KR101665729B1 - 신경침윤 억제제 - Google Patents

Abstract

본 발명자들은, 췌장암의 신경침윤 모델에 있어서, IL-6를 저해함으로써 신경침윤이 억제되는 것을 발견하고, 본 발명을 완성하였다. 또한 인간 췌장암 세포주에서 IL-6 수용체가 발현되고 있는 것, IL-6가 췌장암 세포의 주화능, 유주능 및 세포내 시그날을 항진하는 것을 명확하게 하여, IL-6를 저해함으로써 췌장암을 치료하는 것이 가능한 것을 발견하였다. 또한, IL-6 저해제를 마우스 신경침윤 모델에 투여함으로써, 인간 췌장암 신경침윤을 억제할 수 있는 것을 발견하였다.

Description

신경침윤 억제제{Neuroinvasion inhibitor}

본 발명은 신경침윤 억제제에 관한 것이다. 더욱 상세하게는, 본 발명은 인터루킨 6(IL-6) 저해제를 유효성분으로 하는 신경침윤 억제제에 관한 것이다.

인터루킨 6(IL-6)는 B세포 자극인자 2(BSF2) 또는 인터페론 β2로도 호칭된 사이토카인이다. IL-6는, B림프구계 세포의 활성화에 관여하는 분화인자로서 발견되고(비특허문헌 1), 그 후, 각종 세포의 기능에 영향을 미치는 다기능 사이토카인임이 명확해졌다(비특허문헌 2). IL-6는, T림프구계 세포의 성숙화를 유도하는 것이 보고되어 있다(비특허문헌 3).

IL-6는, 세포 상에서 2종의 단백질을 매개로 그 생물학적 활성을 전달한다. 하나는, IL-6가 결합하는 분자량 약 80 kD의 리간드 결합성 단백질인 IL-6 수용체이다(비특허문헌 4, 5). IL-6 수용체는, 세포막을 관통하여 세포막 상에 발현하는 막결합형 외에, 주로 그 세포외영역으로 되는 가용성 IL-6 수용체로서도 존재한다.

다른 하나는, 비리간드 결합성의 시그날 전달에 관여하는 분자량 약 130 kD의 막단백질 gp130이다. IL-6와 IL-6 수용체는 IL-6/IL-6 수용체 복합체를 형성하고, 이어서 gp130과 결합함으로써, IL-6의 생물학적 활성이 세포내에 전달된다(비특허문헌 6).

췌장암은, 오늘날에도 대부분의 증례가 절제 불가능한 진행된 상태로 진단되며, 또한 유일하게 치유를 기대할 수 있는 절제예에 있어서도 대부분은 술후 조기에 재발하는 경우가 많다. 또한, 절제 불가능한 예이며, 또한, performance status(PS)와 주요 췌장기능이 양호한 예는 화학요법의 적응으로 되는데, 현재의 표준치료에서도 그 치료효과는 충분하지 않다. 예를 들면, 제1 선택약으로서 자리매김되어 있는 염산겜시타빈의 경우에도, 증상 완화효과에 있어서의 유효율은 23.8%, 생존기간 중앙치는 5.7개월, 1년 생존율은 18%(해외임상 제3상 시험결과)이다. 또한, 일본에서는 연간 20000명이 췌장암으로 진단되고, 사망자 수도 22,260명(2004년, 후생노동성에 따른 인구동태조사)으로, 암의 사인별에서는 제5위이다.

신경침윤은 췌장암의 특징적인 침윤양식의 하나로 여겨져, 췌장암에서 거의 100%에 신경침윤이 확인되는 것, 신경침윤은 중요한 예후 인자인 것, 신경침윤은 간세포의 기능이상을 초래하여 빈혈, performance status(PS)의 저하나 저영양 등의 악액질 증상과 상관하는 것 등을, 지금까지 본 발명자들은 명확하게 해 왔다. 또한, 신경침윤은 암성 동통 등의 요인으로 되어, 신경침윤 호발부위로의 방사선조사나 그의 상위에 위치하는 신경의 절제에 의해 일정의 증상 조절을 얻었다고 하는 보고를 산견한다. 그러나, 신경침윤의 메커니즘, 및 신경침윤에 기인하는 증상이 발현되는 메커니즘은 거의 알려져 있지 않기 때문에, 신경침윤의 제어 및 신경침윤에 기인하는 증상의 제어에 대해서는 지견(知見)이 부족한 것이 현재 상태이다. 한편, 신경침윤은 암종에 상관없이 널리 확인되어, 전립선암, 위암, 두경부암에서는 예후 인자로서 보고되어 있다.

또한, 본 출원의 발명에 관련된 선행기술문헌정보를 이하에 나타낸다.

Hirano, T. et al., Nature (1986) 324, 73-76 Akira, S. et al., Adv. in Immunology (1993) 54, 1-78 Lotz, M. et al., J. Exp. Med. (1988)167, 1253-1258 Taga, T. et al., J. Exp. Med. (1987) 166, 967-981 Yamasaki, K. et al., Science (1988) 241, 825-828 Taga, T. et al., Cell (1989) 58, 573-581

따라서, 본 발명은 신규한 신경침윤 억제제를 제공하는 것에 있다. 또한, 본 발명은 신규한 췌장암 치료제를 제공한다.

본 발명자들은 상기 과제를 해결하기 위해 예의 연구한 결과, 췌장암의 신경침윤 모델에 있어서, IL-6를 저해함으로써 신경침윤이 억제되는 것을 발견하고, 본 발명을 완성하였다. 또한 인간 췌장암 세포주에서 IL-6 수용체가 발현되고 있는 것, IL-6가 췌장암 세포의 주화능(chemotactic activity), 유주능(migratory activities) 및 세포내 시그날을 항진하는 것을 명확하게 하여, IL-6를 저해함으로써 췌장암을 치료하는 것이 가능한 것을 발견하였다. 또한, IL-6 저해제를 마우스 신경침윤 모델에 투여함으로써, 인간 췌장암 신경침윤을 억제할 수 있는 것을 발견하였다.

즉, 본 발명은 보다 구체적으로는 이하의 [1]~[32]를 제공하는 것이다.

[1] 인터루킨 6(IL-6) 저해제를 유효성분으로 하는 췌장암 치료제.

[2] IL-6 저해제를 유효성분으로 하는 세포의 신경침윤 억제제.

[3] 암세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [2]에 기재된 억제제.

[4] 췌장암 세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [3]에 기재된 억제제.

[5] 중추측으로의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [2] 내지 [4] 중 어느 하나에 기재된 억제제.

[6] IL-6 저해제가 IL-6 수용체에 결합하는 물질인 것을 특징으로 하는 [1] 내지 [5] 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 억제제.

[7] IL-6 저해제가 항IL-6 수용체 항체인 것을 특징으로 하는 [6]에 기재된 치료제 또는 억제제.

[8] 항IL-6 수용체 항체가 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체인 [7]에 기재된 치료제 또는 억제제.

[9] IL-6 저해제를 대상에 투여하는 공정을 포함하는, 췌장암의 치료방법.

[10] IL-6 저해제를 대상에 투여하는 공정을 포함하는, 세포의 신경침윤 억제방법.

[11] 암세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [10]에 기재된 방법.

[12] 췌장암 세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [11]에 기재된 방법.

[13] 중추측으로의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [10] 내지 [12] 중 어느 하나에 기재된 방법.

[14] IL-6 저해제가 IL-6 수용체에 결합하는 물질인 것을 특징으로 하는 [9] 내지 [13] 중 어느 하나에 기재된 방법.

[15] IL-6 저해제가 항IL-6 수용체 항체인 것을 특징으로 하는 [14]에 기재된 방법.

[16] 항IL-6 수용체 항체가 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체인 [15]에 기재된 방법.

[17] 췌장암 치료제를 제조하기 위한, IL-6 저해제의 사용.

[18] 세포의 신경침윤 억제제를 제조하기 위한, IL-6 저해제의 사용.

[19] 암세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [18]에 기재된 사용.

[20] 췌장암 세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [19]에 기재된 사용.

[21] 중추측으로의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [18] 내지 [20] 중 어느 하나에 기재된 사용.

[22] IL-6 저해제가 IL-6 수용체에 결합하는 물질인 것을 특징으로 하는 [17] 내지 [21] 중 어느 하나에 기재된 사용.

[23] IL-6 저해제가 항IL-6 수용체 항체인 것을 특징으로 하는 [22]에 기재된 사용.

[24] 항IL-6 수용체 항체가 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체인 [23]에 기재된 사용.

[25] 췌장암을 치료하는 방법에 사용하기 위한 IL-6 저해제.

[26] 세포의 신경침윤을 억제하기 위한 방법에 사용하기 위한 IL-6 저해제.

[27] 암세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [26]에 기재된 IL-6 저해제.

[28] 췌장암 세포의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [27]에 기재된 IL-6 저해제.

[29] 중추측으로의 신경침윤을 억제하는 것을 특징으로 하는 [26] 내지 [28] 중 어느 하나에 기재된 IL-6 저해제.

[30] IL-6 저해제가 IL-6 수용체에 결합하는 물질인 것을 특징으로 하는 [25] 내지 [29] 중 어느 하나에 기재된 IL-6 저해제.

[31] IL-6 저해제가 항IL-6 수용체 항체인 것을 특징으로 하는 [30]에 기재된 IL-6 저해제.

[32] 항IL-6 수용체 항체가 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체인 [31]에 기재된 IL-6 저해제.

도 1은 인간 췌장암 세포주에 있어서의, IL-6α 수용체(IL6R) mRNA 발현량(A) 및 IL-6β 수용체(gp130)의 mRNA 발현량(B)을 나타내는 도면이다.
도 2는 인간 재조합형 IL-6(human recombinant IL-6)를 사용한, IL-6의 인간 췌장암 세포주에 대한 증식능, 주화능, 유주능으로의 영향을 측정한 결과를 나타내는 도면이다. A 및 B: 세포수의 경시적 계측에 따른 세포 증식능의 측정, C: chemotaxis assay에 따른 주화능의 측정, D: wound healing assay에 따른 주화능의 측정의 결과를 나타낸다.
도 3은 인간 재조합형 IL-6(rhIL6)를 사용한, IL-6의 인간 췌장암 세포주 Capan-1에 대한 세포내 시그날로의 영향을 웨스턴 블롯법을 사용하여 평가한 결과를 나타내는 도면이다. A: 세포내 인산화 STAT3 단백질 발현, B: 세포내 인산화 Erk1/2 단백질 발현, C: 세포내 인산화 Akt 단백질 발현을 나타낸다.
도 4는 인간 췌장암 세포주를 사용한, 마우스 신경침윤 모델을 나타내는 사진 및 도면이다. A: 4주 후의 신경침윤 육안상, B: 경시적 침윤거리를 나타내는 그래프, C: 4주 후의 신경침윤 조직상을 나타낸다.
도 5는 신경침윤 모델과 각종 신경 손상 모델에 있어서의 마우스 IL-6 발현분포를 나타내는 사진 및 도면이다. A: 신경침윤 모델상, B 및 C: RT-PCR(B) 또는 형광면역염색(C)에 의한 신경침윤 모델 및 기타 신경 손상 모델에 있어서의 마우스 IL-6 발현량을 나타낸다.
도 6은 신경침윤부에 있어서의 췌장암 세포의 인산화 STAT3 단백 발현의 결과를 나타내는 도면이다.
도 7은 gp130 녹다운에 의한 신경침윤거리 억제효과를 나타내는 도면이다.
도 8은 IL-6R 녹다운에 의한 신경침윤거리 억제효과를 나타내는 도면이다.
도 9는 마우스 신경침윤 모델으로의 JAK 저해제 AG490 또는 항IL-6 수용체 항체의 투여의, 신경침윤으로의 영향을 나타내는 도면이다. A: JAK 저해제 AG490 투여시의 경시적 침윤거리를 나타내는 그래프이다. DMSO: 대조군, AG490: AG490 투여군을 나타낸다. B: 항IL-6 수용체 항체 투여시의 경시적 침윤거리를 나타내는 그래프이다. hIgG: 대조군, MRA: 항IL-6 수용체 항체의 투여군을 나타낸다.

