JPH10257895A - 微生物由来の酸化酵素遺伝子及びそれを用いるダイオキシン除去方法 - Google Patents
微生物由来の酸化酵素遺伝子及びそれを用いるダイオキシン除去方法Info
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- JPH10257895A JPH10257895A JP9084401A JP8440197A JPH10257895A JP H10257895 A JPH10257895 A JP H10257895A JP 9084401 A JP9084401 A JP 9084401A JP 8440197 A JP8440197 A JP 8440197A JP H10257895 A JPH10257895 A JP H10257895A
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- Processing Of Solid Wastes (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【課題】 遺伝子組換え微生物を用いてダイオキシンを
除去する方法。 【解決手段】 配列表配列番号1〜8に示される酸化酵
素遺伝子及びこの遺伝子で形質転換した微生物を用いて
ジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニルエーテルトリ
オール体に変換する方法。遺伝子としてシュードモナス
属細菌CA10株に由来するヘテロ多環芳香族炭化水素化
合物酸化酵素遺伝子が用いられ、宿主細胞には、大腸菌
が用いられる。ダイオキシンで汚染された土壌や水の浄
化に有用である。
除去する方法。 【解決手段】 配列表配列番号1〜8に示される酸化酵
素遺伝子及びこの遺伝子で形質転換した微生物を用いて
ジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニルエーテルトリ
オール体に変換する方法。遺伝子としてシュードモナス
属細菌CA10株に由来するヘテロ多環芳香族炭化水素化
合物酸化酵素遺伝子が用いられ、宿主細胞には、大腸菌
が用いられる。ダイオキシンで汚染された土壌や水の浄
化に有用である。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、ヘテロ多環芳香族
炭化水素を安息香酸類似体に変換することのできる微生
物由来の酸化酵素遺伝子、この遺伝子を含むプラスミ
ド、及びこのプラスミドで形質転換した微生物に関す
る。さらに、本発明は、このような微生物を用いて微生
物学的方法によってヘテロ多環芳香族炭化水素を安息香
酸類似体に変換する方法に関する。本発明の方法によれ
ば、ジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニルエーテル
トリオール体に変換し、ダイオキシンを除去することが
できる。
炭化水素を安息香酸類似体に変換することのできる微生
物由来の酸化酵素遺伝子、この遺伝子を含むプラスミ
ド、及びこのプラスミドで形質転換した微生物に関す
る。さらに、本発明は、このような微生物を用いて微生
物学的方法によってヘテロ多環芳香族炭化水素を安息香
酸類似体に変換する方法に関する。本発明の方法によれ
ば、ジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニルエーテル
トリオール体に変換し、ダイオキシンを除去することが
できる。
【0002】
【従来の技術】ポリ塩素化ジベンゾ−p−ダイオキシン
と称されるダイオキシンは、有害な化合物が多い。これ
ら化合物の発生源は主に有機塩素化合物を含んだごみで
あって、このごみを焼却するときにダイオキシンが発生
し環境中に放出され、毒性のあるこれら化合物によって
環境が汚染される。現在ダイオキシンによる環境の汚染
が広がっており早急な環境浄化が求められている。これ
らダイオキシンの除去方法に関しては、熱分解方法(特
開平6-296710 号公報) 、燃焼条件の改善(特開平3-17
8389号公報) 、γ線照射による分解等が検討されてい
る。しかしいずれの方法も環境中に放出され蓄積された
ダイオキシンを浄化するには十分実用的な解決策を得る
にいたっていない。
と称されるダイオキシンは、有害な化合物が多い。これ
ら化合物の発生源は主に有機塩素化合物を含んだごみで
あって、このごみを焼却するときにダイオキシンが発生
し環境中に放出され、毒性のあるこれら化合物によって
環境が汚染される。現在ダイオキシンによる環境の汚染
が広がっており早急な環境浄化が求められている。これ
らダイオキシンの除去方法に関しては、熱分解方法(特
開平6-296710 号公報) 、燃焼条件の改善(特開平3-17
8389号公報) 、γ線照射による分解等が検討されてい
る。しかしいずれの方法も環境中に放出され蓄積された
ダイオキシンを浄化するには十分実用的な解決策を得る
にいたっていない。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、このよ
うな有害なダイオキシンを微生物学的方法によって無害
な化合物に変換する方法について長年にわたり検討を重
ねた。特に、本発明者らは、ヘテロ多環芳香族炭化水素
をジオール体へ変換し更に分解代謝する微生物が、構造
の似ているダイオキシンの主骨格物質であるジベンゾ−
p−ダイオキシンを同様に変換すると推測し、自然界よ
り分離したカルバゾールを分解する微生物を単離し、こ
の微生物の持つ新規な遺伝子を解明し、この遺伝子で形
質転換した微生物を用いてジベンゾ−p−ダイオキシン
をジフェニルエーテルトリオール体に変換する方法を開
発すべく検討を行った。
うな有害なダイオキシンを微生物学的方法によって無害
な化合物に変換する方法について長年にわたり検討を重
ねた。特に、本発明者らは、ヘテロ多環芳香族炭化水素
をジオール体へ変換し更に分解代謝する微生物が、構造
の似ているダイオキシンの主骨格物質であるジベンゾ−
p−ダイオキシンを同様に変換すると推測し、自然界よ
り分離したカルバゾールを分解する微生物を単離し、こ
の微生物の持つ新規な遺伝子を解明し、この遺伝子で形
質転換した微生物を用いてジベンゾ−p−ダイオキシン
をジフェニルエーテルトリオール体に変換する方法を開
発すべく検討を行った。
【0004】従って、本発明の課題は、微生物学的方法
によってダイオキシン等を無害化する方法を提供するこ
とにある。さらに、本発明の課題は、このような方法に
用いられる微生物由来の酸化酵素遺伝子、該遺伝子を挿
入したプラスミド、及びこのプラスミドで形質転換した
微生物を提供することにある。
によってダイオキシン等を無害化する方法を提供するこ
とにある。さらに、本発明の課題は、このような方法に
用いられる微生物由来の酸化酵素遺伝子、該遺伝子を挿
入したプラスミド、及びこのプラスミドで形質転換した
微生物を提供することにある。
【0005】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、自然界よ
り単離されたヘテロ多環芳香族炭化水素化合物であるカ
ルバゾールを唯一の炭素源及び窒素源として生育できる
微生物、シュードモナス属細菌CA10よりジオキシゲ
ナーゼ遺伝子を単離し、そのDNA配列の詳細な構造を
決定することに成功し、この遺伝子で形質転換した微生
物を用いるとジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニル
エーテルトリオール体へ変換することができることを見
出し、本発明を完成した。すなわち、本発明は、ヘテロ
多環芳香族炭化水素を安息香酸類似体に変換する微生物
由来の遺伝子に関する。
り単離されたヘテロ多環芳香族炭化水素化合物であるカ
ルバゾールを唯一の炭素源及び窒素源として生育できる
微生物、シュードモナス属細菌CA10よりジオキシゲ
ナーゼ遺伝子を単離し、そのDNA配列の詳細な構造を
決定することに成功し、この遺伝子で形質転換した微生
物を用いるとジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニル
エーテルトリオール体へ変換することができることを見
出し、本発明を完成した。すなわち、本発明は、ヘテロ
多環芳香族炭化水素を安息香酸類似体に変換する微生物
由来の遺伝子に関する。
【0006】このような遺伝子は、配列表配列番号1〜
8で示されるアミノ酸配列をコードするDNA配列ある
いはこれと実質的に同じ機能のDNA配列、特にそこに
示されるDNA配列を含むものである。また、本発明
は、このような遺伝子を挿入したプラスミド及びこのプ
ラスミドで形質転換された微生物に関する。さらに、本
発明は、このような形質転換微生物を用いてダイオキシ
ンの主骨格物質のジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェ
ニルエーテルトリオール体に変換する方法に関する。本
発明において実質的に同じ機能のDNA配列は、その配
列のDNAをわずかに変えても発現する酵素が同様にヘ
テロ多環芳香族炭化水素を安息香酸類似体に変換するこ
とのできる作用をもつDNA配列をいう。
8で示されるアミノ酸配列をコードするDNA配列ある
いはこれと実質的に同じ機能のDNA配列、特にそこに
示されるDNA配列を含むものである。また、本発明
は、このような遺伝子を挿入したプラスミド及びこのプ
ラスミドで形質転換された微生物に関する。さらに、本
発明は、このような形質転換微生物を用いてダイオキシ
ンの主骨格物質のジベンゾ−p−ダイオキシンをジフェ
ニルエーテルトリオール体に変換する方法に関する。本
発明において実質的に同じ機能のDNA配列は、その配
列のDNAをわずかに変えても発現する酵素が同様にヘ
テロ多環芳香族炭化水素を安息香酸類似体に変換するこ
とのできる作用をもつDNA配列をいう。
【0007】
【発明の実施の形態】配列表配列番号1、2、3、4、
5、6、7及び8で示される遺伝子は以下のようにして
調製できる。自然界より分離されたヘテロ多環芳香族炭
化水素化合物であるカルバゾールを唯一の炭素源及び窒
素源として生育できる微生物シュードモナス属細菌CA
10を培養し、常法("Molecular Cloning",J.Sembrook
等、CSH,1989など)に従ってこの菌体の全DNAを調製
する。調製した全DNAを制限酵素で切断したものと、
切断したDNA断片と連結可能な制限酵素切断末端を生
じる制限酵素で切断したベクターとをT4DNAリガー
ゼにより連結し、遺伝子ライブラリーを作製する。作製
した遺伝子ライブラリーの連結物によって大腸菌宿主を
形質転換する。このベクターとしては、例えばpUC11
8 、pUC119 等の汎用の大腸菌のベクターを用いるこ
