JPS6139622B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、カテコールアミン類又はドーバの抗
原およびそれらの抗原に関するものである。カテ
コールアミン類およびドーバは次の如き式で表わ
されるが、本明細書中ではこれらを総合してカテ
コールアミン誘導体とよぶ。 カテコールアミン誘導体としては例えばエピネ
フリン(R1=OH,R2=H,R3=CH3)、ノルエ
ピネフリン(R1=OH,R2=H,R3=H)、ドー
パミン(R1=H,R2=H,R3=H)、ドーパ(R1
=H,R2=COOH,R3=H)等があるが、これ
らの抗原および抗体についての報告例は少ない。
ウエント(S.Went)らはアドレナリン類の抗体
の産生について報告しているが、その抗原として
はアミノアドレナリンのジアゾ化反応で得られた
縮合体を用いている(Arch.Exp.Pathol.
Pharmacol.193,609(1939))。しかしカテコー
ル骨格を分子内にもつ化合物は、アルカリ性で不
安定であり、酸素の存在下でその分解は速く、ア
ルカリ性で行なうジアゾ化反応により得られた抗
原ではカテコール部分が変化していて、これによ
り得られる抗体は特異性がない。また、スペクタ
ー(S.Spector)はカテコールアミンのアミノ基
と担体のカルボキシル基とをカルボジイミドによ
つて結合させて得た縮合体を抗原として用いた抗
体の産生を報告している(米国特許3704282)。し
かし、この抗原は、産生される抗体の特異性に関
与すべきアミノ基が、担体との縮合に用いられて
いるので好ましいものではない。 本発明で得られる抗原は、カテコールアミン誘
導体のカテコール骨格に担体の蛋白質又はポリペ
プチドのアミノ基を用いてマンニツヒ反応で結合
させたものであり、特異性の高い優れた抗体を産
生させることができる。担体としては哺乳動物の
血清アルブミン、γ−グロブリン等の蛋白質およ
びポリリジン等のポリペプチドなどが用いられ
る。カテコールアミン誘導体に担体を結合させる
は、予めカテコールアミン誘導体のアミノ基を保
護しておくことが必要であり、このためにはマレ
イル化、トリフルオロアセチル化、シトラコニル
化により保護する方法が優れている。これらの方
法は反応が容易に進み、かつ担体と結合後緩和な
条件で加水分解してもとの形にもどすことができ
る利点があり、カテコール骨格をもつ化合物に最
も適した方法である。抗原の製法の反応をマレイ
ル化保護の方法で例示すれば次の通りである。 アミノ基を保護するは、通常はメタノール、
N,N−ジメチルホルムアミドなどの適当な溶媒
中で()と数倍モル、好ましくは2倍モル量の
無水マレイン酸、チオールトリフルオロ酢酸エチ
ルエステル又は無水シトラコン酸を室温乃至加温
で反応させる。反応後過剰の無水マレイン酸等を
除き、希薄な水酸化ナトリウム液、炭酸水素ナト
リウム液等で中和する。この溶液は必要ならば
Na型のカチオン交換樹脂を用いて未反応のカテ
コールアミン誘導体を除いた後凍結乾燥して保存
することができるが、これを少量のメタノールに
溶解後酢酸エチルを加えて生じる沈澱を遠沈によ
つて分取し減圧乾燥して保存することもできる。 アミノ基を保護したカテコールアミン誘導体の
電気泳動および薄層クロマトグラフイーの結果は
次の通りである。
原およびそれらの抗原に関するものである。カテ
コールアミン類およびドーバは次の如き式で表わ
されるが、本明細書中ではこれらを総合してカテ
コールアミン誘導体とよぶ。 カテコールアミン誘導体としては例えばエピネ
フリン(R1=OH,R2=H,R3=CH3)、ノルエ
ピネフリン(R1=OH,R2=H,R3=H)、ドー
パミン(R1=H,R2=H,R3=H)、ドーパ(R1
=H,R2=COOH,R3=H)等があるが、これ
らの抗原および抗体についての報告例は少ない。
ウエント(S.Went)らはアドレナリン類の抗体
の産生について報告しているが、その抗原として
はアミノアドレナリンのジアゾ化反応で得られた
縮合体を用いている(Arch.Exp.Pathol.
