JPH10503645A

JPH10503645A - バキュロウイルスにより発現される活性カルパイン

Info

Publication number: JPH10503645A
Application number: JP8505073A
Authority: JP
Inventors: シエリル・エルマイヤー，; リチヤード・ダブリユースコツト，; ロバートサイマン，
Original assignee: セフアロン・インコーポレーテツド
Priority date: 1994-07-15
Filing date: 1995-07-06
Publication date: 1998-04-07
Anticipated expiration: 2015-07-06
Also published as: DE69533135T2; EP0773991B1; DK0773991T3; JP4429385B2; ATE268816T1; US6057143A; PT773991E; WO1996002634A1; CA2194763A1; DE69533135D1; EP0773991A4; ES2222465T3; AU3003395A; US5869336A; EP0773991A1

Abstract

(57)【要約】本発明は組み換え的手段により昆虫細胞内で産生された酵素活性を有する哺乳動物のカルパインに向けられる。80ｋＤａサブユニット、30ｋＤａサブユニット、および双方のサブユニットをコードするｃＤＮＡを包含する組み換えベクター類およびバキュロウイルス類が記述される。酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパインを産生するための方法についてもまた記述される。

Description

【発明の詳細な説明】バキュロウイルスにより発現される活性カルパイン発明の分野本発明は、酵素活性を有する組み換えヒトカルパイン、および、バキュロウイルス−昆虫細胞系における組み換え技術を用いたその調製方法に関する。発明の背景Ａ．カルパインカルパインはカルシウムで活性化される中性のプロテアーゼであり、ＣＡＮＰまたはＥＣ 3.4.22.17としても知られる。哺乳動物組織内で偏在的に発現される細胞内システインプロテアーゼである（アオキ(Aoki)ら、ＦＥＢＳ Letters 205 :313-317，1986）。カルパインは神経変性（アルツハイマー病、ハンチントン病、およびパーキンソン病）、筋萎縮、卒中、運動神経の損傷、急性の中枢神経系（ＣＮＳ）の傷害、筋ジストロフィー、骨吸収、血小板凝集、および炎症を含み、しかしこれに限られない多くの変性疾患に関係してきた。ヒトカルパインを含む哺乳動物のカルパインは多量体である。２個の異なるサブユニットから成り、それは１個の30ｋＤａサブユニットと１個の80ｋＤａサブユニットである。そして従って１個のヘテロダイマー（異種二量体）である。カルパインＩ（μ−カルパイン、μＣＡＮＰ）とカルパインＩＩ（ｍ−カルパイン、ｍＣＡＮＰ）という２種の形態のカルパインが存在する。それらは活性化に必要なカルシウム濃度に対するその感受性において異なる。カルパインＩは、活性化のために低マイクロモル濃度のカルシウムのみを必要とするが、一方、カルパインＩＩは高マイクロモルもしくはミリモル濃度を必要とする（アオキ(Aoki)ら、上記、およびデルカ(DeLuca)ら、Biochem．Biophys．Acta 1216:81-83，1993）。同一の30ｋＤａサブユニットがいずれの形態でも共通である。２種のヒトカルパインはその80ｋＤａサブユニットをコードするＤＮＡ配列において異なり、62％の相同性を共有する。80ｋＤａサブユニットは不活性であるが、しかし、カルシウム存在下で76ｋＤａの活性型に自己分解されるという証拠がある（ツィンマーマン (Zimmerman)ら、Biochem．Biophys．Acta 1078:192-198，1991）。サイマン(R．Siman)は、ニューロトキシティーオブエクサイテイトリーアミノアシッヅ(Neurotoxicity of Excitatory Amino Acids)、グイドッティ( A．Guidotti)編、レイヴァンプレスリミテッド(Raven Press，Ltd.)、ニューヨーク(1990)で、徐々にニューロン細胞死に導く、刺激性アミノ酸（ＥＡＡ）で誘発される神経毒性におけるカルパインＩの役割について報告した。サイマンは、カルパインＩの活性化は神経変性の過程における初期のひとつの出来事であり、また、ニューロンの死に対する単なる二次的応答ではないという主張を前進させた。サイマンはさらに、その当時は唯一の、選択性の高いカルパイン阻害剤 −カルパスタチン−が利用できると報告した。しかしながら、カルパスタチンはおよそ280ｋＤａの大きな球形タンパク質であるため、容易には細胞によって取り込まれない。サイマンはまた、ロイペプチンを含むより幅広い特異性のプロテアーゼインヒビター（タンパク質分解酵素阻害剤）が、インビボでのＥＡＡ誘発性のタンパク質分解の低減に不成功に終わったと報告した。ロイペプチンはおそらく細胞に入ることができなかったため無効であった。イワモト(Iwamoto)ら、ブレインリサーチ(Brain Research)、561:177-180(1 991)は、アルツハイマー型の痴呆に罹患した人由来の脳組織における班および神経細胞内の線維濃縮体の蓄積の基礎をなす異常なタンパク質分解において、カルパインの活性化が重要な因子であるかもしれないことを記述した。サイトウ(Saito)ら、プロシーディングスオブナショナルアカデミーオブサイエンスＵＳＡ(Proc．Natl．Acad．Sci．USA)、90:2628-2632(1993) は、シナプスの損失およびニューロン細胞死がアルツハイマー病におけるうっ血性障害の程度と強く相関することを報告した。彼らはまた、アルツハイマー病の患者の死後ヒト脳においてカルパインＩが有意に活性化されていたこと、およびその活性化の程度が最も大きな変性の量を示す脳のそれらの領域と相関していたことも報告した。カルパインの活性化の影響は、最も脆弱なニューロンの集団において、シナプスの損失もしくは細胞死を引き起こす前の神経原線維性の病状およびアミロイド前駆体タンパク質の異常なプロセシングに寄与しているかもしれないことが示唆された。カルパインと神経変性疾患との間の関連のため、阻害剤によるカルパインの薬理学的調整は、例えばアルツハイマー病などのこうした疾患における潜在的な治療戦略として考慮に値する。ラミ(Rami)ら、ブレインリサーチ(Brain Research)、690:67-70(1991)は、カルパイン阻害剤Ｉおよびロイペプチンの双方が、ラットの双方の頚動脈をクランプで締め付けそして動脈圧を低下させることにより誘発した虚血の結果起きた虚血性および低酸素性の損傷に対し、神経を保護したと報告した。リー(Lee)ら、プロシーディングスオブナショナルアカデミーオブサイエンスＵＳＡ(Proc．Natl．Acad．Sci．USA)、88:7233-7237(1991)は、カルシウムにより活性化されるタンパク質分解は虚血後の細胞死の過程において重要な出来事であるとの証拠を提出し、また、彼らは、タンパク質分解阻害剤ロイペプチンによるカルシウムにより活性化されるタンパク質分解の阻害は、脆弱な海馬の神経の虚血後の変性から保護したと報告した。ロイペプチンは外傷が引き起こすカルパインの応答をインビボで阻害することがすでに示されていた唯一のプロテアーゼインヒビターであった（ソイベルト(Seubert)ら、ブレインリサーチ(Brain Research)、459:226-232，1988）ため選択された。しかしながら、著者らは、カルシウムにより活性化されるタンパク質分解を調整することの治療上の有用性は、おそらく、より浸透できる、強力でかつ特異的なプロテアーゼインヒビターの開発に依存するであろうと言及した。前述からの証拠のように、カルパインの特異的阻害剤は、カルパインが関係するそれらの神経変性疾患の治療の手段を提供する可能性がある。カルパスタチンはその細胞非浸透性のため限られた有用性を提供する。より幅広い特異性のプロテアーゼインヒビターはインビボで機能しないかもしれず、および／もしくは望ましくない副作用を有するかもしれない。従って、他のカルパイン阻害剤が同定されなければならず、また、得やすく、都合のよい、安全なカルパインの供給源が、こうした阻害剤の探索を促進するであろう。Ｂ．カルパインｃＤＮＡ阻害剤について試験するための酵素活性を有する組み換えヒトカルパインは、1)かなりより都合のよい、直ちに利用できる大量の酵素の供給源となる、2)より容易に精製される、および3)その供給源がヒト組織、とりわけヒト血球すなわち潜在的に危険なウイルス類である場合に扱われなければならない安全性に関する討論(issues)を免れる、という利点を提供する。天然のヒトカルパインは現在、ヒト赤血球から単離され、そして、著者らが明らかに同質であると特徴づけているものにまで精製されることができる（ハタナカ(Hatanaka)ら、バイオメディカルリサーチ(Biomed．Res.)、4:381-388，1983）。しかしながら、供給源に関する明らかな問題はさておき、出発原料の量に比較してカルパインが低濃度のため、精製手続きは極めて退屈となる可能性がある。さらに、天然のカルパインは、精製の間に分離されなければならない内因性の阻害剤（カルパスタチン）の存在下で単離される。酵素活性を有する大量のカルパインの良好な供給源は、1)カルパイン阻害剤の再現性のあるアッセイにおける使用に対するカルパインの有用性を増加させる、そして2)当該酵素の結晶化を促進し、それによって合理的な阻害剤のデザインを可能とする、ことにより、カルパイン阻害剤の探索を大きく促進すると思われる。産生のための組み換え系は、構造に関する研究において援助するための目指す(directed)変異体類の産生をさらに促進する。従って、活性のカルパインを産生するための組み換え系が必要とされる。組み換え的手段による酵素活性を有するカルパインの産生における問題は、２種の異なる遺伝子産物（80ｋＤａサブユニットおよび30ｋＤａサブユニット）の発現、適切なプロセシングおよび個々の産物のフォールディングを得ること、そして酵素活性を有する分子を産生するための２種の産物の適切な組み合わせの獲得、に関する問題である。先の論考で述べたように、活性化されたカルパインはニューロン細胞を殺すことに関係している。不幸なことに、その後、ある組み換え系で産生された酵素活性を有するいかなるカルパインも、その発現系にとって有害もしくは致死的であろうと予測された。利用された発現系に対するいかなる有害な作用も、活性化された産生物がより多量に発現されるほど増加するであろうと予測された。とりわけ、多くの哺乳動物細胞は内因性のカルパイン阻害剤を産生し、それは他の点では致死的なプロテアーゼの活性全体の重要な調節をもたらすこともできる。アオキら、上記、は、彼らがヒトカルパインのｃＤＮＡクローンの配列から類推したヒトカルパインＩ（μＣＡＮＰ）の80ｋＤａサブユニットの完全なアミノ酸配列を記述した。ヒトカルパインのｃＤＮＡクローンは、ウサギμＣＡＮＰの大きいサブユニットのｃＤＮＡをプローブとして用い、ヒト骨格筋からのｃＤＮＡライブラリーから単離された。ｃＤＮＡの発現は報告されていない。イマジョウ(Imajoh)ら、バイオケミストリー(Biochemistry)、27:8122-8128(1 988)は、ニワトリＣＡＮＰおよびウサギｍＣＡＮＰをプローブとした、ヒト骨格筋ライブラリーからヒトカルパインの大きいサブユニットのｃＤＮＡクローンの単離を記述した。推定されるタンパク質はμＣＡＮＰおよびニワトリＣＡＮＰについて記述されたものと本質的に同じ構造的特徴を有していたと報告された。ヒトμＣＡＮＰおよびニワトリＣＡＮＰに対するヒトｍＣＡＮＰのアミノ酸配列の類似性は、それぞれ62％および66％と報告された。ｃＤＮＡの発現は記述もしくは示唆されていない。オオノ(Ohno)ら、ヌクレイックアシッヅリサーチ(Nucleic Acids Research)、14:5559(1986)は、ヒト脾臓ｃＤＮＡライブラリーから単離されたカルシウムで活性化されるヒトのプロテアーゼの小さいサブユニット（30ｋＤａ）をコードするｃＤＮＡ配列を記述した。報告されたウサギのアミノ酸配列およびブタの配列との比較は、差異が３％のみであることを明らかにした。デルカら、上記は、ラットのカルパインＩＩ（ｍＣＡＮＰ）の80ｋＤａサブユニットのｃＤＮＡの分子クローニングおよび細菌での発現を報告した。当該ｃＤＮＡは、報告によれば、ヒトカルパインＩＩと93％の配列同一性を、また、ヒトカルパインＩとは61％の同一性を示すタンパク質をコードする。当該ｃＤＮＡの発現は、大腸菌中、ファーゲミド(Phagemid)発現ベクターによった。発現された産生物は細胞の超音波破砕後に不溶性かつ不活性であったため、カルパイン阻害剤のスクリーニングには用いられることはできなかった。Ｃ．バキュロウイルス発現系ルーコウ(V．Luckow)、カレントオピニオンインバイオテクノロジー(Cu rrent Opinion in Biotechnology)、4:546-572(1993)およびキッド(Kidd)ら、アプライドバイオケミストリーアンドバイオテクノロジー(Applied Biochem ．and Biotech.)、42:137-159(1993)は、最近、それぞれ、ヒト遺伝子産物の発現のためのバキュロウイルス系、および、発現ベクターとしてのバキュロウイルス類の使用を総説した。ルーコウは酵素を含む多数の異なる種類のタンパク質の産生を論考した。しかしながら、ただひとつのタンパク質分解酵素、すなわちメタロプロテアーゼ・ストロメリシンの産生が言及される。カルパインとは異なり、このタンパク質は多量体ではない。キッドらは、Ｘ線構造解析および機能を有する多サブユニット分子を形成するようなサブユニットの会合への、バキュロウイルスで産生されたタンパク質の使用を論考した。多数の例が機能を有する分子を産生するような適切なサブユニットの会合を表わした。実際上すべての場合において、バキュロウイルスでの発現が、フォールディングした分子の構造的完全性および完全な生物学的機能に帰着することを著者らが幅広く述べているにもかかわらず、機能をもつ酵素への、二量体または多量体の酵素サブユニットの会合は報告されなかった。さらに、多サブユニット分子すなわちＮａ，Ｋ，ＡＴＰ−ａｓｅを含む他の例において、サブユニットの会合は時には不十分であった（デトマソ(DeTomaso)ら、下記）。他の研究者もバキュロウイルス系における酵素の発現を報告している。バーネット(Vernet)ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー(J．