JPS6142560B2 - - Google Patents
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は微生物によるD(−)−β−ヒドロキ
シ酪酸の製造法に関する。更に詳しくはキヤンデ
イダ属に属し、クロトン酸または酪酸をD(−)
−β−ヒドロキシ酪酸に変換する能力を有する微
生物をクロトン酸または酪酸あるいは該微生物が
酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換
しうる基質と接触反応させ、生成するD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸を採取することを特徴とする
D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法に関する
ものである。 光学活性なD(−)−β−ヒドロキシ酪酸は、
2種の異なる官能基をもつ化合物であるところか
ら医薬・農薬・香料等の合成原料として好都合な
物質である。ところがD(−)−β−ヒドロキシ
酪酸の製造法に関して化学合成したDL(±)−β
−ヒドロキシ酪酸の光学分割法、およびアルカリ
ゲネス属、バチルス属等の細菌をグルコースやメ
タノール等の炭素源を含む培地で培養し得る方法
(特開昭53−18794)等があるが、いづれも収量お
よび価格の面でとうてい工業的に利用しうるもの
ではないと考えられる。 そこで本発明者等は、安価でかつ効率的なD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法を開発すべく
研究を重ねた結果、酪酸あるいはクロトン酸をD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換する能力を有す
る微生物の存在を見い出した。例えばキヤンデイ
ダ・ルゴーザ(Candida rugosa)IFO 0750がそ
の能力を有することが見い出された。更に本発明
の意図するところを最大限に発揮するためには、
酪酸あるいはクロトン酸をD(−)−β−ヒドロ
キシ酪酸に変換する能力を有する微生物を変異
し、D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の資化性を低
下もしくは欠損せしめた変異株を用いて実施する
のが好ましいことも見い出した。またD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸製造の原料としては酪酸、ク
ロトン酸の外にブチルアルコール、ブチルアルデ
ヒド、ブチロアミン、無水酪酸等の該微生物が容
易に酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に
変換しうる基質も使用しうることも見い出した。 本発明に使用しうる微生物としてキヤンデイ
ダ・ルゴーザ(Candida rugosa)IFO 0750、キ
ヤンデイダ・パラプシロシス(Candida
parapsilosis)IFO 0708および天然から分離した
キヤンデイダ属に属する微生物が含まれるが、酪
酸あるいはクロトン酸をD(−)−β−ヒドロキ
シ酪酸に変換する能力を有する微生物であれば同
様に実施できる。 微生物とクロトン酸、酪酸あるいは該微生物が
酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換
しうる基質とを接触反応させD(−)−β−ヒド
ロキシ酪酸へ変換させる方法として、微生物を栄
養培地で培養し、得た培養液に、あるいは培養液
から微生物を分離して菌体懸濁液を調製し、それ
にクロトン酸あるいは酪酸あるいは該微生物が酪
酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換し
うる基質を作用させる方法、あるいは酪酸、クロ
トン酸あるいは該微生物が酪酸またはD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸に変換しうる基質を添加した
培地で微生物を培養することにより、微生物を上
記化合物に作用させる方法等がある。また分離菌
体は菌体懸濁液あるいは水不溶性ポリマー等で固
定化した状態でも用いうる。 微生物とクロトン酸または酪酸あるいは該微生
物が酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に
変換しうる基質との接触反応時に、該微生物が利
用しうるエネルギー源を補給すればD(−)−β
−ヒドロキシ酪酸の生産性は向上する。この際の
好ましいエネルギー源としてはグルコース、エタ
ノール、グリセロール、酢酸等がある。 通常の微生物はD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
の代謝速度が早いためD(−)−β−ヒドロキシ
酪酸の蓄積量は少ないので、更に効率的に多量に
蓄積させるためには、先にも述べたとおり、D
