KR101014219B1 - 항산화제, 피부외용제, 화장료 및 식료품 - Google Patents
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Abstract
폐기처리되고 있던 아세롤라 종자의 유효 이용이 가능하게 되고, 안전성이 우수하고, 피부외용제, 화장료나 식료품 등에 이용하여 우수한 항산화작용 등을 나타내는 항산화제, 이것을 포함하는 피부외용제, 화장료 또는 식료품으로서, 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로서 포함한다.
아세롤라, 항산화, 피부외용제, 화장료, 식료품
Description
본 발명은, 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로 하는 항산화제, 이것을 사용한 피부외용제, 화장료 및 식료품에 관한 것이다.
식품, 화장품, 의약품 등의 물품에 있어서 유지류를 포함하는 경우, 그 보존, 보존, 가공의 과정에 있어서 가장 문제가 되는 것은, 공기중의 산소에 의한 유지성분 등의 산화나 과산화이다. 특히, 유지중에 포함되는 리놀레산, 리놀렌산 등의 불포화 지방산은, 산소에 의해 용이하게 과산화 되어서 과산화 지질이나 프리라디칼을 생성하고, 게다가 발암성 물질도 생성하는 것으로 알려져 있다. 이러한 산화나 과산화가 일어나면, 착색, 변색, 변성, 악취 또는 영양가의 유효성의 저하뿐만아니라, 독물의 생성 등이 발생하여, 제품의 품질의 열화를 초래한다.
그래서, 전술의 불포화 지방산의 산화 및 과산화를 억제하고, 품질의 열화를 막기 위해서 종래부터 여러 항산화제가 사용되고 있다. 항산화제는, 산화시에 발생하는 퍼옥시드 라디칼에 작용하여, 산화의 연쇄반응을 정지시키거나, 또는 프리라디칼에 작용하여 산화반응을 정지시킨다. 항산화제로서는, 종래부터, 예를 들면 부틸히드록시 아니솔(BHA)이나 부틸히드록시 톨루엔(BHT) 등의 합성 항산화제가 일 반적으로 사용되고 있다. 그런데, 최근, 합성 항산화제의 사용이 증가함에 따라 그 안전성이 문제가 되어, 소비자의 거부 반응이 강해지고 있는 동시에 그 사용량도 줄고 있다. 또, 이들 합성 항산화제는 유용성이기 때문에 수용액에의 사용이 곤란하다.
한편, 안정성이 높은 천연물 유래의 항산화제로서는, 예를 들면 천연 비타민E(α-토코페롤), 비타민C 등이 알려져 있다. 그러나, 이들 천연물 유래의 항산화제는, 극단적인 지용성 또는 수용성이라는 성질을 갖고 있기 때문에, 그 이용에는 한도가 생긴다. 또, 그 활성이 장시간 안정적으로 지속되지 않는 등의 결점도 있다.
따라서, 항산화 활성이 강하고, 물에의 용해성이 풍부하고, 게다가 항산화 활성이 장시간 안정한 천연물 유래의 항산화제가 강하게 요구되고 있다.
또, 피부의 수분유지, 유연성, 탄력성에 작용하는 물질로서, 콜라겐이나 히알루론산 등이 알려져 있다. 콜라겐은, 피부에서는 진피의 90%를 차지하고, 진피 전체에 분포되어 있고, 피부에 적절한 탄성 및 강도를 유지시킨다. 또, 히알루론산은, 피부, 관절액, 초자체, 인대 등 생체에 널리 분포되어 있고, 피부에 있어서, 세포의 접착, 세포의 보호, 피부조직의 형성, 조직의 수분유지, 유연성의 유지 등을 담당하고 있다. 생체내에서 콜라겐을 분해하는 효소로서 콜라게나제, 히알루론산을 분해하는 효소로서 히알루로니다제가 알려져 있는데, 이것들에 의해 콜라겐이나 히알루론산이 분해되어 그 양이 감소하면, 피부의 습기, 탄력이 없어져, 피부의 노화현상인 주름이나 처짐이 일어난다고 하고 있다.
그래서, 피부외용제나 각종 화장료에, 피부의 노화방지나 주름 방지작용 등을 기대하여 이들 효소의 활성을 저해하는 물질 등을 배합하는 것이 제안되어, 종래, 여러 콜라게나제 활성저해제나 히알루로니다제 활성저해제가 개발되고 있다.
그런데, 아세롤라의 과실은, 풍부한 비타민C를 포함하는 식물로서 최근 알려지게 되고, 현재는 세계 각국에서 음료나 건강식품으로서 사용되고 있다. 또, 풍부한 비타민C를 포함하는 아세롤라의 과실은, 그 추출물에 포함되는 비타민C에 의한 항산화 작용 등을 기대하여 화장료에 사용되게 되었다(특허 제 2814094호 명세서(일본 특개평 2-200610호 공보), 일본 특개 2000-212026호 공보, 일본 특개 2000-212027호 공보, 일본 특개 2000-212032호 공보).
그러나, 아세롤라의 과실에 있어서 화장품이나 식료품에 이용되고 있는 것은, 비타민C를 많이 포함하는 과육뿐이며, 그 종자는, 유효 이용의 길이 거의 발견되지 않아, 대부분이 폐기되고 있는 것이 현상이다. 최근, 아세롤라 종자를 포함하는 식물의 종자를 수증기 증류법에 의해 처리하여 얻어지는 수증기 증류수를, 피부감촉 개선 효과를 기대하여 화장료에 배합한 조성물이 제안되고 있는데(일본 특개 2001-226218호 공보), 더한층의 유효 이용의 길이 요망되고 있다.
또, 이러한 아세롤라의 종자는, 그 함유성분, 및 그 작용 등에 대해서도 거의 알려져 있지 않다.
본 발명의 목적은, 종래, 그 대부분이 폐기되고 있던 아세롤라 종자의 유효 이용이 가능하게 되어, 안전성이 우수하고, 화장료나 식료품 등에 이용하여 우수한 항산화 작용을 나타내는 항산화제를 제공 하는 것에 있다.
본 발명의 다른 목적은, 안정한 항산화 작용, 콜라게나제 활성저해 작용이나 히알루로니다제 활성저해 작용을 기대할 수 있는 안전성이 우수하고, 피부의 노화방지나 주름방지 작용을 기대할 수 있는 피부외용제 및 화장료를 제공 하는 것에 있다.
본 발명의 다른 목적은, 안정한 항산화 작용을 기대할 수 있는 안전성이 우수한 식료품을 제공하는 것에 있다.
본 발명자들은, 상기 목적을 해결하기 위해서, 먼저, 종래, 과즙의 압착후, 폐기되고 있던 아세롤라 종자의 유용성에 대해 예의 검토했다. 그 결과, 아세롤라 종자로부터 얻어지는 추출물이, 강력한 항산화능, 콜라게나제 활성저해능 및 히알루로니다제 활성저해능을 갖는 것을 발견하고, 본 발명을 완성하기에 이르렀다.
본 발명에 의하면, 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로 포함하는 항산화제, 게다가 콜라게나제 활성저해제 또는 히알루로니다제 활성저해제가 제공된다.
또 본 발명에 의하면, 상기 항산화제를 포함하는 피부외용제 또는 화장료가 제공되고, 게다가 상기 항산화제, 상기 콜라게나제 활성저해제, 상기 히알루로니다제 활성저해제중 적어도 1종을 포함하는 피부외용제 또는 화장료가 제공된다.
