JPS5825439B2 - ヒト副甲状腺ホルモンの製造方法 - Google Patents
ヒト副甲状腺ホルモンの製造方法Info
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- JPS5825439B2 JPS5825439B2 JP55187011A JP18701180A JPS5825439B2 JP S5825439 B2 JPS5825439 B2 JP S5825439B2 JP 55187011 A JP55187011 A JP 55187011A JP 18701180 A JP18701180 A JP 18701180A JP S5825439 B2 JPS5825439 B2 JP S5825439B2
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/575—Hormones
- C07K14/635—Parathyroid hormone, i.e. parathormone; Parathyroid hormone-related peptides
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
- C12N5/0635—B lymphocytes
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- C12N5/0636—T lymphocytes
-
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- C12N2510/02—Cells for production
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ヒト副甲状腺ホルモン（ｈｕｍａｎＰａｒａ
ｔｈｒｏｉｄ Ｈｏｒｍｏｎｅ ％以下ｈＰＴＨと略称
する。
ｔｈｒｏｉｄ Ｈｏｒｍｏｎｅ ％以下ｈＰＴＨと略称
する。
）の製造方法に関する。ｈＰＴＨは、副甲状腺細胞が産
生ずるホルモンで、活性型ビタミンＤ３の合成調節作用
およびカルシウムの吸収促進作用などを有する。
生ずるホルモンで、活性型ビタミンＤ３の合成調節作用
およびカルシウムの吸収促進作用などを有する。
そして、ｈＰＴＨを大量に安価に製造する方法は未だ知
られていない。
られていない。
本発明者は、ｈＰＴＨの大量供給を目ざして鋭意研究を
続けたところ、意外にも、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト
由来のリンパ芽球様細胞が、その増殖速度が大きく、細
胞当りのｈＰＴＨ産生産も犬でｈＰＴＨ産生細胞として
好適であることを見いだし、本発明を完成した。
続けたところ、意外にも、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト
由来のリンパ芽球様細胞が、その増殖速度が大きく、細
胞当りのｈＰＴＨ産生産も犬でｈＰＴＨ産生細胞として
好適であることを見いだし、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来
のリンパ芽球様細胞をヒト以外の温血動物体内に移植し
、または、その温血動物の体液の供給を受けながら増殖
させた細胞からｈＰＴＨを産生せしめることを特徴とす
るｈＰＴＨの製造方法に関するものである。
のリンパ芽球様細胞をヒト以外の温血動物体内に移植し
、または、その温血動物の体液の供給を受けながら増殖
させた細胞からｈＰＴＨを産生せしめることを特徴とす
るｈＰＴＨの製造方法に関するものである。
本発明の方法は、インビトロで培養させる場合とは違っ
て、ｈＰＴＨの産生量が大であるだけでなく、高価な血
清などを含む栄養培地が不要または大幅に節約でき、更
に細胞増殖中の維持管理も極めて容易である。
て、ｈＰＴＨの産生量が大であるだけでなく、高価な血
清などを含む栄養培地が不要または大幅に節約でき、更
に細胞増殖中の維持管理も極めて容易である。
すなわち、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来のリンパ芽
球様細胞をヒト以外の温血動物体内に移植し、またはそ
の動物の体液の供給を受けることのできるチャンバーに
収容し、通常の飼育をすれば、温血動物体から供給され