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の資化性の低いか、も
しくは欠損した変異株を使用することが有利であ
る。この様な菌株を得るには人工変異あるいは自
然変異を利用するが、効率的に行なうには通常人
工変異が用いられる。人工変異の方法としては、
X線照射、紫外線照射、γ線処理、およびN−メ
チル−N−ニトロ−N′−ニトロソグアニジン
(NTG)などの変異誘起剤による処理が用いられ
る。例えば具体的な例として本発明者等がD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸資化能の欠損した変異
株を得るために行なつたNTGによる変異方法の
1例を示すと次のとおりである。ただし、目的と
する変異株が得られれば良いのであつてこの方法
に限定されるものではない。 保存用スラント(キヤンデイダ・ルゴーザIFO
0750)より1白金耳をグルコース40g、
(NH4)2HPO413g、KH2PO47g、MgSO4・
7H2O0.8g、ZnSO4・7H2O60mg、FeSO4・
7H2O90mg、CuSO4・5H2O5mg、MnSO4・4H2O10
mg、NaCl 0.1g、ビオチン1mg、チアミン2
mg、水1、PH7.2の組成から成るS培地30mlを
500mm容フラスコに入れ接種し、30℃、20時間振
とう培養した。その培養液1.5mlを0.5Mリン酸緩
衝液(PH7.0)で洗浄後、0.5mg/mlNTG溶液3ml
に懸濁し、4℃、60分放置した。その後、同じ緩
衝液で3回洗浄し、次の組成から成る固型平板培
地C培地(グルコース20g、イーストエキス5
g、肉エキス10g、ペプトン10g、寒天20g、水
1、PH7.0)に塗布し、コロニーを出現させ
た。このコロニーをS培地のグルコースの代りに
酪酸10g、寒天20gを加えたPH7.0のB培地にレ
プリカした。このB培地上で生育不良な菌株(酪
酸非資化性菌)を選んだ。この様な方法で得た酪
酸非資化性株を、実施例1に示すと同様な条件で
培養を行ない、D(−)−β−ヒドロキシ酪酸高
濃度蓄積株を選択した。このようにして選んだ変
異株は、いづれもD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
資化性が著しく低下しており、本発明に利用でき
る。 本発明を実施するため、上記の方法で得た変異
株の例としてキヤンデイダ・ルゴーザKT8202株
がある。この変異株の菌学的性質として表1に示
すごとく親株と殆んど差は認められないが、酪
酸、β−ヒドロキシ酪酸の資化性において著しい
差が認められる。
シ酪酸の製造法に関する。更に詳しくはキヤンデ
イダ属に属し、クロトン酸または酪酸をD(−)
−β−ヒドロキシ酪酸に変換する能力を有する微
生物をクロトン酸または酪酸あるいは該微生物が
酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換
しうる基質と接触反応させ、生成するD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸を採取することを特徴とする
D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法に関する
ものである。 光学活性なD(−)−β−ヒドロキシ酪酸は、
2種の異なる官能基をもつ化合物であるところか
ら医薬・農薬・香料等の合成原料として好都合な
物質である。ところがD(−)−β−ヒドロキシ
酪酸の製造法に関して化学合成したDL(±)−β
−ヒドロキシ酪酸の光学分割法、およびアルカリ
ゲネス属、バチルス属等の細菌をグルコースやメ
タノール等の炭素源を含む培地で培養し得る方法
(特開昭53−18794)等があるが、いづれも収量お
よび価格の面でとうてい工業的に利用しうるもの
ではないと考えられる。 そこで本発明者等は、安価でかつ効率的なD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法を開発すべく
研究を重ねた結果、酪酸あるいはクロトン酸をD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換する能力を有す
る微生物の存在を見い出した。例えばキヤンデイ
ダ・ルゴーザ(Candida rugosa)IFO 0750がそ
の能力を有することが見い出された。更に本発明
の意図するところを最大限に発揮するためには、
酪酸あるいはクロトン酸をD(−)−β−ヒドロ
キシ酪酸に変換する能力を有する微生物を変異
し、D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の資化性を低
下もしくは欠損せしめた変異株を用いて実施する
のが好ましいことも見い出した。またD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸製造の原料としては酪酸、ク
ロトン酸の外にブチルアルコール、ブチルアルデ
ヒド、ブチロアミン、無水酪酸等の該微生物が容