とができる。大腸菌の形質転換法は常法に従えばよい
が、なるべく遺伝子導入効率の高い形質転換法、例え
ば、Hanahan, D.J.Mol.Biol.166, 557-580 (1983) に準
じて行うことが好ましい。得られた形質転換菌からLB
寒天培地上でインジゴを蓄積し青緑色を呈する株を選抜
する。この呈色反応は、挿入DNA断片中のヘテロ多環
芳香族炭化水素酸化酵素が宿主の大腸菌がLB培地上で
生成するインドールを酸化して生じたインジゴの蓄積に
由来するものであると考えられる。すなわち、呈色した
菌体は、遺伝子源であるCA10株由来の酸化酵素遺伝
子をコードするDNA断片を挿入したプラスミドを持つ
ものであると断定できる。さらに青緑色を呈する菌体を
各々釣菌、培養し、任意のバッファーにより菌体懸濁液
を調製し、基質としてヘテロ多環芳香族炭化水素、例え
ばカルバゾールを加えて反応させ、基質が減少するよう
な形質転換株を選抜する。こうしてCA10株由来のヘ
テロ多環芳香族酸化酵素を含む遺伝子断片を挿入したプ
ラスミドで形質転換された株が単離される。この形質転
換株を常法に従い調製し、挿入断片のDNA塩基配列を
デオキシ法等によって解析する。この断片中には、目的
の酸化酵素を構成する蛋白をコードする配列番号1、
2、3、4、5、6、7及び8で示されるDNAが図2
に示される配列の向き、及び配置順で見いだされる。こ
の形質転換細胞は、任意のヘテロ多環芳香族炭化水素を
安息香酸類似体に変換する。なお、シュードモナス属細
菌CA10は、Pseudomonas sp. CA10として、平成
9年1月17日に工業技術院生命工学工業技術研究所に受
託番号 FERM P-16038 として寄託されている。
5、6、7及び8で示される遺伝子は以下のようにして
調製できる。自然界より分離されたヘテロ多環芳香族炭
化水素化合物であるカルバゾールを唯一の炭素源及び窒
素源として生育できる微生物シュードモナス属細菌CA
10を培養し、常法("Molecular Cloning",J.Sembrook
等、CSH,1989など)に従ってこの菌体の全DNAを調製
する。調製した全DNAを制限酵素で切断したものと、
切断したDNA断片と連結可能な制限酵素切断末端を生
じる制限酵素で切断したベクターとをT4DNAリガー
ゼにより連結し、遺伝子ライブラリーを作製する。作製
した遺伝子ライブラリーの連結物によって大腸菌宿主を
形質転換する。このベクターとしては、例えばpUC11
8 、pUC119 等の汎用の大腸菌のベクターを用いるこ
とができる。大腸菌の形質転換法は常法に従えばよい
が、なるべく遺伝子導入効率の高い形質転換法、例え
ば、Hanahan, D.J.Mol.Biol.166, 557-580 (1983) に準
じて行うことが好ましい。得られた形質転換菌からLB
寒天培地上でインジゴを蓄積し青緑色を呈する株を選抜
する。この呈色反応は、挿入DNA断片中のヘテロ多環
芳香族炭化水素酸化酵素が宿主の大腸菌がLB培地上で
生成するインドールを酸化して生じたインジゴの蓄積に
由来するものであると考えられる。すなわち、呈色した
菌体は、遺伝子源であるCA10株由来の酸化酵素遺伝
子をコードするDNA断片を挿入したプラスミドを持つ
ものであると断定できる。さらに青緑色を呈する菌体を
各々釣菌、培養し、任意のバッファーにより菌体懸濁液
を調製し、基質としてヘテロ多環芳香族炭化水素、例え
ばカルバゾールを加えて反応させ、基質が減少するよう
な形質転換株を選抜する。こうしてCA10株由来のヘ
テロ多環芳香族酸化酵素を含む遺伝子断片を挿入したプ
ラスミドで形質転換された株が単離される。この形質転
換株を常法に従い調製し、挿入断片のDNA塩基配列を
デオキシ法等によって解析する。この断片中には、目的
の酸化酵素を構成する蛋白をコードする配列番号1、
2、3、4、5、6、7及び8で示されるDNAが図2
に示される配列の向き、及び配置順で見いだされる。こ
の形質転換細胞は、任意のヘテロ多環芳香族炭化水素を
安息香酸類似体に変換する。なお、シュードモナス属細
菌CA10は、Pseudomonas sp. CA10として、平成
9年1月17日に工業技術院生命工学工業技術研究所に受
託番号 FERM P-16038 として寄託されている。
【0008】また、本発明は、ダイオキシンの主骨格物
質であるジベンゾ−p−ダイオキシンを基質として、前
記酸化酵素遺伝子により形質転換された微生物を用いて
ジフェニルエーテルトリオール体へ変換する方法に関す
るものである。すなわち、少なくとも上記配列1、2、
3、4、5、6、7及び8で示されるアミノ酸配列をコ
ードするDNA配列を含むDNA領域あるいは上記配列
番号1、2、3、4、5、6、7及び8で示される配列
と相同性を有するアミノ酸配列をコードするDNA領域
をプラスミド等のベクターに挿入し、このベクターで任
意の宿主微生物を形質転換することにより宿主微生物に
ヘテロ多環芳香族炭化水素酸化活性を寄与するものであ
る。この宿主微生物は、ジベンゾ−p−ダイオキシンか
らジフェニルエーテルトリオール体へ変換させるための
触媒として使用することができる。また本酵素の基質特
異性は広く、カルバゾール、ジベンゾフラン、キサンテ
ン、ジベンゾチオフェン、アクリジン、フルオレン、ア
セナフテン、アセナフチレン、フェノキサジン、フェノ
チアジン、アントラセン、フェナントレン、ナフタレ
ン、フルオランテン、ピレン、コロネン等を酸化分解す
る。このようにして調製された形質転換体による反応に
よれば、常温常圧下で有害な酸化剤を添加すること無く
ダイオキシンをジフェニルエーテルトリオール体に変換
できる利点がある。また、芳香族炭化水素ジオール体を
代謝できる微生物と組み合わせることによってジフェニ
ルエーテルトリオール体を代謝分解でき、ダイオキシン
によって汚染された汚染土壌や、汚染水を浄化すること
が可能である。
質であるジベンゾ−p−ダイオキシンを基質として、前
記酸化酵素遺伝子により形質転換された微生物を用いて
ジフェニルエーテルトリオール体へ変換する方法に関す
るものである。すなわち、少なくとも上記配列1、2、
3、4、5、6、7及び8で示されるアミノ酸配列をコ
ードするDNA配列を含むDNA領域あるいは上記配列
番号1、2、3、4、5、6、7及び8で示される配列
と相同性を有するアミノ酸配列をコードするDNA領域
をプラスミド等のベクターに挿入し、このベクターで任
意の宿主微生物を形質転換することにより宿主微生物に
ヘテロ多環芳香族炭化水素酸化活性を寄与するものであ
る。この宿主微生物は、ジベンゾ−p−ダイオキシンか
らジフェニルエーテルトリオール体へ変換させるための
触媒として使用することができる。また本酵素の基質特
異性は広く、カルバゾール、ジベンゾフラン、キサンテ
ン、ジベンゾチオフェン、アクリジン、フルオレン、ア
セナフテン、アセナフチレン、フェノキサジン、フェノ
チアジン、アントラセン、フェナントレン、ナフタレ
ン、フルオランテン、ピレン、コロネン等を酸化分解す
る。このようにして調製された形質転換体による反応に
よれば、常温常圧下で有害な酸化剤を添加すること無く
ダイオキシンをジフェニルエーテルトリオール体に変換
できる利点がある。また、芳香族炭化水素ジオール体を
代謝できる微生物と組み合わせることによってジフェニ
ルエーテルトリオール体を代謝分解でき、ダイオキシン
によって汚染された汚染土壌や、汚染水を浄化すること
が可能である。
【0009】以下に上記DNA配列、及び上記アミノ酸
配列及びこれらと同等のアミノ酸配列を有する蛋白質を
コードする遺伝子の調製、並びに該遺伝子により形質転
換した微生物細胞を使用するジベンゾ−p−ダイオキシ
ンからジフェニルエーテルトリオール体への変換に関す
る実施例を示すが、これらの実施例は本発明の範囲を限
定するものではない。
配列及びこれらと同等のアミノ酸配列を有する蛋白質を
コードする遺伝子の調製、並びに該遺伝子により形質転
換した微生物細胞を使用するジベンゾ−p−ダイオキシ
ンからジフェニルエーテルトリオール体への変換に関す
る実施例を示すが、これらの実施例は本発明の範囲を限
定するものではない。
【0010】
【実施例1】ヘテロ多環芳香族炭化水素分解菌シュード
モナス属細菌CA10(FERM P-16038)を、炭素源及び窒
素源としてカルバゾール 0.1%を含む下記組成の無機培
地 100mlに接種し、30℃で120rpmで攪拌下に24時間培養
し、菌体を遠心回収した。 無機培地: Na2HPO4 2.2 g KH2PO4 0.8 g MgSO4・7H2O 10 mg FeSO4・7H2O 10 mg CaSO4・2H2O 10 mg 蒸留水 全量で1000mlとする(pH7.0)
モナス属細菌CA10(FERM P-16038)を、炭素源及び窒
素源としてカルバゾール 0.1%を含む下記組成の無機培
地 100mlに接種し、30℃で120rpmで攪拌下に24時間培養
し、菌体を遠心回収した。 無機培地: Na2HPO4 2.2 g KH2PO4 0.8 g MgSO4・7H2O 10 mg FeSO4・7H2O 10 mg CaSO4・2H2O 10 mg 蒸留水 全量で1000mlとする(pH7.0)
【0011】この菌体の全DNAを常法 (" Molecular
Cloning", J. Sambrook 等,CSH, 1989 など)に従い調
製した。調製した全DNAの約1μgを制限酵素 EcoRI
にて37℃、30分間、部分分解し、その一部を別に調製し
たプラスミドpUC119 1μgを同酵素にて切断したベ
クター溶液と混合し、T4リガーゼを加えて16℃、12
時間反応させCA10由来の各種DNA断片を挿入した
遺伝子ライブラリーを作製した。この遺伝子ライブラリ
ーで常法 (Hanahan, D.J. Mol. Biol.166, 557-580(198
3)) により大腸菌JM109 を形質転換し、その菌懸濁液
0.1mlを、アンピシリンを100mg/l の濃度で含むLB寒
天培地に塗布した。この寒天培地を37℃、24時間静置
し、生じた約10,000個のコロニーのうち青緑色のものが
3個認められた。このコロニーの呈色は、挿入DNA断
片中のヘテロ多環芳香族炭化水素酸化酵素が宿主の大腸
菌がLB培地上で生成するインドールを酸化して生じた
インジゴの蓄積に由来するものであると考えられる。す
なわち、呈色した菌体は、遺伝子源であるCA10株由
来の酸化酵素遺伝子をコードするDNA断片を挿入する
プラスミドで形質転換されたをものであると推定され
た。1にこの酸化酵素をコードするDNA断片の制限酵
素図を示す。
Cloning", J. Sambrook 等,CSH, 1989 など)に従い調
製した。調製した全DNAの約1μgを制限酵素 EcoRI
にて37℃、30分間、部分分解し、その一部を別に調製し