본 발명에 있어서 「IL-6 저해제」란, IL-6에 의한 시그날 전달을 차단하여, IL-6의 생물학적 활성을 저해하는 물질이다. IL-6 저해제의 구체적인 예로서, IL-6에 결합하는 물질, IL-6 수용체에 결합하는 물질, gp130에 결합하는 물질 등을 들 수 있다. 또한, IL-6 저해제로서는, IL-6에 의한 세포내 시그날로서 중요한 STAT3 인산화를 저해하는 물질, 예를 들면 AG490 등을 들 수 있다. IL-6 저해제에는, 특별히 한정되지 않으나, 항IL-6 항체, IL-6 수용체 항체, 항gp130 항체, IL-6 개변체, 가용성 IL-6 수용체 개변체, IL-6 부분펩티드, IL-6 수용체 부분 펩티드, 이들과 동일한 활성을 나타내는 저분자화합물 등이 포함된다.

IL-6 저해제의 바람직한 태양으로서, IL-6 수용체 저해제, 특히 항IL-6 수용체 항체를 들 수 있다.

본 발명에서 사용되는 항체의 유래는 특별히 한정되는 것은 아니나, 바람직하게는 포유동물 유래이고, 보다 바람직하게는 인간 유래의 항체를 들 수 있다.

본 발명에서 사용되는 항체는, 공지의 수단을 사용하여 다중클론항체 또는 단일클론항체로서 얻을 수 있다. 본 발명에서 사용되는 항체로서, 특히 포유동물 유래의 단일클론항체가 바람직하다. 포유동물 유래의 단일클론항체로서는, 하이브리도마에 생산되는 것, 및 유전자 공학적 수법에 의해 항체 유전자를 포함하는 발현 벡터로 형질전환한 숙주에 생산되는 것이 있다. 통상, 이 항체는 IL-6, IL-6 수용체, gp130 등과 결합함으로써, IL-6의 생물학적 활성의 세포내로의 전달을 차단한다.

단일클론항체 생산 하이브리도마는, 기본적으로는 공지 기술을 사용하여, 이하와 같이 하여 제작할 수 있다. 즉, IL-6 수용체, IL-6, gp130 등을 감작항원으로서 사용하고, 이것을 통상의 면역방법에 따라 면역하여, 얻어지는 면역세포를 통상의 세포융합법에 의해 공지의 친세포와 융합시키고, 통상의 스크리닝법에 의해, 단일클론항체 생산 세포를 스크리닝함으로써 제작할 수 있다.

구체적으로는, 단일클론항체를 제작하기 위해서는 다음과 같이 하면 된다. 예를 들면, 항IL-6 수용체 항체를 제작하는 경우, 항체 취득의 감작항원으로서 사용되는 인간 IL-6 수용체는, 유럽 특허출원 공개번호 EP 325474에, 마우스 IL-6 수용체는 일본 특허출원 공개번호 특개평3-155795에 개시된 IL-6 수용체 유전자/아미노산 서열을 사용함으로써 얻어진다.

IL-6 수용체 단백질은, 세포막상에 발현하고 있는 것과 세포막으로부터 이탈되어 있는 것(가용성 IL-6 수용체)(Yasukawa, K. et al., J. Biochem. (1990) 108, 673-676))의 두 종류가 있다. 가용성 IL-6 수용체는 세포막에 결합하고 있는 IL-6 수용체의 실질적으로 세포외영역으로 구성되어 있고, 세포막 관통영역 또는 세포막 관통영역과 세포내영역이 결손되어 있는 점에서 막결합형 IL-6 수용체와 상이하다. IL-6 수용체 단백질은, 본 발명에서 사용되는 항IL-6 수용체 항체 제작의 감작항원으로서 사용될 수 있는 한, 어느 IL-6 수용체를 사용해도 된다.

IL-6 수용체의 유전자 서열을 공지의 발현 벡터계에 삽입하여 적당한 숙주세포를 형질전환시킨 후, 그 숙주세포 중 또는 배양상청 중으로부터 목적의 IL-6 수용체 단백질을 공지의 방법으로 정제하고, 이 정제 IL-6 수용체 단백질을 감작항원으로서 사용하면 된다. 또한, IL-6 수용체를 발현하고 있는 세포나 IL-6 수용체 단백질과 다른 단백질의 융합 단백질을 감작항원으로서 사용해도 된다.

마찬가지로, IL-6를 항체 취득의 감작항원으로서 사용하는 경우에는, 인간 IL-6는, Eur. J. Biochem (1987) 168, 543-550, J. Immunol.(1988)140, 1534-1541, 또는 Agr. Biol. Chem. (1990)54, 2685-2688에 개시된 IL-6 유전자/아미노산 서열을 사용함으로써 얻어진다. 또한, 항gp130 항체 취득의 감작항원으로서는, 유럽 특허출원 공개번호 EP 411946에 개시된 gp130 유전자/아미노산 서열을 사용할 수 있다.

감작항원으로 면역되는 포유동물로서는, 특별히 한정되는 것은 아니나, 세포융합에 사용하는 친세포와의 적합성을 고려하여 선택하는 것이 바람직하고, 일반적으로는 설치류의 동물, 예를 들면, 마우스, 랫트, 햄스터 등이 사용된다.

감작항원을 동물에 면역하기 위해서는, 공지의 방법에 따라 행해진다. 예를 들면, 일반적 방법으로서, 감작항원을 포유동물의 복강내 또는 피하에 주사함으로써 행해진다. 구체적으로는, 감작항원을 PBS(Phosphate-Buffered Saline)나 생리식염수 등으로 적당량으로 희석, 현탁한 것을 목적하는 바에 따라 통상의 애쥬번트, 예를 들면 프로인트 완전 애쥬번트를 적량 혼합하고, 유화 후, 포유동물에 4-21일마다 수회 투여하는 것이 바람직하다. 또한, 감작항원 면역시에 적당한 담체를 사용할 수 있다.

이와 같이 면역하여, 혈청 중에 목적하는 항체 레벨이 상승하는 것을 확인한 후, 포유동물로부터 면역세포가 취출되어, 세포융합에 제공된다. 세포융합에 제공되는 바람직한 면역세포로서는, 특히 비장세포를 들 수 있다.

상기 면역세포와 융합되는 다른 쪽의 친세포로서의 포유동물의 골수종 세포(myeloma cell)는, 이미, 공지의 각종 세포주, 예를 들면, P3X63Ag8.653(Kearney, J. F. et al. J. Immunol. (1979) 123, 1548-1550), P3X63Ag8U.1(Current Topics in Microbiology and Immunology (1978) 81, 1-7), NS-1(Kohler. G. and Milstein, C. Eur. J. Immunol.(1976) 6, 511-519), MPC-11(Margulies. D. H. et al., Cell (1976) 8, 405-415), SP2/0(Shulman, M. et al., Nature (1978) 276, 269-270), FO(de St. Groth, S. F. et al., J. Immunol. Methods (1980) 35, 1-21), S194(Trowbridge, I. S. J. Exp. Med. (1978) 148, 313-323), R210(Galfre, G. et al., Nature (1979) 277, 131-133) 등이 적절히 사용된다.

상기 면역세포와 골수종 세포의 세포융합은 기본적으로는 공지의 방법, 예를 들면, 밀스테인등의 방법(Kohler. G. and Milstein, C., Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46) 등에 준하여 행할 수 있다.

보다 구체적으로는, 상기 세포융합은 예를 들면, 세포융합 촉진제의 존재하에 통상의 영양배양액 중에서 실시된다. 융합 촉진제로서는 예를 들면, 폴리에틸렌글리콜(PEG), 센다이 바이러스(HVJ) 등이 사용되고, 추가적으로 목적하는 바에 따라 융합효율을 높이기 위해 디메틸설폭시드 등의 보조제를 첨가해서 사용하는 것도 가능하다.

면역세포와 골수종 세포의 사용비율은, 예를 들면, 골수종 세포에 대해 면역세포를 1~10배로 하는 것이 바람직하다. 상기 세포융합에 사용하는 배양액으로서는, 예를 들면, 상기 골수종 세포주의 증식에 매우 적합한 RPMI1640 배양액, MEM 배양액, 기타, 이 종의 세포배양에 사용되는 통상의 배양액이 사용 가능하고, 또한, 소태아혈청(FCS) 등의 혈청 보액을 병용하는 것도 가능하다.

세포융합은, 상기 면역세포와 골수종 세포의 소정량을 상기 배양액 중에서 잘 혼합하고, 사전에, 37℃ 정도로 가온한 PEG 용액, 예를 들면, 평균 분자량 1000~6000 정도의 PEG 용액을 통상, 30~60%(w/v)의 농도로 첨가하고, 혼합함으로써 목적으로 하는 융합세포(하이브리도마)가 형성된다. 계속해서, 적당한 배양액을 축차 첨가하고, 원심하여 상청을 제거하는 조작을 반복함으로써 하이브리도마의 생육에 바람직하지 않은 세포융합제 등을 제거할 수 있다.

당해 하이브리도마는, 통상의 선택배양액, 예를 들면, HAT 배양액(하이포크산틴, 아미노프테린 및 티미딘을 포함하는 배양액)에서 배양함으로써 선택된다. 당해 HAT 배양액에서의 배양은, 목적으로 하는 하이브리도마 이외의 세포(비융합세포)가 사멸되기에 충분한 시간, 통상 수일~수주일 계속한다. 이어서, 통상의 한계희석법을 실시하여, 목적으로 하는 항체를 생산하는 하이브리도마의 스크리닝 및 클로닝이 행해진다.

또한, 인간 이외의 동물에 항원을 면역하여 상기 하이브리도마를 얻는 것 외에, 인간 림프구를 인 비트로(in vitro)에서 목적하는 항원 단백질 또는 항원 발현세포에서 감작하고, 감작 B림프구를 인간 골수종 세포, 예를 들면 U266과 융합시켜, 목적하는 항원 또는 항원 발현세포로의 결합활성을 갖는 목적하는 인간 항체를 얻는 것도 가능하다(일본국 특허공고 평1-59878 참조). 또한, 인간 항체 유전자의 레퍼토리를 갖는 형질전환 동물(transgenic animal)에 항원 또는 항원 발현세포를 투여하고, 전술한 방법에 따라 목적하는 인간 항체를 취득해도 된다(국제특허출원 공개번호 WO 93/12227, WO 92/03918, WO 94/02602, WO 94/25585, WO 96/34096, WO 96/33735 참조).