易に酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に
変換しうる基質も使用しうることも見い出した。 本発明に使用しうる微生物としてキヤンデイ
ダ・ルゴーザ(Candida rugosa)IFO 0750、キ
ヤンデイダ・パラプシロシス(Candida
parapsilosis)IFO 0708および天然から分離した
キヤンデイダ属に属する微生物が含まれるが、酪
酸あるいはクロトン酸をD(−)−β−ヒドロキ
シ酪酸に変換する能力を有する微生物であれば同
様に実施できる。 微生物とクロトン酸、酪酸あるいは該微生物が
酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換
しうる基質とを接触反応させD(−)−β−ヒド
ロキシ酪酸へ変換させる方法として、微生物を栄
養培地で培養し、得た培養液に、あるいは培養液
から微生物を分離して菌体懸濁液を調製し、それ
にクロトン酸あるいは酪酸あるいは該微生物が酪
酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換し
うる基質を作用させる方法、あるいは酪酸、クロ
トン酸あるいは該微生物が酪酸またはD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸に変換しうる基質を添加した
培地で微生物を培養することにより、微生物を上
記化合物に作用させる方法等がある。また分離菌
体は菌体懸濁液あるいは水不溶性ポリマー等で固
定化した状態でも用いうる。 微生物とクロトン酸または酪酸あるいは該微生
物が酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に
変換しうる基質との接触反応時に、該微生物が利
用しうるエネルギー源を補給すればD(−)−β
−ヒドロキシ酪酸の生産性は向上する。この際の
好ましいエネルギー源としてはグルコース、エタ
ノール、グリセロール、酢酸等がある。 通常の微生物はD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
の代謝速度が早いためD(−)−β−ヒドロキシ
酪酸の蓄積量は少ないので、更に効率的に多量に
蓄積させるためには、先にも述べたとおり、D
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の資化性の低いか、も
しくは欠損した変異株を使用することが有利であ
る。この様な菌株を得るには人工変異あるいは自
然変異を利用するが、効率的に行なうには通常人
工変異が用いられる。人工変異の方法としては、
X線照射、紫外線照射、γ線処理、およびN−メ
チル−N−ニトロ−N′−ニトロソグアニジン
(NTG)などの変異誘起剤による処理が用いられ
る。例えば具体的な例として本発明者等がD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸資化能の欠損した変異
株を得るために行なつたNTGによる変異方法の
1例を示すと次のとおりである。ただし、目的と
する変異株が得られれば良いのであつてこの方法
に限定されるものではない。 保存用スラント(キヤンデイダ・ルゴーザIFO
0750)より1白金耳をグルコース40g、
(NH4)2HPO413g、KH2PO47g、MgSO4・
7H2O0.8g、ZnSO4・7H2O60mg、FeSO4・
7H2O90mg、CuSO4・5H2O5mg、MnSO4・4H2O10
mg、NaCl 0.1g、ビオチン1mg、チアミン2
mg、水1、PH7.2の組成から成るS培地30mlを
500mm容フラスコに入れ接種し、30℃、20時間振
とう培養した。その培養液1.5mlを0.5Mリン酸緩
衝液(PH7.0)で洗浄後、0.5mg/mlNTG溶液3ml
に懸濁し、4℃、60分放置した。その後、同じ緩
衝液で3回洗浄し、次の組成から成る固型平板培
地C培地(グルコース20g、イーストエキス5
g、肉エキス10g、ペプトン10g、寒天20g、水
1、PH7.0)に塗布し、コロニーを出現させ
た。このコロニーをS培地のグルコースの代りに
酪酸10g、寒天20gを加えたPH7.0のB培地にレ
プリカした。このB培地上で生育不良な菌株(酪
酸非資化性菌)を選んだ。この様な方法で得た酪
酸非資化性株を、実施例1に示すと同様な条件で
培養を行ない、D(−)−β−ヒドロキシ酪酸高
濃度蓄積株を選択した。このようにして選んだ変
異株は、いづれもD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
資化性が著しく低下しており、本発明に利用でき
る。 本発明を実施するため、上記の方法で得た変異
株の例としてキヤンデイダ・ルゴーザKT8202株
がある。この変異株の菌学的性質として表1に示
すごとく親株と殆んど差は認められないが、酪
酸、β−ヒドロキシ酪酸の資化性において著しい
差が認められる。
【表】
【表】
なおキヤンデイダ・ルゴーザ(Candida
