JPS63192396A - L−イソロイシンの製造法 - Google Patents
L−イソロイシンの製造法Info
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- JPS63192396A JPS63192396A JP2181187A JP2181187A JPS63192396A JP S63192396 A JPS63192396 A JP S63192396A JP 2181187 A JP2181187 A JP 2181187A JP 2181187 A JP2181187 A JP 2181187A JP S63192396 A JPS63192396 A JP S63192396A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、醗酵法によるL−イソロイシンの製造法に関
する。更に詳しくは、ブレビバクテリウふ(Brevi
bacterium) Tmに属し、エタノール資化性
部を有する微生物を、α−ケト酪酸又はその塩を含有す
る培地に好気的に培養するに際し、α−ケト酪酸又はそ
の塩を逐次添加することを逐次添加するL−イソロイシ
ンの製造法に関する。
する。更に詳しくは、ブレビバクテリウふ(Brevi
bacterium) Tmに属し、エタノール資化性
部を有する微生物を、α−ケト酪酸又はその塩を含有す
る培地に好気的に培養するに際し、α−ケト酪酸又はそ
の塩を逐次添加することを逐次添加するL−イソロイシ
ンの製造法に関する。
(発明の背景)
L−イソロイシンは必須アミノ酸として、人間及び動物
の栄養上重要な役割をするアミノ酸であり、医療、食品
、飼料強化剤としてその需要が近年急激に増加しつつあ
る。L−イソロイシンの工業的製造法としては、他のア
ミノ酸の場合と同様に立体異性体が存在する為、化学合
成法ではL体、)8.)製造、よ困N7あり、主に醗酵
法により生産が行われている。醗酵法としてはDL−α
−アミノ酪酸、スレオニン等のL−イソロイシンの前駆
物質を使用する方法(特公昭43−8709゜特公昭4
0−2880等)、前駆物質を特に加えない所謂直接醗
酵法(特公昭38−7091.特開昭49−93586
等)がある。
の栄養上重要な役割をするアミノ酸であり、医療、食品
、飼料強化剤としてその需要が近年急激に増加しつつあ
る。L−イソロイシンの工業的製造法としては、他のア
ミノ酸の場合と同様に立体異性体が存在する為、化学合
成法ではL体、)8.)製造、よ困N7あり、主に醗酵
法により生産が行われている。醗酵法としてはDL−α
−アミノ酪酸、スレオニン等のL−イソロイシンの前駆
物質を使用する方法(特公昭43−8709゜特公昭4
0−2880等)、前駆物質を特に加えない所謂直接醗
酵法(特公昭38−7091.特開昭49−93586
等)がある。
(従来の技術と課題)
前駆体醗酵法の中で、比較的効率良くL−イソロイシン
を製造する為の原料としては、α−ケト酪酸が知られて
いるが、α−ケト酪酸は微生物菌体への生育阻害が著し
くこれまで実用的な使用についての報告は全く無い。
を製造する為の原料としては、α−ケト酪酸が知られて
いるが、α−ケト酪酸は微生物菌体への生育阻害が著し
くこれまで実用的な使用についての報告は全く無い。
本発明者らは、α−ケト酪酸又はその塩からのL−イソ
ロイシン製造に関し、最適醗酵方法について鋭意検討し
本発明を完成した。
ロイシン製造に関し、最適醗酵方法について鋭意検討し
本発明を完成した。
(発明の構成及び効果)
本発明者らは−、ブレビバクテリウム(Breviba
cterius)属に属し、エタノール資化性を存する
微生物をα−ケト酪酸又はその塩を含有する培地に好気
的に培養して、培地中にL−イソロイシンを製造するに
際し、α−ケト酪酸又はその塩を培養中の培地に逐次添
加することにより、菌体への生育阻害を回避し、L−イ
ソロイシンが、培地中に高収量で蓄、積することを見出
し本発明に到達した、従来、α−ケト酪酸又はその塩を
前駆物質として使用した場合、微生物菌体への生育阻害
が著しい為にL−イソロイシン製造に関するプロセスの
確立はなされていない、従って、本発明は新規な方法で
ある。
cterius)属に属し、エタノール資化性を存する
微生物をα−ケト酪酸又はその塩を含有する培地に好気
的に培養して、培地中にL−イソロイシンを製造するに
際し、α−ケト酪酸又はその塩を培養中の培地に逐次添
加することにより、菌体への生育阻害を回避し、L−イ
ソロイシンが、培地中に高収量で蓄、積することを見出
し本発明に到達した、従来、α−ケト酪酸又はその塩を
前駆物質として使用した場合、微生物菌体への生育阻害
が著しい為にL−イソロイシン製造に関するプロセスの
確立はなされていない、従って、本発明は新規な方法で
ある。
(発明の具体的方法)
本発明に使用される微生物はブレビバクテリウム(Br
evibacterjum)属に属しエタノール資化性
のものであれば好い、このなかにはL−イソロイシン生
産菌が含まれる。該生産菌は例えば、ブレビバクテリウ
ム・フラバム(Brevibacterium fl
avum) MJ−233(微工研菌寄 第3068号
)、ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibac
