JPS60227674A - 細胞交雑体及びその製造方法 - Google Patents
細胞交雑体及びその製造方法Info
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- JPS60227674A JPS60227674A JP59083864A JP8386484A JPS60227674A JP S60227674 A JPS60227674 A JP S60227674A JP 59083864 A JP59083864 A JP 59083864A JP 8386484 A JP8386484 A JP 8386484A JP S60227674 A JPS60227674 A JP S60227674A
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- JP
- Japan
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- cells
- cell
- human
- glomerular
- renal
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はヒト腎糸球体の特定成分と特異的に反応し他の
腎組織とは反応しない単クローン性抗体を分泌する細胞
交雑体に関するものである。
腎組織とは反応しない単クローン性抗体を分泌する細胞
交雑体に関するものである。
ヒト腎糸球体の疾患において、免疫グロブリン、補体成
分及び凝固因子等（これらを総合し１− て因子という）の腎糸球体への沈着が証明されており、
これらの因子の疾患への関与が示唆されている。
分及び凝固因子等（これらを総合し１− て因子という）の腎糸球体への沈着が証明されており、
これらの因子の疾患への関与が示唆されている。
然しなからこれらの因子と腎糸球固有細胞との関係につ
いては不明な点が多い。例えば糸球体で増殖している細
胞の由来、細胞の増殖機構。
いては不明な点が多い。例えば糸球体で増殖している細
胞の由来、細胞の増殖機構。
障害された細胞の変性機序などである。一方腎糸球体細
胞の適切なマーカーが欠如しているためこれらに関する
基礎的研究が妨げられている。
胞の適切なマーカーが欠如しているためこれらに関する
基礎的研究が妨げられている。
本発明はかかる現状に鑑み鋭意研究を行った結果、開発
されたものである。即ち本発明は（１） ヒト腎糸球体
上皮細胞と特異的に反応する単クローン抗体を分泌する
抗体産生細胞と腫瘍細胞とよりなることを特徴とする細
胞交終体（２） ヒト腎糸球体メサンノウムと特異的に
反応する単クローン抗体を分泌する抗体産生細胞と腫瘍
細胞とよシなることを特徴とする細胞交雑体 （３） ヒト胎児腎皮質細胞（ｈ ７ ＦＫＣ）で高等
動物を免疫賦与し、核高等動物より得られたＢリ２− ン・臂球と腫瘍細胞とを融合せしめることを特徴とする
細胞交雑体の製造方法 である。
されたものである。即ち本発明は（１） ヒト腎糸球体
上皮細胞と特異的に反応する単クローン抗体を分泌する
抗体産生細胞と腫瘍細胞とよりなることを特徴とする細
胞交終体（２） ヒト腎糸球体メサンノウムと特異的に
反応する単クローン抗体を分泌する抗体産生細胞と腫瘍
細胞とよシなることを特徴とする細胞交雑体 （３） ヒト胎児腎皮質細胞（ｈ ７ ＦＫＣ）で高等
動物を免疫賦与し、核高等動物より得られたＢリ２− ン・臂球と腫瘍細胞とを融合せしめることを特徴とする
細胞交雑体の製造方法 である。
本発明は免疫原として方今７ケ月の早産死亡胎児よりの
腎細胞を使用するものである。即ち骸胎児よシ摘出した
腎よシ滅菌生理食塩水中でその被膜と髄質部分とを除去
し皮質部分を１ｎ立方程度の細片にした後、その組織片
