JPH09512634A

JPH09512634A - ホモシステインのイムノアッセイ

Info

Publication number: JPH09512634A
Application number: JP7528372A
Authority: JP
Inventors: バン・アッタ，リュエル・ビー; グッドマン，トーマス・シー; ウルマン，エドウィン・エフ
Original assignee: ベーリングヴェルケ・アクチエンゲゼルシャフト
Priority date: 1994-04-28
Filing date: 1995-04-27
Publication date: 1997-12-16
Anticipated expiration: 2018-06-30
Also published as: DE69504191T2; EP0757794B1; JP3422795B2; AU2584495A; CA2188752C; US5478729A; ES2133772T3; WO1995030151A1; CA2188752A1; DE69504191D1; EP0757794A1

Abstract

(57)【要約】本発明は、ある化合物をその分析物と免疫学的に関連のある類似体の存在下で検出する方法に関するものである。本発明は、特に、システインの存在下でのホモシステインの検出に適している。本発明の方法は、分析物と同族体の両方を化学的に修飾して、それらの免疫原性を増進し、抗体認識を容易ならしめることを含む。更に重要なのは、この修飾により、これらの化合物群が免疫学的に異質なものとなることである。そのため免疫学的に異質な化合物群の抗体を調製する。アッセイプロトコールは、分析物および同族体を化学的に修飾し、次いで上記抗体により、修飾分析物を免疫化学的に検出することを含む。

Description

【発明の詳細な説明】ホモシステインのイムノアッセイ発明の背景発明の分野ホモシステイン（Ｈcy）は、メチオニンをシステイン（Ｃys）に変換するトランススルフレーション（硫黄転移）経路にて生産される一連の中間体の１つである。哺乳動物における専らのＨcy源は、Ｓ−アデノシル−ホモシステインの酵素触媒化加水分解産物に由来する。一度形成されたＨcyは、再メチル化およびメチオニンへの変換を経て再び回路に入るか、またはセリンと化合してシスタチオニンを形成することができ、これが、最終的にＣysに変換される。メチオニンシンターゼによりＨcyをメチル化する主要な代謝経路は、メチル転移補助因子としてビタミンＢ₁₂（コバラミン）を、最終的なメチル源として５−メチル−テトラヒドロ葉酸を必要とする。意外なことではないが、血清Ｈcyのレベル上昇は、ビタミンＢ₁₂または葉酸の不十分な摂取、またはこれら２種のビタミンを適切に利用する能力の欠乏に関連している。普通、葉酸を投与することにより、穏やかに上昇したＨcyのレベルを均衡にすることができ、その処置には不都合な副作用は殆ど無い。貧血に加えて、シスタチオンシンターゼ欠損遺伝子に対してヘテロ接合性であり、その結果正常酵素活性の５０％を欠く個体は、特に、メチオニン負荷に続くＨcyレベルの上昇の影響を受け易い。この遺伝的素因が、それ以外は健康な患者における中度ホモシステイン尿症（尿中にＨcyが排出される）の最も普通の原因である。最後に、穏やかに上昇したＨcyのレベルと心臓血管疾患との間に相互関係があることは明らかである。このような理由から、正確なＨcyアッセイの開発に大きな興味がもたれている。関連技術の説明総ホモシステイン(Ｈcy)量を定量し、並びに遊離（還元およびジスルフィド）形態とタンパク質結合形態(主にアルブミン)とを識別する幾つかの技術がある。ホモシステイン尿症の原因に対する優れた洞察並びに現今の臨床分析法の更新は、Ueland等、Clin.Chem.39(9):1764-1779(1993)において見ることができる。Ｈcyアッセイの酵素的方法は、Sundrehagen等、PCT/GB93/00138に記載されており、ＨcyをＳ−アデノシルホモシステインへと酵素触媒化変換した後の生成物濃度を測定することによりＨcyを間接的にアッセイするものである。ＨcyおよびＣysの高速液体クロマトグラフィー(“ＨＰＬＣ”)法は、当該技術分野では知られている。この分析法は、クロマトグラフィー支持体への吸着と溶出の差異により化合物ＨcyとＣysとを識別するものである。Andersson等、Clin. Chem.39(8):1590-1597(1993)は、遊離のおよび還元された総ＨcyおよびＣysの測定を記載している。ガス−クロマトグラフ−質量分析法によるＨcyおよびＣys分析は、Allen等、米国特許第4,940,658号に記載されている。Allen等のPCT/US92/05727には、メチオニンの代謝中に生産されるＨcyとＣysとの間の中間アミノ酸であるシスタチオニンのクロマトグラフィーアッセイが記載されている。 Fiskerstrand等、Clin.Chem.39(2):263-271(1993)は、血清チオール類の蛍光標識、続いてＨcy誘導体の他の硫黄含有化合物からのクロマトグラフィー分離を必要とする、総Ｈcyの完全自動化分析を記載している。ＨＰＬＣ法によるＨcyの同定は、しばしば、Fiskerstrand、上記文献に記載のような蛍光試薬での誘導体化、またはRefsum等、Clin.Chem.31(4)624-628(1985) に記載のような放射性酵素技術を必要とする。更に、タンパク質配列分析によるＣysの同定は、アルキル化試薬での誘導体化を必要とする。例えば、Jue等、Ana lyticla Biochemistry 210:39-44(1993)参照。残念ながら、クロマトグラフィー法は、時間がかかり、大変な労力を要するという不利点を有する。更には、現今のＨcy分析法は、蛍光標識、例えば、ブロモビマンによる事前の誘導体化を必要とし、これはブロモメチル基がＨcyの遊離のチオールと反応して、チオエステルを形成し、遊離の臭素イオンを放出するというものである。このブロモビマン試薬は、溶液中の他の遊離の全てのチオールとも反応し、それ故に、多様な誘導体化硫黄含有種のクロマトグラフィー分離が必要である。現今のＨcy分析法の多くは、煩わしいクロマトグラフィー技術に頼るものであるので、より迅速かつ簡易な、抗体を基礎とするＨcyアッセイに対する需要がある。Ｈcyのイムノアッセイは、問題があるとの予想から、今までのところ採用されたことはなく、それはＨcy分子が小さすぎて、抗体開発に有効なハプテンとして働く抗体認識部位がほとんど無いと思われていたためである。更には、抗体が、単一メチレン基により構造が異なるＨcyとＣysとを識別するのに必要な抗原特異性度を達成できない。従って、これらの化合物の高特異的定量および識別を可能にするイムノアッセイ法の開発が現在要望されている。望ましくない交差反応物を扱う技術は多数存在する。Brynes等、米国特許第4, 952,336号は、アンフェタミン−メタンフェタミンイムノアッセイにおいて試料を水性過ヨウ素酸塩溶液で前処理して、交差反応物を除去する方法を記載している。StevensonのPCT/GB90/01649は、試料を還元剤で前処理することによりリウマチ因子に起因する干渉レベルを低減する改良イムノアッセイに関するものである。Mach等、米国特許第4,978,632号は、試料を酸化剤で前処理することにより血液および血液産物に起因する干渉レベルを排除する改良イムノアッセイに関するものである。これらの前処理法は、交差反応物にのみ作用するものであり、分析物に作用する方法は１つもない。