JPH11513363A

JPH11513363A - 受容体非介在性イメージング剤

Info

Publication number: JPH11513363A
Application number: JP9511522A
Authority: JP
Inventors: ピアーズ，スーザン・エイチ; グッドボディ，アン; ポラック，アルフレッド; ソーンバック，ジョン
Original assignee: レゾリューション・ファーマスーティカルズ・インコーポレーテッド
Priority date: 1995-09-15
Filing date: 1996-09-09
Publication date: 1999-11-16
Also published as: WO1997010266A1; NO981133L; EP0853632A1; AU6867696A; NO981133D0; IL123606A0; CA2231352A1; US5688489A; US5837218A

Abstract

(57)【要約】検出可能なように標識された受容体非介在性細胞関連性化合物が、哺乳動物における標的部位の診断のためのイメージングにおける用途のために提供される。細胞関連性化合物は、直接標識、またキレート形成化合物を介して標識されてコンジュゲートを形成してもよい。このような細胞関連性化合物は、腫瘍部位および感染部位などの標的部位をイメージングするために特に有用である。

Description

【発明の詳細な説明】受容体非介在性イメージング剤発明の分野本発明は、イメージングに関する。詳細には、本発明は、標的部位の受容体非介在性イメージングに関する。発明の背景広範囲の標的部位、なかでも例えば炎症／感染症、腫瘍、および血栓の部位をイメージングする放射性医薬品が、開発されてきた。このような放射性医薬品のイメージング活性は、放射性医薬品と標的との間の標的部位における受容体の相互作用に基づく。この種の受容体介在性イメージングは、受容体の分布の相違により、標的部位と非標的部位とを区別することにおいて特異性をもたらすと考えられている。しかし、受容体介在性イメージングには、欠点も存在することが認められている。例えば、in vivo では内因性の受容体リガンドが存在するため、放射標識受容体リガンドまたは受容体の活性部分、つまり放射性医薬品と内因性の受容体リガンド間での競合の結果、かなりの量の内因性リガンドが標的の受容体部位で相互作用した場合に、標的のイメージングが低下してしまう。イメージング溶液がかなりの量の非標識受容体リガンドを含んでいる場合にも、同様の問題が生じ得る。標識リガンドと非標識リガンド間での受容体部位に対する競合の結果、高濃度の非標識リガンドが結合してしまうことも起こり得る。対象の標的上の受容体部位の数は固定されているため、これによっても、イメージングの低下が起こり得る。そこで、従来のイメージング法の欠点の少なくとも１つを解消した、標的部位をイメージングするための有効な手段が求められている。発明の概要本発明の目的は、標的部位をイメージングするための、受容体に基づかない手段を提供することである。本発明の一面においては、検出可能なように標識された受容体非介在性細胞関連性（cell-associating）化合物が提供される。本発明の別の面においては、キレーター（chelator）と結合した、受容体非介在性細胞関連性化合物を含むコンジュゲート（conjugate）が提供される。本発明のそのほかの面は、上記で定義した、検出可能なように標識された化合物またはコンジュゲートを含む診断用組成物、および哺乳動物において標的部位をイメージングするためにこのような組成物を使用する方法を含む。もう１つの面においては、コンジュゲート；還元剤；トランスキレート形成（ transchelating）剤；および緩衝剤を含むキットが提供される。本発明のこれら、およびそのほかの面は、以下の図面と関連して記載する：図面の簡単な説明図１は、本発明によるペプチドコンジュゲートのアミノ酸配列（配列番号１）を示し；図２は、合成ペプチドコンジュゲートのアミノ酸配列（配列番号２）を示し；図３は、分子モデルにより、図１のペプチド（Ａ）およびそのコンジュゲートした形（Ｂ）の細胞関連性成分の立体配置を図示し；そして図４は、分子モデルにより、図２のペプチド（Ａ）およびそのコンジュゲートした形（Ｂ）の細胞関連性成分の立体配置を図示している。発明の詳細な説明本発明は、哺乳動物において標的部位をイメージングするのに有用な、検出可能なように標識された受容体非介在性細胞関連性化合物を提供する。本明細書で使用するような「標的部位」の語は、異常細胞、例えば腫瘍細胞または病原性細胞（正常では、哺乳動物の体内に存在しないか、または正常では、標的部位においてはその濃度もしくはその位置で存在しない）を有する哺乳動物内における部位を示す。当業者であれば、病原性細胞は、細菌、ウイルス、真菌、および原虫などの原核および真核微生物を示すことは理解されよう。「細胞関連性化合物」の語は、本明細書では標的細胞を認識し、結び付く化合物を示すために用いている。この意味から、「受容体非介在性細胞関連性化合物」は、可逆的または非可逆的に、受容体非介在性の様式で、同じ標的に結合するバックグラウンドと比較した場合に統計学的に有意な程度に、標的細胞と相互作用するものである。「受容体非介在性」の語は、標的細胞の特定の受容体との相互作用を含まない、化合物の標的細胞との関連を示す。このような受容体非介在性の細胞との関連は、例えばフィルター分離アッセーを用いて測定することができる。このアッセーを用いると、受容体介在性の細胞との関連は、飽和可能である一方、受容体非介在性の細胞との関連は、飽和可能ではない。この方法で、２つの型の細胞との関連を、容易に区別することができる。本発明の細胞関連性化合物をイメージング剤としての性能において有効に機能させるためには、本化合物を、イメージングに用いる形、つまり標識され、そして／またはコンジュゲートした形に調製する際には、本化合物の本来の、細胞関連性の立体配置を保持していることが必須である。ここに詳細に記載するように、細胞関連性化合物は、直接標識されても、あるいは本化合物が一次コンジュゲートするキレーターを介して間接的に標識されてもよい。したがって、キレーターとコンジュゲートすると、そして／または放射性核種金属で標識すると、細胞関連性化合物の二次構造（架橋結合、α−らせん構造、およびβ−シートなど）は、その本来の状態の少なくとも約５０％、好ましくはその本来の状態の少なくとも約６５％まで保持されていなければならない（例えば、円偏光二色性試験を用いて測定）。本発明による受容体非介在性細胞関連性化合物の例としては、抗生物質性ペプチド（セクロピン、デフェンシン、タキプレシンおよびマガイニン（マガイニン −１、マガイニン−２、マガイニンＡ−Ｇ、およびそのほかのマガイニン関連ペプチドを含む）など）、昆虫およびlepidoptera larvaeおよびpupaeの血リンパ、カブトガニ（horseshoe crab）の血リンパ、ミツバチ毒由来のペプチド、両生類の皮膚および胃分泌物由来のペプチド、粘膜表面、胃およびそのほかの胃腸分泌物または白血球由来の哺乳動物関連同等物、ならびに上述の受容体非介在性細胞関連性化合物またはそのほかの適当な細胞関連性化合物の１つから誘導される機能的に同等なアナログが挙げられる。