또한 본 발명에 의하면, 상기 항산화제를 포함하는 식료품이 제공된다.
도 1은 실시예 1에서 조제한 아세롤라 종자 추출물을 컬럼크로마토그래피로 분획한 각 획분의 항산화 활성을 박층 크로마토그래피를 사용하여 측정한 결과를 도시하는 사진복사이다.
도 2는 실시예 2∼5에서 조제한 아세롤라 종자 추출물의 산화율 측정을 위한 흡광도의 경시적 변화를 나타내는 그래프이다.
도 3은 실시예 2∼5에서 조제한 아세롤라 종자 추출물의 14일째의 산화율을 나타내는 그래프이다.
도 4는 실시예 6에서 조제한 아세롤라 종자 추출물의 20일째의 산화율을 나타내는 그래프이다.
도 5는 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자 추출물의 산화율 측정을 위한 흡광도의 경시적 변화를 나타내는 그래프이다.
도 6은 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자 추출물의 7일째의 산화율을 나타내는 그래프이다.
도 7은 실시예 9에서 행한 처방예 5 및 비교 처방예 1에서 조제한 화장수의 산화율 측정을 위한 흡광도의 경시적 변화를 나타내는 그래프이다.
도 8은 실시예 10에서 행한 처방예 5의 화장수의 6개월간에 걸친 DPPH 라디칼 소거 시험의 결과를 나타내는 그래프이다.
도 9는 실시예 10에서 행한 처방예 6의 화장수의 6개월간에 걸친 DPPH 라디칼 소거 시험의 결과를 나타내는 그래프이다.
발명의 바람직한 실시의 태양
이하, 본 발명에 대해 상세하게 설명한다.
본 발명의 항산화제는, 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로 포함하고, 이 추출물은 콜라게나제 활성저해제 및 히알루로니다제 활성저해제의 유효성분으로서도 유용하다.
아세롤라 종자는, 대서양의 카리브해 서인도제도를 원산지로 하는 아세롤라(Acerola, 학명: Malpighia emarginata DC)의 종자이다.
아세롤라의 과육은 비타민C가 풍부한 것으로 알려져, 식료품, 화장품 등에 이용되고 있는데, 그 종자는, 그 유효 이용의 길이 거의 발견되어 있지 않다.
아세롤라 종자의 추출물은, 예를 들면 추출용매를 사용하여 추출한 것이면 특별히 한정되지 않고, 리놀레산 자동산화 억제능이나 DPPH 라디칼 소거작용 등의 항산화 기능을 갖고 있으면, 그 추출방법이나 조건은 특별히 한정되지 않는다. 또, 아세롤라 종자의 생산지 및 품종에 대해서도 조금도 제한되지 않고, 예를 들면 생산지로서는, 오키나와, 브라질을 들 수 있다.
아세롤라 종자의 추출물이란, 예를 들면 생 아세롤라 종자, 그 건조물, 또는 동결물을, 분쇄하여 가공하고, 물 및/또는 유기용매를 가하여 추출한 추출물, 얻어진 추출물을 농축한 농축물, 또, 상기 추출물이나 농축물을 더욱 액액추출이나 컬럼크로마토그래피 등으로 분획정제한 분획 정제물, 이것들의 건조 고화물의 총칭을 의미하고, 그 형태는 액상, 페이스트상, 고체 모두 포함하는 의미이다.
상기 추출물을 얻기 위해서 사용하는 유기용매는, 친수성 유기용매, 소수성 유기용매 어떤 것이라도 좋다. 친수성 유기용매로서는, 예를 들면 메틸알콜, 에틸알콜, 글리세린, 프로필렌글리콜, 1,3-부틸렌글리콜 등의 알콜; 아세톤, 테트라히드로푸란, 아세토니트릴, 1,4-디옥산, 피리딘, 디메틸술폭시드, N,N-메틸포름아미 드, 아세트산 등의 공지의 유기용매를 들 수 있다. 소수성 유기용매로서는, 예를 들면 헥산, 시클로헥산, 사염화탄소, 클로로포름, 디클로로메탄, 1,2-디클로로에탄, 디에틸에테르, 아세트산에틸, 벤젠, 톨루엔 등의 공지의 유기용매를 들 수 있다. 이들 유기용매는 사용시에는 1종 또는 2종 이상을 조합하여 사용할 수 있다. 그 중에서도, 물 및/또는 친수성 유기용매, 특히, 메탄올, 에탄올, 1,3-부틸렌글리콜, 물 또는 이들 혼합물이나 조합이 바람직하다.
추출조건은 특별히 한정되지 않지만, 예를 들면, 온도는 5∼95℃, 바람직하게는 10∼90℃, 더욱 바람직하게는 15∼85℃에서, 상온에서도 적합하게 추출할 수 있다. 온도가 높은 쪽이, 추출 효율이 높아지는 경향이 있다. 추출시간은, 수시간∼수일간이고, 또, 추출에 사용하는 용매량은, 원료에 대해 중량비로 통상 1∼20배량, 바람직하게는 2∼10배량이다.
추출조작도 특별히 한정적은 아니고, 상법에 따라서 행하면 된다. 추출효율을 향상시키기 위해서, 진탕 추출이나, 교반기 등을 구비한 추출기를 사용해도 추출할 수 있다. 예를 들면, 아세롤라 종자를 추출용매에 침지하거나, 혹은 침지하지 않고, 추출용매와 함께 교반, 진탕하는 추출처리를 행하여, 처리액을, 여과, 원심분리 또는 디캔테이션 등에 의해 추출액과 추출 잔사를 분리함으로써 추출처리를 행할 수 있고, 추출 잔사는 동일한 추출처리를 더 행해도 좋다. 얻어지는 추출액은 그대로 사용해도 좋지만, 필요에 따라, 농축처리 및/또는 분획·정제 처리를 더 할 수 있다.
상기 농축처리는 특별히 한정되지 않고, 예를 들면 용매제거, 물 및/또는 유 기용매에 대한 용해성을 이용한 가용분 회수처리, 불용분 회수처리, 물-소수성 유기용매로의 액액분배처리, 재결정처리, 재침전처리, 냉각에 의해 발생한 석출물을 회수하는 처리 등, 혹은 이것들로부터 선택되는 2종 이상의 처리를 조합하는 방법 등을 들 수 있다.
상기 분획·정제 처리도 특별히 한정되지 않고, 예를 들면 순상 및/또는 역상 크로마토그래피에 의한 처리 등을 들 수 있다.
본 발명의 항산화제의 유효성분으로서의 아세롤라 종자의 추출물은, 퀘르시트린을 포함하는 것이 바람직하다. 또, 콜라게나제 활성저해제 및 히알루로니다제 활성저해제의 유효성분으로서의 아세롤라 종자의 추출물은, 퀘르시트린을 포함해도 좋다.
본 발명의 항산화제, 게다가 콜라게나제 활성저해제 또는 히알루로니다제 활성저해제에 있어서, 유효성분인 아세롤라 종자의 추출물의 사용량은, 사용형태 등에 따라 적당하게 선택할 수 있다.
본 발명의 피부외용제 및 화장료는, 상기 본 발명의 항산화제를 포함한다. 또, 상기 항산화제, 상기 콜라게나제 활성저해제 및 상기 히알루로니다제 활성저해제의 적어도 1종을 포함하는 피부외용제 및 화장료도 제공할 수 있다.