発明の概要本発明は、免疫学的に関連する複数の化合物を含有する疑いのある試料中の第１化合物の存在または量を、第２化合物の存在下で測定する方法に関するものであり、(ａ)水性媒質中で、試料、第１化合物と第２化合物を化学的に修飾して免疫学的に異質である修飾第１化合物および修飾第２化合物を形成できる修飾試薬、および修飾第１化合物には特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾第２化合物には結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中の第１化合物の存在または量に相関する、抗体の修飾第１化合物への結合度を測定する、各工程を含んでなる。この方法は、特に、免疫学的に関連するＣysの存在下でのＨcyのアッセイによく適している。本発明の他の実施態様は、Ｈcyを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を、Ｃ ysの存在下で測定する方法に関するものであり、(ａ)水性媒質中で、試料、Ｈcy およびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、および修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、免疫複合体の量を測定する、各工程を含んでなる。本発明の一実施態様は、Ｈcyを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を、Ｃys の存在下で測定する方法に関し、(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、検出可能な標識に結合させた修飾Ｈcyの類似体、および修飾Ｈcyおよびその類似体には特異的に結合できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、類似体の抗体への結合度を測定する、各工程を含んでなる。本発明のその他の実施態様は、ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を測定する方法に関するものであり、(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、抗体を結合させることができる表面、および修飾Ｈcyの標識化類似体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、標識化類似体の抗体への結合度を測定する、各工程を含んでなる。更に他の実施態様は、ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を測定する方法に関し、(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、および修飾Ｈ cy上に存在する修飾試薬の一部に結合できる受容体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、抗体の受容体への結合度を測定する、各工程を含んでなる。さらにその他の実施態様は、少なくともＨcyの一部がジスルフィド形態（タンパク質結合形態および遊離ジスルフィド形態）であるＨcyを含有する疑いのある血清試料中のＨcyの量をＣysの存在下で測定する方法に関するものであり、(ａ) 水性媒質中で、試料、Ｈcyをジスルフィド形態から解離する解離剤、ＨcyおよびＣysのスルフヒドリル基を化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、および修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、免疫複合体の量を試験する、各工程を含んでなる。本発明のその他の実施態様は、Ｈcy検出法に使用するめたのキットに関し、パッケージした組物中に、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、および修飾Ｈcyには特異的に結合できるが修飾Ｃys には結合できない抗体を含んでなる。このキットは、修飾Ｈcyの標識化類似体および解離剤を含むこともできる。特定の実施態様の説明本発明は、分析物と免疫学的に関連する同族体の存在下に化合物を検出する方法に関するものである。本発明の方法は、分析物とその同族体の両方を化学的に修飾して、それらの免疫原性を高め、抗体認識を容易ならしめるものである。さらに重要なことは、このような修飾によりこれらの化合物を免疫学的に異質なものとすることである。化学修飾は、好ましくは化学基による水素の置換以上のものを含む。その場合、修飾した免疫学的に異質の化合物類に対する抗体を作成する。アッセイプロトコールは、分析物および類似体を化学的に修飾し、次いで、修飾した分析物を上記抗体により免疫化学的に検出することからなる。特に、本発明は、スルフヒドリルアミノ酸であるホモシステイン(Ｈcy)とシステイン(Ｃy s)とを識別する定量免疫化学法に関するものである。ＨcyおよびＣysは同族体である：ＨＯＯＣ−ＣＨ(ＮＨ₂)−ＣＨ₂−ＣＨ₂−ＳＨホモシステインＨＯＯＣ−ＣＨ(ＮＨ₂)−ＣＨ₂−ＳＨシステイン更に、この２つの化合物はそれらのアミノ酸側鎖の長さにおいて炭素１つのみが異なるだけであるので、Ｈcyに対して産生される抗体がＣysと交差反応すると予想されることから、ＨcyとＣysは免疫学的に関連する。更に本発明の特定の実施態様について説明を進める前に、多数の用語を定義する。分析物：検出すべき化合物または組成物。分析物は、特異的結合対(“sbp”) の構成員であることができ、リガンドであってもよく、一価（モノエピトープ性）または多価（ポリエピトープ性）であり、普通は、抗原性またはハプテン性であり、単一の化合物または少なくとも１つの共通のエピトープ性部位または決定因子部位を共有する複数の化合物である。本発明は、分析物および同族体を化学的に修飾し、次いで、修飾した分析物を検出することにより、分析物の同族体をも含む試料中の分析物を検出する方法を提供するものである。そのため、試料中に対象となる分析物が存在するときのみその存在が検出されるような反応生成物を検出することにより、分析物を測定する。従って、“修飾した”分析物が実際にアッセイ中に検出される。分析物は、宿主由来の体液、例えば、尿、血液、血漿、血清、唾液、精液、糞、たん、脳脊髄液、涙、粘液、または同等物などの試料中に直接見い出すことができるが、好ましくは血清または血漿である。この試料は、下記に述べるように、前処理することもできる。特異的結合対の構成員(“ｓｂｐ”構成員)：他の分子の特定の空間的および極性の構成と特異的に結合し、それによって、他の分子の特定の空間的および極性の構成と相補的なものとして定義される領域を表面上または腔内に有する、２つの異なる分子のうちの１つ。ｓｂｐ構成員は、例えば、免疫学的ペア、例えば抗原−抗体の構成員のようなリガンドおよび受容体として表すことができる。“リガンド”という用語は、受容体が天然に存在するかまたは調製できるあらゆる化合物を表しており、“受容体”という用語は、分子の特定の空間的および極性の構成、例えば、エピトープ性部位または決定因子部位を認識する能力のあるあらゆる化合物または組成物を表す。相補的ｓｂｐ構成員は、例えばリガンドとその相補的受容体のように、もう一方と結合するものである。ｓｂｐ構成員は、抗原および抗体のような免疫学的ペア、またはアビジンとビオチンまたはオリゴヌクレオチドの相補鎖のような非免疫学的ペアであることができる。ｓｂｐ構成員は、また、低分子または低分子残基およびそれらの受容体であってもよい。低分子は、分子量１００から２０００、好ましくは１５０ないし１０００を有し、受容体が存在するか、または調製できるかのいずれかである。低分子の例には、ビオチン、リセルグ酸、フルオレセイン、またはフルオレセイン誘導体、およびビタミンＢ₁₂があり、それぞれアビジンまたはストレプトアビジン、抗リセルグ酸、抗フルオレセイン、および内因子である対応する受容体を持つ。低分子に対する抗体は、低分子を免疫原性キャリアーに連結させることにより、調製できる。