を３７℃、５分間トリプシン処理し、１０００ｒ、ｐ、
ｍにて５分間遠心する。との沈渣を２０傳ウシ胎児血清
（ＦＢＳ）加ＲＰＭＩ−１６４０培地に浮遊し、５０ｍ
！フラス：Ｉ（Ｆａｌｃｏｎす３０１３）に５ｄづつ分
注後３７℃、５％ＣＯ２インキュベータで培養する。こ
のようにして培養した細胞を３〜４代継代培養し１０％
ジメチルスルホキシド加ＦＢＳ−ＲＰＭＩ １６４０培
地に浮遊せしめた後、液体窒集中で凍結保存する。
腎細胞を使用するものである。即ち骸胎児よシ摘出した
腎よシ滅菌生理食塩水中でその被膜と髄質部分とを除去
し皮質部分を１ｎ立方程度の細片にした後、その組織片
を３７℃、５分間トリプシン処理し、１０００ｒ、ｐ、
ｍにて５分間遠心する。との沈渣を２０傳ウシ胎児血清
（ＦＢＳ）加ＲＰＭＩ−１６４０培地に浮遊し、５０ｍ
！フラス：Ｉ（Ｆａｌｃｏｎす３０１３）に５ｄづつ分
注後３７℃、５％ＣＯ２インキュベータで培養する。こ
のようにして培養した細胞を３〜４代継代培養し１０％
ジメチルスルホキシド加ＦＢＳ−ＲＰＭＩ １６４０培
地に浮遊せしめた後、液体窒集中で凍結保存する。
斯くして得た細胞は必要時において融解後２〜４代継代
培養した時点で免疫源となる。
培養した時点で免疫源となる。
免疫方法は、上記の細胞と１０５ａｅ’ｌ １ ／ｗｌ
の濃度と１フロイントコンプリードアシユバンドと共に
高等動物好ましくはマウス或はラットに投与した稜、２
週間の間隔で細胞単独で腹腔内に２回投与する。最終投
与（４回目）は腹腔内と静脈内に投与する。
の濃度と１フロイントコンプリードアシユバンドと共に
高等動物好ましくはマウス或はラットに投与した稜、２
週間の間隔で細胞単独で腹腔内に２回投与する。最終投
与（４回目）は腹腔内と静脈内に投与する。
而して本発明は免疫細胞１０に対して腫瘍細胞１を混合
するものであシ、通常液体培地（ＲＰＭＩ １６４０
）に浮遊した状態の免疫細胞１〜１０ＸＩＯ個と同様に
浮遊状態の腫瘍細胞１〜１０×１０ 個とを混合し、遠
心操作によって培地を除去し、次いでポリエチレングリ
コール又ハセンダイウイルス等の融合剤によって融合す
るものである。
するものであシ、通常液体培地（ＲＰＭＩ １６４０
）に浮遊した状態の免疫細胞１〜１０ＸＩＯ個と同様に
浮遊状態の腫瘍細胞１〜１０×１０ 個とを混合し、遠
心操作によって培地を除去し、次いでポリエチレングリ
コール又ハセンダイウイルス等の融合剤によって融合す
るものである。
即ち３×１０８個の抗体産生細胞と３Ｘ１０’個の腫瘍
細胞とを混合し１０００ｒｐｒｎ ＋ １０ｍＩｎ遠心
分離して上清をすてる。次いでポリエチレングリコール
４００４を１分間に滴下し、５分間静置しＲＰＭ１１６
４０培地を６〜７ ｍｌゆっくり添加し更にｌＱｍ／を
追加し、１１０００ｒｐにて５分間遠心操作を行って上
清をすてる。培養用培地（ＲＰＭ１１６４０＋１５％Ｆ
ＢＳ ）で浮遊する。細胞の濃度はｌ Ｘ １０ ｃａ
１ｍｓ／ＩＩ／にする。次いで２４穴或は９６穴の培養
グレートで培養する。翌日培地の半量をＨＡＴ培地に変
える。なおＨはヒポキサンチン。
細胞とを混合し１０００ｒｐｒｎ ＋ １０ｍＩｎ遠心
分離して上清をすてる。次いでポリエチレングリコール
４００４を１分間に滴下し、５分間静置しＲＰＭ１１６
４０培地を６〜７ ｍｌゆっくり添加し更にｌＱｍ／を
追加し、１１０００ｒｐにて５分間遠心操作を行って上
清をすてる。培養用培地（ＲＰＭ１１６４０＋１５％Ｆ
ＢＳ ）で浮遊する。細胞の濃度はｌ Ｘ １０ ｃａ
１ｍｓ／ＩＩ／にする。次いで２４穴或は９６穴の培養
グレートで培養する。翌日培地の半量をＨＡＴ培地に変
える。なおＨはヒポキサンチン。
Ａはアミノｆｑリン、Ｔはサイミジンである。
この場合２〜３日毎に同培地半Ｉ：を交換する（１０日