好ましい細胞関連性化合物は、微生物結合ペプチドであり、より好ましくは抗生活性を示すペプチドである。本発明によるそのほかの好ましい化合物は、ε−らせん構造の少なくとも一部を含むペプチドである。マガイニンファミリーのペプチドと、その機能的同等物が、本明細書に記載する特に好ましいイメージング用化合物である。受容体非介在性細胞関連性化合物の機能的に同等なアナログは、標的部位をイメージングするのに適当であり、その非誘導型と本質的に同じ方法で機能する所与の細胞関連性化合物の誘導体を含む。このような機能的に同等なアナログの例は、望ましくない攻撃から末端を保護するために機能するＮ−またはＣ−末端修飾を有するアナログであるが、これに限定されるものではない。「望ましくない攻撃」は、標的部位をイメージングする化合物の機能に影響を及ぼすであろう、化合物の末端におけるあらゆる型の酵素的、化学的または生化学的破壊を意味する。より大きい安定性を有するペプチドの調製においては、特にin vivo における使用のために、ペプチドのＮ−およびＣ−末端を修飾することは、当業界においては通常実施されている。このような修飾としては、有機合成の分野において通例使用されている保護基などの保護基を加えることが挙げられる。適当なＮ− 末端保護基としては、例えば式Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ここで、Ｒは、１〜５の炭素原子を含む直鎖または分岐鎖状の低級アルキル鎖である）の低級アルカノイル基が挙げられる。本発明化合物のＮ−末端基を保護するための好ましい基は、アセチル基、ＣＨ₃Ｃ（Ｏ）である。望ましくない攻撃からＮ−末端を保護するために有用なそのほかの基は、α−アミノ官能基を欠いたアミノ酸アナログである。適当なＣ−末端保護基としては、Ｃ−末端カルボキシルの炭素原子でケトンもしくはアミドを形成する基、またはカルボキシルの酸素原子でエステルを形成する基が挙げられる。ケトンおよびエステル形成基は、アルキル基、特に分岐もしくは非分岐の、１〜５の炭素原子を含む低級アルキル基（例えば、メチル、エチル、およびプロピル基）を含むが、一方、アミド形成基は、第一級アミン（−ＮＨ₂ ）などのアミノ官能基、またはアルキルアミノ官能基（例えば、メチルアミノ、エチルアミノ、ジメチルアミノ、ジエチルアミノ、メチルエチルアミノなどのモノアルキルアミノおよびジアルキルアミノ基）を含む。アミノ酸アナログもまた、本発明化合物のＣ−末端を保護するために適当である（例えば、アグマチンなどの脱カルボキシル化アミノ酸アナログ）。もちろん、本化合物の細胞関連性活性が、その取り込みによって悪影響を受けない限りは、化合物のＮ−およびＣ− 末端を攻撃から保護するために、替わりにより構造の複雑なＮ−およびＣ−保護基を取り入れてもよい。機能的に同等なアナログもまた、化合物がその標的と関連する活性に悪影響を及ぼさないアミノ酸の置換、欠失、もしくは付加を取り入れた化合物を含む。例えば、天然ではＬ−型で存在する、化合物のアミノ酸の１つ以上が、そのＤ−型で置換されていてもよい。替わりに、アミノ酸の１つ以上が、側鎖部分で誘導体化、あるいは異なるアミノ酸で完全に置換されていてもよい。例えば、側鎖部分の誘導体化は、酸化による損傷、つまり放射性核種標識剤または標識操作と関連するそのほかの試薬に曝されることによってペプチドが受ける損傷を避けるために必要であろう。ジスルフィド架橋などの架橋は、このような酸化による損傷に特に感受性を有するため、アミド含有橋によって置換することができる。別の例では、化合物が本来有する二次構造を保持することが重要であるため、化合物の立体配置の安定性には寄与していない化合物内の残基を、立体配置の安定性を増強する残基で置換することが望ましい。したがって、らせん傾向の小さい、化合物のε−らせん構造内の残基を、らせん傾向のより大きい残基と置換してもよい。例えばマガイニンペプチドの場合、８位のセリン、１３位のグリシン、および１８位のグリシンではそれぞれのらせん傾向が小さい。したがって、このような残基を、アラニン残基などのよりらせん傾向の大きい残基で置換するのが望ましい。替わりに、機能的に同等なアナログを、１つ以上の適当な化合物（場合により、細胞関連性ではない化合物に由来する領域を含む）から合成により誘導してもよい。この方法では、それぞれの化合物に由来する望ましい特性を、１つのハイブリッド化合物に取り込ませることができる。したがって、本発明により適当に合成により誘導されたアナログは、化合物の細胞関連性領域のみを単独に含むこともでき、また別の関係していない化合物に由来する領域と組み合わせて含むこともできる。本発明の細胞関連性化合物は、ペプチドであることができる。その機能的な同等物を包含するこのようなペプチド化合物は、Stewart et al．が Solid Phase Peptide Synthesis，2nd Edition，1984，Pierce Chemical Company，Rockfor， Illinois に、そして Bodanszky and Bodanszky が The Practice of Peptide S ynthesis，1984，Springer-Verlag，New York に記載したような固相ペプチド合成（ＳＰＰＳ）の標準的な、よく確立された技術により容易に調製することができる。最初に適当に保護されたアミノ酸を、そのカルボキシル基を介して、誘導体化された、不溶性のポリマー性支持体（架橋ポリスチレンまたはポリアミド樹脂など）に結合させる。「適当に保護された」は、アミノ酸のε−アミノ基、およびいかなる側鎖官能基の両方に保護基が存在することを意味する。側鎖保護基は、一般的には合成に際して使用する溶媒、試薬、および反応条件に安定であり、最終的なペプチド生成物に影響を及ぼさない条件下で除去しうる。ペプチドの一工程ごとの合成を、最初のアミノ酸からＮ−保護基を除去し、そこにオリゴペプチドの配列で次のアミノ酸のカルボキシル末端を結合させることによって行う。このアミノ酸もまた、適当に保護されている。到来するアミノ酸のカルボキシルを活性化させて、カルボジイミド、非対称酸無水物の形成のような反応性基の形成、またはヒドロキシベンゾトリアゾールもしくはペンタフルオロフェニルエステルなどの「活性エステル」基の形成により、結合したアミノ酸のＮ−末端と反応させることができる。好ましい固相ペプチド合成法としては、ε−アミノ保護基として tert−ブチルオキシカルボニルを用いたＢＯＣ法、およびアミノ酸残基のε−アミノを保護するために９−フルオレニルメチルオキシカルボニルを用いたＦＭＯＣ法が含まれ、このいずれの方法も当業界においてはよく知られている。組換え技術もまた、本発明のペプチド細胞関連性化合物を調製するために使用することができる。