮아 질 수 있고, 상기 농도보다 높으면 산업에서의 경제성이 낮아지므로 상기 범위가 적당하다.
상기 효율적인 사이코스 생산을 위하여, 기질로서 사용되는 과당의 농도는 전체 반응물 기준으로 40 내지 75%(w/v), 예컨대, 50 내지 75%(w/v)일 수 있다. 과당의 농도가 상기 범위보다 낮으면 경제성이 낮아지고, 상기 범위보다 높으면 과당이 잘 용해되지 않으므로, 과당의 농도는 상기 범위로 하는 것이 좋다. 상기 과당은 완충용액 또는 물(예컨대 증류수)에 용해된 용액 상태로 사용될 수 있다.
상기 효소 단백질의 최적 조건을 고려하여 반응 pH, 반응온도 및 효소의 농도 등을 적절히 선택하여 수행할 수 있다. 예컨대, 상기 반응 pH는 pH 6 내지 9, 반응온도는 온도가 80 ℃을 넘으면 기질인 과당의 갈변 현상이 일어날 수 있으므로, 30℃ 이상, 예컨대 40℃ 이상의 온도 조건 하에서 수행될 수 있다. 또한, 효소 농도에 따라서 달라지지만, 대체적으로 반응시간이 길수록 사이코스 전환률이 높아진다. 예컨대, 효소의 열안정성(예컨대, 50 ℃에서의 열안정성)을 고려하여, 상기 반응 시간은 1시간 이상으로 하는 것이 좋다. 반응시간이 8 시간을 넘어가면 사이코스 전환률의 증가율이 미미하거나 오히려 감소하므로, 반응시간은 8시간을 넘기지 않는 것이 좋다.
또한, 상기 사이코스 생산 방법에 있어서, 재조합 균주를 사용하는 경우, 사용되는 균주의 균체 농도는 전체 반응물을 기준으로 0.1 mg(dcw: 건조세포중량)/ml 이상일 수 있다.
상기 사이코스 전환효소 활성을 갖는 효소 단백질은 금속 이온에 의해 활성화가 조절되는 금속효소(metalloenzyme) 특성을 갖는 것일 수 있다. 상기 효소 단백질에 의한 반응을 금속 이온 존재 하에서 수행함으로써 사이코스의 생산 수율을 증진시킬 수 있다. 사이코스 생산 수율에 기여할 수 있는 금속이온은 구리 이온, 망간 이온, 칼슘 이온, 마그네슘 이온, 아연 이온, 니켈 이온, 코발트 이온, 철 이온, 알루미늄 이온 등으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있으며, 예컨대, 망간 이온, 철 이온, 및 코발트 이온로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있다. 상기 금속 이온의 첨가량이 0.1mM 미만인 경우에는 사이코스 생산 수율 증진 효과가 미미하므로, 상기 금속 이온의 첨가량은 0.1mM 이상으로 할 수 있다. 한편, 상기 금속 이온의 첨가량이 5mM을 초과하면 그 초과량에 비하여 효과가 미미하기 때문에, 상기 금속 이온의 첨가량은 5mM 이하로 할 수 있다. 예컨대, 상기 금속 이온의 첨가량은 0.1mM 내지 5mM, 예컨대, 0.1 내지 2mM, 또는 0.5 mM 내지 1.5mM 범위로 할 수 있다.
따라서, 상기 사이코스 제조용 조성물은 첨가량은 상기한 금속 이온을 추가로 포함할 수 있으며, 금속 이온의 종류와 함량은 상기한 바와 같다. 또한, 상기 사이코스 생산 방법은 금속 이온을 첨가하는 단계를 추가로 포함할 수 있으며, 금속 이온의 종류와 함량은 상기한 바와 같다.
다른 일 구현 예에 있어서, 상기 사이코스의 생산 방법은 사이코스 에피머화효소를 발현하는 재조합 균주 또는 상기 재조합 균주로부터 분리된 효소 단백질을 과당과 반응시키는 단계를 포함하는 것일 수 있다. 상기 사이코스 생산 방법은 상기 반응 단계 이전에 사이코스 에피머화효소를 발현하는 재조합 균주를 배양 및 회수하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 방법에 의하여 과당으로부터 수득된 사이코스는 통상적인 방법에 의해 정제될 수 있으며, 이러한 결정은 당업자에게 통상적인 기술에 속한다. 예를 들어 원심분리, 여과, 결정화, 이온교환 크로마토그래피 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상의 방법에 의하여 이루어질 수 있다.
본 발명은 과당으로부터 사이코스를 대량 제조하여 식품소재로 사용할 수 있도록 GRAS 균주인 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 유전자 발현 시스템, 이를 포함하는 재조합 벡터 및 코리네박테리움속 균주를 제공하며, 상기 유전자 발현 시스템를 이용하여 생산된 사이코스 에피머화 효소를 이용하여 과당-함유 원료를 이용하여 사이코스를 생산할 수 있다.
도 1a 내지 1d는 본 발명의 일실시예에 따라 D-사이코스 3-에피머화 효소 단백질을 corynebacterium glutamicum에서 발현하기 위한 재조합 벡터의 개열 지도로서, 도 1a는 재조합 벡터(pCES_sodCDPE), 도 1b는 재조합 벡터(pCES_tac1CDPE), 도 1c는 재조합 벡터(pCES_tac2CDPE), 도 1d는 재조합 벡터(pCES_trcCDPE)를 각각 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따라 Bead beater를 이용하여 배양한 세포를 용해시킨 후 SDS-PAGE를 통해 단백질의 발현량을 비교한 사진이다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따라 사이코스 전환율이 직선인 구간에서 세포 초기반응속도 계산하여 비교한 그래프이다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 따라 CDPE를 발현시킨 세포의 세포 반응 진행 시 50℃에서의 열 안정성을 비교한 그래프이다.