terius flavum) MJ−233−AB
41 (微工研菌寄 第3812号)、ブレビバ
クテリウム・フラバム(Brevibacterium
flavus) M J −233−ABT−11
(機工VrWI寄 第8423号)及びプレビバクテリ
ウふ・フラバム(Brevibacterium f
lavum) MJ−233−ABD−21(微工研菌
寄 第8055号)等であり、本発明に好適に用いられ
る。
evibacterjum)属に属しエタノール資化性
のものであれば好い、このなかにはL−イソロイシン生
産菌が含まれる。該生産菌は例えば、ブレビバクテリウ
ム・フラバム(Brevibacterium fl
avum) MJ−233(微工研菌寄 第3068号
)、ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibac
terius flavum) MJ−233−AB
41 (微工研菌寄 第3812号)、ブレビバ
クテリウム・フラバム(Brevibacterium
flavus) M J −233−ABT−11
(機工VrWI寄 第8423号)及びプレビバクテリ
ウふ・フラバム(Brevibacterium f
lavum) MJ−233−ABD−21(微工研菌
寄 第8055号)等であり、本発明に好適に用いられ
る。
なお、上記の(微工研菌寄 第3812号)は(微工研
菌寄 第3068号)を親株としてDL−α−アミノ酪
酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物で
ある(特公昭59−28398号公報3〜4欄参照)、
(微工研菌寄 第8423号)は、(微工研菌寄 第3
068号)を親株としたし一α−アミノ酪酸トランスア
ミナーゼ高活性変異株である(特願昭60−19060
9号明細書3〜5頁参照)、また、(m1研菌寄第80
55号)は(微工研菌寄 第3068号)を親株とした
D−α−アミノ酪酸デアミナーゼ高活性変異株である(
特願昭60−017501号明細書5〜7頁参照)。
菌寄 第3068号)を親株としてDL−α−アミノ酪
酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物で
ある(特公昭59−28398号公報3〜4欄参照)、
(微工研菌寄 第8423号)は、(微工研菌寄 第3
068号)を親株としたし一α−アミノ酪酸トランスア
ミナーゼ高活性変異株である(特願昭60−19060
9号明細書3〜5頁参照)、また、(m1研菌寄第80
55号)は(微工研菌寄 第3068号)を親株とした
D−α−アミノ酪酸デアミナーゼ高活性変異株である(
特願昭60−017501号明細書5〜7頁参照)。
以下、更に本発明のL−イソロイシンの製造法を具体的
に説明する。
に説明する。
本発明の菌体m製に使用する培地組成は、好ましくはエ
タノールを主炭素源とするが、特に主炭素源の限定は無
く、一般の微生物に使用されるもので良い、窒素源とし
てはアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム
、硝酸アンモニウム、尿素等を単独若しくは混合して用
いることが出来る。
タノールを主炭素源とするが、特に主炭素源の限定は無
く、一般の微生物に使用されるもので良い、窒素源とし
てはアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム
、硝酸アンモニウム、尿素等を単独若しくは混合して用
いることが出来る。
無機塩としては、リン酸−水素カリウム、リン酸二水素
カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他に
菌の生育及びL−イソロイシン生成に必要であれば、ペ
プトン、肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリカ
ー、カザミノ酸、各種ビタミン等の栄養素を培地に添加
し用いる。
カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他に
菌の生育及びL−イソロイシン生成に必要であれば、ペ
プトン、肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリカ
ー、カザミノ酸、各種ビタミン等の栄養素を培地に添加
し用いる。
L−イソロイシンの前駆体となるα−ケト醋酸は又はそ
の塩の初発濃度は、0.5mM〜30mM1好ましくは
、1mM〜20mMである。培養ト 中の培地のα−ケト酪酸の濃度は、液体クロマ壷グラフ
ィーにより経時的に測定し、30mMを越えないように
α−ケト酪酸又はその塩を逐次添加して培養する。
の塩の初発濃度は、0.5mM〜30mM1好ましくは
、1mM〜20mMである。培養ト 中の培地のα−ケト酪酸の濃度は、液体クロマ壷グラフ
ィーにより経時的に測定し、30mMを越えないように
α−ケト酪酸又はその塩を逐次添加して培養する。
培養は通気攪拌、振盪等の好気的条件下で行い、培養温
度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う、培
養途中のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行