rugosa)KT8202株は工業技術院微生物工業研究
所へ微生物保管委託申請受理番号第111号として
寄託してある。 本発明に使用する培地はグルコース、グリセリ
ン等の炭素源、アンモニア、硫安、ペプトン、カ
ザミノ酸の無機、有機の含窒素化合物の窒素源、
リン酸カリウム、硫安マグネシウム等の生育に必
要な無機塩類に更にビオチン等のビタミン類、そ
の他必要に応じて通常の微生物の培養に用いられ
る種々の栄養源を適宜配合して用いることができ
る。培養には殺菌した培地に菌を接種し、20〜45
℃の温度でPH6〜9に保ちつつ1〜10日間通気撹
拌、振とう培養など好気的に行なう。培養の初期
は菌体の生育があり、その後D(−)−β−ヒド
ロキシ酪酸の生産が行なわれる。またD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸生産時にエネルギー源として
グルコース等を補給すれば効率良く多量にD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の生産が行なわれる。
酪酸等の原料は培養の初期から培地に加えておい
ても、菌体生育後中和して添加してもいづれでも
良い。 培養液あるいは菌体反応液から生成したD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の回収するには、通常
のヒドロキシ酸の回収方法に用いられる手段を用
いることができる。例えば菌体除去後のD(−)
−β−ヒドロキシ酪酸含有液を濃縮し、硫酸等の
酸でPHを2.5以下に下げ、このものよりエーテ
ル、酢酸エチル等で抽出し、溶剤を除去後、減圧
蒸留すれば純粋なD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
を容易にうることができる。 以下実施例により本発明を具体的に説明するが
本発明は実施例のみに限定されるものではない。 実施例 1 グルコース40g、(NH4)2HPO413g、KH2PO47
g、MgSO4・7H2O0.8g、ZnSO4・7H2O60mg、
FeSO4・7H2O90mg、CuSO4・5H2O5mg、
MnSO4・4H2O10mg、NaCl 0.1g、イーストエキ
ス5g、酪酸20g(1当り)の組成からなる培
地をNaOHでPH7.2とし、30mlを500ml容フラスコ
に入れ殺菌後、キヤンデイダ・ルゴーザKT8202
株を接種し、30℃、5日間振とう培養した。PHは
7.0に保ち、かつ毎日グルコースを2%添加し
た。培養終了後、生成したD(−)−β−ヒドロ
キシ酪酸をガスクロマトグラフイー〔長谷川等;
ジヤーナル・オブ・フアーメンテイシヨン・テク
ノロジー誌(Journal of Fermentation
Technology)59巻、203頁、1981〕で定量した結
果13mg/mlの蓄積が認められた。 上記条件での培養液を1集め遠心分離により
除菌後、上清を減圧下200mlまで濃縮した。これ
を硫酸でPH2.0となし、酢酸エチル500mlで3回抽
出した。溶剤を減圧下除去し、黄色油状物20gを
得た。これを減圧下蒸留し、(127℃/18mmHg)
無色油状物8.3gを得た。この物質はNMR、IR、
ガスクロマト分析によりβ−ヒドロキシ酪酸と同
定された。更に旋光度を測定した結果〔α〕25 D−
23.0゜(C=61、水)を示し、D(−)−β−ヒ
ドロキシ酪酸であると同定された。 実施例 2 実施例1に示した培地から酪酸を除いた培地30
mlを500ml容フラスコに入れ、殺菌後、変異株
KT8202株を植菌し、30℃で24時間振とう培養し
た。この培養液各々に無水酪酸、クロトン酸、ブ
チロアミンを別々に600mg、ブチルアルコール300
mg、ブチルアルデヒド150mg各々別々に添加し、
PHを7.0に調整した。更に各フラスコにグルコー
ルを600mgづつ毎日添加し、かつPHを7.0に保ちつ
つ4日間振とう培養を行なつた。培養終了後、生
成したD(−)−β−ヒドロキシ酪酸をガスクロ
マトグラフイーで分析した結果表2の如くであつ
た。
rugosa)KT8202株は工業技術院微生物工業研究
所へ微生物保管委託申請受理番号第111号として
寄託してある。 本発明に使用する培地はグルコース、グリセリ
ン等の炭素源、アンモニア、硫安、ペプトン、カ
ザミノ酸の無機、有機の含窒素化合物の窒素源、
リン酸カリウム、硫安マグネシウム等の生育に必
要な無機塩類に更にビオチン等のビタミン類、そ
の他必要に応じて通常の微生物の培養に用いられ
る種々の栄養源を適宜配合して用いることができ
る。培養には殺菌した培地に菌を接種し、20〜45
℃の温度でPH6〜9に保ちつつ1〜10日間通気撹
拌、振とう培養など好気的に行なう。培養の初期
は菌体の生育があり、その後D(−)−β−ヒド
ロキシ酪酸の生産が行なわれる。またD(−)−
β−ヒドロキシ酪酸生産時にエネルギー源として
グルコース等を補給すれば効率良く多量にD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の生産が行なわれる。