間培養）。１０日後培地の半量をＨＴ培地に変える。上
記のＨＡＴ培地からアミノププ、シンを除いた培地であ
る。この場合２〜３日毎に同培地半−１を交換する（１
０日間培養）。
間培養）。１０日後培地の半量をＨＴ培地に変える。上
記のＨＡＴ培地からアミノププ、シンを除いた培地であ
る。この場合２〜３日毎に同培地半−１を交換する（１
０日間培養）。
次いでＲＰＭＴ１６４０とＦＢＳ １５％で培養し、活
性検索（間接螢光抗体法）で陽性を示したＷｅ ｌ １
（穴〕の細胞を培養し、限界希釈法によりクローン化す
る。
性検索（間接螢光抗体法）で陽性を示したＷｅ ｌ １
（穴〕の細胞を培養し、限界希釈法によりクローン化す
る。
なお限界希釈法とは細胞を５コア／ ｍｌ程度に希釈し
培養する。９６ Ｗｅ １１の培養スケールは２００μ
！であるから理論上は１コ／ Ｗｅ ｌ １ となる。
培養する。９６ Ｗｅ １１の培養スケールは２００μ
！であるから理論上は１コ／ Ｗｅ ｌ １ となる。
このようにして増殖した細胞は１つの性質をもつクロー
ンである。
ンである。
本発明において使用する細胞のうち、抗体産生細胞とは
抗原に対し特異的な抗体を産生ずる８９７２１球である
。
抗原に対し特異的な抗体を産生ずる８９７２１球である
。
又腫瘍細胞はリンパ球が腫瘍化した細胞であシ、試験管
内にて無限に増殖する。
内にて無限に増殖する。
クローン化された細胞の培養上清は、すでに一般化され
た免疫学的測定法例えば放射線免疫測定法（ＲＩＡ ）
、酸素免疫測定法（ＥＩＡ ） 、螢光抗体法（ＩＦ
’ ）を用いることによシ抗体の特異性を検索する。特
に本発明においては腎組織凍結切片を用いた螢光抗体法
或は培養細胞を用いたＥＩＡ法並に螢光抗体法が適して
いる。
た免疫学的測定法例えば放射線免疫測定法（ＲＩＡ ）
、酸素免疫測定法（ＥＩＡ ） 、螢光抗体法（ＩＦ
’ ）を用いることによシ抗体の特異性を検索する。特
に本発明においては腎組織凍結切片を用いた螢光抗体法
或は培養細胞を用いたＥＩＡ法並に螢光抗体法が適して
いる。
本発明の交雑体よル得られる単クローン性抗体は腎疾患
の診断試薬として多大が価値を有するものである。
の診断試薬として多大が価値を有するものである。
次に本発明の実施例について説明する。
実施例
Ｂａ１ｆ／ｓマウスに免疫賦与するためヒト胎児腎皮質
細胞（ｈ −ＦＫＣ）を１０５ｃａｌｌｓ ７’ｓｌ
の濃度でフロイドコンブリートアジュノ９ンドと共に筋
肉内に投与し以後２週問おきに同様の方法で、ｈ −Ｆ
ＫＣを細胞単独で腹腔内に２回投与後更に２週間稜に腹
腔内と静脈内に投与した。最終免疫薮４日目にマウスの
牌よりリン・９球浮遊液をステンレスメツシーを通して
得た後混入する赤血球を０．２８％）・リス塩化アンモ
ニウム緩衝液で除去１〜、これをＲＰＭＩ］６４０培地
で２回洗い生細胞をトリバンプルー法で測定しその数を
調整した。
細胞（ｈ −ＦＫＣ）を１０５ｃａｌｌｓ ７’ｓｌ
の濃度でフロイドコンブリートアジュノ９ンドと共に筋
肉内に投与し以後２週問おきに同様の方法で、ｈ −Ｆ
ＫＣを細胞単独で腹腔内に２回投与後更に２週間稜に腹
腔内と静脈内に投与した。最終免疫薮４日目にマウスの
牌よりリン・９球浮遊液をステンレスメツシーを通して
得た後混入する赤血球を０．２８％）・リス塩化アンモ
ニウム緩衝液で除去１〜、これをＲＰＭＩ］６４０培地
で２回洗い生細胞をトリバンプルー法で測定しその数を
調整した。
また腫瘍細胞（ＮＳ −１）はＲＰＭ１１６４０に１０
％ＦＢＳを含む培地で培養し、対数増殖期細胞を遠心に
よシ採集しトリパンブルー法により生細胞を測定しその
数を調整した。
％ＦＢＳを含む培地で培養し、対数増殖期細胞を遠心に
よシ採集しトリパンブルー法により生細胞を測定しその
