JPS63258585A - 抗生物質a10255複合体および因子類、そのプロセス、微生物類および製造 - Google Patents
抗生物質a10255複合体および因子類、そのプロセス、微生物類および製造Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
本発明は、便宜的に抗生物質A10255と一般的に命
名した新規発見に係る抗生物質に関する。 発明の要旨 抗生物質A10255は、6個の異な°つた化合物もし
くは因子(B、C’、E、F、σおよびH因子)から成
る混合物を構成している。これらの因子混合物は新規ス
トレプトマイセス・ガードネリ(Streotomyc
es gadnerr )株−NRRL1553、NR
RL18260、NRRL15922、またはA102
55を生産するその変異株を、液中好気的発酵条件下で
、抗生物質A10255が実質量生産されるまで培養す
ることによって一緒に生産される。−緒に生産されたB
、C,E、F、GおよびH因子は、発酵ブロス(少!l
)および菌糸体(多緻)から溶媒で抽出する。−緒に生
産された因子額は抽出物を濃縮し、濃縮物を水と非相溶
性の溶媒で抽出し、抽出液を濃縮して集め、f尋られた
複合体含有結晶を乾燥することによって混合物として分
離する。ここで注意すべきことは、発酵技術および本明
細書に3いて使用するl−抗生物質複合体」およびrA
10255複合体」の用語は共有結合的に結合している
化学的複合体を表すのではナク、−緒に生産された独立
した抗生物質因子の混合物を示すものであることである
。抗生物質発酵の当業者には4酷に理解されようが、抗
生物質複合体中に生産される個々の因子の割合は採用し
た発酵条件によっ゛て変化する。A10255複合体を
さらに精製し、一連のクロマトグラフィー手順によって
独立したB、C,E、F、GおよびH因子に分離する。 抗生物質A10255複合体および独立したそのB、C
,E、F、GおよびH因子は、ヒトおよび動物の病原微
生物の発育を阻止する。またA10255複合体および
その個々の因子は、*のヒナSよびウシに2ける飼料利
用効率を増大してその成長を促進させ、また離乳ブタの
飼料利用効率を増大させる。 また本発明は、微生物ストレプトマイセス・ガードネリ
・、NRRL15537、ストレプトマイセス・ガード
ネリ・NRRL18260およびストレプトマイセス・
ガードネリ・NRRL15922、またはA10255
を生産するその変異株の生物学的純培養およびA102
55複合体の生産方法を提供する。また本発明は、A1
0255複合体または独立したA10255の因子を鳴
のヒナ、離乳ブタおよびウシの好適な飼料と組合わせて
含有している飼料組成物を提供する。また本発明は、好
適な基剤とA10255複合体、A10255(7)B
因子、A10255のC因子、A10255のE因子、
A10255のF因子、A10255のC因子ま°たは
A10255のH因子の治療的有効量を含有して成る多
数の医薬組成物を包含する。さらにもう一つの態様とし
て、チオストレプトン耐性遺伝子を有するストレプトマ
イセス種の細胞を選択するのに本発明のA10255褒
合体を使用できる。
名した新規発見に係る抗生物質に関する。 発明の要旨 抗生物質A10255は、6個の異な°つた化合物もし
くは因子(B、C’、E、F、σおよびH因子)から成
る混合物を構成している。これらの因子混合物は新規ス
トレプトマイセス・ガードネリ(Streotomyc
es gadnerr )株−NRRL1553、NR
RL18260、NRRL15922、またはA102
55を生産するその変異株を、液中好気的発酵条件下で
、抗生物質A10255が実質量生産されるまで培養す
ることによって一緒に生産される。−緒に生産されたB
、C,E、F、GおよびH因子は、発酵ブロス(少!l
)および菌糸体(多緻)から溶媒で抽出する。−緒に生
産された因子額は抽出物を濃縮し、濃縮物を水と非相溶
性の溶媒で抽出し、抽出液を濃縮して集め、f尋られた
複合体含有結晶を乾燥することによって混合物として分
離する。ここで注意すべきことは、発酵技術および本明
細書に3いて使用するl−抗生物質複合体」およびrA
10255複合体」の用語は共有結合的に結合している
化学的複合体を表すのではナク、−緒に生産された独立
した抗生物質因子の混合物を示すものであることである
。抗生物質発酵の当業者には4酷に理解されようが、抗
生物質複合体中に生産される個々の因子の割合は採用し
た発酵条件によっ゛て変化する。A10255複合体を
さらに精製し、一連のクロマトグラフィー手順によって
独立したB、C,E、F、GおよびH因子に分離する。 抗生物質A10255複合体および独立したそのB、C
,E、F、GおよびH因子は、ヒトおよび動物の病原微
生物の発育を阻止する。またA10255複合体および
その個々の因子は、*のヒナSよびウシに2ける飼料利
用効率を増大してその成長を促進させ、また離乳ブタの
飼料利用効率を増大させる。 また本発明は、微生物ストレプトマイセス・ガードネリ
・、NRRL15537、ストレプトマイセス・ガード
ネリ・NRRL18260およびストレプトマイセス・
ガードネリ・NRRL15922、またはA10255
を生産するその変異株の生物学的純培養およびA102
55複合体の生産方法を提供する。また本発明は、A1
0255複合体または独立したA10255の因子を鳴
のヒナ、離乳ブタおよびウシの好適な飼料と組合わせて
含有している飼料組成物を提供する。また本発明は、好
適な基剤とA10255複合体、A10255(7)B
因子、A10255のC因子、A10255のE因子、
A10255のF因子、A10255のC因子ま°たは
A10255のH因子の治療的有効量を含有して成る多
数の医薬組成物を包含する。さらにもう一つの態様とし
て、チオストレプトン耐性遺伝子を有するストレプトマ
イセス種の細胞を選択するのに本発明のA10255褒
合体を使用できる。
A10255の3虫立したB、C,E、F、GEよびH
因子の赤外吸収スペクトルをKBrディスク法で測定し
た。第1図はB因子、第2図はC因子、第3図はE因子
、第4図はF因子、第5図はC因子、第6図はH因子の
赤外吸収スペクトルである。 主としてB、C1E、F、GjdよびH因子から成るA
10255の複合体は、ストレプトマイセス・ガードネ
リのこれまで記載されていない株、NRRL15537
またはNRRL18260、またはA10255を生産
するその変異株を、同化し得る炭水化物源、窒素源およ
び無機塩を含有する水性培地中でA10255複合体が
生産されるまで培養することによって生産する。 抗生物質を生産する多くの培養の場合と同じく、ニス・
ガード不りNRRL15537、NRRL18260ま
たはNRRL15922のA10255生産株の発酵か
ら、多数の抗生物質作用物質の副生量が生じる。抗生物
質A10255のB因子はNRRL15537培還によ
って生産される主要因子であり、C,E、F、Ggよひ
H因子はそれよりも少量であるが単1iiI可能な歌で
生産される。その他の因子は単離するに値しない程変微
着の存在であるか、あるいは比較的不安定である。 Gji5よびH因子はNRRL18260培養の発酵か
ら、C因子を主要丙子として単離される。−緒に生産さ
れる個々の因子の曖は、上記の任意の微生物発酵毎にそ
れぞれ変化し得る。 発酵中に一緒に生産され、混合物として得られた抗生物
質因子ff1B、C,E、F、GおよびHをA1025
5複合体と呼ぶ。独立した各因子を相互に分離し、F記
に示した理学的8よび生物学的諸性質を有する明確な実
在物質として単離した。 「薬学的に許容し得る塩」の用語は、本発明の化合物の
アルカリ金属塩Sよびアルカリ土類金属塩(例えばリチ
ウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩およびカルシウム塩
)および本発明の化合物と1酸、臭化水素酸、硫酸3よ
びリン酸のような酸の間に作成される酸付加塩とを含む
。 各抗生物質因子の理学的特徴 A10255B因子 A10255のB因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロフラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微漬色の非結晶性粉末
である。 B因子の元素分析結果から、炭素49.25%;水素3
.94%;窒素15.65%;酸素21.36 %3
よび硫黄6.73%で示される近似百分率組成(平均値
)を有することが判明した。 高速原子F[質鎗分析によって測定したA10255B
因子の見掛けの分子量は約1244ダルトンである。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中で行ったA102
55B因子の電気滴定により、4.9.11.2 #よ
び12.8で示されるpKamを有する滴定可能な3個
の基が存在することか判明した。 B因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)から、
アンモニア(5268ミリモル/Tll9)およびスレ
オニン(629ミリモル/mg)の存在が判明した。ま
たこの分析に3いて、ヒスチジン・ピークの位置の後に
表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性3よび塩基性メタノール中で得られたB因子
の紫外部吸収スペクトルの人 は245aX nm(ε=66.000)であった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付した第
1図に示した。スペクトル中に認められ(、□) た待に著しい最 収値は、3373.2969.29
32、△ 2875.1661.1598.1520.1494.
1395.1250.1114.1084.996,9
32および900(Qm−−1)である。 両市水素化ジメチルスルホキシド中、500MHzに3
けるB因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル
は下記の通りである。 共鳴潔 化学シフト 多重度1
10.53 52
9.95 33 9.
86 34 9.79
35 9.61
56 9.58 S7
9.09 38
8.90 T9
8.84 Dlo
8.67 311 8.6
0 S12 8.51
S13 8.48
D14 8.39
515 8.25 D
16 8.24 S(つ
づき) 17 8.04 D18
6.53 *S 19 6.39 T2O6,
115 215,95S 22 5.84 523
5.82 324
5.79 325 5.76
+S 26 5.68 S27
5.64 328
5.44 DQ29 5.
16 D30 4.80
DD31 4.67
DD32 4.63 DD3
3 4.24 B S34
2.21 DQ35
1.62 D36
1.11 D37 1.01
T(4増強 十三咳増強 過眠水素化ジメチルホルムアミド中、125MH2にお
けるB因子の13C−核磁気共鳴スペクトル1
172.88 S2
169.17 S3 168
.87 S4 164.9
OS 5 163.67 S5
163.07 S7
162.84 S8 1
62.68 S9 162.
61 810 161.57
SLl 160.32
Si2 160.17
S13 160.01 S1
4 159.46 S15
15 B、96 Si2
158.10 Si2
149.39 S18 149
.37 S19 148.79
S20 142.05
S21 146.88
S22 142.05 D23
141.32 D24
140.68 D25
139.23 S26
136.33 S(つづき) 27 136.29 328
136.14 329 13
5.26 D30 134.23
531 133.82
332 133.28 333
130.21 534 1
29.07 335 127.22
D36 125.94
D37 124.98
D38 122.36
339 121.47 D40
110.92 T
41 110.49 T42
109.98 T43
109.46 T44 106.
23 T45 104.73
T46 67.37
D47 57.94
D48 46.33 D49
40.24 T50
20.74 T51 20.
67 Q52 12.93
QS=−重線、D=二暇線、T=三市線、Q=
四屯線。 A10255C因子 A10255のC因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロフラン
:水(4: 1 (v:v))に可溶性の白色ないし微
黄色の非結晶粉末である。 C因子の元素分析結果から、炭素49.18%;水素3
.86%;窒素17.89%;酸素18.28%および
硫直6.46%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 高速原子衝砿質階分析によって測定したAlO255C
因子の見掛けの分子量は約1174ダルトンである。C
sIをvAr$物質として使用して測定した正確な質優
は1175.35(M+H)であった。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でAlO255C
因子の電気滴定(初MpH値、7.29)を行い、2.
9(不確実)および12.0 で示されるpKa値を有
する2個の滴定可能な基が存在することが判明した。 C因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)により
、アンモニア(7429ミリモル/ mg) sよびス
レオニン(758ミリモル/mg)の存在が判明した。 またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置の後
に表れる巨大な未&m認のピークか証明された。 中性、酸性および塩基性メタ/−ル中で得られたC因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
63,000)でめった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付の第2
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3375.2973.2932.2876.
1661.1597.1494.1427.1345.
1305.1249.1111.1083.984.9
33および894cm−’−でめった。 過市水素化ジメチルスルホ牛シト中、360MH2で得
られるC因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナ
ル(δ)は10.51.10.08.9,84.9.5
7.9.10.8.88.8.03.7.94.7.5
3.5.15(以上の値はすべてD20で交換可能な値
である)、8.67.8.59.8.51.8.49.
8.38.8.25.8.24.6.57.6.52.
6,38.6.11.5.91.5.78.5.74.
5.70.5.65.5.63.5.44.5.15.
4.79.4.67.4.63.4.23.2.21.
1.62.1.11および1.01 でめった。 A10255のC因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロ7ラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微黄色の非結晶性粉末
である。 C因子の元素分析結果から、炭素48.03%;水素3
.91%;窒素15.76%;酸素17.09%および
硫黄5.63%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 高速原子衝・砿質量分析によって測定したAlO255
E因子の見掛けの分子量は約1258ダルトンである。 CsIを漂準物質として使用して測定した正確な質社は
1259.55(M+H)であった。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でAlO255E
因子の電気滴定を行い、4.85.11.1および13
.2で示されるpKa値を有する3個の滴定可能な基が
存在することが判明した。C因子のアミノ酸分析(6N
塩酸で加水分解後)により、アンモニア(8580ミリ
モル/jn?>およびスレオニン(716ミリモル/m
g)の存在が判明した。 またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置の後
に表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性および塩基性メタノール中で得られたC因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
77.000)であった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付の第3
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3367.3361.2966.1664.
1501.1389.1254.1102 および88
9c+++’ でめった。 両歌水素化ジメチルスルホキシド中、270MH2で得
られるC因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグ
ナル(δ)は10.54.10.00.9,94.9.
81.9.60.9.56.9.45.8.89.8.
84.8.66、8.59゜8.50.8.47.8.
39.8.25.8,22.8.10.6.53.6.
50、6.24.5.95.5.86.5.84.5.
77.5,64.5.55.5.52.5.44.5.
10.4,80.4.66.4.64.4,22.2.
78.1.60.1.11および1.00である。 A10255のF因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロ7ラン
:水(4: i (v:v))に可溶性の白色ないし微
黄色の非結晶性粉末である。 F因子の元素分析結果から、炭素49.65%;水素4
.23%;窒素17.11%;酸素22.08%および
硫黄7.78%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 制速原子衝°砿質盪分析によって測定したA10255
F因子の見掛けの分子量は約1188ダルトンである。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でA10255F
因子の電気滴定(初期pH値、7.08)を行い、12
.5で示されるpKa値を有する滴定可能な基が存在す
ることが判明した。 F因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)により
、アンモニア(7226ミリモル/mg)オよびスレオ
ニン(735ミリモル/mg)の存在することが判明し
た。またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置
の後に表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性および塩基性メタノール中で得られたF因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
71,500)でめった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付のM4
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3369.2943.2907.2846.
1663.1588.1519.1493.1425.
1337.1288.1251.1151.1110.
1083.995.927.890,807.776お
よび751σ でめった。 両市水、素化ジメチルスルホキシド中、360MH2で
辱られるF因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグ
ナル(δ)は10.51.10.17.9,88.9.
77.9.54.9.10.8.90,8.88.8.
66.8.59.8.51.8.49.8.25.8.
38.8.24.8.06.7.94.7.53.6.
56.6.51.6.27.6.23.6.12.6,
12.5.96.5.77.5.76.5.71.5.
71.5.64.5.62.5.47.5.14.4.
77.4.65.4,62.4.20.2.77.2.
48.2.48.1.58.1,08.0.98および
0.98 である。 A10255G因子 A10255のG因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロフラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微黄色の非結晶性粉末
である。 G因子の元素分析結果から、 実測値(%) C51,46 H3,82 N 17.62 0 19.38 3 7.03 99.31% で示される近似百分率組成を有することが判明した。 G因子の紫外部吸収スペクトルは、中性エタノール中で
λmax = 247 nm (ε=72,200)、
酸性エタノール中でλmax=247nm(ε=73,
400)、塩基性エタノール中で^max=211nm
(ε=27.200)である。 A10255G因子の赤外吸収スペクトル(KBrディ
スク法)を添付の第5図に示した。 両市水素化ジメチルスルホキシド中、500MH2で得
られたG因子の1H−核磁気共鳴スペクトルは下記のシ
グナルを有する。 共鳴名 化学シフト(δ) 多重度1
10.53 S2
9.95 33
9.83 S4 9.7
9 55 9.59 ”
B S6 9.09
37 8.89
T8 8.84 D9
8.68 310
8.60 S(つづき) 11 8.51 S12
8.48 D13
8.39 S14 8.24
Si2 8.24
D16 8.04 D1
7 6.53 *S L8 6.47 Q19
6.10S 20 5.95 S21
5.84 S22
5.81 S23 5.8
OS 24 5.78 S25
5.76 *S 26 5.68 S27
’5.64 S28
5.44 DQ29 5
.16 D30 4.75
DD31 4.67
DD32 4.63 DD3
3 4.24 B S34
1.77 Q35
1.62 Q36 1
.11 Q粁4増強 BS:幅広い一屯線 DD=二屯項の二重線 DQ=四市項の二重線 G因子の13c−核磁気共鳴スペクトルは、過屯水素化
ジメチルスルホキシド中、125MHz で得られた。 共鳴歴 化学シフト 多重度 1 172.80 S2
168.89 33 168.
71 S4 164.8 OS 5 163.59 36
163.0 OS 7 162.79 S8
162.61 39 162.
53 810 161.52
511 160.24 312
160.12 513
159.94 314 159.
42 515 158.91
316 158.01 317
149.41 518
148.73 S19 148
.04 5(つづき) 20 146.83 S21
141.94 D2
2 141.26
D23 140.62 D24
139.20 S2 s
136.25 S26
136.2 OS 27 136.04 S28
134.2 OS 29 133.81 S30
133.22 S31
130.14 S32
128.99 D33 1
28.7 OS 34 127.08
D35 125.83 D3
6 124.92 D37
123.66 S38 1
21.40 D39 110.7
7 T40 110.22
T41 109.85 T
42 109.35
T43 106.12
T44 104.65
T45 67.
26 D46
57.94 D47
46.49 D(つづき) 48 40.12 Q49
20.60 Q51
20.22 Q52 13.
41 QA10255H因子 A10255のH因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロフラン
:水(4: 1 (v:v))に可溶性の白色ないし微
貨色の非結晶性粉末である。 H因子の元素分析結果から、 実測値(%) C50,36 H3,72 N 18.61 0 18.54 S 8.20 99.43% で示される近似百分率組成を有することが判明した。 H因子の紫外部吸収スペクトルは、中性エタノール中で
^max=244nm(ε=74,000)、酸性エタ
ノール中でλmax=245nm(ε=74,500)
塩基性エタノール中でλmax=211nm(ε=23
.800)である。 H因子の125MHzにおける13C−核磁気共鳴スペ
クトルは扇型水素化ジメチルスルホキシド中で得られ、
下記のシグナルを有する。 共鳴凋 化学シフト(δ) 多咀度2
168.92 S3
168.86 54 165
.14 35 163.63
36 163.03
57 162.65 38
162.33 39
161.52 510 1
60.30 S11 160
.14 512 159.99
313 159.45
S14 1 s 8.94
515 158.09
516 149.43 *S(つづき) 17 148.78 Si2
148.03 Si2
146.9 OS 20 142.07 D21
141.30 D22
140.68 D23 139.
21 S24 136.96
S25 136.10S 26 134.67 S27
134.07 S28
133.8 OS 29 130.27 S30
129゜03 S31
128.78 D32 127.
24 D33 125.94
D34 124.99 D
35 123.71 S36
121.50 D37
111.76 Ta2 110.
45 Ta2 106.11
T40 104.67
T41 104.44 T42
67.39 D43
57.95 D44 46.54
D(つづき) 45 40.22 T46
20.66 Q47
20.34 Q48 13.
52 Q*市複度 扇型水素化ジメチルスルホキシド中、500MHzKお
ける1H−核磁気共鳴スペクトルは下記のシグナルを有
する。 共鳴潔 化学シフト 多改度i
i o、s t s
2 10.08 33
9.81 54
9.79 35 9.