이와 같이 하여 제작되는 단일클론항체를 생산하는 하이브리도마는, 통상의 배양액 중에서 계대배양하는 것이 가능하며, 또한, 액체질소 중에서 장기 보존하는 것이 가능하다.

당해 하이브리도마로부터 단일클론항체를 취득하기 위해서는, 당해 하이브리도마를 통상의 방법에 따라 배양하고, 그 배양상청으로서 얻는 방법, 또는 하이브리도마를 이것과 적합성이 있는 포유동물에 투여하여 증식시키고, 그의 복수로서 얻는 방법 등이 채용된다. 전자의 방법은, 고순도의 항체를 얻기에 적합한 한편, 후자의 방법은, 항체의 대량생산에 적합하다.

예를 들면, 항IL-6 수용체 항체 생산 하이브리도마의 제작은, 일본국 특허공개 평3-139293에 개시된 방법에 의해 행할 수 있다. PM-1 항체 생산 하이브리도마를 BALB/c 마우스의 복강내에 주입하여 복수를 얻고, 이 복수로부터 PM-1 항체를 정제하는 방법이나, 본 하이브리도마를 적당한 배지, 예를 들면, 10% 소태아혈청, 5% BM-Condimed H1(Boehringer Mannheim제) 함유 RPMI1640 배지, 하이브리도마 SFM 배지(GIBCO-BRL제), PFHM-II 배지(GIBCO-BRL제) 등으로 배양하고, 그 배양상청으로부터 PM-1 항체를 정제하는 방법으로 행할 수 있다.

본 발명에는, 단일클론항체로서, 항체 유전자를 하이브리도마로부터 클로닝하고, 적당한 벡터에 삽입하여, 이것을 숙주에 도입하고, 유전자 재조합 기술을 사용하여 생산시킨 재조합형 항체를 사용할 수 있다(예를 들면, Borrebaeck C. A. K. and Larrick J. W. THERAPEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, Published in the United Kingdom by MACMILLAN PUBLISHERS LTD, 1990 참조).

구체적으로는, 목적으로 하는 항체를 생산하는 세포, 예를 들면 하이브리도마로부터, 항체의 가변(V)영역을 코드하는 mRNA를 단리한다. mRNA의 단리는, 공지의 방법, 예를 들면, 구아니딘 초원심법(Chirgwin, J. M. et al., Biochemistry (1979) 18, 5294-5299), AGPC법(Chomczynski, P. et al., Anal. Biochem. (1987)162, 156-159) 등에 의해 전RNA를 조제하고, mRNA Purification Kit (Pharmacia제) 등을 사용하여 mRNA를 조제한다. 또한, QuickPrep mRNA Purification Kit(Pharmacia제)를 사용함으로써 mRNA를 직접 조제할 수 있다.

얻어진 mRNA로부터 역전사효소를 사용하여 항체 V영역의 cDNA를 합성한다. cDNA의 합성은, AMV Reverse Transcriptase First-strand cDNA Synthesis Kit 등을 사용해서 행할 수 있다. 또한, cDNA의 합성 및 증폭을 행하기 위해서는 5'-Ampli FINDER RACE Kit(Clontech제) 및 PCR을 사용한 5'-RACE법(Frohman, M. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA(1988)85, 8998-9002;Belyavsky, A. et al., Nucleic Acids Res.(1989)17, 2919-2932)을 사용할 수 있다. 얻어진 PCR 산물로부터 목적으로 하는 DNA 단편을 정제하고, 벡터 DNA와 연결한다. 또한, 이것으로부터 재조합 벡터를 제작하고, 대장균 등에 도입하여 콜로니를 선택해서 목적하는 재조합 벡터를 조제한다. 목적으로 하는 DNA의 염기서열을 공지의 방법, 예를 들면, 데옥시법에 의해 확인한다.

목적으로 하는 항체의 V영역을 코드하는 DNA가 얻어지면, 이것을 목적하는 항체정상영역(C영역)을 코드하는 DNA와 연결하고, 이것을 발현 벡터로 삽입한다. 또는, 항체의 V영역을 코드하는 DNA를, 항체 C영역의 DNA를 포함하는 발현 벡터로 삽입해도 된다.

본 발명에서 사용되는 항체를 제조하기 위해서는, 후술하는 바와 같이 항체 유전자를 발현제어영역, 예를 들면, 인핸서, 프로모터의 제어하에서 발현하도록 발현 벡터에 삽입한다. 다음으로, 이 발현 벡터에 의해 숙주세포를 형질전환하여, 항체를 발현시킬 수 있다.

본 발명에서는, 인간에 대한 이종(異種) 항원성을 저하시키는 것 등을 목적으로 인위적으로 개변한 유전자 재조합형 항체, 예를 들면, 키메라(Chimeric) 항체, 인간화(Humanized) 항체 등을 사용할 수 있다. 이들의 개변항체는, 기지의 방법을 사용하여 제조할 수 있다.

키메라 항체는, 상기와 같이 하여 얻은 항체 V영역을 코드하는 DNA를 인간 항체 C영역을 코드하는 DNA와 연결하고, 이것을 발현 벡터에 삽입하여 숙주에 도입하고 생산시킴으로써 얻어진다(유럽 특허출원 공개번호 EP 125023, 국제특허출원 공개번호 WO 92-19759 참조). 이 기지의 방법을 사용하여, 본 발명에 유용한 키메라 항체를 얻을 수 있다.

인간화 항체는, 재구성(reshaped) 인간 항체 또는 인간형화 항체로도 칭해지고, 인간 이외의 포유동물, 예를 들면 마우스 항체의 상보성 결정영역(CDR)을 인간 항체의 상보성 결정영역으로 이식한 것으로, 그 일반적인 유전자 재조합 수법도 알려져 있다(유럽 특허출원 공개번호 EP 125023, 국제특허출원 공개번호 WO 92-19759 참조).

구체적으로는, 마우스 항체의 CDR과 인간 항체의 프레임워크영역(FR; framework region)을 연결하도록 설계한 DNA 서열을, 말단부에 오버랩되는 부분을 갖도록 제작한 수개의 올리고뉴클레오티드로부터 PCR법에 의해 합성한다. 얻어진 DNA를 인간 항체 C영역을 코드하는 DNA와 연결하고, 이어서 발현 벡터에 삽입하여, 이것을 숙주에 도입하고 생산시킴으로써 얻어진다(유럽 특허출원 공개번호 EP 239400, 국제특허출원 공개번호 WO 92-19759 참조).

CDR을 매개로 연결되는 인간 항체의 FR은, 상보성 결정영역이 양호한 항원결합부위를 형성하는 것이 선택된다. 필요에 따라, 재구성 인간 항체의 상보성 결정영역이 적절한 항원결합부위를 형성하도록 항체의 가변영역의 프레임워크영역의 아미노산을 치환해도 된다(Sato, K.et al., Cancer Res. (1993) 53, 851-856).

키메라 항체, 인간화 항체에는, 통상, 인간 항체의 C영역이 사용된다. 인간 항체 중쇄 C영역으로서는, Cγ 등을 들 수 있고, 예를 들면, Cγ1, Cγ2, Cγ3 또는 Cγ4를 사용할 수 있다. 인간 항체 경쇄 C영역으로서는, 예를 들면, κ 또는 λ를 들 수 있다. 또한, 항체 또는 그의 생산의 안정성을 개선하기 위해, 인간 항체 C영역을 수식해도 된다.

키메라 항체는 인간 이외의 포유동물 유래 항체의 가변영역과 인간 항체 유래의 C영역으로 되고, 또한 인간화 항체는 인간 이외의 포유동물 유래 항체의 상보성 결정영역과 인간 항체 유래의 프레임워크영역 및 C영역으로 되고, 이들은 인간 체내에 있어서의 항원성이 저하되어 있기 때문에, 의약품으로서 사용되는 항체로서 유용하다.

본 발명에 사용되는 인간화 항체의 바람직한 구체예로서는, 인간화 PM-1 항체를 들 수 있다(국제특허출원 공개번호 WO 92-19759 참조).

또한, 인간 항체의 취득방법으로서는 앞서 기술한 방법 외에, 인간 항체 라이브러리를 사용하여, 팬닝(panning)에 의해 인간 항체를 취득하는 기술도 알려져 있다. 예를 들면, 인간 항체의 가변영역을 단일쇄 항체(scFv)로서 파지 디스플레이법에 의해 파지의 표면에 발현시켜, 항원에 결합하는 파지를 선택하는 것도 가능하다. 선택된 파지의 유전자를 해석하면, 항원에 결합하는 인간 항체의 가변영역을 코드하는 DNA 서열을 결정할 수 있다. 항원에 결합하는 scFv의 DNA 서열이 명확해지면, 당해 서열을 포함하는 적당한 발현 벡터를 제작하여, 인간 항체를 취득할 수 있다. 이들 방법은 이미 주지이고, WO 92/01047, WO 92/20791, WO 93/06213, WO 93/11236, WO 93/19172, WO 95/01438, WO 95/15388을 참고로 할 수 있다.

상기와 같이 구축한 항체 유전자는, 공지의 방법으로 발현시킬 수 있다. 포유류세포를 사용한 경우, 상용되는 유용한 프로모터, 발현되는 항체 유전자, 그의 3'측 하류에 폴리 A 시그날을 기능적으로 결합시킨 DNA 또는 그것을 포함하는 벡터에 의해 발현시킬 수 있다. 예를 들면 프로모터/인핸서로서는, 인간 사이토메갈로바이러스 전기 프로모터/인핸서(human cytomegalovirus immediate early promoter/enhancer)를 들 수 있다.

또한, 그 밖에 본 발명에서 사용되는 항체 발현에 사용할 수 있는 프로모터/인핸서로서, 레트로바이러스, 폴리오마 바이러스, 아데노바이러스, 원숭이 바이러스 40(SV40) 등의 바이러스 프로모터/인핸서나 인간 연장인자(human elongation factor-1α)(HEF1α) 등의 포유류세포 유래의 프로모터/인핸서를 사용하면 된다.

예를 들면, SV40 프로모터/인핸서를 사용하는 경우, 멀리간등의 방법(Mulligan, R. C. et al., Nature (1979) 277, 108-114), 또한, HEF1α 프로모터/인핸서를 사용하는 경우, 미즈시마등의 방법(Mizushima, S. and Nagata, S. Nucleic Acids Res. (1990) 18, 5322)에 따르면 용이하게 실시할 수 있다.

숙주로서 원핵세포를 사용하는 경우, 세균세포를 사용하는 생산계가 있다. 세균세포로서는, 대장균(E. coli), 고초균이 알려져 있다.

대장균의 경우, 상용되는 유용한 프로모터, 항체 분비를 위한 시그날 서열, 발현시키는 항체 유전자를 기능적으로 결합시켜서 발현시킬 수 있다. 예를 들면, 프로모터로서는, lacZ 프로모터, araB 프로모터를 들 수 있다. lacZ 프로모터를 사용하는 경우, 워드등의 방법(Ward, E. S. et al., Nature (1989) 341, 544-546;Ward, E. S. et al. FASEB J. (1992) 6, 2422-2427), araB 프로모터를 사용하는 경우, 베터등의 방법(Better, M. et al. Science (1988) 240, 1041-1043)에 따르면 된다.