Biol． Chem.)、27:16661-16666(1990)は、昆虫細胞からのパパイン前駆体の分泌を記述した。パパインはシステインプロテアーゼである。プレプロパパイン遺伝子はトランスファーベクターＩｐＤＣ１２５中のポリヘドロンプロモーターの下流にクローニングされた。当該組み換え構築物は、相同的組み換えにより多角体病ウイルスアウトグラファカリフォルニカ(Autographa californica)のゲノム内に組み込まれた。酵素活性を有しないパパイン前駆体が、組み換えバキュロウイルスを感染させたスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)Ｓｆ９細胞から回収された。活性の酵素を産生するためのパパイン前駆体の適切なプロセシングは感染細胞中では起こらなかった。フェルティッヒ(Fertig)ら、サイトテクノロジー(Cytotechnology)、 11:67-75(1993)は、プロカリクレインの産生を記述した。これはセリンプロテアーゼカリクレインの前駆体である。プロカリクレインは、組み換え核多角病体ウイルスアウトグラファカリフォルニカ(Autographa californica)（ＡｃＮＰＶ）のＥ２株を感染させた、スポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugip erda)（Ｓｆ９）およびマメストラブラッシケ(Mamestra brassicae)（ＩＺＤ −Ｍｂ５０３）由来の昆虫細胞内で産生された。活性のある酵素を得るために、産生されたプロカリクレインはトリプシンを用いインビトロで活性化された。バトン(Button)ら、ジーン(Gene)、133:75-81(1993)は、バキュロウイルス− 昆虫細胞発現系におけるレイシュマニアマジョール(Leishmania major)のメタロプロテイナーゼＧＰ６３の産生を記述した。当該酵素は、組み換え核多角病体ウイルスアウトグラファカリフォルニカ(Autographa californica)（ＡｃＮＰＶ）を感染させたスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)（Ｓｆ９）細胞から、その後塩化第二水銀処理により完全なタンパク質分解酵素活性を有するよう活性化される潜在的プロテアーゼとして、分泌された。ヒロワタリ(Hirowatari)ら、Arch．Virol.、133:349-356(1993)は、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）のウイルス前駆体タンパク質のプロセシングに必要とされる２種のウイルス性タンパク質分解酵素活性を示すと考えられているポリペプチドの発現を記述した。当該ポリペプチドは組み換えバキュロウイルスを感染させた昆虫細胞株Ｓｆ２１中で発現された。バキュロウイルストランスファーベクターｐＶＬ９４１が利用された。プロセシングを受けた70ｋＤａのタンパク質の存在からタンパク質分解酵素活性が推論された。発明者の知るところではバキュロウイルス系における酵素活性を有する多量体プロテアーゼ類の産生は報告されていないにもかかわらず、バキュロウイルス系はプロテアーゼ以外の機能をもつ多量体の酵素を発現するために用いられてきた。デトマソ(DeTomaso)ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー(J． Biol．Chem.)、268(2):1470-1478(1993)は、バキュロウイルス発現系を用いての機能をもつラットＮａ，Ｋ−ＡＴＰａｓｅの発現を記述している。昆虫細胞を用いた発現系は、いくつかの昆虫細胞はほとんどもしくはまったくＮａ，Ｋ−ＡＴＰａｓｅを有しないため選択された。スポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)由来のＳｆ−９細胞が利用された。バキュロウイルスはアウトグラファカリフォルニカ(Autographa californica)であった。しかしながら、昆虫細胞から得られた酵素の活性は、イヌ腎の外側髄質由来の酵素活性の20−25％程度のみであったため、著者らは発現された酵素のある部分が不活性であったと結論した。ウェンジ(Wen-Ji)ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー(J． Biol．Chem.)、268(13):9675-9680(1993)は、Ｓｆ９細胞を用いたバキュロウイルス系における機能をもつ哺乳動物タンパク質ファルネシルトランスフェラーゼの発現について記述している。発現されたタンパク質の特異的活性は510nM/mg /hrであった。これはラット脳の酵素について報告された値と本質的に同一であることが述べられている。しかしながら、天然の組織から得られたタンパク質の量では事前に直接のタンパク質濃度のアッセイができなかったことが言及されており、従って、これは、標準的なタンパク質のアッセイ法を用いてタンパク質の特異的活性が決定された最初である。カルパインのような、酵素活性を有し、多量体の、潜在的に致死的なプロテアーゼの発現に関する明細もしくは示唆はいかなる発現系においても存在しない。カルパインＩの発現はとりわけ困難であり、また、ある阻害剤の存在を必要とするであろうと予測された。なぜなら、カルパインＩは、感染サイクルの間に達成され得る非常に低濃度のカルシウムイオンにより活性化されるためである。驚くべきことに、本発明者らは、酵素活性を有するカルパインが、バキュロウイルス系で、また、阻害剤の非存在下に発現することができることを予期せずして見出した。発明の要約本発明は、組み換え的手段による酵素活性を有する哺乳動物のカルパインの産生に向けられる。酵素活性を有する組み換えヒトカルパインＩのバキュロウイルス−昆虫細胞系における産生がとりわけ記述される。こうして産生されたカルパインは、潜在的なカルパイン阻害剤をスクリーニングするためのアッセイにおいて有益に用いられることができ、従って、カルパインが関係してきたそれらの疾患を治療するために用いられることができるカルパイン阻害剤の迅速かつ効率的な選択、およびカルパイン阻害剤の理論的なデザインのために結晶化されるのに十分なカルパインを供給することを考慮に入れることにより、当該技術を進歩させる。こうして産生されたカルパインはまた、食肉軟化剤および血液凝固溶解剤としてを含む他の応用においても用いられることができる。ひとつの局面においては、本発明は組み換え技術により産生される酵素活性を有する哺乳動物カルパインに向けられる。他の局面では、本発明は酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン産生のための、哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含むプラスミドベクターに関する。さらにもうひとつの局面では、本発明は酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン産生のための哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス類に関する。さらなる局面では、本発明はバキュロウイルス−昆虫細胞系を用いた組み換え的手段による酵素活性を有する哺乳動物カルパイン産生のためのある方法に関する。図面の簡単な説明第１図はカルパインの30ｋＤａサブユニットのためのクローニング戦略を図示する。第２図はカルパインＩの80ｋＤａサブユニットのためのクローニング戦略を図示する。第３図は二重構築物(double construct)のためのクローニング戦略を図示する。第４図はイムノブロット法により決定されたＳｆ２１細胞中でのサブユニット類の発現を図示する。第５ａ−ｄ図はカルシウム依存性のタンパク質分解酵素活性の測定を図示する。第６ａ−ｂ図は不活性の80ｋＤａサブユニットの76ｋＤａの活性形へのカルシウム依存性のプロセシングを図示する。第７図は血清を含まない培地での改善された発現を図示する。第８図は単独で発現された80ｋＤａサブユニットのカルシウム依存性のタンパク質分解酵素活性の測定を図示する。第９図は組み換えおよび天然のヒトカルパインＩのカルシウムによる活性化プロフィルを図示する。発明の詳細な記述本発明は組み換え的手段による哺乳動物カルパイン、とりわけ、酵素活性を有するカルパインの産生に向けられる。ここで用いられる「カルパイン」はカルパインＩおよびカルパインＩＩの双方を含み、２個のサブユニットから成るヘテロダイマーを指す。これらのサブユニットは、およそ30ｋＤａの分子量を有するより小さいサブユニット、およびその活性化状態に依存しておよそ80ｋＤａの分子量を有するより大きなサブユニットである。80ｋＤａサブユニットへの言及は、 80ｋＤａサブユニットの自己分解から生じた少なくとも77ｋＤａおよび76ｋＤａの形態を含む。当業者には明らかであろうように、異なる哺乳動物種由来の当該サブユニット類、それどころか同一の哺乳動物種の異なる組織由来の当該サブユニット類（ハタナカ、上記）も、分子量が異なることができる。これらの変動は含まれる。本明細書で用いられる「酵素活性」とは、カルパインそれ自身す、なわち自己分解の結果としてを含む、少なくとも一種の既知のカルパインの基質を測定可能な程度加水分解する能力を指す。酵素活性は、蛍光および比色分析を含むがこれらに限定されない、こうした決定を行うための当業者が受容できるいかなる手段によっても測定することができる。上述の酵素活性を維持するのに十分な各サブユニットのその部分が含まれる。本発明による方法は、酵素活性に必要なコード配列（ｃＤＮＡ）のそれらの領域の迅速な決定、および、コード配列の内部での変異に帰着する活性の変化を促進する。本明細書で用いられる「発現による酵素活性」という句は、カルシウムの存在以外のいかなる操作をも必要とせずに発現と同時に測定可能な程度の酵素活性を有するカルパインもしくはそれのサブユニットを指す。本明細書で用いられる「発現」は、本発明によるベクター類およびウイルス類中に包含されるｃＤＮＡの昆虫および他の細胞におけるインビトロでの翻訳を含むが、これに限定はされない。発現の間には通常、とりわけ血清を含む培地の例においては、ある程度のカルシウムイオンが存在するため、こうして産生されたカルパインは発現と同時に酵素活性を有する。本明細書で用いられる「組み換え」という用語は、ＤＮＡ配列の新規な組み合わせを包含する分子、微生物、プラスミド、ファージ、もしくは他のベクターを含むが、これに限定はされない。「微生物」という用語はウイルスおよび細菌を含む。「プラスミド」、「ファージ」、および「ベクター」という用語は、例えば「アディクショナリーオブジェネティックエンジニアリング(A Diction ary of Genetic Engineering)」、スティーヴン・Ｇ・オリバー(Stephen G．Oli ver)とジョン・Ｍ・ワード(John M．Ward)編、ケンブリッジユニバーシティプレス(Cambridge University Press)、ケンブリッジ(Cambridge)、1988（ここに引用文献として編入されている）に定義されているように当業者に知られているその意味に従って使用される。「哺乳動物」という用語は系統発生の分類が「哺乳類」であるすべての動物を含む。好ましくは、当該カルパインは酵素活性を有する組み換えヒトカルパインである。さらに好ましくは、当該カルパインは酵素活性を有する組み換えヒトカルパインＩである。以下の開示に用いられているバキュロウイルスアウトグラファカリフォルニカ(Autographa californica)核多角病体ウイルス（ＡｃＮＰＶ）は具体例である。しかしながら、ボンビクスモリ(Bombyx mori)核多角病体ウイルス（ＢｍＮＰＶ）、ヘリオティスゼア(Heliothis zea)核多角病体ウイルス、リマントリアディスパー(Lymantria dispar)核多角病体ウイルスなどの他のバキュロウイルス類、ならびにオルシテス(Orcytes)属のバキュロウイルス類、ポックスウイルス(Poxviridae)属およびパルボウイルス(Parvoviradae)属のウイルス類、コリストネウラ(Choristoneura)属、およびアムサクタ(Amsacta)属もＡｃＮＰＶの代わりに考慮することができる。「プリンシパルズアンドプラクティスオブプロテインエンジニアリング(Principals and Practice of Prot ein Engineering)」、ジェフリー・Ｌ・クリーランド(Jefferey L．Cleland)とチャールズ・Ｓ・クレイク(Charles S．Craik)編、ジョンウィレイアンドサンズ(John Wiley & Sons)、605 サードアベニュー(Third Avenue)、ニューヨーク(New York)、NY 10158-0012中の「インセクトセルエクスプレッションテクノロジー(Insect Cell Expression Technology)」、1−40ページを参照。本発明を具体的に示すために昆虫スポドプテラフルギペルダ(Spodoptera fr ugiperda)由来の細胞が用いられたが、400を越える昆虫細胞株が確立され、そしてとりわけトリコプルシアニ(Trichoplusia ni)由来のものが使用されうる。クリーランドとクレイク、上記を参照。当業者は発現に適したある昆虫細胞を容易に決定することができる。酵母や哺乳動物細胞のような他の細胞も適切なベクターとともに利用することができることもまた意図している。適切なベクターの選択は当該技術分野の技能の範囲内である。バキュロウイルス類によって発現すべく異種遺伝子は通常、ＡｃＮＰＶのポリヘドリンもしくはＰ１０プロモーターの調節下にある。なぜなら、ポリヘドリンおよびＰ１０遺伝子はウイルスの複製もしくは成熟に不可欠でなく、また、高度に転写されるからである。これはこの発明の実施のための他のプロモーター類の使用を決して制限するものではない。クリーランドとクレイク、上記を参照。酵素活性を有する組み換えカルパインの発現および回収が具体的に開示される。これはとりわけカルパインＩについては予期されないことであった。カルパインＩはマイクロモル量のカルシウムの存在下で活性化される。なぜなら、産生のために用いられる細胞が培養される組織培養培地中にはカルシウムイオンが存在しているためである。感染した細胞は一般に「漏れやすく」なるため、産生されたいかなるカルパインＩも活性化するのに十分な量のカルシウムイオンが周囲の培地から細胞に入り、次いで、活性化されたカルパインＩが細胞に致死的となり、自己分解によりカルパインＩにそれ自身の分解をもたらすと予測された。