る栄養物を含有する体液を利用してその細胞が容易に増
殖しうるのである。
球様細胞をヒト以外の温血動物体内に移植し、またはそ
の動物の体液の供給を受けることのできるチャンバーに
収容し、通常の飼育をすれば、温血動物体から供給され
る栄養物を含有する体液を利用してその細胞が容易に増
殖しうるのである。
更にインビトロで培養させる場合と比較して、この細胞
の増殖が安定していること、その増殖速度の大きいこと
、得られる細胞量の大きいこと、更には細胞当りのｈＰ
ＴＨ産生量の大きいことが特徴である。
の増殖が安定していること、その増殖速度の大きいこと
、得られる細胞量の大きいこと、更には細胞当りのｈＰ
ＴＨ産生量の大きいことが特徴である。
本発明で使用するヒト由来のリンパ芽球様細胞は、ｈＰ
ＴＨ産生能を有し、おつヒト以外の温血動物の体内に移
植して容易に増殖するものであればよい。
ＴＨ産生能を有し、おつヒト以外の温血動物の体内に移
植して容易に増殖するものであればよい。
例えば、副甲状腺細胞、副甲状腺腫瘍細胞などの本来ｈ
ＰＴＨ産生能を有する細胞及び肺癌細胞、卵巣腫瘍細胞
、腎癌細胞、肝癌細胞などの異所性ｈＰＴＨ産生能を有
する細胞からｈＰＴＨ産生遺伝子を、ポリエチレングリ
コールやセンダイウィルスなどを利用する細胞融合の手
段や、ＤＮＡリガーゼ、制限酵素（ヌクレアーゼ）、Ｄ
ＮＡポリメラーゼなどの酵素を利用する遺伝子組換えの
手段などによって導入したヒト由来のリンパ芽球様細胞
まだは異所性ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来のリンパ
芽球様細胞などが好適である。
ＰＴＨ産生能を有する細胞及び肺癌細胞、卵巣腫瘍細胞
、腎癌細胞、肝癌細胞などの異所性ｈＰＴＨ産生能を有
する細胞からｈＰＴＨ産生遺伝子を、ポリエチレングリ
コールやセンダイウィルスなどを利用する細胞融合の手
段や、ＤＮＡリガーゼ、制限酵素（ヌクレアーゼ）、Ｄ
ＮＡポリメラーゼなどの酵素を利用する遺伝子組換えの
手段などによって導入したヒト由来のリンパ芽球様細胞
まだは異所性ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来のリンパ
芽球様細胞などが好適である。
これらリンパ芽球様細胞の利用は、ヒト以外の温血動物
に移植する時、その宿主動物の細胞と混りにくい軟腫癌
を形成しやすく、摘出後の分散も容易なので生きたヒト
リンパ芽球様細胞の採取に極めて有利である。
に移植する時、その宿主動物の細胞と混りにくい軟腫癌
を形成しやすく、摘出後の分散も容易なので生きたヒト
リンパ芽球様細胞の採取に極めて有利である。
このようなヒトリンパ芽球様細胞には、ヒト白血病もし
くはヒト悪性リンパ腫由来の細胞株が適しており、例え
ばナマルバ（Ｎａｍａｌｖａ ）細胞、ＢＡＬＬ−１
細胞、ＮＡＬＬ−１細胞、ＴＡＬＬ−１細胞、ＪＢＬ細
胞などの公知ヒト由来細胞株が、特に有利に使用しうる
。
くはヒト悪性リンパ腫由来の細胞株が適しており、例え
ばナマルバ（Ｎａｍａｌｖａ ）細胞、ＢＡＬＬ−１
細胞、ＮＡＬＬ−１細胞、ＴＡＬＬ−１細胞、ＪＢＬ細
胞などの公知ヒト由来細胞株が、特に有利に使用しうる
。
本発明におけるｈＰＴＨの製造方法に使用する温血動物
は、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来のリンパ芽球様細
胞が増殖しうるものであればよく、例えば、ニワトリ、
・・トなどの鳥類、イヌ、ネコ、サル、ヤギ、ブタ、ウ
シ、ウマ、ウサギ、モルモット、ラット、ヌードラット
、ハムスター、普通マウス、ヌードマウスなどの補乳類
などが使用できる。
は、ｈＰＴＨ産生能を有するヒト由来のリンパ芽球様細
胞が増殖しうるものであればよく、例えば、ニワトリ、
・・トなどの鳥類、イヌ、ネコ、サル、ヤギ、ブタ、ウ
シ、ウマ、ウサギ、モルモット、ラット、ヌードラット
、ハムスター、普通マウス、ヌードマウスなどの補乳類
などが使用できる。
これらの動物にヒト由来のリンパ芽球様細胞を移植する
と好ましくない免疫反応を起すおそれがあるので、その
反応をできるだけおさえるだめに使用する動物はできる
だけ幼若な状態、すなわち卵、胚、胎児、新生期、幼少
期のものの方が好ましい。
と好ましくない免疫反応を起すおそれがあるので、その
反応をできるだけおさえるだめに使用する動物はできる
だけ幼若な状態、すなわち卵、胚、胎児、新生期、幼少