Pharmacol.193,609(1939))。しかしカテコー
ル骨格を分子内にもつ化合物は、アルカリ性で不
安定であり、酸素の存在下でその分解は速く、ア
ルカリ性で行なうジアゾ化反応により得られた抗
原ではカテコール部分が変化していて、これによ
り得られる抗体は特異性がない。また、スペクタ
ー(S.Spector)はカテコールアミンのアミノ基
と担体のカルボキシル基とをカルボジイミドによ
つて結合させて得た縮合体を抗原として用いた抗
体の産生を報告している(米国特許3704282)。し
かし、この抗原は、産生される抗体の特異性に関
与すべきアミノ基が、担体との縮合に用いられて
いるので好ましいものではない。 本発明で得られる抗原は、カテコールアミン誘
導体のカテコール骨格に担体の蛋白質又はポリペ
プチドのアミノ基を用いてマンニツヒ反応で結合
させたものであり、特異性の高い優れた抗体を産
生させることができる。担体としては哺乳動物の
血清アルブミン、γ−グロブリン等の蛋白質およ
びポリリジン等のポリペプチドなどが用いられ
る。カテコールアミン誘導体に担体を結合させる
は、予めカテコールアミン誘導体のアミノ基を保
護しておくことが必要であり、このためにはマレ
イル化、トリフルオロアセチル化、シトラコニル
化により保護する方法が優れている。これらの方
法は反応が容易に進み、かつ担体と結合後緩和な
条件で加水分解してもとの形にもどすことができ
る利点があり、カテコール骨格をもつ化合物に最
も適した方法である。抗原の製法の反応をマレイ
ル化保護の方法で例示すれば次の通りである。 アミノ基を保護するは、通常はメタノール、
N,N−ジメチルホルムアミドなどの適当な溶媒
中で()と数倍モル、好ましくは2倍モル量の
無水マレイン酸、チオールトリフルオロ酢酸エチ
ルエステル又は無水シトラコン酸を室温乃至加温
で反応させる。反応後過剰の無水マレイン酸等を
除き、希薄な水酸化ナトリウム液、炭酸水素ナト
リウム液等で中和する。この溶液は必要ならば
Na型のカチオン交換樹脂を用いて未反応のカテ
コールアミン誘導体を除いた後凍結乾燥して保存
することができるが、これを少量のメタノールに
溶解後酢酸エチルを加えて生じる沈澱を遠沈によ
つて分取し減圧乾燥して保存することもできる。 アミノ基を保護したカテコールアミン誘導体の
電気泳動および薄層クロマトグラフイーの結果は
次の通りである。
【表】
【表】
ここで得られる保護基を有するカテコールアミ
ン誘導体例えば()は、牛血清アルブミン
(BSA)等の担体に対し数十乃至数百倍モル量用
い、水に溶解後過剰量のホルムアルデヒドおよび
酢酸塩緩衝液を加えて室温又は加温して数日間放
置してマンニツヒ反応を行なう。反応後、例え
ば、希塩酸で24時間以上透析し、次いで希塩酸溶
液として加温し、燐酸緩衝食塩水(PBS:0.01M
KH2PO4,0.15M NaCl,PH7.4)で透析し、一定
量のPBSで適当濃度に希釈し、等量のフロインド
の補助液(Complete Freund’s Adjuvant)
と混合し、W/O型エマルジヨンを調製する。ま
た保存のためにはPBSの代りに水で2日間透析後
凍結乾燥する。希塩酸溶液として加温する操作は
マレイル基等の保護基を脱離させるとともに担体
分子のアミノ基と反応したホルミル基も同時に脱
離させる。 このようにして得られる縮合体のカテコールア
ミン誘導体と担体の結合比を、カテコール部分に
由来する鉄キレート発色で求めると15〜35モル・
ハプテン/1モル・担体であり、この縮合体はカ
テコール骨格および側鎖をもとのままの形に残し
たままで結合しているので、特異性の高い抗体を
産生させることができる。 これらの縮合体(抗原)のセルローズアセテー
ト膜電気泳動の結果は次の通りである。
ン誘導体例えば()は、牛血清アルブミン
(BSA)等の担体に対し数十乃至数百倍モル量用
い、水に溶解後過剰量のホルムアルデヒドおよび
酢酸塩緩衝液を加えて室温又は加温して数日間放
置してマンニツヒ反応を行なう。反応後、例え
ば、希塩酸で24時間以上透析し、次いで希塩酸溶