支持体または表面：固相は典型的には支持体または表面であり、多くの形状、例えば、ストリップ、ロッド、ビーズを含む粒子、および同等物のいずれか１つを持つことができる多孔性または非多孔性水不溶性物質である。適切な物質は当該分野ではよく知られており、例えば、本明細書に参照して組み込んである、Ul lman等、米国特許第5,185,243号、10-11欄に記載されている。ｓｂｐ構成員の支持体または表面への結合は、普通に文献から入手できるよく知られた技術により達成することができる。例えば、“Immobilized Enzymes”、千畑一郎、Halsted Press,New York(1978)およびCuatrecasas，J.Biol.Chem.245:3059(1970)参照。どの型の固体支持体を用いるとしても、その表面に結合させた修飾分析物またはその表面に結合させた受容体に特異的に結合する抗体を持つように処理しなければならず、該受容体は、そのような抗体またはその抗体とコンジュゲートした低分子に特異的に結合するものである。例えば、アビジンまたはストレプトアビジンは、０.５−１.５mmの球状ガラスビーズに共有結合でき、ビオチニル化抗体を得ることができる。シグナル生成系(“ｓｐｓ”)：結合および／または非結合標識の量に相関する検出可能なシグナルを産生する１またはそれ以上の成分で、少なくとも１つは標識である成分。好ましくは、標識は、蛍光剤、放射性標識、酵素、化学発光剤、または光増感剤であり、酵素活性、化学発光、光吸収または放射能を観察することにより検出する。適切な標識には、例示であって限定ではないが、アルカリホスファターゼおよび西洋ワサビペルオキシダーゼのような酵素；ＱＢレプリカーゼなどのレプリカーゼの基質；プロモーター類；染料類；フルオレセイン、イソチオシアネート、ロダミン化合物類、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、ｏ−フタルデヒド、およびフルオレカミンなどの蛍光剤；イソルミノールなどの化学発光剤；増感剤；補酵素；酵素基質；¹²¹Ｉ、¹³¹Ｉ、¹⁴Ｃ、³Ｈ、³²Ｐおよび³⁵Ｓなどの放射性標識；ラテックスまたは炭素粒子などの粒子；金属ゾル；クリスタライト；リポソーム；細胞等があり、これらを更に染料、触媒または他の検出可能な基、および同等物で標識してもよいし、また標識しなくてもよい。適切な酵素および補酵素は、Litman等、米国特許第4,275,149号、19ないし28欄、およびBoguslaski等、米国特許第4,318,980号、10ないし14欄に開示されており；適切な蛍光剤および化学発光剤は、Litman等、米国特許第4,275,149号、30および31欄に開示されており、全て出典明示により本明細書の一部としている。目視試験、電磁放射、電気化学検出、光音響分光法などのような外的手段により標識が検出可能なシグナルを産生できる方法は多数ある。標識または他のｓｐｓ構成員もまたｓｂｐ構成員、他の分子、または支持体に結合できる。標識は、直接、シグナルを産生できるので、シグナル産生のための更なる成分を必要としない。多くの有機分子、例えば、蛍光剤は、紫外線および可視光を吸収でき、その光吸収がエネルギーをこれらの分子に転移させ、それらを励起エネルギー状態へと高める。その後、この吸収エネルギーは、第２波長での光放出により放散する。シグナルを直接産生する他の標識には、放射性アイソトープや色素がある。これとは別に、標識がシグナルを産生するのに他の成分を必要とする場合もあり、その場合、ｓｐｓは、測定可能なシグナルを産生するのに必要な全ての成分を含み、その成分には、基質、補酵素、増強剤、更なる酵素、酵素生成物と反応する物質、触媒、アクチベーター、補助因子、阻害因子、スカベンジャー、金属イオン、シグナル産生物質の結合に必要な特異的結合物質、および同等物を含むことができる。適切なシグナル産生系についての詳細な記載は、Ullman等、米国特許第5,185,243号、11−13欄に見ることができ、これは参照して本明細書に組み込んである。標識は、多数のｓｂｐ構成員：修飾分析物に結合する抗体；修飾分析物に結合する抗体の受容体；修飾分析物に結合する抗体とコンジュゲートした低分子に結合することができる受容体；またはリガンド、特に修飾分析物の類似体、に共有結合できる。標識のｓｂｐ構成員への結合は、化学反応の結果、標識の水素原子をｓｂｐ構成員への結合で置換することにより達成することができ、また標識とｓｂｐ構成員との間に連結基を含むこともできる。他のｓｐｓ構成員もｓｂｐ構成員と共有結合できる。例えば、蛍光剤や消光剤などの２つのｓｐｓ構成員は、修飾分析物の類似体および分析物に対する抗体にそれぞれ結合し、類似体との複合体を形成する。複合体の形成により、蛍光剤と消光剤は極めて接近した状態になり、そうして消光剤が蛍光剤と相互作用してシグナルを産生可能にする。コンジュゲーション法は、当該分野ではよく知られている。例えば、参照して本明細書に組み込んであるRubenstein等、米国特許第3,817,837号参照。本発明は、シグナル産生系の第１構成員に結合した抗体およびシグナル産生系の第２構成員として検出可能な標識を有することを意図する。例えば、検出可能な標識が分析物類似体に結合するとき、抗体の類似体への結合度は、シグナル産生系構成員の相互作用により産生したシグナルを検出することにより測定できる。補助物質：様々な補助物質が、本発明に従う方法においてしばしば採用される。例えば、緩衝液は、通常、アッセイ媒質やアッセイ成分の安定剤と同じく、アッセイ媒質中に存在する。これらの添加物に加えて、アルブミンなどのタンパク質類、ホルムアミドなどの有機溶媒類、第４級アンモニウム塩類、硫酸デキストランなどのポリカチオン類、または界面活性剤類、特に非イオン性界面活性剤、結合増強剤、例えば、ポリアルキレングリコール類、または同等物を含む場合がしばしばある。上記の通り、本発明は、分析物と免疫学的に関連する同族体の存在下に、化合物を検出する方法に関するものである。本発明の一方法は、免疫学的に関連する２種の化合物を含有する疑いのある試料中の第１化合物の存在または量を、第２化合物の存在下で測定することに関するものである。この方法は、(ａ)水性媒質中で、試料、第１化合物および第２化合物を化学的に修飾して修飾第１化合物および修飾第２化合物を形成できる修飾試薬、および修飾第１化合物には特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾第２化合物には結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中の第１化合物の存在または量に相関する、抗体の修飾第１化合物への結合度を測定する、各工程を含んでなる。本方法は、特に、それらの化合物が同族体である場合に有用である。本明細書で使用した“免疫学的に関連した”という用語は、２つの化合物で、一方が対象となる分析物であり、それに対して交差反応性を示す抗体が存在するものを表すのに用いる。交差反応性の算定は、抗体へ等しく結合した２つの化合物の濃度比率に基づく。異なる同族体に対する抗体は、しばしば高い交差反応性を示す。それ故に、イムノアッセイでは、媒質中に同族体が存在する場合、化合物を正確に測定できないことが多い。この場合に、分析物を検出するための抗体試薬を用いると、たいてい一部の抗体が同族体に結合してしまい、偽陽性あるいは、不正確な定量値を得ることとなる。イムノアッセイにおいて許容できる交差反応性の度合いは、交差反応物の予想最大濃度、そのアッセイに要求される感度、および必要な精度によって変わる。例えば、抗体がＣysと１０％交差反応性であり、Ｃysが検出しようとするＨcyの最低レベルの５倍多い量で試料中に存在するならば、その場合、Ｈcyがその最低レベルであると、測定されたＨcyのレベルは５０％高く出すぎることとなる。許容できる誤差が５％だけであるならば、交差反応性は１％以下でなければならない。本発明において、修飾分析物に対する抗体は、修飾同族体と低い交差反応性を示すものでなければならない。