酪酸等の原料は培養の初期から培地に加えておい
ても、菌体生育後中和して添加してもいづれでも
良い。 培養液あるいは菌体反応液から生成したD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の回収するには、通常
のヒドロキシ酸の回収方法に用いられる手段を用
いることができる。例えば菌体除去後のD(−)
−β−ヒドロキシ酪酸含有液を濃縮し、硫酸等の
酸でPHを2.5以下に下げ、このものよりエーテ
ル、酢酸エチル等で抽出し、溶剤を除去後、減圧
蒸留すれば純粋なD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
を容易にうることができる。 以下実施例により本発明を具体的に説明するが
本発明は実施例のみに限定されるものではない。 実施例 1 グルコース40g、(NH4)2HPO413g、KH2PO47
g、MgSO4・7H2O0.8g、ZnSO4・7H2O60mg、
FeSO4・7H2O90mg、CuSO4・5H2O5mg、
MnSO4・4H2O10mg、NaCl 0.1g、イーストエキ
ス5g、酪酸20g(1当り)の組成からなる培
地をNaOHでPH7.2とし、30mlを500ml容フラスコ
に入れ殺菌後、キヤンデイダ・ルゴーザKT8202
株を接種し、30℃、5日間振とう培養した。PHは
7.0に保ち、かつ毎日グルコースを2%添加し
た。培養終了後、生成したD(−)−β−ヒドロ
キシ酪酸をガスクロマトグラフイー〔長谷川等;
ジヤーナル・オブ・フアーメンテイシヨン・テク
ノロジー誌(Journal of Fermentation
Technology)59巻、203頁、1981〕で定量した結
果13mg/mlの蓄積が認められた。 上記条件での培養液を1集め遠心分離により
除菌後、上清を減圧下200mlまで濃縮した。これ
を硫酸でPH2.0となし、酢酸エチル500mlで3回抽
出した。溶剤を減圧下除去し、黄色油状物20gを
得た。これを減圧下蒸留し、(127℃/18mmHg)
無色油状物8.3gを得た。この物質はNMR、IR、
ガスクロマト分析によりβ−ヒドロキシ酪酸と同
定された。更に旋光度を測定した結果〔α〕25 D−
23.0゜(C=61、水)を示し、D(−)−β−ヒ
ドロキシ酪酸であると同定された。 実施例 2 実施例1に示した培地から酪酸を除いた培地30
mlを500ml容フラスコに入れ、殺菌後、変異株
KT8202株を植菌し、30℃で24時間振とう培養し
た。この培養液各々に無水酪酸、クロトン酸、ブ
チロアミンを別々に600mg、ブチルアルコール300
mg、ブチルアルデヒド150mg各々別々に添加し、
PHを7.0に調整した。更に各フラスコにグルコー
ルを600mgづつ毎日添加し、かつPHを7.0に保ちつ
つ4日間振とう培養を行なつた。培養終了後、生
成したD(−)−β−ヒドロキシ酪酸をガスクロ
マトグラフイーで分析した結果表2の如くであつ
た。
【表】
実施例 3
実施例1と同様に培養し、培養開始後、24、
48、72時間目にエネルギー源としてグルコース
600mgまたはグリセロール600mg、または24、36、
48、60、72、84時間目にエタノール0.3ml、また
は酢酸0.3mlを添加し、PHを7.0に維持しつつ96時
間振とう培養した。培養終了後の培養液中のD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の生成量は表3の如く
であつた。
48、72時間目にエネルギー源としてグルコース
600mgまたはグリセロール600mg、または24、36、
48、60、72、84時間目にエタノール0.3ml、また
は酢酸0.3mlを添加し、PHを7.0に維持しつつ96時
間振とう培養した。培養終了後の培養液中のD
(−)−β−ヒドロキシ酪酸の生成量は表3の如く
であつた。
【表】
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 キヤンデイダ属に属し、クロトン酸または酪
酸をD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換する能
力を有する微生物を、クロトン酸または酪酸ある
いは該微生物が酪酸またはD(−)−β−ヒドロ
キシ酪酸に変換しうる基質と接触反応させ、生成
するD(−)−β−ヒドロキシ酪酸を採取するこ
とを特徴とするD(−)−β−ヒドロキシ酪酸の
製造法。 2 微生物がキヤンデイダ・ルゴーザである特許
請求の範囲第1項記載の製造法。 3 微生物がD(−)−β−ヒドロキシ酪酸資化
能の低いか、もしくは欠損した変異株である特許
請求の範囲第1項記載の製造法。 4 変異株がキヤンデイダ・ルゴーザから誘導さ
れた微生物である特許請求の範囲第3項記載の製
造法。 5 微生物が酪酸またはD(−)−β−ヒドロキ
シ酪酸に変換しうる基質が、ブチルアルコール、
ブチルアルデヒド、ブチロアミンまたは無水酪酸
である特許請求の範囲第1項記載の製造法。 6 微生物を栄養培地で培養し、得た培養液に、