たプラスミドpUC119 1μgを同酵素にて切断したベ
クター溶液と混合し、T4リガーゼを加えて16℃、12
時間反応させCA10由来の各種DNA断片を挿入した
遺伝子ライブラリーを作製した。この遺伝子ライブラリ
ーで常法 (Hanahan, D.J. Mol. Biol.166, 557-580(198
3)) により大腸菌JM109 を形質転換し、その菌懸濁液
0.1mlを、アンピシリンを100mg/l の濃度で含むLB寒
天培地に塗布した。この寒天培地を37℃、24時間静置
し、生じた約10,000個のコロニーのうち青緑色のものが
3個認められた。このコロニーの呈色は、挿入DNA断
片中のヘテロ多環芳香族炭化水素酸化酵素が宿主の大腸
菌がLB培地上で生成するインドールを酸化して生じた
インジゴの蓄積に由来するものであると考えられる。す
なわち、呈色した菌体は、遺伝子源であるCA10株由
来の酸化酵素遺伝子をコードするDNA断片を挿入する
プラスミドで形質転換されたをものであると推定され
た。1にこの酸化酵素をコードするDNA断片の制限酵
素図を示す。
【0012】
【実施例2】実施例1に従い取得された上記配列1、
2、3、4、5、6、7及び8で示される配列を含むD
NAをプラスミドpUC119 に挿入した。このDNAが
挿入された図2に示すプラスミドpUCA1 で常法を用いて
大腸菌JM109 株を形質転換した。形質転換体をアンピ
シリン50mg/lを含む2×YT培地(バクトトリプトン16
g、イーストエキス10g、食塩5g、蒸留水1リット
ル)100ml で37℃にて培養した。抗生物質はアンピシリ
ンを50mg/lの濃度で培地に添加した。600nm での吸光度
が 0.3〜0.5 に達した時点でイソプロピル−β−D−チ
オガラクトピレノシド(IPTG)を終濃度で25ng/ml 添加
し、600nm での吸光度が 1.0〜2.0 に達した時点で4000
xgの遠心分離により集菌し、100 mlの50mMリン酸バッ
ファーに懸濁し、再度同様に遠心にて回収することによ
って培地成分を除去した。この菌体を同バッファー5ml
に懸濁し、カルバゾールを 0.1%添加し、30℃で300rpm
で攪拌下に18時間振とう培養した。培養後菌体上清を塩
酸で酸性にし、5ml酢酸エチルにて抽出し、シリカゲル
カラムを用いて精製し、この5μlにジアゾメタンエー
テル溶液50μlを加えて生成物のメチル化を行い、この
3μlをガスクロマトグラフィー質量分析機を用いて下
記の条件で分析したところアントラニル酸メチルエステ
ルの生成が確認された。この結果を図3及び図4に示し
た。図3はカルバゾールがアントラニル酸へ変換される
工程で生じた生成物のガスクロマトグラフィーである。
それによるとアントラニル酸メチルエステルの生成が確
認されている。また、この物質がアントラニル酸メチル
エステルであることは図4の質量分析結果からみても明
らかである。この結果よりカルバゾールがアントラニル
酸へ変換されることが確認できた。 カラム:DB−5 カラム長 15m カラム直径 0.25
mm ガスクロマトグラフィー質量分析機: JMS AM150 (JOE
L 社製) 試料導入温度: 250℃ カラム温度昇温条件:60℃x2分、4℃/分x3分、16
℃/分x13分 なお、前記のプラスミドpUCA1で大腸菌JM109 を形質
転換した形質転換体は、Escherichia coli JM109-pU
CA1として平成9年2月2日に工業技術院生命工学工業
技術研究所に受託番号 FERM P-16090 として寄託されて
いる。
2、3、4、5、6、7及び8で示される配列を含むD
NAをプラスミドpUC119 に挿入した。このDNAが
挿入された図2に示すプラスミドpUCA1 で常法を用いて
大腸菌JM109 株を形質転換した。形質転換体をアンピ
シリン50mg/lを含む2×YT培地(バクトトリプトン16
g、イーストエキス10g、食塩5g、蒸留水1リット
ル)100ml で37℃にて培養した。抗生物質はアンピシリ
ンを50mg/lの濃度で培地に添加した。600nm での吸光度
が 0.3〜0.5 に達した時点でイソプロピル−β−D−チ
オガラクトピレノシド(IPTG)を終濃度で25ng/ml 添加
し、600nm での吸光度が 1.0〜2.0 に達した時点で4000
xgの遠心分離により集菌し、100 mlの50mMリン酸バッ
ファーに懸濁し、再度同様に遠心にて回収することによ
って培地成分を除去した。この菌体を同バッファー5ml
に懸濁し、カルバゾールを 0.1%添加し、30℃で300rpm
で攪拌下に18時間振とう培養した。培養後菌体上清を塩
酸で酸性にし、5ml酢酸エチルにて抽出し、シリカゲル
カラムを用いて精製し、この5μlにジアゾメタンエー
テル溶液50μlを加えて生成物のメチル化を行い、この
3μlをガスクロマトグラフィー質量分析機を用いて下
記の条件で分析したところアントラニル酸メチルエステ
ルの生成が確認された。この結果を図3及び図4に示し
た。図3はカルバゾールがアントラニル酸へ変換される
工程で生じた生成物のガスクロマトグラフィーである。
それによるとアントラニル酸メチルエステルの生成が確
認されている。また、この物質がアントラニル酸メチル
エステルであることは図4の質量分析結果からみても明
らかである。この結果よりカルバゾールがアントラニル
酸へ変換されることが確認できた。 カラム:DB−5 カラム長 15m カラム直径 0.25
mm ガスクロマトグラフィー質量分析機: JMS AM150 (JOE
L 社製) 試料導入温度: 250℃ カラム温度昇温条件:60℃x2分、4℃/分x3分、16
℃/分x13分 なお、前記のプラスミドpUCA1で大腸菌JM109 を形質
転換した形質転換体は、Escherichia coli JM109-pU
CA1として平成9年2月2日に工業技術院生命工学工業
技術研究所に受託番号 FERM P-16090 として寄託されて
いる。
【0013】
【実施例3】実施例1に従い取得された上記配列1、
2、3、4、5、6、7、8で示される配列を含むDN
Aを制限酵素、EcoRI 、SmaI、BglII 、SphIを用いて切
断し、この切断されたDNA断片をプラスミド pUC119
に挿入し、上記配列の各種断片を含むプラスミドを構築
し、常法を用いて大腸菌JM109 株を形質転換した (図
5)。図5に示した上記配列の各断片を含む形質転換体
を実施例2に従って培養を行ない、培養後菌体上清を実
施例2に従ってガスクロマトグラフィー質量分析機を用
いてアントラニル酸メチルエステル生成の有無を確認し
た。それによると上記配列1、2、3、4、5、6、
7、8、又は上記配列2、3、4、5、6、7、8で示
される配列を含むDNAを含む形質転換体がカルバゾー
ルをアントラニル酸へ変換することが確認された。しか
し、上記配列1、2、3、4、5、6、7、8で示され
る配列を含むDNAを含む形質転換体のインジゴ生成に
よるコロニーの呈色が、上記配列2、3、4、5、6、
7、8で示される配列を含むDNAを含む形質転換体の
インジゴ生成によるコロニーの呈色より濃いことより、
カルバゾールをアントラニル酸へ変換するには少なくと
も上記配列1、2、3、4、5、6、7、8で示される
配列を含むDNAが必要であることが確認できた。
2、3、4、5、6、7、8で示される配列を含むDN
Aを制限酵素、EcoRI 、SmaI、BglII 、SphIを用いて切
断し、この切断されたDNA断片をプラスミド pUC119
に挿入し、上記配列の各種断片を含むプラスミドを構築
し、常法を用いて大腸菌JM109 株を形質転換した (図
5)。図5に示した上記配列の各断片を含む形質転換体
を実施例2に従って培養を行ない、培養後菌体上清を実
施例2に従ってガスクロマトグラフィー質量分析機を用
いてアントラニル酸メチルエステル生成の有無を確認し
た。それによると上記配列1、2、3、4、5、6、
7、8、又は上記配列2、3、4、5、6、7、8で示
される配列を含むDNAを含む形質転換体がカルバゾー
ルをアントラニル酸へ変換することが確認された。しか
し、上記配列1、2、3、4、5、6、7、8で示され
る配列を含むDNAを含む形質転換体のインジゴ生成に
よるコロニーの呈色が、上記配列2、3、4、5、6、
7、8で示される配列を含むDNAを含む形質転換体の
インジゴ生成によるコロニーの呈色より濃いことより、
カルバゾールをアントラニル酸へ変換するには少なくと
も上記配列1、2、3、4、5、6、7、8で示される
配列を含むDNAが必要であることが確認できた。
【0014】
【実施例4】実施例1に従い取得された上記配列1、
2、3、4、5、6、7及び8で示される配列を含むD
NAを挿入したプラスミドpUCA1(図2)で常法を用いて
大腸菌JM109 株を形質転換(FERM P-16090)した。形質
転換体をアンピシリン50mg/lを含む2×YT培地(バク
トトリプトン16g、イーストエキス10g、食塩5g、蒸
留水1リットル)100 mlで37℃にて培養した。抗生物質
はアンピシリンを50mg/lの濃度で培地に添加した。600n
m での吸光度が 0.3〜0.5 に達した時点でイソプロピル
−β−D−チオガラクトピレノシド(IPTG)を終濃度で
25ng/ml 添加し、600nm での吸光度が 1.0〜2.0 に達し
た時点で4000Xgの遠心分離により 集菌し、100 mlの50
mMリン酸バッファーに懸濁し、再度同様に遠心にて回収
することによって培地成分を除去した。この菌体を同バ
ッファー5mlに懸濁し、ジベンゾ−p−ダイオキシンを
0.1 %添加し、30℃で300rpmで攪拌下に18時間振とう培
養した。培養後菌体上清を塩酸で酸性にし、その10μl
を490 μl酢酸エチルにて抽出し、このうち25μlにN
−メチル−N−トリメチルシリルフルオロアセトンを加
え70℃、30分シリル化反応を行い、この1μlをガスク
ロマトグラフィー質量分析機にて下記の条件で分析した
ところ 2,2',3−トリヒドロキシジフェニルエーテル
トリメチルシリル化誘導体の生成が確認された。この結
果を図6及び7に示した。図6はジベンゾ−p−ダイオ
キシンが 2,2',3−トリヒドロキシジフェニルエーテ
ルに変換される工程で生じた生成物のガスクロマトグラ
フィーである。それによると、 2,2',3−トリヒドロ
キシジフェニルエーテルトリメチルシリル化誘導体の生
成が確認されている。また、この物質が 2,2',3−ト
リヒドロキシジフェニルエーテルトリメチルシリル化誘
導体であることは図6により確認されている。この結果
よりジベンゾ−p−ダイオキシンが2,2', 3−トリヒ
ドロキシジフェニルエーテルに変換されることが確認で
きた。 カラム:DB−5 (カラム長 15m カラム直径 0.25
mm) ガスクロマトグラフィー質量分析機: JMS AM150 (JOE