57 56 9.10S 7 8.86 78
8.83 D9
8.68 510
8.60 Dl 1 8
.51 312 8.50
Dl3 8.39
S14 8.25
Dl5 8.24
S16 8.03
D(つづき) 17 7.94
318 7.53
S19 6.56
320 6.53
321 6.48 Q22
6.12 3
23 5.96
S24 5.8 OS25
5.78 S26
5.74 527
5.72 528
5.65 329
5.64 930
5.44 DQ31
5.15 D32
4.80 DD3
3 4.68 DD34
4.63 DD
35 4.24 BS36
1.78 D
37 1.62
D38 1.10 DA
10255H因子の赤外吸収スペクトル(KBrディス
ク法)を添付の第6図に示した。 高速原子衝撃質量分析によって測定したA10255H
因子の見掛けの分子看は約1160である。 CsIを標準物質として使用しで測定した正確な質量は
1161.32 (M+H)であった。 A10255を生産する親株ニス・ガードネリNRRL
15537は、元来A10255.1として同定された
ものであるが、以下の項に記載したように実施した分類
学的検討によりこれを分類した。 A10255.1株の分類 A10255.1株の分類学的な研究は、リリー・リサ
ーチ・ラボラトリーズ(Li1ly Re5earch
Laboratories ) のフレプリ゛ンク°
P−マー°ン氏(Frederick P、 Mert
z ) によって行われた。 これらの研究に基づき、この微生物はストレプトマイセ
ス・ガードネリ〔ワックスマン(Waksman)19
42]・ワックスマン1961ATCC23911の新
規株として分類される。この分類は、この種に関する公
開された記載〔ブキャナン(R。 E、 Buchanan )およびギボンズ(N、E、
Gibons)編「バーギーズ・マニュアル・オブ・
デイターミネーテイブ・バク°テリオロジー(Berg
ey’ sManual of Determin
ative Bacteriology)]、第8版
、ザ・ウィリアムス・アンド・ウイルキンス・カンパニ
ー(The Williams andWilkin
s (o、)、バルチモア(Baltimore )、
1974GIE;シャーリング(E、B、 Shirl
ing )およびゴツトリーブ(D、 Gottlie
b)、rコオペラテイブ・ディスクリプジョン・オブ・
タイプ・カルチャーズ・オブ・ストレプトマイセス(C
ooperative Description of
Type Cu1turesof Streptom
yces ) J、インターナショナル・ジャーナル・
オブ・システマテイック・バクテリオロジー(Int、
J、 5yst、 Bactriorl、)、18(
4)、279〜392(1968手)およびワックスマ
ン(S、A、 Waksman )、「ジ・アクチノマ
イセーツ(The Actinomycetes )、
第1巻」、ザ・ウィリアムス・アンド・ウイルキンス・
カンパニー(The Williams and Wi
lkins Co、)、バルチモア(Ba l t i
mo re )、 1961甲]の考案と同時に実験室
の比較に基づいている。 ストレプトマイセス種の特性決定に関し、インターナシ
ョナル・ストレプトマイセス・プロジェクト(ISP)
によって推奨されている方法〔シャーリング(E、B、
Shirling)およびゴツトリーブ(D、 Go
ttlieb)、 [メンッズ・フォア・−hラクタリ
ゼーション・オブ・ストレプトマイセス・スピーシーズ
(Methods for Characteriza
tionof Streptomyces 5peci
es)J、 インターナショナル・ジャーナル・オブ・
システマテイック。 バクテリオロジー(Int、 J、 5yst、 Ba
cteriol、)、16巻(3)、313〜340(
1966手)]に従って試験し、さらに幾つかの追加的
な試験を実施した〔ブラゼビツク(D、J、 Blaz
evic)およびエデラー(G、M、 Ederer)
、[プリンシプルズ・オブ・バイオケミカル・テスラ・
イン・ダイアグノスティック−フィクロバイオロジー(
Principles ofBiochemical
Te5ts in Diagnostic Micro
−biology J 、ジョン・ウィリー・アンド
・サンズ・インコーポレーテイッド(John Wil
ey andSons、 Inc、 )、ニーL−ヨー
ク、1975年1゜最終alfが1.0%に等しくなる
ように濾過滅菌した炭素源を添加したrsPA9の基礎
培地で炭素利用様式を検討した。プレートを30℃でイ
ンキュベートして14日後に検査した。 ISP&1(トリプトン−酵母エキスブロス)、ISP
&6(ペプトン−酵母エキス鉄寒天)、Ispg7(チ
ロシン寒天)およびチロシンを除いた修飾I S P
/M 7培地でメラノイド色素産生(色素産生性)を検
討した。 でんぷんの存在をISP&4(無機塩−でんぷん寒天)
プレート上でヨードで試験することにより、でんぷん加
水分解性を検討した[ブラゼックおよびエデラー(@記
)参照]。 光学顕微鏡を使用して形態を楕丘した。走丘型電子顕微
鏡(SEM)を使用して胞子表面構造の形態を晴丘した
。 所望の濃度に等しくなるまで塩化すl−IJウムをIS
P&2寒天に添加することにより、塩化ナトリウム抵抗
性を測定した。 1、C35−NBS・セントロイド・カラー・チャー7
(Centroid Co1or Charts )の
標準サンプル潔2106〔ナショナル・ビュワー・オブ
・スタンダーズ(National Bureu of
5tandards)1958、U、S、デパートメ
ント・オブ・コマース(U、S、 Departmen
t of Commerce )、ワシントン・DC)
#よびザ・カラー・ハーモニー・マニュア/L/ (t
he Co1or Harmony Manual )
、第4版、〔カラー・スタンダーズ・デパートメント(
ColorStandards Department
)、コンテナー・コーポレーション・オブ・アメリカ(
Container Corpo−ration of
America )、シカゴ、イリノイ、1958)
を使用して色調名を決之した。 細胞壁の糖項は、レジエバリアーの方法(M、P。 Lecheva I ier ) [rアイデンティフ
ィケーション・オブ・エアロビック・アクチ/マイセー
ツ・オブ・クリニカル−インポータンス(I dent
ificationof Aerobic Actin
omycetes of C1inicalIC11n
icalI ) J、ジャーナル・オブ・ラボラトリ−
・アンド・クリニカル・メデイシン(J、Lab。 Cl1n、 Med、)、71巻、934〜944 (
1968手)〕で検討した。ジアミノピメリン酸(oA
P)異性体は、ベラカー(B、 Becker )、
レジエバリアー(M、P、 Lecheva 1 ie
r )、ゴートン(R、E 、 Gordon )お
よびレジエバリアー(H,A、 Lechevalie
r)rラピッド・デイファランシエーション・ビトウイ
ン・ノカルジア・アンド・ストレプトマイセス・パイ・
ペーパー・クロマトグラフィー・オプ・ホール・セル・
ハイドロライゼーツ(Rapid Differ−en
tiation between Nocardia
and 5trept −omyces by Pap
er Chromatography of Whol
ecell Hydrolysates)J、 アプラ
イド・マイクロバイオロジー(Appl、Microb
iol、)、 11@、421〜423(1964手)
〕に示されているクロマドグフィーの方法によって罐定
した。 培養特性 A10255.1は制限増殖型の発達が非常に乏しい気
中菌糸によって特徴付けられる。気中菌糸は白(W)〜
灰色(GY) の系統の色に属する胞子塊を有する。 トレスナーおよびバッカス・システムの色5表(カラー
・ハーモニー・マニュアル(前記)およびバッカス(E
、 J 、 Backus )およびトレスナ−(H,
D、 Tresner)、「システム・オブ・カラー・
ホイールズ・フォア・ストレプトマイセス・タキン/ミ
ー(System of Co1or WheeIsf
or Streptomyces Taxonomy)
J、アプライド−マイクロバイオロジー(Appl、M
icrobiol、)、11巻、335〜338(19
56手)〕において、白色系で最も近い色調は亘オイス
ター・ホワイトであり、灰色系で最も近い色調は基ライ
ト・グレイである。この培養の特徴はグリセリン−アス
パラギン寒天(ISP&5)で最もよく観察される。 たいていの培地で気中胞子の発達は乏しいから、色の測
定は甚だ難しい。 この培養の背面には、なんら著しい色素は認められない
。背面の色調はオレンジ色−眞色〜黄色−茶色であり、
pHによって影響されない。産生される唯一の可溶性色
素は、チロシン寒天(IsPg7)およびトマトペース
ト−オートミール寒天(TPO)で生成する明るい茶色
の色素、およびグリセリン−グリシン寒天で生成する明
るいオレンジ色の色素である。変異性のために移植した
場合、この培養は安定であり、均質である。 A10255,1 およびニス・ガードネリ・ATC
C23911の培養特性を第1表に示す。 形態学的特性 A10255.1は、発達が乏しく断片を作らない単軸
分枝型の気中胞子を産生ずる。担胞子体は真直ぐに並び
、屈曲した分校を有する。らせん体、菌核、胞子嚢また
は運・幼性胞子は観察されなかった。A10255.1
はプリダム(pridham)らのレクタス・フレキシ
ビルス(Rectus −f 1exibilus)(
RF)・セクションに位置づ゛けられる〔プリダム(T
、G、Pridham) ら、[ア・ガイド・フォア
・ザ・クラシフィケーション・オブ・ストレプトマイセ
ス・アコ−ディング・ツー・セレクテツド・グループス
(A Guide for the C1assif
icationof Streptomyces Ac
cording to 5electedGroups
) J 、アプライド・マイクロバイオロジー(Ap
pl、Microbiol、) 6巻、52〜79 (
1957手)〕。 気中胞子が観察できた培地では、すべて同一の形態が観
察された。一般に成熟した胞子連鎖は連鎖1本当りに1
0〜50個の胞子を含んでいる。 胞子の形は円筒型である。胞子の大きさは長さが0.9
〜1.0μM、幅が0.5〜0.6μMである。 平均の大きさは1.6 X 0.6μMである。胞子の
表面構造は平滑である。 生理的特性 全細胞の加水分解物は、メン異性体が存在しないLL−
ジアミノピメリン酸を含有している。全細胞の加水分解
物に存在している糖頑は、グルコース、マンノースおよ
びリボースであった。これらの特徴はI型細胞壁である
ことを示し、NC1即ち特色のない糖パターンを表して
いる〔レジエバリアー(M、P、 Lechevali
er )(前記)〕。この細胞壁の主構成要素の組合わ
せは、この菌がストレプトマイセス属に属することを示
している〔レジエバリアー(@記)、およびブキャナン
Sよびギボンズ(編)(@記)〕。 A10255.1の炭素利用の型は、L−アラビノース
、D−フルクトース、D−ガラクトース、D−”ルコー
ス、i−イノシトール、ラフィノースおよびD−キシロ
ースが発育に利用される。D−マンニット、L−ラムノ
ース、サリシンおよびシュクロースは発育に役立たない
。下記の第2表はA10255.1およびニス・ガード
ネリATCC23911で観察された炭素利用の型を比
較したものである。 第2表A10255.1およびニス・ガードネ1JAT
cc23911による炭素化合物の利用炭素源
A10255.1 ニス・ガードネリ無添加
−8− L−アラビノース +5 +D−フ
ルクトース + +D−ガラクトー
ス + +D−グルコース
+ +l−イノシトール 十
−D−マンニット −− ラフィノース + +L−ラム
ノース +サリシン
−− シュクロース +D−キ
シロース + +−8=利用なし +5=利用 培4A10255.1はでんぷんを加水分解し、スキム
ミルクを部分的に加水分解し、カタラーゼを産生じ、ゼ
ラチンを液化し、硝酸塩を亜硝酸塩に還元した。 A10255.1は塩化ナトリウムに対し6%まで抵抗
性を有し、4°〜40℃の温度で発育し得る。 A10255.1をトリプトン−酵母エキスブロス(I
SP&1)およびペプトン−酵母エキス鉄寒天(ISP
&6)斜面で発育させるとメンノイド色素が産生ずる。 チロシン寒天(I S P&7 )斜面ではメ、ラノイ
ド色素を産生じない。 種の決定 A10255.1の培養学的、形態学的および生理学的
な特徴を利用して、これと頌似の種の公開された記述と
比較を行った。次のストレプトマイセスの4種を選び、
同時実験的な比較によって検討した。 ストレフトマイセス・オーレオファシクルス8(Str
promyces aureofasciculus)
ストレプトマイセス・オーレオモノポイディアルス8 (Strpromyces aureomonopo
idiales)ストレプトマイセス・フラボクロモゲ
不ス(Strpromyces fravochro
mogenes)ストレプトマイセス・ガードネリ0 (Strpromyces gardneri)8シヤ
ーリング(E、B、 Shirling)およびゴツト
リーブ(D、 Gottlieb)、「コオヘラテイブ
・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カルチャーズ・
オブ・ストレプトマイセス(Cooperative
Desc −ription of Type Cu1
tures of Streptomyces)[、イ
ンターナショナル・ジャーナル・オブ・システマテイツ
ク・バクテリオロジー(Int、 J。 5yst、 Bacteriol、)、19 (4)、
375〜390C1969年)〕。 5シヤーリング(E、B、 、Shirling)およ
びゴツトリーブ(D、 Gottlieb)、[コオペ
ラティブ・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カルチ
ャーズ・オブーストレプトマイセス(Cooperat
ive Desc−ription of Type
Cu1tures of Streptomyc−es
)J、インターナショナル・ジャーナル・オグ・システ
マテイツク・バクテリオロジー、22t41.265〜
394(1972手)〕。 0シャーリング(E、B、 Shirling) j6
よびゴツトリーブ(D、 Gottlieb)、[コオ
ペラテイブ・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カル
チャーズ・オブ6ストレプトマイセス(Coopera
tive Desc−ription of Type
Cu1tures of Streptomy −c
es ) J 、インターナショナル・ジャーナル・オ
ブ・システマテイック・バクテリオロジー、18 f4
+、279〜392(1968手)〕。 実験室的な比較から、ニス・オーレオファシクルスおよ
びニス・フラボクロモゲ不スとは著しく差異があり、ニ
ス・オーレオモノポイディアルスおよびニス・ガードネ
リとはよく一致した。然しながらニス・オーレオモノポ
イディアルスはアブルーブト・リスト・オブ・バクチリ
アル・ネームズ(Approved Li5t of
Bacterial Names)にはないので考察か
ら除外した。 A10255.1は、培養学的、形態学的Sよび生理学
的にニス・ガードネリと極めて類似している。二つの株
を区別する決定的な培連上の特徴はたいていの培地で気
中菌糸の生成が非常に少ない点である。文献中でニス・
ガードネリはグレイ(GY)・シリーズに属すると記載
されている。然しワックスマンによる本来の記載(S、
A、 Wacksman、前記)およびA10255.
1との実験室における比較では、この株は白色(W)お
よび灰色(GY)の気中菌糸を生じる。二つの培養の背
面の色はほとんど同じである。二つの培摩はいずれもレ
クタス・フレキシビラス(RF)構造、平滑な胞子の表
面構造、円筒型の胞子形態および1−19〜50個の胞
子連鎖を有する。 カタラーゼ産生、ゼラチンの液化、メラノイド色素の産
生、硝酸塩の還元、ミルクおよびでんぷんの加水分解は
二つの株とも同一である。 A10255.1とニス・ガードネリの相違は僅かであ
る。ニス・ガードネリはA10255.1よりも塩化ナ
トリウムに対する抵抗性が一層低く、温度範囲も低い。 ニス・ガードネリは、L−ラムノースおよびシュクロー
スを利用し得る点およびl−イノジットを利用できない
点によってAlO255,1から区別される。これらの
類似点および相違点を下記の表にまとめて示す。 気中1胞子集塊の色(W) 炭素利用カタラーゼ
陽性 塩化ナトリウム抵抗性細胞壁加水分解
物(LL−温度範囲 DAP) − 特殊な色素なし ゼラチン液化 形態(RF) 硝酸塩還元 ミルクの部分的加水分解 背面色素 可溶性色素なし 胞子連鎖の長さ 1抱子の形態 胞子の表面構造(SM) でんぷんの加水分解 第3表に2つの培養の類似点および相違点を詳細に示す
。 第3表 A10255.1およびニス・ガードネリAT
CC23911の比較 特 徴 A10255.1 ニス・ガード
ネリ気中胞子果塊の色調 (W) (W
)炭素利用の型 i−イノジット 十 −L−ラム
ノース +シュクロース
十カタラーゼ
+ +細胞壁の型 I
I特徴的な色素 −− ゼラチン液化 + +メラノイド色
素産生 ISPS工高 + +ISP朧6
+十 ISP高7 − 一形態
(RF) (RF)NaCI抵抗性
(5%)64 硝酸塩還元 + 十背面の色調
YB r YB rスキムミルク
加水分解 部分的 部分的可溶性色素
−− 胞子連鎖の長さ 10〜50 10〜50
胞子の形態 円筒型 円筒型胞子の表
面 平滑 平滑でんぷん加水分解
+ +温度範囲(℃)
4〜40℃ 4〜37℃上記の比較結果から、A 1
0255.1はニス・ガードネリに非常に爛似している
ことが判明した。 したがって培養A10255.1をストレプトマイセス
・ガードネリ(ワックスマン、19421)・ワックス
マン1961、ATCC23911の1株として分類し
た。ニス・ガードネリは「アブルーブト・リスト・オブ
・バクチリアル・ネイムズ」〔スカーマン(V、B、D
、 Skerman)ら、インターナショナル・ジャー
ナル・オブ・システマテインク・バクテリオロジー、3
0(11,225〜420(1980手)〕に8いて承
認されており、したがって正当に公開されている種であ
る。 クリロウイッチら〔クリロウイツチ(W、 Kury−
lowicz)、パスキーウィッチ(A、 Paszk
iewiczλウオツ二カ(W、 Woznicka)
およびカーラアトコツスキ−(W、 Kurzatko
wski )、[ニューメジカル・タキソノミー・オブ
・ストレプトマイセス(Numerical Taxo
nomy of streptomyces)J、ボー
リツシュ・メジカル・パブリシャーズ(Pol−ish
Medical Publishers)、 197
5)によれば、ストレプトマイセスを分mする場合、類
似したウロツクロー(Wrocklaw) 樹状突起
および全般的近似法の双方から、数的表示方法でニス・
オーレオモノボディアルスおよびニス・ガードネリを同
一の菌株群に位置付けしている。この研究に基づく系統
図で、これら2つの株は94の百分率相似性で関係があ
る。この相似性から種における区分は正当なものでない
ことが示唆される。 上記のニス・ガードネリの培養は、ザ・ノーザン・レジ
オナル・リサーチ・デビジョン(TheNorther
n Regional Re5earch Devis
ion)、ニー・ニス・デパートメント・オブ・アグリ
カルチャー(U、S、 Department of
Agriculture)、アグリカルチュラル・リサ
ーチ・サービス(Agri−cultural Re5
earch 5ervice)、ペオリア(Peori
a)、 イリノイズ(IL)61604に寄託され、そ
の保存株の一つとして貯蔵された。本明細書が発効すれ
ば、培養はこのアグリカルチュラル部門からNRRL1
5537の番号のもとに誰でも利用できる。 の説明 A10255.10株、NRRL 18260は、NT
G(N−ニトロングアニジン)で連続的に行う一連の処
理によってその親株A10255.1、NRRL155
37から誘導されたものである。 A 10255.2株(ストレプトマイセス・ガードネ
リNRRL19522として先に掲げた)はA1025
5.1株のNTG にトロソグアニジン)変異株である
。A10255.1株はストレプトマイセス・ガードネ
リNRRL15537である。 A10255.1株およびA10255.2株には多数
の類似点がある。A10255.1株およびA1025
5.2株の分類学的な比較を表形式第5表 A 102
55.1株およびA10255.2気中胞子集塊の色調
W−GYW〜Y炭素利用の型
同じカタラーゼ + や
培養特性 グリセリン−グリシン 寒天での気中菌糸 −十 りザペック寒天での発 育 +
−ある種の培地での特徴的 な色素 + +ゼラチ
ン液化 + 十メラノイド色素産
生 + +形態
RF RFNaCz抵抗性(%66 硝酸塩還元 士 士背面の色調
YBr YBrスキムミルク加
水分解 部分的 完全ある種の培地での可溶性 色素 + +胞子連鎖の
長さ 10〜50 10〜50胞子の形態
円筒型 円筒型胞子の大きさくμM
) 1.Ox0.6 1.3X0.6胞子の表
面 平滑 平滑でんぷん加水分解
+ +上記のストレプトマイセス・ガ
ードネリの培養A10255.2は、ザ・ノーザン・レ
ジオナル・リサーチ、デビジョン(The North
ern RegionalResearch Devi
sion )、ニー・ニス・デパートメント・オブ・ア
グリカルチャー(U、S、 Departmentof
Agriculture )、アグリカルチュラル・
リサーチ・サービス(Agricultural Re
5earch 5ervice )、ペオリア(Peo
ria )、イリノイズ(rL)61604に寄託され
、その保存株の一つとして貯蔵された。 −′ 培養はこのアグリカルチ ュラル門からNRRL 15922の番号のもとに誰で
も利用できる。 AIQ255抗生物質複合体は、これまでに記載のなか
った微生物ストレプトマイセス・ガードネリNRRL1
5537、NRRL18260株またはNRRL159
22株、またはA10255を生産するその変異株を、
同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含有する培地
中で好気的液中培養条件下に、A10255複合体が生
産され、好ましくは抗生物質活性の実質水準が生産され
るまで培養することによって生産することができる。は
とんどの抗生物質活性は一般に菌糸体と一緒に見いださ
れるが、僅かな量の抗生物質活性はブロス中°に見いだ
される。A10255複合体は沖過によって菌糸体(バ
イオマス)を取り出すことによって発酵混合物から最も
容易に分離される。一般にブロスは棄てられる。ついで
抗生物質複合体を菌糸体から単離する。 親株NRRL15537は最も豊富な因子としてB因子
を生産する。変異株NRRL18260は最も豊富な因
子としてBおよびGを生産する。したがって残りの因子
C,E、FおよびHは、いずれの株の場合もはるかに少
量しか生産しない。 菌糸体を極性溶媒(アセトン:水(4:1)のような〕
で抽出し、濃縮し、酸性にし、再び有機溶媒(例えば酢
酸エチル)で抽出し、得られた溶液を濃縮して、A10
255複合体を沈殿させる。 A10255複合体は、さらに精製することなく、動物
飼料または動物飼料プレミックスに直接混合して使用で
きる。また別法として、A10255抗生物質複合体を
薄層クロマトグラフィー、カラムクロマトグラフィーお
よび特に各種の高速液体クロマトクラフィ一手段のよう
な周知のクロマトグラフィー手法により、独立した因子
に分離することができる。実験の部で、独立した因子に
分離するための2.3の特殊手段を説明する。 NRRL15537、NRRL18260またはNRR
L15922でA10255複合体を生産する場合、多
数の異なった培地を使用することができる。 然し生産の経済性、最適な収量および生産物の分離を容
易にするためには、ある一定の培地が好ましい。これら
の培地は、同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含
有すべきである。好適な炭素源はグルコース、でんぷん
、フルクトースおよびグリセリンである。炭素源の最適
濃度は約2〜約5(重り%である。 好ましい窒素源は大豆の酸分解物、カゼインの酸または
酵素分解物、アンモニウム塩、硝酸塩、グリシン、アラ
ニン、セリン、アスパラギンおよびグルタミンである。 微生物の生育に必要な必須微量元素は、培地の他の構成
成分に含まれている不純物に、微生物の成長と生合成に
必要な量に見合うだけの十分量が含まれている。然しな
から、さらにナトリウム、カリウム、マクネシウム、カ
ルシウム、アンモニウム、鉄、塩素、炭酸、りん酸、硫
酸、硝酸およびその他のイオンを生成し得る可溶性無機
塩栄養分を培地中に添加することは効果的である。 少量のA10255は振とうフラスコ培養によって得る
ことができるが、A10255抗生物質を十分量生産す
るには、タンク内で好気的液中発酵を行うのが好適な方
法である。タンク発酵を行うには、増殖接種法を使用す
るのが好ましい。増殖接種法とは、微生物を胞子形態ま
たは菌糸体断片として少量の培地に接種することによっ
て、新鮮で発育のさかんな培養株を得ることである。つ
いで増殖接種物をさらに大きなタンクへ移し、そこで好
適な培養時間をかけ、A10255抗生物質を最高収量
で生産する。 A10255を生産する微生物は、約23〜約37℃の
温度範囲でA10255複合体を生産する。A1025
5抗生物質複合体の至適生産は約30〜約32℃の温度
で起こるものと思われる。 好気的液中培養法で普通行われるように、無菌空気を培
地中に拡散させる。微生物の効率のよい生育のために、
タンク生産に使用する通気量(空気)は、約100〜約
30ORPMの攪拌を加えながら培地容量当り1分間に
約0.1〜約0.5容量(v、v、m)の範囲で行う。 100リツトルの発酵培地を含んだ165リツトルの容
器における最適割合は、はね付き回転攪拌機で約20O
RPM回転で攪拌した場合、約0.125 v/v/m
である。 発酵は一般に約40時間後に抗生物質活性を生じる。抗
生物質の生産ピークは、発酵時間の約110時間〜約1
40時間に見られる。 A10255抗生物質生産は、発酵期間中、バシラス・
サブチリス(Bacillis 5ubtilis )
ATCC6633を使用する寒天希釈法か、あるいは
スタフィロコッカス・アウレウス(5taphyloc
occusaureus ) ATCC9114を使用
する濁度測定法によってモニターできる。 A10255複合体および独立した因子類は抗微生物剤
であり、ことに下記のイン・ビトロ(1nvitro
) $よびイン・ビボ(in vivo )試験成績に
よって明らかなように、グラム陽性微生物に対して活性
な薬物である。第6表に、病原性グラム陽性細菌および
ダラム陰性細菌に対する各因子類の最小発育阻止濃度(
M r C,mcg/ml )を示す。 MIC値は標桑寒天希釈試験法によって得た。 またA10255は、多数のクロストリジウム・ジフイ
シル株に対して優れた抗微生物活性を示す。特に標準寒
天希釈試験において、A10255複合沫およびB、
C,EおよびF因子は0.03mcg/mlまたはそれ
以下のMICを示す。複合体およびBおよびC因子と同
じ試験における比較でバンコマイシンは2〜4mcg/
mlのMICを示した。 A10255複合体およびC因子を数種のバタテロイデ
ス種に対して試験したところ、優れた抗微生物活性を示
した。寒天希釈試験法によるこの試験の結果を下記の第
7表に示す。 第7表 バタテロイデス種の選ばれた株に対すB、フラ
ギリス株 1877 0、5 0.510
3 0、5 0.5104
0.06 0.06106
0.06 0.06107
1、0 1.0108 1、
0 1.0110 0、5
0.5111 1、0 1
.0112 1、0 1.011
3 1、0 1.01451
0.25 0.251470
1、0 1.02
0、5 0.59 1、0
1.09032 1.0
1.0B、コロ−デンス1874 0.5
0.5(B、corrodens ) B、バルガチス1563 0.25 0.2
5CB、 vulgaris ) B、シータイオタオミ クロン1438 0.5 0.5(B
、 thetaiotaomicron )B、シータ