이하 본 발명을 구체적인 실시예에 의해 더 상세히 설명하고자 한다. 하지만 본 발명은 하기 실시예에 한정된 것이 아니다.
실시예 1. 플라스미드의 제조
실시예 1-1: sod 프로모터를 이용한 벡터제조
크로스트리디움 신댄스(Clostridiuim scindens ATCC 35704)로부터 유래된 사이코스 에피머화 효소의 암호화 유전자(DPE gene; Gene bank: EDS06411.1)를, 대장균에 최적화하여 변형한 형태의 폴리뉴클리오티드로 합성하고 CDPE라 명명하였다. 대장균에 최적화된 폴리뉴클리오티드(서열번호 21)와 corynebacterium gDNA (서열번호 22)와 pET21a 벡터로부터 확보한 sod 프로모터(서열번호 4)와 T7 터미네이터를 피씨알을 통해 각각의 주형으로 확보하였고, 이를 오버랩 피씨알(PCR) 법으로 하나의 주형으로 연결하여 T-vector cloning을 통해 pGEM T-easy vector에 클로닝하여 폴리뉴클레오티드의 서열을 확인하였으며, 구체적으로 상기 폴리뉴클레오타이드는 서열번호 6의 sod 프로모터, 서열번호 21의 E.coli에 최적화 서열인 CDPE 서열 및 T7-터미네이터를 포함한다.
상기 확인된 전체 폴리뉴클레오티드를 제한효소 NotI과 XbaI(NEB)을 사용하여 발현벡터인 pCES208(J. Microbiol. Biotechnol., 18:639-647, 2008)의 동일한 제한효소 부위에 삽입하여 재조합 벡터 pCES208/사이코스 에피머화 효소(pCES_sodCDPE)를 제조하였다. 상기 제조된 재조합 벡터(pCES_sodCDPE)의 개열지도를 도 1a에 개시하였다.
실시예 1-2: tac1 프로모터를 이용한 벡터제조
pCES_sodCDPEII 이외 목적단백질의 발현 및 활성 비교를 위해 클로닝을 진행하기 위해 다음과 같은 플라스미드 역시 제조하였다:
pET21a_CDPE로부터 CDPE(서열번호 21)를 PCR하여 확보하고, pKK223-3 벡터에 XmaI, HindIII로 클로닝하여 pKK_CDPE를 제조하고, pKK_CDPE를 주형으로 하여 tac 프로모터(서열번호 11)부터 rrn 터미네이터까지 PCR 방법으로 삽입할 유전자를 확보한 후 pCES208 플라스미드에 NotI, XbaI site로 클로닝하여 재조합 벡터(pCES_tac1CDPE)를 제조하였다. 상기 제조된 재조합 벡터(pCES_tac1CDPE)의 개열지도를 도 1b에 개시하였다.
실시예 1-3: tac2 프로모터를 이용한 벡터제조
pET21a_CDPE로부터 CDPE(서열번호 21)를 PCR하여 확보하고, pKD 벡터에 NcoI, SalI으로 클로닝하여 pKD_CDPE를 제조하고, pKD_CDPE를 주형으로로 하여 tac2 프로모터(서열번호 15)부터 rrnB 터미네이터까지 PCR로 insert 확보한 후 pCES208 플라스미드에 XbaI site로 클로닝하여 pCES_tac2CDPE를 제조하였다. 상기 제조된 재조합 벡터(pCES_tac2CDPE)의 개열지도를 도 1c에 개시하였다.
실시예 1-4: trc 프로모터를 이용한 벡터제조
pET21a_CDPE로부터 CDPE(서열번호 21)를 PCR하여 확보하고, pTrc99a 벡터에 XmaI, HindIII로 클로닝하여 pTrc_CDPE를 제조하고, pTrc_CDPE를 주형으로 하여 trc 프로모터(서열번호 17)부터 rrnB 터미네이터까지 PCR로 insert 확보한 후 pCES208 플라스미드에 XbaI site로 클로닝하여 pCES_trcCDPE를 제조하였다. 상기 제조된 재조합 벡터(pCES_trcCDPE)의 개열지도를 도 1d에 개시하였다.
실시예 2. 숙주세포 형질전환
실시예 1에서 제작한 4 종류의 플라스미드를 전기천공법(electroporation)을 사용하여 코리네박테리움 글루타리쿰을 형질전환시켰다. 콜로니를 picking하여 카나마이신(Kanamycin)을 최종농도 15ug/ml로 첨가한 LB 배지(트립톤 10g/L, NaCl 10g/L, 효모 추출물 5g/L) 4ml에 접종한 후, 배양조건 30℃ 및 250rpm에서 약 16시간 동안 배양하였다. 그리고 나서 상기 배양액 중 1ml을 수득하여 15ug/ml의 카나마이신을 포함하고 있는 100ml LB 배지에 접종하여 본 배양을 16시간 이상 진행하였다.구체적으로, 상기 실시예 1-1의 재조합 벡터(pCES_sodCDPE)로 코리네박테리움 글루타리쿰을 형질전환하여 얻어진 재조합 균주를 대한민국 서울시 서대문구 홍제내2가길 25에 주소를 둔 한국미생물보존센터(Korea Culture Center of Microorganisms, KCCM)에 2014년 10월 29일 기탁하여 기탁번호 KCCM11593P 받았다.