상기 화장료의 종류는 특별히 한정되지 않고, 예를 들면 화장수, 유액, 크림, 팩, 세정료 등의 스킨케어 화장료; 립스틱, 파운데이션 등의 메이크업 화장료; 두발용 화장료 등을 들 수 있고, 그 제형은 특별히 제한되지 않고 임의이다. 또, 피부외용제로서는, 연고, 각종 피부용 약제 등을 들 수 있다.
본 발명의 피부외용제 및 화장료에 있어서, 본 발명의 항산화제, 게다가, 콜라게나제 활성저해제 또는 히알루로니다제 활성저해제의 배합비율은, 그 종류 및 배합되는 다른 성분의 종류나 양, 형태 등에 따라서 적당하게 선택할 수 있는데, 통상, 피부외용제 또는 화장료 전량에 대해, 아세롤라 종자 추출물의 건조물 환산으로 0.001∼20중량%, 바람직하게는 0.01∼10중량%이다.
본 발명의 피부외용제 또는 화장료에는, 본 발명의 원하는 효과를 손상하지 않는 범위에서, 통상, 피부외용제 원료나 화장료 원료로서 사용되는 여러 다른 성분을 배합할 수 있다. 다른 성분으로서는, 예를 들면, 물, 유제, 계면활성제, 윤활제, 알콜류, 수용성 고분자제, 겔화제, 보습제, 완충제, 방부제, 항염증제, 증점제, 향료, 비타민류, 본 발명의 항산화제 이외의 항산화제 등을 들 수 있다. 사용시에는, 이것들로부터 1종 또는 2종 이상을 적당하게 선택하여 배합할 수 있다.
본 발명의 식료품은, 상기 본 발명의 항산화제를 포함하고 있으면 되고, 식료품의 종류는 특별히 한정되지 않고, 예를 들면, 엿, 음료, 잼, 추잉껌 등을 들 수 있다. 또, 그 제형은 특별히 제한되지 않고 임의이다.
본 발명의 식료품에 있어서, 본 발명의 항산화제의 배합비율은, 식료품의 종류 및 이 식료품에 배합되는 다른 성분의 종류나 양, 형태 등에 따라 적당하게 선택할 수 있는데, 통상, 식료품 전량에 대해, 아세롤라 종자 추출물의 건조물 환산으로 0.001∼20중량%, 바람직하게는 0.01∼10중량%이다.
본 발명의 식료품에는, 본 발명의 원하는 효과를 손상하지 않는 범위에서, 통상, 식료품 원료로서 사용되는 여러 다른 성분을 배합할 수 있다. 다른 성분으 로서는, 예를 들면, 물, 알콜류, 감미료, 산미료, 착색료, 보존료, 향료, 부형제 등을 들 수 있고, 사용시에는, 이것들로부터 적당하게 선택하여 1종 또는 2종 이상을 배합할 수 있다.
본 발명의 항산화제, 게다가 히알루로니다제 활성저해제 및 콜라게나제 활성저해제는, 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로 하여, 안전성이 우수하고, 또한 강력한 항산화작용, 히알루로니다제 활성저해 작용 또는 콜라게나제 활성저해 작용을 갖는다. 본 발명의 피부외용제, 화장료 및 식료품은, 본 발명의 항산화제, 게다가 히알루로니다제 활성저해제 또는 콜라게나제 활성저해제를 포함하므로, 항노화작용, 주름방지작용, 활성산소에 기인하는 식료품의 품질유지나 산화방지작용이 얻어진다. 더불어, 산업 폐기물이었던 아세롤라 종자의 유효한 이용도 가능해진다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 더욱 상세하게 설명하는데, 본 발명은 이것들에 한정되지 않는다.
실시예 1
세정한 아세롤라 종자를 건조후, 파쇄하여 얻어진 분쇄물 6140g에 7배 중량의 메탄올을 가하고, 실온에서 밤새 교반했다. 전량을 원심후, 여과하고, 여과액을 농축 건조하여 추출물(A)을 225.89g 얻었다.
이 추출물(A)에 물 2000ml를 가하고, 헥산 1200ml를 더 가하여 진탕한 후, 분액된 수층을 회수했다. 이 수층에 대하여, 헥산을 사용한 동일한 진탕을 2회 더 반복했다. 헥산층을 제거하고 얻어진 수층에, 아세트산 에틸 1200ml를 가하여 진탕하는 것을 10회 반복, 분액된 아세트산 에틸층을 모아서 농축하고 건조 고화하여, 농축물(A)을 11.48g 얻었다. 다음에 농축물(A)을, 실리카겔(와코실 C-300: 와코쥰야쿠사제)을 충전한 컬럼을 사용한 실리카겔 컬럼크로마토그래피로 분획했다. 클로로포름:메탄올(97:3, 9:1, 8:2, 6:4, 4:6, 2:8), 메탄올로 순차적으로 용출시켰다. 클로로포름 용출부를 15획분으로 나누고(획분 1∼15), 그 후의 클로로포름:메탄올 용출부를 각각, 획분 16(97:3), 17(9:1), 18(8:2), 19(6:4), 20(4:6)으로 했다.
각 획분의 항산화 활성을, 박층 크로마토그래피(TLC)를 사용한 평가법에 의해 확인했다. 즉, 각 획분의 시료를 실리카겔 박층 플레이트에 도포하고, 전개 용매에 의해 전개했다. 이때, 형광지시약을 함유하는 플레이트를 사용하고(K5F Silica Gel 150Å: Whatman사제), 전개후, 건조한 플레이트에 자외선을 조사함으로써 UV흡수를 갖는 시료의 스폿을 검출했다. 그후, 플레이트에 안정한 라디칼인 디페닐-p-피크릴히드라딜(DPPH)의 6×10-4M 메탄올 용액을 분무했다. DPPH 용액은 자색을 띠고 있는데, 라디칼이 소거되면 그 색을 상실한다. 이 때문에, 라디칼 소거활성을 갖는 물질의 스폿 부분에서는, DPPH 라디칼이 소거됨으로써 스폿 부분이 희게 색이 빠져 보인다.
획분 1∼20을 실리카겔 플레이트에 도포하고, 클로로포름: 메탄올=9:1의 용매로 플레이트 선단까지 전개한 후, DPPH 용액을 분무했다. 결과를 도 1에 도시한 다. 도 1보다, 아세롤라 종자 추출물에는, 항산화활성을 갖는 다수의 물질이 포함되어 있는 것을 알 수 있다.
이중, 획분 19를, 역상계 고속 액체 크로마토그래피(HPLC)에 의해 더욱 정제했다. 우선 하기 용출조건으로 조정제하고, 이하의 조건을 행함으로써 더 정제했다. HPLC 조건을 이하에 나타낸다.
컬럼: Hydrosphere C-18[20×250mm](YMC), 유속; 5ml/분, 온도: 35℃
검출: 254nm에서 UV, 용리액: 30% 메탄올(0-2분), 30-100% 메탄올(2-32분, 선형), 100% 메탄올(32-40분), 30% 메탄올(40-50분)의 조건으로 조정제한 후, 아세토니트릴/물(30/70)로 최종 정제를 행하여, 분획 정제물 72mg을 얻었다.
얻어진 분획 정제물에 대하여, 각종 스펙트럼 측정을 행했다. 얻어진 데이터를 이하에 나타낸다.