上に例示説明したように、交差反応性の度合いを“高く”するか“低くする”かは、修飾同族体の予想最大濃度および求められる感度および精度によって変わる。本明細書で使用した“同族体”の用語は、同じ化学官能基を有し、さらに分子中に−ＣＨ₂−基１つが挿入されている点で次ぎのものとは異なる一系列の有機化合物中の１化合物を表す。例えば、ＣＨ₃ＯＨ（メタノール）、Ｃ₂Ｈ₅ＯＨ（エタノール）およびＣ₃Ｈ₇ＯＨ（プロパノール）等は、全て同族体であり、同族体系列を形成する。本発明の範囲内の同族体化合物の例は、ホモシステインとシステイン、アンフェタミンとメタフェタミン、セリンとホモセリン、クエン酸とホモクエン酸、アスパラギン酸とグルタミン酸、アラニンとβ−アミノ−イソ酪酸、テトラヒドロ葉酸とＮ⁵−メチルテトラヒドロ葉酸、オキサロ酢酸とα−ケトグルタル酸、ゲンチシン酸とホモゲンチシン酸、モルフィンとノルモルフィン、および同等物である。本明細書で使用した“修飾試薬”の用語は、２つの同族体と反応して、免疫学的に異質の２つの新たな化合物を形成する試薬を意味するのに用いる。“免疫学的に異質”という用語は、修飾分析物に対する抗体が修飾同族体に対して低い交差反応性を示すので利用できるということを意味する。同族体は同じ官能基を有し、異なる同族体に対する抗体は、しばしば高度の交差反応性を示す。故に、同族体が媒質中に存在する場合、イムノアッセイにおいて化合物を正確に測定することができない。修飾試薬は、アッセイされる化合物（“分析物”）およびその同族体を化学的に修飾し、そうして２つの化合物を免疫学的に異質なものにする能力を有する。結果として、修飾分析物に対する抗体は、修飾同族体に対してより低い交差反応性を示すことになる。修飾試薬は、短時間内、通常は４時間以下、好ましくは２０分以下、最も好ましくは５分以下で両方の化合物を修飾するようなものを選択する。それが試料中で他の化合物と反応する場合は、分析物との反応に応じ得るような十分な量で使用しなければならない。適切な修飾試薬の例には、アルキル化剤、アシル化剤、金属類、求核物質類、および親電子物質類がある。本発明は、放射性標識のような検出可能な標識が結合した修飾試薬を有することも意図している。この場合、修飾分析物の量は標識を検出することにより測定できる。第１化合物を免疫学的に関連した第２化合物の存在下で検出する上記方法において、抗体は検出可能に標識され得るか、または検出可能に標識される能力があるものである。また、修飾試薬を標識する場合は、抗体は支持体に結合できるか、または支持体に結合できる能力があるものである。本明細書で使用した“検出可能に標識される能力がある”および“支持体に結合できる能力がある”との用語は、試薬、例えば、この場合では抗体が第１ｓｂｐ構成員または低分子と相補的第２ｓｂｐ構成員または低分子の受容体に結合し、次に標識または支持体に結合することを意味する。従って、実際には抗体は標識されたり、支持体に結合したりしないが、相補的ｓｂｐ構成員または受容体を加えた時に、標識されたり、結合することになる。上記方法は、更に、検出可能な標識に結合させた、または結合させることができる修飾第１化合物の同族体と、その同族体と修飾第１化合物の両方に特異的に結合できる抗体を一緒にすることを含むことができる。抗体の修飾第１化合物への結合度は、同族体の抗体への結合度を測定することによって測定する。抗体は、支持体に結合できるか、または支持体に結合する能力がある。更に詳しくは、本発明は、試料中のＨcyとＣysを、それらを免疫学的に異質なものにする手段で化学的に修飾し、次いでＨcyを検出することを含む。Ｈcyを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を、Ｃysの存在下で測定する方法の１つは、 (ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体を、一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcy の量に相関する、免疫複合体の量を測定する、各工程を含んでなる。本明細書で使用した“免疫複合体”の用語は、抗原の抗体への免疫学的結合により形成される複合体を意味する。同様の標識化試薬は、ある化合物を免疫学的に関連のある化合物、即ち、標識化修飾試薬、標識化抗体、および標識化類似体の存在下で検出する本方法における使用に適している。本発明の一実施態様では、修飾試薬は、ＨcyとＣysの３つの官能基、アミノ基、スルフヒドリル基、およびカルボキシル基のうち少なくとも１つと結合を形成するように設計されている。通常、少なくとも１つの生成物において、第２結合は、第１結合の形成後、これらの基の１つに対して生じるであろう。多くの場合、これによって環が生じる。例えば、第１結合がスルフヒドリル基に対してできており、第２結合がアミンを含んでいることができる。ＨcyとＣysのスルフヒドリル基と反応する能力がある修飾試薬は、普通、Ｈcy またはＣysのアミノ基またはカルボキシ基と反応するように適切に配置された基を有する。この基は、アルキル化基またはアシル化基、金属、または求核置換のために活性化されたアリル基であることができるが、例示であって限定ではない。特に、適するものは、Ｃl、Ｂr、Ｉ、スルホネート類、およびスルホニウム塩類からなる群から選択される脱離基によりアルファ位で置換されたケトン類である。上記指摘のように、アルキル化剤、アシル化剤、および金属類は、特にＨcyアッセイにおいて使用する修飾試薬として適している。本明細書で使用した“アルキル化剤”の用語は、有機分子と反応してアルキルまたはアリール基を分子内に導入する修飾試薬を意味する。アルキル基は、アルカンに由来する基であり、その構造から水素１つが取れたものである。例えば、メチル、エチル、プロピル等。アリール基は、その分子がベンゼン、ナフタレン、フェナントレン、アントラセン等の環構造特性を有する基であり、即ち、ベンゼンの６炭素環または他の芳香族誘導体の縮合６炭素環のいずれかである。好ましくは、アルキル化剤は、アルキルハライドまたはアリールハライドまたはマレイミドまたはアクリロニトリルなどの電気陰性的に置換されたオレフィン類などの基を有する。アルキルハライドを用いる場合、ケトン、アルデヒド、エステル、オレフィン、アセチレン、ニトリル、アリール、または同等物は、普通、ハロゲンのついた炭素に隣接するものである。適切なアルキル化剤には、下表に示した修飾試薬Ｉ−ＶIIIがあるが、例示であって限定ではない。特に有用なアルキル化剤は、ｐ−ブロモアセチル安息香酸（ＢＡＢＡ）、即ち修飾試薬IIである。本明細書で使用した“アシル化剤”の用語は、有機分子と反応してスルホニル基またはアシル基を分子内に導入する修飾試薬を意味し、通常、スルホン酸またはカルボン酸誘導体、例えば、その無水物または塩化物または活性エステルである。アシル基は、カルボキシル基の−ＯＨを他の置換基により置換した有機酸基である。例えば、アセチル(ＣＨ₃ＣＯ−)およびベンゾイル(Ｃ₆Ｈ₅ＣＯ−)。適切なアシル化剤には、下表に示した修飾試薬III−ＶおよびＶIIIがあるが、例示であって限定ではない。本明細書で使用した“金属”の用語は、二座配位子とキレートを形成する能力のある有機金属試薬を含む重金属キレート類を意味する。適切な金属類には、下表に示した修飾試薬IＸとＸがあるが、例示であって限定ではない。特に有用な修飾試薬は、アルキルハライドまたはアリールハライドなどのアルキル化基を有する。アルキルハライドを用いる場合、ケトン、アルデヒド、エステル、オレフィン、アセチレン、ニトリル、アリール、または同等物は、普通、ハロゲンのついた炭素に隣接するものである。典型的な試薬およびそれらのＨcy とＣysとの反応生成物、即ち“修飾”ＨcyとＣysは、下表に示す。