JPH11266728A - ツツジ属植物の大量増殖方法 - Google Patents
ツツジ属植物の大量増殖方法Info
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- JPH11266728A JPH11266728A JP15601298A JP15601298A JPH11266728A JP H11266728 A JPH11266728 A JP H11266728A JP 15601298 A JP15601298 A JP 15601298A JP 15601298 A JP15601298 A JP 15601298A JP H11266728 A JPH11266728 A JP H11266728A
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- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【課題】 ツツジ属植物の新規な大量増殖方法の提供。
【解決手段】 ツツジ属植物の大量増殖方法において、
（１）ツツジ属植物の組織片をオーキシン系植物ホルモ
ン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することによりカルスの形成せしめ；（２）該カ
ルスをサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することにより、多数のシュートを有する多芽体
を形成せしめ；（３）該多芽体から個々のシュートを切
り取り、所望によりオーキシン系植物ホルモンを含有す
る培地中で培養した後、該シュートを植物ホルモンを含
有しない培地で培養することにより発根せしめる；こと
を特徴とする方法。
（１）ツツジ属植物の組織片をオーキシン系植物ホルモ
ン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することによりカルスの形成せしめ；（２）該カ
ルスをサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することにより、多数のシュートを有する多芽体
を形成せしめ；（３）該多芽体から個々のシュートを切
り取り、所望によりオーキシン系植物ホルモンを含有す
る培地中で培養した後、該シュートを植物ホルモンを含
有しない培地で培養することにより発根せしめる；こと
を特徴とする方法。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、ツツジ属植物の大
量増殖方法に関する。
量増殖方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】特開平６−１８９６４３号公報には、シ
ャクナゲ属植物の茎頂部の組織片を、第１回培養として
オーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホ
ルモンを含む培地で無菌的に茎頂部を伸長させて実質的
に根を持たない苗条を培養し、ついで第２回目の培養と
して、この苗条をオーキシン系植物ホルモン及びサイト
カイニン系植物ホルモンを含む培地に移植して増殖を行
い、さらに、この増殖した根を持たない苗条をオーキシ
ン系植物ホルモンを含む培地に移植して発根させ、引き
続いて完全な植物体に育成する方法が記載されている。
ャクナゲ属植物の茎頂部の組織片を、第１回培養として
オーキシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホ
ルモンを含む培地で無菌的に茎頂部を伸長させて実質的
に根を持たない苗条を培養し、ついで第２回目の培養と
して、この苗条をオーキシン系植物ホルモン及びサイト
カイニン系植物ホルモンを含む培地に移植して増殖を行
い、さらに、この増殖した根を持たない苗条をオーキシ
ン系植物ホルモンを含む培地に移植して発根させ、引き
続いて完全な植物体に育成する方法が記載されている。
【０００３】また、特開平６−１８７６４６号公報に
は、シャクナゲ属植物の茎頂部の組織片をオーキシン系
植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含む
培地で無菌的に茎頂部を伸長させて根を持たない苗条を
培養し、ついでこの苗条を該両植物ホルモンを含む培地
に移植して増殖を行い、さらにこの苗条の基部から切除
した葉をオーキシン系植物ホルモン溶液に浸漬した後、
発根用床土に移植して発根させる方法が記載されてい
る。
は、シャクナゲ属植物の茎頂部の組織片をオーキシン系
植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含む
培地で無菌的に茎頂部を伸長させて根を持たない苗条を
培養し、ついでこの苗条を該両植物ホルモンを含む培地
に移植して増殖を行い、さらにこの苗条の基部から切除
した葉をオーキシン系植物ホルモン溶液に浸漬した後、
発根用床土に移植して発根させる方法が記載されてい
る。
【０００４】しかしながら、これらの方法はいずれも、
親植物の茎頂部を使用する必要があるため、多数の植物
の増殖には、出発材料として多数の親植物を必要とする
という問題点がある。従来技術においては、少数のツツ
ジ属親植物体を用いて、大量にツツジ属植物を増殖する
方法は知られていない。
親植物の茎頂部を使用する必要があるため、多数の植物
の増殖には、出発材料として多数の親植物を必要とする
という問題点がある。従来技術においては、少数のツツ
ジ属親植物体を用いて、大量にツツジ属植物を増殖する
方法は知られていない。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明は、少
数のツツジ属親植物体を用いてツツジ属植物を大量に増
殖する方法を提供しようとするものである。
数のツツジ属親植物体を用いてツツジ属植物を大量に増
殖する方法を提供しようとするものである。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の課
題を解決すべく種々検討した結果、花弁、葉片等、１本
の親植物から多数採取することができる出発材料を使用
して、多数のシュートを有する多芽体を介することによ
り、ツツジ属植物を効率よく大量に増殖せしめることが
できることを見出し、本発明を完成した。
題を解決すべく種々検討した結果、花弁、葉片等、１本
の親植物から多数採取することができる出発材料を使用
して、多数のシュートを有する多芽体を介することによ
り、ツツジ属植物を効率よく大量に増殖せしめることが
できることを見出し、本発明を完成した。
【０００７】従って、本発明は、ツツジ属植物の大量増
殖方法において、 （１）ツツジ属植物の組織片をオーキシン系植物ホルモ
ン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することによりカルスを形成せしめ； （２）該カルスをサイトカイニン系植物ホルモンを含有
する培地中で培養することにより、多数のシュートを有
する多芽体を形成せしめ； （３）該多芽体から個々のシュートを切り取り；そして （４）該シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で
培養することにより発根せしめる；ことを特徴とする方
法を提供する。上記方法において、前記段階（３）の後
であって前記段階（４）の前に、該段階（３）において
切り取ったシュートを、オーキシン系植物ホルモンを含
有する培地中で培養するのがより好ましい。
殖方法において、 （１）ツツジ属植物の組織片をオーキシン系植物ホルモ
ン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することによりカルスを形成せしめ； （２）該カルスをサイトカイニン系植物ホルモンを含有