실시예 3. 목적단백질 발현 확인
Beadbeater를 이용하여 배양한 세포를 용해(lysis)시킨 후 상등액만 취득하여 샘플버퍼와 1 : 1로 혼합 후 100 ℃에서 5분간 가열한다. 준비한 샘플은 12% SDS-PAGE gel (조성 : running gel - 3.3 ml H2O, 4.0 ml 30% acrylamide, 2.5 ml 1.5M Tris buffer(pH 8.8), 100 ㎕ 10% SDS, 100 ㎕, 10% APS, 4 ㎕ TEMED / stacking gel - 1.4 ml H2O, 0.33 ml 30% acrylamide, 0.25 ml 1.0M Tris buffer(pH 6.8), 20 ㎕ 10% SDS, 20 ㎕ 10% APS, 2 ㎕ TEMED)에 180V로 50분 가량 전기영동하여 단백질 발현을 확인한다. 그 결과를 도 2에 나타내었다.
CDPE의 발현을 SDS-PAGE gel상에서 확인 후 정확한 발현량의 측정을 위해 Ni-NTA resin을 이용한 His-tag정제 진행하여, 계산식(발현율(%) = (Purified protein(mg) / Total soluble protein(mg)) * 100)을 이용하여 발현율 계산하여 다음 표 2에 나타내었다. 상기 표 2에서, 균주내 전체 단백질은 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 코리네박테리움 균주 내부에 포함된 전체 단백질이고, 사이코스 에피머화 효소는 그 중 사이코스 에피머화 효소만을 정제하여 확보한 것이다. 따라서 발현율은 코리네박테리움 균주에 존재하는 전체 단백질에서 목적단백질이 어느 정도 비율로 발현되는지 계산한 값이다.
Promoter 유래 균주내 전체 단백질(mg) 사이코스 에피머화효소(mg) 발현율 (%)
Tac 21.43 6.28 29.3
tac2 15 2.36 15.73
trc 17.74 1.68 9.47
sod 16.62 1.74 10.47
실시예 4. 세포 반응을 통한 사이코스 생산
고형분 함량기준으로 50 중량% 과당을 함유하는 원료에 1mM Mn2 + 첨가한 고농도 기질 조건에, 실시예 2에서 얻어진 CDPE 발현 세포를 0.5 내지 2mg/ml의 농도로 pH 7.0 PIPES 50mM 및 60℃ 조건에서 반응을 진행한 후에 100 ℃에서 5분간 끓여서 반응 중지하였다. 각각의 세포를 이용하여 상기 조건에서 세포 반응을 진행하고, 반응시간 별로 샘플링한 후에 각 재조합 균주별 사이코스 생산량과 세포 초기반응속도를 계산하였다. 사이코스 전환율이 직선인 구간에서 단위 세포당 초기반응속도를 계산(계산식 : 단위 세포당 초기반응속도 = 사이코스 생산량 (g/l) / 시간 (min) / 반응에 사용한 세포의 양 (g))하여 다음의 표 3 및 도 3에 나타내었다.
상기 얻어진 생산물을 확인하고자, 액체 크로마토그래피 (LC) 분석을 기질(과당)과 생산물질(사이코스)의 피크 확인 및 피크의 에어리어(area)를 통한 정량분석 진행하였다. 그 결과 다양한 유화제 용액에 대한 세포의 사이코스 생산에 관한 초기반응속도 (Unit/g-DCW)를 하기 표 3에 나타냈다. 상기 액체 크로마토그래피 분석은 Aminex HPX-87C 컬럼(BIO-RAD)이 장착된HPLC(Agilent, USA)의 Refractive Index Detector를 이용하여 (Agilent 1260 RID) 수행하였다. 이동상 용매는 물을 사용하였고 온도는 80 ℃, 유속은 0.6ml/min로 하였다.
최종 결과값은 초기반응속도로 나타내어 서로 비교하였으며, 이때 초기반응속도란 일직선속도구간의 반응지점에서의 생산물질의 생산량을 반응에 사용한 세포의 양과 반응 시간으로 나누어준 값을 말한다. 즉, 초기반응속도의 값이 클수록 같은 세포당, 시간당 생산되는 사이코스의 양이 많다는 것을 의미한다.
Sample 사이코스(g/l) 세포 초기반응속도
tacCDPE 59.12 3941
tac2CDPE 58.96 1965
trcCDPE 47.90 798
sodCDPE 65.28 1088
상기 표 3에 나타난 것과 같이, 발현율이 가장 좋았던 tacCDPE가 가장 높은 활성을 나타냈고, 그 다음으로 tac2, sod, trc 순으로 나타났다. 따라서, 세포 초기반응속도와 CDPE 발현량은 비례한다는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 5: 세포 반응시 열안정성 비교
사이코스 에피머화 효소를 고발현율로 생산하는 균주도 중요하지만, 안정적으로 생산하는 균주가 산업적으로 유용하므로, 사이코스 에피머화 효소를 생산하는 균주 자체의 열안정성을 확인하고자 본 실험을 수행하였다.
세포 반응 진행시 50℃에서의 열안정성 확인하기 위하여, 실시예 2에서 얻어진 CDPE를 발현시킨 재조합 균주세포를 50 ℃에서 배양하여 열을 가한 후, 세포 반응 진행하였다. 각 세포의 반감기(시간, min)를 측정하여 표 4 및 도 4에 나타내었다.