매스 스펙트럼: [M-H]-447
자외선 흡수 스펙트럼: (EtOH:)256.5nm, 352.00nm, H-NMR 케미컬시프트: 500MHz 용매 CD3OD, 0.94ppm(d:J=6.1Hz), 6.91ppm(d:J=8.2Hz), 7.31ppm(d,d:J=8.2,2.1Hz), 7.34ppm(d:J=2.1Hz), 6.20ppm(d:J=2.1Hz), 6.37ppm(d:J=2.1Hz), 3.33ppm(m:J=9.5,9.3Hz), 3.41ppm(m:J=9.5Hz), 3.74ppm(d,d:J=9.3,3.3Hz), 4.21ppm(d,d:J=3.3Hz), 5.35ppm(d:J=1.7Hz), C-NMR 케미컬시프트: 125.8MHz 용매 CD3OD, 17.7ppm , 72.0ppm, 72.1ppm, 72.2ppm, 73.3ppm, 94.8ppm, 99.9ppm, 103.6ppm, 106.0ppm, 116.4ppm, 117.0ppm, 122.9ppm, 123.1ppm, 136.3ppm, 146.5ppm, 149.9ppm, 158.6ppm, 159.4ppm, 163.3ppm, 166.0ppm, 179.7ppm.
매스 스펙트럼에 있어서, 탈프로톤화 분자라고 생각되는 이온이 m/z447에 관측되고, 분자량은 448로 생각되었다. H-NMR에서는, 0.94ppm은 CH3, 6.91ppm, 7.31ppm, 7.34ppm은 1,2,4-치환 벤젠, 6.20ppm, 6.37ppm은 1,2,3,5-치환 벤젠의 1H에 귀속되었다. 3.33∼5.35ppm에는 5종류의 피크가 관측되었다. 또, 13C-NMR 스펙트럼에서는 21개의 피크가 관측되고, 70-74ppm의 4개의 피크는 >CH-O-로 생각되고, 179.7ppm에는 공액 카르보닐에 귀속할 수 있는 피크가 관측되었다. 이들 데이터로부터 퀘르세틴 배당체의 가능성이 시사되었기 때문에, 또한 고분해능 매스 스펙트럼의 측정 및, 퀘르세틴 배당체에서 분자량 448인 퀘르시토트린 표품의 NMR 스펙트럼과의 비교를 행했다. 고분해능 매스 스펙트럼 측정을 행한 결과, 정밀중량 447.0917이 얻어지고, C, H, O를 원소종으로서 조성 계산을 행했다. 그 결과, 13C-NMR 스펙트럼에서 관측된 탄소수 21을 만족하는 조성식 C21H19O11이 산출되고, 분자식은 C21H19O11로 결정되었다. 또한 NMR 스펙트럼을, 퀘르시트린(퀘르시틴-3-람노시드) 표품의 스펙트럼과 비교한 결과, 일치했기 때문에, 아세롤라 종자의 추출물로부터 분리정제된 물질은 퀘르시트린이라고 동정했다.
퀘르시트린은, 플라보노이드중 하나로 자연계에 널리 분포되어 있고, 특히 삼백초에 풍부하게 포함되는 것이 알려져 있다. 이상의 결과로부터, 아세롤라 종 자에 퀘르시트린이 포함되고, 이 퀘르시트린이 추출물중의 항산화 활성에 관여하는 물질중 하나인 것이 판면되었다.
실시예 2
세정한 아세롤라 종자 100g을 파쇄하고, 3배 체적의 물을 가하고, 실온에서 밤새 진탕했다. 전량을 유리 필터, 0.65㎛ 필터 및 0.22㎛ 필터로 여과후, 여과액을 농축 건조하여 추출물 1g을 얻었다.
다음에, 리놀산을 사용한 항산화 활성측정(티오시안산철법)에 의해 얻어진 추출물의 항산화 활성을 측정했다.
즉, 2.5%(w/v) 리놀산(99.5% 에탄올 용액) 2ml 및 0.05M 인산 완충액(pH7.0) 4ml의 반응액에, 아세롤라 종자의 추출물 0.4mg, 99.5% 에탄올 2ml 및 증류수 2ml로 이루어지는 혼액을 혼합하고, 갈색 나사새김 입구 병에 넣고 10ml의 시험액을 조제했다. 또, 아세롤라 종자 추출물 대신에 α-토코페롤 또는 BHA를 사용하고, 반응액중에 아세롤라 종자의 추출물과 동량 포함되도록 동일한 조작을 행하여, 각각 시험액을 조제하고, 이것들을 포지티브 대조로 했다. 콘트롤에는 아세롤라 종자 추출물을 첨가하지 않고, 99.5%에탄올 2ml 및 증류수 2ml만을 반응액에 첨가한 시험액을 사용했다. 얻어진 각 시험액을 암소에서 40℃로 보존한 것을 본 샘플, 4℃에서 보존한 것을 블랭크로 하여, 경시적으로 피험물을 취출하고 이하의 방법에 의해 측정을 행했다. 시험은 14일간 행했다.
먼저, 피험물 0.1ml, 75%에탄올 9.7ml, 30% 로단 암모늄 수용액 0.1ml의 혼 합액에, 2×10-2M의 염화제일철(3.5% 염산용액) 0.1ml를 가하고나서 정확하게 3분 후 500nm에서의 흡광도를 측정했다. 블랭크에 대해서도 동일하게 측정하고, △흡광도=(본 샘플의 흡광도)-(블랭크의 흡광도)로 했다. 시료의 산화가 시작되면 흡광도는 상승하고, 최고점에 달한 후, 산화될 시료가 적어짐에 따라서 흡광도는 감소한다. 따라서, 흡광도의 피크가 빨리 생기기 시작할 수록 항산화활성은 약하다고 말할 수 있다. 또, 산화율을 사용하여 각 시험액의 항산화활성을 비교했다. 산화율은, 콘트롤의 산화(△흡광도)를 100%로 하여, 이하의 식으로 구했다. 산화율이 높을 수록 항산화활성이 낮은 것을 의미한다.
산화율(%)=([시료의 △흡광도]/[콘트롤의 △흡광도])×100
흡광도의 경시적 변화의 결과를 도 2에, 시험개시후 14일째의 각 시료용액의 산화율을 도 3에 도시한다. 도 3에 있어서, (C-1)은 콘트롤, (C-2)는 α-토코페롤, (C-3)은 BHA, (E-2)는 실시예 2에서 조제한 아세롤라 종자 추출물, (E-3)은 실시예 3에서 조제한 아세롤라 종자 추출물, (E-4)는 실시예 4에서 조제한 아세롤라 종자 추출물, (E-5)는 실시예 5에서 조제한 아세롤라 종자 추출물을 각각 나타낸다.
실시예 3
세정한 아세롤라 종자 100g을 파쇄하고, 3배 체적의, 에탄올 함량이 25체적%의 함수 에탄올 수용액을 가하고, 실온에서 밤새 진탕했다. 전량을 실시예 2와 동일한 필터로 여과후, 여과액을 농축 건조하여 추출물을 1.69g 얻었다.
얻어진 추출물을 사용하여 실시예 2와 동일하게 항산화활성을 측정했다. 흡광도의 경시적 변화의 결과를 도 2에, 시험개시후 14일째의 각 시료용액의 산화율을 도 3에 나타낸다.