期のものの方が好ましい。
また、これら動物に、例えば約２００〜６００レムのエ
ックス線若しくはガンマ線を照射するか、またけ抗血清
若しくは免疫抑制剤などを注射するなどの前処置をほど
こして、免疫反応を弱めて移植してもよい。
ックス線若しくはガンマ線を照射するか、またけ抗血清
若しくは免疫抑制剤などを注射するなどの前処置をほど
こして、免疫反応を弱めて移植してもよい。
使用する動物がヌードマウスやヌードラットなどの免疫
不全動物の場合には、成長したものであっても免疫反応
が弱いので、これら前処置を必要とすることなく、培養
株化されたヒト由来のリンパ芽球様細胞が移植でき、急
速に増殖するので、特に好都合である。
不全動物の場合には、成長したものであっても免疫反応
が弱いので、これら前処置を必要とすることなく、培養
株化されたヒト由来のリンパ芽球様細胞が移植でき、急
速に増殖するので、特に好都合である。
また、ヒト由来のリンパ芽球様細胞を、例えば先ずハム
スターに移植し、増殖させた後、この細胞を更にヌード
マウスに移植するなどのように、ヒト以外の温血動物間
で移植してヒト由来のリンパ芽球様細胞の増殖をより安
定化したり、更にそれらから産生されるｈＰＴＨ量を増
加させることも自由である。
スターに移植し、増殖させた後、この細胞を更にヌード
マウスに移植するなどのように、ヒト以外の温血動物間
で移植してヒト由来のリンパ芽球様細胞の増殖をより安
定化したり、更にそれらから産生されるｈＰＴＨ量を増
加させることも自由である。
この場合、同種間、同属間は勿論のこと、同線間、同門
間移植であってもよい。
間移植であってもよい。
更に、ヒト由来のリンパ芽球様細胞を移植する動物体内
の部位は、移植した細胞が増殖しうる部位であればよく
、例えば原液体、静脈、腹腔、皮下など自由に選ばれる
。
の部位は、移植した細胞が増殖しうる部位であればよく
、例えば原液体、静脈、腹腔、皮下など自由に選ばれる
。
また、直接動物体内にヒト由来のリンパ芽球様細胞を移
植することなく、動物細胞の通過を阻止しうる多孔性の
沢過膜、例えば孔径約１０−７〜１０−５ｍを有するメ
ンブランフィルタ−１限外ｉｒ過膜、またはホローファ
イバーなどを設けた公知の各種形状、大きさの拡散チャ
ンバーを動物体内、例えば腹腔内に埋設して、動物体か
らの栄養物を含む体液の供給を受けつつ、そのチャンバ
ー内で培養株化されたヒト由来のリンパ芽球様細胞を増
殖させることができる。
植することなく、動物細胞の通過を阻止しうる多孔性の
沢過膜、例えば孔径約１０−７〜１０−５ｍを有するメ
ンブランフィルタ−１限外ｉｒ過膜、またはホローファ
イバーなどを設けた公知の各種形状、大きさの拡散チャ
ンバーを動物体内、例えば腹腔内に埋設して、動物体か
らの栄養物を含む体液の供給を受けつつ、そのチャンバ
ー内で培養株化されたヒト由来のリンパ芽球様細胞を増
殖させることができる。
また、必要に応じて、この拡散チャンバー内の栄養物を
含む体液を動物体内のそれと接続して潅流させるように
した拡散チャンバーを、例えば動物体表に取付け、拡散
チャンバー内のヒト由来のリンパ芽球様細胞の増殖状態
を透視できるようにすることも、また、この拡散チャン
バ一部分のみを着脱交換できるようにして動物を屠殺せ
ずに寿命−称細胞を増殖させて、動物個体当りの細胞生
産量を更に高めることもできる。
含む体液を動物体内のそれと接続して潅流させるように
した拡散チャンバーを、例えば動物体表に取付け、拡散
チャンバー内のヒト由来のリンパ芽球様細胞の増殖状態
を透視できるようにすることも、また、この拡散チャン
バ一部分のみを着脱交換できるようにして動物を屠殺せ
ずに寿命−称細胞を増殖させて、動物個体当りの細胞生
産量を更に高めることもできる。
これらの拡散チャンバーを利用する方法は、ヒト由来の
リンパ芽球様細胞が動物の細胞と直接接触しないので、
ヒト由来のリンパ芽球様細胞のみが容易に採取できるだ
けでなく、好ましくない免疫反応を起す心配も少ないの
で、免疫反応を抑制する前処置の必要もなく、各種温血
動物を自由に利用できる特徴を有している。
リンパ芽球様細胞が動物の細胞と直接接触しないので、
ヒト由来のリンパ芽球様細胞のみが容易に採取できるだ
けでなく、好ましくない免疫反応を起す心配も少ないの
で、免疫反応を抑制する前処置の必要もなく、各種温血
動物を自由に利用できる特徴を有している。
移植した動物の維持管理は、その動物の通常の飼育を続