L 社製) 試料導入温度: 250℃ カラム温度昇温条件: 80 ℃x2分、16℃/分x13分
2、3、4、5、6、7及び8で示される配列を含むD
NAを挿入したプラスミドpUCA1(図2)で常法を用いて
大腸菌JM109 株を形質転換(FERM P-16090)した。形質
転換体をアンピシリン50mg/lを含む2×YT培地(バク
トトリプトン16g、イーストエキス10g、食塩5g、蒸
留水1リットル)100 mlで37℃にて培養した。抗生物質
はアンピシリンを50mg/lの濃度で培地に添加した。600n
m での吸光度が 0.3〜0.5 に達した時点でイソプロピル
−β−D−チオガラクトピレノシド(IPTG)を終濃度で
25ng/ml 添加し、600nm での吸光度が 1.0〜2.0 に達し
た時点で4000Xgの遠心分離により 集菌し、100 mlの50
mMリン酸バッファーに懸濁し、再度同様に遠心にて回収
することによって培地成分を除去した。この菌体を同バ
ッファー5mlに懸濁し、ジベンゾ−p−ダイオキシンを
0.1 %添加し、30℃で300rpmで攪拌下に18時間振とう培
養した。培養後菌体上清を塩酸で酸性にし、その10μl
を490 μl酢酸エチルにて抽出し、このうち25μlにN
−メチル−N−トリメチルシリルフルオロアセトンを加
え70℃、30分シリル化反応を行い、この1μlをガスク
ロマトグラフィー質量分析機にて下記の条件で分析した
ところ 2,2',3−トリヒドロキシジフェニルエーテル
トリメチルシリル化誘導体の生成が確認された。この結
果を図6及び7に示した。図6はジベンゾ−p−ダイオ
キシンが 2,2',3−トリヒドロキシジフェニルエーテ
ルに変換される工程で生じた生成物のガスクロマトグラ
フィーである。それによると、 2,2',3−トリヒドロ
キシジフェニルエーテルトリメチルシリル化誘導体の生
成が確認されている。また、この物質が 2,2',3−ト
リヒドロキシジフェニルエーテルトリメチルシリル化誘
導体であることは図6により確認されている。この結果
よりジベンゾ−p−ダイオキシンが2,2', 3−トリヒ
ドロキシジフェニルエーテルに変換されることが確認で
きた。 カラム:DB−5 (カラム長 15m カラム直径 0.25
mm) ガスクロマトグラフィー質量分析機: JMS AM150 (JOE
L 社製) 試料導入温度: 250℃ カラム温度昇温条件: 80 ℃x2分、16℃/分x13分
【0015】
【発明の効果】本発明によると、酸化酵素遺伝子で形質
転換した微生物を用いて有毒なダイオキシンの主骨格物
質のジベンゾ−p−ダイオキシンを常温常圧下で対応す
るジフェニルエーテルトリオール体に変換することがで
きる。従って、従来のようなダイオキシンの無害化に加
熱処理する必要がなく、また有害な酸化剤を使用せず、
環境に対して安全にダイオキシンを無害化することがで
きる。この結果ダイオキシンによって汚染された汚染土
壌や汚染水の浄化を可能にする。
転換した微生物を用いて有毒なダイオキシンの主骨格物
質のジベンゾ−p−ダイオキシンを常温常圧下で対応す
るジフェニルエーテルトリオール体に変換することがで
きる。従って、従来のようなダイオキシンの無害化に加
熱処理する必要がなく、また有害な酸化剤を使用せず、
環境に対して安全にダイオキシンを無害化することがで
きる。この結果ダイオキシンによって汚染された汚染土
壌や汚染水の浄化を可能にする。
【0016】
配列番号:1 配列の長さ:1161 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG GAC GTG GCG AAC GTT GAT GAG GCA ATT TTA AAA AGA GTA AAA GGC 48 Met Asp Val Ala Asn Val Asp Glu Ala Ile Leu Lys Arg Val Lys Gly 1 5 10 15 TGG GCG CCC TAC GTG GAT GCG AAG CTA GGC TTT CGC AAT CAT TGG TAC 96 Trp Ala Pro Tyr Val Asp Ala Lys Leu Gly Phe Arg Asn His Trp Tyr 20 25 30 CCG GTG ATG TTT TCG AAA GAG ATC GAC GAG GGC GAG CCG AAG ACA CTA 144 Pro Val Met Phe Ser Lys Glu Ile Asp Glu Gly Glu Pro Lys Thr Leu 35 40 45 AAA CTG CTC GGT GAG AAC TTG CTC GTC AAT CGT ATC GAT GGG AAG CTG 192 Lys Leu Leu Gly Glu Asn Leu Leu Val Asn Arg Ile Asp Gly Lys Leu 50 55 60 TAT TGC CTC AAG GAC CGC TGC CTG CAT CGC GGC GTC CAG TTG TCG GTC 240 Tyr Cys Leu Lys Asp Arg Cys Leu His Arg Gly Val Gln Leu Ser Val 65 70 75 80 AAA GTC GAG TGC AAA ACG AAG TCG ACG ATC ACA TGC TGG TAC CAC GCG 288 Lys Val Glu Cys Lys Thr Lys Ser Thr Ile Thr Cys Trp Tyr His Ala 85 90 95 TGG ACC TAT CGC TGG GAA GAC GGC GTT CTG TGC GAC ATC TTG ACG AAT 336 Trp Thr Tyr Arg Trp Glu Asp Gly Val Leu Cys Asp Ile Leu Thr Asn 100 105 110 CCG ACA AGC GCA CAG ATC GGT CGA CAA AAG CTG AAA ACT TAC CCA GTG 384 Pro Thr Ser Ala Gln Ile Gly Arg Gln Lys Leu Lys Thr Tyr Pro Val 115 120 125 CAG GAA GCC AAG GGC TGC GTC TTC ATT TAT CTT GGC GAT GGC GAC CCT 432 Gln Glu Ala Lys Gly Cys Val Phe Ile Tyr Leu Gly Asp Gly Asp Pro 130 135 140 CCT CCC TTG GCC CGC GAT ACG CCA CCC AAT TTC CTT GAC GAT GAC ATG 480 Pro Pro Leu Ala Arg Asp Thr Pro Pro Asn Phe Leu Asp Asp Asp Met 145 150 155 160 GAA ATC CTC GGG AAG AAC CAA ATC ATC AAG TCT AAC TGG CGC CTC GCT 528 Glu Ile Leu Gly Lys Asn Gln Ile Ile Lys Ser Asn Trp Arg Leu Ala 165 170 175 GTG GAA AAC GGT TTC GAT CCG AGC CAC ATT TAT ATT CAC AAA GAC TCA 576 Val Glu Asn Gly Phe Asp Pro Ser His Ile Tyr Ile His Lys Asp Ser 180 185 190 ATT CTG GTC AAG GAC AAC GAT CTT GCC TTG CCA CTA GGT TTC GCG CCA 624 Ile Leu Val Lys Asp Asn Asp Leu Ala Leu Pro Leu Gly Phe Ala Pro 195 200 205 GGA GGG GAT CGA AAG CAA CAA ACT CGT GTG GTT GAC GAT GAC GTC GTC 672 Gly Gly Asp Arg Lys Gln Gln Thr Arg Val Val Asp Asp Asp Val Val 210 215 220 GGA CGC AAG GGT GTT TAC GAT CTT ATT GGC GAA CAT GGG GTC CCA GTG 720 Gly Arg Lys Gly Val Tyr Asp Leu Ile Gly Glu His Gly Val Pro Val 225 230 235 240 TTT GAG GGA ACT ATC GGG GGC GAA GTG GTC CGC GAA GGT GCC TAC GGC 768 Phe Glu Gly Thr Ile Gly Gly Glu Val Val Arg Glu Gly Ala Tyr Gly 245 250 255 GAA AAA ATT GTA GCG AAC GAT ATC TCC ATT TGG CTC CCG GGT GTT CTC 816 Glu Lys Ile Val Ala Asn Asp Ile Ser Ile Trp Leu Pro Gly Val Leu 260 265 270 AAG GTC AAT CCG TTC CCC AAT CCG GAC ATG ATG CAG TTC GAG TGG TAC 864 Lys Val Asn Pro Phe Pro Asn Pro Asp Met Met Gln Phe Glu Trp Tyr 275 280 285 GTG CCG ATT GAC GAA AAC ACA CAC TAT TAC TTC CAA ACT CTT GGC AAA 912 Val Pro Ile Asp Glu Asn Thr His Tyr Tyr Phe Gln Thr Leu Gly Lys 290 295 300 CCA TGT GCC AAT GAC GAG GAA CGG AAG AAT TAC GAA CAA GAG TTC GAA 960 Pro Cys Ala Asn Asp Glu Glu Arg Lys Asn Tyr Glu Gln Glu Phe Glu 305 310 315 320 AGC AAG TGG AAA CCG ATG GCG CTC GAA GGA TTC AAC AAC GAT GAC ATC 1008 Ser Lys Trp Lys Pro Met Ala Leu Glu Gly Phe Asn Asn Asp Asp Ile 325 330 335 TGG GCT CGC GAA GCT ATG GTG GAT TTC TAC GCC GAT GAT AAA GGC TGG 1056 Trp Ala Arg Glu Ala Met Val Asp Phe Tyr Ala Asp Asp Lys Gly Trp 340 345 350 GTC AAC GAG ATT TTG TTC GAG GTG GAC GAG GCT ATC GTG GCA TGG CGC 1104 Val Asn Glu Ile Leu Phe Glu Val Asp Glu Ala Ile Val Ala Trp Arg 355 360 365 AAG CTG GCG AGC GAA CAC AAT CAG GGT ATT CAG ACC CAA GCG CAC GTT 1152 Lys Leu Ala Ser Glu His Asn Gln Gly Ile Gln Thr Gln Ala His Val 370 375 380 TCG GGC TGA 1161 Ser Gly *** 385