실시예 4
세정한 아세롤라 종자 100g을 파쇄하고, 3배 체적의, 에탄올 함량이 50체적%의 함수 에탄올 수용액을 가하고, 실온에서 밤새진탕 했다. 전량을 실시예 2와 동일한 필터로 여과후, 여과액을 농축 건조하여 추출물 2.27g을 얻었다.
얻어진 추출물을 사용하여 실시예 2와 동일하게 항산화 활성을 측정했다. 흡광도의 경시적 변화의 결과를 도 2에, 시험개시후 14일째의 각 시료용액의 산화율을 도 3에 도시한다.
실시예 5
세정한 아세롤라 종자 100g을 파쇄하고, 3배 체적의, 에탄올 함량이 75체적%의 함수 에탄올 수용액을 가하고, 실온에서 밤새 진탕했다. 전량을 실시예 2와 동일한 필터로 에서 여과후, 여과액을 농축 건조하여 추출물 2.50g을 얻었다.
얻어진 추출물을 사용하여 실시예 2와 동일하게 항산화활성을 측정했다. 흡광도의 경시적 변화의 결과를 도 2에, 시험개시후 14일째의 각 시료용액의 산화율을 도 3에 나타낸다.
도 2 및 3으로부터, 아세롤라 종자의 추출물에는 명백하게 리놀레산의 산화억제 효과가 있고, 또 그 강도는 대표적 항산화제인 α-토코페롤, BHA와 비교하여, 동등 또는 동등 이상인 것을 알았다. 또한, 실시예 2∼5의 결과로보다, 추출용매 로서 사용하는 함수 에탄올중의 에탄올의 비율을 변화시킴으로써, 항산화활성의 강도를 콘트롤 할 수 있는 것이 판명되었다.
실시예 6
세정한 아세롤라 종자 760g을 파쇄하고, 5배 중량의 메탄올을 가하고, 실온에서 밤새 교반했다. 전량을 원심후, 여과하고, 여과액을 농축 건조하여 추출물 12.36g을 얻었다. 이 추출물에 물 300ml를 가하고, 헥산 100ml를 더 가하여 진탕한 후, 분액된 수층을 회수했다. 이 수층에 대하여, 헥산을 사용한 동일한 진탕을 3회 더 반복했다. 헥산층을 제거하고 얻어진 수층에, 아세트산 에틸 100ml를 가하여 진탕하는 것을 6회 반복하고, 분액된 아세트산 에틸층을 모아서 농축 건조하고, 고형분 0.41g을 얻었다.
얻어진 아세롤라 종자의 추출물의 항산화활성을 실시예 2와 동일하게 티오시안산철법에 의해 측정했다. 이때, 시험기간은 20일간으로 했다. 시험 개시후 20일째의 각 시료용액의 산화율을 도 4에 도시한다. 도 4에 있어서, (C-1)은 콘트롤, (C-2)는 α-토코페롤, (C-3)은 BHA, (E-6)은 실시예 6에서 조제한 아세롤라 종자 추출물을 각각 나타낸다.
도 4로부터, 아세롤라 종자의 추출물의 아세트산 에틸 획분에는, 추출물 그 자체와 동일하게 명백하게 리놀레산의 산화억제 효과가 있고, 또 그 강도는, α-토코페롤보다도 강한 것이 판명되었다.
실시예 7
세정한 아세롤라 종자 70g을 파쇄하고, 4배 중량의, 1,3-부틸렌글리콜 함량 이 30중량%인 1,3-부틸렌글리콜 수용액을 가하고, 실온에서 밤새 교반했다. 전량을 원심후, 상청을 0.22㎛ 필터로 여과하고, 아세롤라 종자의 추출물을 용액으로 하여 124.12g 얻었다.
얻어진 아세롤라 종자의 추출물의 항산화활성을 이하의 DPPH 라디칼 소거에 의한 방법에 의해 측정했다. 결과를 표 1에 나타낸다.
250mM: 아세트산 완충액(pH=5.5) 1600μl에 에탄올 1200μl, 검체 400μl(임의의 농도로 조제)를 혼합하고, 30℃, 5분간 예비 인큐베이트 했다. 이 액에 500μM DPPH/에탄올 용액을 800μl 첨가 혼합하고, 30℃, 30분간 방치후, 517nm의 흡광도를 측정했다. α-토코페롤에 대해서도 동일한 조작을 행하고, 이것을 포지티브 대조로 했다. 콘트롤에는, 시료용액 대신에 그 용매를 사용하여 동일한 조작을 행한 것을 사용했다. 측정된 흡광도로부터, 다음식에 의해 라디칼 소거율을 산출했다.
소거율(%)=(1-[시료의 흡광도]/[콘트롤의 흡광도])×100
시료용액의 시료농도를 단계적으로 변경하고 상기 소거율의 측정을 행하고, DPPH: 라디칼의 소거율이 50%이 되는 시료용액의 농도를 구하고, DPPH 라디칼 50% 소거농도로 했다. 따라서, 이 수치가 낮을 수록 라디칼 소거능이 높은 것을 의미한다.
표 1로부터, 실시예 7의 추출물은 α-토코페롤과 동등한 라디칼소거능을 갖는 것이 판명되었다.
실시예 8
세정한 아세롤라 종자 1500g을 파쇄하고, 2배 중량의, 1,3-부틸렌글리콜 함량이 30중량%의 1,3-부틸렌글리콜 수용액을 가하고, 실온에서 밤새 교반했다.
전량을 원심후, 상청을 0.22㎛ 필터로 여과하고, 아세롤라 종자 추출물을 용액으로서 2327g 얻었다.
얻어진 아세롤라 종자 추출물의 항산화활성을, 실시예 2 와 같이(마찬가지로) 티오시안산철법에 의해 측정했다. 단, 아세롤라 종자 추출물은 용액이므로, 물과 에탄올을 사용하여 필요 농도로 희석하여 첨가하고, 아세롤라 종자 추출액의 콘트롤에는, 첨가한 아세롤라 종자 추출액과 동일한 용매조성이고 아세롤라 종자 추출물을 포함하지 않는 것을 사용했다. 또, 시험기간은 7일로 했다.
흡광도의 경시적 변화의 결과를 도 5에, 시험개시후 7일째의 각 시료용액의 산화율을 도 6에 나타낸다. 도 6에 있어서, (C-1)은 콘트롤, (C-2)는 α-토코페롤, (C-3)은 BHA, (E-8)은 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자 추출물을 각각 나타낸다.
도 5 및 6으로부터, 아세롤라 종자 추출물에는 명백하게 리놀레산의 산화억제 효과가 있고, 또 그 강도는, α-토코페롤, BHA와 비교하여, 동등 또는 동등 이상인 것이 판명되었다.
그런데, 종래부터 비타민C가 항산화작용을 갖는 것이 알려져 있으므로, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출액중의 비타민C량을 측정하고, 상기 아세롤라 종자 추출액에서의 항산화작용이 함유되는 비타민C에만 의한 것인지 아닌지를 검토했다.
먼저, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출액 100g중에 함유되는 비타민C량을 측정한 바, 57mg/100g(산화형 비타민C: 56mg/100g+환원형 비타민C: 1mg/100g)이었다. 그래서, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출액 100g을 증발 건조한 바, 고형분 975mg이 얻어졌다. 이어서, 실시예 2와 동일하게 티오시안산철법에 의해 항산화활성을 측정했다. 이때, 본 실시예의 아세롤라 종자 추출물은 용액인 것부터, 상기와 같이 반응액중에 고형분이므로 0.4mg 포함되도록 희석하여 첨가했다. 또 콘트롤에도 상기와 동일하게 첨가한 아세롤라 종자 추출액과 동일한 용매조성이고 아세롤라 종자 추출물을 포함하지 않는 것을 사용했다. 또한, 측정은 7일간으로 행했다. 대조로서, 이 고형분 0.4mg중에 포함되는 비타민C 0.023mg(0.4mg×(57mg/975mg))을 사용하여 마찬가지로 항산화활성을 측정했다.