けれはよく、移植後と言えども特別の取扱いは伺ら必要
としない。
けれはよく、移植後と言えども特別の取扱いは伺ら必要
としない。
ヒト由来のリンパ芽球様細胞を増殖させるだめの期間は
１〜２０間、通常１〜５週で目的を達することができる
。
１〜２０間、通常１〜５週で目的を達することができる
。
このようにして得られるヒト由来のリンパ芽球様細胞数
は、動物個体当り約１０７〜１０１２、捷たけそれ以上
に達することも見いだした。
は、動物個体当り約１０７〜１０１２、捷たけそれ以上
に達することも見いだした。
換言すれば、本発明で使用するｈＰＴＨの製造方法によ
り増殖させたヒト由来のリンパ芽球様細胞数は、動物個
体当り移植した細胞数の約１０２〜１０７倍、またはそ
れ以上にも達し、生体外の栄養培地に接種して増殖させ
る場合の約１０１〜１０６倍、またはそれ以上にも達し
て、ｈＰＴＨの製造のためにはきわめて好都合である。
り増殖させたヒト由来のリンパ芽球様細胞数は、動物個
体当り移植した細胞数の約１０２〜１０７倍、またはそ
れ以上にも達し、生体外の栄養培地に接種して増殖させ
る場合の約１０１〜１０６倍、またはそれ以上にも達し
て、ｈＰＴＨの製造のためにはきわめて好都合である。
このようにして増殖させたヒト由来のリンパ芽球様細胞
からｈＰＴＨを産生させる方法は自由である。
からｈＰＴＨを産生させる方法は自由である。
例えば、腹腔内の腹水に浮遊状で増殖したヒト由来のリ
ンパ芽球様細胞を採取し、または、皮下で増殖した腫瘤
を摘出し、分散させた後採取し、この細胞を約２０〜４
０°Ｃに保った栄養培地に細胞濃度が約１０’〜１０８
／ｍｌになるように浮遊させ、約１〜１００時間保つこ
とによって、ｈＰＴＨを産生させればよい。
ンパ芽球様細胞を採取し、または、皮下で増殖した腫瘤
を摘出し、分散させた後採取し、この細胞を約２０〜４
０°Ｃに保った栄養培地に細胞濃度が約１０’〜１０８
／ｍｌになるように浮遊させ、約１〜１００時間保つこ
とによって、ｈＰＴＨを産生させればよい。
この際、産生量をより高めるだめに、例えば、グリシン
、ロイシン、リジン、アルギニン、システィンなどのア
ミノ酸、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウ
ム、硫酸マグネシウムなどの塩類、ドーパミン、イソプ
ロテノール、エピネフリン、ノルエピネフワンなどのホ
ルモンなどの一種または二種以上の物質に共存させるこ
とも好都合である。
、ロイシン、リジン、アルギニン、システィンなどのア
ミノ酸、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウ
ム、硫酸マグネシウムなどの塩類、ドーパミン、イソプ
ロテノール、エピネフリン、ノルエピネフワンなどのホ
ルモンなどの一種または二種以上の物質に共存させるこ
とも好都合である。
このようにして産生されたｈＰＴＨは、公知の精製分離
法、例えば、塩析、透析、濾過、遠心分離、濃縮、凍結
乾燥などを行なうことによって容易に精製分離し、採取
することができる。
法、例えば、塩析、透析、濾過、遠心分離、濃縮、凍結
乾燥などを行なうことによって容易に精製分離し、採取
することができる。
、更に高度の精製を必要とする場合には、例えば、′イ
オン交換体への吸着・脱着、ゲル濾過、アフイニテイク
ロマトグラフイー、等電点分画、電気泳動などの公知の
方法を組み合せれば、最高純度ｈＰＴＨを採取すること
も可能である。
オン交換体への吸着・脱着、ゲル濾過、アフイニテイク
ロマトグラフイー、等電点分画、電気泳動などの公知の
方法を組み合せれば、最高純度ｈＰＴＨを採取すること
も可能である。
このようにして得たｈＰＴＨば、単一物質で、またはこ
れに他の一種若しくは二種以上の物質を含有せしめ、例
えば、注射薬、外用薬、内服薬、診断薬などとしてヒト
の疾患の予防、治療に有利に利用できる。
れに他の一種若しくは二種以上の物質を含有せしめ、例
えば、注射薬、外用薬、内服薬、診断薬などとしてヒト
の疾患の予防、治療に有利に利用できる。
ｈＰＴＨの産生量は、Ｊ、Ａ、Ｐａｒｓｏｎｓ ｅｔ
ａｌ、 ｚ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙｙ Ｖｏ
ｌ、 ９２ 、４５４〜４６２ （１９７３）に報告さ
れているバイオアッセイ法に準じて測定し、米国ＮＩＨ
より入手される１〜が１３００ＵＳＰ単位の標準品の重