数を調整した。
上記の牌臓細胞３×１０ コに対し腫瘍細胞３×１０コ
を混合し１００１０００ｒｐ分遠心後、上清をすてその
ペレットに４５％ポリエチレングリコールｌ ｒＲ２を
加えて５分間静置した。その後ＲＰＭＩ１６４０培地を
６ｄゆっくシ加え、更に１０ｍ１の同培地を加え遠心（
１０００ｒ、ｐ、ｍ ５分）し、上清をすてた後、ＲＰ
ＭＩ１６４０培地に１５％Ｆ心Ｓを加えた培地で腫瘍細
胞がｌＸｌ０ ｃｅｌｌ／Ｒ／ となるように浮遊し、
２４穴（Ｎｕｎｃ）の培養グレートで培養した。約２４
時間昔培地の半量をＨＡＴ培地で置きかえた。次いでＨ
ＡＴ培地を２〜３日毎に半量づつ交換し１ｏ日後にＨＴ
培地を同様の方法で交換した。更に１ｏ日後同様の操作
で培地をＲＰＭ１１６４０に１５％Ｆ６Ｓを加えた培地
で置換した。この間増殖してくる細胞の培養上清をクリ
オスタットにより作製した正常ヒト腎組織を用いた間接
螢光抗体法により抗体活性を検索し腎糸球体メサンジウ
ムと上皮細胞に特異的に反応する細胞群を選別した。
を混合し１００１０００ｒｐ分遠心後、上清をすてその
ペレットに４５％ポリエチレングリコールｌ ｒＲ２を
加えて５分間静置した。その後ＲＰＭＩ１６４０培地を
６ｄゆっくシ加え、更に１０ｍ１の同培地を加え遠心（
１０００ｒ、ｐ、ｍ ５分）し、上清をすてた後、ＲＰ
ＭＩ１６４０培地に１５％Ｆ心Ｓを加えた培地で腫瘍細
胞がｌＸｌ０ ｃｅｌｌ／Ｒ／ となるように浮遊し、
２４穴（Ｎｕｎｃ）の培養グレートで培養した。約２４
時間昔培地の半量をＨＡＴ培地で置きかえた。次いでＨ
ＡＴ培地を２〜３日毎に半量づつ交換し１ｏ日後にＨＴ
培地を同様の方法で交換した。更に１ｏ日後同様の操作
で培地をＲＰＭ１１６４０に１５％Ｆ６Ｓを加えた培地
で置換した。この間増殖してくる細胞の培養上清をクリ
オスタットにより作製した正常ヒト腎組織を用いた間接
螢光抗体法により抗体活性を検索し腎糸球体メサンジウ
ムと上皮細胞に特異的に反応する細胞群を選別した。
抗体活性検索により陽性を示した細胞群を限界希釈法に
よシフローン化を図った。更にこれらの中で抗体活性が
認められた細胞群を同様にクローリングすることによ）
得られたクローンをより確実性のあるものとした。なお
操作を実施するにあたり細胞の安定化のためクローニン
グ時にＭＳ −１培養上清をＣｏｎｄｌｔｌｏｎｉｎｇ
ｍ＠ｄｌｕｍとして用い５ｅｅｌｌ／肩ｌの割合て培
養した。クローニングによシえられたＨ−１３及びＨ−
４と称するクローンはＭ１表に示す如く夫々腎糸球メサ
ンジウム、瞥斉襠准及び上皮細胞と夫々特異的に反応し
た。
よシフローン化を図った。更にこれらの中で抗体活性が
認められた細胞群を同様にクローリングすることによ）
得られたクローンをより確実性のあるものとした。なお
操作を実施するにあたり細胞の安定化のためクローニン
グ時にＭＳ −１培養上清をＣｏｎｄｌｔｌｏｎｉｎｇ
ｍ＠ｄｌｕｍとして用い５ｅｅｌｌ／肩ｌの割合て培
養した。クローニングによシえられたＨ−１３及びＨ−
４と称するクローンはＭ１表に示す如く夫々腎糸球メサ
ンジウム、瞥斉襠准及び上皮細胞と夫々特異的に反応し
た。
第１表
クローン名 上皮細胞 メサンジウム
Ｈ−４−１−−
Ｈ−１３＋
彦お上記においてヒト腎組織を用いた間接螢光抗体法と
は正常の腎細胞を一７０℃にて瞬間凍結しクリオスタッ
トを用いて約２〜５ミクロンに細断しスライドグラスに
貼着した標本に交雑体を培養したときの上清を加え３７
℃で３０分反応させる。次いでＰＢＳにて３同洗浄しＦ
ＩＴＣラベル抗マウスグロブリン血清を加え３７℃で３
０分反応させる。次いでＰＢＳにて３回洗浄しグリセリ
ン緩衝液で封入し螢光顕微鏡で観察する。なお被検上清
に抗体が含まれない場合には螢光を発しない。
は正常の腎細胞を一７０℃にて瞬間凍結しクリオスタッ