組み換え的に産生されたカルパインは、酵素学的に完全に活性であり、また、天然のカルパインと同様の酵素活性プロフィルを有することが決定されている。このことは、治療に用いる潜在的なカルパイン阻害剤のスクリーニングへのこうした組み換え的に得られたカルパインの使用にとって重要である。組み換え的に産生されたカルパインは既知のカルパイン阻害剤に対して同様の感受性、およびセリンプロテアーゼもしくはアスパラギン酸プロテアーゼの阻害剤に対する感受性の欠如を示した。1/2Ｖ_maxを達成するのに必要なカルシウムの量は、天然および組み換えカルパイン双方に対し本質的に同様である。同様に、基質の加水分解速度も比活性でそうであるように同様である（データは示されない）。繰り返すが、これらの特徴は本発明によるカルパインの十分な活用には重要である。驚くべきことに、80ｋＤａサブユニット単独での比活性は、ヘテロダイマーの活性のおよそ20−25％であると決定された。天然のヘテロダイマーから解離した 80ｋＤａサブユニットの比活性は、すでに、ヘテロダイマーの３％にすぎないと決定された。（キクチ(Kikuchi)ら、Arch．Biochem．Biophys.、234: 639-645， 1984）。従って、組み換え的に産生された80ｋＤａサブユニットの構造は、天然のカルパインから解離したサブユニットのものと異なっていると考えられ、また、活性のサブユニットの構造をより厳密に表示することができる。従って、カルパインサブユニット類の組み換えによる産生は、個々のサブユニットの構造の研究を促進する。本発明においては、カルパインの発現は、カルパインのそれぞれのサブユニットのｃＤＮＡを含む２種の別個のウイルスを細胞に共感染させるか、あるいは双方のサブユニットのｃＤＮＡを含む単一のウイルスを昆虫細胞に感染させるかのいずれかを用いての、同じ昆虫細胞内での80ｋＤａおよび30ｋＤａサブユニットの双方の発現により達成された。増加した量の80ｋＤａサブユニットは、30ｋＤａサブユニットが共発現された場合に発現されたこともまた発見され、従って、 30ｋＤａサブユニットは80ｋＤａのサブユニットに対し安定化作用を有する可能性もある。双方のカルパインサブユニットを包含するウイルス類を細胞に感染させた場合には、すべての感染した細胞が双方のサブユニットを発現するはずである。添加された感染多重度（ＭＯＩ）に関係なく、一方もしくは他方のサブユニットのみを包含するウイルスを細胞に感染させる場合には、より高いＭＯＩが双方のサブユニットの発現を達成させるのに必要とされる。例えば、細胞の99％が双方のウイルスの粒子をひとつもしくはそれ以上包含し、そして従って双方のサブユニットを発現するためには、それぞれのウイルスに対するＭＯＩが５であることが必要とされる。好ましいある態様においては、発現は、単一の細胞内での双方のサブユニットの共発現により果たされる。組み換えカルパインバキュロウイルスを構築するために、30ｋＤａおよび80ｋＤａサブユニットの双方のコード領域の一部に対するプローブがポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によりｃＤＮＡライブラリーから調製され、そしてヒトｃＤＮＡファージライブラリーのスクリーニングに用いられた。それぞれのサブユニットのコード領域の大部分を包含するファージ類が単離され、そして、挿入ＤＮＡがサブクローニングされた。単離されたクローンに存在しないいかなる領域も、ライブラリーからＰＣＲにより増幅され、配列を確認され、そして完全なカルパインコード領域を産出するように部分的なクローンに付加された。選ばれたヒトｃＤＮＡライブラリーはクロンテック(Clontech)社（パロアルト(Palo Alto) 、カリフォルニア州(CA)）から入手できる脾臓ライブラリー（＃ＨＬ１１３４ａ）であった。脾臓ライブラリーは、報告されたラット脾臓でのカルパインＩおよびＩＩの豊富な発現に基づいて選ばれた（ムラチ(Murachi)、Trends Biochem．S ci．8:167-169，1983）。第１表はヒトカルパインの80ｋＤａおよび30ｋＤａサブユニット部分の増幅のために用いられた合成オリゴヌクレオチドプライマー類を列挙する。プライマー類は、カルパインの80ｋＤａサブユニット（アオキ(Aoki)ら、ＦＥＢＳ Letters 205:313-317，1986；引用することにより本明細書の内容となる）および30ｋＤａサブユニット（オオノ(Ohno)ら、ヌクレイックアシッヅリサーチ(Nucl．Acids Res．14:5559，1986；引用することにより本明細書の内容となる）の発表されたｃＤＮＡ配列に基づいて選択された。カルパインＩの80 ｋＤａサブユニットのためのプライマー類はさらに、関連するヒトカルパインＩＩに対するその不同性に基づいて選ばれ、また、カルパインＩＩの80ｋＤａサブユニットのためのプライマー類はヒトカルパインＩに対するその不同性に基づいて選ばれた。配列内部のプライマーは既知の制限エンドヌクレアーゼ切断部位のすぐ外側となるように選択され、プラスミドベクターへのＰＣＲ断片のサブクローニングのためにそれらの部位でのその後の切断を可能にした。第１表中のすべての配列は５’側から３’側へと報告されている。配列の後の「Ｓ」はセンス配列を指す。「ＡＳ」はアンチセンス配列を指す。30ｋＤａサブユニットのためのプライマー類は「30」により、また、カルパインＩおよびＩＩの80ｋＤａサブユニットのためのプライマー類はそれぞれ「80I」もしくは「80II」と命名されている。配列番号の下のカッコは研究所内部の名称を表し、そしてこれらは以下の実施例中で用いられる。すべてのポリメラーゼ連鎖反応は、供給された緩衝液、0.2mMｄＮＴＰｓ（Taq およびTli ＤＮＡポリメラーゼ）もしくは40μMｄＮＴＰｓ（UlTma ＤＮＡポリメラーゼ）、0.75−２mMの添加した塩化マグネシウム、および0.25μMの各プライマーの存在下、2.5単位のTaq ＤＮＡポリメラーゼ（プロメガ(Promega)社、マジソン(Madison)、ウィスコンシン州(WI)）、３単位のUlTma ＤＮＡポリメラーゼ（パーキン・エルマー(Parkin Elmer)社、ノーウォーク(Norwalk)、コネチカット州(CT)）もしくは２単位のTli ＤＮＡポリメラーゼ（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）のいずれかを用い、サーマルサイクラー（パーキン・エルマー社、ノーウォーク、コネチカット）中で行った。94℃で５分間の最初の変性インキュベーションの後、30−35サイクルの増幅を下に示したように行い、その後最終的な伸長を72℃で７分間行った。テンプレートは１−10μlのラムダファージライブラリーもしくは部分的に精製したファージであり、最高30μlの滅菌水に添加した。ＤＮＡはドライアイス−エタノール中で３度連続して凍結させ、その後37℃で解凍して増幅に供した。実施例１ヒトカルパインの30ｋＤａサブユニットのクローニング第１図はヒトカルパインの30ｋＤａサブユニットのクローニング戦略を図示している。プライマーＤＬ−１３５’＞ＧＧＴＧＧＡＡＣＧＧＣＣＡＴＧＣＧＣＡＴＣ＞３’およびＳＭ−３６５’＞ＣＧＧＧＡＴＣＣＴＴＡＧＧＡＡＴＡＣＡＴＡＧＴＣＡＧＣＴＧＣＡＧＣＣ＞３’が、ＨＬ１１３４ａヒト脾臓λｇｔ１０ライブラリー（クロンテックラボラトリーズ社(Clontech Laboratories，Inc.,)、パロアルト、カリフォルニア州）からヒト30ｋＤａのｃＤＮＡの第163−805塩基対を増幅するためのプローブとしての使用のために用いられた。全体の塩基対（ｂｐ）の番号づけは、開始コドン「ＡＴＧ」を第１−３塩基対とする指定に従う。ＰＣＲの条件は、94℃で１分、55℃で１分、そして72℃で１分の増幅サイクルを30サイクル用いた上記のようであった。643ｂｐの断片を、電気泳動（シープラーク(SeaPlaque)-ＧＴＧ、ＦＭＣバイオプロダクツ(BioProducts)社、ロックランド(Rockland)、メーン州(ME)）の後、低融点アガロースから単離し、そしてフェノール−クロロホルムでの抽出により精製した。当該断片はその後、供給された方法（プロメガ社(Promega Corp.)、マジソン、ウィスコンシン州）に従い、クレノウＤＮＡポリメラーゼを用いたランダムプライマーラベル法により[32]Ｐ-ｄＣＴＰ（アマーシャム(Amersham)社、アーリントンハイツ(Arlington Heights)、イリノイ州(IL)）でラベルし、そして以下のようにライブラリーをスクリーニングするために用いた。当該ライブラリーを、クロンテック社により供給されたＣ６００ｈｆ１宿主上でのスクリーニングのためにプレートに植菌した。およそ350,000プラーク形成単位を14枚の直径150mmのペトリプレート上に植菌した。サンブルック(Sambrook )ら、モレキュラークローニング：アラボラトリーマニュアル(Molecular Cloning: A Laboralory Manual)、（第２版）、１−1626ページ、コールドスプリングハーバーラボラトリー(Cold Spring Harbor Laboratory)、コールドスプリングハーバー(Cold Spring Harbor)、ニューヨーク州により記述された処理の後、これらのプレートからニトロセルロースの複製プレートを調製した。変性されたラベル化プローブでのハイブリッド形成反応は、６×ＳＳＣ、50 mMリン酸ナトリウム、ｐＨ6.8、10mg/mlポリＡ（シグマケミカル社(Sigma Chemi cal Co.)、セントルイス(St．Louis)、ミズーリ州(MO)）、0.2mg/mlヘパリン（シグマケミカル社、セントルイス、ミズーリ州）、および0.5％ＳＤＳ中、68℃ で一夜行い、その後、３×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳで室温で２度洗浄し、さらに１ ×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳで55℃で30分、２度洗浄した。ラベルされたプラークはオートラジオグラフィーにより検出した。２個のファージが30ｋＤａサブユニットのｃＤＮＡ部分を包含する挿入部分を有することが明らかにされた。第488塩基対の内部EcoRI切断部位で終わる当該ｃＤＮＡの完全な５’末端が、14.2.4と命名されたラムダファージ中に存在した。4.1.1と名づけられたファージはタンパク質コード領域の大部分を包含した。プラーク精製された4.1.1ファージはその後、ｃＤＮＡの３’末端をＰＣＲで増幅するために用いられた。プライマーＳＭ−３７５’＞ＣＡＣＣＣＴＧＡＴＣＴＧＡＡＧＡＣ＞３’およびＳＭ−３６５’＞ＣＧＧＧＡＴＣＣＴＴＡＧＧＡＡＴＡＣＡＴＡＧＴＣＡＧＣＴＧＣＡＧＣＣ＞３’が用いられた。プライマーＳＭ−３６は終止コドンのすぐ３’側にBamH I制限酵素部位を附加し、そして終止コドンを「ＴＡＡ」に変える。増幅は、40 μMｄＮＴＰｓおよび添加した0.75ｍＭ塩化マグネシウム（ファージテンプレート10μlに対して。マグネシウムイオンの最終濃度が1.55mM）を添加した供給された緩衝液を用い、UlTma ＤＮＡポリメラーゼ（パーキン・エルマー社、ノーウォーク、コネチカット州）で実施された。増幅のためのサイクルは以下の通りである。すなわち、ポリメラーゼ添加前に97℃で２分間の変性段階、その後、95℃ で１分、55℃で45秒、そして72℃で１分の増幅サイクルを30サイクル。得られた断片はその後EcoRIおよびBamHIで切断し、上述のように低融点アガロースから単離し、そしてEcoRIおよびBamHIで切断したｐＧＥＭ−４Ｚ（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）中にサブクローニングした。当該遺伝子の５’部分は２段階で得た。まず、プラーク精製されたラムダファージ14.2.4から単離されたＤＮＡをHindIII（ラムダＤＮＡを挿入部分の５’側領域において切断する）およびBglII（ラムダＤＮＡを挿入部分の３’側領域において切断する）で切断した。得られた2.5ｋｂの断片をBamHIおよびHindIIIで切断したｐＧＥＭ−４Ｚ中にサブクローニングした。その後、一対の合成オリゴヌクレオチドを、トランスファーベクター中へのクローニングを促進するためのBamHIサイトの附加、および、至適なバキュロウイルスの翻訳を達成させようとしての開始コドンの直前へのポリヘドリン遺伝子の５ ’非翻訳領域由来のＣＣＴＡＴＡＡＡＴ配列の挿入、の双方により開始コドンの５’側領域を修飾するために用いた。ラムダ挿入部分を包含するプラスミドを、 HpaI切断部位の５’側のカルパインｃＤＮＡ配列を除去するために、XmaI（ｐＧＥＭ−４ＺベクターのBamHI切断部位の５’側のマルチクローニングサイトで切断する）およびHpaI（BamHI切断部位の３’側である30ｋＤａのｃＤＮＡの第13 塩基対で切断する）により切断した。切断されたプラスミドを上述のように低融点アガロースから単離した。２個のオリゴヌクレオチド、ＳＭ−６５５’＞ＣＣＧＧＧＡＴＣＣＴＡＴＡＡＡＴＡＴＧＴＴＣＣＴＧＧＴＴ＞３’およびＳＭ−６６５’＞ＡＡＣＣＡＧＧＡＡＣＡＴＡＴＴＴＡＴＡＧＧＡＴＣ＞３’を、第１図に示されるように、10mMトリス−塩酸、ｐＨ7.0、50mM塩化ナトリウム中、以下の温度で各10分間共にインキュベートし、互いにアニーリングした。すなわち90℃ 、65℃、42℃、37℃、および室温。その後、アニーリングされたオリゴヌクレオチドを、直鎖状にした切断されたプラスミドに連結し、そして得られたコロニー群をこれらのオリゴヌクレオチド類により附加されたBamHI切断部位の存在につきスクリーニングした（第１図）。コード領域全体のｃＤＮＡをその後、上述の２個のプラスミドから集めた。当該ｃＤＮＡの５’部分を包含するプラスミドをEcoRIで切断した。当該ベクターのマルチクローニング領域中XmaI切断部位の５’側領域にEcoRI切断部位が存在し、また、30ｋＤａのｃＤＮＡ中の第488塩基対にもまた存在する。30ｋＤａのｃＤＮＡの５’末端へのすべての附加部分を包含するこのおよそ500塩基対のEco RI断片をその後、上述のように低融点アガロースから単離し、そして当該ｃＤＮＡの３’側部分を包含するEcoRIで切断したプラスミドに連結した。EcoRI断片を正しい方向でもつひとつのプラスミドが得られた。30ｋＤａコード領域全体のジデオキシヌクレオチド法によるＤＮＡ配列決定（サンガー(Sanger)ら、プロシーディングスオブナショナルアカデミーオブサイエンスＵＳＡ(Proc．N atl．Acad．Sci．USA)、74:5463-5467，1977）が、修飾されたｃＤＮＡがヒトカルパインタンパク質の正しいアミノ酸配列（オオノ(Ohno)ら、ヌクレイックアシッヅリサーチ(Nucleic Acids Reserach)、14:5559，1986）をコードすることを証明した。