量で表示される。
ａｌ、 ｚ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙｙ Ｖｏ
ｌ、 ９２ 、４５４〜４６２ （１９７３）に報告さ
れているバイオアッセイ法に準じて測定し、米国ＮＩＨ
より入手される１〜が１３００ＵＳＰ単位の標準品の重
量で表示される。
以下、２〜３の実施例を述べる。
実施例 １
副甲状腺腫瘍の患者から摘出、細切、分散させて得たヒ
ト副甲伏線＠瘍細胞とリンパ芽球様ナマルバ細胞（Ｎａ
ｍａｌｖａ ｃｅｌｌ ）とを１４０ｍＭＮａＣ１，５
４ｍＭＫＣｌ、１ｍＭＮａＨ２Ｐｏ４，２ｍＭＣａＣｌ
２を含有する塩類溶液にそれぞれ約１０’ ／ｍｌにな
るように浮遊させ、これに予め紫外線で不活化したセン
ダイウイルムを含有する前記塩類溶液を水冷下で混合し
、約５分後に３７°Ｃ恒温水槽に移して、約３０分間攪
拌しつつ細胞融合を起させ、リンパ芽球様ナマルバ細胞
にｈＰＴＨ産生能を導入した。
ト副甲伏線＠瘍細胞とリンパ芽球様ナマルバ細胞（Ｎａ
ｍａｌｖａ ｃｅｌｌ ）とを１４０ｍＭＮａＣ１，５
４ｍＭＫＣｌ、１ｍＭＮａＨ２Ｐｏ４，２ｍＭＣａＣｌ
２を含有する塩類溶液にそれぞれ約１０’ ／ｍｌにな
るように浮遊させ、これに予め紫外線で不活化したセン
ダイウイルムを含有する前記塩類溶液を水冷下で混合し
、約５分後に３７°Ｃ恒温水槽に移して、約３０分間攪
拌しつつ細胞融合を起させ、リンパ芽球様ナマルバ細胞
にｈＰＴＨ産生能を導入した。
このリンパ芽球様ナマルバ細胞を成長したヌードマウス
の腹腔内に移植した後、通常の方法で５週間飼育した。
の腹腔内に移植した後、通常の方法で５週間飼育した。
生じた腫瘤約１５ｇを摘出し、細切した後、トリプシン
含有の生理食塩水に懸濁して細胞を分散させた。
含有の生理食塩水に懸濁して細胞を分散させた。
この細胞を牛胎児血清１０Ｖ／Ｖ’％を補足したＥａｒ
ｌｅ 培地１９９ （ｐＨ７，２）で洗浄した後、Ｌ
−アルギニンを３０ｍＭ、ＣａＣｌ２を２０ｍＭ存在せ
しめた同培地に細胞濃度約１０５／ＴｆＬｌになるよう
に浮遊させ、３７°Ｃで４０時間保ってｈＰＳＥ（を産
生させた。
ｌｅ 培地１９９ （ｐＨ７，２）で洗浄した後、Ｌ
−アルギニンを３０ｍＭ、ＣａＣｌ２を２０ｍＭ存在せ
しめた同培地に細胞濃度約１０５／ＴｆＬｌになるよう
に浮遊させ、３７°Ｃで４０時間保ってｈＰＳＥ（を産
生させた。
その後、細胞を超音波処理し、得られる上清を用いてｈ
ＰｓＨ量を測定したところ、浮遊液ｍｌ当り約８３０■
であった。
ＰｓＨ量を測定したところ、浮遊液ｍｌ当り約８３０■
であった。
対照として、ヒト副甲状腺腫瘍細胞を牛胎児血清１０Ｖ
／Ｖ％を補足したＥａｒｌｅ培地１９９（ｐＨ７，２）
に３７°Ｃでインビトロで培養させ、得られる細胞を同
様に処理してｈＰＳＨを産生させたところ、浮遊液ｍｌ
当りわずかに約４ｎｇであった。
／Ｖ％を補足したＥａｒｌｅ培地１９９（ｐＨ７，２）
に３７°Ｃでインビトロで培養させ、得られる細胞を同
様に処理してｈＰＳＨを産生させたところ、浮遊液ｍｌ
当りわずかに約４ｎｇであった。
実施例 ２
腎癌患者から摘出、細切、分散させて得た腎癌細胞とリ
ンパ芽球ＪＢＬ球細胞とを実施例１の方法に準じて細胞
融合させ、リンパ芽球様ＪＢＬ細胞にｈＰＴＨ産生能を
導入した。
ンパ芽球ＪＢＬ球細胞とを実施例１の方法に準じて細胞
融合させ、リンパ芽球様ＪＢＬ細胞にｈＰＴＨ産生能を
導入した。
この細胞を、ウサギから公知の方法で調製した抗血清を
予め注射し免疫反応を弱めた新生児・・ムスターの皮下
に移植し、その後通常の方法で３週間飼育した。
予め注射し免疫反応を弱めた新生児・・ムスターの皮下
に移植し、その後通常の方法で３週間飼育した。
皮下に生じた腫瘤約ＩＣＢ１’を摘出し、細切した後、
コラゲナーゼ含有の生理食塩水に懸濁して細胞を分散さ
せた。
コラゲナーゼ含有の生理食塩水に懸濁して細胞を分散さ
せた。
この細胞をヒト血清ｓｖ／ｖ％を補足したＥａｇｌｅ
の最少基本培地（ｐＨ７，４）で洗浄した後、２０ｍ
Ｍ ＣａＣｌ２．２０ｍＭ’ドーパミンを存在せしめた
同培地に細胞濃度約１０６／ｗＬｌになるように浮遊さ
せ、３７°Ｃに２０時間保ってｈＰＴＨを産生させた。
の最少基本培地（ｐＨ７，４）で洗浄した後、２０ｍ
Ｍ ＣａＣｌ２．２０ｍＭ’ドーパミンを存在せしめた
同培地に細胞濃度約１０６／ｗＬｌになるように浮遊さ
せ、３７°Ｃに２０時間保ってｈＰＴＨを産生させた。