する培地中で培養することにより、多数のシュートを有
する多芽体を形成せしめ； （３）該多芽体から個々のシュートを切り取り；そして （４）該シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で
培養することにより発根せしめる；ことを特徴とする方
法を提供する。上記方法において、前記段階（３）の後
であって前記段階（４）の前に、該段階（３）において
切り取ったシュートを、オーキシン系植物ホルモンを含
有する培地中で培養するのがより好ましい。
【０００８】
【発明の実施の形態】次に、本発明の実施の形態を具体
的に説明する。図１において、例えば、出発材料とし
て、ツツジ属植物の花弁又はその１部分をオーキシン系
植物ホルモンとサイトカイニン系植物ホルモンとの両者
を含有する培地で培養すれば２〜３ヶ月で淡黄色〜緑色
のカルスが形成される。次にこのカルスを、サイトカイ
ニン系植物ホルモンを含有する培地中で約４ヶ月間培養
することにより多数（例えば２０〜３０本）のシュート
を有する多芽体を形成せしめる。
的に説明する。図１において、例えば、出発材料とし
て、ツツジ属植物の花弁又はその１部分をオーキシン系
植物ホルモンとサイトカイニン系植物ホルモンとの両者
を含有する培地で培養すれば２〜３ヶ月で淡黄色〜緑色
のカルスが形成される。次にこのカルスを、サイトカイ
ニン系植物ホルモンを含有する培地中で約４ヶ月間培養
することにより多数（例えば２０〜３０本）のシュート
を有する多芽体を形成せしめる。
【０００９】次に、シュートを１回に数本〜１０本程度
切りとり、植物ホルモンを含有しない培地で培養するこ
とにより発根せしめ、これにより幼植物を再生する。シ
ュートを採取した後の多芽体は、そのまま培養を続ける
（例えば１ヶ月）ことによりシュートを形成せしめ、こ
れを数本〜１０本採取して、植物ホルモンを含有しない
培地で培養することにより発根させ、幼植物を再生す
る。上記のようにして多芽体を培養し続けることによ
り、多数の幼植物を再生させることができる。
切りとり、植物ホルモンを含有しない培地で培養するこ
とにより発根せしめ、これにより幼植物を再生する。シ
ュートを採取した後の多芽体は、そのまま培養を続ける
（例えば１ヶ月）ことによりシュートを形成せしめ、こ
れを数本〜１０本採取して、植物ホルモンを含有しない
培地で培養することにより発根させ、幼植物を再生す
る。上記のようにして多芽体を培養し続けることによ
り、多数の幼植物を再生させることができる。
【００１０】本発明の方法を適用することができるツツ
ジ属植物としては、例えばヒラドツツジ、サツキ、キリ
シマ、ミヤマキリシマ、フジツツジ、ヤマツツジ、クロ
フネツツジ、ゴヨウツツジ、アマギツツジ、オニツツ
ジ、ジングウツツジ、ミツバツツジ、コバノミツバツツ
ジ、レンゲツツジ、ムラサキツツジ、アケボノツツジ、
キシツツジ、チョウセンヤマツツジ、モチツツジ、サキ
シマツツジ、ケラマツツジ、タイワンヤマツツジ、マル
バサツキ、コメツツジ、バイカツツジ、ヒカゲツツジ、
ゲンカイツツジ、エゾツツジ、ホンシャクナゲ、ハクサ
ンシャクナゲ、キバナシャクナゲ、などの他、これらの
栽培品種および種間雑種が挙げられる。
ジ属植物としては、例えばヒラドツツジ、サツキ、キリ
シマ、ミヤマキリシマ、フジツツジ、ヤマツツジ、クロ
フネツツジ、ゴヨウツツジ、アマギツツジ、オニツツ
ジ、ジングウツツジ、ミツバツツジ、コバノミツバツツ
ジ、レンゲツツジ、ムラサキツツジ、アケボノツツジ、
キシツツジ、チョウセンヤマツツジ、モチツツジ、サキ
シマツツジ、ケラマツツジ、タイワンヤマツツジ、マル
バサツキ、コメツツジ、バイカツツジ、ヒカゲツツジ、
ゲンカイツツジ、エゾツツジ、ホンシャクナゲ、ハクサ
ンシャクナゲ、キバナシャクナゲ、などの他、これらの
栽培品種および種間雑種が挙げられる。
【００１１】本発明の方法において出発材料として使用
する組織としては、葉、茎、花弁、根、子葉、胚軸、等
種々の組織を使用することができるが、花弁、葉等、１
本の親植物から多数の組織片を得ることができる組織が
好ましい。
する組織としては、葉、茎、花弁、根、子葉、胚軸、等
種々の組織を使用することができるが、花弁、葉等、１
本の親植物から多数の組織片を得ることができる組織が
好ましい。
【００１２】第１段階としては、上記の組織片を、オー
キシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモ
ンを含有する培地中で培養することによりカルスを形成
せしめる。オーキシン系植物ホルモンとしては、インド
ール−３−酪酸（ＩＢＡ）、１−ナフタレン酢酸（ＮＡ
Ａ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−
Ｄ）、インドール−３−酢酸（ＩＡＡ）等が挙げられ、
これらを単独で又は組合わせて使用することができる。
サイトカイニン系植物ホルモンとしてはＮ6 −（２−イ
ソペンテニルアデニン)(２−ｉＰ）、６−ベンジルアミ
ノプリン（ＢＡＰ）、１−フェニル−３−（１，２，３
−チアジアゾール−５−イル）尿素、Ｎ−（２−クロロ
−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）等が
挙げられ、これらを単独で、又は組合わせて使用するこ
とができる。
キシン系植物ホルモン及びサイトカイニン系植物ホルモ
ンを含有する培地中で培養することによりカルスを形成
せしめる。オーキシン系植物ホルモンとしては、インド
ール−３−酪酸（ＩＢＡ）、１−ナフタレン酢酸（ＮＡ
Ａ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−
Ｄ）、インドール−３−酢酸（ＩＡＡ）等が挙げられ、
これらを単独で又は組合わせて使用することができる。
サイトカイニン系植物ホルモンとしてはＮ6 −（２−イ
ソペンテニルアデニン)(２−ｉＰ）、６−ベンジルアミ
ノプリン（ＢＡＰ）、１−フェニル−３−（１，２，３
−チアジアゾール−５−イル）尿素、Ｎ−（２−クロロ
−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）等が
挙げられ、これらを単独で、又は組合わせて使用するこ
とができる。
【００１３】オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニ
ン系植物ホルモンとの組合せは、上記の各系統に属する
個々のホルモンを任意に組合わせることができるが、例
えばインドール−３−酪酸（ＩＢＡ）とＮ6 −（２−イ
ソペンテニルアデニン)(２−ｉＰ）との組合せ、１−ナ
フタレン酢酸（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン
（ＢＡＰ）との組合せ、インドール−３−酢酸（ＩＡ
Ａ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾー
ル−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、２，４−ジ
クロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）とＮ−クロロ−４
−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合
せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）とＮ−（２−クロロ−４
−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合
せ、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と
１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５