생산효소 세포의 반감기(분)
tacCDPE 1300
tac2CDPE 1260
trcCDPE 1500
sodCDPE 1800
상기 표 4에서 볼 수 있듯이, tac /CDPE가 가장 뛰어난 세포 활성을 보였지만 50℃에서의 열안정성을 봤을 때 sod/CDPE가 반감기가 1800분으로 가장 안정했다. 공정상에서 세포반응을 통해 사이코스를 생산하고자 할 때 활성도 중요하지만, 적정선의 활성만 확보된다면 그 이후에는 열안정성이 경제성에 더 크게 작용하므로 sod/CDPE가 바람직하다.
한국미생물보존센터(국외) KCCM11593P 20141029
<110> SAMYANG GENEX CORPORATION <120> Expression system for psicose epimerase and production for psicose using the same <130> DPP20145029KR <160> 31 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 283 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (1) <400> 1 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tac 283 <210> 2 <211> 290 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (2) <400> 2 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tacgaaagga 290 <210> 3 <211> 300 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (3) <400> 3 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tacgaaagga ttttttaccc 300 300 <210> 4 <211> 342 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (4) <400> 4 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tacgaaagga ttttttaccc 300 atggctgtat acgaactccc agaactcgac tacgcatacg ac 342 <210> 5 <211> 349 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (5) <400> 5 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tacgaaagga ttttttaccc 300 atggctgtat acgaactccc agaactcgac tacgcatacg acgaaagga 349 <210> 6 <211> 356 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sod promoter (6) <400> 6 aagcgcctca tcagcggtaa ccatcacggg ttcgggtgcg aaaaaccatg ccataacagg 60 aatgttcctt tcgaaaattg aggaagcctt atgcccttca accctactta gctgccaatt 120 attccgggct tgtgacccgc tacccgataa ataggtcggc tgaaaaattt cgttgcaata 180 tcaacaaaaa ggcctatcat tgggaggtgt cgcaccaagt acttttgcga agcgccatct 240 gacggatttt caaaagatgt atatgctcgg tgcggaaacc tacgaaagga ttttttaccc 300 atggctgtat acgaactccc agaactcgac tacgcatacg acgaaaggat tacaaa 356 <210> 7 <211> 534 <212> DNA 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gggtaaaggt 660 cgtaccccgt ggcgtgaaat cggtgacgcg ctgcgtgaaa tcgaatacga cggtaccgtt 720 gttatggaac cgttcgttcg tatgggtggt caggttggtt ctgacatcaa agtttggcgt 780 gacatctcta aaggtgcggg tgaagaccgt ctggacgaag acgcgcgtcg tgcggttgaa 840 ttccagcgtt acatgctgga atggaaataa 870 <210> 22 <211> 870 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> modified nucleic acid sequence(2) of the enzyme protein of SEQ ID NO:20 <400> 22 atgaagcacg gcatctacta cgcatactgg gagcaggagt gggcagcaga ctacaagcgc 60 tacgttgaga aggcagcaaa gctgggcttc gacatcctgg aggttggcgc agcaccactg 120 ccagactact ccgcacagga ggttaaggag ctgaagaagt gcgcagacga caacggcatc 180 cagctgaccg caggctacgg cccagcattc aaccacaaca tgggctcctc cgacccaaag 240 atccgcgagg aggcactgca gtggtacaag cgcctgttcg aggttatggc aggcctggac 300 atccacctga tcggcggcgc actgtactcc tactggccag ttgacttcgc aaccgcaaac 360 aaggaggagg actggaagca ctccgttgag ggcatgcaga tcctggcacc aatcgcatcc 420 cagtacggca tcaacctggg catggaggtt ctgaaccgct tcgagtccca catcctgaac 480 acctccgagg agggcgttaa gttcgttacc gaggttggca tggacaacgt taaggttatg 540 ctggacacct tccacatgaa catcgaggag tcctccatcg gcgacgcaat ccgccacgca 600 ggcaagctgc tgggccactt ccacaccggc gagtgcaacc gcatggttcc aggcaagggc 660 cgcaccccat ggcgcgagat cggcgacgca ctgcgcgaga tcgagtacga cggcaccgtt 720 gttatggagc cattcgttcg catgggcggc caggttggct ccgacatcaa ggtttggcgc 780 gacatctcca agggcgcagg cgaggaccgc ctggacgagg acgcacgccg cgcagttgag 840 ttccagcgct acatgctgga gtggaagtaa 870 <210> 23 <211> 295 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> amino acid sequence of psicose 3-epimerase from Treponema primitia <400> 23 Met Gln Tyr