イオタオミ クロン1900A O,50,5A1025
5複合体およびそれぞれの因子は、幅広い嫌気性微生物
に対して抗微生物活性を示す。 その抗微生物活性を第8表に示す。第8表に示した成績
は、標準寒天希釈試験法によって得られたMIC値であ
る。 A10255複合体およびB因子のしD5oはそれぞれ
300 mg/kg X 1および75 mg/kg
x”ヨリも大きかった。これらの成績は、いずれもマウ
スに腹腔内注射して得られたものである。 A10255抗生物質は、家禽、ブタおよびウシのよう
な経済的に重要な温血動物の成長促進剤である。ニワト
リのヒナにおいて、A10255は体重の増加と飼料利
用効率を改善する。第9表に、生後7日間のヒナに複合
体を自由に摂取させて飼育した14日間のバタリー試験
の2通りの試験結果をまとめた(1処置当り、7羽づつ
のヒナを入れたケージ10個を使用)。複合体で処置し
たヒナトリの成長記録を複合体を加えないで行った同数
の対照処置群の場合と比較した。 ヒナトリで実施した下記の試験成績から家禽における成
長促進効果が認められた。 ヒナの成長を促進するためには、ヒナトリの飼料1トン
当りにA10255複合体またはそれぞれの因子を約0
.5〜約50gの割合で添加したヒナの飼料として、A
10255複合体またはその独立した因子を投与すべき
である。A10255複合体またはその独立した因子を
、ヒナの飼料1トン当りにA10255複合体またはそ
れぞれの因子約5〜約20gの割合で投与したとき最も
効果的な結果が得られる。 また本発明は、家禽の飼料利用効率を高め、成長を促進
する飼料組成物を提供する。この飼料組成物は、ヒナの
飼料およびA10255複合体、Al0255B因子、
A10255C因子、A10255E因子、A1025
5F因子、A10255G因子またはA10255H因
子の有効量を含有する。複合体または個々の因子の[有
効itJは、ヒナの飼料の1トン当り約0.5〜50g
、好ましくは約5〜約20g1こ相当する。この飼料組
成物に使用するヒナの飼料として、任意のヒナ用標邸配
合飼料を充てることができる。 飼料組成物の製剤化は、獣医用医薬品技術lこおいて周
知の混合方法によって行われる。 好ましい飼料組成物はA10255複合体の有効量とヒ
ナの飼料から成る。 A10255複合体は、離乳したブタの成長促進作用を
示し、飼料の利用効率活性を高めた。複合体を使用して
実施した9種の試験結果をまとめた第10表に、そのよ
うな効果の証拠を示す。これらの試験で、離乳したブタ
の最初の平均体重は24ボンド(lbs )であり、試
験終了時の平均体重は531bsであった。環境的によ
くコントロールされた飼育設備の1囲い当りにブタを4
頭づつ入れ、蛋白質18%を含有するコーン−大豆飼料
を自由に摂取させて飼育した。試験はすべて35日間を
要し、1処置当り2〜3実験単位を用意し、1処置当り
に平均14頭の動物を使用した。 第10表において、括弧内は対照群に対する変化を%で
表したものである。「飼料/体重増加」の項の−で示し
た百分率変化は、A10255複合体で飼育したブタの
飼料/体重増加(飼料利用効率)における改善を表す。 さらに本発明は、離乳したブタで飼料利用効率を高め、
成長を促進するための飼料組成物を提供する。この飼料
組成物は、ブタの飼料およびA10255複合体、A1
0255B因子、A10255C因子、A10255E
因子、A10255F因子、A10255G因子または
A10255H因子のいずれかの有効量を含有している
。 離乳したブタのための飼料組成物における「有効量」は
、全飼料1単位当り、A10255複合体または独立し
た因子約20〜約40ppmに相当する。離乳ブタ用の
組成物に使用する飼料には離乳ブタに使用さ÷れる任意
の通常の飼料配合物を充てる。この飼料組成物は、獣医
用医薬品技術において周知の任意の方法によって製剤化
する。 離乳したブタ舎に好ましい飼料組成物はブタの飼料とA
10255複合体の有効量から成る。 またA10255複合体は、発達した反歌機能を有する
反歌動物において飼料の利用効率を改善する。A102
55抗生物質によって起こる飼料利用効率の増大は、そ
の一部を引用して説明したベック(James R,B
ack)およびヤーナー(JosephA、 Yahn
er) C米国特許第4333923号(1982年6
月8日発行)〕が記載している方法を用いて、反歌胃の
プロピオネート化合物の生成およびその濃度を観察する
ことによってこれをチェックすることができる。ベック
およびヤーナーの方法により、この試験で得られた対照
フラスコにおける生成量に対するA10255複合体で
処理じたフラスコ内の揮発性脂肪酸(VFA)生成量の
比を第11表に示した。 第11表 反歌動物の飼料利用効率に対するA1025
5複合体の効果1 1対照フラスコにおける生成率(モル/d)に対する処
置フラスコの生成率の比 A10255化合物はプロピオネートを増大するのに実
に有効であり、それ故に反歌動物にこれを経口投与する
と飼料の利用効率を増大するのに有効である。 下記の第12表はクシの成長およびその飼料利用効率に
対するA10255複合体の効果を検討した成績をまと
めたものである。この研究は3群の動物について79日
間実施した。 第12表 ウシの成長に対するA10255複合体の効
果 2d 275 2.88 (+4%)5.94
14%amg/1頭/日、b1日当り、 。9頭、
d10頭、09頭 また本発明は、A10255複合体の有効量またはA1
0255の因子の有効量をウシに投与することからなる
ウシの飼料利用効率の増大方法を提供する。好ましい方
法はA10255複合体の有効量をウシに投与すること
である。 ウシの成長を促進するため提供されたこの方法では、A
xo’2″′55複合体またはその因子の有効量を動物
に経口投与する。ここで「有効量」の語は、約0.05
mg/kg/日−約5. o mg/ kg /日を表
す。経口投与の好ましい割合は、約0.1mg/kg/
日〜約3.0mg/kg/日である。抗生物質複合体ま
たは因子はウシの飼料と一緒に投与できるが、また、例
えば水薬、大型丸薬またはカプセル剤のような他の方法
で投与することができる。A10255化合物をウシの
飼料と一緒に混合するのは好ましい投与経路である。こ
れら各種の投与形態の製剤化は、獣医用医薬品技術にお
いて周知の方法によって行われる。 また本発明はウシの飼料利用効率を増大する飼料組成物
を提供する。この飼料組成物は、ウソの飼料およびA1
0255複合体またはA10255の因子の有効量を含
有する。好まじり・クシの飼料組成物は、ウシの飼料と
A 1025 ’5複合体の有効量からなる。最も好ま
しいウシの飼料組成物は、ウシの飼料とA10255の
B因子またはA10255のC因子のいずれかの有効量
からなるものである。独立したA10255のB因子、
C因子、E因子、F因子、C因子およびH因子は、はぼ
最小限に生物学的同等性であるように思われる。 上記のウシの飼料組成物において、「有効量」の語は、
先にウシの飼料利用を向上する場合に示したのと同様の
意味に用いる。この飼料組成物に組合わせて使用するウ
シの飼料には、通常ウシに使用される任意の配合飼料を
充てることができる。 本発明のもう一つの態様として、A10255複合体お
よび各因子、ことにA10255B因子は、チオストレ
プトン耐性伝達遺伝子を有するストレプトマイセス種を
同定するの1こ有用である。 そのような種は天然にチオストレプトン耐性遺伝子を有
するか、あるいはプラスミドまたはチオストレプトン耐
性遺伝子を含んでいる他のクローニングベクターを導入
することによって耐性を有するものである。 したがってA10255BおよびAl 0255複合体
は、ストレプトマイセス種で行う組換えDNA実験にお
いてチオストレプトン耐性マーカーを検出する抗生物質
チオストレプトンとの相互交換が可能である。 特ニエス・フラジエ(S、 gradiae ) 、ニ
ス・リビダンス(S、 l 1vidans )または
ニス・グリセオフスカス(S、griseofuscu
s)種のプロトプラストは、チオストレプトン耐性に関
与する遺伝子を含んでいるプラスミド(例えば、pIJ
702またはpHJ:L401)で形質転換されるCト
ンプソン(C,J 、ra′rpson)ら、ネーチャ
ー(Nature)、286巻、525〜527頁(1
980年)〕。細胞壁を再生するのに好適な固形培地に
このプロトプラストを接種し、29℃で一夜インキユベ
ートする(約16時間)。A10255を軟寒天オーバ
ーレイに添加し、ついで再生したプロトプラストを含有
しているプレート上にこれを圧加する。オーバーレイに
使用するA10255抗生物質の量は、再生培地に適用
後、約50μg/mlの濃度となるよう十分な量でなけ
ればならない。つし1でプレートを29℃で7〜14日
間インキュベートし、チオストレプトン耐性伝達遺伝子
を保有するプラスミドを含んだ特定生物型群を成長させ
る。これらの条件下では、該プラスミドを取り込まなか
った細胞は発育しない。ついでA10255を50μg
/ m 1含有している培地にこのA10255耐性形
質転換株を移し、チオストレプトン耐性伝達遺伝子を保
有しているプラスミドが維持されていることを確認する
。 本発明の抗微生物化合物(A10255複合体および独
立した因子)は、病原性細菌によって起こる己酉動物の
感染症の治療または予防処置に有用である。これらの抗
微生物化合物は、温血動物の細菌感染症の処置に経口的
または非経口的(例えば静脈内、筋肉内または皮下)に
、または局所用軟膏または液剤として投与することがで
きる。 また1本発明はA10255複合本または独立した因子
の医薬組成物を提供する。これらの組成物は、本発明の
抗生物質化合物(即ち、A10255複合体またはそれ
ぞれ別々のB因子、C因子、E因子、F因子、C因子ま
たはH因子)の治療的有効量と好適な担体から成る。経
口投与用組成物(例えば錠剤およびカプセル剤)の場合
、「好適な担体」の語は、例えばシロップ、アラビアゴ
ム、セラチン、ソルビット、トラガカントゴム、ポリビ
ニルピロリドン(ポビドン)、メチルセルロース、エチ
ルセルロース、カルボキシメチルセ/1z0−ス・ナト
リウム、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、シュク
ロース、でんぷん等の結合剤、例えばコーンスターチ、
ゼラチン、乳糖、シュクロース、微結晶セルロース、カ
オリン、マンニット、リン酸二カルシウム、塩化ナトリ
ウム、アルギン酸等の増量剤および基剤、クロスカーメ
ロース・ナトリウム、微結晶セルロース、コーンスター
チ、でんぷんグリコール酸ナトリウム、アルギン酸のよ
うな崩壊剤、およびラウリル硫酸ナトリウムのような可
変性湿潤剤、ステアリン酸マグネシウムおよびその他の
ス゛テアリン酸金属塩、ステアリン酸、液状シリコーン
、タルク、ワックス、油類、コロイド状シリカ等の滑剤
のような一般的な賦形薬を表す。またペパーミント、ウ
ィンターグリーン油、チェリーフレーバー等のような香
味剤も使用できる。投与剤形を視覚上一層美しく見せる
ため、あるいは製品の識別を助けるために着色剤を添加
することは望ましいことである。また錠剤は当業者周知
の方法によってコーティングすることができる。 また本発明の医薬組成物は、経口液体製形にすることが
でき、(a)水性または油性懸濁液、溶液、エマルジョ
ンまたはシロップとするか、あるいは(b)使用前、水
または好適な担体を加えて液剤とするドライパウダーの
形態にすることができる。そのような経口液体製剤に加
える場合、「好適な担体」の語は、例えばソルビット、
シロップ、メチルセルロース、グルコース/シよ糖シロ
ップ、ゼラチン、ヒドロキシエチルセルロース、カルボ
キシメチルセルロースまたはステアリン酸アルミニウム
・ゲルのような懸濁化剤、例えばアーモンド油、精製コ
コナツ油、油性エステル類、プロピレングリコール等の
水素化した食用油またはエチルアルコール、オキシ安息
香酸メチルまたはオキシ安息香酸プロピルまたはソルビ
ン酸等の防腐剤のような通常の添加物を表す。 また、該医薬組成物は静脈内(IV)に使用することが
できる。特に該抗生物質化合物の水溶性形態は、広く一
般に使用されている静圧用液体の一つに溶解して注射に
より投与することができる。 IV使用の場合、「好適な担体」の語は、生理食塩水、
リンガ−液または5%ブドウ糖液のような液体を表す。 筋肉内設与剤形は、「好適な担体」とともに該抗生物質
の好適な塩形態(例えば塩酸塩またはナトリウム塩)の
滅菌製剤として製剤化することができる。 そのような好適な滅菌製剤を例示すれば、好適な塩を医
薬用希釈剤(例えば、注射用精製水、生理食塩水、5%
ブドウ糖液)に溶解するか、あるいは水性基剤または薬
学的に許容し得る油性基剤(例えば、オレイン酸エチル
のような長鎖脂肪酸エステル)に懸濁した形態を挙げる
ことができる。 局所用組成物は、疎水性基剤または親水性基剤のような
「好適な担体」とともに製剤化することができる。その
ような基剤として、軟膏、クリームまたはローションが
ある。 これらの抗生物質化合物の獣医用医薬組成物は、家畜動
物の飼料または飲料水に加えて投与できる。 別法として、長時間放出性または短時間放出性の基剤の
ような「好適な担体」とともに乳房内投与製剤として製
剤化することができる。 また本発明の抗生物質化合物は、滅菌バイアル、仕切り
部分を有する滅菌プラスチック製ボーシュ(袋)剤また
は滅菌密封アンプル容器に収納した単位用量形態に製剤
化できる。これらの抗生物質化合物(または対応する薬
学的に許容し得る塩)は、乾燥粉末、精品または凍結乾
燥形態とすることができる。1単位用量当りの抗生物質
化合物の量は約25.Om g〜約10gへと変化し得
る。 本発明の抗生物質化合物の「治療的有効量」は体重1k
g当り化合物約3.5mg−約50mgである。この量
は、一般にヒト成人1人1日合計約1g〜約27gに相
当する。 本発明はさらに、グラム陽性微生物またはダラム陰性微
生物によって起こる温血動物の感染疾患を処置またはコ
ントロールする方法を提供する。 この方法は、本発明の抗生物質化合物の治療的有効量を
該動物に投与することから成る。この方法における代表
的な1日用量は、ヒト成人において約1g〜約12gで
ある。 この方法を実施するに当っては、1日用量を1日1回・
または数回に分割して投与することができる。治療計画
は、例えば数日間または2〜3週間の長期にわたって投
与を要する場合がある。1回当りの投与量または投与量
合計は、感染症の性質およびその重篤度、患者の年齢お
よび一般健康状態、および患者およびその感染に関与し
ている微生物(群)との双方の該抗生物質化合物に対す
る耐性によって異なる。 本発明のもう一つの態様は、活性成分としてA1025
5複合体またはB因子、C因子、E因子、1”因子、C
因子またはH因子の任意の組合わせを好適な基剤と一緒
に含有して成る動物用プレミックスを提供することであ
る。当業者であれば、基剤の選択は当然容易になし得る
であろう。 本発明はさらに (a)同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含有す
る培地中でストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
5537、ストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
g260、ストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
5922またはAlO255を生産するその変異株を、
液中好気的発酵条件下にAl−0255複合体を生産す
るまで培養し、 (b)所望によりAI O255複合体を培地から分離
し、 (C)さらに所望により、分離したA10255複合体
から抗生物質A10255のB因子、C因子、E因子、
F因子、C因子またはH因子の1またはそれ以上を単離
する ことから成るA10255複合体の製造方法を提供する
。 以下に実施例をあげてこの発明をさらに詳細に説明する
。実施例は単に発明を説明するためのものであって、こ
れによって発明の範囲を限定するものではない。 実験の部 実施例l A10255を生産する微生物の寒天斜面培養に使用す
るため、下記の培地を調製した。 予じめ調理したオートミール 60.0酵母
2.5KHPO41・0 KCI O,5MgS
O4・7H200,5 FeSO4−7H200,1 脱イオン水 適量を加えて全量1リツトルとする。 得られた培地を水酸化すl−IJウムでpH7,3に調
節した。ついで培地をオートクレーブで加圧滅菌し、p
H6,7の滅菌培地を得た。 上記の滅菌培地から成る寒天斜面にニス・ガード不り・
NRRL15537の胞子を接種した。 接種した斜面培地を30℃の温度で7〜10日間インキ
ュベートした。ついで成熟した斜面培養を仔ウシ血清で
被覆し、滅菌した道具でこれを掻き取って胞子および菌
糸体をほぐした。得られた浮遊液を小試験管に移し、保
存のためこれを凍結乾燥した。凍結乾燥品ペレットの1
個を、下記の組成を有する滅菌増殖培地(50ml、2
50 m lの広ロエルレンマイアーフラスコ中)への
接種に使用した。 成分 量(g/L) グルコース 15.0デキストリ
ン 20,0犬豆粗粒
10.0コーン浸漬液 1
0.0酵母エキス 1.0Ca
C032,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 水酸化ナトリウム水溶液で培地のpHを6.7に調節し
た。培地をオートクレーブで加圧滅菌すると、培地のp
Hは6.8〜7.0に上昇した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く250R
PMの回転振とう機上で、30℃で48時間インキュベ
ートした。得られた増殖培地は。 小型発酵装置へ接種する(接種量は発酵培地1容量に対
し約1チ)のに使用するか、あるいはもつと大容量の接
種生産のための第2段階フラスコへ接種するのに使用し
た。 バムプ(Bump)培地 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容量)2個
に、下記の組成を有する培地(それぞれ400m1)を
調製した。 成分 量(g/L ) グルコース 15.0デキストリン
20.0大豆粗粒
15.00コーン浸漬液 10
.0酵母エキス 1.0Ca C
035,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 上記の増殖培sを各エルレンマイアーフラスコに接種し
た。接種量の合計は、エルレンツイア−フラスコ中の培
地容量の2.5%であった。接種した培地は、10″の
角度を有する回転振とぅ機の台上、25ORPMの回転
で、30℃で24時間インキユベートシ「バムプ」培養
を得た。 大規模発酵 上記の「バムプ」培養の1部(800ml )を下記の
培地(1001Jツトル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L ) 消泡剤*−0,200 プロピレングリコール(MW20QO)2.000m1 グルコース 10.000グリセリン
40.000バクトーペプトン(Bac
to−peptoH)※※1o、oo0 カゼイン 10.00ON a H
2P 04 ・H200,100ブラツクストラツプ糖
蜜(Blackstrap rrDlasses)40
.000 Ca CO32,500 水道水 適量を加えて全11001Jツトルとする
。 ※ダウ・コーニング・アンチフオウム (Dow−Corning Antifoam)産肉の
加水分解物〔ディフコ・ラボラトリ−ズブトロイト(D
ifco Laboratories 。 Detroit%M I ] 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。5N水酸化ナ
トIJウムで培地のpHを6.9に調節した。 17〜19ps i、121℃で混合物を45分間滅菌
した。滅菌処理後の培地pHは7.0であった。 滅菌した培地に0.125 v / v / mの速度
で滅菌空気を通気しながら、通常の撹拌機で200RP
Mで撹拌し、30℃の温度で約6日間発酵を行った。 実施例2 A10255抗生物質複合体の単離発酵ブ
ロス全体(3780リツトル)を濾過助剤〔ハイフロ・
スーパー・セル(Hyflo 5uper −Cell
)、ジョンズ・マンビル・プロダクツ・コーポレーショ
ン(Johns−Manville Carp、))を
使用して濾過した。菌糸体を含有している濾過プレスを
水300 IIで洗浄し、ついでこれをアセトン:水(
4:1)で2回抽出した。1回目の抽出液は9001.
2回目の抽出液は800 IIであった。 抽出液を合わせ、減圧下に濃縮して水溶液4501を得
た。溶液のpHを塩酸で3.0に調節し、ついで酢酸エ
チルで3回抽出した(抽出容量は、それぞれ16511
.2801および225″り。 抽出物および水層の生物学的活性を、ビー・サブチリス
ATCC6633を播種した寒天プレート上、ペー)j
−・ディスク法によって検定した。抽出物を合わせ、減
圧Fに容量231まで濃縮した。 濃縮中に沈殿した固体物質を濾過によって採取してこれ
を真空乾燥し、A10255抗生物質複合体216gを
得た(検定活性:90.7g)。炉液をさらに900m
1まで濃縮し、これを濾過した。 第2沈殿を減圧乾燥し、A10255抗生物質複合体1
6.2gを得た(検定活性:9,1g)。 実施例2 A10255抗生物質複合体から因子の分
離 A10255複合体(20g)をクロロホルム:メタノ
ール(9:1、合計400m1)に溶解し、濾過した。 P液をLPSシリカゲル(ワットマン・ケミカル・セパ
レーション・インコーボレーテイツドヘtrran C
hemical 5eparation Inc、)、
クリフトン(C1ifton) 、ニューシャーシー(
NewJersey)、13−24ミクロン] 4 ’
Iを充填したステンレス・スチール製カラム(8X10
0cm)に掛けた。カラムはクロマトスパック・プレブ
ー100−ユニット(Chramtospac Pre
p −100uni t)の一部である〔ジョビン・イ
ボン(Jobin Yvon)、16−18ル−エ・デ
ュ・カナル(16−18Rue duCanal )9
1160、ロングジュミュオ−(Longjuneau
)フランス〕。流速60m1/分で溶出し、240m1
づつフラクションをカラムから採取した。まずクロロホ
ルム:メタノール(9:1)の混液(71)、ついでク
ロロホルム:メタノール(3:1)の混液(1511)
で溶出した。クロマトグラフィー中、HPLC検出器は
280nmに設定した。すべてのフラクションは、ミク
ロコツカス・ルテウス(JIJicrococcus
1uteus) ATCC9341を播種した寒天プレ
ート上で生物学的活性を検定した。 F記のフラクションをプールした。 フラクション 因子 収量(gr 、 )11−2
3 C,F O,6830−638%E
6.50 プールしたBおよびE因子を含有しているフラクション
を400 m lに濃縮した。得られた沈殿を戸数し、
真空乾燥して、少量のE因子を一緒に含有し、主として
B因子から成る物質5.86gを得た(検定活性:3.
6g)。沈殿を得た上清を再び濃縮した。濃縮物をジエ
チルエーテルに加えることによって、B因子およびE因
子から成る前記と同様の混合物を含有している沈殿0.
64gを得た(検定活性:0.3g)。 実施例4 抗生物質因子A10255Bの単離前記実施
例3のフラクション30−63の物質1・5gをとり、
テトラヒドロ1ラン:水(35:65.150m1)の
混合液に溶解した。試料をLPI−C18逆層シリカゲ
ル(4]i)を充填したステンレススチール製カラム(
8X 100 c m )に掛けた。〔シリカゲルは実
施例6および7に記載のアボット(B、J、 Abbo
tt )らの方法によって調製(米国特許第42997
63号、1981年11月10日発行)〕。カラムをテ
トラヒドロフラン:水:りん酸水素二す) IJウム(
3ニア:0.05M、1211、pH7,8−(りん酸
)〕混合液で60″ml/分の流速で溶出し、240m
1づつフラクションを採取した。クロマトグラフィー中
、HPLC検出器は280nmに設定した。個々のフラ
クションは分析的HPLCで測定した。 〔分析的HPLCは、超球形ODS 5ミクロン逆層
物質(アルテックス・サイエンティフィック・インコー
ポレーテイツド(Altex 5cientificI
nc、)バークレイ、CA)を充填したステンレススチ
ール製カラム(4,6X250nm)で実施した。カラ
ムを、テトラヒドロフラン:水:りん酸水素ナトリウム
(に2二〇、(pH7,8)、りん酸添加)混合液で1
ml/分の流速で溶出した。クロマトグラフィー中、検
出器は254nmに設定した〕。 下記のフラクションをプールした。 フラクション 因子 収量(gr、)17−2
3 B(不純物) 150m124−35
B(純品) 200m138−45 E
100m1プールした24−35のフラクショ
ンを含有する濃縮物を脱イオン水300m1で希釈し、
得られた混合液のpHをりん酸でpH3,0に調節した
。 この溶液をクロロホルム:メタノール(7:3)の混合
液で抽出した。抽出液を濃縮乾固し、HPLCクロマト
グラフィーに掛けた。HPLCはマイケル・ミラー(M
ichel −Mi l 1 e r )高速低圧液体
クロマトグラフィー(rHPLPLCJ )ガラス・カ
ラム〔マイケル(K、 Miche 1 )ら、米国特
許第4131547号(1978年12月26日、発行
〕のシリカゲル保持体(100−200ミクロン、クエ
ルム・ファーマ(Thekn Panrn ) )
を含有するカラムで実施した。カラムをクロロホルム:
メタノール(7:3)混合液で溶出した。クロマトグラ
フィー中、検出器は254nmに設定した。主要なTJ
V発色団を含有しているフラクションを合わせて真空下
に濃縮し、凍結乾燥することによってB因子659mg
を得た。 実施例5 抗生物質A10255E因子の精製実施例4
でプールしたフラクション38−45に、さらに実施例
4に示したL P 1− C]8保持体で同様の方法に
よりクロマトグラフィーを実施した5つの類似組成物を
プールして加えた。プールした溶液(1,、g o o
m l )のpHをりん酸で3.0に調節した。この
溶液をクロロホルム:メタノール(7:3)混合液で抽
出しく2x、800m1 )、ついでさらに少量の溶媒
混合液(400ml )で抽出した。抽出液を合わせ、
これを濃縮乾固し、さらにCH3C13: M e O
H混合液(7:3、500m1 )50mlに溶解した
。この溶液を、シリカゲル保持体(500ml、100
−200ミクロン、ウエルム)を含有するマイケル・ミ
ラーHPLPLCガラス・カラム(5,I X 42c
m)に掛けた。。クロロホルム:メタノール7:3(v
:v)混合液でカラムを溶出し、主要なUV発色団(2
54nm)を採取して濃縮乾固することにより、純粋な
E因子349mgを得た。 実施例6 抗生物質CおよびF因子の精製実施例3でプ
ールしたフラクション11−23から得られた乾燥調製
品(0,68g)をこれと同様にして得られた調製品と
合わせ、合計3.03gの固体物質を得た。この物質を
テトラヒドロフラン:水(6:4)混合液に溶解し、こ
の溶液を、逆層シリカゲル(4!I)充填ステンレスス
チール製カラム(8x 100 c m )により、テ
トラヒドロフラン:水(3ニア、391)で溶出するク
ロマトグラフィーに掛けた(i速:60m1/分、Uv
検出:280nm)。採取したフラクション(480m
l)は、寒天プレートに播種したミククロコツカス・ル
テウスATCC9341で生物学的活性を検定した。生
物学的に活性なフラクションを、さらに実施例4に記載
した分析的規模のHPLCで分析した。フラクションを
下記のようにプールした。 フラクション 因子 収量(gr、)28−3
7 不明 18640−50 C(
不純物) 37351−55 C(純品)
30256−62 C(不純物) 7066
−75 F(純品)56 プールした各分画を濃縮し、得られた沈殿をフィルター
に戸数して真空下に乾燥した。 実施例7 実施例1で使用した寒天斜面をA10255を生産する
微生物NRRL18260の培養に使用した。 したがって前記の方法で凍結乾燥した1個のペレットを
、下記の組成の増殖培地(50m l )を広ロエルレ
ンマイアーフラスコ(250ml]c接mした。 成分 量(g/L) トリプチケース大豆プロス 30.0酵素氷解カゼ
イン 〔ユニバーサル・フッズ(Llniversal Fo
ods) 、シュノー(Juneau) 、W I
’J 5.0グルコース
5.0グリセリン 10.