시험개시후 7일째의 산화율은, 아세롤라 종자 추출물이 1.9%였던 것에 반해, 비타민C 단독인 것은 115.8%였다.
이상의 결과로부터, 아세롤라 종자 추출물중에 포함되는 비타민C는, 이 추출물의 항산화작용에는 거의 기여하고 있지 않은 것이 판명되었다.
또한, 본 발명에 있어서의 아세롤라 종자 추출물에 있어서, 실시예 1에서 확인한 항산화작용을 나타내는 물질중 하나인 퀘르시트린에 대해, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출물중에 함유되는지 아닌지를 실시예 1과 동일하게 측정했다. 그 결과, 퀘르시트린을 함유하고 있는 것이 판명되었다.
그런데, 종래, 예를 들면, 일본 특개평 7-300581호 공보에서, 퀘르시트린이 항산화작용을 갖는 것이 제안되어 있다. 그래서, 상기 아세롤라 종자 추출액에 있어서의 항산화작용이 함유되는 퀘르시트린에만 의한 것인지 아닌지를 이하의 방법으로 검토했다.
우선, 퀘르시트린은 폴리페놀의 1종이므로, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출액중의 폴리 페놀량을 Folin-Denis법에 의해 측정한 바, 추출액 100g중의 고형분 975mg에 차지하는 폴리페놀의 비율은 25%였다. 따라서, 상기에서 조제한 아세롤라 종자 추출액의 고형분중에 포함되는 퀘르시트린량은, 최대라도 25%이다. 이 결과에 기초하여, 상기 비타민C와의 비교시험과 동일하게, 실시예 2와 동일하게 티오시안산철법에 의해 항산화활성을 측정했다. 이때, 측정은 7일간에 행했다. 대조로서, 이 고형분 0.4mg중에 퀘르시트린이 32%(최대량이 25%이므로, 그 이상의 양) 포함되어 있다고 가정한 경우의 퀘르시트린 0.128mg 을 사용하여 동일하게 항산화활성을 측정했다.
그 결과, 시험개시후 7일째의 산화율은, 아세롤라 종자 추출물이 1.9%이었던 것에 반해, 퀘르시트린 단독의 산화율은 6.9%였다.
이상의 결과로부터, 아세롤라 종자 추출물중에 포함되는 퀘르시트린은, 이 추출물의 항산화작용의 유효성분중 하나이지만, 이 추출물의 항산화작용은 퀘르시트린만의 작용이 아니고, 게다가, 아세롤라 종자 추출물은 퀘르시트린 단독에 의한 항산화작용 보다도 우수하다는 것이 판명되었다.
참고예 1
실시예 2∼5에서 조제한 각 아세롤라 종자 추출물에 대해, 이하의 방법에 의해 콜라게나제 활성저해작용을 측정했다.
측정방법
[시약의 조제]
기질용액: Pz-펩티드(BACHEM사제) 0.39mg을, 0.1M 트리스 염산 완충액(pH7.1, 20mM 염화칼슘 함유) 1ml에 용해하여 사용했다(0.5mM에 상당).
효소용액: 콜라게나제(TYPEIV, sigma사제) 5mg을 증류수 1ml에 용해시키고 100μl씩 나누어 따르고, -20℃에서 보관한다. 사용시에 증류수로 50배로 희석하여 반응에 사용했다.
[콜라게나제 활성저해작용 측정법]
실시예 2의 추출물은 15mg/ml, 실시예 3, 4, 5의 추출물은 0.5mg/ml의 농도로 되도록, 각각의 추출용매로 용해하여 조제를 행하여, 이것들을 시료용액으로 했다. 이들 시료용액 50μl, 콜라게나제 용액 50μl 및 기질용액 400μl를 혼합하고, 37℃에서 30분간 인큐베이션 했다. 이어서, 25mM 시트르산 용액 1ml로 반응을 정지하고, 아세트산 에틸 5ml로 추출했다. 원심분리(3000rpm, 10분간)후, 아세트산에틸을 대조로 하여, 아세트산에틸층의 파장 320nm에서의 흡광도를 측정했다. 대조에는, 시료용액 대신에 각 추출용매를 사용하고, 또, 각각의 블랭크로서, 효소용액 대신에 증류수를 가하고 동일한 조작을 행했다.
이들 값으로부터 콜라게나제 활성저해율을 다음 식에 의해 산출했다.
저해율(%)= [1-(A-B)/(C-D)]×100
단, A: 시료용액의 320nm에서의 흡광도, B: 시료용액 블랭크의 320nm에서의 흡광도, C: 대조용액의 320nm에서의 흡광도, D: 대조용액 블랭크의 320nm에서의 흡광도이다.
상기 방법으로 실시예 2∼5의 추출물의 콜라게나제 활성저해율을 구했다. 결과를 표 2에 나타낸다.
참고예 2
실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자 추출물에 대해, 참고예 1과 동일한 방법에 의해 콜라게나제 활성저해작용을 측정했다. 단, 실시예 8의 추출물은 용액이므로, 아세롤라 종자 추출물이 고형물로서 0.5mg/ml의 농도가 되도록 추출용매인 30중량% 1,3-부틸렌글리콜 수용액으로 희석한 것을 시료용액으로 했다. 이렇게 하여 실시예 8의 추출물의 콜라게나제 활성저해율을 구한 결과, 71.5%였다.
참고예 3
실시예 8에서 조제한 추출물의 히알루로니다제 활성저해작용을 측정했다. 히알루로니다제 활성저해측정은, Morgan-Elson법을 응용한 마에다 유미에 등의 방법(쇼쿠에이시, 31권, 233-237, 1990년)으로 행했다.
측정방법
[시약의 조제]
효소용액: 소 정소 히알루로니다제(와코쥰야쿠고교(주)제)를 0.1M 아세트산 완충액(pH=4.0)에 용해하고 최종 효소활성을 400유닛/ml로 조정했다.
효소활성화 용액: compound 48/80(시그마사제)을 0.1M 아세트산 완충액(pH=4.0)으로 용해하고 최종 농도를 0.1mg/ml로 조정했다.
기질용액: 히알루론산 칼륨(와코쥰야쿠고교(주)제)을 0.1M 아세트산 완충액(pH=4.0)에 용해하고 최종농도를 0.4mg/ml로 조정했다.
붕산용액: 붕산 4.95g에 물 50ml를 가하고, 1N 수산화나트륨 용액으로 pH=9.1로 하고, 물을 가하여 100ml로 조정했다.
p-디메틸아미노벤즈알데히드(p-DAB) 시약: 10N 염산 12.5ml과 아세트산 87.5ml의 혼합액에 p-DAB(와코쥰야쿠고교(주)제)를 10g 용해하고 냉장 보존한다. 사용 직전에 아세트산으로 10배 희석하여 사용했다.