Gly Ile Tyr Phe Ala Tyr Trp Thr Lys Glu Trp Gln Ala 1 5 10 15 Asp Tyr Lys Lys Tyr Ile Asp Lys Val Ser Lys Leu Gly Phe Asp Ile 20 25 30 Leu Glu Ile Ser Cys Ala Ala Leu Lys Asp Gln Tyr Val Ser Asp Ser 35 40 45 Gln Leu Phe Asp Leu Arg Asp Tyr Ala Lys Glu Lys Gly Val Thr Leu 50 55 60 Thr Ala Gly Tyr Gly Pro Ala Lys Gly Glu Asn Leu Ser Ser Ser Asp 65 70 75 80 Asn Arg Val Val Lys Asn Ala Lys Ala Phe Tyr Lys Asp Val Leu Gly 85 90 95 Lys Leu Asn Lys Leu Asp Ile Arg Leu Leu Gly Gly Gly Leu Tyr Ser 100 105 110 Tyr Trp Pro Val Asp Tyr Ser Leu Pro Ile Asp Lys Ala Gly Asp Trp 115 120 125 Lys Arg Ser Val Glu Asn Ile Arg Glu Ile Ala Ala Ile Ala Ala Asp 130 135 140 Arg Asn Val Val Leu Gly Met Glu Val Leu Asn Arg Phe Glu Gly Tyr 145 150 155 160 Leu Leu Asn Thr Cys Glu Glu Gly Ile Lys Phe Val Asp Glu Val Asn 165 170 175 His Pro Asn Val Lys Val Met Leu Asp Thr Phe His Met Asn Ile Glu 180 185 190 Glu Asp Asn Met Ala Glu Ala Ile Arg Met Ala Gly Asp Lys Leu Gly 195 200 205 His Phe His Ile Gly Glu Gln Asn Arg Lys Val Pro Gly Lys Gly Cys 210 215 220 Ile Pro Trp Asn Ala Ile Gly His Ala Leu Arg Asp Ile Arg Tyr Asn 225 230 235 240 Gly Thr Val Val Met Glu Pro Phe Val Met Pro Gly Gly Thr Ile Gly 245 250 255 Gln Asp Ile Lys Val Trp Arg Asn Leu Leu Pro Glu Thr Ser Glu Thr 260 265 270 Ile Leu Asp Arg Asp Ala Lys Gly Ala Leu Glu Phe Val Lys His Val 275 280 285 Phe Gly Ser Thr Ser Val Leu 290 295 <210> 24 <211> 888 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ccgggtggta ccatcggtca ggacatcaaa 780 gtttggcgtg acctgctgcc ggaaacctct gaaaccatcc tggaccgtga cgcgaaaggt 840 gcgctggaat tcgttaaaca cgttttcggt tctacctctg ttctgtaa 888 <210> 25 <211> 888 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> modified nucleic acid sequecne (2) of psicose epimerase SEQ ID NO: 23 <400> 25 atgcagtacg gcatctactt cgcatactgg accaaggagt ggcaggcaga ctacaagaag 60 tacatcgaca aggtttccaa gctgggcttc gacatcctgg agatctcctg cgcagcactg 120 aaggaccagt acgtttccga ctcccagctg ttcgacctgc gcgactacgc aaaggagaag 180 ggcgttaccc tgaccgcagg ctacggccca gcaaagggcg agaacctgtc ctcctccgac 240 aaccgcgttg ttaagaacgc aaaggcattc tacaaggacg ttctgggcaa gctgaacaag 300 ctggacatcc gcctgctggg cggcggcctg tactcctact ggccagttga ctactccctg 360 ccaatcgaca aggcaggcga ctggaagcgc tccgttgaga acatccgcga gatcgcagca 420 atcgcagcag accgcaacgt tgttctgggc atggaggttc tgaaccgctt cgagggctac 480 ctgctgaaca cctgcgagga gggcatcaag ttcgttgacg aggttaacca cccaaacgtt 540 aaggttatgc tggacacctt ccacatgaac atcgaggagg acaacatggc agaggcaatc 600 cgcatggcag gcgacaagct gggccacttc cacatcggcg agcagaaccg caaggttcca 660 ggcaagggct gcatcccatg gaacgagatc ggccacgcac tgcgcgacat ccgctacaac 720 ggcaccgttg ttatggagcc attcgttatg ccaggcggca ccatcggcca ggacatcaag 780 gtttggcgcg acctgctgcc agagacctcc gagaccatcc tggaccgcga cgcaaagggc 840 gcactggagt tcgttaagca cgttttcggc tccacctccg ttctgtaa 888 <210> 26 <211> 282 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> amino acid sequence of D-psicose 3-epimerase originated from Ensifer adhaerens <400> 26 Met Gln Gly Phe Gly Val His Thr Ser Met Trp Thr Met Asn Trp Asp 1 5 10 15 Arg Pro Gly Ala Glu Arg Ala Val Ala Ala Ala Val Lys Tyr Ala Val 20 25 30 Asp Phe Ile Glu Ile Pro Met Leu Asn Pro Pro Ala Val Asp Thr Ala 35 40 45 His Thr Arg Ala Leu Leu Glu Lys Asn Lys Leu Arg Ala Val Cys Ser 50 55 60 Leu Gly Leu Pro Glu Arg Ala Trp Ala Ser Val Arg Pro Asp Ala Ala 65 70 75 80 Ile Glu His Leu Lys Val Ala Ile Asp Lys Thr Ala Asp Leu Gly Gly 85 90 95 Glu Ala Leu Ser Gly Val Ile Tyr Gly Gly Ile Gly Glu 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tcggtgttca cacctctatg tggaccatga actgggaccg tccgggtgcg 