これは一般的に、所望のペプチドをコードするヘテロマーＤＮＡ分子をそこに発現可能なように取り込んだ、遺伝子操作された細胞源からの発現を伴う。各種宿主生物における産生を可能とする組換えＤＮＡ発現系、培養媒質および培養プロトコールは、当業界において確立されており、これらのシステムは、所望の化合物を製造する特定の目的のための通例の方法で用いることができる。異種ＤＮＡが発現可能なように取り込まれている細胞性宿主を培養することによって、本化合物を製造する。発現後、標準的な回収法を用いて、精製のために培養ブロスから生成物を回収する。ペプチドをコードするＤＮＡを得るには、各種の確立された技術を適用することができる。例えば、所望の化合物をコードするＤＮＡは、市販のヒトｃＤＮＡライブラリーからｃＤＮＡとして単離してもよい。しかし、所望のＤＮＡに到達するためのより迅速な方法は、遺伝子合成の分野における標準的な方法によるデノボ合成（これは、自動化されたＤＮＡ合成機における適当に保護されたヌクレオチド試薬の３’の５’との連続的な結合と、脱保護されたポリヌクレオチドのゲル精製による回収を含む）であることができる。オーバーハングコンプレメンタリティ（overhang complementarity）により、長さ約８０ヌクレオチドまでのオリゴヌクレオチド対の「ブロック」を調製し、正確に連続して結紮するブロック結紮（block ligation）法（例えば、Wosnick et al が Gene，1989，76: 153 に記載している）を用いてもよい。この「ブロック」法は、長さが約１００ヌクレオチドを超えるオリゴヌクレオチドの合成に特に有用である。替わりに、Barn ett et al.が Nucl．Acids Res.，1990，18(10): 3094 に記載した方法を用いて、所望のＤＮＡを全体として合成し、次に複製連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅してもよい。所望の細胞関連性化合物は、天然源から、当業界において良く確立された方法を用いて、単離により得ることもできる。例えば、本発明によるイメージングに適当である細胞関連性化合物の多くは、両生類または昆虫源に由来するものであり、このような源から容易に得ることができる。多数のそのほかの適当な化合物は、哺乳動物相対化合物（mammalian counterpart compound）であり、したがって容易に入手可能な哺乳動物源から単離することができる。ペプチド化合物は、単離、または化学的もしくは組換え技術のいずれかにより合成されたら精製する必要がある。精製のためには、利用可能な多くの標準的な方法があり、Ｃ₄−、Ｃ₈−またはＣ₁₈−シリカなどのアルキル化シリカカラムを用いた、逆相高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）が挙げられる。精製を行うには、有機含有率を上昇させた勾配移動相を一般に使用し、例えば、通常は少量のトリフルオロ酢酸を含有する水性緩衝液中のアセトニトリルが挙げられる。イオン交換クロマトグラフィーもまた、その電荷によりペプチドを分離するために使用することができる。上述の技術のいずれかを用いて得られたペプチドが、本発明の組成物における使用のための所望のペプチドであることを確認するために、ペプチド組成物の分析を行う。このような組成物分析は、ペプチドの分子量を測定するための高分解能質量分析法を用いて行うことができる。替わりに、ペプチドのアミノ酸含有量は、水性酸中でペプチドを加水分解し、そして混合物の成分をＨＰＬＣ、またはアミノ酸分析機を用いて分離、同定、定量することによって確認することができる。逐次的にペプチドを分解し、アミノ酸を順番に同定するタンパク質シーケネーター（sequenators）もまた、ペプチドの配列を明らかに決定するために使用することができる。いったん調製した、選択された細胞関連性化合物、またはその機能的同等物を、検出可能なように標識する、つまりその化合物を、診断イメージングの分野において認められている多数の技術のいずれかによって、in vivo で検出することができるように標識する。本発明による化合物を検出可能なように標識するために使用することのできる放射性核種金属は多数存在する。これらとしては、ガンマ放射体および陽電子放射体の両者がある。このような放射性核種の例は、フッ素−１８、銅−６４、銅−６５、ガリウム−６７、ガリウム−６８、臭素−７７、ルテニウム−９５、ルテニウム−９７、ルテニウム−１０３、ルテニウム−１０５、テクネチウム−９９ｍ（９９ｍＴｃ）、水銀−１０７、水銀−２０３、ヨウ素−１２３、ヨウ素−１２５、ヨウ素−１２６、ヨウ素−１３１、ヨウ素−１３３、インジウム−１１１、インジウム−１１３ｍ、レニウム−９９ｍ、レニウム−１０５、レニウム−１０１、レニウム−１８６、およびレニウム−１８８、テルリウム−１２１ｍ、テルリウム−１２２ｍ、テルリウム−１２５ｍ、ツリウム−１６５、ツリウム−１６７、ツリウム−１６８、ならびにそれらから誘導される窒化物または酸化物であるが、これらに限定されるわけではない。標準的なシンチグラフィー技術が、放射性核種により放射される放射能の検出にまず用いられるが、この目的に使用される装置は、用いる放射性核種、およびイメージングする標的の特性に応じてまちまちであることができる。ガンマカメラおよびレクチリニアースキャナー（rectilinear scanner）はそれぞれ、単一平面における放射能を検出するのに有用である装置を示す。ＳＰＥＣＴ（Single Photon Em ission Computed Tomography）およびＰＥＴ（Positron Emission Tomography）装置は、１を超える次元における放射能を検出することのできる装置を示す。本発明による化合物を検出可能なように標識するために使用する最も好ましい放射性核種は、９９ｍＴｃである。この放射性核種は、約６時間の望ましい半減期を有するため、注射後の速やかなイメージングが可能であるなど望ましい特徴を多数呈する。またこれは比較的安全であるため、３０mCi を超える量を注射することができるが、患者の放射線被爆量は低い。また、これは、９９Ｍｏ−９９ｍＴｃ発生機から好都合に入手できる。９９ｍＴｃなどの放射性核種の使用においては、標識する細胞関連性化合物に金属を結合させてコンジュゲートを形成するためには、金属キレーター化合物が必要である。この点で、このようなコンジュゲートを当初に調製し、次に放射性核種金属で標識することができ、あるいは替わりの方法では、金属標識キレーターを調製し、次いで選択した細胞関連性化合物と結合させることができることも理解されよう。診断イメージングの目的のためには、キレーターは、放射性核種による標識のための反応性官能基を有し、そして放射性核種金属と結合すると、生理学的条件下で安定である錯体を形成する化合物である。多くのキレーター化合物が、この目的のために開発されてきた。