【0017】配列番号:2 配列の長さ:1218 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG GGC CAA GAT CCC AAG GCA CGA GTT TAT GTA GGC AGC GAT TCA ATG 48 Met Gly Gln Asp Pro Lys Ala Arg Val Tyr Val Gly Ser Asp Ser Met 1 5 10 15 AAA AAG GAG ATG GAC GTG GCG AAC GTT GAT GAG GCA ATT TTA AAA AGA 96 Lys Lys Glu Met Asp Val Ala Asn Val Asp Glu Ala Ile Leu Lys Arg 20 25 30 GTA AAA GGC TGG GCG CCC TAC GTG GAT GCG AAG CTA GGC TTT CGC AAT 144 Val Lys Gly Trp Ala Pro Tyr Val Asp Ala Lys Leu Gly Phe Arg Asn 35 40 45 CAT TGG TAC CCG GTG ATG TTT TCG AAA GAG ATC GAC GAG GGC GAG CCG 192 His Trp Tyr Pro Val Met Phe Ser Lys Glu Ile Asp Glu Gly Glu Pro 50 55 60 AAG ACA CTA AAA CTG CTC GGT GAG AAC TTG CTC GTC AAT CGT ATC GAT 240 Lys Thr Leu Lys Leu Leu Gly Glu Asn Leu Leu Val Asn Arg Ile Asp 65 70 75 80 GGG AAG CTG TAT TGC CTC AAG GAC CGC TGC CTG CAT CGC GGC GTC CAG 288 Gly Lys Leu Tyr Cys Leu Lys Asp Arg Cys Leu His Arg Gly Val Gln 85 90 95 TTG TCG GTC AAA GTC GAG TGC AAA ACG AAG TCG ACG ATC ACA TGC TGG 336 Leu Ser Val Lys Val Glu Cys Lys Thr Lys Ser Thr Ile Thr Cys Trp 100 105 110 TAC CAC GCG TGG ACC TAT CGC TGG GAA GAC GGC GTT CTG TGC GAC ATC 384 Tyr His Ala Trp Thr Tyr Arg Trp Glu Asp Gly Val Leu Cys Asp Ile 115 120 125 TTG ACG AAT CCG ACA AGC GCA CAG ATC GGT CGA CAA AAG CTG AAA ACT 432 Leu Thr Asn Pro Thr Ser Ala Gln Ile Gly Arg Gln Lys Leu Lys Thr 130 135 140 TAC CCA GTG CAG GAA GCC AAG GGC TGC GTC TTC ATT TAT CTT GGC GAT 480 Tyr Pro Val Gln Glu Ala Lys Gly Cys Val Phe Ile Tyr Leu Gly Asp 145 150 155 160 GGC GAC CCT CCT CCC TTG GCC CGC GAT ACG CCA CCC AAT TTC CTT GAC 528 Gly Asp Pro Pro Pro Leu Ala Arg Asp Thr Pro Pro Asn Phe Leu Asp 165 170 175 GAT GAC ATG GAA ATC CTC GGG AAG AAC CAA ATC ATC AAG TCT AAC TGG 576 Asp Asp Met Glu Ile Leu Gly Lys Asn Gln Ile Ile Lys Ser Asn Trp 180 185 190 CGC CTC GCT GTG GAA AAC GGT TTC GAT CCG AGC CAC ATT TAT ATT CAC 624 Arg Leu Ala Val Glu Asn Gly Phe Asp Pro Ser His Ile Tyr Ile His 195 200 205 AAA GAC TCA ATT CTG GTC AAG GAC AAC GAT CTT GCC TTG CCA CTA GGT 672 Lys Asp Ser Ile Leu Val Lys Asp Asn Asp Leu Ala Leu Pro Leu Gly 210 215 220 TTC GCG CCA GGA GGG GAT CGA AAG CAA CAA ACT CGT GTG GTT GAC GAT 720 Phe Ala Pro Gly Gly Asp Arg Lys Gln Gln Thr Arg Val Val Asp Asp 225 230 235 240 GAC GTC GTC GGA CGC AAG GGT GTT TAC GAT CTT ATT GGC GAA CAT GGG 768 Asp Val Val Gly Arg Lys Gly Val Tyr Asp Leu Ile Gly Glu His Gly 245 250 255 GTC CCA GTG TTT GAG GGA ACT ATC GGG GGC GAA GTG GTC CGC GAA GGT 816 Val Pro Val Phe Glu Gly Thr Ile Gly Gly Glu Val Val Arg Glu Gly 260 265 270 GCC TAC GGC GAA AAA ATT GTA GCG AAC GAT ATC TCC ATT TGG CTC CCG 864 Ala Tyr Gly Glu Lys Ile Val Ala Asn Asp Ile Ser Ile Trp Leu Pro 275 280 285 GGT GTT CTC AAG GTC AAT CCG TTC CCC AAT CCG GAC ATG ATG CAG TTC 912 Gly Val Leu Lys Val Asn Pro Phe Pro Asn Pro Asp Met Met Gln Phe 290 295 300 GAG TGG TAC GTG CCG ATT GAC GAA AAC ACA CAC TAT TAC TTC CAA ACT 960 Glu Trp Tyr Val Pro Ile Asp Glu Asn Thr His Tyr Tyr Phe Gln Thr 305 310 315 320 CTT GGC AAA CCA TGT GCC AAT GAC GAG GAA CGG AAG AAT TAC GAA CAA 1008 Leu Gly Lys Pro Cys Ala Asn Asp Glu Glu Arg Lys Asn Tyr Glu Gln 325 330 335 GAG TTC GAA AGC AAG TGG AAA CCG ATG GCG CTC GAA GGA TTC AAC AAC 1056 Glu Phe Glu Ser Lys Trp Lys Pro Met Ala Leu Glu Gly Phe Asn Asn 340 345 350 GAT GAC ATC TGG GCT CGC GAA GCT ATG GTG GAT TTC TAC GCC GAT GAT 1104 Asp Asp Ile Trp Ala Arg Glu Ala Met Val Asp Phe Tyr Ala Asp Asp 355 360 365 AAA GGC TGG GTC AAC GAG ATT TTG TTC GAG GTG GAC GAG GCT ATC GTG 1152 Lys Gly Trp Val Asn Glu Ile Leu Phe Glu Val Asp Glu Ala Ile Val 370 375 380 GCA TGG CGC AAG CTG GCG AGC GAA CAC AAT CAG GGT ATT CAG ACC CAA 1200 Ala Trp Arg Lys Leu Ala Ser Glu His Asn Gln Gly Ile Gln Thr Gln 385 390 395 400 Ala His Val Ser Gly *** 405
【0018】配列番号:3 配列の長さ:273 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG GCT CGA TAT GAA GTC GAT CGC CTA ATT CAG GAC ATG TCG AAA AAA 48 Met Ala Arg Tyr Glu Val Asp Arg Leu Ile Gln Asp Met Ser Lys Lys 1 5 10 15 GAA GGG CTC ATT GGG CGC GTG ATC GAC ACA CCA TCG GAT GTC TTT GAG 96 Glu Gly Leu Ile Gly Arg Val Ile Asp Thr Pro Ser Asp Val Phe Glu 20 25 30 GAG TAC GGT TTA ACG CCT CCT GAA CGC ACT GCG CTG CTC GAG GGT ACT 144 Glu Tyr Gly Leu Thr Pro Pro Glu Arg Thr Ala Leu Leu Glu Gly Thr 35 40 45 CCG CAA GCA CTA GCT TCG ATT GGT GTG CAT CCG ATT CTG CAG ATG CAC 192 Pro Gln Ala Leu Ala Ser Ile Gly Val His Pro Ile Leu Gln Met His 50 55 60 TAC TTG ATG TAC AAA AAT CCT GAA ATG GCT ACT CAC GTT TCT ATT AAG 240 Tyr Leu Met Tyr Lys Asn Pro Glu Met Ala Thr His Val Ser Ile Lys 65 70 75 80 GAT TAT TCC GAT ATG TTG AAA GGA GGC GCT TGA 273 Asp Tyr Ser Asp Met Leu Lys Gly Gly Ala *** 85 90