60 gaacgtgcgg ttgcggcggc ggttaaatac gcggttgact tcatcgaaat cccgatgctg 120 aacccgccgg cggttgacac cgcgcacacc cgtgcgctgc tggaaaaaaa caaactgcgt 180 gcggtttgct ctctgggtct gccggaacgt gcgtgggcgt ctgttcgtcc ggacgcggcg 240 atcgaacacc tgaaagttgc gatcgacaaa accgcggacc tgggtggtga agcgctgtct 300 ggtgttatct acggtggtat cggtgaacgt accggtgttc cgccgaccga agcggaatac 360 gacaacatcg cgcgtgttct gcaggcggcg gcgaaacacg cgaaaacccg tggtatcgaa 420 ctgggtgttg aagcggttaa ccgttacgaa aaccacctga tcaacaccgg ttggcaggcg 480 gttgacatga tcaaacgtgt tggtgcggac aacgttttcg ttcacctgga cacctaccac 540 atgaacatcg aagaaaaagg tatcggtacc ggtatcctgg acgcgcgtga cttcatcaaa 600 tacatccacc tgtctgaatc tgaccgtggt accccgggtt acggtaactg cgcgtgggac 660 gaaatcttcg cgaccctggc ggcgatcggt ttcaaaggtg gtctggcgat ggaatctttc 720 atcaacatgc cgccggaagt tgcgtacggt ctggcggttt ggcgtccggt tgcgcgtgac 780 gaagaagaag ttatgggtaa ctctctgccg ttcctgcgta acaaagcgcg tcagtacggt 840 ctgatcctgg aataa 855 <210> 28 <211> 855 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> modified nucleic acid sequence of psicose epimerase SEQ ID NO: 26 <400> 28 atgcagggct tcggcgttca cacctccatg tggaccatga actgggaccg cccaggcgca 60 gagcgcgcag ttgcagcagc agttaagtac gcagttgact tcatcgagat cccaatgctg 120 aacccaccag cagttgacac cgcacacacc cgcgcactgc tggagaagaa caagctgcgc 180 gcagtttgct ccctgggcct gccagagcgc gcatgggcat ccgttcgccc agacgcagca 240 atcgagcacc tgaaggttgc aatcgacaag accgcagacc tgggcggcga ggcactgtcc 300 ggcgttatct acggcggcat cggcgagcgc accggcgttc caccaaccga ggcagagtac 360 gacaacatcg cacgcgttct gcaggcagca gcaaagcacg caaagacccg cggcatcgag 420 ctgggcgttg aggcagttaa ccgctacgag aaccacctga tcaacaccgg ctggcaggca 480 gttgacatga tcaagcgcgt tggcgcagac aacgttttcg ttcacctgga cacctaccac 540 atgaacatcg aggagaaggg catcggcacc ggcatcctgg acgcacgcga cttcatcaag 600 tacatccacc tgtccgagtc cgaccgcggc accccaggct acggcaactg cgcatgggac 660 gagatcttcg caaccctggc agcaatcggc ttcaagggcg gcctggcaat ggagtccttc 720 atcaacatgc caccagaggt tgcatacggc ctggcagttt ggcgcccagt tgcacgcgac 780 gaggaggagg ttatgggcaa ctccctgcca ttcctgcgca acaaggcacg ccagtacggc 840 ctgatcctgg agtaa 855 <210> 29 <211> 290 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> amino acid sequence of D-psicose 3-epimerase originated from Ruminococcus torques <400> 29 Met Lys Met Lys Phe Gly Thr Leu Tyr Ser Tyr Trp Gly Thr Lys Trp 1 5 10 15 Gln Cys Asp Tyr Leu Lys Thr Leu Lys Arg Val Ser Asp Ile Gly Phe 20 25 30 Asp Ile Leu Glu Met Gly Ala Pro His Leu Leu Glu Met Ser Asp Tyr 35 40 45 Glu Leu Ser Glu Leu Arg Arg Ala Ala Lys Asp Met Asp Met Val Leu 50 55 60 Thr Ala Asn Ile Gly Pro Ala Lys Asp Lys Asp Leu Ala Ser Pro Asp 65 70 75 80 Pro Asp Ile Arg Lys Ala Gly Val Asn Tyr Leu Ile Asp Ile Leu Lys 85 90 95 Ala Met Glu Lys Val Gly Ser Lys Ser Leu Val Gly Ala Met Tyr Ser 100 105 110 Tyr Trp Pro Cys Gln Phe Glu Ile Thr Asp Lys Glu Ala Ala Trp Glu 115 120 125 Arg Ser Ile Glu Gly Met Lys Glu Val Ala Glu Ala Ala Glu Ser Leu 130 135 140 Gly Ile Glu Cys Cys Gln Glu Val Leu Asn Arg Tyr Glu Thr Tyr Ile 145 150 155 160 Ile Thr Asp Cys Arg Glu Gly Leu Glu Tyr Cys Arg Arg Val Gly Ser 165 170 175 Glu Asn Val Asn Leu Leu Leu Asp Thr Phe His Met Asn Ile Glu Glu 180 185 190 Asp Asn Ile Pro Glu Ala Ile Arg Leu Ala Gly Arg Lys Leu Gly His 195 200 205 Leu His Val Gly Glu Ser Asn Arg Lys Leu Pro Gly Met Gly Ser Leu 210 215 220 Pro Trp Arg Asp Ile Gly Arg Ala Leu Arg Asp Ile Gly Tyr Glu Lys 225 230 235 240 Gly Val Val Met Glu Pro Phe Leu Leu Gln Gly Gly Glu Val Ala Arg 245 250 255 Asp Cys Lys Val Trp Arg Asp Leu Ser Gly Asn Ala Asp Glu Lys Met 260 265 270 Leu Asp Arg Tyr Ile Lys Glu Ser Leu Thr