0デキストリン 10.0Ca C
0310,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 オートクレーブで加圧滅菌する前に、水酸化ナトリウム
水溶液でpH7,0に調節した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く25OR
PM(7)回転振とう機上テ、30’C1?72時間イ
ンキュベートした。得られた増殖培地は、小型発酵装置
へ接種する(接種量は発酵培地1容量に対し約1%)の
に使用するか、あるいはもっと大容量の接種生産のため
の第2段階フラスコへ摂取するのに使用した。 バムプ培養 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容1k)2
個に、前記の増殖培地と同一の培地(それぞれ400m
1)を加えた。 上記の増殖培養を各エルレンマイアーフラスコに接種し
た。接種量の合計はエルレンツイア−フラスコ中の培地
容量の2.5%であった。接種した培地は、水平に対し
10° の角度を有する回転振とう機の台上、25OR
PMの回転で、30℃で48時間インキュベートし「バ
ムプ」培養を得た。 大規模発酵 上記の「バムプ」培養の1部(800ml )を下記の
培地(] OOUットル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L) Sag471 0.2P−2000
0,1ml グルコース 1.0NH4C1
1,0 Na2S04 2.0ZnCl2
0.019MgC12−6H2
00,304 FeC130,062 MnC12・4 H200,035 CaC120,06 CuC1・2H200,005 KH2PO4※ 0.67水道水
適量を加えて全量1101Jツトルとする。 ※脱イオン水中で別に調製し、KOHでp H6,0に
調節後、滅菌した。 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。混2合液に、
20F0加熱単位を適用して蒸気滅菌した(ここで、I
Foは正確に121℃、1分間に等しい)。滅菌処理後
、培地のpHは8.3であった。KH2PO4を添加後
、pH7,0であった。 滅菌した培地に滅菌空気を通気し、環境圧力よりも5p
si高い圧力で、溶解している空気濃度が空気飽和の4
5%を維持し得るように通常の撹拌装置で撹拌し、30
℃で約7日間発酵させた。 以上、概説した大規模発酵期間中、発酵混合物にグルコ
ースを5.7g/L/日の割合で追加することが有効で
あることが判明した。また17時間後に、カゼイン氷解
物を4.5g/L/日の割合で追加した。 実施例8 抗生物質A10255G因子の単離実施例2
で得られた抗生物質複合体の1.0gを取り、H20:
CH3CN (4: 1 )の2リツトルにpH6,0
で溶解した。この溶液をC18カートリッジ・カラムを
使用するウォーターズ・プレグ(Waters Pre
p) 500に掛けた。このカラムを、H20: C
H3CN : THF : HOAc (70:30
:5 :0.5)4!l (A) からH20:C
H3CN:THF:HOAc(65:35 :5 :0
.5)4i1(B)のゆるやかな直線濃度勾配を使用し
、250m1/分の流速で溶出し、1分間に1フラクシ
ヨンづつを採取した。その後、さらに(B)溶媒2 i
lで溶出した。カラム溶出液は280nmでモニターし
た。これと同一の条件を用いてさらに7回同様の処理を
行った。C因子およびC因子混合物を含有しているフラ
クションをプールし、5NNaOHを使用してpH6,
0に調節し、等量の水で希釈しく容量合計2611)、
その都度131を使用して2回クロマトグラフィー処理
を行った。これらの処理はいずれもクオーターズ・プレ
グ500でC18カートリッジ・カラムを使用して実施
した。(A)溶媒、0.05 N N H40A c
(pH5,5):CH3CN (75:25)41から
(B)溶媒4:J(60:40)の直線濃度勾配を使用
してクロマトグラフィーを行い、さらに(B)溶媒21
1で溶出した。使用した流速は毎分250m1で、1分
毎に1フラクシヨンを採取した。主としてC因子を含有
しているフラクションを合わせ、これを等量の水で希釈
し、プレグ500でC18カートリッジ・カラムを使用
して再度クロマトグラフィーを行った。(A)H2O:
CH3CN:THF :HOAc(70:30 :5
:0.5 )41から(B)H20” CH3CN :
THF : HOA c(65:35 :5 :0.
5 )41の直線濃度勾配を使用し、上記と同一の流速
を使用した。C因子だけを含有しているフラクションを
合わせ、これを真空濃縮して水溶液とした。ついで沈殿
したC因子を遠心分離し、水洗し、水に懸濁して凍結乾
燥し、C因子686mgを得た。 実施例9 抗生物質A10255H因子の単離実施例2
で得られた抗生物質複合体の1.0gを取り、これをH
20:CH3CN(4:1)21(pH5,0)に溶解
し、フィルターロート上でグラスウールを通して濾過し
た。この溶液を、ウォーター・プレグ500によりC1
8カートリッジカラムに適用した。このカラムを、(A
)H20:CH3CN :THF : HOAc (
70:30:5 :0.5)41から(B)65:35
:5:0.5 41の直線濃度勾配で、毎分250m1
の流速で溶出し、1分毎に1フラクシヨンを採取した。 さらに(B)溶媒21で溶出した。 カラム溶出液は280nmでモニターした。さらにこれ
と同一条件を使用し、同様の処理を13回行った。H因
子を含有しているすべてのフラクションを合わせ(17
11)、真空丁に濃縮乾固することによって粗製のH因
子690mgを得た。 同様の処理によって得られた調製品329mgをこの物
質と合わせて、H2O:CH3CN:THF(75:2
0 :5)31に溶解しくpH6,0)、前記と同様に
C18カートリッジ・カラムに適用シタ。(A)溶媒0
.05 M NH4OH:CH3CN(75: 25”
)41から(B)溶媒0.05M NH4OH:CH
3CN(6〇二40)までの直線濃度勾配を用いてり′
O−マドグラフィーに掛けた。ついで(B)溶媒2」で
溶出した。流速およびフラクション採取量は前記と同じ
である。H因子を含有しているフラクションを合わせ(
750ml)、これに等量の水を加え、前記と同様に再
度C18カートリッジ・カラムに適用した。このカラム
を(A)H2O: CH3CN : THF : HO
Ac(75:25:5:0.5)41から(B)H2O
: CH3CN : THF : HOAc(60:
40 : 5 : 0.5)41までの直線濃度勾配で
展開し、毎分250 m lづつ1フラクシヨンを採取
じた。H因子を含有しているフラクション23−29を
合わせ、これを450m1に真空濃縮した。沈殿したH
因子を濾過により回収し、水洗し、真空乾燥してH因子
285mgを辱た。 実施例10 ウシの発育促進用飼料組成物A10255
複合体またはその独立した因子は、該複合体または因子
の有効量を飼料と混合することによってウシに経口投与
することができる。例えば本発明の1態様として、下記
の組成から成る標準配合飼料を提供する。 成分 添加量 貯蔵トウモロコシ(全草、穂を含む) 50%高湿コ
ーン 44%添加物
(全量) 6%上記の添加物は、下
記の組成が含まれる。 成分 含有量 アルファルファ飼料(脱水物、17%)12.00% 大豆油飼料(溶媒抽出物) 45.40%尿
素(飼料級) 5.00%りん
酸二カルシウム 8.00%塩
10.00%炭
酸カルシウム 11.00%微量
ミネラル・プレミックス 0.80%ビタミン
A+D3プレミックス 1.40%ビタミンE
・プレミックス 1.40%塩化カリウム
5.00%投与する前に、
標準配合飼料をA10255含有プレミツクスと混合す
る。プレミックスは下記の成分からなる。 成分 含有量 黄色コーン 48.00%グ
リッド−O−コブス(Gr i t −0−Cobs
)20/40so、oo% 鉱質油 2.00%10
0.00% まずプレミックスをA10255複合体と、例えば1頭
当り275mg/日またはs 50 mg/日の適用割
合で混合した(この特殊実験の場合、それぞれ28.6
g/トンおよび61.7g/l−ンと言い換えることが
できる)。ついでA10255複合体含有プレミックス
を上記の標準配合飼料に1頭当り0.351bs/日の
適用割合で添加し、混合する。 実施例11 A10255.2を生産する微生物の寒天斜面培養に使
用するため、下記の培地を調製した。 予じめ調理したオートミール 60.0酵母
2.5に2HPO41,0 KCI 、0.5Mg5
o4・7H200,5 F esO4−7H200,i 脱イオン水 適量を加えて全量1リツトルとする。 得られた培地を水酸化ナトーリクムでpH7,3に調節
した。ついで培地をオートクレーブで加圧滅菌し、pH
6,7の滅菌培地を得た。 上記の滅菌培地から成る寒天斜面にニス・ガードネリ・
NRRL15922の胞子を接種した。 接種した斜面培地を30℃の温度で7−・10日間イン
キュベートした。ついで成熟した斜面培養を仔ウシ血清
で被覆し、滅菌した道具でこれを播き取って胞子および
菌糸体をほぐした。得られた浮遊液を小試験管に移し、
保存のためこれを凍結乾燥した。凍結乾燥品ペレットの
1個を、下記の組成を有する滅菌増殖培地(50ml、
250 m l)広ロエルレンマイアーフラスコ中)へ
(7)接ffHc使用した。 成分 量(g/L ) グルコース 15.0デキスト
リン 20.0大豆粗粒
10.0コーン浸漬液
10.0酵母エキス
1.0CaCO3、2,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 水酸化ナトリウ、ム水溶液で培地のpHを6.7に調節
した。培地をオートクレーブで加圧滅菌すると、培地の
pHは6.8〜7,0に上昇した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く250R
PMの回転振とう機上で、30℃で48時間インキュベ
ートした。得られた増殖培地は、小型発酵装置へ接種す
る(接種量は発酵培地1容量に対し約1%)のに使用す
るか、あるいはもつと大容量の接種生産のための第2段
階フラスコへ接種するのに使用した。 バムプ培地 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容量)2個
に、下記の組成を有する培地Cそれぞれ400m1)を
調製した。 成分 量(g/L) グルコース 15.0デキストリン
20.0大豆粗粒
15.00コーン浸漬液 10
,0酵母エキス 1.0Ca C
035,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 上記の増殖培養を、各エルレンマイアーフラスコ培地容
量の2.5e接種した。接種した培地を250RPMの
回転振とう機上、30℃で23時間インキュベートし「
バムプ」培養を得た。 大規模発酵 上記の「バムブ」培養の1部(800ml)を下記の培
地(1151Jツトル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L) 消泡剤’ 0.200プロピ
レングリコール(MW2000)2.000m1 グルコース 1・000カゼ
イン 16.00ON a H
2P 04 ・H200,100ブラツクストラツプ糖
蜜 40,000CaCO35,000 水道水 適量を加えて全量110リツトルとする。 ※Sag471、シリコーンf¥4泡剤[ダウ・コーニ
ング−カンパニー (Dow−Co rn ing C
o 、 ) 〕。 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。5N水酸化ナ
トリウムで培地のpHを6.9 に調節した。17〜
19ps i、121℃で混合物を45分間滅菌した。 滅菌処理後の培地pHは6.8 であった。滅菌した
培地に0.5 v/v/mの速度で滅菌空気を通気し
ながら、通常の撹拌機で初速度300RPMで撹拌し、
ついで30℃の温度で約7日間発酵を行った。発酵期間
中、pHを7.0に維持し、溶解酸素濃度は空気飽和の
45%に保ち、グルコースを毎日3.5 〜4.0g/
lの一定割合で培地に添加した。また24時間後、ハイ
・ケース・アミノ(Hy Ca5e Am1no) r
カゼインのWI水水物物ハムコ・シェフイールド・ケミ
カル・カンパニー(Hurko 5heffield
Chanical Co、 )、 リントバースト(L
yndhurs t)、NJ]を毎日3 g/ Iの一
定割合で培地に添加した。 下記の実施例13と同様の方法により、粗製A1025
5複合体を単離した。 実施例12 A10255.2株の大量発酵増殖接種 A10255.2株の大量発酵の出発点として(即ち、
実施例1の場合よりも一層大量の場合)、増殖接種物は
2段階で調製する。両段階ともに下記の培地を使用する
。 成分 ノ( グルコース 1.5%大大豆
粒 1.5%馬鈴薯デキスト
リン 2.0%コーン浸漬液
i、o%%母エキス
0.1%炭酸カルシウム
0.2%水道水 適宜容量に応じて添加す
る。 インキュベニジョンの第1段階は滅菌した培地80 m
lを含有する2 50 m lフラスコで行った。A
10255.2培養の凍結ペレットをフラスコに接種し
た。培地を250RP¥の回転振とぅ機上、30℃で4
8時間インキュベートした。 第1段階の接種物の一部(10ml)を取り、これを、
2リツトルの広ロエルレンマイアーフラスコに加えた上
記培地400 m lから成る滅菌した第2段階のイン
キュベーション培地に接種した。 この第2段階培地を250RPMの回転振とう機上、3
0℃で24時間インキユベートーシた。 インキュベー
トした培地を下記のタンク発酵に使用した。 タンク発酵 上記の第2段階培地接種物を、1501Jツトルの発酵
釜に加えた下記のタンク培地への接種に使用した。 成分 量 セレロース(Cerelose) 1. s
%%鈴薯デキストリン 2.−0%コーン
浸漬液 i、o%%豆粗粒
1.5%炭酸カルシウム
0.5%5AG471ゞ
0.01%水道水 適量を加えて全量120リツ
トルとする。 ※シリコーン消泡剤(ダウ・コーニング・カンパニー)
。 この培地をまずオートクレーブで滅区した。滅菌後、5
N 水酸化ナトリウムを加えることによって培地のpH
を6.5に調節した。ついで培地に接種し、30℃で約
24時間発酵を行った。発酵中、培地に滅菌空気を初速
度1立方フィート/分(cfm)で通気し、また通常の
撹拌機で初速度350 RPMで撹拌した。 大規模発酵 上記のタンク培地の一部(40リツトル)を取り、下記
の大規模培地に接種した。 成分 量 消泡剤ゞ 0.02%プロピレ
ングリコール(MW2000)002% 糖蜜 4.00%炭酸カル
シウム 0.50%カゼイン酸氷解物
” 1.60%NaH2PO4’H200
,01% グルコース 0.10%水道水
適量を加えて全量1200ガロンとする。。 *Sag471、シリコーン消泡剤 ※※ハイ・ケイス(ハムコ伽シェフイールド・ケミカル
・カンパニー、リントバースト、NJ)培地を1600
ガロンの発酵釜に加えた。5N水酸化す) IJワム水
溶液を添加して培地のpHを7.0に調節した。17p
si、121℃で30分間培地を滅菌した。滅菌した培
地に滅菌空気を初速間20立方フィート/分で通気し、
通常の撹拌機で初速度1100RPで撹拌し、30℃で
約6日間発酵を行った。発酵期間中、培地のpHを約7
.0に維持し、培地の溶解酸素濃度を空気飽和の約45
%に保ち、グルコースを毎日4g/lの一定割合で培地
に添加した。また24時間後、ハイ・ケースを毎日3g
/lの一定割合で培地に添加した。 実施例13 A10255抗生物質複合体の単離 A10255.2微生物の全発酵プロス(50001)
を回収し、濾過助剤(ハイフロ・スーパー・セル、ジョ
ン・マンビル・プロダクツ・コ−ボレーション)を使用
してこれを濾過した。濾過液およびバイオマスの水洗液
(水12001)は棄てた。 ついでバイオマスを、水:アセトン(1:4)の混合液
(20001)でバッチ式に抽出した。 抽出を繰り返し、抽出液を合わせた(総量4000リツ
トル)。合わせた抽出液にはA10255複合体のバル
クが含まれていた。 合わせた抽出液を真空下に濃縮し、水性懸濁液とした。 放置していると、懸濁液からきれいな固体が沈殿した。 ついで濃縮した抽出物を遠心し、上清を棄てた。 遠心によって得た固体を真空乾燥し、A10255抗生
物質活性423μg/mgを含有している茶色の粉末1
.5kgを得た。 特許出願人 イーラネ・リリー・アンド・カンパニー代
理 人弁理士青 山 葆外1名 一一 4− ♂ 傾 q*5 叡 領 奢 ♂ @@@−巴 手続補正書動式) 21発明の名称 抗生物質A10255複合体および因子類、そのプロセ
ス、微生物類および製造 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住所 アメリカ合衆国46285インデイアナ州インデ
イアナポリス市、リリー・コーホレイト・センター (
番地の表示なし) 名称 イーライ・リリー・アンド・カンパニー4、代理
人 住所 〒540 大阪府大阪市東区域見2丁目1番6
1号6、補正の対象;「図面の簡単な説明」の欄7、補
正の内容 明細書第143頁第15行「・・・を得た。」と第16
行「特許出願人・・・」の間に下記の文章を挿入する。
因子の赤外吸収スペクトルをKBrディスク法で測定し
た。第1図はB因子、第2図はC因子、第3図はE因子
、第4図はF因子、第5図はC因子、第6図はH因子の
赤外吸収スペクトルである。 主としてB、C1E、F、GjdよびH因子から成るA
10255の複合体は、ストレプトマイセス・ガードネ
リのこれまで記載されていない株、NRRL15537
またはNRRL18260、またはA10255を生産
するその変異株を、同化し得る炭水化物源、窒素源およ
び無機塩を含有する水性培地中でA10255複合体が
生産されるまで培養することによって生産する。 抗生物質を生産する多くの培養の場合と同じく、ニス・
ガード不りNRRL15537、NRRL18260ま
たはNRRL15922のA10255生産株の発酵か
ら、多数の抗生物質作用物質の副生量が生じる。抗生物
質A10255のB因子はNRRL15537培還によ
って生産される主要因子であり、C,E、F、Ggよひ
H因子はそれよりも少量であるが単1iiI可能な歌で
生産される。その他の因子は単離するに値しない程変微
着の存在であるか、あるいは比較的不安定である。 Gji5よびH因子はNRRL18260培養の発酵か
ら、C因子を主要丙子として単離される。−緒に生産さ
れる個々の因子の曖は、上記の任意の微生物発酵毎にそ
れぞれ変化し得る。 発酵中に一緒に生産され、混合物として得られた抗生物
質因子ff1B、C,E、F、GおよびHをA1025
5複合体と呼ぶ。独立した各因子を相互に分離し、F記
に示した理学的8よび生物学的諸性質を有する明確な実
在物質として単離した。 「薬学的に許容し得る塩」の用語は、本発明の化合物の
アルカリ金属塩Sよびアルカリ土類金属塩(例えばリチ
ウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩およびカルシウム塩
)および本発明の化合物と1酸、臭化水素酸、硫酸3よ
びリン酸のような酸の間に作成される酸付加塩とを含む
。 各抗生物質因子の理学的特徴 A10255B因子 A10255のB因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロフラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微漬色の非結晶性粉末
である。 B因子の元素分析結果から、炭素49.25%;水素3
.94%;窒素15.65%;酸素21.36 %3
よび硫黄6.73%で示される近似百分率組成(平均値
)を有することが判明した。 高速原子F[質鎗分析によって測定したA10255B
因子の見掛けの分子量は約1244ダルトンである。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中で行ったA102
55B因子の電気滴定により、4.9.11.2 #よ
び12.8で示されるpKamを有する滴定可能な3個
の基が存在することか判明した。 B因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)から、
アンモニア(5268ミリモル/Tll9)およびスレ
オニン(629ミリモル/mg)の存在が判明した。ま
たこの分析に3いて、ヒスチジン・ピークの位置の後に
表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性3よび塩基性メタノール中で得られたB因子
の紫外部吸収スペクトルの人 は245aX nm(ε=66.000)であった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付した第
1図に示した。スペクトル中に認められ(、□) た待に著しい最 収値は、3373.2969.29
32、△ 2875.1661.1598.1520.1494.
1395.1250.1114.1084.996,9
32および900(Qm−−1)である。 両市水素化ジメチルスルホキシド中、500MHzに3
けるB因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル
は下記の通りである。 共鳴潔 化学シフト 多重度1
10.53 52
9.95 33 9.
86 34 9.79
35 9.61
56 9.58 S7
9.09 38
8.90 T9
8.84 Dlo
8.67 311 8.6
0 S12 8.51
S13 8.48
D14 8.39
515 8.25 D
16 8.24 S(つ
づき) 17 8.04 D18
6.53 *S 19 6.39 T2O6,
115 215,95S 22 5.84 523
5.82 324
5.79 325 5.76
+S 26 5.68 S27
5.64 328
5.44 DQ29 5.
16 D30 4.80
DD31 4.67
DD32 4.63 DD3
3 4.24 B S34
2.21 DQ35
1.62 D36
1.11 D37 1.01
T(4増強 十三咳増強 過眠水素化ジメチルホルムアミド中、125MH2にお
けるB因子の13C−核磁気共鳴スペクトル1
172.88 S2
169.17 S3 168
.87 S4 164.9
OS 5 163.67 S5
163.07 S7
162.84 S8 1
62.68 S9 162.
61 810 161.57
SLl 160.32
Si2 160.17
S13 160.01 S1
4 159.46 S15
15 B、96 Si2
158.10 Si2
149.39 S18 149
.37 S19 148.79
S20 142.05
S21 146.88
S22 142.05 D23
141.32 D24
140.68 D25
139.23 S26
136.33 S(つづき) 27 136.29 328
136.14 329 13
5.26 D30 134.23
531 133.82
332 133.28 333
130.21 534 1
29.07 335 127.22
D36 125.94
D37 124.98
D38 122.36
339 121.47 D40
110.92 T
41 110.49 T42
109.98 T43
109.46 T44 106.
23 T45 104.73
T46 67.37
D47 57.94
D48 46.33 D49
40.24 T50
20.74 T51 20.
67 Q52 12.93
QS=−重線、D=二暇線、T=三市線、Q=
四屯線。 A10255C因子 A10255のC因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロフラン
:水(4: 1 (v:v))に可溶性の白色ないし微
黄色の非結晶粉末である。 C因子の元素分析結果から、炭素49.18%;水素3
.86%;窒素17.89%;酸素18.28%および
硫直6.46%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 高速原子衝砿質階分析によって測定したAlO255C
因子の見掛けの分子量は約1174ダルトンである。C
sIをvAr$物質として使用して測定した正確な質優
は1175.35(M+H)であった。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でAlO255C
因子の電気滴定(初MpH値、7.29)を行い、2.
9(不確実)および12.0 で示されるpKa値を有
する2個の滴定可能な基が存在することが判明した。 C因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)により
、アンモニア(7429ミリモル/ mg) sよびス
レオニン(758ミリモル/mg)の存在が判明した。 またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置の後
に表れる巨大な未&m認のピークか証明された。 中性、酸性および塩基性メタ/−ル中で得られたC因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
63,000)でめった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付の第2
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3375.2973.2932.2876.
1661.1597.1494.1427.1345.
1305.1249.1111.1083.984.9
33および894cm−’−でめった。 過市水素化ジメチルスルホ牛シト中、360MH2で得
られるC因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナ
ル(δ)は10.51.10.08.9,84.9.5
7.9.10.8.88.8.03.7.94.7.5
3.5.15(以上の値はすべてD20で交換可能な値
である)、8.67.8.59.8.51.8.49.
8.38.8.25.8.24.6.57.6.52.
6,38.6.11.5.91.5.78.5.74.
5.70.5.65.5.63.5.44.5.15.
4.79.4.67.4.63.4.23.2.21.