[히알루로니다제 활성저해작용 측정법]
실시예 8의 추출물은 용액이므로, 아세롤라 종자 추출물이 고형물로서 1mg/ml의 농도가 되도록 추출용매인 30중량% 1,3-부틸렌글리콜 수용액으로 희석한 것을 시료용액으로 했다. 이 시료용액 0.2ml에 효소용액 0.1ml를 가하고, 37℃에서 20분간 방치했다. 다음에, 효소활성화 용액 0.2ml를 가하고 37℃에서 20분간 가온하고, 또한 기질용액 0.5ml를 가하고 37℃에서 40분간 반응시킨 후, 0.4N의 수산화 나트륨 수용액을 0.2ml 가하는 동시에 빙냉하여 반응을 정지시켰다. 붕산용액 0.2ml를 가하고 핫블록 배스(TOYO SEISAKUSHO, MODEL TPB-32)에 의해 100∼120℃에서 5분간 가열후 빙냉하고, p-DAB시약 6ml를 가하고 37℃에서 20분간 가온하여 발색시키고, 585nm에서의 흡광도를 증류수를 대조로 하여 측정했다. 대조에는, 시료용액 대신에 추출용매를 사용하고, 또 각각의 블랭크로서, 효소용액 대신에 0.1M 아세트산 완충액(pH=4.0)을 가하고 동일한 조작을 행했다.
이들 값으로부터 히알루로니다제 활성저해율을 다음식에 의해 산출했다.
저해율(%)= [1-(A-B)/(C-D)]×100
단, A: 시료용액의 585nm에서의 흡광도, B: 시료용액 블랭크의 585nm에서의 흡광도, C: 대조용액의 585nm에서의 흡광도, D: 대조용액 블랭크의 585nm에서의 흡광도이다.
상기 방법에서 실시예 8의 추출물의 히알루로니다제 활성저해율을 구한 결과, 94.5%였다.
참고예 4
1997년 3월26일부 후생성령 제21호 「의약품의 안전성에 관한 비임상시험의 실시의 기준에 관한 성령」에 따라서 아세롤라 종자 추출물의 안전성 시험을 행했다. 아세롤라 종자 추출물로서는, 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자 추출물을 사용했다. 결과를 표 3에 나타낸다.
래트를 사용하는 단회 경구투여 독성시험
래트 2군(대조군, 투여군)에 대해, 암수 각 5마리/군으로 시험을 행하고, 투여군에는 체중당 2g/kg 투여했다.
모르모트를 사용하는 피부 1차 자극성 시험
모르모트 3마리의 건강한 피부에 24시간 폐색 첩부를 행하고, 투여후 24시간, 48시간 및 72시간에, 각각 피부의 상태를 관찰하고 판정을 행했다.
모르모트를 사용하는 14일간 피부 누적 자극성 시험
모르모트 3마리의 건강한 피부에, 14일간 연속의 개방계에서 1일 1회 도포를 행하고, 시험기간 동안 매일, 도포전 및 도포후 24시간에, 각각 피부의 상태를 관찰하고 판정을 행했다.
모르모트를 사용하는 피부 감작성 시험
모르모트 3군(대조군, 도포군, DNCB군)에 대해, 5마리/군으로 애쥬번트 및 패치 테스트법에 준하여 시험을 행하고, 도포후 24시간 및 48시간에, 각각 피부의 상태를 관찰하고 판정을 행했다.
모르모트를 사용하는 피부 광독성 시험
모르모트 10마리의 배부 피부에 모리카와 후지오 등의 방법에 준하여 시험을 행하고, 자외선 조사후 24시간, 48시간 및 72시간에 각각 피부의 상태를 관찰하고 판정을 행했다.
모르모트를 사용하는 피부 광감작성 시험
모르모트 3군(대조군, 투여군, TCSA군)에 대해, 5마리/군으로 애쥬번트 및 스트립법에 준하여 시험을 행하고, 자외선 조사후 24시간 및 48시간에, 각각 피부의 상태를 관찰하고 판정을 행했다.
토끼를 사용하는 안점막 자극성 시험
토끼 2군(비세안군, 세안군)에 대해, 3마리/군으로 시험을 행했다. 점안후, 비세안은 그대로 하고, 세안군은 미온의 생리식염수로 약 1분간 세정하고, 그후 1시간, 24시간, 48시간 및 72시간 후에, 각막, 홍채 및 결막의 상태에 대해 관찰하고, AFNOR의 구분으로 판정을 행했다.
세균을 사용하는 복귀 돌연변이 시험
프리 인큐베이션법에 의해, S9mix 무첨가와 S9mix 첨가의 경우에 대해 측정을 행했다.
·사용균주: Salmonella typhimurium TA100, TA98, TA1535, TA1537
·사용균주: Escherichia coli WP2uvrA
포유류의 배양세포를 사용하는 염색체 이상 시험
포유류의 배양세포(CHL/IU 세포)를 사용하여 3군(음성대조군, 피검물질군, 양성대조군)에 대해, 단시간처리법(6시간 처리: S9mix 무첨가 및 S9mix 첨가) 및 연속처리법(24시간 및 48시간 처리)으로 검토를 행했다.
처방예 1
글리실리신산 디칼륨 0.20중량부, 시트르산 0.10중량부, 시트르산 나트륨 0.30중량부, 실시예 7에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물 5.00중량부 및 1,3-부틸렌글리콜 5.00중량부를 혼합하고, 정제수를 가하여 전체량을 80.0중량부로 하고 50℃에서 교반하면서 용해하여 추출물함유 수용액을 조제했다.
이어서, 테트라올레산POE(60)소르비톨 0.90중량부, 모노올레산소르비탄 0.10중량부, 적당량의 방부제 및 에탄올 10.00중량부를 혼합하고, 50℃에서 교반하면서 용해했다. 계속하여, 얻어진 용액을, 최초에 조제한 추출물함유 수용액에 소량씩 가하고, 50℃에서 혼화 교반했다. 균일하게 혼화되었으면, 더 교반하면서 50℃로부터 30℃로 액온을 내리고, 30℃로 된 시점에서 교반을 멈추고, 적당량의 향료 및 정제수를 가하고 전체량을 100.00중량부로 했다. 다시, 혼화 교반하고, 균일하게 혼화시켜서 화장수를 조제했다.
처방예 2
스쿠알렌 10.00중량부 및 적당량의 방부제를 혼합하고, 정제수를 가하여 전체량을 70.00중량부로 조정하고, 80℃로 가온하여 용액(1)을 조제했다. 또, 카르복시비닐폴리머 0.10중량부 및 크산탄 검 0.20중량부를 적당량의 정제수에 상온에서 교반 용해하여 용액(2)을 조제했다. 또한 트리에타놀아민 0.10중량부 및 1,3-부틸렌글리콜 5.00중량부를 적당량의 정제수에 상온에서 교반 용해하여 용액(3)을 조제했다. 더욱이 또, 히알루론산나트륨 2.00중량부 및 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물 5.00중량부를 적당량의 정제수에 상온에서 교반용해하여 용액(4)을 조제했다.
이어서, 적당량의 정제수에 용액(1)을 소량씩 가하고, 80℃에서 혼화 교반하고, 더욱 교반하면서, 용액(2)을 가하고, 이어서 용액(3)을 가했다. 균일하게 혼화되면, 교반하면서 용액을 50℃로 내리고, 50℃로 된 시점에서, 용액(4)을 가하고, 또한 정제수를 가하여 전체량을 100중량부로 조정했다. 용액이 30℃로 될 때까지 다시 교반하고, 30℃로 된 시점에서 교반을 멈추고, 균일하게 혼화된 유액을 조제했다.