【0019】配列番号:4 配列の長さ:810 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG GGG AAG ATT GTT GCG GCC GGT GGT ACC TCG CAT ATT CTC ATG TCT 48 Met Gly Lys Ile Val Ala Ala Gly Gly Thr Ser His Ile Leu Met Ser 1 5 10 15 CCA AAA GGA TGT GAG GAG AGC GCT GCT CGC GTG GTG AAC GGC ATT GCT 96 Pro Lys Gly Cys Glu Glu Ser Ala Ala Arg Val Val Asn Gly Ile Ala 20 25 30 GAA CTC GGA CGG CGC TTG AAG GAA GCA CGT CCT GAT GTG CTC GTC ATT 144 Glu Leu Gly Arg Arg Leu Lys Glu Ala Arg Pro Asp Val Leu Val Ile 35 40 45 ATC ACA AGC GAT CAC ATG TTC AAT ATC AAC TTG TCC ATG CAA CCG CGT 192 Ile Thr Ser Asp His Met Phe Asn Ile Asn Leu Ser Met Gln Pro Arg 50 55 60 TTC GTG GTG GGC ATT GCT GAC AGT TAT ACG CCG ATG GGT GAC ATG GAC 240 Phe Val Val Gly Ile Ala Asp Ser Tyr Thr Pro Met Gly Asp Met Asp 65 70 75 80 ATT CCG CGT GAT CTG GTG CCG GGA AGC CGC GAA GTT GGG CGC GCG ATT 288 Ile Pro Arg Asp Leu Val Pro Gly Ser Arg Glu Val Gly Arg Ala Ile 85 90 95 GCG CTA CAG GCT GAT GAG GAC GGC TTT GAC TTA TGT CAA GCC GAG GAG 336 Ala Leu Gln Ala Asp Glu Asp Gly Phe Asp Leu Cys Gln Ala Glu Glu 100 105 110 TAC AGC CTT GAT CAC GGC ATC ATG ATA CCA ATC CTG TTC ATG GGC ATG 384 Tyr Ser Leu Asp His Gly Ile Met Ile Pro Ile Leu Phe Met Gly Met 115 120 125 AAA GAA ATT CCT GTA GTG CCT GTG ATT GTG AAC ATC AAT ACT GAT CCC 432 Lys Glu Ile Pro Val Val Pro Val Ile Val Asn Ile Asn Thr Asp Pro 130 135 140 ATC CCC TCA GCA CGC CGA TGC GTG GCC CTT GCT GAA AGC ATC CGT CAA 480 Ile Pro Ser Ala Arg Arg Cys Val Ala Leu Ala Glu Ser Ile Arg Gln 145 150 155 160 GCG ATC GAG AAA CGT ACG CCA GAT GGA TGC CGC GTT GCG GTA GTT GGC 528 Ala Ile Glu Lys Arg Thr Pro Asp Gly Cys Arg Val Ala Val Val Gly 165 170 175 GCA GGC GGT CTA TCG CAC TGG CTG TGC GTT CCT CGA CAT GGA GAG GTA 576 Ala Gly Gly Leu Ser His Trp Leu Cys Val Pro Arg His Gly Glu Val 180 185 190 AGC GAG AAA TTC GAC CAT ATG GTG ATG GAC GAG CTT GTC CGC GGC AAC 624 Ser Glu Lys Phe Asp His Met Val Met Asp Glu Leu Val Arg Gly Asn 195 200 205 GCC GAA AAG CTT GTC GCC ATG GGG AAC GAA GCC ATC ATC GAC CAG GGC 672 Ala Glu Lys Leu Val Ala Met Gly Asn Glu Ala Ile Ile Asp Gln Gly 210 215 220 GGC AAT GCG GGC GTA GAA ATA CTG ACG TGG ATC ATG GCT GCG GTA GCG 720 Gly Asn Ala Gly Val Glu Ile Leu Thr Trp Ile Met Ala Ala Val Ala 225 230 235 240 TCA GAG GCA TCG TCA GGC GAA AAA GTA TTT TAT GAA GCA ATG ACA CAG 768 Ser Glu Ala Ser Ser Gly Glu Lys Val Phe Tyr Glu Ala Met Thr Gln 245 250 255 TGG TTT ACC GGA ATC GGA GGA ATG GAA TTT CAT GTT AAA TAA 810 Trp Phe Thr Gly Ile Gly Gly Met Glu Phe His Val Lys *** 260 265 270
【0020】配列番号:5 配列の長さ:873 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG TTA AAT AAA GCT GAA CAA ATC TCG GAA AAG TCC GAA AGT GCG TAT 48 Met Leu Asn Lys Ala Glu Gln Ile Ser Glu Lys Ser Glu Ser Ala Tyr 1 5 10 15 GTC GAA CGC TTT GTT AAT GCG GGC GGT GTT GAA ACC CGC TAT CTC GAA 96 Val Glu Arg Phe Val Asn Ala Gly Gly Val Glu Thr Arg Tyr Leu Glu 20 25 30 GCC GGC AAA GGG CAG CCC GTC ATC TTG ATC CAT GGA GGG GGT GCG GGA 144 Ala Gly Lys Gly Gln Pro Val Ile Leu Ile His Gly Gly Gly Ala Gly 35 40 45 GCG GAG AGC GAA GGT AAT TGG AGA AAC GTC ATC CCC ATT CTT GCT CGT 192 Ala Glu Ser Glu Gly Asn Trp Arg Asn Val Ile Pro Ile Leu Ala Arg 50 55 60 CAC TAT CGT GTG ATT GCT ATG GAC ATG CTT GGC TTT GGT AAG ACC GCA 240 His Tyr Arg Val Ile Ala Met Asp Met Leu Gly Phe Gly Lys Thr Ala 65 70 75 80 AAG CCT GAC ATC GAA TAT ACG CAG GAC CGC CGC ATT CGT CAC TTG CAC 288 Lys Pro Asp Ile Glu Tyr Thr Gln Asp Arg Arg Ile Arg His Leu His 85 90 95 GAT TTT ATT AAA GCG ATG AAC TTC GAC GGC AAG GTC TCG ATT GTG GGA 336 Asp Phe Ile Lys Ala Met Asn Phe Asp Gly Lys Val Ser Ile Val Gly 100 105 110 AAT TCG ATG GGT GGC GCA ACC GGC CTC GGT GTG TCT GTT CTT CAC TCT 384 Asn Ser Met Gly Gly Ala Thr Gly Leu Gly Val Ser Val Leu His Ser 115 120 125 GAA CTC GTC AAT GCA CTG GTG CTC ATG GGA AGC GCA GGC CTC GTA GTA 432 Glu Leu Val Asn Ala Leu Val Leu Met Gly Ser Ala Gly Leu Val Val 130 135 140 GAA ATC CAC GAA GAT CTG CGC CCC ATC ATC AAC TAC GAT TTC ACA CGT 480 Glu Ile His Glu Asp Leu Arg Pro Ile Ile Asn Tyr Asp Phe Thr Arg 145 150 155 160 GAG GGT ATG GTC CAT TTG GTC AAG GCA CTT ACC AAC GAT GGA TTC AAG 528 Glu Gly Met Val His Leu Val Lys Ala Leu Thr Asn Asp Gly Phe Lys 165 170 175 ATC GAC GAT GCG ATG ATC AAC TCG CGC TAT ACC TAC GCG ACC GAT GAA 576 Ile Asp Asp Ala Met Ile Asn Ser Arg Tyr Thr Tyr Ala Thr Asp Glu 180 185 190 GCT ACG CGC AAA GCC TAC GTA GCG ACA ATG CAG TGG ATT CGC GAA CAG 624 Ala Thr Arg Lys Ala Tyr Val Ala Thr Met Gln Trp Ile Arg Glu Gln 195 200 205 GGC GGA CTT TTC TAC GAT CCC GAG TTC ATT CGG AAA GTT CCG GTG CCG 672 Gly Gly Leu Phe Tyr Asp Pro Glu Phe Ile Arg Lys Val Pro Val Pro 210 215 220 ACC CTT GTG GTG CAC GGG AAA GAT GAC AAG GTA GTT CCA GTT GAA ACT 720 Thr Leu Val Val His Gly Lys Asp Asp Lys Val Val Pro Val Glu Thr 225 230 235 240 GCA TAC AAG TTT CTT GAT CTC ATC GAT GAC AGC TGG GGC TAC ATC ATC 768 Ala Tyr Lys Phe Leu Asp Leu Ile Asp Asp Ser Trp Gly Tyr Ile Ile 245 250 255 CCT CAC TGC GGC CAC TGG GCG ATG ATC GAA CAT CCA GAG GAC TTT GCG 816 Pro His Cys Gly His Trp Ala Met Ile Glu His Pro Glu Asp Phe Ala 260 265 270 AAC GCA ACT CTG TCG TTC CTT TCT CGT CGT GCA GAC ATT ACC CGT GCT 864 Asn Ala Thr Leu Ser Phe Leu Ser Arg Arg Ala Asp Ile Thr Arg Ala 275 280 285 GCC GCA TAA 873 Ala Ala *** 290