1.62.1.11および1.01 でめった。 A10255のC因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロ7ラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微黄色の非結晶性粉末
である。 C因子の元素分析結果から、炭素48.03%;水素3
.91%;窒素15.76%;酸素17.09%および
硫黄5.63%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 高速原子衝・砿質量分析によって測定したAlO255
E因子の見掛けの分子量は約1258ダルトンである。 CsIを漂準物質として使用して測定した正確な質社は
1259.55(M+H)であった。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でAlO255E
因子の電気滴定を行い、4.85.11.1および13
.2で示されるpKa値を有する3個の滴定可能な基が
存在することが判明した。C因子のアミノ酸分析(6N
塩酸で加水分解後)により、アンモニア(8580ミリ
モル/jn?>およびスレオニン(716ミリモル/m
g)の存在が判明した。 またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置の後
に表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性および塩基性メタノール中で得られたC因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
77.000)であった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付の第3
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3367.3361.2966.1664.
1501.1389.1254.1102 および88
9c+++’ でめった。 両歌水素化ジメチルスルホキシド中、270MH2で得
られるC因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグ
ナル(δ)は10.54.10.00.9,94.9.
81.9.60.9.56.9.45.8.89.8.
84.8.66、8.59゜8.50.8.47.8.
39.8.25.8,22.8.10.6.53.6.
50、6.24.5.95.5.86.5.84.5.
77.5,64.5.55.5.52.5.44.5.
10.4,80.4.66.4.64.4,22.2.
78.1.60.1.11および1.00である。 A10255のF因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロ7ラン
:水(4: i (v:v))に可溶性の白色ないし微
黄色の非結晶性粉末である。 F因子の元素分析結果から、炭素49.65%;水素4
.23%;窒素17.11%;酸素22.08%および
硫黄7.78%で示される近似百分率組成(平均値)を
有することが判明した。 制速原子衝°砿質盪分析によって測定したA10255
F因子の見掛けの分子量は約1188ダルトンである。 66%ジメチルホルムアミド水溶液中でA10255F
因子の電気滴定(初期pH値、7.08)を行い、12
.5で示されるpKa値を有する滴定可能な基が存在す
ることが判明した。 F因子のアミノ酸分析(6N塩酸で加水分解後)により
、アンモニア(7226ミリモル/mg)オよびスレオ
ニン(735ミリモル/mg)の存在することが判明し
た。またこの分析において、ヒスチジン・ピークの位置
の後に表れる巨大な未確認のピークが証明された。 中性、酸性および塩基性メタノール中で得られたF因子
の紫外部吸収スペクトルのλmaxは245nm(ε=
71,500)でめった。 赤外吸収スペクトル(KBrディスク法)を添付のM4
図に示した。スペクトル中に認められた特に著しい最大
吸収値は、3369.2943.2907.2846.
1663.1588.1519.1493.1425.
1337.1288.1251.1151.1110.
1083.995.927.890,807.776お
よび751σ でめった。 両市水、素化ジメチルスルホキシド中、360MH2で
辱られるF因子のプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグ
ナル(δ)は10.51.10.17.9,88.9.
77.9.54.9.10.8.90,8.88.8.
66.8.59.8.51.8.49.8.25.8.
38.8.24.8.06.7.94.7.53.6.
56.6.51.6.27.6.23.6.12.6,
12.5.96.5.77.5.76.5.71.5.
71.5.64.5.62.5.47.5.14.4.
77.4.65.4,62.4.20.2.77.2.
48.2.48.1.58.1,08.0.98および
0.98 である。 A10255G因子 A10255のG因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム/メタノー
ル混合液およびテトラヒドロフラン:水(4: 1 (
v:v))に可溶性の白色ないし微黄色の非結晶性粉末
である。 G因子の元素分析結果から、 実測値(%) C51,46 H3,82 N 17.62 0 19.38 3 7.03 99.31% で示される近似百分率組成を有することが判明した。 G因子の紫外部吸収スペクトルは、中性エタノール中で
λmax = 247 nm (ε=72,200)、
酸性エタノール中でλmax=247nm(ε=73,
400)、塩基性エタノール中で^max=211nm
(ε=27.200)である。 A10255G因子の赤外吸収スペクトル(KBrディ
スク法)を添付の第5図に示した。 両市水素化ジメチルスルホキシド中、500MH2で得
られたG因子の1H−核磁気共鳴スペクトルは下記のシ
グナルを有する。 共鳴名 化学シフト(δ) 多重度1
10.53 S2
9.95 33
9.83 S4 9.7
9 55 9.59 ”
B S6 9.09
37 8.89
T8 8.84 D9
8.68 310
8.60 S(つづき) 11 8.51 S12
8.48 D13
8.39 S14 8.24
Si2 8.24
D16 8.04 D1
7 6.53 *S L8 6.47 Q19
6.10S 20 5.95 S21
5.84 S22
5.81 S23 5.8
OS 24 5.78 S25
5.76 *S 26 5.68 S27
’5.64 S28
5.44 DQ29 5
.16 D30 4.75
DD31 4.67
DD32 4.63 DD3
3 4.24 B S34
1.77 Q35
1.62 Q36 1
.11 Q粁4増強 BS:幅広い一屯線 DD=二屯項の二重線 DQ=四市項の二重線 G因子の13c−核磁気共鳴スペクトルは、過屯水素化
ジメチルスルホキシド中、125MHz で得られた。 共鳴歴 化学シフト 多重度 1 172.80 S2
168.89 33 168.
71 S4 164.8 OS 5 163.59 36
163.0 OS 7 162.79 S8
162.61 39 162.
53 810 161.52
511 160.24 312
160.12 513
159.94 314 159.
42 515 158.91
316 158.01 317
149.41 518
148.73 S19 148
.04 5(つづき) 20 146.83 S21
141.94 D2
2 141.26
D23 140.62 D24
139.20 S2 s
136.25 S26
136.2 OS 27 136.04 S28
134.2 OS 29 133.81 S30
133.22 S31
130.14 S32
128.99 D33 1
28.7 OS 34 127.08
D35 125.83 D3
6 124.92 D37
123.66 S38 1
21.40 D39 110.7
7 T40 110.22
T41 109.85 T
42 109.35
T43 106.12
T44 104.65
T45 67.
26 D46
57.94 D47
46.49 D(つづき) 48 40.12 Q49
20.60 Q51
20.22 Q52 13.
41 QA10255H因子 A10255のH因子は、ジメチルスルホキシド、ジメ
チルホルムアミド、ピリジン、塩化メチレン/メタノー
ル(1: 1 (v:v))およびテトラヒドロフラン
:水(4: 1 (v:v))に可溶性の白色ないし微
貨色の非結晶性粉末である。 H因子の元素分析結果から、 実測値(%) C50,36 H3,72 N 18.61 0 18.54 S 8.20 99.43% で示される近似百分率組成を有することが判明した。 H因子の紫外部吸収スペクトルは、中性エタノール中で
^max=244nm(ε=74,000)、酸性エタ
ノール中でλmax=245nm(ε=74,500)
塩基性エタノール中でλmax=211nm(ε=23
.800)である。 H因子の125MHzにおける13C−核磁気共鳴スペ
クトルは扇型水素化ジメチルスルホキシド中で得られ、
下記のシグナルを有する。 共鳴凋 化学シフト(δ) 多咀度2
168.92 S3
168.86 54 165
.14 35 163.63
36 163.03
57 162.65 38
162.33 39
161.52 510 1
60.30 S11 160
.14 512 159.99
313 159.45
S14 1 s 8.94
515 158.09
516 149.43 *S(つづき) 17 148.78 Si2
148.03 Si2
146.9 OS 20 142.07 D21
141.30 D22
140.68 D23 139.
21 S24 136.96
S25 136.10S 26 134.67 S27
134.07 S28
133.8 OS 29 130.27 S30
129゜03 S31
128.78 D32 127.
24 D33 125.94
D34 124.99 D
35 123.71 S36
121.50 D37
111.76 Ta2 110.
45 Ta2 106.11
T40 104.67
T41 104.44 T42
67.39 D43
57.95 D44 46.54
D(つづき) 45 40.22 T46
20.66 Q47
20.34 Q48 13.
52 Q*市複度 扇型水素化ジメチルスルホキシド中、500MHzKお
ける1H−核磁気共鳴スペクトルは下記のシグナルを有
する。 共鳴潔 化学シフト 多改度i
i o、s t s
2 10.08 33
9.81 54
9.79 35 9.
57 56 9.10S 7 8.86 78
8.83 D9
8.68 510
8.60 Dl 1 8
.51 312 8.50
Dl3 8.39
S14 8.25
Dl5 8.24
S16 8.03
D(つづき) 17 7.94
318 7.53
S19 6.56
320 6.53
321 6.48 Q22
6.12 3
23 5.96
S24 5.8 OS25
5.78 S26
5.74 527
5.72 528
5.65 329
5.64 930
5.44 DQ31
5.15 D32
4.80 DD3
3 4.68 DD34
4.63 DD
35 4.24 BS36
1.78 D
37 1.62
D38 1.10 DA
10255H因子の赤外吸収スペクトル(KBrディス
ク法)を添付の第6図に示した。 高速原子衝撃質量分析によって測定したA10255H
因子の見掛けの分子看は約1160である。 CsIを標準物質として使用しで測定した正確な質量は
1161.32 (M+H)であった。 A10255を生産する親株ニス・ガードネリNRRL
15537は、元来A10255.1として同定された
ものであるが、以下の項に記載したように実施した分類
学的検討によりこれを分類した。 A10255.1株の分類 A10255.1株の分類学的な研究は、リリー・リサ
ーチ・ラボラトリーズ(Li1ly Re5earch
Laboratories ) のフレプリ゛ンク°
P−マー°ン氏(Frederick P、 Mert
z ) によって行われた。 これらの研究に基づき、この微生物はストレプトマイセ
ス・ガードネリ〔ワックスマン(Waksman)19
42]・ワックスマン1961ATCC23911の新
規株として分類される。この分類は、この種に関する公
開された記載〔ブキャナン(R。 E、 Buchanan )およびギボンズ(N、E、
Gibons)編「バーギーズ・マニュアル・オブ・
デイターミネーテイブ・バク°テリオロジー(Berg
ey’ sManual of Determin
ative Bacteriology)]、第8版
、ザ・ウィリアムス・アンド・ウイルキンス・カンパニ
ー(The Williams andWilkin
s (o、)、バルチモア(Baltimore )、
1974GIE;シャーリング(E、B、 Shirl
ing )およびゴツトリーブ(D、 Gottlie
b)、rコオペラテイブ・ディスクリプジョン・オブ・
タイプ・カルチャーズ・オブ・ストレプトマイセス(C
ooperative Description of
Type Cu1turesof Streptom
yces ) J、インターナショナル・ジャーナル・
オブ・システマテイック・バクテリオロジー(Int、
J、 5yst、 Bactriorl、)、18(
4)、279〜392(1968手)およびワックスマ
ン(S、A、 Waksman )、「ジ・アクチノマ
イセーツ(The Actinomycetes )、
第1巻」、ザ・ウィリアムス・アンド・ウイルキンス・
カンパニー(The Williams and Wi
lkins Co、)、バルチモア(Ba l t i
mo re )、 1961甲]の考案と同時に実験室
の比較に基づいている。 ストレプトマイセス種の特性決定に関し、インターナシ
ョナル・ストレプトマイセス・プロジェクト(ISP)
によって推奨されている方法〔シャーリング(E、B、
Shirling)およびゴツトリーブ(D、 Go
ttlieb)、 [メンッズ・フォア・−hラクタリ
ゼーション・オブ・ストレプトマイセス・スピーシーズ
(Methods for Characteriza
tionof Streptomyces 5peci
es)J、 インターナショナル・ジャーナル・オブ・
システマテイック。 バクテリオロジー(Int、 J、 5yst、 Ba
cteriol、)、16巻(3)、313〜340(
1966手)]に従って試験し、さらに幾つかの追加的
な試験を実施した〔ブラゼビツク(D、J、 Blaz
evic)およびエデラー(G、M、 Ederer)
、[プリンシプルズ・オブ・バイオケミカル・テスラ・
イン・ダイアグノスティック−フィクロバイオロジー(
Principles ofBiochemical
Te5ts in Diagnostic Micro
−biology J 、ジョン・ウィリー・アンド
・サンズ・インコーポレーテイッド(John Wil
ey andSons、 Inc、 )、ニーL−ヨー
ク、1975年1゜最終alfが1.0%に等しくなる
ように濾過滅菌した炭素源を添加したrsPA9の基礎
培地で炭素利用様式を検討した。プレートを30℃でイ
ンキュベートして14日後に検査した。 ISP&1(トリプトン−酵母エキスブロス)、ISP
&6(ペプトン−酵母エキス鉄寒天)、Ispg7(チ
ロシン寒天)およびチロシンを除いた修飾I S P
/M 7培地でメラノイド色素産生(色素産生性)を検
討した。 でんぷんの存在をISP&4(無機塩−でんぷん寒天)
プレート上でヨードで試験することにより、でんぷん加
水分解性を検討した[ブラゼックおよびエデラー(@記
)参照]。 光学顕微鏡を使用して形態を楕丘した。走丘型電子顕微
鏡(SEM)を使用して胞子表面構造の形態を晴丘した
。 所望の濃度に等しくなるまで塩化すl−IJウムをIS
P&2寒天に添加することにより、塩化ナトリウム抵抗
性を測定した。 1、C35−NBS・セントロイド・カラー・チャー7
(Centroid Co1or Charts )の
標準サンプル潔2106〔ナショナル・ビュワー・オブ
・スタンダーズ(National Bureu of
5tandards)1958、U、S、デパートメ
ント・オブ・コマース(U、S、 Departmen
t of Commerce )、ワシントン・DC)
#よびザ・カラー・ハーモニー・マニュア/L/ (t
he Co1or Harmony Manual )
、第4版、〔カラー・スタンダーズ・デパートメント(
ColorStandards Department
)、コンテナー・コーポレーション・オブ・アメリカ(
Container Corpo−ration of
America )、シカゴ、イリノイ、1958)
を使用して色調名を決之した。 細胞壁の糖項は、レジエバリアーの方法(M、P。 Lecheva I ier ) [rアイデンティフ
ィケーション・オブ・エアロビック・アクチ/マイセー
ツ・オブ・クリニカル−インポータンス(I dent
ificationof Aerobic Actin
omycetes of C1inicalIC11n
icalI ) J、ジャーナル・オブ・ラボラトリ−
・アンド・クリニカル・メデイシン(J、Lab。 Cl1n、 Med、)、71巻、934〜944 (
1968手)〕で検討した。ジアミノピメリン酸(oA
P)異性体は、ベラカー(B、 Becker )、
レジエバリアー(M、P、 Lecheva 1 ie
r )、ゴートン(R、E 、 Gordon )お
よびレジエバリアー(H,A、 Lechevalie
r)rラピッド・デイファランシエーション・ビトウイ
ン・ノカルジア・アンド・ストレプトマイセス・パイ・
ペーパー・クロマトグラフィー・オプ・ホール・セル・
ハイドロライゼーツ(Rapid Differ−en
tiation between Nocardia
and 5trept −omyces by Pap
er Chromatography of Whol
ecell Hydrolysates)J、 アプラ
イド・マイクロバイオロジー(Appl、Microb
iol、)、 11@、421〜423(1964手)
〕に示されているクロマドグフィーの方法によって罐定
した。 培養特性 A10255.1は制限増殖型の発達が非常に乏しい気
中菌糸によって特徴付けられる。気中菌糸は白(W)〜
灰色(GY) の系統の色に属する胞子塊を有する。 トレスナーおよびバッカス・システムの色5表(カラー
・ハーモニー・マニュアル(前記)およびバッカス(E
、 J 、 Backus )およびトレスナ−(H,
D、 Tresner)、「システム・オブ・カラー・
ホイールズ・フォア・ストレプトマイセス・タキン/ミ
ー(System of Co1or WheeIsf
or Streptomyces Taxonomy)
J、アプライド−マイクロバイオロジー(Appl、M
icrobiol、)、11巻、335〜338(19
56手)〕において、白色系で最も近い色調は亘オイス
ター・ホワイトであり、灰色系で最も近い色調は基ライ
ト・グレイである。この培養の特徴はグリセリン−アス
パラギン寒天(ISP&5)で最もよく観察される。 たいていの培地で気中胞子の発達は乏しいから、色の測
定は甚だ難しい。 この培養の背面には、なんら著しい色素は認められない
。背面の色調はオレンジ色−眞色〜黄色−茶色であり、
pHによって影響されない。産生される唯一の可溶性色
素は、チロシン寒天(IsPg7)およびトマトペース
ト−オートミール寒天(TPO)で生成する明るい茶色
の色素、およびグリセリン−グリシン寒天で生成する明
るいオレンジ色の色素である。変異性のために移植した
場合、この培養は安定であり、均質である。 A10255,1 およびニス・ガードネリ・ATC
C23911の培養特性を第1表に示す。 形態学的特性 A10255.1は、発達が乏しく断片を作らない単軸
分枝型の気中胞子を産生ずる。担胞子体は真直ぐに並び
、屈曲した分校を有する。らせん体、菌核、胞子嚢また
は運・幼性胞子は観察されなかった。A10255.1
はプリダム(pridham)らのレクタス・フレキシ
ビルス(Rectus −f 1exibilus)(
RF)・セクションに位置づ゛けられる〔プリダム(T
、G、Pridham) ら、[ア・ガイド・フォア
・ザ・クラシフィケーション・オブ・ストレプトマイセ
ス・アコ−ディング・ツー・セレクテツド・グループス
(A Guide for the C1assif
icationof Streptomyces Ac
cording to 5electedGroups
) J 、アプライド・マイクロバイオロジー(Ap
pl、Microbiol、) 6巻、52〜79 (
1957手)〕。 気中胞子が観察できた培地では、すべて同一の形態が観
察された。一般に成熟した胞子連鎖は連鎖1本当りに1
0〜50個の胞子を含んでいる。 胞子の形は円筒型である。胞子の大きさは長さが0.9
〜1.0μM、幅が0.5〜0.6μMである。 平均の大きさは1.6 X 0.6μMである。胞子の
表面構造は平滑である。 生理的特性 全細胞の加水分解物は、メン異性体が存在しないLL−
ジアミノピメリン酸を含有している。全細胞の加水分解
物に存在している糖頑は、グルコース、マンノースおよ
びリボースであった。これらの特徴はI型細胞壁である
ことを示し、NC1即ち特色のない糖パターンを表して
いる〔レジエバリアー(M、P、 Lechevali
er )(前記)〕。この細胞壁の主構成要素の組合わ
せは、この菌がストレプトマイセス属に属することを示
している〔レジエバリアー(@記)、およびブキャナン
Sよびギボンズ(編)(@記)〕。 A10255.1の炭素利用の型は、L−アラビノース
、D−フルクトース、D−ガラクトース、D−”ルコー
ス、i−イノシトール、ラフィノースおよびD−キシロ
ースが発育に利用される。D−マンニット、L−ラムノ
ース、サリシンおよびシュクロースは発育に役立たない
。下記の第2表はA10255.1およびニス・ガード
ネリATCC23911で観察された炭素利用の型を比
較したものである。 第2表A10255.1およびニス・ガードネ1JAT
cc23911による炭素化合物の利用炭素源
A10255.1 ニス・ガードネリ無添加
−8− L−アラビノース +5 +D−フ
ルクトース + +D−ガラクトー
ス + +D−グルコース
+ +l−イノシトール 十
−D−マンニット −− ラフィノース + +L−ラム
ノース +サリシン
−− シュクロース +D−キ
シロース + +−8=利用なし +5=利用 培4A10255.1はでんぷんを加水分解し、スキム
ミルクを部分的に加水分解し、カタラーゼを産生じ、ゼ
ラチンを液化し、硝酸塩を亜硝酸塩に還元した。 A10255.1は塩化ナトリウムに対し6%まで抵抗
性を有し、4°〜40℃の温度で発育し得る。 A10255.1をトリプトン−酵母エキスブロス(I
SP&1)およびペプトン−酵母エキス鉄寒天(ISP
&6)斜面で発育させるとメンノイド色素が産生ずる。 チロシン寒天(I S P&7 )斜面ではメ、ラノイ
ド色素を産生じない。 種の決定 A10255.1の培養学的、形態学的および生理学的
な特徴を利用して、これと頌似の種の公開された記述と
比較を行った。次のストレプトマイセスの4種を選び、
同時実験的な比較によって検討した。 ストレフトマイセス・オーレオファシクルス8(Str
promyces aureofasciculus)
ストレプトマイセス・オーレオモノポイディアルス8 (Strpromyces aureomonopo
idiales)ストレプトマイセス・フラボクロモゲ
不ス(Strpromyces fravochro
mogenes)ストレプトマイセス・ガードネリ0 (Strpromyces gardneri)8シヤ
ーリング(E、B、 Shirling)およびゴツト
リーブ(D、 Gottlieb)、「コオヘラテイブ
・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カルチャーズ・
オブ・ストレプトマイセス(Cooperative
Desc −ription of Type Cu1
tures of Streptomyces)[、イ
ンターナショナル・ジャーナル・オブ・システマテイツ
ク・バクテリオロジー(Int、 J。 5yst、 Bacteriol、)、19 (4)、
375〜390C1969年)〕。 5シヤーリング(E、B、 、Shirling)およ
びゴツトリーブ(D、 Gottlieb)、[コオペ
ラティブ・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カルチ
ャーズ・オブーストレプトマイセス(Cooperat
ive Desc−ription of Type
Cu1tures of Streptomyc−es
)J、インターナショナル・ジャーナル・オグ・システ
マテイツク・バクテリオロジー、22t41.265〜
394(1972手)〕。 0シャーリング(E、B、 Shirling) j6
よびゴツトリーブ(D、 Gottlieb)、[コオ
ペラテイブ・ディスクリプジョン・オブ・タイプ・カル
チャーズ・オブ6ストレプトマイセス(Coopera
tive Desc−ription of Type
Cu1tures of Streptomy −c
es ) J 、インターナショナル・ジャーナル・オ
ブ・システマテイック・バクテリオロジー、18 f4
+、279〜392(1968手)〕。 実験室的な比較から、ニス・オーレオファシクルスおよ
びニス・フラボクロモゲ不スとは著しく差異があり、ニ
ス・オーレオモノポイディアルスおよびニス・ガードネ
リとはよく一致した。然しながらニス・オーレオモノポ
イディアルスはアブルーブト・リスト・オブ・バクチリ
アル・ネームズ(Approved Li5t of
Bacterial Names)にはないので考察か
ら除外した。 A10255.1は、培養学的、形態学的Sよび生理学
的にニス・ガードネリと極めて類似している。二つの株
を区別する決定的な培連上の特徴はたいていの培地で気
中菌糸の生成が非常に少ない点である。文献中でニス・
ガードネリはグレイ(GY)・シリーズに属すると記載
されている。然しワックスマンによる本来の記載(S、
A、 Wacksman、前記)およびA10255.