−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、ナフタレン酢酸
（ＮＡＡ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジ
アゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ等の組
合せが好ましく、これらの組合せは、増殖の対象となる
ツツジ属植物の種類により選択することができる。
ン系植物ホルモンとの組合せは、上記の各系統に属する
個々のホルモンを任意に組合わせることができるが、例
えばインドール−３−酪酸（ＩＢＡ）とＮ6 −（２−イ
ソペンテニルアデニン)(２−ｉＰ）との組合せ、１−ナ
フタレン酢酸（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン
（ＢＡＰ）との組合せ、インドール−３−酢酸（ＩＡ
Ａ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾー
ル−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、２，４−ジ
クロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）とＮ−クロロ−４
−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合
せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）とＮ−（２−クロロ−４
−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合
せ、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と
１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５
−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、ナフタレン酢酸
（ＮＡＡ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジ
アゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ等の組
合せが好ましく、これらの組合せは、増殖の対象となる
ツツジ属植物の種類により選択することができる。
【００１４】オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニ
ン系植物ホルモンとの使用比率及び濃度の最適値は、個
々の植物ホルモン及びそれらの組合せ、植物の種類等に
より異なり、実験的に決定することができるが、オーキ
シン系植物ホルモンの培地濃度はおよそ１μＭ〜１０μ
Ｍ、サイトカイニン系植物ホルモンの培地濃度はおよそ
１μＭ〜１０μＭである。
ン系植物ホルモンとの使用比率及び濃度の最適値は、個
々の植物ホルモン及びそれらの組合せ、植物の種類等に
より異なり、実験的に決定することができるが、オーキ
シン系植物ホルモンの培地濃度はおよそ１μＭ〜１０μ
Ｍ、サイトカイニン系植物ホルモンの培地濃度はおよそ
１μＭ〜１０μＭである。
【００１５】基礎培地としては、ＭＳ培地、ＷＰＭ培
地、Ａｎｄｅｒｓｏｎ培地等植物細胞又は組織を培養す
るための常用の任意の培地を用いることができるが、Ｍ
Ｓ培地、１／２ＭＳ培地等が好ましい。この培地には炭
素源として糖類、例えば単糖類又は二糖類を加えること
が望ましく、ショ糖が特に好ましい。糖の培地濃度は、
例えば１０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／Ｌであり、３０ｇ／Ｌ程度
が好ましい。培養は１５℃〜３０℃、好ましくは約２５
℃において、静置培養として、光の照射のもとで、例え
ば１，０００〜２０，０００Lxの光の照射のもとで行わ
れる。カルスの形成のための培養は通常、２〜３ヶ月間
行われる。
地、Ａｎｄｅｒｓｏｎ培地等植物細胞又は組織を培養す
るための常用の任意の培地を用いることができるが、Ｍ
Ｓ培地、１／２ＭＳ培地等が好ましい。この培地には炭
素源として糖類、例えば単糖類又は二糖類を加えること
が望ましく、ショ糖が特に好ましい。糖の培地濃度は、
例えば１０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／Ｌであり、３０ｇ／Ｌ程度
が好ましい。培養は１５℃〜３０℃、好ましくは約２５
℃において、静置培養として、光の照射のもとで、例え
ば１，０００〜２０，０００Lxの光の照射のもとで行わ
れる。カルスの形成のための培養は通常、２〜３ヶ月間
行われる。
【００１６】次に、上記のようにして形成したカルス
を、サイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地で培
養することにより、多数のシュートを有する多芽体を形
成せしめる。サイトカイニン系植物ホルモンとしては前
記のものを単独で又は複数種組合わせて使用することが
できる。サイトカイニン系植物ホルモンとしては、１−
フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イ
ル）尿素（ＴＤＺ）、Ｎ−２−クロロ−４−ピリジル）
Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）等が好ましく、培地中
の濃度は好ましくは１〜１０μＭである。基本培地は、
カルス形成用培地と同じでよい。
を、サイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地で培
養することにより、多数のシュートを有する多芽体を形
成せしめる。サイトカイニン系植物ホルモンとしては前
記のものを単独で又は複数種組合わせて使用することが
できる。サイトカイニン系植物ホルモンとしては、１−
フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イ
ル）尿素（ＴＤＺ）、Ｎ−２−クロロ−４−ピリジル）
Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）等が好ましく、培地中
の濃度は好ましくは１〜１０μＭである。基本培地は、
カルス形成用培地と同じでよい。
【００１７】カルスを３〜５ヶ月、例えば４ヶ月程度培
養することにより多芽体が形成される。培養は１５℃〜
３０℃、好ましくは約２５℃において、静置して行われ
る。培養中、光を、例えば１，０００〜２０，０００Lx
の強度で照射する。多芽体は通常２０〜３０本のシュー
トを有する。その１部分、例えば数本〜１０本を切り取
り、植物ホルモンを含有しない培地で培養することによ
り発根を誘導して幼植物を再生せしめる。シュート採取
した後の多芽体はさらに培養を続けることにより、さら
にシュートを形成することができる。こうして、例えば
多芽体を約１ヶ月培養した後数本〜約１０本のシュート
を採取し、これを反復することにより多数をシュートを
採取して発根させることができる。
養することにより多芽体が形成される。培養は１５℃〜
３０℃、好ましくは約２５℃において、静置して行われ
る。培養中、光を、例えば１，０００〜２０，０００Lx
の強度で照射する。多芽体は通常２０〜３０本のシュー
トを有する。その１部分、例えば数本〜１０本を切り取
り、植物ホルモンを含有しない培地で培養することによ
り発根を誘導して幼植物を再生せしめる。シュート採取
した後の多芽体はさらに培養を続けることにより、さら
にシュートを形成することができる。こうして、例えば
多芽体を約１ヶ月培養した後数本〜約１０本のシュート
を採取し、これを反復することにより多数をシュートを