液として加温し、燐酸緩衝食塩水(PBS:0.01M
KH2PO4,0.15M NaCl,PH7.4)で透析し、一定
量のPBSで適当濃度に希釈し、等量のフロインド
の補助液(Complete Freund’s Adjuvant)
と混合し、W/O型エマルジヨンを調製する。ま
た保存のためにはPBSの代りに水で2日間透析後
凍結乾燥する。希塩酸溶液として加温する操作は
マレイル基等の保護基を脱離させるとともに担体
分子のアミノ基と反応したホルミル基も同時に脱
離させる。 このようにして得られる縮合体のカテコールア
ミン誘導体と担体の結合比を、カテコール部分に
由来する鉄キレート発色で求めると15〜35モル・
ハプテン/1モル・担体であり、この縮合体はカ
テコール骨格および側鎖をもとのままの形に残し
たままで結合しているので、特異性の高い抗体を
産生させることができる。 これらの縮合体(抗原)のセルローズアセテー
ト膜電気泳動の結果は次の通りである。
【表】
すなわち、BSAの移動度を1.0とするとエピネ
フリン−BSAおよびドーパーBSAの移動度はそ
れぞれ約1.5と約1.9であつた。 抗体を産生させるには、前述のエマルジヨンを
牛、ウサギ、羊、ラツト、豚等の哺乳動物に投与
し、3〜4週間以後適当な期間追加免疫を行なつ
て抗血清を得る。 得られた抗血清は必要に応じて担体の抗体を吸
収した後二重拡散法(O.Ouchterlony,
Handbook of Experimental Immunology19,13
(1973))によつて各々の抗原に特異性のある抗体
から成ることが確かめられた。 さらにこの抗血清を尿素溶液で透析し、次にリ
ン酸塩緩衝液で透析を行なつた後DEAE−セルロ
ースのカラムを通してγG分画を分取し得られた
γG分画についても二重拡散法によつて調べた結
果各々の抗原に特異的な沈降反応を示すことが確
かめられた。 これらの抗体はラジオイムノアツセイなどのイ
ムノアツセイに用いられ、特に生体試料中のカテ
コールアミン類およびドーパの分析に有用であ
る。 実施例 1 ドーパの抗原の調製および抗体の産生 L−ドーパ197mgをN,N−ジメチルホルムア
ミド(DMF)2mlに懸濁させ、無水マレイン酸
200mgを加え溶解する。65〜70゜の温浴中で約30
分間反応させ、DMFを減圧留去後ベンゼン5ml
で3回洗つて未反応の無水マレイン酸を除く。残
渣に2〜3mlの冷水を加えて溶かし、氷冷しなが
ら冷した0.01N NaOHを少しずつ滴加し中和す
る。この溶液を凍結乾燥した後、メタノール少量
を加えて溶かし、酢酸エチルを加えて沈澱させ、
遠沈して沈澱を分取し減圧乾燥する。 上記の操作によつて得られたN−マレイルドー
パのナトリウム塩33.9mgまたは67.8mgおよび
BSA100mgを水1mlに溶解し、3M−酢酸ナトリウ
ム液0.3mlおよび7.5%ホルマリン液1mlを加え、
共せん試験管中で窒素ガス置換を行なつた後、遮
光して室温(18〜23゜)で5日間放置して反応さ
せる。反応後0.01NHClで1日透析し、小試験管
中で60゜、3時間加温する。さらにPBSで2日間
透析した後、PBSを加えて10〜20mg/mlの濃度に
調製する。鉄キレート発色によつてドーパと
BSAの結合比を求めた結果は16〜24モル・ドー
パ/1モル・BSAであつた。 抗原のPBS溶液とComplete Freund’s
adjuvantを等量混合し、W/O型エマルジヨンを
調製する。このエマルジヨンをウサギの後肢に皮
内注射する。投与量は抗原として2〜3mgであ
る。4週間後抗原のPBS溶液を耳静脈より抗原と
して1mgに相当する量を注射する。あるいは抗原
のPBS溶液を等量のIncomplete Freund’s
adjuvantと混合し、初回免疫と同様にW/O型エ
マルジヨンを調製して抗原量として1mgに相当す
る量を皮下注射する。更に1週間後採血し抗血清
を得る。得られた抗血清は先ず二重拡散法によつ
て特異的な抗体の産生を確かめる。 即ち、1.2%に相当する寒天をPBSに加温しな