通常使用されているキレート形成剤は、例えば、ＤＴＰＡ（ジエチレントリアミン五酢酸）およびエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を含む。放射性核種金属標識を本発明による化合物に結合させるために適当であるそのほかのキレーターは、Advanced Inorganic Chemistry，4thedition ，1980，F.A．Cotton and G．Wilkinson，John Wiley & Sons などの標準的な教科書に記載されている。しかし、当業者によって認められているように、最も適当な金属キレート形成剤は、キレート形成する金属により、例えばその特定の配位に応じていろいろである。９９ｍＴｃを本発明の細胞関連性化合物に結合させるのに特に適当であるキレーターは、金属配位立体配置としては、４個の窒素および硫黄の金属配位性原子の組み合わせである。例としては、Ｎ₄、Ｎ₃Ｓ、およびＮ₂Ｓ₂立体配置を有する化合物がある。しかしこのようなキレーターは、酸素、リンおよびセレンを含むそのほかの金属配位性原子を含んでいてもよい。本発明の実施態様の１つにおいては、係属中の米国特許出願第０８／１７１，７３７、０８／２７９，１５５および０８／２９９，６３６号(これらのそれぞれの内容は、参考のために本明細書に取り入れる)に記載されているそれらのようなＮ₃Ｓキレーターを、本発明のコンジュゲートを調製するために使用する。別の実施態様においては、係属中の米国特許出願第０８／１１６，５０４号（これも参考のために本明細書に取り入れる）に記載されているそれらのようなＮ₂Ｓ₄キレーターを、本発明のコンジュゲートを調製するために使用する。本発明の特定の実施態様において、そして本明細書の特定の実施例に記載しているように、ペプチドコンジュゲートを調製するために使用するキレーターの１つは、ジメチル−グリシン−セリン−システイン（Ａｃｍ）である。このキレーターを取り入れた特定のコンジュゲートのアミノ酸配列については、図１を参照。コンジュゲートは、細胞関連性化合物のＮ−末端残基を、カルボキシル基または活性化エステルなどのキレーターの適当な官能基と反応させることによって形成することができる。例えば、本発明によるコンジュゲートは、ＥＤＴＡのエチレン鎖上のカルボキシル置換基と、選択した化合物のＮ−末端残基との間の結合を介して、キレーター、ＥＤＴＡを取り込んでいることができる。この型のＥＤＴＡ誘導体の合成は、Arya et al．(Bioconjugate Chemistry 1991，2:323)に記載されており、ここにはＥＤＴＡの４個の配位するカルボキシル基が、ｔ−ブチル基でそれぞれブロックされている一方、エチレン鎖上のカルボキシル置換基は、遊離しており、ペプチドのアミノ基と反応して、所望のコンジュゲートを形成することができる。望ましくは、本コンジュゲートは、本来ペプチド性であるキレーターを取り込んでいる。このため、細胞関連性化合物もまたペプチドである場合に、合成または組換え技術のいずれかを用いてインタクトなコンジュゲートを調製することができる。例えば、細胞関連性化合物およびキレーター化合物の持続的合成は、固相ペプチド合成を用いて行うことができる。したがって、本化合物およびキレーターは、ペプチドのＣ−末端残基から出発して、キレーターのＮ−末端残基で終了することによって完全に合成することができる。この型の完全合成は、本発明によるマガイニンコンジュゲートおよびセクロピン−メリチンコンジュゲート合成のための特定の実施例に詳細に記載されている。替わりに、コンジュゲートを調製するための組換え技術を選択するのであれば、コンジュゲート全体をコードするＤＮＡを、上述のデノボ合成法を用いて調製することができ、次にＤＮＡを発現のための細胞源に導入することができる。コンジュゲートはさらに、細胞関連性化合物をキレーターと結び付けるのに役立ちながらも、化合物の標的能またはキレーターの金属結合能には悪影響を及ぼさない結合基（linking group）を取り込んでいることができる。このような結合基は、キレーターと細胞関連性化合物の間に存在することによって、キレーターが、細胞関連性化合物の標的能に干渉しないことを確実にするのに有用である。適当な結合基は、化合物およびキレーターの両方に結び付くための反応性基を有するよう修飾されたペプチド鎖およびアルキル鎖を含む。実施態様の１つにおいては、結合基は、１〜５のアミノ酸残基、特に１〜３の残基のペプチドである。好ましい結合基は、−Ｇｌｙ−および−Ｇｌｙ−Ａｓｐ−Ｇｌｙ−、ならびに例えば１またはそれ以上の−φＡｌａ−残基の鎖を含む合成アミノ酸残基の鎖を含む。選択した細胞関連性化合物およびキレーターがともに天然のペプチドである場合は、ペプチド鎖が好ましい結合基である。この方法では、コンジュゲートは、上述したように、固相または液相技術を用いて完全に合成することができる。別の実施態様においては、結合基は、細胞関連性化合物のＮ−末端アミノ基を、アルキル鎖上の第一の官能基（カルボキシル基または活性化エステルなど）と反応させることによってコンジュゲートに取り込ませたアルキル鎖である。次にアルキル鎖上の第二の官能基を、キレーター上の適当な基と反応させることによってキレーターをアルキル鎖と結合させて、コンジュゲートの形成を完了する。アルキル鎖上の第二の官能基は、キレーター上の官能基とは反応性であり、好ましくは本化合物のＮ−末端残基とは反応性ではない置換基から選択する。例えば、キレーターが、カルボキシル基または活性化エステルなどの官能基を取り込んでいる場合、アルキル鎖結合基の第二の官能基は、望ましくはアミノ基である。望ましくない生成物の形成を避けるために、コンジュゲートの形成には、存在する官能基の保護および脱保護が必要であるのは理解されよう。このような保護および脱保護の技術の使用は、上述している。本発明の診断用組成物における使用に適当であるには、細胞関連性化合物またはコンジュゲートは、「医薬品グレード」の純度を有して、標的部位をイメージングする目的での哺乳動物への投与に適当でなければならない。したがって、細胞関連性化合物は、均一かつ確実な組成、例えばペプチドの場合は均一かつ確実なアミノ酸組成を有していなければならず、異質の物質を含有していてはならない。さらに、本化合物は、国が定めた医薬品規制機関が規定する判断基準に合致していなければならない。細胞関連性化合物またはコンジュゲートの標識は、配位化学の分野で通常行われている各種方法で行うことができる。ある例では、放射性核種は、本化合物に直接取り込まれている。このような直接標識は、ヨウ素またはインジウムの放射性同位元素を用いた場合に行う。これについては、クロラミン−Ｔ反応が、選択した化合物をヨウ素で標識するのに使用する標準的反応である一方、ＤＴＰＡを用いる反応が、一般的には選択した化合物をインジウムで標識するのに用いられる。コンジュゲートを標識する場合には、コンジュゲートを調製し、次に金属放射性核種で標識することができることが、当業者には理解されよう。