各試薬において、下線を引いた基は、誘導体化反応には必要でない可溶化基の例である：試薬可溶化基Ｉ -COOH II -COOH III -COOH IV -SO₃H Ｖ -SO₃H VI -COOH VII -COOH VIII -COOH IX -COOH Ｘ -COOH 標識が修飾試薬中に存在するとき、それは、便宜上、アミドまたはエステル結合により可溶化基に付けることができる。好ましくは、修飾試薬は、ＨcyとＣysのスルフヒドリル基を修飾して、少なくとも１つの修飾化合物の硫黄が環の一部であるような修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成する。修飾化合物の１つが環を形成するような修飾試薬の例は、上記に示した修飾試薬Ｉ−Ｘである。より好ましくは、修飾試薬は、修飾試薬ＶIとＸの場合のように、生じた修飾ＨcyとＣysの両方が環を有するようなものを選択する。上記修飾試薬の中で、好ましい試薬はＢＡＢＡ（修飾試薬II）であり、これはＨcyおよびＣysと室温および中性ｐＨで迅速に反応する。ＢＡＢＡは、下記の利点を有する：フェニル環が、免疫系に与えられたとき高い免疫原性部位を提供し；カルボキシレートが、ある程度の水溶性ならびにキャリアータンパク質への便利な結合点を提供し；ブロモアセチル基のカルボニルが、修飾ＨcyとＣysとの便利な識別手段を提供する。上記のように、Ｈcyに対する抗体は、ＨcyとＣysが同族体であり、かつ免疫学的に関連するため、Ｃysとの高度の交差反応性を示す可能性がある。ＨcyとＣys を修飾してそれらを免疫学的に異質なものにする方法は多数ある。例えば、６員環は、鎖とは立体化学的にかなり異なり、そのため、Ｃysを修飾して６員環を形成させるとき、かつ修飾Ｈcyが非環状であるとき、抗体認識を向上させ、交差反応性を低減することができる。このことを、修飾試薬（VIII）で例示説明する：ＣysとＨcyを修飾して、硫黄が６員環の一部である修飾Ｃys（VIIIa）：および硫黄が環の一部ではない修飾Ｈcy（VIIIb）：を形成させる。本発明のその他の実施態様は、Ｈcyを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を、Ｃysの存在下で測定するアッセイを含み、次の方法：(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、検出可能な標識に結合させた修飾Ｈcyの類似体、および修飾Ｈcyおよびその類似体には特異的に結合できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、類似体の抗体への結合度を測定する、を用いる。この実施態様では、測定したシグナルは、類似体の抗体への結合度の指標である。従って、シグナルは、試料中のＨcy量に反比例する。更にその他の本発明の実施態様は、ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料中のＨcy量のアッセイを含み、次の方法：(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、修飾Ｈ cyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、抗体を結合させることができる表面、および修飾Ｈcyの標識化類似体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、標識化類似体の抗体への結合度を測定する、を用いる。この方法は、更に、標識化第１特異的結合対構成員を一緒にすることを含んでいてもよく、その場合、標識化類似体の標識は相補的第２特異的結合対構成員、例えば、フルオレセインに結合した類似体、および酵素標識化抗フルオレセイン抗体である。この実施態様では、測定したシグナルは、類似体の抗体への結合度の指標である。従って、シグナルは、試料中のＨcy量に反比例する。本発明の更に他の実施態様は、ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料中のＨcyの量を測定するアッセイを含み、(ａ)水性媒質中で、試料、ＨcyおよびＣys を化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、および修飾Ｈcy上に存在する修飾試薬の一部に結合できる受容体を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨcyの量に相関する、抗体の受容体への結合度を測定する、各工程を含んでなる。修飾試薬は、ハプテン、リガンド、またはＨcyまたはＣys受容体である場合もあり、修飾試薬の一部に結合する受容体は、それぞれ、抗ハプテン抗体、リガンドに対する受容体、またはＨcyまたはＣys受容体であり得る。受容体および特定の抗体のいずれかまたは両方を標識でき、１つは支持体に結合させることができる。下記は本方法により包含される実施態様の単なる例示説明である。例えば、ビオチンに結合させた修飾試薬は、ビオチンに結合させた修飾Ｈcyを形成する。修飾Ｈcy、修飾Ｈcyに特異的に結合できる標識化抗体、および支持体に結合させたアビジンを含む複合体が形成される。別法として、ハプテンに結合させた修飾試薬は、ハプテンに結合させた修飾Ｈcyを形成する。修飾Ｈcy 、第１標識に結合させた修飾Ｈcyに特異的に結合できる抗体、および第２標識に結合させた抗ハプテン抗体を含む複合体が形成される。Ｈcyは、様々な混合ジスルフィドとしてヒト血漿中に存在する。通常、Ｈcyの主たる画分（約７０％）は、アルブミンなどの環状（circulating）タンパク質にジスルフィド結合を介してタンパク質結合している。残りの“遊離”Ｈcy（約３０％）は、Ｈcy（還元型）の形態であるかまたはＣysなどの他のチオール類との混合ジスルフィドとしてある。血漿中に存在するこれらのＨcy種の和（タンパク質結合形態、遊離ジスルフィド形態、および遊離還元形態）を“総Ｈcy”と表す。血清中の総Ｈcyの測定は、好ましくは、タンパク質結合Ｈcyを解離し、Ｈcy の混合ジスルフィド形態、即ち、遊離ジスルフィド形態を還元する前処理工程を含む。Ｈcyの３つの形態（タンパク質結合形態、遊離ジスルフィド形態、または遊離還元形態）の比率がＨcy濃度、試料調製、貯蔵方法等のような要因に依存しているため、本発明の好ましい方法では、総Ｈcyを測定する。しかしながら、所望ならば、遊離Ｈcyの測定を前処理なしで行うこともできる。試料中のＨcy総量を測定するには、試料をまず、Ｈcｙを環状タンパク質並びにＨcy二量体および他の混合ジスルフィドから解離する解離剤と合わせる。特に、有機ジスルフィドを還元する還元剤が適している。少なくともＨcyの一部がジスルフィド形態（タンパク質結合形態および遊離ジスルフィド形態）である、Ｈ cyを含有する疑いのある血清試料中のＨcy量を、Ｃysの存在下で測定する方法の１つは、(ａ)水性媒質中で、試料、Ｈcyをジスルフィド形態から解離する解離剤、ＨcyおよびＣysのスルフヒドリル基を化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃ ysを形成できる修飾試薬、および修飾Ｈcyには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾Ｃysには結合できない抗体、を一緒にし；さらに(ｂ)試料中のＨ cyの量に相関する、免疫複合体の量について媒質を試験する、各工程を含んでなる。解離剤は、上記のような還元剤であることができるか、または、ジスルフィドと反応して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成し、それによって、解離剤および修飾試薬の両方として働くことができるものであってよい。ＨcyとＣys硫黄化合物を血清タンパク質から遊離させることができる適切な解離剤は、当分野ではよく知られており、ホウ化水素ナトリウムおよびホウ化水素カリウムのような還元剤；ジチオトレイトール、ジチオエリトリトール、２−メルカプトエタノール、チオグリコール酸、およびグルタチオンなどのチオール類；およびホスフィン類およびトリブチルホスフィンおよびトリス(２−カルボキシエチル)ホスフィンなどのトリアルキルホスフィン類があるが、これらに限定されない。