がら溶解し、2mmの厚さにガラスプレート上に展
開する。冷後5mmの間隔で直径3mmの穴を6角形
の頂点の位置にあけ、さらに中心にもあける。中
心の穴に抗血清をそのままかあるいは1/2〜1/3に
PBSで希釈していつぱい入れ、外側の穴には各々
抗原およびBSAのPBS溶液(0.5〜1mg/ml)を交
互に入れ、1夜放置して沈降線の有無を見る。そ
の結果沈降線は抗原およびBSAの両方に見られ
たので、抗血清に等量のBSA溶液(1mg/ml)
を加え37゜で1時間放置し、さらに4゜で1夜放
置した後、生じた沈澱を遠沈して除く。この操作
によつて得られた抗血清はBSAによる沈降反応
を示さず抗原に対してのみ沈降反応を示した。次
にこの抗血清を透析チユーブに入れ、6M−尿素
で15時間透析した後、さらに0.007M−リン酸塩
緩衝液(0.007M−NaH2PO4,PH6.3)によつて2
日間透析した後、DEAE−Celluloseカラムに通
し、最初に流出して来る分画を分取する。この分
画は280nmにおける吸光度を測定することによつ
て流出の終点を判断でき、この分画(γG分画)
によつてOuchterlony法による沈降反応を調べた
結果、もとの抗血清と同様に抗原に特異的な沈降
反応を示した。このγG分画はさらに水で透析し
た後、凍結乾燥して保存する。 実施例 2 エピネフリンの抗原の調製および抗体の産生 L−エピネフリン183.2mgをメタノール5mlに
懸濁させ、無水マレイン酸200mgを加え溶解す
る。反応溶器中の空気を窒素ガスで置換し遮光し
て密閉した後、室温で撹拌しながら1時間反応さ
せる。メタノールを減圧留去後実施例1と同様に
中和し、若干の未反応のエピネフリンを
Dowex50WX−8(200〜400メツシユ)のNa型の
カラム(内径0.9cm、長さ7cm)を通し除去した
後、凍結乾燥した。 上記操作によつて得られたN−マレイルエピネ
フリンのナトリウム塩56.6mgあるいは84.9mgおよ
びBSA100mgを水1mlに溶解し、3M−酢酸ナトリ
ウム液0.3mlおよび7.5%ホルムマリン液1mlを加
え、以下実施例1と同様に反応させ、透析して10
〜20mg/mlの抗原のPBS溶液を得る。この抗原の
エピネフリンとBSAの結合比は16〜24モル・エ
ピネフリン/1モル・BSAであつた。 抗原のPBS溶液とComplete Freund’s
adjuvantを用いて実施例1と同様に操作して抗血
清を得る。得られた抗血清は同様にしてBSAの
抗体を吸収させて除いた後、実施例1と同様にγ
G分画を分取し、γG分画が抗原に特異性のある
抗体であることが確認された。 実施例 3 ノルエピネフリンの抗原の調製および抗体の産
生 L−ノルエピネフリン169mgをメタノール5ml
に懸濁させ、無水マレイン酸200mgを加え溶解す
る。室温で約10分間放置後、減圧濃縮し、ベンゼ
ン5mlで2回洗浄した後、メタノール・水混液
(1:1)に懸濁させ、酢酸エチルを加えてよく
振り混ぜた後遠沈する。得られた沈澱を乾燥して
N−マレイルノルエピネフリンの結晶性粉末を得
る。この化合物の元素分析値は理論値C53.93,
H4.90,N5.24、実測値C53.81,H5.02,N5.16%
である。このN−マレイルノルエピネフリンを冷
やしたNaHCO3溶液に添加して中和した後、凍結
乾燥しN−マレイルノルエピネフリンのナトリウ
ム塩を得た。 N−マレイルノルエピネフリンのナトリウム塩
86.7mgおよびBSA100mgを水1mlに溶解し、3M−
酢酸ナトリウム液0.3mlおよび7.5%ホルマリン液
1mlを加え、以下実施例2と同様に反応させて、
抗原のPBS溶液を得る。ノルエピネフリンとBSA
の結合比は20〜25モル・ノルエピネフリン/1モ
ル・BSAであつた。 さらに同様の方法で抗血清を得た。得られた抗
血清は同様にしてBSAの抗体を吸収させて除い
た後、実施例1と同様にγG分画を分取しγG画
が抗原に特異性のある抗体であることを確かめ
た。 実施例 4 ドーパミンの抗原の調製および抗体の産生 ドーパミン塩酸塩190mgをメタノール2mlに溶