항체 분비를 위한 시그날 서열로서는, 대장균의 페리플라즘(periplasm)으로 생산시키는 경우, pelB 시그날 서열(Lei, S. P. et al J. Bacteriol. (1987) 169, 4379-4383)을 사용하면 된다. 페리플라즘으로 생산된 항체를 분리한 후, 항체의 구조를 적절히 리폴드(refold)해서 사용한다(예를 들면, WO96/30394를 참조).

복제 기원으로서는, SV40, 폴리오마 바이러스, 아데노 바이러스, 소유두종 바이러스(BPV) 등의 유래의 것을 사용할 수 있고, 또한, 숙주세포계에서 유전자 카피수 증폭을 위해, 발현 벡터는 선택 마커로서, 아미노글리코시드 포스포 트랜스페라아제(APH) 유전자, 티미딘 키나아제(TK) 유전자, 대장균 크산틴 구아닌 포스포리보실 트랜스페라아제(Ecogpt) 유전자, 디히드로 엽산 환원효소(dhfr) 유전자 등을 포함할 수 있다.

본 발명에서 사용되는 항체의 제조를 위해, 임의의 생산계를 사용할 수 있다. 항체 제조를 위한 생산계는, 인 비트로 및 인 비보의 생산계가 있다. 인 비트로의 생산계로서는, 진핵세포를 사용하는 생산계나 원핵세포를 사용하는 생산계를 들 수 있다.

숙주로서 진핵세포를 사용하는 경우, 동물세포, 식물세포, 또는 진균세포를 사용하는 생산계가 있다. 동물세포로서는, (1) 포유류세포, 예를 들면, CHO, COS, 골수종, BHK(baby hamster kidney), HeLa, Vero 등, (2) 양서류세포, 예를 들면, 아프리카발톱개구리 난모세포, 또는 (3) 곤충세포, 예를 들면, sf9, sf21, Tn5 등이 알려져 있다. 식물세포로서는, 니코티아나 타바쿰(Nicotiana tabacum) 유래의 세포가 알려져 있어, 이것을 캘러스 배양하면 된다. 진균세포로서는, 효모, 예를 들면, 사카로마이세스(Saccharomyces)속, 예를 들면 사카로마이세스 세레비시에(Saccharomyces cerevisaie), 사상균, 예를 들면 아스페르길루스(Aspergillus)속, 예를 들면 아스페르길루스 니거(Aspergillus niger) 등이 알려져 있다.

이들 세포에, 목적으로 하는 항체 유전자를 형질전환에 의해 도입하고, 형질전환된 세포를 인 비트로에서 배양함으로써 항체가 얻어진다. 배양은 공지의 방법에 따라 행한다. 예를 들면, 배양액으로서 DMEM, MEM, RPMI1640, IMDM을 사용할 수 있고, 소태아혈청(FCS) 등의 혈청 보액을 병용하는 것도 가능하다. 또한, 항체 유전자를 도입한 세포를 동물의 복강 등으로 옮김으로써, 인 비보에서 항체를 생산해도 된다.

한편, 인 비보의 생산계로서는, 동물을 사용하는 생산계나 식물을 사용하는 생산계를 들 수 있다. 동물을 사용하는 경우, 포유류동물, 곤충을 사용하는 생산계 등이 있다.

포유류동물로서는, 염소, 돼지, 양, 마우스, 소 등을 사용할 수 있다(Vicki Glaser, SPECTRUM Biotechnology Applications, 1993). 또한, 곤충으로서는, 누에를 사용할 수 있다. 식물을 사용하는 경우, 예를 들면 담배를 사용할 수 있다.

이들 동물 또는 식물에 항체 유전자를 도입하고, 동물 또는 식물의 체내에서 항체를 생산시켜서, 회수한다. 예를 들면, 항체 유전자를 염소 β카제인과 같은 유즙 중에 고유하게 생산되는 단백질을 코드하는 유전자의 도중에 삽입하여 융합 유전자로서 조제한다. 항체 유전자가 삽입된 융합 유전자를 포함하는 DNA 단편을 염소의 배(胚)로 주입하고, 이 배를 암컷 염소에 도입한다. 배를 수용한 염소로부터 태어나는 형질전환 염소 또는 그의 자손이 생산하는 유즙으로부터 목적하는 항체를 얻는다. 형질전환 염소로부터 생산되는 목적하는 항체를 포함하는 유즙량을 증가시키기 위해, 적절히 호르몬을 형질전환 염소에 사용해도 된다(Ebert, K.M. et al., Bio/Technology (1994) 12, 699-702).

또한, 누에를 사용하는 경우, 목적의 항체 유전자를 삽입한 베큘로바이러스를 누에에 감염시키고, 이 누에의 체액으로부터 목적하는 항체를 얻는다(Maeda, S. et al., Nature (1985) 315, 592-594). 또한, 담배를 사용하는 경우, 목적의 항체 유전자를 식물 발현용 벡터, 예를 들면 pMON530에 삽입하고, 이 벡터를 아그로박테리움 투메파시엔스(Agrobacterium tumefaciens)와 같은 박테리아에 도입한다. 이 박테리아를 담배, 예를 들면 니코티아나 타바쿰(Nicotiana tabacum)에 감염시키고, 본 담배의 잎으로부터 목적하는 항체를 얻는다(Julian, K.-C. Ma et al., Eur. J. Immunol.(1994)24, 131-138).

전술한 바와 같이 인 비트로 또는 인 비보의 생산계에서 항체를 생산하는 경우, 항체 중쇄(H쇄) 또는 경쇄(L쇄)를 코드하는 DNA를 따로 따로 발현 벡터에 삽입하고 숙주를 동시 형질전환시켜도 되고, 또는 H쇄 및 L쇄를 코드하는 DNA를 단일 발현 벡터에 삽입하고, 숙주를 형질전환시켜도 된다(국제특허출원 공개번호 WO 94-11523 참조).

본 발명에서 사용되는 항체는, 본 발명에 매우 적합하게 사용될 수 있는 한, 항체의 단편이나 그의 수식물이어도 된다. 예를 들면, 항체의 단편으로서는, Fab, F(ab')2, Fv 또는 H쇄와 L쇄의 Fv를 적당한 링커로 연결시킨 싱글 체인 Fv(scFv)를 들 수 있다.

구체적으로는, 항체를 효소, 예를 들면, 파파인, 펩신으로 처리하여 항체 단편을 생산시키거나, 또는, 이들 항체 단편을 코드하는 유전자를 구축하고, 이를 발현 벡터에 도입한 후, 적당한 숙주세포에서 발현시킨다(예를 들면, Co, M.S. et al., J. Immunol. (1994) 152, 2968-2976, Better, M. & Horwitz, A. H. Methods in Enzymology (1989) 178, 476-496, Plueckthun, A. & Skerra, A. Methods in Enzymology (1989) 178, 497-515, Lamoyi, E., Methods in Enzymology (1989) 121, 652-663, Rousseaux, J. et al., Methods in Enzymology (1989) 121, 663-66, Bird, R. E. et al., TIBTECH (1991) 9, 132-137 참조).

scFv는 항체의 H쇄 V영역과 L쇄 V영역을 연결함으로써 얻어진다. 이 scFv에 있어서, H쇄 V영역과 L쇄 V영역은 링커, 바람직하게는 펩티드 링커를 매개로 연결된다(Huston, J. S. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. (1988) 85, 5879-5883). scFv에 있어서의 H쇄 V영역 및 L쇄 V영역은, 상기 항체로서 기재된 것 중 어느 유래여도 된다. V영역을 연결하는 펩티드 링커로서는, 예를 들면, 아미노산 12-19 잔기로 되는 임의의 단일쇄 펩티드가 사용된다.

scFv를 코드하는 DNA는, 상기 항체의 H쇄, 또는 H쇄 V영역을 코드하는 DNA, 및 L쇄 또는, L쇄 V영역을 코드하는 DNA를 주형으로 하고, 그들 서열 중 목적하는 아미노산 서열을 코드하는 DNA 부분을, 그 양단을 규정하는 프라이머쌍을 사용하여 PCR법에 의해 증폭하고, 이어서, 추가적으로 펩티드 링커 부분을 코드하는 DNA 및 그 양단을 각각 H쇄, L쇄와 연결되도록 규정하는 프라이머쌍을 조합하여 증폭함으로써 얻어진다.

또한, 일단 scFv를 코드하는 DNA가 제작되면, 그들을 함유하는 발현 벡터, 및 그 발현 벡터에 의해 형질전환된 숙주를 통상의 방법에 따라 얻을 수 있으며, 또한, 그 숙주를 사용하여 통상의 방법에 따라, scFv를 얻을 수 있다.

이들 항체의 단편은, 상기와 동일하게 하여 그 유전자를 취득하여 발현시키고, 숙주에 의해 생산시킬 수 있다. 본 발명에서 말하는 「항체」에는 이들 항체의 단편도 포함된다.

항체의 수식물로서, 폴리에틸렌글리콜(PEG) 등의 각종 분자와 결합한 항체를 사용하는 것도 가능하다. 본 발명에서 말하는 「항체」에는 이들 항체 수식물도 포함된다. 이러한 항체 수식물을 얻는 데 있어서는, 얻어진 항체에 화학적인 수식을 행함으로써 얻을 수 있다. 이들 방법은 이 분야에 있어서 이미 확립되어 있다.

상기와 같이 생산, 발현된 항체는, 세포 내외, 숙주로부터 분리하여 균일하게까지 정제할 수 있다. 본 발명에서 사용되는 항체의 분리, 정제는 친화성 크로마토그래피(affinity chromatography)에 의해 행할 수 있다. 친화성 크로마토그래피에 사용하는 칼럼으로서는, 예를 들면, 프로테인 A 칼럼, 프로테인 G 칼럼을 들 수 있다. 프로테인 A 칼럼에 사용하는 담체로서, 예를 들면, HyperD, POROS, SepharoseF.F. 등을 들 수 있다. 그 밖에, 통상의 단백질에서 사용되고 있는 분리, 정제방법을 사용하면 되고, 조금도 한정되는 것은 아니다.

예를 들면, 상기 친화성 크로마토그래피 이외의 크로마토그래피, 필터, 한외여과, 염석, 투석 등을 적절히 선택, 조합하면, 본 발명에서 사용되는 항체를 분리, 정제할 수 있다. 크로마토그래피로서는, 예를 들면, 이온 교환 크로마토그래피, 소수 크로마토그래피, 겔여과 등을 들 수 있다. 이들 크로마토그래피는 HPLC(Hight performance liquid chromatography)에 적용할 수 있다. 또한, 역상 HPLC(reverse phase HPLC)를 사용해도 된다.

상기에서 얻어진 항체의 농도측정은 흡광도의 측정 또는 ELISA 등에 의해 행할 수 있다. 즉, 흡광도의 측정에 의한 경우에는, PBS(-)로 적당히 희석한 후, 280 nm의 흡광도를 측정하여, 1 ㎎/㎖를 1.35OD로서 산출한다. 또한, ELISA에 의한 경우는 이하와 같이 측정할 수 있다. 즉, 0.1M 중탄산완충액(pH 9.6)으로 1 ㎍/㎖로 희석한 염소 항인간 IgG(TAG제) 100 ㎕를 96웰 플레이트(Nunc제)에 첨가하고, 4℃에서 하룻밤 인큐베이션하여, 항체를 고상화한다. 블로킹 후, 적절히 희석한 본 발명에서 사용되는 항체 또는 항체를 포함하는 샘플, 또는 표품으로서 인간 IgG(CAPPEL제) 100 ㎕를 첨가하고, 실온에서 1시간 인큐베이션한다.