1との実験室における比較では、この株は白色(W)お
よび灰色(GY)の気中菌糸を生じる。二つの培養の背
面の色はほとんど同じである。二つの培摩はいずれもレ
クタス・フレキシビラス(RF)構造、平滑な胞子の表
面構造、円筒型の胞子形態および1−19〜50個の胞
子連鎖を有する。 カタラーゼ産生、ゼラチンの液化、メラノイド色素の産
生、硝酸塩の還元、ミルクおよびでんぷんの加水分解は
二つの株とも同一である。 A10255.1とニス・ガードネリの相違は僅かであ
る。ニス・ガードネリはA10255.1よりも塩化ナ
トリウムに対する抵抗性が一層低く、温度範囲も低い。 ニス・ガードネリは、L−ラムノースおよびシュクロー
スを利用し得る点およびl−イノジットを利用できない
点によってAlO255,1から区別される。これらの
類似点および相違点を下記の表にまとめて示す。 気中1胞子集塊の色(W) 炭素利用カタラーゼ
陽性 塩化ナトリウム抵抗性細胞壁加水分解
物(LL−温度範囲 DAP) − 特殊な色素なし ゼラチン液化 形態(RF) 硝酸塩還元 ミルクの部分的加水分解 背面色素 可溶性色素なし 胞子連鎖の長さ 1抱子の形態 胞子の表面構造(SM) でんぷんの加水分解 第3表に2つの培養の類似点および相違点を詳細に示す
。 第3表 A10255.1およびニス・ガードネリAT
CC23911の比較 特 徴 A10255.1 ニス・ガード
ネリ気中胞子果塊の色調 (W) (W
)炭素利用の型 i−イノジット 十 −L−ラム
ノース +シュクロース
十カタラーゼ
+ +細胞壁の型 I
I特徴的な色素 −− ゼラチン液化 + +メラノイド色
素産生 ISPS工高 + +ISP朧6
+十 ISP高7 − 一形態
(RF) (RF)NaCI抵抗性
(5%)64 硝酸塩還元 + 十背面の色調
YB r YB rスキムミルク
加水分解 部分的 部分的可溶性色素
−− 胞子連鎖の長さ 10〜50 10〜50
胞子の形態 円筒型 円筒型胞子の表
面 平滑 平滑でんぷん加水分解
+ +温度範囲(℃)
4〜40℃ 4〜37℃上記の比較結果から、A 1
0255.1はニス・ガードネリに非常に爛似している
ことが判明した。 したがって培養A10255.1をストレプトマイセス
・ガードネリ(ワックスマン、19421)・ワックス
マン1961、ATCC23911の1株として分類し
た。ニス・ガードネリは「アブルーブト・リスト・オブ
・バクチリアル・ネイムズ」〔スカーマン(V、B、D
、 Skerman)ら、インターナショナル・ジャー
ナル・オブ・システマテインク・バクテリオロジー、3
0(11,225〜420(1980手)〕に8いて承
認されており、したがって正当に公開されている種であ
る。 クリロウイッチら〔クリロウイツチ(W、 Kury−
lowicz)、パスキーウィッチ(A、 Paszk
iewiczλウオツ二カ(W、 Woznicka)
およびカーラアトコツスキ−(W、 Kurzatko
wski )、[ニューメジカル・タキソノミー・オブ
・ストレプトマイセス(Numerical Taxo
nomy of streptomyces)J、ボー
リツシュ・メジカル・パブリシャーズ(Pol−ish
Medical Publishers)、 197
5)によれば、ストレプトマイセスを分mする場合、類
似したウロツクロー(Wrocklaw) 樹状突起
および全般的近似法の双方から、数的表示方法でニス・
オーレオモノボディアルスおよびニス・ガードネリを同
一の菌株群に位置付けしている。この研究に基づく系統
図で、これら2つの株は94の百分率相似性で関係があ
る。この相似性から種における区分は正当なものでない
ことが示唆される。 上記のニス・ガードネリの培養は、ザ・ノーザン・レジ
オナル・リサーチ・デビジョン(TheNorther
n Regional Re5earch Devis
ion)、ニー・ニス・デパートメント・オブ・アグリ
カルチャー(U、S、 Department of
Agriculture)、アグリカルチュラル・リサ
ーチ・サービス(Agri−cultural Re5
earch 5ervice)、ペオリア(Peori
a)、 イリノイズ(IL)61604に寄託され、そ
の保存株の一つとして貯蔵された。本明細書が発効すれ
ば、培養はこのアグリカルチュラル部門からNRRL1
5537の番号のもとに誰でも利用できる。 の説明 A10255.10株、NRRL 18260は、NT
G(N−ニトロングアニジン)で連続的に行う一連の処
理によってその親株A10255.1、NRRL155
37から誘導されたものである。 A 10255.2株(ストレプトマイセス・ガードネ
リNRRL19522として先に掲げた)はA1025
5.1株のNTG にトロソグアニジン)変異株である
。A10255.1株はストレプトマイセス・ガードネ
リNRRL15537である。 A10255.1株およびA10255.2株には多数
の類似点がある。A10255.1株およびA1025
5.2株の分類学的な比較を表形式第5表 A 102
55.1株およびA10255.2気中胞子集塊の色調
W−GYW〜Y炭素利用の型
同じカタラーゼ + や
培養特性 グリセリン−グリシン 寒天での気中菌糸 −十 りザペック寒天での発 育 +
−ある種の培地での特徴的 な色素 + +ゼラチ
ン液化 + 十メラノイド色素産
生 + +形態
RF RFNaCz抵抗性(%66 硝酸塩還元 士 士背面の色調
YBr YBrスキムミルク加
水分解 部分的 完全ある種の培地での可溶性 色素 + +胞子連鎖の
長さ 10〜50 10〜50胞子の形態
円筒型 円筒型胞子の大きさくμM
) 1.Ox0.6 1.3X0.6胞子の表
面 平滑 平滑でんぷん加水分解
+ +上記のストレプトマイセス・ガ
ードネリの培養A10255.2は、ザ・ノーザン・レ
ジオナル・リサーチ、デビジョン(The North
ern RegionalResearch Devi
sion )、ニー・ニス・デパートメント・オブ・ア
グリカルチャー(U、S、 Departmentof
Agriculture )、アグリカルチュラル・
リサーチ・サービス(Agricultural Re
5earch 5ervice )、ペオリア(Peo
ria )、イリノイズ(rL)61604に寄託され
、その保存株の一つとして貯蔵された。 −′ 培養はこのアグリカルチ ュラル門からNRRL 15922の番号のもとに誰で
も利用できる。 AIQ255抗生物質複合体は、これまでに記載のなか
った微生物ストレプトマイセス・ガードネリNRRL1
5537、NRRL18260株またはNRRL159
22株、またはA10255を生産するその変異株を、
同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含有する培地
中で好気的液中培養条件下に、A10255複合体が生
産され、好ましくは抗生物質活性の実質水準が生産され
るまで培養することによって生産することができる。は
とんどの抗生物質活性は一般に菌糸体と一緒に見いださ
れるが、僅かな量の抗生物質活性はブロス中°に見いだ
される。A10255複合体は沖過によって菌糸体(バ
イオマス)を取り出すことによって発酵混合物から最も
容易に分離される。一般にブロスは棄てられる。ついで
抗生物質複合体を菌糸体から単離する。 親株NRRL15537は最も豊富な因子としてB因子
を生産する。変異株NRRL18260は最も豊富な因
子としてBおよびGを生産する。したがって残りの因子
C,E、FおよびHは、いずれの株の場合もはるかに少
量しか生産しない。 菌糸体を極性溶媒(アセトン:水(4:1)のような〕
で抽出し、濃縮し、酸性にし、再び有機溶媒(例えば酢
酸エチル)で抽出し、得られた溶液を濃縮して、A10
255複合体を沈殿させる。 A10255複合体は、さらに精製することなく、動物
飼料または動物飼料プレミックスに直接混合して使用で
きる。また別法として、A10255抗生物質複合体を
薄層クロマトグラフィー、カラムクロマトグラフィーお
よび特に各種の高速液体クロマトクラフィ一手段のよう
な周知のクロマトグラフィー手法により、独立した因子
に分離することができる。実験の部で、独立した因子に
分離するための2.3の特殊手段を説明する。 NRRL15537、NRRL18260またはNRR
L15922でA10255複合体を生産する場合、多
数の異なった培地を使用することができる。 然し生産の経済性、最適な収量および生産物の分離を容
易にするためには、ある一定の培地が好ましい。これら
の培地は、同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含
有すべきである。好適な炭素源はグルコース、でんぷん
、フルクトースおよびグリセリンである。炭素源の最適
濃度は約2〜約5(重り%である。 好ましい窒素源は大豆の酸分解物、カゼインの酸または
酵素分解物、アンモニウム塩、硝酸塩、グリシン、アラ
ニン、セリン、アスパラギンおよびグルタミンである。 微生物の生育に必要な必須微量元素は、培地の他の構成
成分に含まれている不純物に、微生物の成長と生合成に
必要な量に見合うだけの十分量が含まれている。然しな
から、さらにナトリウム、カリウム、マクネシウム、カ
ルシウム、アンモニウム、鉄、塩素、炭酸、りん酸、硫
酸、硝酸およびその他のイオンを生成し得る可溶性無機
塩栄養分を培地中に添加することは効果的である。 少量のA10255は振とうフラスコ培養によって得る
ことができるが、A10255抗生物質を十分量生産す
るには、タンク内で好気的液中発酵を行うのが好適な方
法である。タンク発酵を行うには、増殖接種法を使用す
るのが好ましい。増殖接種法とは、微生物を胞子形態ま
たは菌糸体断片として少量の培地に接種することによっ
て、新鮮で発育のさかんな培養株を得ることである。つ
いで増殖接種物をさらに大きなタンクへ移し、そこで好
適な培養時間をかけ、A10255抗生物質を最高収量
で生産する。 A10255を生産する微生物は、約23〜約37℃の
温度範囲でA10255複合体を生産する。A1025
5抗生物質複合体の至適生産は約30〜約32℃の温度
で起こるものと思われる。 好気的液中培養法で普通行われるように、無菌空気を培
地中に拡散させる。微生物の効率のよい生育のために、
タンク生産に使用する通気量(空気)は、約100〜約
30ORPMの攪拌を加えながら培地容量当り1分間に
約0.1〜約0.5容量(v、v、m)の範囲で行う。 100リツトルの発酵培地を含んだ165リツトルの容
器における最適割合は、はね付き回転攪拌機で約20O
RPM回転で攪拌した場合、約0.125 v/v/m
である。 発酵は一般に約40時間後に抗生物質活性を生じる。抗
生物質の生産ピークは、発酵時間の約110時間〜約1
40時間に見られる。 A10255抗生物質生産は、発酵期間中、バシラス・
サブチリス(Bacillis 5ubtilis )
ATCC6633を使用する寒天希釈法か、あるいは
スタフィロコッカス・アウレウス(5taphyloc
occusaureus ) ATCC9114を使用
する濁度測定法によってモニターできる。 A10255複合体および独立した因子類は抗微生物剤
であり、ことに下記のイン・ビトロ(1nvitro
) $よびイン・ビボ(in vivo )試験成績に
よって明らかなように、グラム陽性微生物に対して活性
な薬物である。第6表に、病原性グラム陽性細菌および
ダラム陰性細菌に対する各因子類の最小発育阻止濃度(
M r C,mcg/ml )を示す。 MIC値は標桑寒天希釈試験法によって得た。 またA10255は、多数のクロストリジウム・ジフイ
シル株に対して優れた抗微生物活性を示す。特に標準寒
天希釈試験において、A10255複合沫およびB、
C,EおよびF因子は0.03mcg/mlまたはそれ
以下のMICを示す。複合体およびBおよびC因子と同
じ試験における比較でバンコマイシンは2〜4mcg/
mlのMICを示した。 A10255複合体およびC因子を数種のバタテロイデ
ス種に対して試験したところ、優れた抗微生物活性を示
した。寒天希釈試験法によるこの試験の結果を下記の第
7表に示す。 第7表 バタテロイデス種の選ばれた株に対すB、フラ
ギリス株 1877 0、5 0.510
3 0、5 0.5104
0.06 0.06106
0.06 0.06107
1、0 1.0108 1、
0 1.0110 0、5
0.5111 1、0 1
.0112 1、0 1.011
3 1、0 1.01451
0.25 0.251470
1、0 1.02
0、5 0.59 1、0
1.09032 1.0
1.0B、コロ−デンス1874 0.5
0.5(B、corrodens ) B、バルガチス1563 0.25 0.2
5CB、 vulgaris ) B、シータイオタオミ クロン1438 0.5 0.5(B
、 thetaiotaomicron )B、シータ
イオタオミ クロン1900A O,50,5A1025
5複合体およびそれぞれの因子は、幅広い嫌気性微生物
に対して抗微生物活性を示す。 その抗微生物活性を第8表に示す。第8表に示した成績
は、標準寒天希釈試験法によって得られたMIC値であ
る。 A10255複合体およびB因子のしD5oはそれぞれ
300 mg/kg X 1および75 mg/kg
x”ヨリも大きかった。これらの成績は、いずれもマウ
スに腹腔内注射して得られたものである。 A10255抗生物質は、家禽、ブタおよびウシのよう
な経済的に重要な温血動物の成長促進剤である。ニワト
リのヒナにおいて、A10255は体重の増加と飼料利
用効率を改善する。第9表に、生後7日間のヒナに複合
体を自由に摂取させて飼育した14日間のバタリー試験
の2通りの試験結果をまとめた(1処置当り、7羽づつ
のヒナを入れたケージ10個を使用)。複合体で処置し
たヒナトリの成長記録を複合体を加えないで行った同数
の対照処置群の場合と比較した。 ヒナトリで実施した下記の試験成績から家禽における成
長促進効果が認められた。 ヒナの成長を促進するためには、ヒナトリの飼料1トン
当りにA10255複合体またはそれぞれの因子を約0
.5〜約50gの割合で添加したヒナの飼料として、A
10255複合体またはその独立した因子を投与すべき
である。A10255複合体またはその独立した因子を
、ヒナの飼料1トン当りにA10255複合体またはそ
れぞれの因子約5〜約20gの割合で投与したとき最も
効果的な結果が得られる。 また本発明は、家禽の飼料利用効率を高め、成長を促進
する飼料組成物を提供する。この飼料組成物は、ヒナの
飼料およびA10255複合体、Al0255B因子、
A10255C因子、A10255E因子、A1025
5F因子、A10255G因子またはA10255H因
子の有効量を含有する。複合体または個々の因子の[有
効itJは、ヒナの飼料の1トン当り約0.5〜50g
、好ましくは約5〜約20g1こ相当する。この飼料組
成物に使用するヒナの飼料として、任意のヒナ用標邸配
合飼料を充てることができる。 飼料組成物の製剤化は、獣医用医薬品技術lこおいて周
知の混合方法によって行われる。 好ましい飼料組成物はA10255複合体の有効量とヒ
ナの飼料から成る。 A10255複合体は、離乳したブタの成長促進作用を
示し、飼料の利用効率活性を高めた。複合体を使用して
実施した9種の試験結果をまとめた第10表に、そのよ
うな効果の証拠を示す。これらの試験で、離乳したブタ
の最初の平均体重は24ボンド(lbs )であり、試
験終了時の平均体重は531bsであった。環境的によ
くコントロールされた飼育設備の1囲い当りにブタを4
頭づつ入れ、蛋白質18%を含有するコーン−大豆飼料
を自由に摂取させて飼育した。試験はすべて35日間を
要し、1処置当り2〜3実験単位を用意し、1処置当り
に平均14頭の動物を使用した。 第10表において、括弧内は対照群に対する変化を%で
表したものである。「飼料/体重増加」の項の−で示し
た百分率変化は、A10255複合体で飼育したブタの
飼料/体重増加(飼料利用効率)における改善を表す。 さらに本発明は、離乳したブタで飼料利用効率を高め、
成長を促進するための飼料組成物を提供する。この飼料
組成物は、ブタの飼料およびA10255複合体、A1
0255B因子、A10255C因子、A10255E
因子、A10255F因子、A10255G因子または
A10255H因子のいずれかの有効量を含有している
。 離乳したブタのための飼料組成物における「有効量」は
、全飼料1単位当り、A10255複合体または独立し
た因子約20〜約40ppmに相当する。離乳ブタ用の
組成物に使用する飼料には離乳ブタに使用さ÷れる任意
の通常の飼料配合物を充てる。この飼料組成物は、獣医
用医薬品技術において周知の任意の方法によって製剤化
する。 離乳したブタ舎に好ましい飼料組成物はブタの飼料とA
10255複合体の有効量から成る。 またA10255複合体は、発達した反歌機能を有する
反歌動物において飼料の利用効率を改善する。A102
55抗生物質によって起こる飼料利用効率の増大は、そ
の一部を引用して説明したベック(James R,B
ack)およびヤーナー(JosephA、 Yahn
er) C米国特許第4333923号(1982年6
月8日発行)〕が記載している方法を用いて、反歌胃の
プロピオネート化合物の生成およびその濃度を観察する
ことによってこれをチェックすることができる。ベック
およびヤーナーの方法により、この試験で得られた対照
フラスコにおける生成量に対するA10255複合体で
処理じたフラスコ内の揮発性脂肪酸(VFA)生成量の
比を第11表に示した。 第11表 反歌動物の飼料利用効率に対するA1025
5複合体の効果1 1対照フラスコにおける生成率(モル/d)に対する処
置フラスコの生成率の比 A10255化合物はプロピオネートを増大するのに実
に有効であり、それ故に反歌動物にこれを経口投与する
と飼料の利用効率を増大するのに有効である。 下記の第12表はクシの成長およびその飼料利用効率に
対するA10255複合体の効果を検討した成績をまと
めたものである。この研究は3群の動物について79日
間実施した。 第12表 ウシの成長に対するA10255複合体の効
果 2d 275 2.88 (+4%)5.94
14%amg/1頭/日、b1日当り、 。9頭、
d10頭、09頭 また本発明は、A10255複合体の有効量またはA1
0255の因子の有効量をウシに投与することからなる
ウシの飼料利用効率の増大方法を提供する。好ましい方
法はA10255複合体の有効量をウシに投与すること
である。 ウシの成長を促進するため提供されたこの方法では、A
xo’2″′55複合体またはその因子の有効量を動物
に経口投与する。ここで「有効量」の語は、約0.05
mg/kg/日−約5. o mg/ kg /日を表
す。経口投与の好ましい割合は、約0.1mg/kg/
日〜約3.0mg/kg/日である。抗生物質複合体ま
たは因子はウシの飼料と一緒に投与できるが、また、例
えば水薬、大型丸薬またはカプセル剤のような他の方法
で投与することができる。A10255化合物をウシの
飼料と一緒に混合するのは好ましい投与経路である。こ
れら各種の投与形態の製剤化は、獣医用医薬品技術にお
いて周知の方法によって行われる。 また本発明はウシの飼料利用効率を増大する飼料組成物
を提供する。この飼料組成物は、ウソの飼料およびA1
0255複合体またはA10255の因子の有効量を含
有する。好まじり・クシの飼料組成物は、ウシの飼料と
A 1025 ’5複合体の有効量からなる。最も好ま
しいウシの飼料組成物は、ウシの飼料とA10255の
B因子またはA10255のC因子のいずれかの有効量
からなるものである。独立したA10255のB因子、
C因子、E因子、F因子、C因子およびH因子は、はぼ
最小限に生物学的同等性であるように思われる。 上記のウシの飼料組成物において、「有効量」の語は、
先にウシの飼料利用を向上する場合に示したのと同様の
意味に用いる。この飼料組成物に組合わせて使用するウ
シの飼料には、通常ウシに使用される任意の配合飼料を
充てることができる。 本発明のもう一つの態様として、A10255複合体お
よび各因子、ことにA10255B因子は、チオストレ
プトン耐性伝達遺伝子を有するストレプトマイセス種を
同定するの1こ有用である。 そのような種は天然にチオストレプトン耐性遺伝子を有
するか、あるいはプラスミドまたはチオストレプトン耐
性遺伝子を含んでいる他のクローニングベクターを導入
することによって耐性を有するものである。 したがってA10255BおよびAl 0255複合体
は、ストレプトマイセス種で行う組換えDNA実験にお
いてチオストレプトン耐性マーカーを検出する抗生物質
チオストレプトンとの相互交換が可能である。 特ニエス・フラジエ(S、 gradiae ) 、ニ
ス・リビダンス(S、 l 1vidans )または
ニス・グリセオフスカス(S、griseofuscu
s)種のプロトプラストは、チオストレプトン耐性に関
与する遺伝子を含んでいるプラスミド(例えば、pIJ
702またはpHJ:L401)で形質転換されるCト
ンプソン(C,J 、ra′rpson)ら、ネーチャ
ー(Nature)、286巻、525〜527頁(1
980年)〕。細胞壁を再生するのに好適な固形培地に
このプロトプラストを接種し、29℃で一夜インキユベ
ートする(約16時間)。A10255を軟寒天オーバ
ーレイに添加し、ついで再生したプロトプラストを含有
しているプレート上にこれを圧加する。オーバーレイに
使用するA10255抗生物質の量は、再生培地に適用
後、約50μg/mlの濃度となるよう十分な量でなけ
ればならない。つし1でプレートを29℃で7〜14日
間インキュベートし、チオストレプトン耐性伝達遺伝子
を保有するプラスミドを含んだ特定生物型群を成長させ
る。これらの条件下では、該プラスミドを取り込まなか
った細胞は発育しない。ついでA10255を50μg
/ m 1含有している培地にこのA10255耐性形
質転換株を移し、チオストレプトン耐性伝達遺伝子を保
有しているプラスミドが維持されていることを確認する
。 本発明の抗微生物化合物(A10255複合体および独
立した因子)は、病原性細菌によって起こる己酉動物の
感染症の治療または予防処置に有用である。これらの抗
微生物化合物は、温血動物の細菌感染症の処置に経口的
または非経口的(例えば静脈内、筋肉内または皮下)に
、または局所用軟膏または液剤として投与することがで
きる。 また1本発明はA10255複合本または独立した因子
の医薬組成物を提供する。これらの組成物は、本発明の
抗生物質化合物(即ち、A10255複合体またはそれ
ぞれ別々のB因子、C因子、E因子、F因子、C因子ま
たはH因子)の治療的有効量と好適な担体から成る。経
口投与用組成物(例えば錠剤およびカプセル剤)の場合
、「好適な担体」の語は、例えばシロップ、アラビアゴ
ム、セラチン、ソルビット、トラガカントゴム、ポリビ
ニルピロリドン(ポビドン)、メチルセルロース、エチ
ルセルロース、カルボキシメチルセ/1z0−ス・ナト
リウム、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、シュク
ロース、でんぷん等の結合剤、例えばコーンスターチ、
ゼラチン、乳糖、シュクロース、微結晶セルロース、カ
オリン、マンニット、リン酸二カルシウム、塩化ナトリ
ウム、アルギン酸等の増量剤および基剤、クロスカーメ
ロース・ナトリウム、微結晶セルロース、コーンスター
チ、でんぷんグリコール酸ナトリウム、アルギン酸のよ
うな崩壊剤、およびラウリル硫酸ナトリウムのような可
変性湿潤剤、ステアリン酸マグネシウムおよびその他の
ス゛テアリン酸金属塩、ステアリン酸、液状シリコーン
、タルク、ワックス、油類、コロイド状シリカ等の滑剤
のような一般的な賦形薬を表す。またペパーミント、ウ
ィンターグリーン油、チェリーフレーバー等のような香
味剤も使用できる。投与剤形を視覚上一層美しく見せる
ため、あるいは製品の識別を助けるために着色剤を添加
することは望ましいことである。また錠剤は当業者周知
の方法によってコーティングすることができる。 また本発明の医薬組成物は、経口液体製形にすることが
でき、(a)水性または油性懸濁液、溶液、エマルジョ
ンまたはシロップとするか、あるいは(b)使用前、水
または好適な担体を加えて液剤とするドライパウダーの
形態にすることができる。そのような経口液体製剤に加
える場合、「好適な担体」の語は、例えばソルビット、
シロップ、メチルセルロース、グルコース/シよ糖シロ
ップ、ゼラチン、ヒドロキシエチルセルロース、カルボ
キシメチルセルロースまたはステアリン酸アルミニウム
・ゲルのような懸濁化剤、例えばアーモンド油、精製コ
コナツ油、油性エステル類、プロピレングリコール等の
水素化した食用油またはエチルアルコール、オキシ安息
香酸メチルまたはオキシ安息香酸プロピルまたはソルビ
ン酸等の防腐剤のような通常の添加物を表す。 また、該医薬組成物は静脈内(IV)に使用することが
できる。特に該抗生物質化合物の水溶性形態は、広く一
般に使用されている静圧用液体の一つに溶解して注射に
より投与することができる。 IV使用の場合、「好適な担体」の語は、生理食塩水、
リンガ−液または5%ブドウ糖液のような液体を表す。 筋肉内設与剤形は、「好適な担体」とともに該抗生物質
の好適な塩形態(例えば塩酸塩またはナトリウム塩)の
滅菌製剤として製剤化することができる。 そのような好適な滅菌製剤を例示すれば、好適な塩を医
薬用希釈剤(例えば、注射用精製水、生理食塩水、5%
ブドウ糖液)に溶解するか、あるいは水性基剤または薬
学的に許容し得る油性基剤(例えば、オレイン酸エチル
のような長鎖脂肪酸エステル)に懸濁した形態を挙げる
ことができる。 局所用組成物は、疎水性基剤または親水性基剤のような
「好適な担体」とともに製剤化することができる。その
ような基剤として、軟膏、クリームまたはローションが
ある。 これらの抗生物質化合物の獣医用医薬組成物は、家畜動
物の飼料または飲料水に加えて投与できる。 別法として、長時間放出性または短時間放出性の基剤の
ような「好適な担体」とともに乳房内投与製剤として製
剤化することができる。 また本発明の抗生物質化合物は、滅菌バイアル、仕切り
部分を有する滅菌プラスチック製ボーシュ(袋)剤また
は滅菌密封アンプル容器に収納した単位用量形態に製剤
化できる。これらの抗生物質化合物(または対応する薬
学的に許容し得る塩)は、乾燥粉末、精品または凍結乾
燥形態とすることができる。1単位用量当りの抗生物質
化合物の量は約25.Om g〜約10gへと変化し得
る。 本発明の抗生物質化合物の「治療的有効量」は体重1k
g当り化合物約3.5mg−約50mgである。この量
は、一般にヒト成人1人1日合計約1g〜約27gに相
当する。 本発明はさらに、グラム陽性微生物またはダラム陰性微
生物によって起こる温血動物の感染疾患を処置またはコ
ントロールする方法を提供する。 この方法は、本発明の抗生物質化合物の治療的有効量を
該動物に投与することから成る。この方法における代表
的な1日用量は、ヒト成人において約1g〜約12gで
ある。 この方法を実施するに当っては、1日用量を1日1回・
または数回に分割して投与することができる。治療計画
は、例えば数日間または2〜3週間の長期にわたって投
与を要する場合がある。1回当りの投与量または投与量
合計は、感染症の性質およびその重篤度、患者の年齢お
よび一般健康状態、および患者およびその感染に関与し
ている微生物(群)との双方の該抗生物質化合物に対す
る耐性によって異なる。 本発明のもう一つの態様は、活性成分としてA1025
5複合体またはB因子、C因子、E因子、1”因子、C
因子またはH因子の任意の組合わせを好適な基剤と一緒
に含有して成る動物用プレミックスを提供することであ
る。当業者であれば、基剤の選択は当然容易になし得る
であろう。 本発明はさらに (a)同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含有す
る培地中でストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
5537、ストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
g260、ストレプトマイセス・ガード不りNRRL1
5922またはAlO255を生産するその変異株を、
液中好気的発酵条件下にAl−0255複合体を生産す
るまで培養し、 (b)所望によりAI O255複合体を培地から分離
し、 (C)さらに所望により、分離したA10255複合体
から抗生物質A10255のB因子、C因子、E因子、
F因子、C因子またはH因子の1またはそれ以上を単離
する ことから成るA10255複合体の製造方法を提供する
。 以下に実施例をあげてこの発明をさらに詳細に説明する
。実施例は単に発明を説明するためのものであって、こ
れによって発明の範囲を限定するものではない。 実験の部 実施例l A10255を生産する微生物の寒天斜面培養に使用す
るため、下記の培地を調製した。 予じめ調理したオートミール 60.0酵母
2.5KHPO41・0 KCI O,5MgS
O4・7H200,5 FeSO4−7H200,1 脱イオン水 適量を加えて全量1リツトルとする。 得られた培地を水酸化すl−IJウムでpH7,3に調
節した。ついで培地をオートクレーブで加圧滅菌し、p
H6,7の滅菌培地を得た。 上記の滅菌培地から成る寒天斜面にニス・ガード不り・
NRRL15537の胞子を接種した。 接種した斜面培地を30℃の温度で7〜10日間インキ
ュベートした。ついで成熟した斜面培養を仔ウシ血清で
被覆し、滅菌した道具でこれを掻き取って胞子および菌
糸体をほぐした。得られた浮遊液を小試験管に移し、保
存のためこれを凍結乾燥した。凍結乾燥品ペレットの1
個を、下記の組成を有する滅菌増殖培地(50ml、2
50 m lの広ロエルレンマイアーフラスコ中)への
接種に使用した。 成分 量(g/L) グルコース 15.0デキストリ
ン 20,0犬豆粗粒
10.0コーン浸漬液 1
0.0酵母エキス 1.0Ca
C032,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 水酸化ナトリウム水溶液で培地のpHを6.7に調節し
た。培地をオートクレーブで加圧滅菌すると、培地のp
Hは6.8〜7.0に上昇した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く250R
PMの回転振とう機上で、30℃で48時間インキュベ
ートした。得られた増殖培地は。 小型発酵装置へ接種する(接種量は発酵培地1容量に対
し約1チ)のに使用するか、あるいはもつと大容量の接
種生産のための第2段階フラスコへ接種するのに使用し
た。 バムプ(Bump)培地 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容量)2個
に、下記の組成を有する培地(それぞれ400m1)を
調製した。 成分 量(g/L ) グルコース 15.0デキストリン
20.0大豆粗粒
15.00コーン浸漬液 10
.0酵母エキス 1.0Ca C
035,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 上記の増殖培sを各エルレンマイアーフラスコに接種し
た。接種量の合計は、エルレンツイア−フラスコ中の培
地容量の2.5%であった。接種した培地は、10″の
角度を有する回転振とぅ機の台上、25ORPMの回転
で、30℃で24時間インキユベートシ「バムプ」培養
を得た。 大規模発酵 上記の「バムプ」培養の1部(800ml )を下記の
培地(1001Jツトル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L ) 消泡剤*−0,200 プロピレングリコール(MW20QO)2.000m1 グルコース 10.000グリセリン
40.000バクトーペプトン(Bac
to−peptoH)※※1o、oo0 カゼイン 10.00ON a H
2P 04 ・H200,100ブラツクストラツプ糖
蜜(Blackstrap rrDlasses)40
.000 Ca CO32,500 水道水 適量を加えて全11001Jツトルとする
。 ※ダウ・コーニング・アンチフオウム (Dow−Corning Antifoam)産肉の
加水分解物〔ディフコ・ラボラトリ−ズブトロイト(D
ifco Laboratories 。 Detroit%M I ] 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。5N水酸化ナ
トIJウムで培地のpHを6.9に調節した。 17〜19ps i、121℃で混合物を45分間滅菌
した。滅菌処理後の培地pHは7.0であった。 滅菌した培地に0.125 v / v / mの速度
で滅菌空気を通気しながら、通常の撹拌機で200RP
Mで撹拌し、30℃の温度で約6日間発酵を行った。 実施例2 A10255抗生物質複合体の単離発酵ブ
ロス全体(3780リツトル)を濾過助剤〔ハイフロ・
スーパー・セル(Hyflo 5uper −Cell
)、ジョンズ・マンビル・プロダクツ・コーポレーショ
ン(Johns−Manville Carp、))を
使用して濾過した。菌糸体を含有している濾過プレスを
水300 IIで洗浄し、ついでこれをアセトン:水(
4:1)で2回抽出した。1回目の抽出液は9001.