しかし、許容できる替わりの方法では、キレーター自体を、選択した金属放射性核種で標識し、次に細胞関連性化合物と結び付けて、標識されたコンジュゲートを形成することもでき、これは「前標識リガンド(prelabelled ligand)」法と称される方法である。特定の実施態様においては、選択したコンジュゲートを放射性核種であるテクネチウム−９９ｍで標識するために、以下の一般的操作を用いる。コンジュゲートをエタノールなどの水性アルコールに溶解することによって、コンジュゲート溶液を調製する。この溶液を脱気して、酸素を除去する。コンジュゲートのキレーターの金属錯体形成原子上の保護基を適当な試薬により除去する。標識の工程においては、過テクネチウム酸ナトリウムを、過テクネチウム酸塩を還元するのに十分な量の還元剤（塩化第一スズなど）とともに、コンジュゲート溶液に加え、溶液を加熱する。得られた標識されたコンジュゲートを次に反応混合物から、例えばクロマトグラフィーにより単離する。替わりの方法では、トランスキレート形成（transchelation）反応を用いてコンジュゲートを標識することができる。テクネチウム源は、コンジュゲートとのリガンド交換を促進する置換活性リガンドと錯体形成したテタネチウムの溶液である。トランスキレート形成のための適当なこのような置換活性リガンドは、酒石酸塩、クエン酸塩、およびグルコヘプトン酸塩を含む。本発明のコンジュゲートを標識するための別の方法は、係属中の米国特許出願第０８／１５２，６８０号に記載されており、その内容を参考のために本明細書に取り入れる。要約すると、コンジュゲートを固相支持体に、支持体とキレーター金属錯体形成原子の１つとの間で形成された結合を介して固定する。コンジュゲートの開裂はしたがって、金属標識試薬による溶離によって達成され、標識されたコンジュゲートが得られる。好ましくは、錯体形成硫黄原子を、マレイミドなどの硫黄保護基で官能化された支持体に結び付ける。本発明による検出可能なように標識された細胞関連性化合物またはコンジュゲートを含む診断用組成物を、哺乳動物における潜在的な標識部位（例えば、腫瘍部位および感染部位を含む）のイメージングにおける使用のために調製する。本明細書で使用する「感染」の語は、細菌、ウイルス、真菌、原虫、およびそのほかの微生物を含む微生物による、宿主の身体組織への侵入および増殖を意味する。本明細書で使用する「哺乳動物」の語は、ヒト；ネコ、イヌ、およびウマなどの飼い慣らされた動物；ウシ、ブタ、ヤギ、およびヒツジなどの家畜；ならびに飼い慣らされていない哺乳動物を包含することを意味している。診断用組成物は、診断に有効な量の、検出可能なように標識された細胞関連性化合物を、薬学的に許容しうる担体とともに含む。これに関連して、「薬学的に許容しうる」の語は、薬学および獣医学の分野における使用が許容しうることを意味し、つまり非毒性であり、化合物が標的部位をイメージングする機能において化合物の活性に悪影響を及ぼさない担体を意味する。「診断に有効な量」の語は、バックグラウンドのシグナルと比較した場合に、標的部位の検出を可能とするのに十分な、標識された細胞関連性化合物またはコンジュゲートの量を意味する。これに関し、標識された化合物が標的部位をイメージングする有効性を測定するために、「関心領域(region of interest)」比を用いることができる。本発明の目的のために、ＲＯＩ比は、本発明による標識された化合物を投与した際の、標的部位（感染部位など）とコントロール部位（炎症を起こしている、または起こしていない非感染部位など）間での、得られた放射能の計数比である。１を超える、好ましくは２を超えるＲＯＩ比により、標識された化合物の標的部位に対する特異性が示される。望ましくは、本発明による所与の標識化合物のＲＯＩ比は、少なくとも５であり、もっとも好ましくはＲＯＩ比は、少なくとも１０である。標識された化合物の標的部位をイメージングする有効性に基づいて、つまり、本明細書の特定の実施例に記載したラット動物モデルなどの適当なモデルを用いて決定したＲＯＩ比に基づいて、診断に有効な量を決定することができる。 In vivo 投与用組成物を調製するのに有用な薬学的に許容しうる担体は、ペプチドを基礎とする薬物の処方に用いる通例の担体（希釈剤、賦形剤など）を含む。薬物の処方についての一般的ガイダンスのためには、「Remington's Pharmace utical Sciences」、17th Ed.，Mack Publihing Company，Easton，Penn.，1985 を参照。認められているように、本発明による組成物を調製するために使用する薬学的担体は、罹患している哺乳動物の診断に用いる投与剤型に応じる。本発明の実施態様の１つによると、検出可能なように標識された化合物は、静脈内注射による投与用に処方され、そのため、無菌の発熱性物質非含有の形の、場合により緩衝、等張とした水溶液として提供される。したがって、本化合物は、蒸留水、またはより望ましくは食塩水もしくは５％デキストロース溶液として投与することができる。本発明化合物の水に対する溶解度は、所望であれば、溶解性増強剤（セチルトリメチルアンモニウムブロミドもしくはクロリドなど）を組成物に配合することによって、またはその酸付加塩を調製することによって増大させることができる。マンニトール、スクロースまたはラクトースなどのリオプロテクタント(lyoprotectants)、ならびに酢酸塩、クエン酸塩、およびリン酸塩などの緩衝系が、処方に含めてもよいそのほかの成分であり、血清アルブミンなどの増量剤(bulking agent)も同様である。放射性分解による損傷を予防する、または最小限にとどめるために安定剤もまた、本処方に加えることができ、このような化合物としては、アスコルビン酸、ゲンチシン酸、またはそのほかの適当な抗酸化剤などの化合物が含まれる。診断における使用のためには、本化合物またはコンジュゲートの正確な投与量は、適度に制御された臨床試験において確立され、正常組織で得られたバックグラウンドシグナルと比較して標的部位の組織を検出するのに十分な量（耐えられない副作用を惹起せず、許容しえない放射能被爆がない）の、検出可能なように標識された細胞関連性化合物に対応する。診断のための有効な処置としては、１ mCi〜１００mCI／７０kg（ヒトの平均体重）の範囲の量の静脈内投与が包含されると予想される。しかし、所望の診断効果を得るのに必要とされる正確な投与量は、処置を行う特定の個体、つまり年齢、性別、および一般的な健康状態、ならびに標識として使用する放射性核種金属によって異なる。この点について、７０ kg 当たり５mCi〜４０mCi の範囲の投与量が、テタネチウム標識診断薬としては代表的であることを記載する。本発明の特定の実施態様においては、図１に示す標識された細胞関連性化合物を、感染とは関連していない炎症部位に対して感染部位を、特異的に診断するために使用した。上述したように、「感染」の語は、その範囲内に、細菌、ウイルス、真菌、原虫、およびそのほかの微生物による身体の侵入を包含する。一方、「炎症」の語は、例えば感染性微生物、自己免疫の過程、極端な温度、電気もしくは化学的刺激、または機械的な外傷のいずれかによって惹起される傷害によって誘導される防衛反応を意味する。