【0021】配列番号:6 配列の長さ:324 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG AAC CAA ATT TGG TTG AAA GTA TGT GCT GCA TCT GAC ATG CAA CCT 48 Met Asn Gln Ile Trp Leu Lys Val Cys Ala Ala Ser Asp Met Gln Pro 1 5 10 15 GGC ACG ATA CGT CGC GTC AAC CGC GTA GGT GCT GCA CCT CTC GCA GTC 96 Gly Thr Ile Arg Arg Val Asn Arg Val Gly Ala Ala Pro Leu Ala Val 20 25 30 TAT CGT GTT GGC GAT CAG TTC TAC GCC ACT GAA GAT ACG TGC ACG CAT 144 Tyr Arg Val Gly Asp Gln Phe Tyr Ala Thr Glu Asp Thr Cys Thr His 35 40 45 GGT ATT GCT TCG CTT TCG GAA GGG ACA CTC GAT GGT GAC GTG ATT GAA 192 Gly Ile Ala Ser Leu Ser Glu Gly Thr Leu Asp Gly Asp Val Ile Glu 50 55 60 TGT CCC TTT CAC GGC GGC GCC TTC AAT GTT TGT ACC GGC ATG CCG GCA 240 Cys Pro Phe His Gly Gly Ala Phe Asn Val Cys Thr Gly Met Pro Ala 65 70 75 80 TCA AGT CCA TGT ACA GTG CCG CTA GGA GTG TTC GAG GTA GAA GTC AAA 288 Ser Ser Pro Cys Thr Val Pro Leu Gly Val Phe Glu Val Glu Val Lys 85 90 95 GAG GGC GAA GTT TAT GTC GCC GGA GAA AAG AAG TAA 324 Glu Gly Glu Val Tyr Val Ala Gly Glu Lys Lys *** 100 105
【0022】配列番号:7 配列の長さ:318 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG GCA GAC CTG TCG GTA ATT ACC GAA CGA GTA ACA AAA GCA GTT GGA 48 Met Ala Asp Leu Ser Val Ile Thr Glu Arg Val Thr Lys Ala Val Gly 1 5 10 15 GAG AAC TCT GGG CTG GAT GCC GTG GTC AAG TTC GAT TTT GAG CCG GAG 96 Glu Asn Ser Gly Leu Asp Ala Val Val Lys Phe Asp Phe Glu Pro Glu 20 25 30 GGA GTC ATT CAT ATT GAC GGA ATG AGT ATT CCC AAC CGG GTG AGT AAC 144 Gly Val Ile His Ile Asp Gly Met Ser Ile Pro Asn Arg Val Ser Asn 35 40 45 GAG GAT TTG CCC TCG GAC ATC ACT ATT AAG ATC AAG CTC GAG AAC TTC 192 Glu Asp Leu Pro Ser Asp Ile Thr Ile Lys Ile Lys Leu Glu Asn Phe 50 55 60 GAA AAG ATC CTA AAC CAG GAT CTT GGT CCA AAA ATG GCG TTG GCA ACG 240 Glu Lys Ile Leu Asn Gln Asp Leu Gly Pro Lys Met Ala Leu Ala Thr 65 70 75 80 GGA AGG ATG AGG CTG CGT GGC GAT ATC CGC ATC GCA ACG CGC CTG GAT 288 Gly Arg Met Arg Leu Arg Gly Asp Ile Arg Ile Ala Thr Arg Leu Asp 85 90 95 AAG GTC TTT GGA CTT GCT CCG AGC ATG TAA 318 Lys Val Phe Gly Leu Ala Pro Ser Met *** 100 105
【0023】配列番号:8 配列の長さ:990 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:シュードモナス属細菌 配列 ATG TAC CAA CTC AAA ATT GAA GGG CAA GCG CCA GGG ACC TGC GGC TCA 48 Met Tyr Gln Leu Lys Ile Glu Gly Gln Ala Pro Gly Thr Cys Gly Ser 1 5 10 15 GGG AAG AGC CTG TTG GTC TCA GCA CTT GCT AAT GGT ATC GGA TTT CCG 96 Gly Lys Ser Leu Leu Val Ser Ala Leu Ala Asn Gly Ile Gly Phe Pro 20 25 30 TAC GAG TGT GCA TCG GGA GGT TGC GGA GTA TGC AAA TTC GAG TTA CTC 144 Tyr Glu Cys Ala Ser Gly Gly Cys Gly Val Cys Lys Phe Glu Leu Leu 35 40 45 GAA GGG AAT GTC CAA TCA ATG TGG CCG GAT GCT CCA GGA CTT TCT TCG 192 Glu Gly Asn Val Gln Ser Met Trp Pro Asp Ala Pro Gly Leu Ser Ser 50 55 60 CGA GAT CGT GAG AAG GGC AAC CGC CAT CTT GCA TGC CAG TGC GTT GCG 240 Arg Asp Arg Glu Lys Gly Asn Arg His Leu Ala Cys Gln Cys Val Ala 65 70 75 80 CTC TCA GAC CTG CGG ATC AAA GTC GCA GTG CAG GAC AAG TAC GTC CCA 288 Leu Ser Asp Leu Arg Ile Lys Val Ala Val Gln Asp Lys Tyr Val Pro 85 90 95 ACG ATT CCA ATC TCA AGA ATG GAA GCG GAA GTT GTT GAG GTC CGG GCG 336 Thr Ile Pro Ile Ser Arg Met Glu Ala Glu Val Val Glu Val Arg Ala 100 105 110 CTA ACT CAT GAC CTG CTG TCC GTG CGA TTA CGC ACT GAT GGG CCA GCA 384 Leu Thr His Asp Leu Leu Ser Val Arg Leu Arg Thr Asp Gly Pro Ala 115 120 125 AAT TTC CTC CCC GGC CAG TTC TGC CTA GTA GAG GCA GAG CAG TTG CCA 432 Asn Phe Leu Pro Gly Gln Phe Cys Leu Val Glu Ala Glu Gln Leu Pro 130 135 140 GGC GTG GTT CGC GCA TAT TCA ATG GCG AAT TTA AAG AAC CCC GAA GGC 480 Gly Val Val Arg Ala Tyr Ser Met Ala Asn Leu Lys Asn Pro Glu Gly 145 150 155 160 ATA TGG GAG TTC TAT ATT AAG AGG GTA CCC ACA GGA CGA TTT AGT CCT 528 Ile Trp Glu Phe Tyr Ile Lys Arg Val Pro Thr Gly Arg Phe Ser Pro 165 170 175 TGG CTT TTC GAA AAT AGA AAA GAA GGC GCT CGT CTA TTT TTG ACG GGA 576 Trp Leu Phe Glu Asn Arg Lys Glu Gly Ala Arg Leu Phe Leu Thr Gly 180 185 190 CCA ATG GGC ACA TCT TTC TTC CGT CCA GGG ACC GGC CGA AAG AGT CTT 624 Pro Met Gly Thr Ser Phe Phe Arg Pro Gly Thr Gly Arg Lys Ser Leu 195 200 205 TGC ATT GGC GGC GGT GCC GGG CTC TCG TAT GCG GCC GCT ATT GCA CGC 672 Cys Ile Gly Gly Gly Ala Gly Leu Ser Tyr Ala Ala Ala Ile Ala Arg 210 215 220 GCC TCG ATG CGC GAA ACA GAC AAG CCG GTA AAG TTG TTC TAC GGC TCA 720 Ala Ser Met Arg Glu Thr Asp Lys Pro Val