このプラスミドはその後、BamHIで切断され、そして、単一サブユニットの発現のため、1)転写を潜在的に改善するための開始コドンのすぐ５’側へのＣＣＴＡＴＡＡＡＴの附加、および2)バキュロウイルスの好む終止コドンＴＡＡへの終止コドンの変更、というバキュロウイルスの発現のための修飾をもつヒト30ｋＤａカルパインｃＤＮＡ全体を包含する820塩基対断片を、ポリヘドリンプロモーターを包含するBamHIで切断されたトランスファーベクターｐＶＬ９４１中にサブクローニングした。結果として生じたプラスミドはｐＶＬ９４１−ｈＣＡＮＰ３０−６と命名された。２個のサブユニットの発現のために、820塩基対の断片を、B amHIもしくはBglIIのいずれかで切断した、ｐ１０およびポリヘドリンプロモーターの双方を包含するトランスファーベクターｐＡｃＵＷ５１（ファーミンゲン (PharMingen)社、サンジエゴ(San Diego)、カリフォルニア州(CA)；それぞれｐ５１−Ｂａｍ−ＣＡＮＰ３０およびｐ５１−Ｂｇｌ−ＣＡＮＰ３０と命名された）中にサブクローニングした（第３図参照）。ベクターｐＡｃＵＡＷ−５１は、バキュロウイルスのポリヘドリンの遺伝子座中に２種のタンパク質双方を挿入し、同一ウイルスから同時に２種のタンパク質を発現することを計画されている。このベクターは、感染の非常に遅い時期（すなわち18−24時間後）に転写を開始する強力なプロモーターである２個のプロモーターすなわちポリヘドリンおよびｐ１０を包含する。当該プロモーター類は、遺伝子物質の複製が原因の相同的組み換えによるｃＤＮＡの欠失を最小限にするために、ベクター中に逆向きに挿入されている（ウェイヤー(Weyer)ら、ジャーナルオブジェネティックヴァイロロジー(J．Gen．Virol.)、70: 203-208(1991)）。得られたプラスミドは、制限酵素分析により、発現のための正しい方向にただ１個の挿入部分を有すると証明された（データは示されない）。実施例２ヒトカルパインの80ｋＤａサブユニットのクローニング第２図はヒトの80ｋＤａのカルパインサブユニットのクローニング戦略を図示する。プライマーＳＭ−４０５’＞ＧＴＡＣＡＣＴＴＧＡＡＧＣＧＴＧＡＣＴＴＣ＞３’およびＳＭ−４１５’＞ＣＡＧＧＣＡＧＣＡＡＡＣＧＡＡＡＴＴＧＴＣ＞３’が調製され、そしてＨＬ１１３４ａヒト脾臓λｇｔ１０ライブラリー（クロンテックラボラトリーズ社、パロアルト、カリフォルニア州）からヒト80ｋＤａのｃＤＮＡの第 1372−2037塩基対を増幅するためのプローブとしての使用のために用いられた。ＰＣＲの条件は、硫酸マグネシウムに関して２mMとなるように調製された溶液および５μlのラムダライブラリーの添加下、94℃で１分、60℃で１分、そして72 ℃で２分の増幅サイクルを30サイクルを用いた、上述のTaq ＤＮＡポリメラーゼの条件のようであった。ＰＣＲで増幅した断片は、ウイザードＰＣＲプレップキット(Wizard PCR Prep Kit)（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）を用い、供給された説明書に従ってプライマーから分離した。この断片をXmaI およびSalIで切断した。得られた538塩基対の断片は、ジェンクリーンＩＩキット(GeneClean II Kit)（Ｂ１０１、ラホヤ(La Jolla)、カリフォルニア州(C A)）のための供給されたプロトコールを用い、１％シーケム(Seakem)−ＧＴＧ／２％ニューシーブ(NuSieve)（ＦＭＣバイオプロダクツ社、ロックランド、メーン州）アガロースゲル電気泳動で単離し、そしてその後、XmaIおよびSalIで切断したベクターｐＧＥＭ−４Ｚ（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）に連結した。 80ｋＤａサブユニットの上述の部分的ｃＤＮＡクローンから得たＤＮＡをEcoR IおよびHindIIIで切断して挿入部分を遊離させ、その後、１％シーケム−ＧＴＧ／２％ニューシーブアガロースゲルでの電気泳動後、ジェンクリーンＩＩキットを用いて当該断片を単離した。それをその後[32]Ｐ−ｄＣＴＰでラベルし、そして上述のようにヒト脾臓ライブラリーのスクリーニングに用いた。およそ50 0,000プラーク形成単位を1 0枚の直径150mmのペトリプレート上に植菌した。ニトロセルロースの複製プレートを調製し、そして、上述の30ｋＤａのスクリーニングのハイブリダイゼーション溶液と同じ溶液中で、変性させたラベル化プローブと68℃で一夜ハイブリッド形成を行い、その後、２×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳで室温で15分間ずつ２度洗浄し、さらに１×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳで68℃で１時間ずつ２度洗浄し、ラベルされたプラークをオートラジオグラフィーにより検出した。１個のファージ（ラムダｃａｌ８０−８ａ）が、80ｋＤａサブユニットのｃＤＮＡコード領域の３’側の67％を包含する挿入部分を有することが明らかにされた。サンブルックら、上記に記述された方法に従い、プラーク精製されたファージの液体培養からＤＮＡを単離し、XbaIおよびSalIで切断し、そして独特の1238 塩基対の80ｋＤａのｃＤＮＡ断片を、ジェンクリーンＩＩキット（Ｂ１０１、ラホヤ、カリフォルニア州）のために供給されたプロトコールを用いて１％シーケム−ＧＴＧアガロースゲルで単離した。この断片を、XbaIおよびSalIで切断したベクターブルースクリプト（pBluescriptR）ＳＫ＋（ストラタジェン(Strat agene)社、ラホヤ、カリフォルニア州）に連結し、そして挿入の一部分のジデオキシヌクレオチド法によるＤＮＡ配列決定（サンガーら、上記）により、挿入部分の同一性を証明した。当該ｃＤＮＡのコード領域の他の部分はヒト脾臓ライブラリー（５’末端）もしくはプラーク精製されたラムダファージｃａｌ８０−８ａ（３’末端）のいずれかからのＰＣＲでの増幅により創製された。３’末端の増幅は、３’末端の非翻訳配列を除去し、そして終止コドンをバキュロウイルスの好むＴＡＡに変化させるためになされた。前者のためには、プライマーＳＭ−５３５’＞ＣＧＣＧＧＡＴＣＣＴＡＴＡＡＡＴＡＴＧＴＣＧＧＡＧＧＡＧＡＴＣＡＴＣＡＣＧＣＣＧ＞３’およびＳＭ−４９５’＞ＡＴＴＴＧＣＧＧＡＴＧＧＴＣＣＧＧＣＴＣＴＴＧＡ＞３’が、10mlのＨＬ１１３４ａヒト脾臓ライブラリーからヒト80ｋＤａｃＤＮＡの第１−1096塩基対を増幅するために用いられた。プライマーＳＭ−５３は、その後のクローニングを促進するためにBamHI切断部位を附加し、また、至適なバキュロウイルスの翻訳を達成させようとして開始コドンの直前にＣＣＴＡＴＡＡＡＴ配列を挿入する。後者のためには、プライマーＳＭ−４０５’＞ＧＴＡＣＡＣＴＴＧＡＡＧＣＧＴＧＡＣＴＴＣ＞３’およびＳＭ−４７５’＞ＣＧＧＧＡＴＣＣＴＴＡＴＧＣＡＡＡＣＡＴＧＧＴＣＡＧＣＴＧＣＡＡＣＣ＞３’が、１μlのラムダファージｃａｌ８０−８ａからヒト80ｋＤａｃＤＮＡの第1372−2143塩基対を増幅するために用いられた。増幅は、40μMｄＮＴＰｓおよび添加した1.5mM塩化マグネシウムを添加した供給された緩衝液を用い、U lTma ＤＮＡポリメラーゼ（パーキン・エルマー社、ノーウォーク、コネチカット州）で実施した。増幅のためのサイクルは以下の通りである。すなわち、ポリメラーゼ添加前に95℃で５分間の変性段階をおき、その後、94℃で１分、60℃で１分、そして72℃で２分の増幅サイクルを30サイクル。５’末端部分を含む1096塩基対は、１％シーケム−ＧＴＧ／２％ニューシーブアガロースゲルでの電気泳動後、ジェンクリーンＩＩキットを用いて単離した。この断片をその後、BamHIおよびXbaIで切断し、切断後、ジェンクリーンＩＩキットを用いて再精製し、そしてBamHIおよびX baIで切断したベクターブルースクリプトＳＫ＋（ストラタジェン社、ラホヤ、カリフォルニア州）中にサブクローニングした。ＰＣＲで増幅された３’末端の断片は、供給された説明書に従ってウイザードＰＣＲプレップキット（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）を用いてプライマーから分離した。その後、この断片をSalIおよびBamHIで切断し、結果として生じた137塩基対の断片を、マーメイドキット(Mermaid Kit)（Ｂ１０１、ラホヤ、カリフォルニア州）のための供給されたプロトコールを用い、１％シーケム−ＧＴＧ／２％ニューシーブ（ＦＭＣバイオプロダクツ社、ロックランド、メーン州）アガロースゲルから単離し、そしてその後、SalIおよびBamHIで切断したベクターブルースクリプトＳＫ＋（ストラタジェン社、ラホヤ、カリフォルニア州）に連結した。これらの双方の挿入部分のジデオキシヌクレオチド法によるＤＮＡ配列決定（サンガーら、上記）は、それらが当該タンパク質のその部分の正しいアミノ酸配列（アオキら、ＦＥＢＳ Letters 205:313-317，1986）をコードすることを証明し、また、ポリメラーゼ連結反応による増幅からの変異をもつクローンを分離するために用いられた。コード領域の５’末端が修飾されたBamHI、XbaI断片、コード領域の中間部分のXbaI、SalI断片、およびコード領域の３’末端のSalI、BamHI断片を、適切な酵素でそれらのベクター類から切断し、そして、当該断片類を、ジェンクリーンＩＩキット（Ｂ１０１、ラホヤ、カリフォルニア州）のための供給されたプロトコールを用い、１％シーケム−ＧＴＧ／２％ニューシーブ（ＦＭＣバイオプロダクツ社、ロックランド、メーン州）アガロースゲルから単離した。これらの断片類はその後、Ba mHIで切断されかつ製造元のプロトコールに従ってエビアルカリフォスファターゼ（ＵＳバイオケミカルコーポレーション(U.S．Biochemical Corp.)、クリーヴランド(Cleveland)、オハイオ州(OH)）で処理されたベクターＶＬ９４１（ルーコウ(Luckow)とサマーズ(Summers)、ヴァイロロジー(Virology)170:31-39，1989 ）と等モル量で混合し、そして共に連結した。制限酵素分析により決定されたように正しい大きさのBamHI断片を適切な方向にに包含するひとつのクローン（プラスミドの名称はｐＶＬ９４１−ｈＣＡＮＰＩ８０−４）を、80ｋＤａサブユニットのみを発現する組み換えバキュロウイルスの産生に用いた（下記参照）。プラスミドｐＶＬ９４１−ｈＣＡＮＰ８０−４はまた、BamHIでも切断し、そして、ヒト80ｋＤａカルパインＩのｃＤＮＡ全体を包含する2153塩基対の断片を、双方のサブユニットのｃＤＮＡを包含する単一のベクターすなわち二重構築物の産生のため、BamHIで切断したｐ５１−Ｂｇｌ−ＣＡＮＰ３０もしくはBglII で切断したｐ５１−Ｂａｍ−ＣＡＮＰ３０のいずれかにサブクローニングした（第３図を参照）。得られたプラスミド類（それぞれｐ５１−ｈＣＡＮＰＩ−１およびｐ５１−ｈＣＡＮＰＩ−２と命名された）は、制限酵素分析により、発現のため１個の新しい挿入部分のみを正しい方向で有していることが証明された。上記はヒトカルパインＩのｃＤＮＡ類をクローニングするために用いられた方法を代表する。組み換え発現に適したこれらの遺伝子のｃＤＮＡ配列を得ることができる、当業者に知られた匹敵する方法は多数ある。同様の方法はまた、組み換え発現のためのカルパインＩＩのｃＤＮＡを得るためにも用いられることができる。同じ戦略がヒトカルパインＩＩの80ｋＤａのｃＤＮＡを得るためのライブラリースクリーニングのプローブを創製するために用いられた。カルパインの80ｋＤａサブユニットのコード領域のｃＤＮＡはイマジョウら、上記（ここに引用文献として組み込まれている）に報告されている。プライマーＳＭ−６９５’＞ＣＡＴＴＧＡＴＧＡＴＧＧＡＧＴＣＡＧＧＡＧ＞３’およびＳＭ−７０５’＞ＣＴＧＡＧＡＡＡＣＡＧＡＧＣＣＡＡＧＡＧＡ＞３’は、同じヒト脾臓ライブラリーから第1587−2075塩基対を増幅するために用いられた。ＰＣＲの条件は、添加した0.75mM塩化マグネシウムとともに、94℃で１分、55℃で１分、そして72℃で１分の増幅サイクルを30サイクル用いる10μlのラムダライブラリーを含む、２単位のTli ＤＮＡポリメラーゼ（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）を用いる上述されたものである。489塩基対の断片は、ジェンクリーンＩＩキット（Ｂ１０１、ラホヤ、カリフォルニア州）のための供給されたプロトコールを用い、１％シーケム−ＧＴＧ／２％ニューシーブ（ＦＭＣバイオプロダクツ、ロックランド、メーン州）アガロースゲルから単離し、PstIおよびBamH Iで切断し、そして、アガロースゲル電気泳動後にPstIおよびBamHIで切断した37 7塩基対の断片を単離するためにまさしく記載された処理を用いた。精製した断片をPstIおよびBamHIで切断したベクターｐＧＥＭ−４Ｚ（プロメガ社、マジソン、ウィスコンシン州）に連結した。実施例３組み換えバキュロウイルスの産生スポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)の細胞（Ｓｆ２１；ヴォーン(Vaughn)ら、インビトロ(In Vitro)、13:213-217，1977）は、ニューヨーク州イタカ(Ithaca)のコーネル大学(Cornell University)ボイストンプソン植物研究所(the Boyce Thompson Institute for Plant Research)のコルサロ(B.G．Corsaro)博士より供与された。これらの細胞を、10％の限定された (defined)ウシ胎児血清（ハイクローンラボラトリーズインコーポレーテッド(Hyclone Laboratories，Inc.)、ローガン(Logan)、ユタ州(UT)）を添加したグレース(Grace's)補充培地中、27℃で懸濁培養した。いくつかの発現実験およびプラークアッセイのための単層培養は、細胞培養フラスコ中で懸濁培養した細胞を出願のために指示された密度で植え付けることにより得られた。組み換えバキュロウイルスは、単層培養中のＳｆ２１細胞（25cm²フラスコ中に細胞およそ２×10⁶個）を、インビトロジェン(InVitrogen)社（サンジエゴ(Sa n Diego)、カリフォルニア州）から供給されたプロトコールに従い、インセクチン(InsectinR)リポソームを用いて、0.5mgの直鎖状にしたＡｃＮＰＶＤＮＡ（バキュロゴールド(BaculogoldR)、ファーミンゲン(PharMingen)社、サンジエゴ(Sa n Diego)、カリフォルニア州）および上記の４種のベクターのうち１種（下の第２表に列挙した）の２mgでコトランスフェクションすることにより産生された。