特に適した還元剤は、ジチオトレイトールおよびトリス(２−カルボキシエチル)ホスフィン(ＴＣＥＰ)であり、後者は、Burns等、J.Org.Chem.56(8) ：2648-2650(1991)に記載されている。ＴＣＥＰの場合の還元反応を下記に例示説明するが、タンパク質結合Ｈcyとタンパク質結合Ｃysを血清タンパク質から遊離させる：解離剤が修飾試薬としても働くとき、スルファイト類、ホスファイト類、ホスホルイミデート類、および同等物、およびそれらのモノ−およびジ−エステルが使用できる。これらの試薬は、ＨcyおよびＣysジスルフィドと反応して、チオスルフェートまたはチオホスフェート基を有する修飾ＨcyおよびＣysを与える。一方、解離剤が修飾試薬として働かないとき、チオール特異的修飾試薬を用いて遊離させたチオール類を修飾する。解離剤の選択は、試薬の組み合わせが他のものよりも好ましいように修飾試薬を選択することにより決定することが多い。解離剤と修飾試薬との多くの組み合わせは、お互いに反応するものであり、そのため、試料と解離剤をまず合わせ、次いで充分な修飾試薬を加えて解離剤および遊離させたＨcyおよびＣysと反応させる必要がある。これとは別に、ホスフィンなどの解離剤を、これとは反応しないマレイミドのような不飽和修飾試薬と共に用いることもできる。このことはそのプロトコールに一層の融通性を与えるが、より反応性の低い修飾試薬を使用すれば、ＨcyおよびＣysとの完全な反応を保証するためにより長いインキュベーション時間が必要となり得る。従って、解離剤と修飾試薬の選択は、所望のアッセイプロトコールおよび時間調節に基づくであろう。本発明の方法を実施するために適切な反応条件を選択する。下記には、適切な条件を示したが、特定の施用のために選択された特定の試薬およびアッセイプロトコールによって、当業者により変更されることがある。例えば、本発明の方法は、不均一系または均一系、競合型または直接型などの多くのアッセイ型に適用でき、採用される条件および試薬類は、それに合わせて選択されるものである。試料は、好ましくは適切な媒質中、直接試験することができるか、または試料をアッセイ媒質に加える前に前処理してもよい。前処理は、不要な物質を除去することによりアッセイ中の干渉を低減して、分析物を１またはそれ以上のアッセイ試薬に対してより容易に利用可能にするか、分析物をより容易に検出可能にすることができる。細胞の分離または溶解；タンパク質の沈殿、加水分解、または変性；脂質の加水分解；分析物の可溶化；等のために試料を前処理することもできる。かかる前処理には、遠心分離；有機溶媒、例えば、アルコール、好ましくはメタノールなどの炭素原子およそ７以下を有するアルコールでの試料の処理：洗剤での処理；および解離剤での処理があるが、これらに限定されない。アッセイされる化合物の濃度は、一般に、約１０^-4ら１０^-15Ｍ、より普通には約１０^-5から１０^-12Ｍで変わる。更に詳しくは、Ｈcy分析物の場合、その濃度は、一般に、約１０^-4から１０^-8Ｍ、より普通には約１０^-5から１０^-7Ｍで変わる。通常、アッセイが定性的であるか、半定量的であるか、または定量的であるかどうか、特定の検出技術、および分析物の濃度などを考慮して、他の試薬の濃度を決定する。更に、それぞれの試薬の最終濃度は、普通、対象の範囲に合わせてアッセイ感度を最適化するよう経験的に決める。アッセイに用いた、また下記キット中にパッケージした様々な試薬の相対量は、本方法中に起こる必要がある反応を実質的に最適化する試薬の濃度を提供するため、また更に実施するアッセイの感度を実質的に最適化するために広範囲に変わり得る。アッセイ媒質中の抗体の濃度は、アッセイ型、不均一系または均一系、競合型または直接型、等によって変わる。通常は、抗修飾分析物抗体が、修飾分析物濃度の半分ないし１０⁷倍の濃度でアッセイ媒質中に存在し、より普通には、修飾分析物濃度のおよそ等倍から約１０³倍の濃度で存在する。本発明の方法を実施する場合、好ましくは水性媒質を採用する。他の極性共溶媒を媒質に採用することもでき、普通、炭素原子１−６、より普通には炭素数１ −４の酸素化有機溶媒であり、アルコール類、エーテル類および同等物を含む。通常、これらの共溶媒は約７０重量パーセント以下で、より普通には約３０重量パーセント以下で存在する。本発明に従うアッセイでは、媒質のｐＨは、通常約５−１０の範囲、好ましくは約７−９の範囲である。このｐＨは、シグナル産生能を最適化しながらｓｂｐ構成員間の充分なレベルの結合を維持するように選択する。ある場合では、これら２つの条件の間に妥協される。更に、このｐＨは、環化などの特定の構造的コンホーメーションを維持するように選択することもできる。様々な緩衝液を用いて、所望のｐＨを達成し、かつ測定中ｐＨを維持することもできる。緩衝液の例には、ボレート、ホスフェート、カーボネートトリス、バルビタール、および同等物がある。採用した特定の緩衝液が本発明にとって決定的なのではないが、個々のアッセイにおいてある１つの緩衝液が他のものよりも好ましい場合がある。本方法の実施には、通常穏やかな温度を採用する。その温度は、実行している工程によって変わり得る。しかしながら、より典型的には、本方法の期間中、一定温度を維持する。その温度は、一般に、１０から５０℃、普通は約１５℃から４０℃の範囲である。様々な試薬の添加順序は広範囲に変わり得るが、採用する特定のアッセイ形式の性質に依存するある優先順序がある。各試薬類および試料を同時に、または全体にまたは部分的に連続して、お互いにおよび支持体と合わせることができる。本明細書で使用した、“全体にまたは部分的に連続して”との用語は、本発明に使用した試料および様々な試薬類を付随的に（同時に）合わせるのではないときに、１またはそれ以上の試薬類を単独で、または他の試薬類と一緒に連続して加えることができることを意味する。例えば、まず、分析物を含有する疑いのある試料と解離剤を合わせて、解離剤にジスルフィド結合を還元させ、次いで、残りの試薬類を同時またはステップワイズ添加してもよい。解離剤と修飾試薬が一緒に反応しないとき以外は、修飾試薬の前に解離剤を添加するのが好ましい。所望により、１またはそれ以上のインキュベーション工程を各試薬添加後に含めてもよく、一般に、約３０秒から６時間、より普通には、約２分から１時間の範囲である。より便利な各工程順序があること、および採用する特定の順序の選択が試薬類およびアッセイ形式の選択によって変わることが理解されるが、これは本発明にとって重大ではない。免疫アッセイの最終工程は、修飾分析物と抗体との結合度を測定することであり、これは、試料中の分析物の存在または量に相関する。結合度を測定する多くの方法があり、当分野ではよく知られている。これらの方法は、例えば、アッセイが競合型であるか、均一系であるか、不均一系であるかどうか等によって異なる。修飾分析物と抗体との結合度の一測定は、検出可能に標識した修飾分析物、即ち、標識化分析物類似体を加え、標識化修飾分析物と抗体とが修飾分析物との結合と競合して結合することにより産生されたシグナルを検出することにより、達成できる。例えば、均一系アッセイにおいて、検出可能な標識は酵素であることができ、最終工程が基質の添加による酵素標識の活性化を必要としてもよい。産生されたシグナルは、通常、標識化修飾分析物と抗体との結合度に反比例する。そのとき、シグナルの存在または量は、試料中の分析物の存在または量に相関する。競合型の均一系アッセイにおけるその他の測定では、蛍光剤標識化修飾分析物および消光剤標識化抗体の使用により、結合度を測定できる。この場合もまた、シグナルは結合度に反比例し、試料中に存在する分析物の量に直接相関する。これとは別に、均一系非競合型アッセイを用いることもでき、そこでは、蛍光剤標識化修飾分析物は分離試薬として加えるのではなく、分析物と蛍光剤標識化修飾試薬との反応により形成させる。