2回目の抽出液は800 IIであった。 抽出液を合わせ、減圧下に濃縮して水溶液4501を得
た。溶液のpHを塩酸で3.0に調節し、ついで酢酸エ
チルで3回抽出した(抽出容量は、それぞれ16511
.2801および225″り。 抽出物および水層の生物学的活性を、ビー・サブチリス
ATCC6633を播種した寒天プレート上、ペー)j
−・ディスク法によって検定した。抽出物を合わせ、減
圧Fに容量231まで濃縮した。 濃縮中に沈殿した固体物質を濾過によって採取してこれ
を真空乾燥し、A10255抗生物質複合体216gを
得た(検定活性:90.7g)。炉液をさらに900m
1まで濃縮し、これを濾過した。 第2沈殿を減圧乾燥し、A10255抗生物質複合体1
6.2gを得た(検定活性:9,1g)。 実施例2 A10255抗生物質複合体から因子の分
離 A10255複合体(20g)をクロロホルム:メタノ
ール(9:1、合計400m1)に溶解し、濾過した。 P液をLPSシリカゲル(ワットマン・ケミカル・セパ
レーション・インコーボレーテイツドヘtrran C
hemical 5eparation Inc、)、
クリフトン(C1ifton) 、ニューシャーシー(
NewJersey)、13−24ミクロン] 4 ’
Iを充填したステンレス・スチール製カラム(8X10
0cm)に掛けた。カラムはクロマトスパック・プレブ
ー100−ユニット(Chramtospac Pre
p −100uni t)の一部である〔ジョビン・イ
ボン(Jobin Yvon)、16−18ル−エ・デ
ュ・カナル(16−18Rue duCanal )9
1160、ロングジュミュオ−(Longjuneau
)フランス〕。流速60m1/分で溶出し、240m1
づつフラクションをカラムから採取した。まずクロロホ
ルム:メタノール(9:1)の混液(71)、ついでク
ロロホルム:メタノール(3:1)の混液(1511)
で溶出した。クロマトグラフィー中、HPLC検出器は
280nmに設定した。すべてのフラクションは、ミク
ロコツカス・ルテウス(JIJicrococcus
1uteus) ATCC9341を播種した寒天プレ
ート上で生物学的活性を検定した。 F記のフラクションをプールした。 フラクション 因子 収量(gr 、 )11−2
3 C,F O,6830−638%E
6.50 プールしたBおよびE因子を含有しているフラクション
を400 m lに濃縮した。得られた沈殿を戸数し、
真空乾燥して、少量のE因子を一緒に含有し、主として
B因子から成る物質5.86gを得た(検定活性:3.
6g)。沈殿を得た上清を再び濃縮した。濃縮物をジエ
チルエーテルに加えることによって、B因子およびE因
子から成る前記と同様の混合物を含有している沈殿0.
64gを得た(検定活性:0.3g)。 実施例4 抗生物質因子A10255Bの単離前記実施
例3のフラクション30−63の物質1・5gをとり、
テトラヒドロ1ラン:水(35:65.150m1)の
混合液に溶解した。試料をLPI−C18逆層シリカゲ
ル(4]i)を充填したステンレススチール製カラム(
8X 100 c m )に掛けた。〔シリカゲルは実
施例6および7に記載のアボット(B、J、 Abbo
tt )らの方法によって調製(米国特許第42997
63号、1981年11月10日発行)〕。カラムをテ
トラヒドロフラン:水:りん酸水素二す) IJウム(
3ニア:0.05M、1211、pH7,8−(りん酸
)〕混合液で60″ml/分の流速で溶出し、240m
1づつフラクションを採取した。クロマトグラフィー中
、HPLC検出器は280nmに設定した。個々のフラ
クションは分析的HPLCで測定した。 〔分析的HPLCは、超球形ODS 5ミクロン逆層
物質(アルテックス・サイエンティフィック・インコー
ポレーテイツド(Altex 5cientificI
nc、)バークレイ、CA)を充填したステンレススチ
ール製カラム(4,6X250nm)で実施した。カラ
ムを、テトラヒドロフラン:水:りん酸水素ナトリウム
(に2二〇、(pH7,8)、りん酸添加)混合液で1
ml/分の流速で溶出した。クロマトグラフィー中、検
出器は254nmに設定した〕。 下記のフラクションをプールした。 フラクション 因子 収量(gr、)17−2
3 B(不純物) 150m124−35
B(純品) 200m138−45 E
100m1プールした24−35のフラクショ
ンを含有する濃縮物を脱イオン水300m1で希釈し、
得られた混合液のpHをりん酸でpH3,0に調節した
。 この溶液をクロロホルム:メタノール(7:3)の混合
液で抽出した。抽出液を濃縮乾固し、HPLCクロマト
グラフィーに掛けた。HPLCはマイケル・ミラー(M
ichel −Mi l 1 e r )高速低圧液体
クロマトグラフィー(rHPLPLCJ )ガラス・カ
ラム〔マイケル(K、 Miche 1 )ら、米国特
許第4131547号(1978年12月26日、発行
〕のシリカゲル保持体(100−200ミクロン、クエ
ルム・ファーマ(Thekn Panrn ) )
を含有するカラムで実施した。カラムをクロロホルム:
メタノール(7:3)混合液で溶出した。クロマトグラ
フィー中、検出器は254nmに設定した。主要なTJ
V発色団を含有しているフラクションを合わせて真空下
に濃縮し、凍結乾燥することによってB因子659mg
を得た。 実施例5 抗生物質A10255E因子の精製実施例4
でプールしたフラクション38−45に、さらに実施例
4に示したL P 1− C]8保持体で同様の方法に
よりクロマトグラフィーを実施した5つの類似組成物を
プールして加えた。プールした溶液(1,、g o o
m l )のpHをりん酸で3.0に調節した。この
溶液をクロロホルム:メタノール(7:3)混合液で抽
出しく2x、800m1 )、ついでさらに少量の溶媒
混合液(400ml )で抽出した。抽出液を合わせ、
これを濃縮乾固し、さらにCH3C13: M e O
H混合液(7:3、500m1 )50mlに溶解した
。この溶液を、シリカゲル保持体(500ml、100
−200ミクロン、ウエルム)を含有するマイケル・ミ
ラーHPLPLCガラス・カラム(5,I X 42c
m)に掛けた。。クロロホルム:メタノール7:3(v
:v)混合液でカラムを溶出し、主要なUV発色団(2
54nm)を採取して濃縮乾固することにより、純粋な
E因子349mgを得た。 実施例6 抗生物質CおよびF因子の精製実施例3でプ
ールしたフラクション11−23から得られた乾燥調製
品(0,68g)をこれと同様にして得られた調製品と
合わせ、合計3.03gの固体物質を得た。この物質を
テトラヒドロフラン:水(6:4)混合液に溶解し、こ
の溶液を、逆層シリカゲル(4!I)充填ステンレスス
チール製カラム(8x 100 c m )により、テ
トラヒドロフラン:水(3ニア、391)で溶出するク
ロマトグラフィーに掛けた(i速:60m1/分、Uv
検出:280nm)。採取したフラクション(480m
l)は、寒天プレートに播種したミククロコツカス・ル
テウスATCC9341で生物学的活性を検定した。生
物学的に活性なフラクションを、さらに実施例4に記載
した分析的規模のHPLCで分析した。フラクションを
下記のようにプールした。 フラクション 因子 収量(gr、)28−3
7 不明 18640−50 C(
不純物) 37351−55 C(純品)
30256−62 C(不純物) 7066
−75 F(純品)56 プールした各分画を濃縮し、得られた沈殿をフィルター
に戸数して真空下に乾燥した。 実施例7 実施例1で使用した寒天斜面をA10255を生産する
微生物NRRL18260の培養に使用した。 したがって前記の方法で凍結乾燥した1個のペレットを
、下記の組成の増殖培地(50m l )を広ロエルレ
ンマイアーフラスコ(250ml]c接mした。 成分 量(g/L) トリプチケース大豆プロス 30.0酵素氷解カゼ
イン 〔ユニバーサル・フッズ(Llniversal Fo
ods) 、シュノー(Juneau) 、W I
’J 5.0グルコース
5.0グリセリン 10.
0デキストリン 10.0Ca C
0310,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 オートクレーブで加圧滅菌する前に、水酸化ナトリウム
水溶液でpH7,0に調節した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く25OR
PM(7)回転振とう機上テ、30’C1?72時間イ
ンキュベートした。得られた増殖培地は、小型発酵装置
へ接種する(接種量は発酵培地1容量に対し約1%)の
に使用するか、あるいはもっと大容量の接種生産のため
の第2段階フラスコへ摂取するのに使用した。 バムプ培養 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容1k)2
個に、前記の増殖培地と同一の培地(それぞれ400m
1)を加えた。 上記の増殖培養を各エルレンマイアーフラスコに接種し
た。接種量の合計はエルレンツイア−フラスコ中の培地
容量の2.5%であった。接種した培地は、水平に対し
10° の角度を有する回転振とう機の台上、25OR
PMの回転で、30℃で48時間インキュベートし「バ
ムプ」培養を得た。 大規模発酵 上記の「バムプ」培養の1部(800ml )を下記の
培地(] OOUットル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L) Sag471 0.2P−2000
0,1ml グルコース 1.0NH4C1
1,0 Na2S04 2.0ZnCl2
0.019MgC12−6H2
00,304 FeC130,062 MnC12・4 H200,035 CaC120,06 CuC1・2H200,005 KH2PO4※ 0.67水道水
適量を加えて全量1101Jツトルとする。 ※脱イオン水中で別に調製し、KOHでp H6,0に
調節後、滅菌した。 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。混2合液に、
20F0加熱単位を適用して蒸気滅菌した(ここで、I
Foは正確に121℃、1分間に等しい)。滅菌処理後
、培地のpHは8.3であった。KH2PO4を添加後
、pH7,0であった。 滅菌した培地に滅菌空気を通気し、環境圧力よりも5p
si高い圧力で、溶解している空気濃度が空気飽和の4
5%を維持し得るように通常の撹拌装置で撹拌し、30
℃で約7日間発酵させた。 以上、概説した大規模発酵期間中、発酵混合物にグルコ
ースを5.7g/L/日の割合で追加することが有効で
あることが判明した。また17時間後に、カゼイン氷解
物を4.5g/L/日の割合で追加した。 実施例8 抗生物質A10255G因子の単離実施例2
で得られた抗生物質複合体の1.0gを取り、H20:
CH3CN (4: 1 )の2リツトルにpH6,0
で溶解した。この溶液をC18カートリッジ・カラムを
使用するウォーターズ・プレグ(Waters Pre
p) 500に掛けた。このカラムを、H20: C
H3CN : THF : HOAc (70:30
:5 :0.5)4!l (A) からH20:C
H3CN:THF:HOAc(65:35 :5 :0
.5)4i1(B)のゆるやかな直線濃度勾配を使用し
、250m1/分の流速で溶出し、1分間に1フラクシ
ヨンづつを採取した。その後、さらに(B)溶媒2 i
lで溶出した。カラム溶出液は280nmでモニターし
た。これと同一の条件を用いてさらに7回同様の処理を
行った。C因子およびC因子混合物を含有しているフラ
クションをプールし、5NNaOHを使用してpH6,
0に調節し、等量の水で希釈しく容量合計2611)、
その都度131を使用して2回クロマトグラフィー処理
を行った。これらの処理はいずれもクオーターズ・プレ
グ500でC18カートリッジ・カラムを使用して実施
した。(A)溶媒、0.05 N N H40A c
(pH5,5):CH3CN (75:25)41から
(B)溶媒4:J(60:40)の直線濃度勾配を使用
してクロマトグラフィーを行い、さらに(B)溶媒21
1で溶出した。使用した流速は毎分250m1で、1分
毎に1フラクシヨンを採取した。主としてC因子を含有
しているフラクションを合わせ、これを等量の水で希釈
し、プレグ500でC18カートリッジ・カラムを使用
して再度クロマトグラフィーを行った。(A)H2O:
CH3CN:THF :HOAc(70:30 :5
:0.5 )41から(B)H20” CH3CN :
THF : HOA c(65:35 :5 :0.