解し、無水マレイン酸200mgを加えて溶解する。
室温で10分間放置後、氷冷した炭酸水素ナトリウ
ム液(0.3M)10mlを加えて中和する。この溶液
を凍結乾燥した後、少量のメタノールに溶解し、
酢酸エチルを加えて沈澱させ、遠沈して沈澱を分
取し、減圧乾燥してN−マレイルドーパミンのナ
トリウム塩を得た。N−マレイルドーパミンのナ
トリウム塩81.9mgおよびBSA100mgを水1mlに溶
解し、3M−酢酸ナトリウム液0.3mlおよび7.5%
ホルマリン液1mlを加え、以下実施例2と同様に
反応させ、抗原のPBS溶液を得た。ドーパミンと
BSAの結合比は20〜25モル・ドーパミン/1モ
ル・BSAであつた。 さらに同様の方法で抗血清を製し、BSAの抗
体を吸収させて除いた後、実施例1と同様にγG
分画を分取し、この分画が抗原に特異性のある抗
体であることを確かめた。 実施例 5 メタネフリンの抗原および抗体の産生 DL−メタネフリン塩酸塩20mgをメタノール1.0
mlに懸濁し、粉末とした無水マレイン酸20mgおよ
びトリエチルアミン1滴を加えた。室温で5分間
放置後メタノールを減圧留去した。残渣をエーテ
ル3mlで3回洗浄後エーテルを減圧留去した。冷
水0.7mlを加え残渣を溶解後Dowex50w−X8の
Na+型カラム(内径0.45cm、長さ0.5cm)に通し未
反応のメタネフリンを除いた。カラム通過液をた
だちに炭酸水素ナトリウム粉末を加えて中和した
のち冷水で全量を1.8mlとしマレイルメタネフリ
ン溶液とした。この液にBSA100mgを加えよく撹
拌し溶解させた後3M酢酸ナトリウム液0.3mlおよ
び37%ホルマリン液0.2mlを加えた。以下実施例
2と同様に反応させ、マレイル基を脱離させた
後、水で透析し凍結乾燥してメタネフリンの抗原
を得た。メタネフリンとBSAの結合比を280nmに
おける吸光度から求めると26.5モル・メタネフリ
ン/1モル・BSAであつた。 さらに実施例1と同様の方法で抗血清を調製
し、γG分画を分取しその分画が抗原に特異性の
ある抗体であることが確かめられた。 メタネフリンのラジオイムノアツセイ(RIA) シリコン処理した小試験管に、ホウ酸緩衝食塩
液(BBS:0.05Mホウ酸、0.15MNaCl,PH8.5)で
希釈した抗血清および試料溶液を210μl入れ、
3H−DL−メタネフリン(6000dpm=0.25pmol相
当量)を含んだBBS10μlを加え、37℃で30分間
インキユベーシヨン後、メンブレンフイルター
(Millipore Filter,0.65μm,φ15mm)で濾過
し、フイルターを氷冷したBBS0.3mlで洗浄し
た。次いでそのフイルターをジオキサン系シンチ
レーターに溶解してその放射能を測定する。 このようにして標準曲線を形成すると最終希釈
4400倍希釈の抗血清を使用して0.1〜5.0pmolの
DL−メタネフリンの定量が可能であつた。さら
に、このRIAの特異性を調べると次表に示すよう
に1%以上の交又性を示したのはDL−ノルメタ
ネフリンおよびDL−シネフリンだけであり、こ
のRIAが非常に特異性の高いものであることが判
つた。
フリン−BSAおよびドーパーBSAの移動度はそ
れぞれ約1.5と約1.9であつた。 抗体を産生させるには、前述のエマルジヨンを
牛、ウサギ、羊、ラツト、豚等の哺乳動物に投与
し、3〜4週間以後適当な期間追加免疫を行なつ
て抗血清を得る。 得られた抗血清は必要に応じて担体の抗体を吸
収した後二重拡散法(O.Ouchterlony,
Handbook of Experimental Immunology19,13
(1973))によつて各々の抗原に特異性のある抗体
から成ることが確かめられた。 さらにこの抗血清を尿素溶液で透析し、次にリ
ン酸塩緩衝液で透析を行なつた後DEAE−セルロ
ースのカラムを通してγG分画を分取し得られた
γG分画についても二重拡散法によつて調べた結
果各々の抗原に特異的な沈降反応を示すことが確
かめられた。 これらの抗体はラジオイムノアツセイなどのイ