Phe Leu Lys His Glu Phe 275 280 285 Thr Phe 290 <210> 30 <211> 873 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> nucleic acid sequnce of psicose epimperase SEQ ID NO: 29 <400> 30 atgaaaatga aattcggtac cctgtactct tactggggta ccaaatggca gtgcgactac 60 ctgaaaaccc tgaaacgtgt ttctgacatc ggtttcgaca tcctggaaat gggtgcgccg 120 cacctgctgg aaatgtctga ctacgaactg tctgaactgc gtcgtgcggc gaaagacatg 180 gacatggttc tgaccgcgaa catcggtccg gcgaaagaca aagacctggc gtctccggac 240 ccggacatcc gtaaagcggg tgttaactac ctgatcgaca tcctgaaagc gatggaaaaa 300 gttggttcta aatctctggt tggtgcgatg tactcttact ggccgtgcca gttcgaaatc 360 accgacaaag aagcggcgtg ggaacgttct atcgaaggta tgaaagaagt tgcggaagcg 420 gcggaatctc tgggtatcga atgctgccag gaagttctga accgttacga aacctacatc 480 atcaccgact gccgtgaagg tctggaatac tgccgtcgtg ttggttctga aaacgttaac 540 ctgctgctgg acaccttcca catgaacatc gaagaagaca acatcccgga agcgatccgt 600 ctggcgggtc gtaaactggg tcacctgcac gttggtgaat ctaaccgtaa actgccgggt 660 atgggttctc tgccgtggcg tgacatcggt cgtgcgctgc gtgacatcgg ttacgaaaaa 720 ggtgttgtta tggaaccgtt cctgctgcag ggtggtgaag ttgcgcgtga ctgcaaagtt 780 tggcgtgacc tgtctggtaa cgcggacgaa aaaatgctgg accgttacat caaagaatct 840 ctgaccttcc tgaaacacga attcaccttc tga 873 <210> 31 <211> 873 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> modifed nucleic acid sequence of psicose epimerase SEQ ID NO: 29 <400> 31 atgaagatga aatttggaac attatattct tattggggaa caaaatggca atgtgattat 60 ttgaaaacat taaaacgagt ttcagacatc ggatttgaca ttttggaaat gggtgctcct 120 cacttgttgg aaatgtcaga ttatgaactt tcagaattga ggcgcgcggc gaaagatatg 180 gatatggtat tgacggcaaa tatcggaccg gcaaaagata aagatcttgc ttctcctgat 240 ccggatatac gaaaagcggg agtaaactat ttgatcgata tattaaaagc aatggaaaaa 300 gtaggatcta aatcacttgt tggagcaatg tattcttatt ggccgtgtca atttgaaata 360 acggataagg aagctgcctg ggagagaagc atcgagggga tgaaagaggt tgcagaagct 420 gcggaatcat tgggaatcga atgctgtcag gaagttttga atcgatatga aacttatatt 480 atcacagatt gcagggaagg attggaatac tgcaggagag tcggaagtga aaacgttaat 540 ctccttcttg atacatttca tatgaatatc gaagaagata atattccgga ggctatccgg 600 cttgcaggaa gaaaattggg ccatctgcat gtgggagaat caaacagaaa gcttccggga 660 atgggatccc ttccttggag agatatcgga cgggcgctaa gagatatcgg atatgagaaa 720 ggcgtcgtta tggaaccgtt tcttcttcaa ggaggagagg tcgctcggga ctgtaaagtg 780 tggagagatt taagtgggaa tgcagatgag aaaatgctgg atcgctatat aaaagaatct 840 ttaacatttt tgaaacatga atttacgttt tga 873

Claims (33)

  1. 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열과, 그 상류(upstream)에 작동 가능하도록 연결되며 코리네박테리움속 균주에서 상기 사이코스 에피머화 효소의 발현을 조절하는 조절서열을 포함하며,
    상기 조절서열은 서열번호 16의 핵산서열로 이루어지는 대장균(E.coli) 유래 전사 프로모터(transcription promoter)를 포함하는, 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 유전자 발현 카세트(gene expression cassette).
  2. 제1항에 있어서, 상기 조절서열은 서열번호 18의 핵산서열로 이루어지는 리보좀 결합 영역(ribosome binding region)을 추가로 포함하는 것인 유전자 발현 카세트.
  3. 제2항에 있어서, 상기 조절서열은 서열번호 19의 핵산서열로 이루어지는 스페이서 핵산서열을 추가로 포함하는 유전자 발현 카세트.
  4. 제3항에 있어서, 상기 조절서열은, 5'말단에서 3'-말단방향으로 순차적으로 연결된 서열번호 18의 핵산서열로 이루어지는 리보좀 결합 영역과 서열번호 19의 핵산서열로 이루어지는 스페이서 서열을 추가로 포함하는 유전자 발현 카세트.
  5. 제1항에 있어서, 상기 조절서열은, 전사 프로모터의 3'-말단에 연결되며 1개 내지 100개 염기크기의 제1 링커 폴리뉴클레오타이드를 추가로 포함하는 유전자 발현 카세트.
  6. 제1항에 있어서, 상기 조절서열은 5'말단에서 3'-말단방향으로 순차적으로 위치하는, 전사 프로모터, 리보좀 결합 영역 및 스페이서 서열을 포함하는 유전자 발현 카세트.
  7. 제6항에 있어서, 상기 조절서열은 전사 프로모터와 리보좀 결합 영역 사이에 위치하는 1개 내지 100개 염기크기의 제1 링커 서열을 추가로 포함하는 것인 유전자 발현 카세트.
  8. 제2항에 있어서, 상기 조절서열은 5'말단에서 3'-말단방향으로 순차적으로 위치하는, 전사 프로모터 및 리보좀 결합 영역을 포함하며, 상기 리보좀 결합영역의 3'-말단에 연결되며 1개 내지 100개 염기크기의 제1 링커 폴리뉴클레오타이드를 추가로 포함하는 유전자 발현 카세트.
  9. 삭제
  10. 삭제
  11. 제5항에 있어서, 상기 조절서열은 서열번호 17의 핵산서열로 이루어지는 핵산분자인 유전자 발현 카세트.