처방예 3
POE(20) 소르비탄모노스테아레이트 2.00중량부, POE소르비탄테트라올레에이트 0.50중량부, 모노스테아르산글리세릴 0.50중량부, 스테아르산 7.0O중량부, 세틸 알콜 3.00중량부, 팔미트산 세틸 3.00중량부, 호호바유 7.00중량부, 파라핀 3.00중량부 및 적당량의 방부제를 혼합하고, 80℃에서 교반하면서 용해하여 용액(1)을 조제했다. 한편, 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물 5.00중량부, 1,3-부틸렌글리콜 7.00중량부 및 정제수 62중량부를 혼합하고, 80℃에서 교반하면서 용해하여 용액(2)을 조제했다.
이어서, 용액(2)에 용액(1)을 소량씩 가하고, 유화하고, 교반하면서 냉각하고 40℃로 강온한 시점에서 교반을 멈추어, 균일하게 혼화된 크림을 조제했다.
처방예 4
농축 그레이프 후르츠 쥬스 100g, 당류 150g, 벌꿀 15g, 실시예 2와 동일한 조건으로 조제한 아세롤라 종자의 추출물(A) 1.5g 및 적당량의 향료에, 전체량이 1000g이 되도록 정제수를 혼합했다. 이어서, 95℃에서 20분간 살균하고, 100ml씩 무균적으로 병에 충전하여 그레이프 후르츠 쥬스를 제조했다.
처방예 5
POE(30)POP(6) 데실테트라데실에테르 0.6중량부, 에탄올 10.0중량부 및 메틸파라벤 0.1중량부를 50℃에서 혼합 교반한 용액에, 별도로, 시트르산 나트륨 0.1중량부, 피롤리돈카르복실산 나트륨 1.0중량부, 1,3-부틸렌글리콜 4.4중량부 및 적당량의 정제수를 50℃에서 혼합 교반한 용액을 가하고, 교반하면서 30℃까지 냉각했다. 또한 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물 2.0중량부를 첨가하여 혼합 교반한 후, 최후에 적당량의 정제수를 가하여 전체량을 100중량부로 조정했다. 다시, 교반하여 균일하게 혼화하고 화장수를 조제했다.
처방예 6
1,3-부틸렌글리콜의 배합량을 3.5중량부 및 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물의 배합량을 5.0중량부로 변경한 이외는 처방예 5와 동일하게 화장수를 조제했다.
비교 처방예 1
1,3-부틸렌글리콜의 배합량을 5.0중량부로 변경하고, 실시예 8에서 조제한 아세롤라 종자의 추출물을 배합하지 않은 이외는 처방예 5와 동일하게 화장수를 조제했다.
실시예 9
처방예 5에서 조제한 화장수에 대해, 실시예 2와 동일한 티오시안산철법에 의해 리놀레산의 산화억제 작용을 측정했다. 비교로서, 아세롤라 종자 추출물을 포함하지 않는 비교 처방예 1에서 조제한 화장수에 대해서도 마찬가지로 산화억제 작용을 측정했다.
본 실시예에서는, 실시예 2에서 반응액에 가한 아세롤라 종자 추출물 0.4mg, 99.5% 에탄올 2ml 및 증류수 2ml 대신에, 처방예 5 또는 비교 처방예 1에서 조제한 각 화장수 2ml, 99.5% 에탄올 1.8ml 및 증류수 0.2ml를 가하고 시험을 행했다.
흡광도의 경시적변화의 결과를 도 7에 나타낸다. 또, 시험개시후 28일째의 처방예 5에서 조제한 화장수 시료의 산화율을, 비교처방예 1에서 조제한 화장수 시료의 21일째의 산화율(△흡광도)을 100%로 하고, 실시예 2와 동일하게 하여 구한 결과, 7.2% 였다.
도 7 및 상기 산화율 시험의 결과로부터 명확한 바와 같이, 아세롤라 종자 추출물을 배합하여 조제한 처방예 5의 화장수는, 비교처방예 1의 화장수에 비해 우수하거나 리놀레산의 산화억제작용을 나타냈고, 또, 28일 경과후에도 그 작용은 지속되고 있었다.
이것에 의해, 아세롤라 종자 추출물을 배합한 화장수에는, 안정성이 우수한 항산화작용이 있는 것이 확인되었다.
실시예 10
아세롤라 종자 추출물을 배합한 화장수의 항산화작용이, 화장수 조제후 1개월 이상이 경과해도 지속되어 유효한 것임을 확인하기 위해서, 처방예 5, 처방예 6 및 비교 처방예 1에서 조제한 화장수를 하기 조건으로 6개월간 보존하고, 보존후의 DPPH 라디칼 소거작용의 변화를 실시예 7과 동일한 항산화 시험을 행하여 평가했다.
보존방법
처방예 5 및 처방예 6의 화장수를 조제후, 차광 조건 하, 4℃, 25℃, 40℃에서 각각 6개월간 보존하고, 조제 직후, 조제 2주간 후, 및 조제후 1, 2, 3, 4, 6개월 경과후에 DPPH 라디칼 소거시험을 실시했다. 또, 비교로서, 비교 처방예 1의 화장수에 대해서도 동일하게, 보존 및 시험을 갔다.
본 실시예에서는, 실시예 7에 있어서 반응액에 가한 아세롤라 종자 추출물 400μl 대신에, 처방예 5 또는 처방예 6에서 조제한 화장수 400μl를 가하여 시험을 행했다. 또한, DPPH 라디칼 소거율(%)은, 처방예 5 및 처방예 6에서 조제한 화장수 대신에, 동일한 조건으로 보존한 비교 처방예 1에서 조제한 화장수를 첨가한 시료의 흡광도를 콘트롤로 하여, 실시예 7과 동일하게 하여 구했다.
처방예 5 및 처방예 6에서 조제한 화장수에 대해 6개월간 행한 DPPH 라디칼 소거시험의 결과를, 각각 도 8 및 도 9에 각각 나타낸다.
도 8 및 도 9로부터 명확한 바와 같이, 아세롤라 종자 추출물을 배합한 처방예 5 및 처방예 6의 화장수는 우수한 DPPH 라디칼 소거작용을 나타내고, 그 작용은, 40℃라는 엄한 조건하에서 6개월간 보존한 후에도 손실되지 않았다. 또, 아세롤라 종자 추출물의 배합량이 많은 처방예 6의 화장수쪽이 높은 항산화 작용을 나타내고, 지속성에 있어서도 우수했다.
이상에서, 아세롤라 종자 추출물을 배합한 화장수에는, 장기간, 특히 고온에서의 장기보존에도 강하고, 우수한 항산화작용이 있는 것, 그리고 그 작용은, 아세롤라 종자 추출물의 배합량이 높을 수록 보다 기대할 수 있는 것이 확인되었다.
Claims (5)
- 아세롤라 종자의 추출물을 유효성분으로서 포함하는 것을 특징으로 하는 항산화제.
- 제 1 항에 있어서, 아세롤라 종자의 추출물이 퀘르시트린을 포함하는 것을 특징으로 하는 항산화제.
- 제 1 항의 항산화제를 포함하는 것을 특징으로 하는 피부외용제.
- 제 1 항의 항산화제를 포함하는 것을 특징으로 하는 화장료.
- 제 1 항의 항산화제를 포함하는 것을 특징으로 하는 식료품.
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