主にバキュロウイルスを包含する得られた培養上清を２−５日後に採収し、そして、細胞外ウイルスのプラークプレートを設定するために用いた。Ｓｆ２１細胞を60mmの培養皿（１枚当たり細胞２×１０⁶個）に植え付け、コトランスフェクション培養上清の10倍ずつの連続希釈液（10-2から10-5）１mlで１時間感染させ、そしてその後、２×グレース補充培地（ギブコ(Gibco)ＢＲＬ社、ゲイタースバーグ(Gaithersburg)、メリーランド州(MD)）と２％シーケムアガロース（ＦＭＣバイオプロダクツ社、ロックランド、メーン州）との１：１の混合物４mlで表面を覆った。推定される組み換えプラーク群は、５−７日後、ダルベッコのＰＢＳに溶解した0.05％ニュートラルレッドで７分間染色した後、解剖型顕微鏡および逆相顕微鏡の双方を用いての閉塞体のないプラークの目視により同定した。プラーク群は、感染させた細胞ライセートのブロットに対しての[3 2]Ｐでラベルした30ｋＤａもしくは80ｋＤａのヒトカルパインＩ配列のハイブリッド形成により、組み換え体であることが証明された（サマーズ(Summers)とスミス(Smith)、アマニュアルオブメソッヅフォーバキュロウィルスベクターズアンドインセクトセルカルチャープロセデューズ(A Manual of Methods for Baculovirus Vectors and Insect Cell Culture Procedures)、テキサスアグリカルチュラルエクスペリメントステイションブレティン(T exas Agric ultural Experiment Station Bulletin）1555: 1-57，1987）。組み換えウイルスはその後、最初の２回の継代の間単層培養のＳｆ２１上に広げられ、その後の継代（最低３回から最高５回まで）は懸濁培養のＳｆ２１を用いた。ウイルスの拡散は、すべて、感染多重度（ＭＯＩ）0.5未満でＳｆ２１細胞を感染させ、かつ、感染の３−４日後に細胞外性ウイルス粒子を包含する培地を集めることにより実施された。７種の独立したプラーク純粋な組み換えウイルス（それぞれＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−１から７と命名された組み換えウイルス類）が、ｐＶＬ−ｈＣＡＮＰ３０−６での細胞のトランスフェクションから単離された。ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５は1994年６月２日にアメリカンタイプカルチャーコレクション(the American Type Culture Collection)、12301 パークローンドライヴ、ロックヴィル、メリーランド(Parklawn Drive，Rockville，Maryland) 208 52-1776（以下「ＡＴＣＣ」）に寄託され、そしてＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５９をもつ。６種の独立したプラーク純粋な組み換えウイルス（それぞれＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−１から６と命名された組み換えウイルス類）がｐＶＬ−ｈＣＡＮＰＩ８０−４での細胞のトランスフェクションから単離され、これらすべては80ｋＤａサブユニットのみのＤＮＡを包含した。ＡｃＮＰＶ− ｈＣＡＮＰＩ８０−５は1994年６月２日にＡＴＣＣに寄託され、そしてＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５７をもつ。12種の独立したプラーク純粋な組み換えウイルス（それぞれＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−２、１−５、１−７および１−８ならびにＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−１から２−８と命名された）が、ｐ５１−ｈＣＡＮＰＩ−１およびｐ５１−ｈＣＡＮＰＩ−２での細胞のトランスフェクションから単離された。単離された12種の組み換えウイルスのうち、５種のみが30ｋＤａおよび80ｋＤａサブユニットの双方のＤＮＡを包含した。これらの５種の組み換えウイルス類は、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−５、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−７、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−８、ＡｃＮＰＶ −ｈＣＡＮＰＩ−２−３、およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５であった。ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５は1994年６月２日にＡＴＣＣに寄託され、そしてＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５８をもつ。得られた18種の選択された組み換えウイルスはその後、以下に記述されるようにカルパインタンパク質を発現するその能力について調べられた。すべての寄託は特許手続きの目的のための微生物寄託の国際的承認に関するブダペスト条約の規定に従ってなされ、そのすべての局面は引用文献としてここに編入されている。すべての寄託はＡＴＣＣにより試験され、そして、寄託の時点で生存能力のあることが決定された。実施例４バキュロウイルス組み換えカルパインの発現および回収Ｓｆ２１細胞を、10％ウシ胎児血清を含むグレース補充培地中、24穴プレートに１cm²当たり細胞1.5×10⁵個ずつ植え付けた。細胞接着後、ウイルス（特定のウイルスの呼称については下記参照）を１から５の間のＭＯＩで添加した。細胞は24時間以後のいずれかの時期に採収した。本発現系では感染後36から48時間の間の採収で至適な収量が達成された。採収には、50mMトリス−塩酸、10mMＥＤＴＡ、0.1mMフェニルメチルスルフォニルフロリド（ＰＭＳＦ）、１μg/mlロイペプチン、および0.1％のＮＰ−４０のｐＨ7.4のリシス（分解）緩衝液を用い、その後、ホモジネェートをエッペンドルフ管中４℃で14,000×ｇ、10分間遠心分離し、そしてカルパインおよび他の細胞性タンパク質を回収した。タンパク質類は、0.2％ＳＤＳを添加しかつ試料を95℃で５分間加熱することにより変性させた。試料はその後、分析前に−70℃で保存された。発現されかつ回収されたカルパインは以下のようなイムノブロット分析により検査された。総タンパク質10から20μｇを、10％もしくは12.5％のアクリルアミドゲルを用いたＳＤＳ−ＰＡＧＥ（レムリ(Laemmli)、1970）で分離し、そしてトウビン(Towbin)ら、プロシーディングスオブナショナルアカデミーオブサイエンスＵＳＡ(Proc．Natl．Acad．Sci．USA)76: 4350-4354(1979)の方法により、0.45mmのニトロセルロース（バイオラド(Bio-Rad)社、メルビル(Me lville)、ニューヨーク州(NY)）に転写した。カルパインタンパク質は、双方のサブユニットを検出するポリクローナル抗カルパイン血清の1,000倍希釈液を用いて特異的に検出した（サイマン(Siman)ら、J．Neurosci．10:2400-2411，1990 ）。当該抗血清を、150mM塩化ナトリウムおよび５％カーネーション脱脂粉乳を含む20mMトリス−塩酸、ｐＨ7.4（ブロッキング緩衝液）で希釈した。非特異的な抗体結合は、150mM塩化ナトリウムおよび0.05％トゥイーン(Tween)−20を含む 20mMトリス−塩酸、ｐＨ7.4で洗浄することにより除去した。その後、ブロッキング緩衝液で2,000倍に希釈した、アルカリフォスファターゼに結合させたヤギ抗ウサギＩｇＧ（バイオラド社、メルビル、ニューヨーク州）を加えた。二次抗体はアルカリフォスファターゼ結合基質キット（バイオラド社、メルビル、ニューヨーク州）を用いて検出した。組み換えウイルスＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０ −５、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５、およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５の結果は第４図に示されている。ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５ウイルスおよびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５ウイルスを単独で感染させた細胞に起因する適切な個々のカルパインサブユニットの発現は、それぞれレーン２−３および４−５に図示される。細胞に２種のウイルス類、すなわち30ｋＤａのカルパインサブユニットのＤＮＡ構築物を包含する一方（ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５）および80ｋＤａのカルパインサブユニットのＤＮＡ構築物を包含する他方（ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０− ５）を共感染させた場合は、双方の適切なカルパインサブユニットが発現された。これはレーン６−８に図示される。同様に、細胞をＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ −２−５、これは30ｋＤａおよび80ｋＤａのカルパインサブユニットの双方のＤＮＡ構築物を包含するが、それで感染させた場合は、双方のサブユニットが発現された（レーン９−10）。抗カルパイン血清の組み換えタンパク質を検出する能力が、真正のカルパインタンパク質が産生されたことを証明した。レーン１は野生型ウイルスの感染を表示する。カルパインの発現は検出されなかった。驚くべきことに、80ｋＤａ（「触媒の」）サブユニットの蓄積された量は、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５による細胞の共感染（レーン６−８）か、もしくは二重構築物ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５の発現（レーン９−10）かのいずれかによって30ｋＤａ（「調節」）サブユニットを共発現させることにより、30ｋＤａサブユニット非存在下での発現（レーン４−５）に比較して予想外に増加した（目視により決定された結果）。30ｋＤａサブユニットの役割に関する従来の研究では、他方のサブユニットに対するこの安定化効果を予測することはできなかった。ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ８０の組み換えウイルス類すべての上述と同じ様式での分析は、それぞれのサブユニットの発現の比較しうるレベルを示した（データは示されていない）。双方のカルパインサブユニットを包含するＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩの５種のウイルス単離物すべてが完全な80ｋＤａカルパインサブユニットを発現したが、単離されたウイルス類のうち４種（すなわちＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−５、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−１−７、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ −１−８、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ −２−３）は、検出され得る量の30ｋＤａカルパインサブユニットもまた発現することに失敗した（データは示されていない）。30ｋＤａサブユニットが存在しないことは、80ｋＤａサブユニットの発現の低下したレベルによりさらに明らかであった。80ｋＤａサブユニットの発現は、ＡｖＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ８０の共感染、ならびにＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２ −５の感染で認められた増加したレベルと反対に、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０ウイルス類でみられたものに匹敵した。12種の二重サブユニットウイルス類のうち５種のみが組み換えおよび組み換えウイルス類の選択後もなお双方のサブユニットのＤＮＡ配列を包含していたこと、および、それら５種のうちただ１種のみで双方のタンパク質サブユニットの共発現が見出されたこと、は、２つのサブユニットをもつ完全なカルパインプロテアーゼの昆虫細胞での発現に対する選択圧力の存在を示唆している。これはカルパインの致死性の結果であると思われる。第４図で80ｋＤａサブユニットのバンドの周辺に見える付加的なバンドは自己分解的な酵素活性の結果である。レーン６−８で見える２個のバンドは、それぞれ、80ｋＤａおよび自己分解の結果として生じた76ｋＤａの形態を表示する。２個のバンドはまた、レーン９および10のブロット上でも認められるが、しかしこの図面では見られないかもしれない。実際上３個のバンドがレーン４および５で見られる。80ｋＤａおよび自己分解の結果として生じた76ｋＤａの形態に加え、 77ｋＤａの安定な中間体が低い酵素濃度において生じ、かつ、これは、希釈された条件下でカルシウムとともにインキュベートされたカルパインＩのヘテロダイマーの大きいサブユニットの自己分解に際して生ずるとすでに報告された（イノマタ(Inomata)ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー(J．Biol ．Chem.)、263:19783-19787，1988）。しかしながら、第４図より明らかなように、回収された組み換えヒトカルパインの大部分は80ｋＤａの形態にあり、これはカルパインの例においてはその系に対する潜在的な致死性を考慮すると望まれる。カルパインがカルシウムの存在下で活性型へと自己分解するため、カルシウムの添加以外の別途の活性化処理は必要とされない。