세정 후, 5000배 희석한 알칼리포스파타아제 표지 항인간 IgG(BIO SOURCE제) 100 ㎕를 첨가하고, 실온에서 1시간 인큐베이트한다. 세정 후, 기질용액을 첨가하여 인큐베이션 후, MICROPLATE READER Model 3550(Bio-Rad제)을 사용해 405 nm에서의 흡광도를 측정하여, 목적의 항체의 농도를 산출한다.

항IL-6 항체의 구체적인 예로서는, 특별히 한정되지 않으나, MH166(Matsuda, T. et al., Eur. J. Immunol. (1998) 18, 951-956)이나 SK2 항체(Sato K et al., 제21회 일본면역학회총회, 학술기록(1991) 21, 166) 등을 들 수 있다.

항IL-6 수용체 항체의 구체적인 예로서는, 특별히 한정되지 않으나, MR16-1 항체(Tamura, T. et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1993) 90, 11924-11928), PM-1 항체(Hirata, Y. et al., J. Immunol. (1989) 143, 2900-2906), AUK12-20 항체, AUK64-7 항체 또는 AUK146-15 항체(국제특허출원 공개번호 WO 92-19759) 등을 들 수 있다. 이들 중에서, 인간 IL-6 수용체에 대한 바람직한 단일클론항체로서는 PM-1 항체가 예시되고, 또한 마우스 IL-6 수용체에 대한 바람직한 단일클론항체로서는 MR16-1 항체를 들 수 있으나, 이것에 한정되지 않는다. 또한, 인간화 항IL-6 수용체 항체의 바람직한 예로서는, 인간화 PM-1 항체(Tocilizumab, MRA)를 들 수 있다. 인간화 항IL-6 수용체 항체의 다른 바람직한 예로서는 WO2009/041621에 기재된 항체를 들 수 있다. 또한, 항IL-6 수용체 항체의 다른 바람직한 태양으로서, 인간화 PM-1 항체(Tocilizumab, MRA)가 인식하는 에피토프와 동일한 에피토프를 인식하는 항IL-6 수용체 항체를 들 수 있다.

항gp130 항체의 구체적인 예로서는, 특별히 한정되지 않으나, AM64 항체(일본 공개공보 특개평3-219894), 4B11 항체, 2H4 항체(미국 특허공보 US5571513), B-P8 항체(일본 공개공보 특개평8-291199) 등을 들 수 있다.

본 발명에서 사용되는 IL-6 개변체는, IL-6 수용체와의 결합활성을 가지며, 또한 IL-6의 생물학적 활성을 전달하지 않는 물질이다. 즉, IL-6 개변체는 IL-6 수용체에 대해 IL-6와 경합적으로 결합하나, IL-6의 생물학적 활성을 전달하지 않기 때문에, IL-6에 의한 시그날 전달을 차단한다.

IL-6 개변체는, IL-6의 아미노산 서열의 아미노산 잔기를 치환함으로써 변이를 도입하여 제작된다. IL-6 개변체의 기초가 되는 IL-6는 그 유래를 묻지 않으나, 항원성 등을 고려하면, 바람직하게는 인간 IL-6이다. 구체적으로는, IL-6의 아미노산 서열을 공지의 분자 모델링 프로그램, 예를 들면, WHATIF(Vriend et al., J. Mol. Graphics (1990) 8, 52-56)를 사용하여 그의 2차구조를 예측하고, 추가적으로 치환되는 아미노산 잔기의 전체에 미치는 영향을 평가함으로써 얻어진다. 적절한 치환 아미노산 잔기를 결정한 후, 인간 IL-6 유전자를 코드하는 염기서열을 포함하는 벡터를 주형으로 하여, 통상 행해지는 PCR법에 의해 아미노산이 치환되도록 변이를 도입함으로써, IL-6 개변체를 코드하는 유전자가 얻어진다. 이것을 필요에 따라 적당한 발현 벡터에 삽입하고, 상기 재조합형 항체의 발현, 생산 및 정제방법에 준하여 IL-6 개변체를 얻을 수 있다.

IL-6 개변체의 구체예로서는, Brakenhoff et al., J. Biol. Chem. (1994) 269, 86-93, 및 Savino et al., EMBO J. (1994) 13, 1357-1367, WO 96-18648, WO96-17869에 개시되어 있는 IL-6 개변체를 들 수 있다.

IL-6 수용체 부분 펩티드는 IL-6 수용체의 아미노산 서열에 있어서 IL-6와 IL-6 수용체의 결합에 관여하는 영역의 일부 또는 전부의 아미노산 서열로 되는 펩티드이다. 이러한 펩티드는, 통상 10~80, 바람직하게는 20~50, 보다 바람직하게는 20~40개의 아미노산 잔기로 된다.

IL-6 수용체 부분 펩티드는 IL-6 수용체의 아미노산 서열에 있어서, IL-6와 IL-6 수용체의 결합에 관여하는 영역을 특정하고, 그 특정한 영역의 일부 또는 전부의 아미노산 서열을 토대로 통상 알려지는 방법, 예를 들면 유전자 공학적 수법 또는 펩티드 합성법에 의해 제작할 수 있다.

IL-6 수용체 부분 펩티드를 유전자 공학적 수법에 의해 제작하는 데 있어서는, 목적하는 펩티드를 코드하는 DNA 서열을 발현 벡터에 삽입하고, 상기 재조합형 항체의 발현, 생산 및 정제방법에 준하여 얻을 수 있다.

IL-6 수용체 부분 펩티드를 펩티드 합성법에 의해 제작하는 데 있어서는, 펩티드 합성에 있어서 통상 사용되고 있는 방법, 예를 들면 고상 합성법 또는 액상 합성법을 사용할 수 있다.

구체적으로는, 속의약품의 개발 제14권 펩티드 합성 감수 야지마 하루아키 히로카와서점 1991년에 기재된 방법에 준하여 행하면 된다. 고상 합성법으로서는, 예를 들면 유기용매에 불용성인 지지체에 합성하고자 하는 펩티드의 C 말단에 대응하는 아미노산을 결합시키고, α-아미노기 및 측쇄 관능기를 적절한 보호기로 보호한 아미노산을 C 말단으로부터 N 말단방향의 순번으로 1 아미노산씩 축합시키는 반응과 수지 상에 결합한 아미노산 또는 펩티드의 α-아미노기의 그 보호기를 이탈시키는 반응을 번갈아 반복함으로써, 펩티드 가닥(peptide strand)을 신장시키는 방법이 사용된다. 고상 펩티드 합성법은, 사용되는 보호기의 종류에 따라 Boc법과 Fmoc법으로 크게 나뉜다.

이와 같이 하여 목적으로 하는 펩티드를 합성한 후, 탈보호반응 및 펩티드 사슬의 지지체로부터의 절단반응을 한다. 펩티드 사슬과의 절단반응에는, Boc법에서는 불화수소 또는 트리플루오로메탄설폰산을, 또한 Fmoc법에서는 TFA를 통상 사용할 수 있다. Boc법에서는, 예를 들면 불화수소 중에서 상기 보호 펩티드 수지를 아니솔 존재하에서 처리한다. 이어서, 보호기의 이탈과 지지체로부터의 절단을 행하여 펩티드를 회수한다. 이것을 동결건조함으로써, 조펩티드(crude peptide)가 얻어진다. 한편, Fmoc법에서는, 예를 들면 TFA 중에서 상기와 동일한 조작으로 탈보호반응 및 펩티드 사슬의 지지체로부터의 절단반응을 행할 수 있다.

얻어진 조펩티드는, HPLC에 적용함으로써 분리, 정제할 수 있다. 그 용출하는 데 있어서, 단백질의 정제에 통상 사용되는 물-아세토니트릴계 용매를 사용하여 최적 조건하에서 행하면 된다. 얻어진 크로마토그래피의 프로파일의 피크에 해당하는 분획을 분취하고, 이것을 동결건조한다. 이와 같이 하여 정제한 펩티드 분획에 대해서, 질량 스펙트럼 분석에 의한 분자량 해석, 아미노산 조성 분석, 또는 아미노산 서열 해석 등에 의해 동정한다.

본 발명의 IL-6 저해제는 신경침윤의 억제에 사용하는 것이 가능하다. 본 발명에 있어서 「신경침윤」이란, 암세포 기타 세포가 신경조직으로 침입하여 발육하는 양식으로, 조직파괴(파괴성 발육) 등을 수반하는 경우도 있다. 본 발명에 있어서 바람직한 신경침윤으로서, 암세포의 신경침윤을 들 수 있다. 암세포의 침윤을 억제하는 경우, 대상이 되는 암종은 특별히 한정되지 않고, 췌장암, 위암, 전립선암, 두경부암, 유방암, 폐암, 대장암, 난소암 등 어떠한 암종이어도 되나, 췌장암 세포의 침윤을 억제하는 것이 바람직하다. 신경침윤의 억제는 말초측으로의 신경침윤의 억제여도, 중추측으로의 신경침윤의 억제여도 어느 쪽이어도 되나, 췌장암 세포가 중추측에 신경침윤하는 경향이 있는 것으로부터, 중추측으로의 신경침윤(예를 들면, 신경 손상 부위로부터 중추측으로의 신경침윤)을 억제하는 것이 바람직하다.

본 발명에 있어서, 「신경침윤의 억제」란, 신경침윤의 발생의 억제, 신경침윤의 발생률의 저하, 신경침윤거리의 단축, 신경침윤속도의 지연 등을 의미한다.

본 발명의 IL-6 저해제에 의해 신경침윤을 억제함으로써, 신경침윤에 수반되는 제증상(예를 들면, 암성 동통 등의 통증, 빈혈, performans status(PS)의 저하, 저영양, 등)을 치료, 억제하는 것이 가능하다. 따라서, 본 발명에는 IL-6 저해제를 포함하는 신경침윤에 수반되는 제증상의 치료제, 억제제도 포함된다.

본 발명의 췌장암 치료제는, 췌장암의 치료 및/또는 예방에 있어서 사용하는 것이 가능하다.

본 발명에 있어서 「췌장암 치료」란, 췌장암의 발생의 억제, 췌장암의 발생률의 저하, 췌장암 세포의 증식의 억제, 췌장암 조직의 축소, 췌장암의 증상의 개선, 췌장암의 전이의 억제 등을 의미한다.

본 발명에서 사용되는 IL-6 저해제의 효과는, 예를 들면 시그날 전달 저해활성을 지표로서 평가할 수 있는데 이것에 한정되지 않는다. IL-6 저해제의 시그날 전달 저해활성은, 통상 사용되는 방법에 의해 평가할 수 있다. 구체적으로는, IL-6 의존성 인간 골수종주(S6B45, KPMM2), 인간 렌네르트 T 림프종 세포주(human Lennert T lymphoma cell line) KT3, 또는 IL-6 의존성 세포 MH60.BSF2를 배양하여, 이것에 IL-6를 첨가하고, 동시에 IL-6 저해제를 공존시킴으로써 IL-6 의존성 세포의 ³H-티미딘 흡수(³H-thymidine uptake)를 측정하면 된다. 또한, IL-6 수용체 발현 세포인 U266을 배양하여, ¹²⁵I 표지 IL-6를 첨가하고, 동시에 IL-6 저해제를 첨가함으로써, IL-6 수용체 발현 세포에 결합한 ¹²⁵I 표지 IL-6를 측정한다. 상기 어세이계에 있어서, IL-6 저해제를 존재시키는 군에 더하여 IL-6 저해제를 포함하지 않는 음성 대조군을 두어, 양자에서 얻어진 결과를 비교하면 IL-6 저해제의 IL-6 저해활성을 평가할 수 있다.