採取して発根させることができる。
【００１８】発根による幼植物の形成は、植物ホルモン
を含有しない低濃度の常用の植物組織培養用培地、例え
ば１／２ＭＳ培地、１／４ＭＳ培地等を使用することが
でき、これには、単糖類又は多糖類、例えばショ糖を添
加することができる。糖類の濃度は０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／
Ｌ、好ましくは７．５ｇ／Ｌ〜１５ｇ／Ｌである。培地
を固化するため、例えばゲランガム等を添加することが
でき、この添加量は通常約０．２５％である。培養は、
１５℃〜３０℃、好ましくは約２５℃において、静置し
て行う。光照射は、例えば、１６時間の明及び８時間の
暗（光照射なし）とし、照射の強度は１，０００〜２
０，０００Lxの範囲が好ましい。通常、１０〜４０日間
の培養で発根する。
を含有しない低濃度の常用の植物組織培養用培地、例え
ば１／２ＭＳ培地、１／４ＭＳ培地等を使用することが
でき、これには、単糖類又は多糖類、例えばショ糖を添
加することができる。糖類の濃度は０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／
Ｌ、好ましくは７．５ｇ／Ｌ〜１５ｇ／Ｌである。培地
を固化するため、例えばゲランガム等を添加することが
でき、この添加量は通常約０．２５％である。培養は、
１５℃〜３０℃、好ましくは約２５℃において、静置し
て行う。光照射は、例えば、１６時間の明及び８時間の
暗（光照射なし）とし、照射の強度は１，０００〜２
０，０００Lxの範囲が好ましい。通常、１０〜４０日間
の培養で発根する。
【００１９】本発明の好ましい態様においては、上記の
ようにしてシュートを採取した後、植物ホルモンを含有
しない培地で培養して発根せしめる前に、オーキシン系
植物ホルモンを含有する培地でシュートを培養し、その
後で植物ホルモンを含有しない培地に移して発根させる
ことにより、発根率を９０〜１００％に上昇せしめるこ
とができる。この場合のオーキシン系植物ホルモンとし
ては前記のものを使用することができるがインドール−
３−酪酸が特に好ましい。オーキシン系植物ホルモンの
濃度は好ましくは１μＭ〜１０μＭである。基本培地と
しては前に列挙したものを使用することができるが、１
／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２５
％）が好ましい。オーキシン系植物ホルモンを含有する
培地での培養期限は２〜４日間が好ましい。
ようにしてシュートを採取した後、植物ホルモンを含有
しない培地で培養して発根せしめる前に、オーキシン系
植物ホルモンを含有する培地でシュートを培養し、その
後で植物ホルモンを含有しない培地に移して発根させる
ことにより、発根率を９０〜１００％に上昇せしめるこ
とができる。この場合のオーキシン系植物ホルモンとし
ては前記のものを使用することができるがインドール−
３−酪酸が特に好ましい。オーキシン系植物ホルモンの
濃度は好ましくは１μＭ〜１０μＭである。基本培地と
しては前に列挙したものを使用することができるが、１
／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２５
％）が好ましい。オーキシン系植物ホルモンを含有する
培地での培養期限は２〜４日間が好ましい。
【００２０】次に、発根した幼植物を、バーキュライト
等の人工土壌に移して馴化するのが好ましい。あるい
は、多芽体から得られたシュートを、直接、バーキュラ
イト等に移して発根させてもよい。
等の人工土壌に移して馴化するのが好ましい。あるい
は、多芽体から得られたシュートを、直接、バーキュラ
イト等に移して発根させてもよい。
【００２１】
【実施例】次に、本発明を、実施例によりさらに具体的
に説明する。実施例１． ヒラドツツジの増殖 カルスの形成 ５０〜７０cmに生長したヒラドツツジの苗木を人工気象
室（小糸工業、コイトトロン）内で育成した。環境条件
は照度６０００Lx、日長１６時間、温度２５℃、湿度７
０％とした。実験には枝の先端から６葉程度までの若い
葉片を用いた。葉片を流水で１〜２時間洗浄した後、７
０％エタノールで２分間、有効塩素濃度０．５％の次亜
塩素酸ナトリウム溶液で１０分間浸漬撹拌した。続いて
滅菌水で３回すすいだ後、５mm四方程度の大きさに調整
した。
に説明する。実施例１． ヒラドツツジの増殖 カルスの形成 ５０〜７０cmに生長したヒラドツツジの苗木を人工気象
室（小糸工業、コイトトロン）内で育成した。環境条件
は照度６０００Lx、日長１６時間、温度２５℃、湿度７
０％とした。実験には枝の先端から６葉程度までの若い
葉片を用いた。葉片を流水で１〜２時間洗浄した後、７
０％エタノールで２分間、有効塩素濃度０．５％の次亜
塩素酸ナトリウム溶液で１０分間浸漬撹拌した。続いて
滅菌水で３回すすいだ後、５mm四方程度の大きさに調整
した。
【００２２】基本培地として、１／２ＭＳ培地にショ糖
を１５ｇ／Ｌ添加したものを用いた。この基本培地に、
オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニン系植物ホル
モンとの組合せとして、インドール−３−酪酸（ＩＢ
Ａ）とＮ6 −（２−イソペンテニルアデニン)(２−ｉ
Ｐ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）
と２−イソペンテニルアデニン（２−ｉＰ）、インドー
ル−３−酢酸（ＩＡＡ）と２−イソペンテニルアデニン
（２−ｉＰ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，
４−Ｄ）とＮ−（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フ
ェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、インドール−３−
酢酸（ＩＡＡ）とＮ−２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′
−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、２，４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と１−フェニル−３
−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素（Ｔ
ＤＺ）との組合せ、又はインドール−３−酢酸（ＩＡ
Ａ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾー
ル−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、ナフタレン
酢酸（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）
の組み合せを添加してカルス形成用培地とした。添加量
は下記の表１及び表２に示す。培地はＮａＯＨ及びＨＣ
ｌによりpH５．８に調整し、１２０℃にて２０分間オー
トクレーブ滅菌した。
を１５ｇ／Ｌ添加したものを用いた。この基本培地に、
オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニン系植物ホル
モンとの組合せとして、インドール−３−酪酸（ＩＢ
Ａ）とＮ6 −（２−イソペンテニルアデニン)(２−ｉ
Ｐ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）
と２−イソペンテニルアデニン（２−ｉＰ）、インドー
ル−３−酢酸（ＩＡＡ）と２−イソペンテニルアデニン
（２−ｉＰ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，