その産生量を測定したところ、浮遊液ｗＬｌ当り約１．
３μｇであった。
３μｇであった。
対照としてｈＰＴＨ産生能を導入したリンパ芽球様ＪＢ
Ｌ細胞を用いて実施例１と同様にインビトロで培養しｈ
ＰＴＨを産生させたところ、浮遊液ｍｌ当り約１６ｎｇ
にすぎなかった。
Ｌ細胞を用いて実施例１と同様にインビトロで培養しｈ
ＰＴＨを産生させたところ、浮遊液ｍｌ当り約１６ｎｇ
にすぎなかった。
実施例 ３
新生児ラットの静脈内へ、実施例１の方法に準じてヒト
卵巣腫瘍細胞からｈＰＴＨ産生能を導入したリンパ芽球
様ＢＡＬＬ−１細胞を移植した後、通常の方法で４週間
飼育した。
卵巣腫瘍細胞からｈＰＴＨ産生能を導入したリンパ芽球
様ＢＡＬＬ−１細胞を移植した後、通常の方法で４週間
飼育した。
生じた腫瘤的３０９を摘出し、実施例１と同様に処理し
てｈＰＳＨを産生させた。
てｈＰＳＨを産生させた。
その産生量は、浮遊液ｒｕｌ当り約９００ ｎｇであっ
た。
た。
対照として、ｈＰＳＨ産生能を導入したリンパ芽球様Ｂ
ＡＬＬ−１細胞をインビトロで培養し、ｈＰＳＨを実施
例１と同様に産生させたところ浮遊液ｍｌ当り約１０ｎ
ｇにすぎなかった。
ＡＬＬ−１細胞をインビトロで培養し、ｈＰＳＨを実施
例１と同様に産生させたところ浮遊液ｍｌ当り約１０ｎ
ｇにすぎなかった。
実施例 ４
成長した普通マウスに約４００レムのエックス線を照射
してマウスの免疫反応を弱めた後、その皮下に実施例１
の方法に従ってヒト肺癌細胞からｈＰＳＨ産生能を導入
したリンパ芽球様ＮＡＬＬ−１細胞を移植し、通常の方
法で３週間飼育した。
してマウスの免疫反応を弱めた後、その皮下に実施例１
の方法に従ってヒト肺癌細胞からｈＰＳＨ産生能を導入
したリンパ芽球様ＮＡＬＬ−１細胞を移植し、通常の方
法で３週間飼育した。
皮下に生じた腫瘤的１５ｇを摘出し、実施例２と同様に
処理してｈＰＳＨを産生させた。
処理してｈＰＳＨを産生させた。
その産生量は、浮遊液ｒｕｌ当り約１．２μｇであった
。
。
対照として、ｈＰＳＨ産生能を導入したリンパ芽球様Ｎ
ＡＬＬ−１細胞をインビトロで培養し、ｈＰＳＨを実施
例２と同様に産生させたところ、浮遊液ｍｌ当り約２０
ｎｇにすぎなかった。
ＡＬＬ−１細胞をインビトロで培養し、ｈＰＳＨを実施
例２と同様に産生させたところ、浮遊液ｍｌ当り約２０
ｎｇにすぎなかった。
実施例 ５
孔径約０．５ミクロンのメンブランフィルタ−を設けた
内容量的１０ｍ１のプラスチック製円筒型拡散チャンバ
ー内に、実施例１の方法に準じてヒト副甲状腺腫瘍細胞
からｈＰＳＨ産生能を導入したリンパ芽球様ＴＡＬＬ−
１細胞を生理食塩水で浮遊させ、これを成長したラット
の腹腔内に埋設した。
内容量的１０ｍ１のプラスチック製円筒型拡散チャンバ
ー内に、実施例１の方法に準じてヒト副甲状腺腫瘍細胞
からｈＰＳＨ産生能を導入したリンパ芽球様ＴＡＬＬ−
１細胞を生理食塩水で浮遊させ、これを成長したラット
の腹腔内に埋設した。
このラットを通常の方法で４週間飼育した後、コノ拡散
チャンバーを取り出した。
チャンバーを取り出した。
これにより得られだＴＡＬＬ−１細胞の濃度は約６×１
ｏ８／ｍｌであって、インビトロでの炭酸ガスインキュ
ベーター中で培養する場合の約１０２倍以上にも達する
ことがわかった。
ｏ８／ｍｌであって、インビトロでの炭酸ガスインキュ
ベーター中で培養する場合の約１０２倍以上にも達する
ことがわかった。
この細胞を実施例２と同様に処理してｈＰＴＨを産生さ
せた。
せた。
その産生量は、浮遊液ｍｌ当り約１．１μｙであった。
対照としてヒト副甲状腺腫瘍細胞を同様に拡散チャンバ
ー内に収容し、ラット腹腔内に埋設して同様に４週間飼
育し、細胞濃度的８ Ｘ １０６／ｍｌを得、この細胞
を用いて実施例２と同様にｈＰＴＨを産生させたところ
、浮遊液ｍｌ当り約３ｎｇにすかなかった。
ー内に収容し、ラット腹腔内に埋設して同様に４週間飼
育し、細胞濃度的８ Ｘ １０６／ｍｌを得、この細胞
を用いて実施例２と同様にｈＰＴＨを産生させたところ
、浮遊液ｍｌ当り約３ｎｇにすかなかった。
実施例 ６
３７℃で５日間保ったニワトリの受精卵に、実施例１の
方法に従ってヒト肺癌細胞からｈＰＴＨ産生能を導入し
たリンパ芽球様ＪＢＬ細胞を移植した後、３７°Ｃで１
週間保った。
方法に従ってヒト肺癌細胞からｈＰＴＨ産生能を導入し
たリンパ芽球様ＪＢＬ細胞を移植した後、３７°Ｃで１
週間保った。