特定の実施例に記載するように、図１の標識されたペプチドは、各種微生物細胞に結合することが認められた。そこで、感染部位または非感染性の炎症部位のいずれかを有する動物に、図１の標識された細胞関連性化合物を注射するin vivo 実験を行った。注射後適当な時間間隔で、これらの部位のそれぞれに蓄積された放射能を測定した。この実験の結果、本ペプチドが、非感染性炎症部位に対して感染部位を特異的にイメージングするために、診断的意味で有用であることが証明された。この標識されたペプチドはまた、腫瘍細胞にも結合することが認められ、腫瘍と関連した状態の診断および／または治療におけるその用途が示された。本発明の別の面においては、コンジュゲート；還元剤；緩衝剤；そしてトランスキレート形成剤を含むキットが提供される。本キットは、本発明による診断的用途のための検出可能なように標識された化合物を調製するのに必要である全成分を含む（臨床部位で発生させるのが望ましい検出可能な標識を除く）。本キットの成分は、上述したような水性溶媒による再構築により注射可能な溶液に容易に調製される粉末剤型で提供することができる。次にこの溶液を、適当な量の検出可能な標識、つまり用いるイメージング技術に適当である放射性核種金属と混合し、速やかに標的部位をイメージングするために用いることができる。本発明の実施態様を、以下の特定の実施例を参考にさらに記載するが、制限するものではないと解釈される。実施例１−コンジュゲートの合成そのアミノ酸配列を図１に示すコンジュゲートを、古典的な９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（ＦＭＯＣ）合成を用いて調製した。この場合、ＦＭＯＣ−セリンをプレロードしておいた２−メトキシ−４−アルコキシ−ベンジルアルコール樹脂を、Applied Biosystems 433A peptide synthesizer で用いた。カラムからの樹脂−ペプチドの開裂、および引き続いての樹脂からのペプチドの開裂を、図２のペプチドコンジュゲートの合成のための実施例５に記載のものなどの標準的技術を用いて行った。コンジュゲートの単離および精製もまた、実施例５に記載するものなどの標準的技術を用いて行った。実施例２−コンジュゲートの９９ｍＴｃによる標識実施例１に記載したコンジュゲートを、以下のようにトランスキレート形成剤として使用するグルコン酸塩とのトランスキレート形成反応を用いて標識した。コンジュゲートの溶液（溶液Ａ）を食塩水（２mg/mL）で調製した。溶液２００μL を３mLのバキュテーナー(vacutainer)に注入した。セプタを有する空の３ mLのバキュテーナーに、グルコン酸ナトリウム（１０mg/mL）１mL を加えた。塩化第一スズ溶液（２０mg/mL）２０μLをグルコン酸塩に直接注入し、この溶液（溶液Ｂ）を緩やかに振とうして、混合した。溶液Ｃは、食塩水１００μL 中のＴｃ９９ｍ過テクネチウム酸ナトリウム（Mallinckrodt より入手）であった。溶液Ａを含有するバキュテーナーを、換気のための小孔を有する特別製の鉛のポットに入れた。この溶液Ａに溶液Ｃと次に溶液Ｂ１００μL を加えた。このＡ／Ｂ／Ｃ混合物に０．１M 水酸化ナトリウム２０μL を加えて、標識のための最適なｐＨに調整し、次に緩やかに渦巻くように短時間かき混ぜて混合した。この時点で、反応物の容量は、４００μL であった。反応混合物を、沸騰水浴中で１０分間加熱し、次に室温で約１分間冷却した。ＨＰＬＣを、標識したコンジュゲートを精製するために使用した。純度は、検出された放射活性全体１００％に対する、標識されたコンジュゲートの放射ピークの面積の％として測定した。コロイド形成は、分析においては考慮しなかった。 BeckmanＨＰＬＣシステムを、System Gold Software、１１２溶媒ポンプ、１７１放射性同位元素デテクター（改変^*３００μL固形シンチレーターカートリッジおよび５０μL インジェクションループを装備）とともに使用した。用いたカラムは、Vydac Protein and Peptide C18 逆相カラムであった。用いた溶媒系は、アセトニトリルと０．１％ＴＦＡ（溶媒Ａ）および水と０．１％ＴＦＡ（溶媒Ｂ）であった。カラムは、溶媒Ｂ１００％で平衡し、標識されたコンジュゲートの注入後、溶媒ランプを、２５分間での０〜１００％のＡで、流速２mL/分に設定した。ほぼ４０〜５０％のアセトニトリルで、コンジュゲートが溶離した。 ^*Ｔｃ−グルコヘプトナートによるケイ酸イットリウム固体シンチラントへの結合のため、カラムを改変する必要があった。これは、ＨＰＬＣ溶離剤とシンチラントとの接触を、透明なプラスチックチュービングにより避けることによって行った。この改変されたシンチレーションカートリッジにより、１０００〜１０，０００，０００ＤＰＭの間で直線的な応答が得られ、このため標識純度を測定することが適当となった。実施例３−標識されたコンジュゲートの結合試験図１の標識されたコンジュゲートの結合活性を、３種類の微生物、つまりS．a ureus(ATCC 25923)、E．coli(ATCC 25922)およびC．Albicans(ATCC 14053)に対して検討した。実験の前日、S．aureusおよびE．coli をトリプシンソイブロス（Difco）２０ml 中、３７℃で一晩インキュベートし、C．Albicans は、ＹＭブロス（Difco）中、３０℃で一晩インキュベートした。微生物懸濁液をインキュベーターからそれぞれ取り出し、それぞれの懸濁液の光学密度を測定した。光学密度の読み取り値に基づいて、S．aureusおよびE．co li懸濁液については０．８５、C．Albicans については３．７５の吸光度を示すのに十分な量を、それぞれの懸濁液から取り出し、新鮮な培養物を最終容量１０ mlに接種するために用いた。ＨＬ６０腫瘍細胞（ATCC #CCL 240）を数日間生育させた。実験の当日細胞懸濁液を円錐状の遠心分離管に入れ、ほぼ１２００rpm で１５分間遠心分離した。上清を廃棄し、ペレットを、フェノールレッド（Gibco BRL）を含むＨＢＳＳ（ハンクスの平衡塩類溶液、Gibcoより入手）１ml で洗浄した。それぞれの試験管を別のＨＢＳＳ少量で濯ぎ、次に洗浄に用いたＨＢＳＳを十分量のＨＢＳＳと合わせて１０ml とした。この懸濁液を上述したように回転させ、洗浄し、そして回転させた。３回目の回転の後、ＨＢＳＳ３ml を、ペレットを再懸濁するのに使用した。ＨＬ６０懸濁液１０μl を、細胞計数溶液（cell counting solution ）（クリスタルバイオレット中の１％酢酸）９９０θl に加えた。ＨＬ６０懸濁液３ml 中の１ml 当たりの細胞数を測定するために、血球計数器を用いた。次に１０×１０⁶個の細胞を含む量のＨＬ６０細胞懸濁液を、ＨＢＳＳを含む１０ml エーレンマイヤーフラスコに移して、最終量を１０ml とした。