본 발명의 치료제 또는 억제제가 투여되는 대상은 포유동물이다. 포유동물은, 바람직하게는 인간이다.

본 발명의 치료제 또는 억제제는, 의약품의 형태로 투여하는 것이 가능하고, 경구적 또는 비경구적으로 전신 또는 국소적으로 투여할 수 있다. 예를 들면, 점적 등의 정맥내 주사, 근육내 주사, 복강내 주사, 피하 주사, 좌약, 관장, 경구성 장용제 등을 선택할 수 있고, 환자의 연령, 증상에 따라 적절히 투여방법을 선택할 수 있다. 유효 투여량은, 1회에 체중 1 ㎏당 0.01 ㎎~100 ㎎의 범위에서 선택된다. 또는, 환자당 1~1000 ㎎, 바람직하게는 5~50 ㎎의 투여량을 선택할 수 있다. 바람직한 투여량, 투여방법은, 예를 들면 항IL-6 수용체 항체의 경우에는, 혈중에 프리 항체가 존재하는 정도의 양이 유효 투여량이고, 구체적인 예로서는, 체중 1 ㎏당 1개월(4주간)에 0.5 ㎎~40 ㎎, 바람직하게는 1 ㎎~20 ㎎을, 1회에서 수회로 나눠, 예를 들면 2회/주, 1회/주, 1회/2주, 1회/4주 등의 투여 스케쥴로 점적 등의 정맥내 주사, 피하 주사 등의 방법으로, 투여하는 방법이다. 투여 스케쥴은, 환자의 상태의 관찰 및 혈액 검사치의 동향을 관찰하면서 2회/주 또는 1회/주에서 1회/2주, 1회/3주, 1회/4주와 같이 투여 간격을 늘려 가는 등 조정하는 것도 가능하다.

본 발명의 치료제 또는 억제제에는, 보존제나 안정제 등의 제제상 허용 가능한 담체가 첨가되어 있어도 된다. 제제상 허용 가능한 담체란, 상기의 약제와 함께 투여 가능한 재료를 의미한다. 제제상 허용되는 재료로서는, 예를 들면, 멸균수나 생리식염수, 안정제, 부형제, 완충제, 방부제, 계면활성제, 킬레이트제(EDTA 등), 결합제 등을 들 수 있다.

본 발명에 있어서, 계면활성제로서 비이온 계면활성제를 들 수 있고, 예를 들면, 소르비탄 모노카프릴레이트, 소르비탄 모노라우레이트, 소르비탄 모노팔미테이트 등의 소르비탄 지방산 에스테르; 글리세린 모노카프릴레이트, 글리세린 모노미리스테이트, 글리세린 모노스테아레이트 등의 글리세린 지방산 에스테르; 데카글리세릴 모노스테아레이트, 데카글리세릴 디스테아레이트, 데카글리세릴 모노리놀레이트 등의 폴리글리세린 지방산 에스테르; 폴리옥시에틸렌 소르비탄 모노라우레이트, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 모노올레에이트, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 모노스테아레이트, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 모노팔미테이트, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 트리올레에이트, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 트리스테아레이트 등의 폴리옥시에틸렌 소르비탄 지방산 에스테르; 폴리옥시에틸렌 소르비트 테트라스테아레이트, 폴리옥시에틸렌 소르비트 테트라올레에이트 등의 폴리옥시에틸렌 소르비트 지방산 에스테르; 폴리옥시에틸렌 글리세릴 모노스테아레이트 등의 폴리옥시에틸렌 글리세린 지방산 에스테르; 폴리에틸렌글리콜디스아레이트 등의 폴리에틸렌글리콜 지방산 에스테르; 폴리옥시에틸렌라우릴에테르 등의 폴리옥시에틸렌알킬에테르; 폴리옥시에틸렌폴리옥시프로필렌글리콜, 폴리옥시에틸렌폴리옥시프로필렌프로필에테르, 폴리옥시에틸렌폴리옥시프로필렌세틸에테르 등의 폴리옥시에틸렌폴리옥시프로필렌알킬에테르; 폴리옥시에틸렌노닐페닐에테르 등의 폴리옥시에틸렌알킬페닐에테르; 폴리옥시에틸렌 피마자유, 폴리옥시에틸렌 경화 피마자유(폴리옥시에틸렌 수소 피마자유) 등의 폴리옥시에틸렌 경화 피마자유; 폴리옥시에틸렌 소르비트 밀랍 등의 폴리옥시에틸렌 밀랍 유도체; 폴리옥시에틸렌라놀린 등의 폴리옥시에틸렌라놀린 유도체; 폴리옥시에틸렌스테아린산아미드 등의 폴리옥시에틸렌 지방산 아미드 등의 HLB6~18을 갖는 것 등을 전형적 예로서 들 수 있다.

또한, 계면활성제로서는 음이온 계면활성제도 들 수 있고, 예를 들면 세틸황산나트륨, 라우릴황산나트륨, 올레일황산나트륨 등의 탄소원자수 10~18의 알킬기를 갖는 알킬 황산염; 폴리옥시에틸렌라우릴황산나트륨 등의, 에틸렌옥시드의 평균 부가 몰수가 2~4이고 알킬기의 탄소원자수가 10~18인 폴리옥시에틸렌알킬에테르 황산염; 라우릴설포숙신산에스테르나트륨 등의, 알킬기의 탄소원자수가 8~18인 알킬설포숙신산 에스테르염; 천연계의 계면활성제, 예를 들면 레시틴, 글리세로인지질; 스핑고미엘린 등의 스핑고인지질; 탄소원자수 12~18의 지방산의 수크로오스 지방산 에스테르 등을 전형적 예로서 들 수 있다.

본 발명의 약제에는, 이들 계면활성제의 1종 또는 2종 이상을 조합해서 첨가할 수 있다. 본 발명의 제제에서 사용하는 바람직한 계면활성제는, 폴리소르베이트 20, 40, 60 또는 80 등의 폴리옥시에틸렌 소르비탄 지방산 에스테르이고, 폴리소르베이트 20 및 80이 특히 바람직하다. 또한, 폴록사머(플루로닉 F-68(등록상표) 등)로 대표되는 폴리옥시에틸렌폴리옥시프로필렌글리콜도 바람직하다.

계면활성제의 첨가량은 사용하는 계면활성제의 종류에 따라 상이하나, 폴리소르베이트 20 또는 폴리소르베이트 80의 경우에서는, 일반적으로는 0.001~100 ㎎/mL이고, 바람직하게는 0.003~50 ㎎/mL이며, 더욱 바람직하게는 0.005~2 ㎎/mL이다.

본 발명에 있어서 완충제로서는, 인산, 구연산 완충액, 초산, 말산, 타르타르산, 숙신산, 락트산, 인산칼륨, 글루콘산, 카프릴산, 데옥시콜산, 살리실산, 트리에탄올아민, 푸마르산 등 다른 유기산 등, 또는 탄산 완충액, 트리스 완충액, 히스티딘 완충액, 이미다졸 완충액 등을 들 수 있다.

또한 용액 제제의 분야에서 공지인 수성 완충액에 용해함으로써 용액 제제를 조제해도 된다. 완충액의 농도는 일반적으로는 1~500 mM이고, 바람직하게는 5~100 mM이며, 더욱 바람직하게는 10~20 mM이다.

또한, 본 발명의 약제는, 기타 저분자량의 폴리펩티드, 혈청 알부민, 젤라틴이나 면역글로불린 등의 단백질, 아미노산, 다당 및 단당 등의 당류나 탄수화물, 당알코올을 포함하고 있어도 된다.

본 발명에 있어서 아미노산으로서는, 염기성 아미노산, 예를 들면 아르기닌, 리신, 히스티딘, 오르니틴 등, 또는 이들 아미노산의 무기염(바람직하게는, 염산염, 인산염의 형태, 즉 인산아미노산)을 들 수 있다. 유리(遊離) 아미노산이 사용되는 경우, 바람직한 pH값은, 적당한 생리적으로 허용되는 완충물질, 예를 들면 무기산, 특히 염산, 인산, 황산, 초산, 포름산 또는 이들의 염의 첨가에 의해 조정된다. 이 경우, 인산염의 사용은, 특히 안정한 동결건조물이 얻어지는 점에서 특히 유리하다. 조제물이 유기산, 예를 들면 말산, 타르타르산, 구연산, 숙신산, 푸마르산 등을 실질적으로 함유하지 않는 경우 또는 대응하는 음이온(말산 이온, 타르타르산 이온, 구연산 이온, 숙신산 이온, 푸마르산 이온 등)이 존재하지 않는 경우에, 특히 유리하다. 바람직한 아미노산은 아르기닌, 리신, 히스티딘, 또는 오르니틴이다. 추가적으로, 산성 아미노산, 예를 들면 글루타민산 및 아스파라긴산, 및 그의 염의 형태(바람직하게는 나트륨염) 또는 중성 아미노산, 예를 들면 이소류신, 류신, 글리신, 세린, 트레오닌, 발린, 메티오닌, 시스테인, 또는 알라닌, 또는 방향족 아미노산, 예를 들면 페닐알라닌, 티로신, 트립토판, 또는 유도체의 N-아세틸트립토판을 사용하는 것도 가능하다.

본 발명에 있어서, 다당 및 단당 등의 종류나 탄수화물로서는, 예를 들면, 덱스트란, 글루코오스, 프룩토오스, 락토오스, 크실로오스, 만노오스, 말토오스, 수크로오스, 트레할로오스, 라피노오스 등을 들 수 있다.

본 발명에 있어서, 당알코올로서는, 예를 들면 만니톨, 소르비톨, 이노시톨 등을 들 수 있다.

본 발명의 약제를 주사용 수용액으로 하는 경우에는, 예를 들면 생리식염수, 포도당이나 기타 보조제(예를 들면, D-소르비톨, D-만노오스, D-만니톨, 염화나트륨)를 포함하는 등장액과 혼합할 수 있다. 또한 그 수용액은, 적당한 용해 보조제(예를 들면, 알코올(에탄올 등), 폴리알코올(프로필렌글리콜, PEG 등), 비이온성 계면활성제(폴리소르베이트 80, HCO-50) 등)와 병용해도 된다.

목적하는 바에 따라 추가적으로 희석제, 용해 보조제, pH 조정제, 무통화제, 황 함유 환원제, 산화방지제 등을 함유해도 된다.

본 발명에 있어서, 황 함유 환원제로서는, 예를 들면, N-아세틸시스테인, N-아세틸호모시스테인, 티옥트산, 티오디글리콜, 티오에탄올아민, 티오글리세롤, 티오소르비톨, 티오글리콜산 및 그의 염, 티오황산나트륨, 글루타티온, 및 탄소원자수 1~7의 티오알칸산 등의 설푸히드릴기를 갖는 것 등을 들 수 있다.