酪酸またはクロトン酸あるいは該微生物が酪酸ま
たはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換しうる
基質を接触反応させる特許請求の範囲第1項また
は第3項記載の製造法。 7 酪酸、クロトン酸あるいは該微生物が酪酸ま
たはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換しうる
基質を添加した培地で微生物を培養することによ
り、微生物を酪酸、クロトン酸あるいは該微生物
が酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変
換しうる基質に接触反応させる特許請求の範囲第
1項または第3項記載の製造法。 8 微生物を栄養培地で培養し、得られた培養液
から微生物菌体を分離して菌体懸濁液を調製し、
それを酪酸、クロトン酸あるいは該微生物が酪酸
またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸に変換しう
る基質に接触反応させる特許請求の範囲第1項ま
たは第3項記載の製造法。 9 微生物とクロトン酸または酪酸あるいは該微
生物が酪酸またはD(−)−β−ヒドロキシ酪酸
に変換しうる基質との接触反応時に、該微生物が
利用しうるエネルギー源を補給する特許請求の範
囲第1項または第3項記載の製造法。 10 微生物が利用しうるエネルギー源が、グル
コース、グリセロール、エタノール、または酢酸
である特許請求の範囲第9項記載の製造法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57042361A JPS58158190A (ja) | 1982-03-16 | 1982-03-16 | D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法 |
EP83102462A EP0089039B1 (en) | 1982-03-16 | 1983-03-12 | Process for producing d-beta-hydroxyalkanoic acid |
DE8383102462T DE3375024D1 (en) | 1982-03-16 | 1983-03-12 | Process for producing d-beta-hydroxyalkanoic acid |
US06/475,603 US4540665A (en) | 1982-03-16 | 1983-03-15 | Process for producing D-β-hydroxyalkanoic acid |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57042361A JPS58158190A (ja) | 1982-03-16 | 1982-03-16 | D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58158190A JPS58158190A (ja) | 1983-09-20 |
JPS6142560B2 true JPS6142560B2 (ja) | 1986-09-22 |
Family
ID=12633893
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57042361A Granted JPS58158190A (ja) | 1982-03-16 | 1982-03-16 | D(−)−β−ヒドロキシ酪酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58158190A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP6692232B2 (ja) * | 2016-06-30 | 2020-05-13 | 大阪瓦斯株式会社 | 3hbの製造方法 |
US10428357B2 (en) * | 2017-04-04 | 2019-10-01 | NNB Nutrition USA, LLC | Preparation of (R)-3-hydroxybutyric acid or its salts by one-step fermentation |
WO2023031482A1 (en) * | 2021-09-06 | 2023-03-09 | Global Bioenergies | Organisms producing less crotonic acid |
-
1982
- 1982-03-16 JP JP57042361A patent/JPS58158190A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS58158190A (ja) | 1983-09-20 |
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