5 )41の直線濃度勾配を使用し、上記と同一の流速
を使用した。C因子だけを含有しているフラクションを
合わせ、これを真空濃縮して水溶液とした。ついで沈殿
したC因子を遠心分離し、水洗し、水に懸濁して凍結乾
燥し、C因子686mgを得た。 実施例9 抗生物質A10255H因子の単離実施例2
で得られた抗生物質複合体の1.0gを取り、これをH
20:CH3CN(4:1)21(pH5,0)に溶解
し、フィルターロート上でグラスウールを通して濾過し
た。この溶液を、ウォーター・プレグ500によりC1
8カートリッジカラムに適用した。このカラムを、(A
)H20:CH3CN :THF : HOAc (
70:30:5 :0.5)41から(B)65:35
:5:0.5 41の直線濃度勾配で、毎分250m1
の流速で溶出し、1分毎に1フラクシヨンを採取した。 さらに(B)溶媒21で溶出した。 カラム溶出液は280nmでモニターした。さらにこれ
と同一条件を使用し、同様の処理を13回行った。H因
子を含有しているすべてのフラクションを合わせ(17
11)、真空丁に濃縮乾固することによって粗製のH因
子690mgを得た。 同様の処理によって得られた調製品329mgをこの物
質と合わせて、H2O:CH3CN:THF(75:2
0 :5)31に溶解しくpH6,0)、前記と同様に
C18カートリッジ・カラムに適用シタ。(A)溶媒0
.05 M NH4OH:CH3CN(75: 25”
)41から(B)溶媒0.05M NH4OH:CH
3CN(6〇二40)までの直線濃度勾配を用いてり′
O−マドグラフィーに掛けた。ついで(B)溶媒2」で
溶出した。流速およびフラクション採取量は前記と同じ
である。H因子を含有しているフラクションを合わせ(
750ml)、これに等量の水を加え、前記と同様に再
度C18カートリッジ・カラムに適用した。このカラム
を(A)H2O: CH3CN : THF : HO
Ac(75:25:5:0.5)41から(B)H2O
: CH3CN : THF : HOAc(60:
40 : 5 : 0.5)41までの直線濃度勾配で
展開し、毎分250 m lづつ1フラクシヨンを採取
じた。H因子を含有しているフラクション23−29を
合わせ、これを450m1に真空濃縮した。沈殿したH
因子を濾過により回収し、水洗し、真空乾燥してH因子
285mgを辱た。 実施例10 ウシの発育促進用飼料組成物A10255
複合体またはその独立した因子は、該複合体または因子
の有効量を飼料と混合することによってウシに経口投与
することができる。例えば本発明の1態様として、下記
の組成から成る標準配合飼料を提供する。 成分 添加量 貯蔵トウモロコシ(全草、穂を含む) 50%高湿コ
ーン 44%添加物
(全量) 6%上記の添加物は、下
記の組成が含まれる。 成分 含有量 アルファルファ飼料(脱水物、17%)12.00% 大豆油飼料(溶媒抽出物) 45.40%尿
素(飼料級) 5.00%りん
酸二カルシウム 8.00%塩
10.00%炭
酸カルシウム 11.00%微量
ミネラル・プレミックス 0.80%ビタミン
A+D3プレミックス 1.40%ビタミンE
・プレミックス 1.40%塩化カリウム
5.00%投与する前に、
標準配合飼料をA10255含有プレミツクスと混合す
る。プレミックスは下記の成分からなる。 成分 含有量 黄色コーン 48.00%グ
リッド−O−コブス(Gr i t −0−Cobs
)20/40so、oo% 鉱質油 2.00%10
0.00% まずプレミックスをA10255複合体と、例えば1頭
当り275mg/日またはs 50 mg/日の適用割
合で混合した(この特殊実験の場合、それぞれ28.6
g/トンおよび61.7g/l−ンと言い換えることが
できる)。ついでA10255複合体含有プレミックス
を上記の標準配合飼料に1頭当り0.351bs/日の
適用割合で添加し、混合する。 実施例11 A10255.2を生産する微生物の寒天斜面培養に使
用するため、下記の培地を調製した。 予じめ調理したオートミール 60.0酵母
2.5に2HPO41,0 KCI 、0.5Mg5
o4・7H200,5 F esO4−7H200,i 脱イオン水 適量を加えて全量1リツトルとする。 得られた培地を水酸化ナトーリクムでpH7,3に調節
した。ついで培地をオートクレーブで加圧滅菌し、pH
6,7の滅菌培地を得た。 上記の滅菌培地から成る寒天斜面にニス・ガードネリ・
NRRL15922の胞子を接種した。 接種した斜面培地を30℃の温度で7−・10日間イン
キュベートした。ついで成熟した斜面培養を仔ウシ血清
で被覆し、滅菌した道具でこれを播き取って胞子および
菌糸体をほぐした。得られた浮遊液を小試験管に移し、
保存のためこれを凍結乾燥した。凍結乾燥品ペレットの
1個を、下記の組成を有する滅菌増殖培地(50ml、
250 m l)広ロエルレンマイアーフラスコ中)へ
(7)接ffHc使用した。 成分 量(g/L ) グルコース 15.0デキスト
リン 20.0大豆粗粒
10.0コーン浸漬液
10.0酵母エキス
1.0CaCO3、2,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 水酸化ナトリウ、ム水溶液で培地のpHを6.7に調節
した。培地をオートクレーブで加圧滅菌すると、培地の
pHは6.8〜7,0に上昇した。 接種した増殖培地を、直径2インチの弧を描く250R
PMの回転振とう機上で、30℃で48時間インキュベ
ートした。得られた増殖培地は、小型発酵装置へ接種す
る(接種量は発酵培地1容量に対し約1%)のに使用す
るか、あるいはもつと大容量の接種生産のための第2段
階フラスコへ接種するのに使用した。 バムプ培地 広ロエルレンマイアーフラスコ(2リツトル容量)2個
に、下記の組成を有する培地Cそれぞれ400m1)を
調製した。 成分 量(g/L) グルコース 15.0デキストリン
20.0大豆粗粒
15.00コーン浸漬液 10
,0酵母エキス 1.0Ca C
035,0 水道水 適量を加えて全量1リツトルとする。 上記の増殖培養を、各エルレンマイアーフラスコ培地容
量の2.5e接種した。接種した培地を250RPMの
回転振とう機上、30℃で23時間インキュベートし「
バムプ」培養を得た。 大規模発酵 上記の「バムブ」培養の1部(800ml)を下記の培
地(1151Jツトル)へ接種するのに使用した。 成分 量(g/L) 消泡剤’ 0.200プロピ
レングリコール(MW2000)2.000m1 グルコース 1・000カゼ
イン 16.00ON a H
2P 04 ・H200,100ブラツクストラツプ糖
蜜 40,000CaCO35,000 水道水 適量を加えて全量110リツトルとする。 ※Sag471、シリコーンf¥4泡剤[ダウ・コーニ
ング−カンパニー (Dow−Co rn ing C
o 、 ) 〕。 培地を165リツトルの発酵釜に加えた。5N水酸化ナ
トリウムで培地のpHを6.9 に調節した。17〜
19ps i、121℃で混合物を45分間滅菌した。 滅菌処理後の培地pHは6.8 であった。滅菌した
培地に0.5 v/v/mの速度で滅菌空気を通気し
ながら、通常の撹拌機で初速度300RPMで撹拌し、
ついで30℃の温度で約7日間発酵を行った。発酵期間
中、pHを7.0に維持し、溶解酸素濃度は空気飽和の
45%に保ち、グルコースを毎日3.5 〜4.0g/
lの一定割合で培地に添加した。また24時間後、ハイ
・ケース・アミノ(Hy Ca5e Am1no) r
カゼインのWI水水物物ハムコ・シェフイールド・ケミ
カル・カンパニー(Hurko 5heffield
Chanical Co、 )、 リントバースト(L
yndhurs t)、NJ]を毎日3 g/ Iの一
定割合で培地に添加した。 下記の実施例13と同様の方法により、粗製A1025
5複合体を単離した。 実施例12 A10255.2株の大量発酵増殖接種 A10255.2株の大量発酵の出発点として(即ち、
実施例1の場合よりも一層大量の場合)、増殖接種物は
2段階で調製する。両段階ともに下記の培地を使用する
。 成分 ノ( グルコース 1.5%大大豆
粒 1.5%馬鈴薯デキスト
リン 2.0%コーン浸漬液
i、o%%母エキス
0.1%炭酸カルシウム
0.2%水道水 適宜容量に応じて添加す
る。 インキュベニジョンの第1段階は滅菌した培地80 m
lを含有する2 50 m lフラスコで行った。A
10255.2培養の凍結ペレットをフラスコに接種し
た。培地を250RP¥の回転振とぅ機上、30℃で4
8時間インキュベートした。 第1段階の接種物の一部(10ml)を取り、これを、
2リツトルの広ロエルレンマイアーフラスコに加えた上
記培地400 m lから成る滅菌した第2段階のイン
キュベーション培地に接種した。 この第2段階培地を250RPMの回転振とう機上、3
0℃で24時間インキユベートーシた。 インキュベー
トした培地を下記のタンク発酵に使用した。 タンク発酵 上記の第2段階培地接種物を、1501Jツトルの発酵
釜に加えた下記のタンク培地への接種に使用した。 成分 量 セレロース(Cerelose) 1. s
%%鈴薯デキストリン 2.−0%コーン
浸漬液 i、o%%豆粗粒
1.5%炭酸カルシウム
0.5%5AG471ゞ
0.01%水道水 適量を加えて全量120リツ
トルとする。 ※シリコーン消泡剤(ダウ・コーニング・カンパニー)
。 この培地をまずオートクレーブで滅区した。滅菌後、5
N 水酸化ナトリウムを加えることによって培地のpH
を6.5に調節した。ついで培地に接種し、30℃で約
24時間発酵を行った。発酵中、培地に滅菌空気を初速
度1立方フィート/分(cfm)で通気し、また通常の
撹拌機で初速度350 RPMで撹拌した。 大規模発酵 上記のタンク培地の一部(40リツトル)を取り、下記
の大規模培地に接種した。 成分 量 消泡剤ゞ 0.02%プロピレ
ングリコール(MW2000)002% 糖蜜 4.00%炭酸カル
シウム 0.50%カゼイン酸氷解物
” 1.60%NaH2PO4’H200
,01% グルコース 0.10%水道水
適量を加えて全量1200ガロンとする。。 *Sag471、シリコーン消泡剤 ※※ハイ・ケイス(ハムコ伽シェフイールド・ケミカル
・カンパニー、リントバースト、NJ)培地を1600
ガロンの発酵釜に加えた。5N水酸化す) IJワム水
溶液を添加して培地のpHを7.0に調節した。17p
si、121℃で30分間培地を滅菌した。滅菌した培
地に滅菌空気を初速間20立方フィート/分で通気し、
通常の撹拌機で初速度1100RPで撹拌し、30℃で
約6日間発酵を行った。発酵期間中、培地のpHを約7
.0に維持し、培地の溶解酸素濃度を空気飽和の約45
%に保ち、グルコースを毎日4g/lの一定割合で培地
に添加した。また24時間後、ハイ・ケースを毎日3g
/lの一定割合で培地に添加した。 実施例13 A10255抗生物質複合体の単離 A10255.2微生物の全発酵プロス(50001)
を回収し、濾過助剤(ハイフロ・スーパー・セル、ジョ
ン・マンビル・プロダクツ・コ−ボレーション)を使用
してこれを濾過した。濾過液およびバイオマスの水洗液
(水12001)は棄てた。 ついでバイオマスを、水:アセトン(1:4)の混合液
(20001)でバッチ式に抽出した。 抽出を繰り返し、抽出液を合わせた(総量4000リツ
トル)。合わせた抽出液にはA10255複合体のバル
クが含まれていた。 合わせた抽出液を真空下に濃縮し、水性懸濁液とした。 放置していると、懸濁液からきれいな固体が沈殿した。 ついで濃縮した抽出物を遠心し、上清を棄てた。 遠心によって得た固体を真空乾燥し、A10255抗生
物質活性423μg/mgを含有している茶色の粉末1
.5kgを得た。 特許出願人 イーラネ・リリー・アンド・カンパニー代
理 人弁理士青 山 葆外1名 一一 4− ♂ 傾 q*5 叡 領 奢 ♂ @@@−巴 手続補正書動式) 21発明の名称 抗生物質A10255複合体および因子類、そのプロセ
ス、微生物類および製造 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住所 アメリカ合衆国46285インデイアナ州インデ
イアナポリス市、リリー・コーホレイト・センター (
番地の表示なし) 名称 イーライ・リリー・アンド・カンパニー4、代理
人 住所 〒540 大阪府大阪市東区域見2丁目1番6
1号6、補正の対象;「図面の簡単な説明」の欄7、補
正の内容 明細書第143頁第15行「・・・を得た。」と第16
行「特許出願人・・・」の間に下記の文章を挿入する。
第1図はA10255のB因子の赤外線吸収スペクトル
、第2図はA10255のC因子の赤外線吸収スペクト
ル、第3図はA10255のE因子の赤外線吸収スペク
トル、第4図はA10255のF因子の赤外線吸収スペ
クトル、第5図はA10255のC因子の赤外線吸収ス
ペクトル、第6図はA10255の■1因子の赤外線吸
収スペクトルである。J 以上
、第2図はA10255のC因子の赤外線吸収スペクト
ル、第3図はA10255のE因子の赤外線吸収スペク
トル、第4図はA10255のF因子の赤外線吸収スペ
クトル、第5図はA10255のC因子の赤外線吸収ス
ペクトル、第6図はA10255の■1因子の赤外線吸
収スペクトルである。J 以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、同化し得る炭水化物源、窒素源および無機塩を含有
する培地中で、ストレプトマイセス・ガードネリ(St
reotomyces gardneri)・NRRL
15537、ストレプトマイセス・ガードネリ・NRR
L18260およびストレプトマイセス・ガードネリ・
NRRL15922を好気的液中培養発酵条件下に培養
することによつて生産できる抗生物質。 2、抗生物質A10255のB因子〔ここで、A102
55のB因子は白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり
、 (a)近似平均元素分析値:炭素49.25%;水素3
.94%;窒素15.65%;酸素21.63%:硫黄
6.73%、 (b)臭化カリウムペレツト法による赤外吸収スペクト
ルによつて認められる吸収最大値の波数(Cm^−^1
):3373、2969、2932、2875、166
1、1598、1520、1494、1395、125
0、1114、1084、996、932および900
、 (c)66%ジメチルホルムアミド水溶液中で測定した
滴定可能な基のpKa値:約4.9、11.2および1
2.8、 (d)高速原子衝撃質量分析によつて測定した分子量:
約1244ダルトン、 (e)ジメチルスルホキシド、ジメチルホルムアミド、
ピリジン、クロロホルム/メタノール混合液およびテト
ラヒドロフラン:水(約4:1(v:v))の混合液に
可溶性、 (f)6N塩酸で加水分解する測定により、スレオニン
約629ミリモル/mgおよびアンモニア当量約526
8ミリモル/mgを含有、 (g)酸性、塩基性および中性メタノール中における紫
外部吸収スペクトルの吸収量大:245nm(ε=66
,000)、 (h)過重水素化ジメチルスルホキシド中、500MH
zにおけるプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル: 共鳴No. 化学シフト 多重度 1 10.53 S 2 9.95 S 3 9.86 S 4 9.79 S 5 9.61 S 6 9.58 S 7 9.09 S 8 8.90 T 9 8.84 D 10 8.67 S 11 8.60 S 12 8.51 S 13 8.48 D 14 8.39 S 15 8.25 D 16 8.24 S 17 8.04 D 18 6.53^* S 19 6.39 T 20 6.11 S 21 5.95 S 22 5.84 S 23 5.82 S 24 5.79 S 25 5.76^+ S (つづき) 26 5.68 S 27 5.64 S 28 5.44 DQ 29 5.16 D 30 4.80 DD 31 4.67 DD 32 4.63 DD 33 4.24 BS 34 2.21 DQ 35 1.62 D 36 1.11 D 37 1.01 T *二重増強 +三重増強 (i)過重水素化ジメチルホルムアミド中、125MH
zにおける^1^3C−核磁気共鳴スペクトルのシグナ
ル: 共鳴No. 化学シフト 多重度 1 172.88 S 2 169.17 S 3 168.87 S 4 164.90 S 5 163.67 S (つづき) 6 163.07 S 7 162.84 S 8 162.68 S 9 162.61 S 10 161.57 S 11 160.32 S 12 160.17 S 13 160.01 S 14 159.46 S 15 158.96 S 16 158.10 S 17 149.39 S 18 149.37 S 19 148.79 S 20 142.05 S 21 146.88 S 22 142.05 D 23 141.32 D 24 140.68 D 25 139.23 S 26 136.33 S 27 136.29 S 28 136.14 S 29 135.26 D 30 134.23 S 31 133.82 S 32 133.28 S (つづき) 33 130.21 S 34 129.07 S 35 127.22 D 36 125.94 D 37 124.98 D 38 122.36 S 39 121.47 D 40 110.92 T 41 110.49 T 42 109.98 T 43 109.46 T 44 106.23 T 45 104.73 T 46 67.37 D 47 57.94 D 48 46.33 D 49 40.24 T 50 20.74 T 51 20.67 Q 52 12.93 Q 53 12.93 Q S=一重線、D=二重線、T=三重線、 Q=四重線、 で示される特徴を有する] または薬学的に許容し得るその塩。 3、抗生物質A10255のC因子〔ここで、C因子は
白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり、(a)近似平
均元素分析値:炭素49.18%;水素3.86%;窒
素17.89%;酸素18.28%;硫黄6.46%、 (b)過重水素化ジメチルスルホキシド中、360MH
zにおけるプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル(
δ値):10.51、10.08、9.84、9.57
、9.10、8.88、8.03、7.94、7.53
、5.15(可変値)8.67、8.59、8.51、
8.49、8.38、8.25、8.24、6.57、
6.52、6.38、6.11、5.91、5.78、
5.74、5.70、5.65、5.63、5.44、
5.15、4.79、4.67、4.63、4.23、
2.21、1.62、1.11、1.01、 (c)臭化カリウム法による赤外吸収スペクトルにおけ
る吸収最大値:3375、2973、2932、287
6、1661、1597、1494、1427、134
5、1305、1249、1111、1083、981
、933および894cm^−^1、 (d)中性、酸性および塩基性メタノール中における紫
外部吸収スペクトルの吸収最大:245nm(ε=63
,000)、 (e)高速原子衝撃質量分析によつて測定した分子量:
約1174ダルトン、 (f)66%ジメチルホルムアミド水溶液中で測定した
滴定可能な基のpKa値:約2.9および12、 (g)6N塩酸で行つた標準加水分解法による測定によ
り、スレオニン約758ミリモル/mgおよびアンモニ
ア当量的7429ミリモル/mgを含有、(h)ジメチ
ルスルホキシド、ジメチルホルムアミド、ピリジン、ク
ロロホルム:メタノール(1:1(v:v))およびテ
トラヒドロフラン:水(4:1(v:v))に可溶性 で示される理学的特徴を有する〕 または薬学的に許容し得るその塩。 4、抗生物質A10255のE因子〔ここで、E因子は
白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり、(a)近似平
均元素分析値:炭素48.03%;水素3.91%;窒
素15.76%;酸素17.09%;硫黄5.63%、 (b)臭化カリウムペレツト法による赤外吸収スペクト
ルによつて認められる吸収最大値の周波数(cm^−^
1):3367、3361、2966、1664、15
01、1389、1254、1102および889、(
c)66%ジメチルホルムアミド水溶液中で測定した滴
定可能な基のpKa値:約4.85、11.1および1
3.2、 (d)高速原子衝撃質量分析によつて測定した分子量:
約1258ダルトン、 (e)ジメチルスルホキシド、ジメチルホルムアミド、
ピリジンおよびテトラヒドロフラン:水(約4:1(v
:v))混合液に可溶性、 (f)6N塩酸で加水分解する測定により、スレオニン
約716ミリモル/mgおよびアンモニア当量的858
0ミリモル/mgを含有、 (g)酸性、塩基性および中性メタノール中における紫
外部吸収スペクトルの吸収最大:245nm(ε=77
,000)、 (h)過重水素化ジメチルスルホキシド中、270MH
zにおけるプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル(
δ値):10.54、10.00、9.94、9.81
、9.60、9.56、9.45、8.89、8.84
、8.66、8.59、8.50、8.47、8.39
、8.25、8.22、8.10、6.53、6.50
、6.24、5.95、5.86、5.84、5.77
、5.64、5.55、5.52、5.44、5.10
、4.80、4.66、4.64、4.22、2.87
、1.60、1.11、および1.00、で示される特
徴を有する〕 または薬学的に許容し得るその塩。 5、抗生物質A10255のF因子〔ここで、F因子は
白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり、(a)近似平
均元素分析値:炭素49.65%;水素4.23%;窒
素17.11%;酸素22.08%;硫黄7.78%、 (b)過重水素化ジメチルスルホキシド中、360MH
zにおけるプロトン核磁気共鳴スペクトルのシグナル(
δ値):10.51、10.17、9.88、9.77
、9.54、9.10、8.90、8.88、8.66
、8.59、8.51、8.49、8.38、8.25
、8.24、8.06、7.94、7.53、6.56
、6.51、6.27、6.23、6.12、6.12
、5.96、5.77、5.76、5.71、5.71
、5.64、5.62、5.47、5.14、4.77
、4.65、4.62、4.20、2.77、2.48
、2.48、1.58、1.08、0.98および 0
.98、(c)臭化カリウム法による赤外吸収スペクト
ルにおける吸収最大値:3369、2943、2907
、2846、1663、1588、1519、1493
、1425、1337、1288、1251、1151
、1110、1083、995、927、890、80
7、776および751cm^−^1、(d)中性、酸
性および塩基性メタノール中における紫外部吸収スペク
トルの吸収最大:245nm(ε=71,500)、 (e)高速原子衝撃質量分析によつて測定した分子量:
約1188ダルトン、 (f)66%ジメチルホルムアミド水溶液中で測定した
滴定可能な基のpKa値:約12.5、(g)6N塩酸
で行つた標準加水分解法による測定により、スレオニン
約735ミリモル/mgおよびアンモニア当量的722
6ミリモル/mgを含有、(h)ジメチルスルホキシド
、ジメチルホルムアミド、ピリジン、クロロホルム:メ
タノール(1:1(v:v))およびテトラヒドロフラ
ン:水(4:1(v:v))に可溶性 で示される理学的特徴を有する] または薬学的に許容し得るその塩。 6、抗生物質A10255のG因子〔ここで、G因子は
白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり、ジメチルスル
ホキシド、ジメチルホルムアミド、ピリジン、クロロホ
ルム/メタノール混合液、およびテトラヒドロフラン:
水(4:1(v:v))に可溶性であつて、 (a)紫外部吸収スペクトル:中性エタノール中でのλ
_m_a_x(ε=72,200)、酸性エタノール中
でのλ_m_a_x:247nm(ε=73,400)
、塩基性エタノール中でのλ_m_a_x:211nm
(ε=27,200)、 (b)過重水素化ジメチルスルホキシド中、500MH
zにおける^1H−核磁気共鳴スペクトルのシグナル: 共鳴No. 化学シフト(δ) 多重度 1 10.53 S 2 9.95 S (つづき) 3 9.83 S 4 9.79 S 5 9.59^* BS 6 9.09 S 7 8.89 T 8 8.84 D 9 8.68 S 1 8.60 S 1 8.51 S 1 8.48 D 1 8.39 S 14 8.24 S 15 8.24 D 16 8.04 D 17 6.53^* S 18 6.47 Q 19 6.10 S 20 5.95 S 21 5.84 S 22 5.81 S 23 5.80 S 24 5.78 S 25 5.76^* S 26 5.68 S 27 5.64 S 28 5.44 DQ 29 5.16 D 30 4.75 DD (つづき) 31 4.67 DD 32 4.63 DD 33 4.24 BS 34 1.77 Q 35 1.62 Q 36 1.11 Q ^*二重増強 BS:幅広い一重線 DD:二重項の二重線 DQ:四重項の二重線 (c)過重水素化ジメチルスルホキシド中、500MH
zにおける^1^3C−核磁気共鳴スペクトルの吸収最
大: 共鳴No. 化学シフト 多重度 1 172.80 S 2 168.89 S 3 168.71 S 4 164.80 S 5 163.59 S 6 163.00 S 7 162.79 S 8 162.61 S 9 162.53 S 10 161.52 S (つづき) 11 160.24 S 12 160.12 S 13 159.94 S 14 159.42 S 15 158.91 S 16 158.01 S 17 149.41 S 18 148.73 S 19 148.04 S 20 146.83 S 21 141.94 D 22 141.26 D 23 140.62 D 24 139.20 S 25 136.25 S 26 136.20 S 27 136.04 S 28 134.20 S 29 133.81 S 30 133.22 S 31 130.14 S 32 128.99 D 33 128.70 S 34 127.08 D 35 125.83 D 36 124.92 D 37 123.66 S 38 121.40 D (つづき) 39 110.77 T 40 110.22 T 41 109.85 T 42 109.35 T 43 106.12 T 44 104.65 T 45 67.26 D 46 57.94 D 47 46.49 D 48 40.12 Q 49 20.60 Q 51 20.22 Q 52 13.41 Q (d)元素分析値: 実測値(%) C 51.46 H 3.82 N 17.62 O 19.38 S 7.03 99.31% (e)第5図に示した赤外吸収スペクトル で示される理学的特徴を有する〕。 7、抗生物質A10255のH因子〔ここで、H因子は
白色ないし微黄色の非結晶性粉末であり、ジメチルスル
ホキシド、ジメチルホルムアミド、ピリジン、塩化メチ
レン/メタノール(1:1(v:v))およびテトラヒ
ドロフラン:水(4:1(v:v))に可溶性であつて
、 (a)紫外部吸収スペクトル:中性エタノール中でのλ
_m_a_x:244nm(ε=74,000)、酸性
エタノール中でのλ_m_a_x:245nm(ε=7
4,500)、塩基性エタノール中でのλ_m_a_x
:211nm(ε=23,800)、 (b)分子量:1162.32ダルトン、 (c)過重水素化ジメチルスルホキシド中、125MH
zにおける^1^3C−核磁気共鳴スペクトルのシグナ
ル: 共鳴No. 化学シフト(δ) 多重度 1 172.92 S 2 168.92 S 3 168.86 S 4 165.14 S 5 163.63 S (つづき) 6 163.03 S 7 162.65 S 8 162.33 S 9 161.52 S 10 160.30 S 11 160.14 S 12 159.99 S 13 159.45 S 14 158.94 S 15 158.09 S 16 149.43^* S 17 148.78 S 18 148.03 S 19 146.90 S 20 142.07 D 21 141.30 D 22 140.68 D 23 139.21 S 24 136.96 S 25 136.10 S 26 134.67 S 27 134.07 S 28 133.80 S 29 130.27 S 30 129.03 S 31 128.78 D 32 127.24 D 33 125.94 D (つづき) 34 124.99 D 35 123.71 S 36 121.50 D 37 111.76 T 38 110.45 T 39 106.11 T 40 104.67 T 41 104.44 T 42 67.39 D 43 57.95 D 44 46.54 D 45 40.22 T 46 20.66 Q 47 20.34 Q 48 13.52 Q ^*重複強度 (d)過重水素化ジメチルスルホキシド中、500MH
zにおける^1H−核磁気共鳴スペクトルのシグナル: 共鳴No. 化学シフト 多重度 1 10.51 S 2 10.08 S 3 9.81 S 4 9.79 S (つづき) 5 9.57 S 6 9.10 S 7 8.86 T 8 8.83 D 9 8.68 S 10 8.60 D 11 8.51 S 12 8.50 D 13 8.39 S 14 8.25 D 15 8.24 S 16 8.03 D 17 7.94 S 18 7.53 S 19 6.56 S 20 6.53 S 21 6.48 Q 22 6.12 S 23 5.96 S 24 5.80 S 25 5.78 S 26 5.74 S 27 5.72 S 28 5.65 S 29 5.64 S 30 5.44 DQ 31 5.15 D 32 4.80 DD (つづき) 33 4.68 DD 34 4.63 DD 35 4.24 BS 36 1.78 D 37 1.62 D 38 1.10 D (e)第6図に示した赤外吸収スペクトル で示される特徴を有する〕。 8、(a)同化し得る炭素源、窒素源および無機塩を含
有する培地中で、ストレプトマイセス・ガードネリ・N
RRL15537、ストレプトマイセス・ガードネリ・
NRRL18260およびストレプトマイセス・ガード
ネリ・NRRL15922、またはA10255を生産
するそれらの変異株を、好気的液中培養条件下に抗生物
質A10255の複合体を生産するまで培養し、 (b)所望によりA10255複合体を培地から分離し
、 (c)さらに所望により、分離したA10255複合体
からA10255のB、C、E、F、GおよびH因子の
1またはそれ以上を単離する ことから成るA10255複合体、またはB、C、E、
F、GまたはH因子、またはその任意の組合わせの製造
方法。 9、ストレプトマイセス・ガードネリ・NRRL155
37またはA10255を生産するその変異株の培養を
利用する第8項記載の方法。 10、ストレプトマイセス・ガードネリ・NRRL15
922またはA10255を生産するその変異株の培養
を利用する第8項記載の方法。 11、ストレプトマイセス・ガードネリ・NRRL18
260またはA10255を生産するその変異株の培養
を利用する第8項記載の方法。 12、動物飼料とA10255複合体、A10255の
B、C、E、F、GおよびH因子の中から選ばれたA1
0255因子、またはそれらの因子の1またはそれ以上
を組合わせて含有する飼料利用効率を増大させる飼料組
成物。 13、好適な不活性担体とともにA10255複合体、
またはB、C、E、F、GまたはH因子の任意の組合わ
せ、または生理学的に許容し得るそれらの塩を活性成分
として含有して成る動物用プレミツクス。 14、微生物ストレプトマイセス・ガードネリ・NRR
L15537、NRRL15922またはNRRL18
260、または抗生物質A10255複合体を生産する
その変異株の生物学的純培養。 15、1またはそれ以上の薬学的に許容し得る担体また
は賦形薬とともにA10255複合体、A10255の
B因子、A10255のC因子、A10255のE因子
、A10255のF因子、A10255のG因子および
A10255のH因子から成る群から選ばれたA102
55因子、または1またはそれ以上のそれらの因子の混
合物、または薬学的に許容し得るその塩を活性成分とし
て含有して成る医薬組成物。 16、A10255複合体、A10255のB因子、A
10255のC因子、A10255のE因子、A102
55のF因子、A10255のG因子およびA1025
5のH因子から成る群から選ばれたA10255因子ま
たは1またはそれ以上のそれらの因子の組合わせを家畜
動物に投与することから成る、家畜動物の飼料利用効率
を増大させる方法。 17、ストレプトマイセス種の培地にA10255複合
体、A10255のB因子、A10255のC因子、A
10255のE因子、A10255のF因子、A102
55のG因子またはA10255のH因子を適用するこ
とから成る、ストレプトマイセス種におけるチオストレ
プトン耐性の判定方法。 18、A10255複合体の薬学的に許容し得る塩。
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