ムノアツセイに用いられ、特に生体試料中のカテ
コールアミン類およびドーパの分析に有用であ
る。 実施例 1 ドーパの抗原の調製および抗体の産生 L−ドーパ197mgをN,N−ジメチルホルムア
ミド(DMF)2mlに懸濁させ、無水マレイン酸
200mgを加え溶解する。65〜70゜の温浴中で約30
分間反応させ、DMFを減圧留去後ベンゼン5ml
で3回洗つて未反応の無水マレイン酸を除く。残
渣に2〜3mlの冷水を加えて溶かし、氷冷しなが
ら冷した0.01N NaOHを少しずつ滴加し中和す
る。この溶液を凍結乾燥した後、メタノール少量
を加えて溶かし、酢酸エチルを加えて沈澱させ、
遠沈して沈澱を分取し減圧乾燥する。 上記の操作によつて得られたN−マレイルドー
パのナトリウム塩33.9mgまたは67.8mgおよび
BSA100mgを水1mlに溶解し、3M−酢酸ナトリウ
ム液0.3mlおよび7.5%ホルマリン液1mlを加え、
共せん試験管中で窒素ガス置換を行なつた後、遮
光して室温(18〜23゜)で5日間放置して反応さ
せる。反応後0.01NHClで1日透析し、小試験管
中で60゜、3時間加温する。さらにPBSで2日間
透析した後、PBSを加えて10〜20mg/mlの濃度に
調製する。鉄キレート発色によつてドーパと
BSAの結合比を求めた結果は16〜24モル・ドー
パ/1モル・BSAであつた。 抗原のPBS溶液とComplete Freund’s
adjuvantを等量混合し、W/O型エマルジヨンを
調製する。このエマルジヨンをウサギの後肢に皮
内注射する。投与量は抗原として2〜3mgであ
る。4週間後抗原のPBS溶液を耳静脈より抗原と
して1mgに相当する量を注射する。あるいは抗原
のPBS溶液を等量のIncomplete Freund’s
adjuvantと混合し、初回免疫と同様にW/O型エ
マルジヨンを調製して抗原量として1mgに相当す
る量を皮下注射する。更に1週間後採血し抗血清
を得る。得られた抗血清は先ず二重拡散法によつ
て特異的な抗体の産生を確かめる。 即ち、1.2%に相当する寒天をPBSに加温しな
がら溶解し、2mmの厚さにガラスプレート上に展
開する。冷後5mmの間隔で直径3mmの穴を6角形
の頂点の位置にあけ、さらに中心にもあける。中
心の穴に抗血清をそのままかあるいは1/2〜1/3に
PBSで希釈していつぱい入れ、外側の穴には各々
抗原およびBSAのPBS溶液(0.5〜1mg/ml)を交
互に入れ、1夜放置して沈降線の有無を見る。そ
の結果沈降線は抗原およびBSAの両方に見られ
たので、抗血清に等量のBSA溶液(1mg/ml)
を加え37゜で1時間放置し、さらに4゜で1夜放
置した後、生じた沈澱を遠沈して除く。この操作
によつて得られた抗血清はBSAによる沈降反応
を示さず抗原に対してのみ沈降反応を示した。次
にこの抗血清を透析チユーブに入れ、6M−尿素
で15時間透析した後、さらに0.007M−リン酸塩
緩衝液(0.007M−NaH2PO4,PH6.3)によつて2
日間透析した後、DEAE−Celluloseカラムに通
し、最初に流出して来る分画を分取する。この分
画は280nmにおける吸光度を測定することによつ
て流出の終点を判断でき、この分画(γG分画)
によつてOuchterlony法による沈降反応を調べた
結果、もとの抗血清と同様に抗原に特異的な沈降
反応を示した。このγG分画はさらに水で透析し
た後、凍結乾燥して保存する。 実施例 2 エピネフリンの抗原の調製および抗体の産生 L−エピネフリン183.2mgをメタノール5mlに
懸濁させ、無水マレイン酸200mgを加え溶解す
る。反応溶器中の空気を窒素ガスで置換し遮光し
て密閉した後、室温で撹拌しながら1時間反応さ
せる。メタノールを減圧留去後実施例1と同様に
中和し、若干の未反応のエピネフリンを
Dowex50WX−8(200〜400メツシユ)のNa型の
カラム(内径0.9cm、長さ7cm)を通し除去した
後、凍結乾燥した。 上記操作によつて得られたN−マレイルエピネ
フリンのナトリウム塩56.6mgあるいは84.9mgおよ