トを用いて約２〜５ミクロンに細断しスライドグラスに
貼着した標本に交雑体を培養したときの上清を加え３７
℃で３０分反応させる。次いでＰＢＳにて３同洗浄しＦ
ＩＴＣラベル抗マウスグロブリン血清を加え３７℃で３
０分反応させる。次いでＰＢＳにて３回洗浄しグリセリ
ン緩衝液で封入し螢光顕微鏡で観察する。なお被検上清
に抗体が含まれない場合には螢光を発しない。
以上詳述した如く本発明によれば腎糸球固有細胞に特異
的に反応する単クローン性抗体を分泌する交雑体をうる
等顕著な効果を有する亀のである。
的に反応する単クローン性抗体を分泌する交雑体をうる
等顕著な効果を有する亀のである。
第１頁の続き
■Ｉｎｔ、ＣＩ、’ 識別記号 庁内整理番号０発 明
者 荒 川 正 昭 新潟市旭町通１＠発 明 者
風 間 隆 新潟市旭町通１番町７５４番地 新潟大学
医学部内 番町７５４番地 新潟大学医学部内 昭和 年 月 日 特許庁長官 志 賀 学 殿 １、事件の表示 特願昭５９−８３８６４号 ２、発明の名称 細胞交雑体及びその製造方法 ３、補正をする者 事件との関係 特許出願人 デン化生研株式会社 ４、代理人 ５、自発補正 ６、補正の対象 明１１ｉｌｌ書 正の内容 １．、明細書第２頁第４行においてｒ＊糸球固有細胞」
とある全「宵糸球体固有細胞」と訂正する。
者 荒 川 正 昭 新潟市旭町通１＠発 明 者
風 間 隆 新潟市旭町通１番町７５４番地 新潟大学
医学部内 番町７５４番地 新潟大学医学部内 昭和 年 月 日 特許庁長官 志 賀 学 殿 １、事件の表示 特願昭５９−８３８６４号 ２、発明の名称 細胞交雑体及びその製造方法 ３、補正をする者 事件との関係 特許出願人 デン化生研株式会社 ４、代理人 ５、自発補正 ６、補正の対象 明１１ｉｌｌ書 正の内容 １．、明細書第２頁第４行においてｒ＊糸球固有細胞」
とある全「宵糸球体固有細胞」と訂正する。
（２） 同第３頁第１７行において「免役源」とあるを
「免疫原」と訂正する。
「免疫原」と訂正する。
、（３２同第３貴第１８行）第１９行において「細胞ト
・・・・・・フロイントコンプリードアシュバンド」と
あるを「細胞（１０’ ｏｅｌｌＶ鵠、） Ｙ ７ ロ
イ＼トコンプリートアジュパント」と訂正する。
・・・・・・フロイントコンプリードアシュバンド」と
あるを「細胞（１０’ ｏｅｌｌＶ鵠、） Ｙ ７ ロ
イ＼トコンプリートアジュパント」と訂正する。
（４） 同第４負第１５７丁におし）てｒ４００４を」
とあるンｒ ４９００をｌ′−」と訂正する。
とあるンｒ ４９００をｌ′−」と訂正する。
（５） 同第４頁第１８行において「′ｊてる。」とう
るを「すて、」と訂正する。
るを「すて、」と訂正する。
同第６頁轡３行において「−上清は」とあるを「上清中
の抗体の特異性を」とｄ］圧する。
の抗体の特異性を」とｄ］圧する。
（７） 同第６頁第６行〜第７行において「抗体の特異
性」とあるを削除する。
性」とあるを削除する。
（８） 同第６頁第１５行においてＦＢａｌｆ／ｅＪと
あるビ「Ｂａ １ ｂ／ａ’ Ｊと訂正する。
あるビ「Ｂａ １ ｂ／ａ’ Ｊと訂正する。
２−
（９１同第６頁第１７行において「フロイドコンプリー
ドアシュバンド」とあるン「フロ河コンシリードアツユ
パント」と訂正する。
ドアシュバンド」とあるン「フロ河コンシリードアツユ
パント」と訂正する。
ｔｏＩ 同第７貞第３行において「０２８％」とあるを
「０８３％」とＫｊ圧する。
「０８３％」とＫｊ圧する。
旧）同第７ｊＡ第１ｒ行において１１月０ ’ ｃｅ］
、１／ｙ＄ Ｊとあるをｒ１ｘ＋ｏ’○ｅ ］、 ］、
ｓ ／ｍ薊と訂正する。
、１／ｙ＄ Ｊとあるをｒ１ｘ＋ｏ’○ｅ ］、 ］、
ｓ ／ｍ薊と訂正する。
Ｑ４ 同第８貞第１６行においてｌ−５ｃｅｌｌ−／ｙ