い、培養中のpHの調整には酸、アルカリを添加して行
う。
度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う、培
養途中のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行
い、培養中のpHの調整には酸、アルカリを添加して行
う。
培養開始時のエタノール濃度は好ましくは1〜5容量%
、更に好ましくは2〜3容量%が適する。培養期間は1
〜9日間、最適期間は4〜7日間である。
、更に好ましくは2〜3容量%が適する。培養期間は1
〜9日間、最適期間は4〜7日間である。
上記のような培養方法によって得られる培養液中に生成
したL−イソロイシンの分離・精製は、イオン交換樹脂
処理法あるいは、沈澱法等により行うことが出来る。
したL−イソロイシンの分離・精製は、イオン交換樹脂
処理法あるいは、沈澱法等により行うことが出来る。
(実施例)
以下に実施例を示す、なお、L−イソロイシンの定性は
、ペーパークロマトグラフのRf値、電気泳動法の易動
度及び微生物定量法による生物活性値により確認した。
、ペーパークロマトグラフのRf値、電気泳動法の易動
度及び微生物定量法による生物活性値により確認した。
定量はロイコノストック・メセンテロイデス(Leuc
onostoc s+esenLeroides)AT
CC8042を用いるマイクロバイオアッセイ法と高速
液体クロマトグラフィー(島津LC−5A)とを併用し
て行った。また、下記の実施例において%と表したのは
重量%を意味する。
onostoc s+esenLeroides)AT
CC8042を用いるマイクロバイオアッセイ法と高速
液体クロマトグラフィー(島津LC−5A)とを併用し
て行った。また、下記の実施例において%と表したのは
重量%を意味する。
実施例−1
培地(尿素0.4%、硫酸アンモニウム1.4%、KH
,PO40,05%、K、HPO40゜05%、Mg5
O,・7H,OO,05%、CaCl、 ・2H20
2ppm%Fe5Oa ・7H,02ppm、Mn5
O,・4〜6H302ppm、Zn5O,・7H202
ppm。
,PO40,05%、K、HPO40゜05%、Mg5
O,・7H,OO,05%、CaCl、 ・2H20
2ppm%Fe5Oa ・7H,02ppm、Mn5
O,・4〜6H302ppm、Zn5O,・7H202
ppm。
NaC12pIl)m−ビオチン 200#g/l、チ
アミン・HCI! 100μg/l、カザミノ酸 0.
1%、酵母エキス 0.1% >100m1を500m
l容三角フラスコに分注、滅菌(滅菌後pH7,0)し
た後ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibac
teriu+s 目avum)MJ−233(微工研
菌寄 第3068号)を植菌し、無菌的にエタノールを
’l m l加え、30℃にて2日間振盪培養を行った
(前培養)。
アミン・HCI! 100μg/l、カザミノ酸 0.
1%、酵母エキス 0.1% >100m1を500m
l容三角フラスコに分注、滅菌(滅菌後pH7,0)し
た後ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibac
teriu+s 目avum)MJ−233(微工研
菌寄 第3068号)を植菌し、無菌的にエタノールを
’l m l加え、30℃にて2日間振盪培養を行った
(前培養)。
次に、本培養培地(fL酸アンモニウム2.3%、KH
2PO40,05%、K2 HPO40,05%、Mg
5O,−IN2O3,05%、FeSO4・7H202
0ppm、MnSO4・nH2O20ppm、ビオチン
200ttg/l、チアミン・HCJ! 100#g
/j!、カザミノ酸0.3%、酵母エキス0.3%、α
−ケト酪酸ナトリウム0.12%)の10100Oを2
1容通気攪拌槽に仕込み、滅菌(120℃、20分間)
後、エタノールの20mlと前記前培養物の20m1l
を添加して、回転数1100Orp、通気量lvvm、
温度33℃pH7,6にて24時間培養を行った。
2PO40,05%、K2 HPO40,05%、Mg
5O,−IN2O3,05%、FeSO4・7H202
0ppm、MnSO4・nH2O20ppm、ビオチン
200ttg/l、チアミン・HCJ! 100#g
/j!、カザミノ酸0.3%、酵母エキス0.3%、α
−ケト酪酸ナトリウム0.12%)の10100Oを2
1容通気攪拌槽に仕込み、滅菌(120℃、20分間)
後、エタノールの20mlと前記前培養物の20m1l
を添加して、回転数1100Orp、通気量lvvm、
温度33℃pH7,6にて24時間培養を行った。
尚、エタノールは、培養中培地の濃度が2容量%を越え
ないように、約1〜2時間ごと断続的に添加した。
ないように、約1〜2時間ごと断続的に添加した。
また、α−ケト酪酸は30mMを越えないように約1〜
2時間ごとに逐次添加し、最終添加の後の総量が50m
Mとなるようにした。
2時間ごとに逐次添加し、最終添加の後の総量が50m
Mとなるようにした。
培養終了後、遠心分jll (4000rpm、15分
間、室温)にて除菌した上清液中のL−イソロイシンを
定量した。また、培養終了後の培養液500m1を、強