実施例５バキュロウイルス組み換えカルパインの酵素活性Ｓｆ２１細胞を再度、24穴プレートに１cm²当たり細胞1.5×10⁵個を植え付け、そして野生型ウイルス、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５およびＡｃＮＰＶ− ｈＣＡＮＰＩ８０−５の共感染（各ウイルスに対しＭＯは５）、もしくはＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５（ＭＯＩ＝5.7）の感染、のいずれかを感染させた。細胞内タンパク質は、感染40時間後に、１穴当たり100μlの以下のリシス緩衝液すなわち50mMトリス−塩酸、ｐＨ7.5、50mM塩化ナトリウム、１mMＥＤＴＡ、１mMＥＧＴＡ、５mMβ−メルカプトエタノール、0.1％トリトン(Triton)−100を用いて採収し、その後、核および若干の膜類を沈殿させるため４℃、14,000×ｇで10分間遠心分離した。各抽出液 20μl（総タンパク質12.5から20μg）のインビトロでの酵素活性を、引用することにより本明細書の内容となるササキ(Sasaki)ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー(J．Biol．Chem.)、259:12489-12494(1984)の処置に従い、合成ペプチド基質サクシニル−ロイシル−チロシル−アミノエチルクマリン(S ucc-Leu-Tyr-AMC)を１mM濃度で用い、５mM塩化カルシウム添加の存在下および非存在下で測定した。得られた活性はシマン(Siman)ら、上記の方法に従って産生された２μgの部分的に精製した天然のヒトカルパインＩの酵素活性と比較した。カルシウム存在下での活性はまた、ササキら、上記に発表された処置に従い12 .5μMのカルパインインヒビターＩの添加下にも測定した。その結果は第５ａ− ｄ図に図示される。第５ａ−ｄ図においては、白丸はカルシウム非存在下での活性を表す。黒い菱形はカルシウム存在下での活性を表す。十字をつけた四角はカルシウムおよびカルパインインヒビターＩの存在下での活性を表す。第５ａ−ｄ図のデータは、1)カルパインインヒビターＩで阻害される天然のヒトカルパインＩによる基質の加水分解のカルシウム依存性の増加（５ａ）、2)野生型ウイルスを感染させた細胞での内因性のカルシウム依存性の基質加水分解のないこと（５ｂ）、および3)ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ８０を共感染させた（５ｃ）もしくはＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ− ２−５を単独で感染させた（５ｄ）かのいずれかの細胞においては、まさに天然の酵素で見られるような、これもまたカルパインインヒビターＩによって阻害される基質加水分解においてカルシウム依存性の増加があることを示す。これらの結果に基づき、組み換え的に産生されたカルパインは天然のカルパインと同様の酵素活性プロフィルを有する。繰り返すが、このことは潜在的なカルパイン阻害剤の治療薬をスクリーニングするための、酵素活性を有する組み換えカルパインの効果的な利用には重要である。実施例６バキュロウイルス組み換えカルパインの自己分解的酵素活性組み換えカルパインの自己分解的酵素活性は、組み換えカルパインが80ｋＤａサブユニットを「活性化された」76ｋＤａの形態に正しく自己プロセスしたことを示すことにより立証された。この76ｋＤａの形態はカルシウム存在下に自己分解的切断により産生され、かつ、活性の酵素を暗示する。野生型ＡｃＮＰＶを感染させたか、ＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５の双方を共感染させたか、もしくは実施例５において調製されたＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５を感染させたかのいずれかの細胞のライセートを、 6.7mM塩化カルシウム添加の存在または非存在下に室温で５分間インキュベートし、6.7mMＥＤＴＡを添加することにより反応を停止させ、そしてＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル負荷緩衝液中で沸騰させてから−70℃で保存した。その調製物のＰＡＧＥの結果は第６ａおよびｂ図に図示されている。第６ａおよびｂ図において、カルシウムの存在および非存在はそれぞれ「＋」および「−」で示される。第６ａ図はインビトロでのカルシウムとのインキュベーションの存在および非存在下での抗カルパインＩのイムノブロットを図示する。用いられたＡＢ＃４抗血清調製品は精製された天然のカルパインに対して産生された。それは76ｋＤａの自己分解的切断生成物にもまた結合するにもかかわらず、主として80ｋＤａサブユニットを検出する。レーン１および２は部分的に精製された天然のヒトカルパインＩの80ｋＤａサブユニット（すでに記述されたようにヒト赤血球から生成された。キタハラら、上記を参照）を包含する。レーン３は野生型ウイルスを感染させた細胞由来のタンパク質画分を包含する。レーン４および５はＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰ３０−５およびＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５でコトランスフェクションした細胞由来のタンパク質画分を表す。レーン６−７はＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２−５でトランスフェクションした細胞由来のタンパク質画分を表す。添加されたカルシウムの非存在下において、レーン４および６は抗体と反応する２個のバンドを有する。レーン１（ヒト赤血球細胞から精製された天然のヒトカルパインＩ）は１個のバンドのみを有する。レーン４および６の上方のバンドは、部分的に精製された天然のヒト赤血球カルパインＩの80ｋＤａサブユニットと共に移動し(comigrate)、かつ、下方のバンドはカルシウムとともにインキュベートされた76ｋＤａの天然のヒトカルパインＩと共に移動する(comigrate)（レーン２）。カルシウム非存在下でも存在する下方のバンドは、おそらくいくつかの細胞が感染の間に漏れやすくなったための培地からの細胞内部へのカルシウムの流入により、内因性に活性化されたカルパインであると思われる。単一のバンドが、カルシウムとともにインキュベートしたすべての試料で検出され（レーン２、５、および７）、また、それはこれもまたカルシウムとともにインキュベートされた76ｋＤａの天然のヒトカルパインＩと共に移動する(comigra te)。第６ｂ図のデータは、76ｋＤａのバンドとして移動するタンパク質が７適切に切断された真正の76ｋＤａの自己触媒性断片であることを示す。第６ｂ図は、用いられたＡＢ＃３４抗体が76ｋＤａの断片のＮ末端の最初の５アミノ酸に対して創製された（抗−ＬＧＲＨＥＣ）（サイド(Saido)ら、ジャーナルオブバイオケミストリー(J．Biochem.)111:81-96(1992)）ことを除いて、第６ａ図と同じ試料のイムノブロット分析の結果を包含する。この抗体は適正に切断された天然のヒトの酵素（すなわち76ｋＤａ；レーン２）のみを特異的に認識し、かつ、無傷の80ｋＤａカルパインＩ（レーン１）は認識しない。内因性に切断された少量の組み換えカルパインＩの大きなサブユニットおよびカルシウム添加後の豊富な76ｋＤａの単一のバンドの双方が、この抗血清で検出される。前述の結果は、 80ｋＤａサブユニットの組み換えタンパク質の全量がカルシウムの添加により自己触媒性に活性化されることが可能であること、および、その活性化されたサブユニットが適正に切断されることを立証する。実施例７血清を含まない培地における改善された発現昆虫細胞のスピンナー培養系は、多数の細胞の扱いにおいて単層培養に比較してより容易であるため、組み換えタンパク質のバキュロウイルスでの発現に日常的に用いられる。10％の限定された(defined)ウシ胎児血清を含むグレース補充培地中で生育させたＳｆ２１細胞と、エクセル(ExCell)−４０１（ＪＲＨバイオサイエンシーズ(Biosciences)社、レネクサ(Lenexa)、カンサス州(KS)）中で生育するよう連続的な２倍希釈により血清を含まない培地に適合させたＳｆ２１細胞との間でのカルパインの産生の比較がなされた。いずれかの培地中で生育させた対数期のＳｆ２１細胞を150×ｇで10分間遠心分離して細胞を沈殿させ、そしてＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ−２− ５をＭＯＩ＝２で包含するその生育培地中に１ml当たり細胞10⁷個を再懸濁した。細胞とウイルスは時々手で緩やかに再懸濁させながら、室温で１時間インキュベートした。混合物全体を、１ml当たりの細胞濃度が1.5×10⁶個で最終的に100m lとなるよう、250mlのスピンナーフラスコ（テクネ社(Techne Inc.)、プリンストン(Prinston)、ニュージャージー州(NJ)）中の適当な培地に加えた。それぞれの培地での二重感染は、血清を包含する培養系では80rpm、血清を含まない培養系では100rpmで攪拌しながら27℃でインキュベートした。24時間および48時間後に培養系から試料を採取した。試料は、150×ｇで10分間遠心分離による細胞の沈殿化の後、ダルベッコのリン酸緩衝液を加えた生理食塩水（メディアテック社(Mediatech,Inc.)、ハーンドン(Herndon)、ヴァージニア州(VA)）に再懸濁し、そしてその後再度150×ｇで10 分間遠心分離し、実施例５に記述されたように酵素活性の測定が行なえるよう採収した。総タンパク質濃度は、供給されたプロトコールに従い、対照タンパク質標準品としてウシ血清アルブミンを用いてバイオラッドプロテインアッセイ (Bio-Rad Protein Assay)（バイオラッドラボラトリーズ社(Bio-Rad Laborato ries，Inc.)、メルヴィル、ニューヨーク州）を用いて測定した。血清を含まない培養に適合させた細胞は、24時間後では予想外に低い組み換えカルパインタンパク質濃度および活性を有したが、48時間後では血清培地よりも予想外により高いレベルであった（第７図）。さらに重要なことに、血清を含まない培地中では、血清を包含する培地に比較して、48時間後の活性化された76ｋＤａタンパク質が比較的により少なかった（データは示されていない）。血清を包含する培地中で48時間後の活性化されたカルパインの量がより多かったことは、完全な不活性化されたカルパインをその時点で精製することを不可能にした（データは示されていない）。したがって、発現への血清を含まない培地の使用は、血清を含む培地での24時間後の濃度に比較して、精製のための組み換えカルパインの開始濃度の３−４倍の増加を可能にした。実施例８独立した80ｋＤａサブユニットの酵素活性組み換え的に産生された80ｋＤａサブユニットの相対的活性を決定するため、当該サブユニットの酵素活性をＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５を感染させたＳｆ２１細胞由来の未分画抽出液において検査した。1.5×10⁸個のＳｆ２１細胞を150×ｇで遠心分離して沈殿させ、上清を除去し、その後、３×10⁸pfuのＡｃＮＰＶ−ｈＣＡＮＰＩ８０−５と共にウシ胎児血清を含む10mlのグレース補充培地に再懸濁し、そして27℃で１時間インキュベートした。インキュベーション後、細胞と培地とウイルスを90mlの同じ培地に加え、250mlのスピンナーフラスコ中、27℃で24時間インキュベートした。細胞は実施例５のように採収し、そして抽出液もまた実施例５に記述されたように酵素活性を検査した。33μgの未分画抽出液からの結果は第８図に図示される。第８図において、白い四角はカルシウム非存在下の活性を表す。白い菱形はカルシウム存在下の活性を表す。白丸はカルシウムおよびカルパインインヒビターＩ存在下の活性を表す。同じ酵素活性の量の組み換え80ｋＤａサブユニットおよび組み換えカルパインの双方を、その後、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、そして、それぞれの量を上記実施例４に記載されたようにイムノブロット分析により質的に決定した。それから決定されたように、およそ４−５倍以上の単離された80ｋＤａサブユニットがヘテロダイマータンパク質と同等の活性をもたらすのに必要とされる。従って、80ｋＤａの組み換えカルパインＩの特異的活性は、ヘテロダイマーのカルパインＩの活性のおよそ20−25％であると実験的に決定された。これは、天然のカルパインＩから解離した80ｋＤａサブユニットの活性よりおよそ７倍も大きい（キクチら、上記）。当該活性はまた、ヘテロダイマー酵素と同様、12.5 μMのカルパインインヒビターＩで完全に阻害されることも示された。実施例９酵素活性を有する組み換えカルパインの精製以下に明らかにされるように、カルパインは、３個のクロマトグラフィー段階を含む４個の段階で、逆相ＨＰＬＣ分析で決定された94％純度まで精製された。細胞培養条件は実施例７に記述された通りであった。細胞を10mMＨＥＰＥＳ、２ mMＥＤＴＡ、２mMＥＧＴＡ、５mMβ−メルカプトエタノール、５mMペプスタチン、0.1mMＰＭＳＦ、および10mg／mlアプロチニンを包含するｐＨ7.5の溶液で溶菌し、そして40mlダウンス(Dounce)ホモジェナイザー（ウィートン(Wheaton)社、ミルヴィル(Millville)、ニュージャージー州(NJ)）を用いてホモジナイズした。材料はその後2,100×ｇで10分間遠心分離して核を沈殿させ、その後、38,700 ×ｇで１時間遠心分離して膜を沈殿させた。当該上清を硫酸アンモニウムで沈殿化し、そして、30から45％の硫酸アンモニウムで沈殿したタンパク質を、 10mMＨＥＰＥＳ、２mMＥＤＴＡ、２mMＥＧＴＡ、10mM塩化ナトリウム、および５ mMβ−メルカプトエタノールを包含するｐＨ7.5の緩衝溶液中に再懸濁し、同緩衝液に対し一夜透析し、そしてその後標準的技術を用いて以下の樹脂上で分離した。すなわちＱ−セファロースファストフロー(Q-Sepharose Fast Flow)、その後フェニルセファロースＣＬ−４Ｂ(Phenyl Sepharose CL-4B)（いずれもファルマシア(Pharmacia)社、ピスカタウェイ(Piscataway)、ニュージャージー州(NJ)）、その後ミメティックレッド(Mimetic Red) ２（アメリカンインターナショナルケミカル(American International Chemical)社、ネイティック(Natick)、マサチューセッツ州(MA)）。