びBSA100mgを水1mlに溶解し、3M−酢酸ナトリ
ウム液0.3mlおよび7.5%ホルムマリン液1mlを加
え、以下実施例1と同様に反応させ、透析して10
〜20mg/mlの抗原のPBS溶液を得る。この抗原の
エピネフリンとBSAの結合比は16〜24モル・エ
ピネフリン/1モル・BSAであつた。 抗原のPBS溶液とComplete Freund’s
adjuvantを用いて実施例1と同様に操作して抗血
清を得る。得られた抗血清は同様にしてBSAの
抗体を吸収させて除いた後、実施例1と同様にγ
G分画を分取し、γG分画が抗原に特異性のある
抗体であることが確認された。 実施例 3 ノルエピネフリンの抗原の調製および抗体の産
生 L−ノルエピネフリン169mgをメタノール5ml
に懸濁させ、無水マレイン酸200mgを加え溶解す
る。室温で約10分間放置後、減圧濃縮し、ベンゼ
ン5mlで2回洗浄した後、メタノール・水混液
(1:1)に懸濁させ、酢酸エチルを加えてよく
振り混ぜた後遠沈する。得られた沈澱を乾燥して
N−マレイルノルエピネフリンの結晶性粉末を得
る。この化合物の元素分析値は理論値C53.93,
H4.90,N5.24、実測値C53.81,H5.02,N5.16%
である。このN−マレイルノルエピネフリンを冷
やしたNaHCO3溶液に添加して中和した後、凍結
乾燥しN−マレイルノルエピネフリンのナトリウ
ム塩を得た。 N−マレイルノルエピネフリンのナトリウム塩
86.7mgおよびBSA100mgを水1mlに溶解し、3M−
酢酸ナトリウム液0.3mlおよび7.5%ホルマリン液
1mlを加え、以下実施例2と同様に反応させて、
抗原のPBS溶液を得る。ノルエピネフリンとBSA
の結合比は20〜25モル・ノルエピネフリン/1モ
ル・BSAであつた。 さらに同様の方法で抗血清を得た。得られた抗
血清は同様にしてBSAの抗体を吸収させて除い
た後、実施例1と同様にγG分画を分取しγG画
が抗原に特異性のある抗体であることを確かめ
た。 実施例 4 ドーパミンの抗原の調製および抗体の産生 ドーパミン塩酸塩190mgをメタノール2mlに溶
解し、無水マレイン酸200mgを加えて溶解する。
室温で10分間放置後、氷冷した炭酸水素ナトリウ
ム液(0.3M)10mlを加えて中和する。この溶液
を凍結乾燥した後、少量のメタノールに溶解し、
酢酸エチルを加えて沈澱させ、遠沈して沈澱を分
取し、減圧乾燥してN−マレイルドーパミンのナ
トリウム塩を得た。N−マレイルドーパミンのナ
トリウム塩81.9mgおよびBSA100mgを水1mlに溶
解し、3M−酢酸ナトリウム液0.3mlおよび7.5%
ホルマリン液1mlを加え、以下実施例2と同様に
反応させ、抗原のPBS溶液を得た。ドーパミンと
BSAの結合比は20〜25モル・ドーパミン/1モ
ル・BSAであつた。 さらに同様の方法で抗血清を製し、BSAの抗
体を吸収させて除いた後、実施例1と同様にγG
分画を分取し、この分画が抗原に特異性のある抗
体であることを確かめた。 実施例 5 メタネフリンの抗原および抗体の産生 DL−メタネフリン塩酸塩20mgをメタノール1.0
mlに懸濁し、粉末とした無水マレイン酸20mgおよ
びトリエチルアミン1滴を加えた。室温で5分間
放置後メタノールを減圧留去した。残渣をエーテ
ル3mlで3回洗浄後エーテルを減圧留去した。冷
水0.7mlを加え残渣を溶解後Dowex50w−X8の
Na+型カラム(内径0.45cm、長さ0.5cm)に通し未
反応のメタネフリンを除いた。カラム通過液をた
だちに炭酸水素ナトリウム粉末を加えて中和した
のち冷水で全量を1.8mlとしマレイルメタネフリ
ン溶液とした。この液にBSA100mgを加えよく撹
拌し溶解させた後3M酢酸ナトリウム液0.3mlおよ
び37%ホルマリン液0.2mlを加えた。以下実施例
2と同様に反応させ、マレイル基を脱離させた
後、水で透析し凍結乾燥してメタネフリンの抗原
を得た。メタネフリンとBSAの結合比を280nmに
おける吸光度から求めると26.5モル・メタネフリ