図１の標識されたペプチドコンジュゲート（上記の実施例２に記載したように調製し、ＨＰＬＣ−溶離型として使用）を含む溶液２０θl の放射能を、Cobra IIAuto-Gamma Counter（Canberra Packard）を用いて測定し、１分当たり１０⁶ のカウントを示すのに必要な溶液の量を算出した。算出した量のペプチド溶液（２０θl）を、接種培養物およびＨＬ６０細胞懸濁液のいずれかを含むフラスコに加え、フラスコを緩やかにピペッティングしながら、そしてフラスコを渦巻きを起こさせながら混合した。フラスコを、３７℃、振とう速度２．９に設定したNew Brunswick Reciprocal Water Bath Shaker(Moldel R76)に入れた。それぞれのフラスコから、０、３０、６０、１２０および２４０分目で試料を三重（それぞれ２００θl）に採取した。試料をミリポアフィルター（GSWP 025 00）で濾過した。濾過は、Millipore 1225 Sampling Manifold(XX27 025 50)を用いて行った。フィルターを、０．９％塩化ナトリウム１ml を用いて洗浄した。約３０秒間真空を維持してから、フィルターを取り出した。ガンマカウンターで計数するために、回収したフィルターを試験管に入れた。試料を採取するために使用したピペットチップも、液体試料と同じ方法で計数するために回収した。この実験の結果を、以下の表に示すが、濾過しなかった試料の１分当たりの計数値からバックグラウンド値を引いた値に対する％として示した。示されているように、試験した微生物および腫瘍細胞に対する標識されたペプチドコンジュゲートの結合が見られる。実施例４−感染部位のイメージング体重２５０〜３５０ｇの雄性 Sprague-Dawley 系ラットは、Charles River,Ca nada より供給された。これらは使用前に少なくとも２日間慣らさせ、１２時間の明暗周期の標準的条件で保持し、飼料と水は任意に摂取させた。感染物質であるE．coli(ATCC 25922)およびS．aureus(ATCC 25923)を、トリプシンソイブロス（ＴＳＢ）中で一晩生育させ、感染物質であるC．albicans(ATCC 14053)は、ＹＭ中一晩生育させて、それぞれ、生育曲線で求めると１０⁸〜１０⁹ CFU/ml の間の濃度を示す光学密度となるようにした。次に微生物を、上述したような適当な培地中で希釈して、０．２ml当たり１０⁸CFUの濃度とした。非感染性炎症惹起薬は、以下のように調製した。カラゲナンは、暖めた食塩水に撹拌しながらπ−カラゲナン(Sigma C3889)（１０ml 当たり２００mg）を加えることによって調製した。均一な懸濁液が得られるまで撹拌を続けた。ザイモサンＡ（Sigma Z4250）を食塩水中、渦巻きを起こすように撹拌しながら、１００m g/mlの濃度で懸濁した。ラットには、ペントバルビトンナトリウム（Somnotol、３０mg/kg）の腹腔内投与によって麻酔をかけた。それぞれの動物には、右脚に、以下に示す量の単一の感染または炎症惹起物質を筋肉内注射した： E．coli １０⁸CFUを含有するＴＳＢ０．２ml S．aureus １０⁸CFUを含有するＴＳＢ０．２ml C．albicans １０⁸CFUを含有するＴＳＢ０．２ml ザイモサン２０mgを含有する食塩水０．２ml カラゲナン食塩水中の２％カラゲナン０．２ml（４mg）感染または非感染物質のこのような投与量は、組織の重量（浮腫を表わす）およびＭＰＯ含有量（好中球の浸潤を反映する）に基づいて起こった炎症性応答を定量した、あらかじめ実施しておいた実験に基づいて選択した。示した投与量は、同等の炎症応答をもたらした。注射後、ラットは、そのケージに戻した。２４時間後にイメージングを行った。イメージングの直前、上述したようにまずラットにペントバルビトンナトリウムで麻酔をかけた。実施例２に記載したように調製し、非ＨＰＬＣ溶離型で用いた、３７０MBq（１００θci）９９ｍＴｃ−ペプチドコンジュゲート（図１）を、尾静脈を介して静脈内注射した。標識されたペプチドの注射後０、３０分、１時間、２時間および４時間目に、高解像度コリメーターを備えたSiemens LF0V D igitracガンマカメラを用いて５分間にわたる静止像を得た。Siemens MicroDelt a７．２ソフトウエアを用いて、炎症を起こしている脚およびコントロールである注射を行っていない脚の周辺で関心領域(Regions of Interest)（ＲＯＩ）を引き出した(draw)。ＲＯＩは、同一の箇所の７．５％以内とするように配慮し、ＲＯＩ比は、全ピクセル(pixel)を用いて算出した。以下のような結果が得られた：図１のペプチドが、炎症部位に対して感染部位をイメージングする特異性を求めるために、各実験（＃１および＃２）における感染部位対炎症部位のＲＯＩ比の比を、１時間の読み取り値で算出した。E．coli 感染部位対ザイモサン炎症部位のＲＯＩ比の比は、２．２２（実験＃１）であったが、一方、E．coli 感染部位対ザイモサン炎症部位のＲＯＩ比の比は、１．２４（実験＃２）、そして対カラゲナン炎症部位では１．３４（実験＃２）であった。S．aureus 感染部位対ザイモサン炎症部位のＲＯＩ比の比は、１．７９（実験＃１）であったが、一方、 S．aureus 感染部位対ザイモサン炎症部位の間のＲＯＩ比の比は、２．１９（実験＃２）であり、そして対カラゲナン炎症部位では２．３８（実験＃２）であった。C.albicans感染部位対ザイモサン炎症部位のＲＯＩ比の間の比は、２.０８であった。観察されるように、炎症部位ＲＯＩ比対感染部位ＲＯＩ比の比率は、いずれの場合でも１を超えており、多数の例では、２を超えていた。これらの結果により、図１の化合物は、ザイモサンおよびカラゲナン剤によって惹起される炎症の一般的部位と対照的に、感染の標的部位に特異性を有していることが示された。実施例５−合成コンジュゲートの合成 Applied Biosystems 433A ペプチドシンセサイザーを用いたＦＭＯＣ−ロイシンプレロード２−メトキシ−４−アルコキシ−ベンジルアルコール樹脂によるＦＭＯＣ化学を用いて、図２のペプチドコンジュゲートを、０．２５mmol のスケールで合成した。ペプチドコンジュゲートのＮ−末端の、ジメチルを保護したグリシン、およびＡｃｍ−保護システイン残基（つまり、キレーター部分）を、合成の過程で、保護した形で加えた。シンセサイザーからペプチド−樹脂を取り出し、真空中で１時間乾燥した。樹脂からの開裂、および保護基の除去には、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）１０mL、フェノール０．７５ｇ、１，２−エタンジオール０．２５mL、チオアニソール０．５mL、および水０．５mL の冷溶液を、キレーター−ペプチド−樹脂と室温で２．５時間混合することを含めた。濾過により樹脂を除去し、ＴＦＡ３ml で洗浄して、透明な黄色の溶液８ml を得た。この溶液を、５０ml の円錐状ポリプロピレン遠心分離管中、tert−ブチルメチルエーテル３５ml に０℃でゆっくりと滴下して、無色の沈殿を形成させた。