この場合もまた、シグナルは結合度に反比例するが、試料中に存在する分析物の量にも反比例する。不均一系アッセイでは、非標識化抗修飾分析物抗体を支持体に結合させることができる。支持体と修飾分析物および標識化修飾分析物とのインキュベーションに続いて、支持体を液相から分離し、次いで固相または液相からのシグナル量を測定するが、これは、修飾分析物と抗体との結合度を示すものであり、したがって試料中の分析物量を示すものである。上記イムノアッセイ技術のより詳細な記載については、Edward T.Mggioによる“Enzyme-Immunoassay”、CRC Press,Inc. 、フロリダ州ボカ・ラトン、1980参照。例示目的で、下記アッセイプロトコールを採用できる。これらの例示説明は、本発明の範囲を限定するものと解釈されるべきではないが、試料中のＨcyまたはＣysを測定するために本発明の方法を使用できる、定性、半定量、および定量アッセイプロトコールの単なる例示説明である。これらの方法において検出されるシグナルを、既知のＨcy濃度を持つ標準または対照と比較する。（Ａ）修飾試薬（Ｉ）を用いるＨcyのアッセイでは、修飾Ｈcy(Ｉb)には特異的に結合するが修飾Ｃys(Ｉa)には結合しないモノクローナル抗体を使用する。ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料を適切な媒質中で修飾試薬（Ｉ）と合わせる。反応は、次のように起こる：ＨcyとＣysが存在するならば、試薬(Ｉ)＋Ｈcy → 修飾Ｈcyおよび試薬(Ｉ)＋Ｃys → 修飾Ｃys(Ｉa)。グルコース−６− ホスフェートデヒドロゲナーゼにコンジュゲートした修飾Ｈcy(Ｉb)の類似体もまた媒質に加える。反応および免疫学的結合が起こるのに充分な時間が経過したら、抗Ｈcy抗体を媒質に加える。３０分間インキュベーション後、グルコース− ６−ホスフェートを加える。産生したシグナルは、試料中のＨcy量に直接相関する。（Ｂ）血清中の総Ｈcyのアッセイでは、修飾Ｈcy(Ｖb)には特異的に結合するが、修飾Ｃys(Ｖa)には結合しないモノクローナル抗体を使用する。抗体は、ガラスビーズに結合させる。まず、血清試料をジチオトレイトール（ＤＴＴ）で処理して、ジスルフィドとして結び付いているＨcyを還元的に遊離させる。過剰のＤＴＴを亜ヒ酸ナトリウムでの処理により封鎖（sequestered）する。次いで、前処理した試料を、³Ｈで標識した修飾試薬(Ｖ)と合わせ、次いで、ガラスビーズ結合抗体と合わせる。媒質を１０分間インキュベートし、ビーズを分離および洗浄する。次いで、ビーズの放射能を測定する。産生したシグナルは、試料中のＨcy量に直接相関する。（Ｃ）修飾試薬(IＸ)を用いるＨcyのアッセイでは、修飾Ｈcy(IＸb)には特異的に結合するが、修飾Ｃys(IＸa)には結合しないモノクローナル抗体を支持体に結合させる。西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）にコンジュゲートさせた修飾Ｈcy(IＸb)の類似体も使用する。ＨcyおよびＣysを含有する疑いのある試料を適切な媒質中で修飾試薬(IＸ)と合わせる。反応が起こるのに充分な時間が経過したら、抗Ｈcy支持体コンジュゲートおよび修飾Ｈcy−ＨＲＰコンジュゲートを次いで媒質に加える。懸濁液を３０分間インキュベーション後、液相と固相を分離し、固相を洗浄する。その後、基質を加えておいた水性媒質を固相に加えると、産生したシグナルは、試料中のＨcy量に反比例する。本発明の方法は、更に、免疫学的に異質な分析物、即ち“修飾”分析物と同族の免疫原に対するポリクローナルおよびモノクローナル抗体の調製を含む。本発明の方法に有用な抗体を得るために使用される免疫原は修飾分析物であり、これはアッセイされる化合物を選択した修飾試薬と反応させることにより得られる。典型的には、免疫原を調製するために、まず、修飾試薬の可溶性基を用いて、試薬を免疫原性キャリアータンパク質に結合させる。普通、これらの結合性基をまず活性化し、次いで、試薬をキャリアータンパク質に結合させる。その後、得られた試薬−タンパク質コンジュゲートを分析物と反応させ、精製し、免疫原として使用する。本発明は、第１化合物を第１化合物の同族体である第２化合物の存在下で検出する方法に関するものである。したがって、上記の抗体を、修飾試薬と第１化合物（分析物）または第２化合物のいずれかとの反応生成物と特異的に反応する、即ち、修飾分析物または修飾第２化合物のいずれかと結合するその能力についてスクリーンする。例えば、Ｈcyのアッセイでは、免疫原は、免疫原性キャリアータンパク質に連結させた誘導体化Ｈcyであろう。その場合、得られた抗体は、修飾Ｈcy分析物を特異的に認識する能力があり、修飾Ｃysを認識しないものである。その他の基を用いて修飾試薬をタンパク質キャリアーに結合させることができ、例えば、アルデヒド類、ケトン類、ジアゾニウム塩類、アルキル化剤、等がある。カルボン酸またはスルホン酸を、適宜、コンジュゲーションのために活性エステルまたは酸ハライドに変換する。キャリアータンパク質は、あらゆるタンパク質であることができ、好ましくは、免疫化した動物とは無関係のものであり、その動物が例えばマウス、ウサギ、ヒツジまたはヤギであるならば、鍵穴カサガイヘモシアニンまたはウシ血清アルブミンのようなものである。本発明の方法に有用なポリクローナル抗体の調製は、当分野ではよく知られている方法による。モノクローナル抗体は、実質的に、MilsteinおよびKohlerのNa ture 256:495-497(1975)に記載と同様の方法により得られる。MilsteinおよびKo hlerの方法の詳細は充分に確立されている。一般に、この方法は、宿主、普通はマウスまたは他の適切な動物に、免疫原を注射することを含む。次いで、その動物の脾臓から細胞を取る。または、宿主は非感作脾臓細胞であってもよく、これをインビトロで免疫原に感作させてもよい。得られた細胞を骨髄腫細胞と融合する。“ハイブリドーマ”と称されるハイブリッド細胞が得られ、これをインビトロで培養できる。ハイブリドーマの個体群をスクリーンし、それぞれが抗原に対する単一抗体を分泌する、個々のクローンを単離する操作を行う。免疫原を宿主に導入するとき、宿主の免疫系は、免疫原上の様々な部位を認識できる多様な抗体を産出することによって応答する。これらの多数の抗体は、異なる親和性および特異性を有する。採用した特定のアッセイ法について所望の親和性および特異性特性を有するこれらの抗体を得るために、様々なハイブリドーマ細胞ラインをスクリーンする。便宜上、本発明に使用する試薬は、アッセイ法に使用するキット中に提供することができる。Ｈcyを検出する方法に使用する代表的なキットは、パッケージした組物中に：ＨcyおよびＣysを化学的に修飾して修飾Ｈcyおよび修飾Ｃysを形成できる修飾試薬、および修飾Ｈcyには特異的に結合できるが修飾Ｃysには結合できない抗体を含んでなる。キットは、ジスルフィド形態中のあらゆるＨcyを解離するのに適した解離剤を含むこともできる。適切な条件下では、キット中の１またはそれ以上の試薬は、溶液状態、または溶解すると本発明の方法またはアッセイを実施するのに適切な濃度を有する試薬溶液となる、賦形剤を含む乾燥粉末、通常は凍結乾燥したもの、として提供できる。主題発明の融通性を高めるために、同じかまたは別の容器に入れた試薬をパッケージした組み物中に提供でき、そうして試薬の比率が当該方法およびアッセイの実質的な最適化をもたらすようにする。試薬をそれぞれ別々の容器に入れてもよく、また様々な試薬を、その交差反応性および安定性に基づいて１またはそれ以上の容器に組み合わせて入れることもできる。便宜上、本発明で用いた試薬を予め定めた量で提供できる。試薬は、修飾分析物に特異的に結合できる第１抗体および第２抗体、および分析物を化学的に修飾するための試薬を含むことができる。