この技術により５−６mgの高度に精製されたタンパク質が細胞１１より単離された。15.5倍の精製が高純度をもつタンパク質を得るための３段階のクロマトグラフィーによる分離で遂げられた。ヒト赤血球からのカルパインの精製は４段階のクロマトグラフィーによる22,000倍を越える精製を必要とした（ハタナカら、上記）。これは、天然の供給源から容易になされるよりもより大量のカルパインを容易に精製できることにおけるこの組み換え発現の主要な利点を表す。それぞれの分析のために、酵素の活性を、Ｓｕｃｃ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＡＭＣの加水分解の測定においてササキら、上記により用いられた方法と同様、カルシウムイオンの存在下での合成蛍光発生基質サクシニル−ロイシル−チロシル−メトキシ−β−ナフチルアミン（Ｓｕｃｃ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＭＮＡ）の加水分解速度をモニターすることにより決定した。実験は96穴プレート（ダイナテック(Dynatech)社カタログ番号 011-010=7905、143 40 サリーフィールドサークル(Sullyfield Circle)、チャンティリー(Chantilly)、ヴァージニア(Virginia) 22021）中で行い、また、蛍光は96穴プレート測定用蛍光計（励起波長＝340nM、測定波長＝430nM；タイターテックフルオロスカン(Titertec Fluoroskan) ＩＩフィンランド）を用いて検出した。実施例10 天然および組み換えの酵素活性を有するカルパインの阻害剤に対する比較感受性天然および組み換えの酵素活性を有するカルパインＩを、多数の既知のカルパインＩ阻害剤に対するその感受性について比較した。阻害剤への感受性を評価するために、試験される各阻害剤のストック液（40倍濃度）を100％無水ＤＭＳＯで調製し、そして、各阻害剤調製液５μlを96穴プレートの各３穴に分注した。それぞれの酵素調製液の希釈をアッセイ用緩衝液（すなわち0.2mMのＳｕｃｃ− Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＭＮＡを含む50mMトリス、50mM塩化ナトリウム、１mMＥＤＴＡ、１mMＥＧＴＡ、および５mMβ−メルカプトエタノール、ｐＨ7.5）で行い、そして、各希釈液175μlを、個々の阻害剤のストック液を包含する同じ穴、および、ポジティブコントロールとして５μlのＤＭＳＯを包含するが阻害剤を包含しない穴中に分注した。反応を開始するため、アッセイ用緩衝液に溶解した50mM塩化カルシウム20μlを３穴を除くプレートのすべての穴に加えた。除いた３穴はバックグラウンドシグナルのベースラインコントロールとして用いた。基質加水分解は５分ごとに全体で30分間モニターした。阻害剤の非存在下での基質加水分解は15分まで直線状であった。加水分解速度は５分から15分までの10分間当たりの蛍光単位における変化として決定した。試験したそれぞれの阻害剤濃度において、阻害パーセントは、阻害剤の非存在下での基質加水分解速度に対する阻害剤の存在下での基質加水分解速度の低下パーセントとして決定した。構造的に異なる３種の既知のカルパイン阻害剤（Ｚ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−ＣＯＮＨＥｔ、Ｚ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ −Ｐｈｅ−ＣＨ₂Ｓ（＋）Ｍｅ₂Ｂｒ（−）およびＺ−Ｌｅｕ−Ｎｌｅ−Ｈ）の50 ％阻害濃度（ＩＣ₅₀）の決定は以下の第３表に示される。それぞれのカルパイン阻害剤について得られた組み換えヒトカルパインに対するＩＣ₅₀は、天然の酵素で見出されたものに近いことに注目せよ。阻害剤の効力の順位も同様であった。セリンプロテアーゼおよびアスパルギン酸プロテアーゼの阻害剤の原型（それぞれＰＭＳＦおよびペプスタチンＡ）もまたこの決定に含まれた。組み換えおよび天然の酵素の双方とも、既知のカルパイン阻害剤に関して得られたＩＣ₅₀値における５−６桁大きな差異により例示されたように、これらの分類の特異的阻害剤によるその活性の些少な阻害を示した。実施例１１天然および組み換えカルパインのカルシウムによる活性化の比較酵素活性に要求されるカルシウム濃度を決定するために、本質的にキタハラ(K itahara)ら、ジャーナルオブバイオケミストリー(J．Biochem.)、95:1759-1 766(1984)により記載されたように試験を実施した。まず、酵素調製液を５mMの β−メルカプトエタノールを包含するｐＨ7.3の110mMイミダゾール−塩酸／１mM ＥＧＴＡ緩衝液に対し一夜透析した。10倍濃度のカルシウム／ＥＧＴＡ緩衝液を、イミダゾール／ＥＧＴＡ緩衝液に様々な量の塩化カルシウムを加えることにより調製した。各緩衝液20μlを96穴プレートの３穴に注入した。透析した酵素の希釈を１mMのＳｕｃｃ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＭＮＡを包含するイミダゾール／ＥＧＴＡ緩衝液で行い、そして、各調製液180μlを多様なカルシウム／ＥＧＴＡ緩衝液を包含する穴に添加した。基質加水分解は５分ごとに30分間測定した。1/2Ｖ_m _ax は、様々な量のカルシウムの存在下で達成される最高速度の50％である基質加水分解速度として決定した。その結果は第９図に示される。列挙された1/2Ｖ_max は、特定のイオン強度、ｐＨ、および温度でのこの緩衝液中でのカルシウムに対するＥＧＴＡのＫdに基づいた［Ｃａ²⁺］（カルシウムイオン濃度）の近似値である（Ｋ_d＝5.5×10^-6Ｍ）。1/2Ｖ_maxを与える(give)のに必要とされるカルシウム濃度は、天然のカルパインおよび本発明の組み換えカルパインの双方に対して本質的に同じ、すなわちそれぞれ15μMおよび14μMであった。天然および組み換え酵素の双方の［Ｃａ²⁺］活性化プロフィルは実際上同一である。第９図において、中に白丸のある白四角は組み換えヒトカルパインＩ（ｒｈＣＡＮＰＩ）を表す。中に白丸のある黒四角は天然のヒトカルパインＩ（ｎｈＣＡＮＰＩ）を表す。実施例１２カルパイン阻害剤のアッセイ酵素活性を有する組み換えカルパインは、例えば上記実施例９に記述されたように精製される。精製されたカルパインはその後、潜在的カルパイン阻害剤のスクリーニングのためのアッセイにおいて利用されることができる。アッセイ条件は上記実施例９および１０に記述されたものと同様であることができる。例えば、Ｓｕｃｃ−Ｌｅｕ−Ｔｙｒ−ＭＮＡが基質として用いられることができる。カルパインインヒビターＩはカルパインの阻害をアッセイするためのコントロールとして用いられることができる。しかしながら、他の基質類および既知の阻害剤類が利用されることができる。（ササキ、上記を参照）カルパインインヒビターの存在しない試料が酵素活性のコントロールとして用いられることができる。カルパイン阻害剤として試験されるべきそれぞれの化合物が、例えば既知の阻害剤がアッセイされた実施例１０に記述された方法によりアッセイされる。しかしながら、他の方法も利用されることができる。本明細書で論考されもしくは記述されたすべての特許および発表の記載内容は、それらの全体が、引用することにより本明細書に編入される。前述の実施例は本発明を詳細に記述することを意味するものであり、かつ、いかなる方法においても限定することを意味するものではない。当業者は添加された請求の範囲に述べられたように本発明の精神および範囲の内で変更がなされることができることを認識するであろう。

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９６年１１月７日【補正内容】請求の範囲１．組み換え哺乳動物カルパイン。２．前記のカルパインがヒトカルパインである請求の範囲１のカルパイン。３．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２のカルパイン。４．酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン。５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲４のカルパイン。６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５のカルパイン。７．カルパインをコードする組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることにより産生された、酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン。８．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲７のカルパイン。９．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲８のカルパイン。１０．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲７のカルパイン。１１．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲１０のカルパイン。１２．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ。 (Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲７のカルパイン。１３．カルパインの約80ｋＤａのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることにより産生された哺乳動物カルパインの酵素活性を有する前述のサブユニット。１４．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲１３の当該サブユニット。１５．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲１４の当該サブユニット。１６．前記サブユニットがカルパインの特異的活性の約５％より大きな活性を示す請求の範囲１５の当該サブユニット。１７．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲１３のサブユニット。１８．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲１７のサブユニット。１９．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲１３のサブユニット。２０．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えプラスミドベクター。２１．前記ベクターがあるバキュロウイルストランスファーベクターである請求の範囲２０のベクター。２２．前記カルパインが発現と同時に酵素活性を有する請求の範囲２０のベクター。２３．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２２のベクター。２４．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２３のベクター。２５．前記ベクターが約80ｋＤａのカルパインサブユニット。をコードするｃＤＮＡおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む請求の範囲２０のベクター。２６．発現と同時に活性を有する約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードする組み換えプラスミドベクター。２７．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２６のベクター。２８．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２７のベクター。２９．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３０．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲２９の組み換えバキュロウイルス。３１．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２９の組み換えバキュロウイルス。３２．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３１の組み換えバキュロウイルス。３３．約80ｋＤａの哺乳動物カルパインのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３４．前記サブユニットが発現と同時に酵素活性を有する請求の範囲３３の組み換えバキュロウイルス。３５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲３３の組み換えバキュロウイルス。３６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３５の組み換えバキュロウイルス。３７．約30ｋＤａの哺乳動物カルパインのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３８．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲３７の組み換えバキュロウイルス。３９．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３８の組み換えバキュロウイルス。４０．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５７を有する組み換えバキュロウイルス。４１．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５８を有する組み換えバキュロウイルス。４２．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５９を有する組み換えバキュロウイルス。４３．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。４４．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲４３の方法。