この卵を割卵した後、増殖細胞を採取し、実施例１と同
様に処理してｈＰＴＨを産生させた。
様に処理してｈＰＴＨを産生させた。
その産生量は、浮遊液ｍｌ当り約７００ ｎｇであった
。
。
対照として、ヒト肺癌細胞を同様にニワトリの受精卵に
移植したが増殖は見られなかった。
移植したが増殖は見られなかった。
Claims (1)
- １ ヒト副甲状腺ホルモン産生能を有するヒト由来のリ
ンパ芽球様細胞をヒト以外の温血動物に移植し、または
その温血動物の体液の供給を受けながら増殖させた細胞
からヒト副甲状腺ホルモンを産生せしめることを特徴と
するヒト副甲状腺ホルモンの製造方法。
Priority Applications (7)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP55187011A JPS5825439B2 (ja) | 1980-12-30 | 1980-12-30 | ヒト副甲状腺ホルモンの製造方法 |
| GB8138588A GB2092596B (en) | 1980-12-30 | 1981-12-22 | Process for the production of human parathyroid hormone |
| CH8192/81A CH652748A5 (fr) | 1980-12-30 | 1981-12-22 | Production d'hormone parathyroidienne humaine. |
| IT49979/81A IT1172188B (it) | 1980-12-30 | 1981-12-22 | Procentimento per la produzione del l'ormone paratiroido umano |
| KR1019810005127A KR860001562B1 (ko) | 1980-12-30 | 1981-12-24 | 인체 부갑상선 호르몬의 제조방법 |
| FR8124270A FR2497102A1 (fr) | 1980-12-30 | 1981-12-28 | Production d'hormone parathyroidienne humaine |
| US06/584,017 US4621053A (en) | 1980-07-30 | 1984-02-27 | Process for the production of human peptide hormones |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP55187011A JPS5825439B2 (ja) | 1980-12-30 | 1980-12-30 | ヒト副甲状腺ホルモンの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS57115194A JPS57115194A (en) | 1982-07-17 |
| JPS5825439B2 true JPS5825439B2 (ja) | 1983-05-27 |
Family
ID=16198634
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP55187011A Expired JPS5825439B2 (ja) | 1980-07-30 | 1980-12-30 | ヒト副甲状腺ホルモンの製造方法 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5825439B2 (ja) |
| KR (1) | KR860001562B1 (ja) |
| CH (1) | CH652748A5 (ja) |
| FR (1) | FR2497102A1 (ja) |
| GB (1) | GB2092596B (ja) |
| IT (1) | IT1172188B (ja) |
Families Citing this family (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ZA874410B (en) * | 1986-06-24 | 1988-04-27 | Merrell Dow Pharma | Fusion products |