４−Ｄ）とＮ−（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フ
ェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、インドール−３−
酢酸（ＩＡＡ）とＮ−２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′
−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、２，４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と１−フェニル−３
−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素（Ｔ
ＤＺ）との組合せ、又はインドール−３−酢酸（ＩＡ
Ａ）と１−フェニル−３−（１，２，３−チアジアゾー
ル−５−イル）尿素（ＴＤＺ）との組合せ、ナフタレン
酢酸（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）
の組み合せを添加してカルス形成用培地とした。添加量
は下記の表１及び表２に示す。培地はＮａＯＨ及びＨＣ
ｌによりpH５．８に調整し、１２０℃にて２０分間オー
トクレーブ滅菌した。
【００２３】培養は、照度３０００Lx、日長１６時間
（明期１６時間、暗期８時間）、温度２５℃にて、静置
培養として行った。培養１５週間後の結果を表１に示し
た。
（明期１６時間、暗期８時間）、温度２５℃にて、静置
培養として行った。培養１５週間後の結果を表１に示し
た。
【００２４】
【表１】
【００２５】表中の記号は、Ｎｇ：変化なし、Ｎｂｒ：
褐変、Ｃｇ：カルス化（緑）、Ｃｌｇ：カルス化（黄
緑）、Ｃｗ：カルス化（白色）、Ｃｃｙ：カルス化（澄
黄色）、Ｃｂｒ：カルス化（茶）、Ｃｂｌ：カルス化
（枯死）、Ｂ：培養５〜６週間で褐変又は枯死を示す。
＋は直径１０mm以上のカルスが誘導されたことを示す。
緑色又は黄緑色のカルスが好ましい。
褐変、Ｃｇ：カルス化（緑）、Ｃｌｇ：カルス化（黄
緑）、Ｃｗ：カルス化（白色）、Ｃｃｙ：カルス化（澄
黄色）、Ｃｂｒ：カルス化（茶）、Ｃｂｌ：カルス化
（枯死）、Ｂ：培養５〜６週間で褐変又は枯死を示す。
＋は直径１０mm以上のカルスが誘導されたことを示す。
緑色又は黄緑色のカルスが好ましい。
【００２６】上記の表から明らかな通り、インドール−
３−酪酸（ＩＢＡ）１０μＭとＮ6−（２−イソペンテ
ニルアデニン)(２−ｉＰ）１〜１０μＭとの組合せ、１
−ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）１０μＭと６−ベンジルア
ミノプリン（ＢＡＰ）１０μＭとの組合せ、及びインド
ール−３−酢酸（ＩＡＡ）１μＭ〜１０μＭと１−フェ
ニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）
尿素（ＴＤＺ）１μＭ〜１０μＭとの組合せにおいて、
緑色〜淡黄色の好適なカルスが得られた。
３−酪酸（ＩＢＡ）１０μＭとＮ6−（２−イソペンテ
ニルアデニン)(２−ｉＰ）１〜１０μＭとの組合せ、１
−ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）１０μＭと６−ベンジルア
ミノプリン（ＢＡＰ）１０μＭとの組合せ、及びインド
ール−３−酢酸（ＩＡＡ）１μＭ〜１０μＭと１−フェ
ニル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）
尿素（ＴＤＺ）１μＭ〜１０μＭとの組合せにおいて、
緑色〜淡黄色の好適なカルスが得られた。
【００２７】多芽体の形成 １／２ＭＳ培地にシュークロースを３０ｇ／Ｌ添加した
ものを基礎培地とし、これに種々の植物ホルモンを添加
した培地で上記のようにして形成したカルスを、培養し
た。植物ホルモンとしては、Ｎ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）、１−フェニ
ル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿
素（ＴＤＺ）、Ｎ6 −（２−イソペンテニルアデニン)
(２−ｉＰ）、６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）又
はゼアチン（Ｎ6 −（ｔｒａｎｓ−４−ヒドロキシイソ
ペンテニルアデニン))を１〜１０μＭの濃度で添加し
た。
ものを基礎培地とし、これに種々の植物ホルモンを添加
した培地で上記のようにして形成したカルスを、培養し
た。植物ホルモンとしては、Ｎ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）、１−フェニ
ル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿
素（ＴＤＺ）、Ｎ6 −（２−イソペンテニルアデニン)
(２−ｉＰ）、６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）又
はゼアチン（Ｎ6 −（ｔｒａｎｓ−４−ヒドロキシイソ
ペンテニルアデニン))を１〜１０μＭの濃度で添加し
た。
【００２８】照度３０００Lx、日長１６時間（明期１６
時間、暗期８時間）温度２５℃において１９週間培養し
た。培養したカルスに対する、多芽体が誘導された転換
したカルスの数の比率は次の表２及び表３に示す通りで
あった。なお、１０本以上のシュートを生じさせている
カルスを多芽体と称する。
時間、暗期８時間）温度２５℃において１９週間培養し
た。培養したカルスに対する、多芽体が誘導された転換
したカルスの数の比率は次の表２及び表３に示す通りで
あった。なお、１０本以上のシュートを生じさせている
カルスを多芽体と称する。
【００２９】
【表２】
【００３０】
【表３】
【００３１】表２及び表３に示す通り、サイトカイニン
系植物ホルモンに属するＮ−（２−クロロ−４−ピリジ
ル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）１μＭ〜１０μＭ
が有効であった。
系植物ホルモンに属するＮ−（２−クロロ−４−ピリジ
ル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）１μＭ〜１０μＭ
が有効であった。
【００３２】発根 １／２ＭＳ培地に、１５ｇ／Ｌのショ糖及び０．２５％
のゲランガムを含む培地に前記の多芽体から採取したシ
ュートを置床し、２５℃、照度３０００Lx、日長１６時
間（明期１６時間、暗期８時間）にて１ヶ月間培養し
た。発根率は約６０％であった。
のゲランガムを含む培地に前記の多芽体から採取したシ
ュートを置床し、２５℃、照度３０００Lx、日長１６時
間（明期１６時間、暗期８時間）にて１ヶ月間培養し
た。発根率は約６０％であった。
【００３３】実施例２． サツキの増殖 カルスの形成 ５０〜７０cmに生長したサツキ（Rhododenndoron indic
um）の苗木を、人工気象室（小糸工業、コイトトロン）
内で育成した。環境条件は照度６０００Lx、日長１６時
間、温度２５℃、湿度７０％とした。実験には開花数日
前の花蕾を用いた。花蕾を流水で１〜２時間洗浄した
後、有効塩素濃度０．５％の次亜塩素酸ナトリウム溶液
で１０分間浸漬撹拌した。続いて滅菌水で３回すすいだ
後、花弁を５mm四方程度の大きさに調整し、培地に置床
した。
um）の苗木を、人工気象室（小糸工業、コイトトロン）
内で育成した。環境条件は照度６０００Lx、日長１６時
間、温度２５℃、湿度７０％とした。実験には開花数日
前の花蕾を用いた。花蕾を流水で１〜２時間洗浄した
後、有効塩素濃度０．５％の次亜塩素酸ナトリウム溶液
で１０分間浸漬撹拌した。続いて滅菌水で３回すすいだ
後、花弁を５mm四方程度の大きさに調整し、培地に置床
した。