  12. 삭제
  13. 제1항에 있어서, 상기 사이코스 에피머화 효소는 클로스트리디움 신댄스(Clostridiun scidens), 트로포네마 프리미샤(Treponema primitia), 엔시퍼 아드해렌스(Ensifer adhaerens) 또는 루미노코코스 토르크 (Ruminococcus torques)에서 유래된 것인 유전자 발현 카세트.
  14. 제13항에 있어서, 상기 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열은, 서열번호 20의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 23의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 26의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열 또는 서열번호 29의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열인, 유전자 발현 카세트.
  15. 제14항에 있어서, 상기 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 21, 서열번호 22, 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 27, 서열번호 28, 서열번호 30 및 서열번호 31로 이루어지는 군에서 선택된 핵산서열로 이루어지는 핵산분자인 유전자 발현 카세트.
  16. 제1항에 있어서, 상기 조절서열은 서열번호 16 또는 서열번호 17의 핵산서열으로 이루어지는 핵산분자를 포함하고,
    상기 사이코스 에피머화 효소를 암호화하는 핵산서열은 서열번호 20의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 23의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열, 서열번호 26의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열 또는 서열번호 29의 아미노산 서열로 이루어지는 펩타이드를 코딩하는 핵산서열인 유전자 발현 카세트.
  17. 삭제
  18. 제1항에 있어서, 상기 코리네박테리움속 균주는 코리네박테리움 글루타미쿰 (glutamicum), 코리네박테리움 아세토글루타미쿰 (acetoglutamicum), 코리네박테리움 아세토아시도필룸 (acetoacidophilum), 코리네박테리움 써모아미노제네스 (thermoaminogenes), 코리네박테리움 멜라쎄콜라 (melassecola) 및 코리네박테리움 에피시엔스 (efficiens)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상인 유전자 발현 카세트.
  19. 제 1 항에 있어서, 상기 발현 카세트는 복제 기점, 리더(leader), 선택 가능한 마커, 클로닝 부위 및 제한효소 인식부위로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 서열을 추가로 포함하는 것인 유전자 발현 카세트.
  20. 서열번호 16 또는 서열번호 17의 핵산서열로 이루어지는 폴리뉴클레오타이드를 포함하며, 코리네박테리움속 균주에서 사이코스 에피머화 효소를 발현하는 전사 프로모터(transcription promoter).
  21. 제1항 내지 제8항, 제11항, 제13항 내지 제16항, 제18항 및 제19항중 어느 한항에 따른 유전자 발현 카세트를 포함하는 벡터.
  22. 제21항에 있어서, 상기 벡터는 플라스미드인 벡터.
  23. 제21항에 있어서, 상기 벡터는 도 1d의 개열지도를 가지는 벡터.
  24. 제1항 내지 제8항, 제11항, 제13항 내지 제16항, 제18항 및 제19항중 어느 한항에 따른 유전자 발현 카세트를 포함하거나, 상기 발현 카세트를 포함하는 벡터로 형질전환된 재조합 코리네박테리움속 숙주세포.
  25. 제24항에 있어서, 상기 코리네박테리움속 균주는 코리네박테리움 글루타미쿰 (glutamicum), 코리네박테리움 아세토글루타미쿰 (acetoglutamicum), 코리네박테리움 아세토아시도필룸 (acetoacidophilum), 코리네박테리움 써모아미노제네스 (thermoaminogenes), 코리네박테리움 멜라쎄콜라 (melassecola) 및 코리네박테리움 에피시엔스 (efficiens)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상인 코리네박테리움속 숙주세포.
  26. 제24항에 있어서, 상기 균주는 기탁번호 KCCM11593P을 갖는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주인, 숙주세포.
  27. 삭제
  28. 제1항 내지 제8항, 제11항, 제13항 내지 제16항, 제18항 및 제19항중 어느 한 항에 따른 유전자 발현 카세트를 포함하거나, 상기 발현 카세트를 포함하는 벡터로 형질전환된 재조합 코리네박테리움속 숙주세포를 배양하여 세포의 배양물을 얻는 세포 배양 단계와,
    상기 세포의 배양물에서 얻어진 사이코스 에피머화 효소, 상기 세포의 균체, 상기 세포의 배양물, 상기 세포의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 과당-함유 원료와 반응하여 사이코스를 생산하는 사이코스 생산단계를 포함하는, 과당-함유 원료로부터 사이코스를 생산하는 방법.
  29. 제 28 항에 있어서, 상기 사이코스 에피머화 효소 또는 상기 세포의 균체가 고정화된 담체에, 과당-함유 원료를 접촉시켜 사이코스를 생산하는 방법.
  30. 제 28 항에 있어서, 상기 사이코스 에피머화 효소, 상기 세포의 균체, 상기 세포의 배양물, 상기 세포의 파쇄물, 및 상기 파쇄물 또는 배양물의 추출물로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을, 과당-함유 원료와 혼합하여 사이코스를 생산하는 방법.
  31. 제 28 항에 있어서, 구리, 망간, 칼슘, 마그네슘, 아연, 니켈, 코발트, 철 및 알루미늄으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상의 금속이온을 첨가하는 단계를 추가로 포함하는 사이코스를 생산하는 방법.
  32. 제 28 항에 있어서, 상기 과당-함유 원료는 과당을 40 내지 75%(w/w)의 농도로 포함하는 것인, 사이코스를 생산하는 방법.
  33. 제28항에 있어서, 상기 방법의 사이코스 생산단계는 pH 6 내지 9 및 40 내지 80℃의 조건하에서 수행되는, 사이코스를 생산하는 방법.
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