ン/1モル・BSAであつた。 さらに実施例1と同様の方法で抗血清を調製
し、γG分画を分取しその分画が抗原に特異性の
ある抗体であることが確かめられた。 メタネフリンのラジオイムノアツセイ(RIA) シリコン処理した小試験管に、ホウ酸緩衝食塩
液(BBS:0.05Mホウ酸、0.15MNaCl,PH8.5)で
希釈した抗血清および試料溶液を210μl入れ、
3H−DL−メタネフリン(6000dpm=0.25pmol相
当量)を含んだBBS10μlを加え、37℃で30分間
インキユベーシヨン後、メンブレンフイルター
(Millipore Filter,0.65μm,φ15mm)で濾過
し、フイルターを氷冷したBBS0.3mlで洗浄し
た。次いでそのフイルターをジオキサン系シンチ
レーターに溶解してその放射能を測定する。 このようにして標準曲線を形成すると最終希釈
4400倍希釈の抗血清を使用して0.1〜5.0pmolの
DL−メタネフリンの定量が可能であつた。さら
に、このRIAの特異性を調べると次表に示すよう
に1%以上の交又性を示したのはDL−ノルメタ
ネフリンおよびDL−シネフリンだけであり、こ
のRIAが非常に特異性の高いものであることが判
つた。
【表】
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 アミノ基を保護したカテコールアミン誘導体
にホルムアルデヒドおよびポリペプチド又は蛋白
質を反応させて縮合体となし、次いで保護基を離
脱することを特徴とするカテコールアミン誘導体
の抗原の製法。 2 特許請求の範囲第1項の抗原を哺乳動物に投
与することを特徴とするカテコールアミン誘導体
の抗体の製法。
Priority Applications (4)
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---|---|---|---|
JP50024605A JPS51101120A (en) | 1975-02-28 | 1975-02-28 | Kogen oyobi kotainoseiho |
US05/659,588 US4122078A (en) | 1975-02-28 | 1976-02-19 | Antigens and antibodies of catecholamines |
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DE19762608096 DE2608096A1 (de) | 1975-02-28 | 1976-02-27 | Antigene und verfahren zu ihrer herstellung |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP50024605A JPS51101120A (en) | 1975-02-28 | 1975-02-28 | Kogen oyobi kotainoseiho |
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JPS51101120A JPS51101120A (en) | 1976-09-07 |
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Family
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Family Applications (1)
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-
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- 1976-02-27 FR FR7605626A patent/FR2302304A1/fr active Granted
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