【００３４】基本培地として、１／２ＭＳ培地にシュー
クロースを１５ｇ／Ｌ添加したものを用いた。この基本
培地に、オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニン系
植物ホルモンとの組合せとして、２，４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）とＮ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、
２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と２−
イソペンテニルアデニン（２−ｉＰ）との組合せ、２，
４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と６−ベン
ジルアミノプリン（ＢＡＰ）との組合せ、２，４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と１−フェニル−３
−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素（Ｔ
ＤＺ）との組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）とＮ−
（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素との
組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）と２−イソペンテニ
ルアデニン（２−ｉＰ）との組合せ、ナフタレン酢酸
（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）との
組合せ、又はナフタレン酢酸（ＮＡＡ）と１−フェニル
−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素
との組合せ、を添加してカルス形成用培地とした。添加
量は下記表４の通りである。ＮａＯＨ及びＨＣｌにより
pHを５．８に調整し、１２０℃にて２０分間オートクレ
ーブ滅菌した。培養９週間後の結果を表４に示す。
クロースを１５ｇ／Ｌ添加したものを用いた。この基本
培地に、オーキシン系植物ホルモンとサイトカイニン系
植物ホルモンとの組合せとして、２，４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）とＮ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）との組合せ、
２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と２−
イソペンテニルアデニン（２−ｉＰ）との組合せ、２，
４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と６−ベン
ジルアミノプリン（ＢＡＰ）との組合せ、２，４−ジク
ロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）と１−フェニル−３
−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素（Ｔ
ＤＺ）との組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）とＮ−
（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素との
組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）と２−イソペンテニ
ルアデニン（２−ｉＰ）との組合せ、ナフタレン酢酸
（ＮＡＡ）と６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）との
組合せ、又はナフタレン酢酸（ＮＡＡ）と１−フェニル
−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素
との組合せ、を添加してカルス形成用培地とした。添加
量は下記表４の通りである。ＮａＯＨ及びＨＣｌにより
pHを５．８に調整し、１２０℃にて２０分間オートクレ
ーブ滅菌した。培養９週間後の結果を表４に示す。
【表４】
【００３５】表中の記号は、Ｃｇ：カルス化（緑色）、
Ｃｃｙ：カルス化（淡黄色）、Ｃｂｒ：カルス化（茶
色）、Ｃｂｌ：（枯死）、Ｂ：培養５週間で褐変又は枯
死、を示す。＋は、直径が１０mm程度以上のカルスを示
す。上記の表から明らかな通り、２，４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）１μＭとＮ−（２−クロロ−
４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）１〜１
０μＭとの組合せ、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸
（２，４−Ｄ）１μＭと１−フェニル−３−（１，２，
３−チアジアゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）１〜１
０μＭとの組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）１μＭと
Ｎ−（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素
（ＣＰＰＵ）１〜１０μＭとの組合せ、及びナフタレン
酢酸（ＮＡＡ）１μＭと１−フェニル−３−（１，２，
３−チアジアゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）１〜１
０μＭとの組合せにおいて、緑色〜淡黄色の良好なカル
スが得られた。
Ｃｃｙ：カルス化（淡黄色）、Ｃｂｒ：カルス化（茶
色）、Ｃｂｌ：（枯死）、Ｂ：培養５週間で褐変又は枯
死、を示す。＋は、直径が１０mm程度以上のカルスを示
す。上記の表から明らかな通り、２，４−ジクロロフェ
ノキシ酢酸（２，４−Ｄ）１μＭとＮ−（２−クロロ−
４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）１〜１
０μＭとの組合せ、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸
（２，４−Ｄ）１μＭと１−フェニル−３−（１，２，
３−チアジアゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）１〜１
０μＭとの組合せ、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）１μＭと
Ｎ−（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′−フェニル尿素
（ＣＰＰＵ）１〜１０μＭとの組合せ、及びナフタレン
酢酸（ＮＡＡ）１μＭと１−フェニル−３−（１，２，
３−チアジアゾール−５−イル）尿素（ＴＤＺ）１〜１
０μＭとの組合せにおいて、緑色〜淡黄色の良好なカル
スが得られた。
【００３６】多芽体の形成 １／２ＭＳ培地にシュークロースを３０ｇ／Ｌ添加した
ものを基本培地とし、これに種々の植物ホルモンを添加
した培地で上記のようにして形成したカルスを、培養し
た。植物ホルモンとしては、Ｎ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）、１−フェニ
ル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿
素（ＴＤＺ）、２−イソペンテニルアデニン（２−ｉ
Ｐ）、６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）又はゼアチ