| US5010010A (en) * | 1986-10-22 | 1991-04-23 | Selmer-Sande, A.S. | Production of human parathyroid hormone from microorganisms |
| US5420242A (en) * | 1986-10-22 | 1995-05-30 | Kaare M. Gautvik | Production of human parathyroid hormone from microorganisms |
| WO1988003165A1 (en) | 1986-10-22 | 1988-05-05 | Selmer Sande A.S. | Production of human parathyroid hormone from microorganisms |
| GB9015327D0 (en) * | 1990-07-12 | 1990-08-29 | Tan Kim S | Hybridomas |
| SE9702401D0 (sv) | 1997-06-19 | 1997-06-19 | Astra Ab | Pharmaceutical use |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FI64952C (fi) * | 1977-06-15 | 1984-02-10 | Wistar Inst | Foerfarande foer framstaellning av genetiskt stabila cellinjer |
| JPS5562024A (en) * | 1978-10-31 | 1980-05-10 | Hayashibara Takeshi | Preventive and remedy for interferon-sensitive disease |
| GB2016015B (en) * | 1978-01-22 | 1982-05-06 | Hayashibara Co | Method of preparing interferon and preparations containing interferon |
| JPS5598118A (en) * | 1979-01-18 | 1980-07-25 | Hayashibara Takeshi | Preparation of type-2 interferon and drug containing the same |
-
1980
- 1980-12-30 JP JP55187011A patent/JPS5825439B2/ja not_active Expired
-
1981
- 1981-12-22 GB GB8138588A patent/GB2092596B/en not_active Expired
- 1981-12-22 CH CH8192/81A patent/CH652748A5/fr not_active IP Right Cessation
- 1981-12-22 IT IT49979/81A patent/IT1172188B/it active
- 1981-12-24 KR KR1019810005127A patent/KR860001562B1/ko not_active Expired
- 1981-12-28 FR FR8124270A patent/FR2497102A1/fr active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| GB2092596A (en) | 1982-08-18 |
| JPS57115194A (en) | 1982-07-17 |
| IT1172188B (it) | 1987-06-18 |
| IT8149979A0 (it) | 1981-12-22 |
| FR2497102B1 (ja) | 1984-11-09 |
| GB2092596B (en) | 1984-05-10 |
| CH652748A5 (fr) | 1985-11-29 |
| FR2497102A1 (fr) | 1982-07-02 |
| KR860001562B1 (ko) | 1986-10-08 |
| KR830007085A (ko) | 1983-10-14 |
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