酸性陽イオン交換樹脂(H+型)のカラムに通してL−
イソロイシンを吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア
水で溶出させたのち、L−イソロイシン画分を濃縮し、
冷エタノールでL−イソロイシンの結晶を析出させた。
間、室温)にて除菌した上清液中のL−イソロイシンを
定量した。また、培養終了後の培養液500m1を、強
酸性陽イオン交換樹脂(H+型)のカラムに通してL−
イソロイシンを吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア
水で溶出させたのち、L−イソロイシン画分を濃縮し、
冷エタノールでL−イソロイシンの結晶を析出させた。
結果を後に掲げる第1表に示した。
尚、α−ケト酪酸ナトリウムを培養開始時の培地に一括
して50mM添加した場合のL−イソロイシンの生成量
を比較例とした。
して50mM添加した場合のL−イソロイシンの生成量
を比較例とした。
実施例−2
実施例−1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フラ
バム(BrevibacLerius* flavu
w) M J −233−AB−41(微工研菌寄 第
3812号)を培養し、且実施例−1と同様に精製した
。結果は、後に掲げる第2表に示した。
バム(BrevibacLerius* flavu
w) M J −233−AB−41(微工研菌寄 第
3812号)を培養し、且実施例−1と同様に精製した
。結果は、後に掲げる第2表に示した。
実施例−3
実施例〒1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フラ
バム(Brevibacterium fljvum
) M J −233−ABT−11(微工研菌寄 第
8423号)を培養し、且実施例−1と同様に#rIS
!Jした。
バム(Brevibacterium fljvum
) M J −233−ABT−11(微工研菌寄 第
8423号)を培養し、且実施例−1と同様に#rIS
!Jした。
結果は、後に掲げる第3表に示した。
実施例−4
実施例−1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フラ
バム(Brevibacterium flavum
) M J −233−ABD−21(微工研菌寄 第
8,055号)を培養し、且実施例−1と同様に精製し
た。
バム(Brevibacterium flavum
) M J −233−ABD−21(微工研菌寄 第
8,055号)を培養し、且実施例−1と同様に精製し
た。
結果は、後に掲げる第4表に示した。
第1表
第2表
第3表
Claims (3)
- (1)ブレビバクテリウム(Brevibacteri
um)属に属するエタノール資化性微生物をα−ケト酪
酸又はその塩を含有する培地に好気的に培養して培地中
にL−イソロイシンを生成せしめるに際し、培養中の培
地にα−ケト酪酸又はその塩を逐次添加することを特徴
とするL−イソロイシンの製造法。 - (2)培地中のα−ケト酪酸又はその塩の濃度が30m
Mを越えないように断続的又は連続的にα−ケト酪酸又
はその塩を逐次添加する特許請求の範囲第1項記載の製
造法。 - (3)ブレビバクテリウム(Brevibacteri
um)属に属し、エタノール資化性を有する微生物がブ
レビバクテリウム・フラバム(Brevibacter
ium flavum)MJ−233、ブレビバクテリ
ウム・フラバムMJ−233−AB−41、ブレビバク
テリウム・フラバムMJ−233−ABT−11、ブレ
ビバクテリウム・フラバムMJ−233−ABD−21
である特許請求の範囲第1項又は同第2項記載の製造法
。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2181187A JPS63192396A (ja) | 1987-02-03 | 1987-02-03 | L−イソロイシンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2181187A JPS63192396A (ja) | 1987-02-03 | 1987-02-03 | L−イソロイシンの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63192396A true JPS63192396A (ja) | 1988-08-09 |
Family
ID=12065440
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2181187A Pending JPS63192396A (ja) | 1987-02-03 | 1987-02-03 | L−イソロイシンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63192396A (ja) |
-
1987
- 1987-02-03 JP JP2181187A patent/JPS63192396A/ja active Pending
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