ン（Ｎ6 −（ｔｒａｎｓ−４−ヒドロキシイソペンテニ
ルアデニン))を１〜１０μＭの濃度で添加した。
ものを基本培地とし、これに種々の植物ホルモンを添加
した培地で上記のようにして形成したカルスを、培養し
た。植物ホルモンとしては、Ｎ−（２−クロロ−４−ピ
リジル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）、１−フェニ
ル−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿
素（ＴＤＺ）、２−イソペンテニルアデニン（２−ｉ
Ｐ）、６−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）又はゼアチ
ン（Ｎ6 −（ｔｒａｎｓ−４−ヒドロキシイソペンテニ
ルアデニン))を１〜１０μＭの濃度で添加した。
【００３７】照度３０００Lx、日長１６時間（明期１６
時間、暗期８時間）温度２５℃において１９週間培養し
た。培養したカルスに対する、多芽体が誘導されたカル
スの数の比率は次の表５に示す通りであった。なお、１
０本以上のシュートを生じさせているカルスを多芽体と
称する。
時間、暗期８時間）温度２５℃において１９週間培養し
た。培養したカルスに対する、多芽体が誘導されたカル
スの数の比率は次の表５に示す通りであった。なお、１
０本以上のシュートを生じさせているカルスを多芽体と
称する。
【００３８】
【表５】
【００３９】表５に示す通り、２，４−ＤとＣＰＰＵの
組み合わせで誘導したカルスにおいて、サイトカイニン
系植物ホルモンに属するＮ−（２−クロロ−４−ピリジ
ル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）又は１−フェニル
−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素
（ＴＤＺ）５〜１０μＭが有効であった。
組み合わせで誘導したカルスにおいて、サイトカイニン
系植物ホルモンに属するＮ−（２−クロロ−４−ピリジ
ル）Ｎ′−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）又は１−フェニル
−３−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素
（ＴＤＺ）５〜１０μＭが有効であった。
【００４０】発根 １／２ＭＳ培地に、１５ｇ／Ｌのショ糖及び０．２５％
のゲランガムを含む培地に前記の多芽体から採取したシ
ュートを置床し、２５℃、照度３０００Lx、日長１６時
間（明期１６時間、暗期８時間）にて１ヶ月間培養し
た。発根率は約２６％であった。
のゲランガムを含む培地に前記の多芽体から採取したシ
ュートを置床し、２５℃、照度３０００Lx、日長１６時
間（明期１６時間、暗期８時間）にて１ヶ月間培養し
た。発根率は約２６％であった。
【００４１】実施例３、ヒラドツツジの増殖（２） 実施例１に記載したのと同様にしてヒラドツツジの葉片
からカルスを生成せしめ、さらに多芽体を形成せしめ、
実体顕微鏡下で５〜１０mmのシュートを切り取った。次
に、この切り取ったシュートを、１０μＭのインドール
−３−酪酸を添加した１／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／
Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、０日間（無処理）、１
日間、２日間、４日間又は４２日間培養し、次に、植物
ホルモン及びＭＳ成分を含有しない０．８％寒天培地に
移植して６週間培養した。培養条件は実施例１と同様に
した。その結果、次の表６に示す発根率が得られた。
からカルスを生成せしめ、さらに多芽体を形成せしめ、
実体顕微鏡下で５〜１０mmのシュートを切り取った。次
に、この切り取ったシュートを、１０μＭのインドール
−３−酪酸を添加した１／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／
Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、０日間（無処理）、１
日間、２日間、４日間又は４２日間培養し、次に、植物
ホルモン及びＭＳ成分を含有しない０．８％寒天培地に
移植して６週間培養した。培養条件は実施例１と同様に
した。その結果、次の表６に示す発根率が得られた。
【００４２】
【表６】
【００４３】上記の結果の通り、多芽体から切り取った
シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で培養して
発根させるのに先立って、オーキシン系植物ホルモンを
含有する培地で１〜４日間培養（処理）することによ
り、発根率が、無処理の場合（８４％）に比べて９３％
〜１００％に上昇した。
シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で培養して
発根させるのに先立って、オーキシン系植物ホルモンを
含有する培地で１〜４日間培養（処理）することによ
り、発根率が、無処理の場合（８４％）に比べて９３％
〜１００％に上昇した。
【００４４】実施例４、サツキの増殖（２） 実施例２に記載したのと同様にしてサツキの花弁からカ
ルスを生成せしめ、さらに多芽体を形成せしめ、実体顕
微鏡下で５〜１０mmのシュートを切り取った。次に、こ
の切り取ったシュートを、１μＭ又は１０μＭのインド
ール−３−酪酸を添加した１／２ＭＳ培地（ショ糖１５
ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、０日間（無処
理）、１日間、２日間、４日間、８日間、１６日間又は
４２日間培養し、次に、植物ホルモンを含有しない１／
４ＭＳ培地（ショ糖７．５ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２４
％）に移植して６週間培養した。培養条件は実施例１と
同様にした。その結果、次の表７に示す発根率が得られ
た。
ルスを生成せしめ、さらに多芽体を形成せしめ、実体顕
微鏡下で５〜１０mmのシュートを切り取った。次に、こ
の切り取ったシュートを、１μＭ又は１０μＭのインド
ール−３−酪酸を添加した１／２ＭＳ培地（ショ糖１５
ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、０日間（無処
理）、１日間、２日間、４日間、８日間、１６日間又は
４２日間培養し、次に、植物ホルモンを含有しない１／
４ＭＳ培地（ショ糖７．５ｇ／Ｌ、ゲランガム０．２４
％）に移植して６週間培養した。培養条件は実施例１と
同様にした。その結果、次の表７に示す発根率が得られ
た。
【００４５】
【表７】
【００４６】上記の結果の通り、多芽体から切り取った
シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で培養して
発根させるのに先立って、オーキシン系植物ホルモンで
あるインドール−３−酪酸（ＩＢＡ）を１０μＭ含有す
る培地で２〜４日間培養（処理）することにより、発根
率が、無処理の場合（２６％）に比べて９０％に上昇し
た。
シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で培養して
発根させるのに先立って、オーキシン系植物ホルモンで
あるインドール−３−酪酸（ＩＢＡ）を１０μＭ含有す
る培地で２〜４日間培養（処理）することにより、発根
率が、無処理の場合（２６％）に比べて９０％に上昇し
た。
【００４７】比較例１ 実施例４において多芽体から切り取ったシュートを、イ
ンドール−３−酢酸、インドール−３−酪酸、クロロイ
ンドール−３−酢酸、又は１−ナフタレン酢酸を１μＭ