또한, 본 발명에 있어서 산화방지제로서는, 예를 들면, 에리소르빈산, 디부틸히드록시톨루엔, 부틸히드록시아니솔, α-토코페롤, 초산토코페롤, L-아스코르빈산 및 그의 염, L-아스코르빈산 팔미테이트, L-아스코르빈산 스테아레이트, 아황산수소나트륨, 아황산나트륨, 몰식자산 트리아밀, 몰식자산 프로필 또는 에틸렌디아민 사초산 이나트륨(EDTA), 피로인산나트륨, 메타인산나트륨 등의 킬레이트제를 들 수 있다.

또한, 필요에 따라, 마이크로캡슐(히드록시메틸셀룰로오스, 젤라틴, 폴리[메틸메타크릴산] 등의 마이크로캡슐)에 봉입하거나, 콜로이드 드러그 딜리버리 시스템(리포솜, 알부민 마이크로스피어, 마이크로에멀젼, 나노입자 및 나노캡슐 등)으로 하는 것도 가능하다("Remington's Pharmaceutical Science 16^th edition", Oslo Ed., 1980 등 참조). 또한, 약제를 서방성의 약제로 하는 방법도 공지로, 본 발명에 적용 가능하다(Langer et al., J.Biomed.Mater.Res. 1981, 15: 167-277; Langer, Chem. Tech. 1982, 12: 98-105;미국 특허 제3,773,919호; 유럽 특허출원 공개(EP) 제58,481호; Sidman et al., Biopolymers 1983, 22: 547-556;EP 제133,988호).

사용되는 제제상 허용 가능한 담체는, 제형에 따라 상기 중에서 적절히 또는 조합하여 선택되나, 이들에 한정되는 것은 아니다.

본 발명은, IL-6 저해제를, 신경침윤이 발증한 대상 또는 발증할 가능성이 있는 대상에 투여하는 공정을 포함하는, 대상에 있어서 신경침윤을 억제하는 방법에 관한 것이다.

또한, 본 발명은 IL-6 저해제를, 췌장암을 발증한 대상 또는 발증할 가능성이 있는 대상에 투여하는 공정을 포함하는, 대상에 있어서 췌장암을 치료 및/또는 예방하는 방법에 관한 것이다.

본 발명에 있어서, 「대상」이란, 본 발명의 치료제 또는 억제제를 투여하는 생물체, 그 생물체의 체내의 일부분을 말한다. 생물체는, 특별히 한정되는 것은 아니나, 동물(예를 들면, 인간, 가축동물종, 야생동물)을 포함한다.

또한, 「생물체의 체내의 일부분」에 대해서는 특별히 한정되지 않으나, 바람직하게는 질환부위 등을 들 수 있다.

본 발명에 있어서, 「투여한다」는 것은, 경구적, 또는 비경구적으로 투여하는 것이 포함된다. 경구적인 투여로서는, 경구제라는 형태로의 투여를 들 수 있고, 경구제로서는, 과립제, 산제, 정제, 캡슐제, 용제, 유제, 또는 현탁제 등의 제형을 선택할 수있다.

비경구적인 투여로서는, 주사제라는 형태로의 투여를 들 수 있고, 주사제로서는, 피하 주사제, 근육 주사제, 또는 복강내 주사제 등을 들 수 있다. 또한, 투여해야 하는 올리고뉴클레오티드를 포함하는 유전자를 유전자 치료의 수법을 사용하여 생체에 도입함으로써, 본 발명의 방법의 효과를 달성할 수 있다. 또한, 본 발명의 약제를, 처치를 행하고자 하는 영역에 국소적으로 투여하는 것도 가능하다. 예를 들면, 수술중의 국소 주입, 카테터의 사용, 또는 본 발명의 펩티드를 코드하는 DNA의 표적화 유전자 송달에 의해 투여하는 것도 가능하다.

본 발명의 방법을 실천할 때, 본 발명의 약제는, 하나 이상의 다른 약제(예를 들면, 다른 신경침윤 억제제나 다른 췌장암 치료제)와 함께 약학적 조성물의 일부로서 투여되어도 된다. 하나의 태양에 있어서, 본 발명의 약제 및 다른 약제는, 실질적으로 동시에 투여되어도 된다.

또한, 본 명세서에 있어서 인용된 모든 선행기술문헌은, 참조로써 본 명세서에 포함된다.

실시예

본 발명을 실시예에 의해 보다 더욱 상세하게 설명하나, 본 발명은 이것에 한정되지 않는다. 각종 변경, 수식이 당업자에게는 가능하고, 이들 변경, 수식도 본 발명에 포함된다.

<재료와 방법>

세포

인간 췌장암 세포주인 Capan-1, BxPC-3를 American Type Culture Collection (ATCC)으로부터 구입하고, ATCC가 추천·장려하는 매뉴얼에 따라, 배양 및 계대를 37도에서 5% CO₂의 조건을 유지할 수 있는 항온조를 사용해서 행하였다.

세포수 계측

세포를 디시로부터 채취하여, 트리판블루(trypan blue) 및 혈구계측반(hemocytometer)을 사용해서 생세포를 계측하였다.

Chemotaxis assay

바닥면에 8 ㎛의 구멍(pore)을 갖는 Cell culture insert(BD Falcon)를 24웰에 삽입하고, Cell culture insert를 upper chamber로서, 웰을 lower chamber로서 사용하였다. Lower chamber에, 비혈청배양액과 인간 재조합형 IL-6(hrIL6)(R&D systems)를 사용하여 조제한 hrIL6 vehicle 0, 1, 10, 100 ng/㎖를 600 ㎕ 주입하고, upper chamber에 2×10⁶개/㎖의 세포 부유액 100 ㎕를 주입하였다. 24시간 배양한 후, 구멍을 통과한 세포수를 계측하였다. 각군 12회의 측정을 행하여, hrIL6 0 ng/㎖로 구멍을 통과하는 평균 세포수를 나눗셈한 수를 보정값으로서 기록하였다.

Wound healing assay

24웰에 3×10⁵개/㎖의 세포 부유액을 1 ㎖씩 주입하여 24시간 배양한다. 비혈청배지로 교환하여 24시간 배양한 후, 웰의 중앙부분을 유리봉으로 문질러 띠형상의 무세포영역을 제작하고, 그 폭을 계측하여, hrIL6 vehicle 0, 1, 10, 100 ng/㎖로 배지를 교환한다. 24시간 배양한 후, 무세포영역의 폭의 변화를 측정하였다. 각군 12회의 측정을 행하여, hrIL6 0 ng/㎖에서의 평균 변화길이를 나눗셈한 수를 보정값으로서 기록하였다.

항체

웨스턴 블롯에 사용한 1차 항체는, 항인산화 STAT3 항체(Santa Cruz), 항STAT3 항체(Santa Cruz), 항인산화 Erk1/2 항체(Cell Signaling), 항Erk1/2 항체(Cell Signaling), 항인산화 Akt 항체(Cell Signaling), 항Akt 항체(Cell Signaling), 항Actin 항체(Santa Cruz)였다. 형광면역염색에 사용한 1차 항체는, 항S100 항체(DAKO), 항마우스 IL-6 항체(Santa Cruz)이며, 핵염색은 DRAQ5(AXXORA)를 사용하였다. 면역염색에는, 항인산화 STAT3 항체(Santa Cruz)를 사용하였다.

웨스턴 블롯

Lysate buffer(20mM Hepes-NaOH pH7.0, 0.5% NP-40, 15% Glycerol, 300mM NaCl, 1mM EDTA, 10mM NaF)를 사용하여 세포용해액을 제작하였다. 단백농도를 BCA Protein Assay Kit(PIERCE)를 사용하여 측정한 후, 20 ㎎의 단백질을 함유하는 세포용해액을 7.5% 또는 12% 아크릴아미드겔을 사용하여 전기영동하고, 폴리비닐리덴 디플루오리드 멤브레인(polyvinylidene difluoride membrane)(Millipore)으로 전사하였다. 멤브레인에 항체를 첨가하고, 단백 발현을 Enhanced Chemiluminescence Reagent(Amersham Biosciences)를 사용해서 화상화하였다.

인산화 STAT3 면역염색과 그의 평가법

항원 부활은 10 mM 구연산 버퍼 내에서 95℃ 10분간의 마이크로웨이브를 사용한 가열처리로 행하고, 발색은 DAB를 사용하였다. 검체로서, 4주 경과한 26마리의 마우스 신경침윤 모델로부터 채취한 좌골신경 26개를 사용하였다. 신경침윤부의 중추측 선단 및 말초측 선단을 관심영역으로 하고, 대물 40배 렌즈를 사용하여, 1시야당의 암세포수와 인산화 STAT3 양성 암세포수를 계측해 labeling index를 다음의 계산식으로 산출하였다: (인산화 STAT3 양성 암세포수)/(암세포수).

신경침윤 모델

사용하는 마우스는, 6주령, 수컷의 극심한 면역부전 마우스(SCID 마우스)이다. 바르비탈 50 ㎎/㎏을 마우스 복강내 투여하여 마취하고, 왼쪽 좌골신경을 노출하여, 좌골신경 내에 1.0×10⁴개/㎕의 암세포 부유액 2.5 ㎕를 마이크로 시린지 및 30 게이지 바늘을 사용하여 직접 주입하였다. 평가하는 시기에 암세포를 주입한 좌골신경을 채취하고, 조직 표본을 제작하는 경우에는, 4% 파라포름알데히드 중에서 4℃ 하룻동안 정치하여 고정하였다. 고정한 상기 좌골신경은, 3 ㎛의 두께로 얇게 잘라, 신경침윤거리의 측정을 위해 헤마톡실린·에오신 염색 또는 면역염색하였다. 신경침윤거리의 측정은, 신경 장축방향으로 얇게 잘린 절편과 대물 마이크로미터(산케이)를 사용하여, 전종양범위의 장축을 계측하였다. 조직 중 mRNA 추출에는, 채취 조직을 바로 멀티 비즈 쇼커(Multi-Beads Shocker)(야스키 기카이)로 파쇄한 검체를 사용하였다.

RNA 추출과 real time RT-PCR

디시로부터 채취한 세포 펠릿, 또는 파쇄한 조직 단편으로부터 TRIzol(Life Technologies)을 사용하여 total RNA를 채취하였다. cDNA는 1×10³ ng의 total RNA로부터, ExScript RT reagent Kit(Takara-bio) 및 Takara PCR Thermal Cycler Dice(Takara-bio)를 사용하여, Takara-bio사가 추천·장려하는 매뉴얼에 따라 합성하였다. Real time RT-PCR은, Smart Cycler II System(Cepheid), SYBR RT-PCR kit(Takara-bio)를 사용하였다. 프라이머는, 인간 IL-6α 수용체(IL6R), 인간 IL-6β 수용체(gp130), 인간 GAPDH, 마우스 IL-6, 마우스 EGF, 마우스 GAPDH의 cDNA를 각각 특이적으로 증폭하는 프라이머를 사용하였다. 프라이머 서열은, 인간 IL6R:forward tgagctcagatatcgggctgaac(서열번호:1);reverse cgtcgtggatgacacagtgatg(서열번호:2), 인간 gp130:forward gaagcaagtgggatcacctatgaa(서열번호:3);reverse ctgtagccttgagtatgggatgga(서열번호:4), 인간 GAPDH:forward gcaccgtcaaggctgagaac(서열번호:5);reverse atggtggtgaagacgccagt(서열번호:6), 마우스 IL-6:forward ccacttcacaagtcggaggctta(서열번호:7);reverse gcaagtgcatcatcgttgttcatac(서열번호:8), 마우스 EGF:forward catcatggtggtggctgtctg(서열번호:9);reverse cacttccgcttggctcatca(서열번호:10), 마우스 GAPDH:forward aaatggtgaaggtcggtgtg(서열번호:11);reverse tgaaggggtcgttgatgg(서열번호:12)였다. 정량은 Takara-bio사가 추천·장려하는 방법으로 행하였다.

mRNA 녹다운

mRNA 발현의 녹다운에는, Ambion사가 제작한 siRNA를 사용하였다. 사용한 siRNA는, 인간 IL6R siRNA, 인간 gp130 siRNA, Negative Control#1 siRNA였다. 암세포를 3.5 ㎝ 디시에 2×10⁵개 뿌리고, 48시간 배양한 후, siRNA 20 μM 및 DharmaFECT transfection reagent 4 (Dharmacon) 8 ㎕를 첨가하였다. 24시간 후에 세포를 채취하고, mRNA 발현 해석 또는 신경침윤 모델에 사용하였다.