沈殿を４，５００rpm、−５℃で１５分間遠心分離(Sorvall RT 6000，Dupont) し、デカンテーションし、ｔ−ブチルメチルエーテルで２回洗浄した。次に沈殿を真空下で乾燥し、水（２ml）に溶解し、−７８℃（アセトン−ドライアイス）で凍結し、２０時間凍結乾燥して、粗ペプチド（５３０mg）を得た。粗ペプチド（２４mg）を水(４mL)に溶解し、０.４５θmシリンジフィルター(Gelman Acrodi scLC PVDF)で濾過し、水中の０．１％ＴＦＡを緩衝液Ａとして、そしてアセトニトリル中の０．１％ＴＦＡを緩衝液Ｂとして使用するＣ１８カラム(Waters RCM 8x1０）を用いた逆相ＨＰＬＣ（Beckman System Gold）で精製した。カラムを５０：５０緩衝液Ａ：緩衝液Ｂで１０分間平衡化し、ペプチドを１００％緩衝液Ｂまでの直線勾配を用いて、２ml/分で２５分溶離した。画分をＨＰＬＣで再分析し、適合する特性に応じて貯蔵した。純粋な画分を−７８℃（アセトン−ドライアイス）で凍結し、２０時間凍結乾燥して、純粋なペプチドを無色の粉末として得た（１２mg）。このペプチドコンジュゲートを、実施例２に上述した方法で、９９ｍＴｃで標識した。実施例６−合成コンジュゲートによる結合試験本実験は、図２の合成コンジュゲートを用いて、実施例３に詳細に記載したように行い、得られた結果は、以下の表に示す：結果により、図２の合成コンジュゲートの微生物および腫瘍細胞の両者への結合が示された。実施例７−合成コンジュゲートによるイメージングこの実験は、図２の合成コンジュゲートを用いて、実施例４に詳細に記載したように行い、得られた結果は、以下の表に示す：合成コンジュゲートの感染部位をイメージングする特異性を求めるために、炎症部位対感染部位をイメージングすることによって得られたＲＯＩ比の比を算出した。これらの比は、各実験について１時間の読み取り値で算出した。E．coli 感染部位対ザイモサンおよびカラゲナン炎症部位のＲＯＩ比の比は、それぞれ０．９７および１．０８であった。S．aureus 感染部位については、比は、ザイモサンおよびカラゲナン炎症部位との比較に基づいて１．０５および１．１６であった。この場合の結果により、得られていた（そして上記の実施例６で得られた）in vitro での結合データにもかかわらず、図２の標識された合成ペプチドコンジュゲートは、感染部位と炎症部位をin vivo では有効に区別しないことが示された。本ペプチドは、in vitro では多数の感染性物質に対して特異的な結合を示したという事実のため、これらの結果は、特に予想外であった。得られた in vivo での結果を理解するために、図２の合成ペプチドおよびそのコンジュゲート型の細胞関連性成分のコンピューターによってシミュレートしたモデルを、図１のペプチドおよびそのコンジュゲート型の細胞関連性成分の同様のモデルと比較した。図１のコンジュゲートは、感染部位を特異的にイメージングすることが認められているからである。図３には、in vitro および in vivo 結合試験に用いた、図１の細胞関連性成分とそれから調製したコンジュゲートを図示している。細胞関連性成分は、顕著なε−らせん立体配置を有しており、それから調製したコンジュゲートは、本質的にこのε−らせん立体配置を保持しているため、コンジュゲートが、in vitro および in vivo結合試験の両方で示されているように、標的認識および結合活性を保持することを可能としている。図４には、in vitro および in vivo 結合試験で使用した、図２の細胞関連性成分およびそれから調製したコンジュゲートを図示している。この場合、細胞関連性成分のε−らせん立体配置は、図１のペプチドのそれよりは弱いものであり、コンジュゲートの形成後は保持されていない。したがって、in vitro では起きたある程度は特異的な標的との結合にもかかわらず、コンジュゲートが立体配置を失ったことにより、in vivo での特異的結合活性が失われた。したがって、これらの結果より、感染部位の特異的イメージングにおける有効な使用のためには、ペプチドがそのコンジュゲート型においても本来の細胞関連性立体配置を保持していることの意義が確立された。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者グッドボディ，アンカナダ国、エム４エル２エックス７オンタリオ、トロント、ハイアウォサ・ロード 31 (72)発明者ポラック，アルフレッドカナダ国、エム５ビー４シー６オンタリオ、トロント、マーリー・アベニュー 135、アパートメント 1400 (72)発明者ソーンバック，ジョンカナダ国、エム４ブイ１イー８オンタリオ、トロント、ポプラ・プランズ・クレセント６

Claims

【特許請求の範囲】１．哺乳動物における標的部位のイメージングにおける用途のための検出可能な標識と結び付けられた受容体非介在性細胞関連性化合物であって、該化合物が、該標識と結び付けられた後もその本来の立体配置を本質的に保持している化合物。２．ペプチドである、請求項１記載の化合物。３．微生物結合性化合物である、請求項１記載の化合物。４．該標識が、キレーターを介して該化合物と結合している、請求項１記載の化合物。５．該標識が、テクネチウム−９９ｍ、またはその窒化物もしくは酸化物である、請求項４記載の化合物。６．検出可能な標識と結び付けられた受容体非介在性細胞関連性化合物であって、該化合物が、マガイニンペプチド、およびその機能的に同等なアナログからなる群より選択される化合物。７．マガイニン−１である、請求項６記載の化合物。８．該標識が、キレーターを介して該化合物と結合している、請求項６記載の化合物。９．該キレーターが、ジメチルグリシン−セリン−システイン（Ａｃｍ）である、請求項８記載の化合物。１０．該キレーターが、リンカーを介して該化合物と結合している、請求項８記載の化合。１１．該リンカーが、ペプチドである、請求項１０記載の化合物。１２．該リンカーが、グリシン−アスパラギン−グリシン、および１〜５のβ −アラニン残基からなるリンカーからなる群より選択される、請求項１１記載の化合物。１３．ジメチル−Ｇ−Ｓ−Ｃ（Ａｃｍ）−βＡ−βＡ−βＡ−Ｇ−Ｉ−Ｇ−Ｋ −Ｆ−Ｌ−Ｈ−Ｓ−Ａ−Ｇ−Ｋ−Ｆ−Ｇ−Ｋ−Ａ−Ｆ−Ｖ−Ｇ−Ｅ−Ｉ−Ｍ−Ｋ −Ｓである化合物。１４．請求項１記載の化合物を薬学的に許容しうる水性担体と混合して含む診断用組成物。１５．請求項６記載の化合物を薬学的に許容しうる水性担体と混合して含む診断用組成物。１６．哺乳動物における標的部位をイメージングする方法であって、請求項１５記載の組成物を該哺乳動物に投与する工程と、該哺乳動物に蓄積された放射能の部位を検出する工程を含む方法。１７．該組成物を、７０kg当たり１〜１００mCi の範囲の投与量で投与する、請求項１６記載の方法。１８．該標的部位が、感染部位である、請求項１６記載の方法。１９．該標的部位が、腫瘍である、請求項１６記載の方法。２０．キレーターと結合してコンジュゲートを形成した受容体非介在性細胞関連性化合物；還元剤；緩衝剤；そしてトランスキレート形成剤を含むキット。