又は１０μＭ含有する１／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／
Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、明条件１６時間、３０
００Ｌｘの条件下で６週間培養したが、発根は全く見ら
れなかった。
ンドール−３−酢酸、インドール−３−酪酸、クロロイ
ンドール−３−酢酸、又は１−ナフタレン酢酸を１μＭ
又は１０μＭ含有する１／２ＭＳ培地（ショ糖１５ｇ／
Ｌ、ゲランガム０．２５％）で、明条件１６時間、３０
００Ｌｘの条件下で６週間培養したが、発根は全く見ら
れなかった。
【００４８】比較例２ 実施例４において多芽体から切り取ったシュートを、バ
ーミンライト、鹿沼土又は水苔に植え付けて３ヶ月間培
養したところ、発根率にバーミュライトで３３％、鹿沼
土で５０％、水苔で１７％と非常に低かった。
ーミンライト、鹿沼土又は水苔に植え付けて３ヶ月間培
養したところ、発根率にバーミュライトで３３％、鹿沼
土で５０％、水苔で１７％と非常に低かった。
【００４９】
【発明の効果】以上の通り、本発明によれば、ツツジ属
の少数の親植物体から、非常に効率的に、大量の植物を
増殖させることができる。
の少数の親植物体から、非常に効率的に、大量の植物を
増殖させることができる。
【図１】図１は、本発明の方法を模式的に示す図であ
る。
る。
Claims (6)
- 【請求項１】 ツツジ属植物の大量増殖方法において、 （１）ツツジ属植物の組織片をオーキシン系植物ホルモ
ン及びサイトカイニン系植物ホルモンを含有する培地中
で培養することによりカルスを形成せしめ； （２）該カルスをサイトカイニン系植物ホルモンを含有
する培地中で培養することにより、多数のシュートを有
する多芽体を形成せしめ； （３）該多芽体から個々のシュートを切り取り；そして （４）該シュートを、植物ホルモンを含有しない培地で
培養することにより発根せしめる；ことを特徴とする方
法。 - 【請求項２】 前記段階（３）の後、前記段階（４）の
前に、該段階（３）において切り取ったシュートを、オ
ーキシン系植物ホルモンを含有する培地で培養すること
を特徴とする、請求項１に記載の方法。 - 【請求項３】 前記分化した組織片が花弁又は葉片であ
る、請求項１又は２に記載の方法。 - 【請求項４】 前記オーキシン系植物ホルモンが、イン
ドール−３−酪酸（ＩＢＡ）、インドール−３−酢酸
（ＩＡＡ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４
−Ｄ）もしくは１−ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）又はこれ
らの組合せである、請求項１〜３のいずれか１項に記載
の方法。 - 【請求項５】 前記サイトカイニン系植物ホルモンが、
Ｎ6 −（２−イソペンテニルアデニン)(２−ｉＰ）、６
−ベンジルアミノプリン（ＢＡＰ）、１−フェニル−３
−（１，２，３−チアジアゾール−５−イル）尿素（Ｔ
ＤＺ）もしくはＮ−（２−クロロ−４−ピリジル）Ｎ′
−フェニル尿素（ＣＰＰＵ）、又はこれらの組合せであ
る、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項６】 前記オーキシン系植物ホルモンを含有す
る培地でのシュートの培養を２〜４日間行う、請求項２
に記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15601298A JPH11266728A (ja) | 1998-01-23 | 1998-06-04 | ツツジ属植物の大量増殖方法 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1131298 | 1998-01-23 | ||
| JP10-11312 | 1998-01-23 | ||
| JP15601298A JPH11266728A (ja) | 1998-01-23 | 1998-06-04 | ツツジ属植物の大量増殖方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH11266728A true JPH11266728A (ja) | 1999-10-05 |
Family
ID=26346725
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15601298A Pending JPH11266728A (ja) | 1998-01-23 | 1998-06-04 | ツツジ属植物の大量増殖方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH11266728A (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2005110506A (ja) * | 2003-10-02 | 2005-04-28 | Bridgestone Corp | 組織培養によるパラゴムノキ精英樹の大量増殖法 |
| CN104472354A (zh) * | 2014-11-21 | 2015-04-01 | 广西中医药大学 | 一种促进云南金叶子快速繁殖的方法 |
| CN104885932A (zh) * | 2014-12-11 | 2015-09-09 | 华南农业大学 | 一种毛棉杜鹃的组培快繁方法 |
| CN105850737A (zh) * | 2016-04-08 | 2016-08-17 | 石家庄市农林科学研究院 | 一种高山杜鹃“红粉佳人”染色体加倍方法 |
| CN107242139A (zh) * | 2017-08-15 | 2017-10-13 | 石家庄市农林科学研究院 | 一种高山杜鹃‘粉金蝶’体细胞胚的诱导方法 |
| CN107494274A (zh) * | 2017-10-12 | 2017-12-22 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种高山杜鹃外植体的剥芽消毒方法 |
| JP2020054301A (ja) * | 2018-10-03 | 2020-04-09 | 住友ゴム工業株式会社 | シュートの発根方法 |
-
1998
- 1998-06-04 JP JP15601298A patent/JPH11266728A/ja active Pending
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| JP4523769B2 (ja) * | 2003-10-02 | 2010-08-11 | 株式会社ブリヂストン | 組織培養によるパラゴムノキ精英樹の大量増殖法 |
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| CN107242139B (zh) * | 2017-08-15 | 2024-04-19 | 石家庄市农林科学研究院 | 一种高山杜鹃‘粉金蝶’体细胞胚的诱导方法 |
| CN107494274A (zh) * | 2017-10-12 | 2017-12-22 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种高山杜鹃外植体的剥芽消毒方法 |
| CN107494274B (zh) * | 2017-10-12 | 2019-10-22 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 一种高山杜鹃外植体的剥芽消毒方法 |
| JP2020054301A (ja) * | 2018-10-03 | 2020-04-09 | 住友ゴム工業株式会社 | シュートの発根方法 |
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