ｄｊとある’ｆ ｒ５ｃｅｌｌｓ／ｄＪとに１正する。
ｄｊとある’ｆ ｒ５ｃｅｌｌｓ／ｄＪとに１正する。
ｌＪ５ノ 同第８貴第２０行において１腎系球体」とあ
るン削除する。
るン削除する。
Ｑ４／ 同第９負第１６竹において「腎糸球敗１有」と
あるぞ「腎糸球体固有」とＫ」正する。
あるぞ「腎糸球体固有」とＫ」正する。
３ −
Claims (3)
- （１） ヒト腎糸球体上皮細胞と特異的に反応する単ク
ローン抗体を分泌する抗体産生細胞と腫瘍細胞とを融合
せしめてなる細胞交雑体。 - （２） ヒト腎糸球体メサンジウムと特異的に反応する
単クローン抗体を分泌する抗体産生細胞と腫瘍細胞とを
融合せしめてなる細胞交雑体。 - （３） ヒト胎児腎皮質細、胞（、ｈ −ＦＫＣ）で高
等動物を免疫賦与し、該高等動物よ）得られるＢリン・
９球と腫瘍細胞とを融合せしめることを特徴とする細胞
交雑体の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59083864A JPS60227674A (ja) | 1984-04-27 | 1984-04-27 | 細胞交雑体及びその製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59083864A JPS60227674A (ja) | 1984-04-27 | 1984-04-27 | 細胞交雑体及びその製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60227674A true JPS60227674A (ja) | 1985-11-12 |
Family
ID=13814537
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59083864A Pending JPS60227674A (ja) | 1984-04-27 | 1984-04-27 | 細胞交雑体及びその製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60227674A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63112994A (ja) * | 1986-10-31 | 1988-05-18 | Hajime Inamoto | モノクロ−ナル抗体を用いた尿中腎抗原の測定による腎障害の診断方法 |
| JPH06296496A (ja) * | 1993-10-27 | 1994-10-25 | Hajime Inamoto | 尿中腎抗原の測定による腎障害の診断方法に用いるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ |
-
1984
- 1984-04-27 JP JP59083864A patent/JPS60227674A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63112994A (ja) * | 1986-10-31 | 1988-05-18 | Hajime Inamoto | モノクロ−ナル抗体を用いた尿中腎抗原の測定による腎障害の診断方法 |
| JPH06296496A (ja) * | 1993-10-27 | 1994-10-25 | Hajime Inamoto | 尿中腎抗原の測定による腎障害の診断方法に用いるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ |
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