Lys Leu Phe Tyr Gly Ser 225 230 235 240 AGA ACT CCG CGC GAC GCT GTT CGG TGG ATC GAT ATC GAC ATC GAT GAG 768 Arg Thr Pro Arg Asp Ala Val Arg Trp Ile Asp Ile Asp Ile Asp Glu 245 250 255 GAC AAG CTT GAG GTC GTC CAG GCA GTT ACG GAA GAC ACG GAT AGC CTT 816 Asp Lys Leu Glu Val Val Gln Ala Val Thr Glu Asp Thr Asp Ser Leu 260 265 270 TGG CAA GGG CCC ACT GGT TTT ATT CAT CAG GTT GTC GAC GCA GCG CTG 864 Trp Gln Gly Pro Thr Gly Phe Ile His Gln Val Val Asp Ala Ala Leu 275 280 285 CTT GAA ACC CTA CCG GAA TAC GAA ATT TAT CTT GCC GGT CCA CCG CCT 912 Leu Glu Thr Leu Pro Glu Tyr Glu Ile Tyr Leu Ala Gly Pro Pro Pro 290 295 300 ATG GTC GAC GCT ACT GTC CGT ATG CTG CTC GGC AAG GGT GTT CCA CGC 960 Met Val Asp Ala Thr Val Arg Met Leu Leu Gly Lys Gly Val Pro Arg 305 310 315 320 GAT CAA ATT CAT TTT GAC GCA TTT TTC TAA 990 Asp Gln Ile His Phe Asp Ala Phe Phe *** 325 330
【図1】実施例1の酸化酵素の遺伝子をコードするEcoR
I-EcoRI 断片の制限酵素地図を示す。
I-EcoRI 断片の制限酵素地図を示す。
kbp キロベースペアー
【図2】実施例2のプラスミドpUCA1 の略図を示す。数
字1〜8は配列表の配列番号1〜8に対応し、矢印の向
きは発明の詳細な説明に記載の配列の向きに対応してい
る。
字1〜8は配列表の配列番号1〜8に対応し、矢印の向
きは発明の詳細な説明に記載の配列の向きに対応してい
る。
【図3】実施例2のカルバゾールからアントラニル酸へ
の変換工程で生成される生成物のガスクロマトグラフィ
ーのパターンを示す。
の変換工程で生成される生成物のガスクロマトグラフィ
ーのパターンを示す。
I カルバゾール II アントラニル酸メチルエステルのピーク
【図4】実施例2のアントラニル酸メチルエステルの質
量分析結果を示す。
量分析結果を示す。
【図5】実施例3の種々のDNA断片を含むプラスミド
で形質転換した大腸菌 109株のカルバゾールをアントラ
ニル酸への変換の状態を示す。
で形質転換した大腸菌 109株のカルバゾールをアントラ
ニル酸への変換の状態を示す。
【図6】実施例4のジベンゾ−p−ダイオキシンから
2,2', 3−トリヒドロキシジフェニルエーテルへの変
換工程で生成される生成物のガスクロマトグラフィーの
パターンを示す。
2,2', 3−トリヒドロキシジフェニルエーテルへの変
換工程で生成される生成物のガスクロマトグラフィーの
パターンを示す。
I ジベンゾ−p−ダイオキシン II 2,2', 3−トリヒドロキシジフェニルエーテルト
リメチルシリル化誘導体のピーク
リメチルシリル化誘導体のピーク
【図7】実施例4の2,2', 3−トリヒドロキシジフェ
ニルエーテルトリメチルシリル化誘導体の質量分析結果
を示す。
ニルエーテルトリメチルシリル化誘導体の質量分析結果
を示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C12N 1/21 C12N 9/02 // C12N 9/02 B09B 3/00 ZABE (C12N 15/09 ZNA C12R 1:38) (C12N 1/21 C12R 1:19) (C12N 9/02 C12R 1:19)
Claims (6)
- 【請求項1】 ヘテロ多環芳香族炭化水素を安息香酸類
似体ヘ変換する、微生物由来の酸化酵素遺伝子。 - 【請求項2】 配列表配列番号1、2、3、4、5、
6、7及び8で示されるアミノ酸配列をコードするDN
A配列あるいはこれと実質的に同じ機能のDNA配列を
含む請求項1記載の酸化酵素遺伝子。 - 【請求項3】 配列表配列番号1、2、3、4、5、
6、7及び8で示されるDNA配列あるいはこれと実質
的に同じ機能のDNA配列を含む請求項1記載の酸化酵
素遺伝子。 - 【請求項4】 配列表配列番号1、2、3、4、5、
6、7及び8で示されるDNA配列あるいはこれと実質
的に同じ機能のDNA配列を含む請求項1記載の酸化酵
素遺伝子を挿入したプラスミド。 - 【請求項5】 配列表配列番号1、2、3、4、5、
6、7及び8で示されるDNA配列あるいはこれと実質
的に同じ機能のDNA配列を含む請求項1記載の酸化酵
素遺伝子を挿入したプラスミドで形質転換した微生物。 - 【請求項6】 配列表配列番号1、2、3、4、5、
6、7及び8のDNA配列あるいはこれと実質的に同じ
機能のDNA配列を含む請求項1記載の酸化酵素遺伝子
を挿入したプラスミドで形質転換した微生物を用いてジ
ベンゾ−p−ダイオキシンをジフェニルエーテルトリオ
ール体へ変換することを特徴とするダイオキシンの除去
方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9084401A JPH10257895A (ja) | 1997-03-18 | 1997-03-18 | 微生物由来の酸化酵素遺伝子及びそれを用いるダイオキシン除去方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9084401A JPH10257895A (ja) | 1997-03-18 | 1997-03-18 | 微生物由来の酸化酵素遺伝子及びそれを用いるダイオキシン除去方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH10257895A true JPH10257895A (ja) | 1998-09-29 |
Family
ID=13829568
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP9084401A Pending JPH10257895A (ja) | 1997-03-18 | 1997-03-18 | 微生物由来の酸化酵素遺伝子及びそれを用いるダイオキシン除去方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH10257895A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999055834A1 (fr) * | 1998-04-28 | 1999-11-04 | Idemitsu Kosan Co., Ltd. | Moisissure pouvant degrader la dioxine, degradation de la dioxine au moyen de celle-ci, procede de production de composts pouvant degrader la dioxine et procede de culture de plantes |
US6723242B1 (en) | 1999-03-26 | 2004-04-20 | Sumitomo Heavy Industries, Ltd. | Method and apparatus for processing organic chlorine compounds |
CN103060218A (zh) * | 2011-10-18 | 2013-04-24 | 大连理工大学 | 一种苯酚降解菌及其转化吲哚制备靛蓝的方法 |
JP2013185129A (ja) * | 2012-03-09 | 2013-09-19 | Takasago Thermal Eng Co Ltd | ダイオキシン類分解剤及びダイオキシン類の分解方法 |
-
1997
- 1997-03-18 JP JP9084401A patent/JPH10257895A/ja active Pending
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999055834A1 (fr) * | 1998-04-28 | 1999-11-04 | Idemitsu Kosan Co., Ltd. | Moisissure pouvant degrader la dioxine, degradation de la dioxine au moyen de celle-ci, procede de production de composts pouvant degrader la dioxine et procede de culture de plantes |
US6506956B1 (en) * | 1998-04-28 | 2003-01-14 | Idemitsu Kosan Co., Ltd. | Mold capable of degrading dioxin, degradation of dioxin with the use of the same, method for producing composts capable of degrading dioxin and method for growing plants |
US6723242B1 (en) | 1999-03-26 | 2004-04-20 | Sumitomo Heavy Industries, Ltd. | Method and apparatus for processing organic chlorine compounds |
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CN103060218B (zh) * | 2011-10-18 | 2014-04-23 | 大连理工大学 | 一种苯酚降解菌及其转化吲哚制备靛蓝的方法 |
JP2013185129A (ja) * | 2012-03-09 | 2013-09-19 | Takasago Thermal Eng Co Ltd | ダイオキシン類分解剤及びダイオキシン類の分解方法 |
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