통계해석

해석 소프트웨어는, STATVIEW 5.0을 사용하였다. 평균값의 검정은, student-t 양측 검정을 사용하였다. 도면 중의 에러바는 표준오차를 나타내도록 제작하였다.

[실시예 1]

인간 췌장암 세포주에 있어서의, IL-6α 수용체(IL6R) 및 IL-6β 수용체(gp130)의 세포내 mRNA 발현을 real time RT-PCR을 사용하여 검토하였다. 인간 췌장암 세포주에 있어서, IL6R mRNA(도 1A) 및 gp130 mRNA(도 1B)의 명료한 발현을 확인하였다.

[실시예 2]

인간 재조합형 IL-6를 사용하여, IL-6의 인간 췌장암 세포주에 대한 증식능, 주화능, 유주능으로의 영향을, 세포수의 경시적 계측(도 2A 및 B), chemotaxis assay(도 2C), wound healing assay(도 2D)를 사용하여 검토하였다. IL-6는 췌장암 세포주의 세포증식에는 영향을 미치지 않으나, 주화능 및 유주능을 항진시키는 것이 명확해졌다.

[실시예 3]

인간 재조합형 IL-6(rhIL6)를 사용하여, IL-6의 인간 췌장암 세포주 Capan-1에 대한 세포내 시그날로의 영향을, 인산화 STAT3(pSTAT3)(도 3A), 인산화 Erk1/2(pErk1/2)(도 3B), 인산화 Akt(pAkt)(도 3C)에 대해서 웨스턴 블롯법을 사용하여 평가하였다. 세포내의 인산화 STAT3 단백 발현은 rhIL6를 첨가하고 15분 후에, 인산화 Erk1/2 단백 발현은 1시간 후에 각각 명확한 항진을 확인하였다. 인산화 Akt 발현으로의 영향은 확인되지 않았다.

[실시예 4]

췌장암의 중요한 침윤양식은 신경침윤거리이다. 신경침윤을 재현하고, 또한 신경침윤거리가 계측 가능한 마우스 신경침윤 모델을 제작하는 것은, 췌장암의 중요한 종양 침윤양식을 제어하는 치료법을 검토하는 데 있어서 중요하다. 신경침윤 모델은, 면역 부전 마우스의 좌골신경 내에 인간 췌장암 세포주 Capan-1을 직접 주입함으로써 제작되었다. 육안적으로, 신경침윤부는 표면이 고르지 못하고 명확하게 정상 신경보다 굵다(도 4A). 조직학적 신경침윤거리는, 주입시 Capan-1 신경내 확산거리보다도, 1주 후에 명확히 길어, 그 거리는 경시적으로 증대된다(도 4B). 또한, 신경침윤은 주입부보다 중추측으로 진전되어 있고(도 4C), 이것은 인간 췌장암 신경침윤과 동일한 특징이다.

[실시예 5]

인간 췌장암 신경침윤은, 종양주위의 신경조직을 손상하는 것이 보고되어 있다. 신경 손상은, 손상부보다 말초측의 신경조직에 있어서 IL-6 발현을 항진시키는 것을 알 수 있다. 신경침윤에 의한 신경조직의 IL-6 발현동태를 검토하기 위해, 신경침윤 모델을 사용하여, 신경침윤 중추측 및 말초측의 신경조직내(도 5B)에 발현하는 마우스 IL-6(mIL6) mRNA를 각각 real time RT-PCR법으로 평가하였다. mIL6는 신경침윤 중추측에서 고발현하고 있었으나, 기타 신경 손상 모델에서는 그 경향을 확인하지 못했다(도 5B). mIL6 단백 발현을 형광면역염색으로 확인하자, 슈반세포(Schwann cells)의 마커인 S100 양성 세포영역에 일치하여 IL6 양성 과립을 확인하였다(도 5C). 신경침윤 모델에 있어서 mIL6 분비세포의 하나는 슈반세포인 것이 명확해졌다. 또한, EGF는 신경 손상에 있어서 고발현하는 것으로 알려져 있는 분자이나, 마우스 EGF(mEGF) mRNA 발현동태는 mIL6와는 달리 중추측에서 고발현하는 경향을 확인하지 못했다. 이 결과는, 신경침윤부에 있어서의 종양-신경 상호작용에는 IL-6가 강하게 관여하고 있는 것을 시사한다.

[실시예 6]

IL-6의 중요한 세포내 시그날인 인산화 STAT3(pSTAT3) 단백의 췌장암 세포내 발현을, 면역염색을 사용해서 검토하자, 신경침윤 중추방향에 일치하여 인산화 STAT3 발현이 항진되어 있었다(도 6). 이 결과는, 신경침윤 중추측의 신경조직에 있어서의 IL-6 발현의 항진과 분포가 일치한다.

[실시예 7]

IL-6에 의한 세포내 시그날에는, gp130의 개재가 필요하다. siRNA를 사용하여 췌장암 세포의 gp130 mRNA 발현을 녹다운한 췌장암 세포주를 사용하여 신경침윤 모델을 제작하자, 신경침윤거리가 억제되었다(도 7). 이 결과는, 신경침윤에는, IL-6 유래를 포함하는 gp130을 매개로 하는 시그날이 중요한 것을 나타낸다.

[실시예 8]

IL-6에 의한 세포내 시그날에는, IL-6 수용체(IL6R)의 개재가 필요하다. siRNA를 사용하여 췌장암 세포의 IL6R mRNA 발현을 녹다운한 췌장암 세포주를 사용하여 신경침윤 모델을 제작하자, 신경침윤거리가 억제되었다(도 8). 이 결과는, 신경침윤에는, IL-6를 매개로 하는 시그날이 중요한 것을 나타낸다.

[실시예 9]

다음으로, 마우스 신경침윤 모델에 JAK 저해제 또는 항IL-6 수용체 항체를 투여하고, 이들 저해제의 신경침윤으로의 영향을 확인하였다.

JAK 저해제의 마우스 신경침윤 모델로의 투여실험

STAT3 인산화를 저해하는 JAK 저해제 AG490(CALBIOCHEM)을 DMSO에 용해하고, 생리식염수로 희석하여, DMSO 1%의 AG490액을 조제하였다. 신경침윤 모델 제작 2일 후부터, AG490 0.5 ㎎을 마우스의 복강내로 연일 투여하고, 모델 제작으로부터 2주 후에 암세포를 주입한 좌골신경을 채취하여, 신경침윤거리를 측정하였다. 대조군은 DMSO 1%액을 동일한 방법으로 투여하였다. 사용하 마우스의 수는 AG490군과 DMSO군 모두 7마리였다.

항IL-6 수용체 항체의 마우스 신경침윤 모델로의 투여실험

인간 IL-6 수용체를 저해하는 항IL-6 수용체 항체(추가이 세이야쿠, 토실리즈맵)를 생리식염수에 용해하고, 마우스 신경침윤 모델에 모델 제작 1주후부터, 항IL-6 항체 저해항체 5 ㎍/g을 주 2회 투여하였다. 모델 제작으로부터 3주 후에 암세포를 주입한 좌골신경을 채취하여, 신경침윤거리를 측정하였다. 대조군은 생리식염수에 용해한 인간 IgG(Sigma) 5 ㎍/g을 동일한 방법으로 투여하였다. 사용한 마우스의 수는, 항IL-6 수용체 항체군 6마리, 대조군 4마리였다.

통계해석

해석 소프트웨어는, STATVIEW 5.0을 사용하였다. 평균값의 차의 검정은, student-t 양측 검정을 사용하였다. 도면 중의 에러바는 표준오차를 나타내도록 제작하였다.

IL-6에 의한 세포내 시그날로서 중요한 STAT3 인산화의 JAK(Janus Kinase) 저해제 AG490을, 암세포 주입 2일 후부터 12일간 연일 복강내 투여하자, 신경침윤이 억제되는 것이 명확해졌다(도 9A). 이 결과는, 신경침윤에는, IL-6보다 하류의 세포내 시그날인 JAK-STAT가 중요한 것을 나타내고 있다.

또한, 인간 IL-6의 저해작용을 하기 때문에, 항인간 IL-6 수용체 항체를 암세포 주입 1주 후부터 주 2회 투여를 2주간 계속하자, 신경침윤이 억제되는 것이 명확해졌다(도 9B). 이 결과로부터, 인간 췌장암 신경침윤이 항인간 IL-6 수용체 항체에 의해 저해된 것으로 생각된다.

본 발명에 있어서, 항IL-6 수용체 항체를 투여함으로써, 췌장암에 있어서 신경침윤을 억제하는 것이 가능한 것이 나타내어졌다. 또한 항IL-6 수용체 항체를 투여함으로써, 췌장암의 치료가 가능한 것이 나타내어졌다.

SEQUENCE LISTING <110> JAPAN AS REPRESENTED BY PRESIDENT OF NATIONAL CANCER CENTER CHUGAI SEIYAKU KABUSHIKI KAISHA <120> Inhibitor of nerve invasion <130> C1-A0803P <150> JP 2008-147944 <151> 2008-06-05 <160> 12 <170> PatentIn version 3.4 <210> 1 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 1 tgagctcaga tatcgggctg aac 23 <210> 2 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 2 cgtcgtggat gacacagtga tg 22 <210> 3 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 3 gaagcaagtg ggatcaccta tgaa 24 <210> 4 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 4 ctgtagcctt gagtatggga tgga 24 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 5 gcaccgtcaa ggctgagaac 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 6 atggtggtga agacgccagt 20 <210> 7 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 7 ccacttcaca agtcggaggc tta 23 <210> 8 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 8 gcaagtgcat catcgttgtt catac 25 <210> 9 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 9 catcatggtg gtggctgtct g 21 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 10 cacttccgct tggctcatca 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 11 aaatggtgaa ggtcggtgtg 20 <210> 12 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial <220> <223> An artificially synthesized primer sequence <400> 12 tgaaggggtc gttgatgg 18

Claims (32)

1. 항IL-6 수용체 항체를 유효성분으로 하는, 췌장암 세포의 신경침윤 억제용 조성물.
2. 제1항에 있어서,
   항IL-6 수용체 항체가 키메라 항체, 인간화 항체 또는 인간 항체인 조성물.
3. 제2항에 있어서,
   항IL-6 수용체 항체가 인간화 PM-1 항체인 조성물.
   
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