４５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲４４の方法。４６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲４５の方法。４７．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲４４の方法。４８．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲４７の方法。４９．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲４４の方法。５０．前記昆虫細胞が、約80ｋＤａのカルパインサブユニットおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む最低１個の組み換えバキュロウイルスに感染した請求の範囲４４の方法。５１．前記昆虫細胞が、約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一の組み換えバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二の組み換えバキュロウイルスに感染した請求の範囲５０の方法。５２．ａ）哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルスを最低１個調製することｂ）前記の組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることｃ）前記の細胞よりカルパインを回収することを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。５３．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲５２の方法。５４．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲５３の方法。５５．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５４の方法。５６．約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一のバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二のバキュロウイルスを調製することを含む請求の範囲５３の方法。５７．ａ）約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡおよび約 30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルスを最低１個調製することｂ）前記組み換えバキュロウイルスで昆虫細胞を感染させることｃ）前記細胞をインキュベーションの最低約24時間後に採収すること、そしてｄ）前記採収された細胞からカルパインを回収することを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。５８．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲５７の方法。５９．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲５８の方法。６０．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５９の方法。６１．約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一のバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二のバキュロウイルスを調製することを含む請求の範囲５８の方法。６２．前記血清を含まない培地が利用される請求の範囲５８の方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者サイマン，ロバートアメリカ合衆国デラウエア州19810ウイルミントン・ビタースイートドライブ2646

Claims

【特許請求の範囲】１．組み換え哺乳動物カルパイン。２．前記のカルパインがヒトカルパインである請求の範囲１のカルパイン。３．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２のカルパイン。４．酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン。５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲４のカルパイン。６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５のカルパイン。７．カルパインをコードする組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることにより産生された、酵素活性を有する組み換え哺乳動物カルパイン。８．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲７のカルパイン。９．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲８のカルパイン。１０．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲７のカルパイン。１１．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲１０のカルパイン。１２．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ。 (Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲７のカルパイン。１３．カルパインの約80ｋＤａのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることにより産生された哺乳動物カルパインの酵素活性を有する前述のサブユニット。１４．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲１３の当該サブユニット。１５．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲１４の当該サブユニット。１６．前記サブユニットがカルパインの特異的活性の約５％より大きな活性を示す請求の範囲１５の当該サブユニット。１７．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲１３のサブユニット。１８．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲１７のサブユニット。１９．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲１３のサブユニット。２０．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えプラスミドベクター。２１．前記ベクターがあるバキュロウイルストランスファーベクターである請求の範囲２０のベクター。２２．前記カルパインが発現と同時に酵素活性を有する請求の範囲２０のベクター。２３．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２２のベクター。２４．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２３のベクター。２５．前記ベクターが約80ｋＤａのカルパインサブユニット。をコードするｃＤＮＡおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む請求の範囲２０のベクター。２６．発現と同時に活性を有する約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードする組み換えプラスミドベクター。２７．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２６のベクター。２８．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲２７のベクター。２９．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３０．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲２９の組み換えバキュロウイルス。３１．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲２９の組み換えバキュロウイルス。３２．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３１の組み換えバキュロウイルス。３３．約80ｋＤａの哺乳動物カルパインのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３４．前記サブユニットが発現と同時に酵素活性を有する請求の範囲３３の組み換えバキュロウイルス。３５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲３３の組み換えバキュロウイルス。３６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３５の組み換えバキュロウイルス。３７．約30ｋＤａの哺乳動物カルパインのサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルス。３８．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲３７の組み換えバキュロウイルス。３９．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲３８の組み換えバキュロウイルス。４０．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５７を有する組み換えバキュロウイルス。４１．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５８を有する組み換えバキュロウイルス。４２．ＡＴＣＣの名称ＡＴＣＣＶＲ２４５９を有する組み換えバキュロウイルス。４３．哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。４４．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲４３の方法。４５．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲４４の方法。４６．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲４５の方法。４７．前記ウイルスがあるバキュロウイルスである請求の範囲４４の方法。４８．前記バキュロウイルスがアウトグラファカリフォルニカ(Autographa Ca lifornica)である請求の範囲４７の方法。４９．前記昆虫細胞がスポドプテラフルギペルダ(Spodoptera frugiperda)種のものである請求の範囲４４の方法。５０．前記昆虫細胞が、約80ｋＤａのカルパインサブユニットおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む最低１個の組み換えバキュロウイルスに感染した請求の範囲４４の方法。５１．前記昆虫細胞が、約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一の組み換えバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二の組み換えバキュロウイルスに感染した請求の範囲５０の方法。５２．ａ）哺乳動物カルパインをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルスを最低１個調製することｂ）前記の組み換えウイルスで昆虫細胞を感染させることｃ）前記の細胞よりカルパインを回収することを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。５３．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲５２の方法。５４．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲５３の方法。５５．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５４の方法。５６．約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一のバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二のバキュロウイルスを調製することを含む請求の範囲５３の方法。５７．ａ）約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡおよび約 30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む組み換えバキュロウイルスを最低１個調製することｂ）前記組み換えバキュロウイルスで昆虫細胞を感染させることｃ）前記細胞をインキュベーションの最低約24時間後に採収すること、そしてｄ）前記採収された細胞からカルパインを回収することを含む、組み換え哺乳動物カルパインを調製するための方法。５８．前記カルパインが発現と同時に活性を有する請求の範囲５７の方法。５９．前記カルパインがヒトカルパインである請求の範囲５８の方法。６０．前記カルパインがカルパインＩである請求の範囲５９の方法。６１．約80ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第一のバキュロウイルスおよび約30ｋＤａのカルパインサブユニットをコードするｃＤＮＡを含む第二のバキュロウイルスを調製することを含む請求の範囲５８の方法。６２．血清を含まない培地が利用される請求の範囲５８の方法。