また、キットは、例えば一括挿入物（package insert）の形態における、試薬の用い方および／または特定のアッセイの行い方についての指示書を含んでいてもよい。本発明を更に下記例示の実施例により説明する。略語 AP アルカリホスファターゼ（子ウシ腸） BABA ｐ−ブロモアセチル安息香酸 BSA ウシ血清アルブミン Cys-ABA システインアセチル安息香酸 DCC ジシクロヘキシルカルボジイミド DPBS ダルベッコホスフェート緩衝化塩水 DTT ジチオトレイトール DMEM ダルベッコ修飾イーグル培地 DMSO ジメチルスルホキシド EDTA エチレンジアミンテトラ酢酸 FBS ウシ胎児血清 Hcy-ABA ホモシステインアセチル安息香酸 Hcy-ABA-BSA ホモシステインアセチル安息香酸−ウシ血清アルブミン Hcy-ABA-AP ホモシステインアセチル安息香酸−アルカリホスファターゼコンジュゲート NHS Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド PBS ホスフェート緩衝化塩水 PEG ポリエチレングリコール PNPP フェニルホスフェート S-DMEM スーパーダルベッコ修飾イーグル培地 RAM ウサギ抗マウス TCEP トリス(２−カルボキシエチル)ホスフィン THF テトラヒドロフラン材料の調製結晶化ＢＳＡＣohnはICNから得た。ＡＰはPierceから得た。その他全ての化学品は、試薬級であり、ＧibcoおよびＳigmaなどの供給元から市販されている。溶液は全てＨ₂Ｏで調製し、反応は全て特記しない限り、周辺条件下で行った。Ａ）ｐ−ブロモアセチル安息香酸（分子量２４３）の製造４−アセチル安息香酸２.０g（１２.２ミリモル）を５００mlエーレンマイヤーフラスコ中酢酸９０mlに加え、４５℃で溶解するまで加熱した。温度を４５℃ に維持し、酢酸２mlに溶解させた臭素１.９５g（１２.２ミリモル、０.６１ml）を激しく撹拌しながらゆっくりと１時間にわたり加えた。この反応は、反応進行の前に数分の誘導期間を必要とし、これは臭素の赤色の消失とＨＢrの放出により明白になった。生成物ＢＡＢＡ（修飾試薬II）を氷で沈澱させ、濾過して集め、熱エタノール（７５℃）から３回再結晶化した。Ｂ）ブロモアセチル安息香酸Ｎ−ヒドロキシスクシンアミドエステル（分子量３４０）の製造ＢＡＢＡは上記のように製造し、１回再結晶化した。０℃で乾燥ＴＨＦ８mlに溶解させたＢＡＢＡ０.６g（２.５ミリモル）およびＮＨＳ０.２８ｇ（２.５ミリモル）に、ＴＨＦ１ml中ＤＣＣ０.５１g（２.５ミリモル）を加えた。数分後、沈澱が観察され、この溶液を一晩撹拌した。この溶液をガラスフリットにより濾過し、その容量を真空下で２mlまで減らした。容量低減後、若干沈澱が観察された。過剰の石油エーテルを加えて残りの生成物を沈澱させ、固体を限られた量のＴＨＦに溶解し、濁るまで石油エーテルを再度加えることにより再結晶化し、次いで−２０℃まで冷却し、濾過により固体を集めた。ＢＡＢＡ−ＮＨＳの収量０ .２g。Ｃ）システインアセチル安息香酸（分子量２８３）の製造ＢＡＢＡ６０mgおよび１−システイン６０mgを２００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.５の５.０mlに加え、１０分間撹拌し、その後１.０ＭＨＣl ０.５mlを加えて生成物を沈澱させた。固体を濾過により集め、０.１ＭＨＣlおよび次いで水で洗浄し、最終的に真空乾燥させて、Ｃys−ＡＢＡ（修飾Ｃys IIa）を得た。ＴＬＣ分析（セルロース、０.１Ｍ酢酸アンモニウム、ｐＨ６.８）およびＮＭＲ（１００mＭＮa₂ＤＰＯ₄、ｐＨ７.５；１００mＭＮaＤＣＯ₃、ｐＨ８.４；および１００mＭＮa₂Ｂ₃０₇、ｐＨ９.３を含有するＤ₂Ｏにて記録したスペクトル）は、少なくとも３つの異なるｐＨ依存性生成物の存在を示した。質量分析（ＣＩ）では、脱カルボキシル化を示す分子量２２１の親ピークを生じた。Ｄ）ホモシステインアセチル安息香酸（分子量２９７）の製造１−ホモシステインチオラクトン１００mgを脱気した０.５ＭＮaＯＨ５.０ml に加え、４５℃で１０分間加熱し、１.０ＭＨＣlと濃ＨＣlの組み合わせを用いてｐＨ８.０に中性化した。ＢＡＢＡ８０mgをＨcy溶液に加え、１５分間撹拌した。次いで、溶液を０.２２ミクロンシリンジフィルターを通して濾過し、生成物を沈澱させるために１.０ＭＨＣlの添加により溶液ｐＨを２まで下げた。固体Ｈcy−ＡＢＡ（修飾Ｈcy IIb）を０.１ＭＨＣlで数回洗浄し、遠心分離により集め、真空乾燥させた。Ｅ）ホモシステインアセチル安息香酸−ウシ血清アルブミンコンジュゲートの製造ＢＳＡ２５mgを１００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.０、５.０mlに溶解し、この溶液２.２mlをＤＭＳＯ（＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ rxn）中１００mＭＢＡＢＡ− ＮＨＳ２００μl、またはＤＭＳＯ単独２００μl（−ＢＡＢＡ−ＮＨＳ rxn）に加え、３時間混合した。その後、２つの試料を遠心分離して過剰の固体ＢＡＢＡ− ＮＨＳを沈澱させ、０.４５ミクロンシリンジフィルターを通して濾過し、セントリコン３０で５倍に濃縮した。濃縮溶液を１００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.０、で１.０mlまで希釈した。２０μlずつを各溶液から取り出し、１.０mlまで希釈し、吸光度を計測して反応効率を測定した。タンパク質濃度は、−ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応（ＢＳＡ、ε₂₈₀＝43,600）から決定し、タンパク質結合ＢＡＢＡ濃度は＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応（ＢＡＢＡ、ε₂₆₀＝13,600）から決定した。更にＨcyを上記製造したＢＡＢＡ−活性化ＢＳＡ溶液と反応させた。１ＭＮa ＯＨ０.５mlに１−ホモシステインチオラクトン１.５mgを溶解し、３７℃で１０分インキュベートし、最終的にｐＨ７.０のリン酸ナトリウム２.０mlおよびｐＨ６.０のリン酸ナトリウム２.５mlで希釈する（最終ｐＨ７.０）ことにより、２０mＭ１−ホモシステインを製造した。上記製造した両方のＢＳＡ溶液をＨ₂Ｏで４.０mlまで希釈し、Ｈcy溶液１.０mlをそれぞれに加え、一晩インキュベートした。反応物をセントリコン３０で濃縮し、反応効率を、確保しておいた濾液のＢ r^-濃度から見積もった。臭化物標準は、適当なＫＢr貯蔵溶液２μlを−ＢＡＢＡ −ＮＨＳ反応濾液９８μlに加えて、Ｂr^-濃度０.０、０.２、０.４、０.８、および１.０mＭの標準を作ることにより製造した。製造したＢr^-標準２０μlまたは＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応物由来の濾液２０μlを０.１Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ５.５、０.９mlに加え、次いで０.８mＭフルオレセイン２０μlおよび０.１ＭクロラミンＴ１０μlを加えた。１０分後、０.２ＭＮa₂ＣＯ₃中２５mＭチオスルフェート２０μlを加えて、反応を止め、各試料について吸光度を１cmセル中５１５nmで記録した。標準の吸光度値をＢr^-濃度に対してプロットして標準曲線を作り、そこから＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応物に含有されるＢr^-濃度を測定した。この値から、ＢＳＡ上のＢＡＢＡ基とＨcyとの結合効率の見積もりを得た。＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応溶液をセントリコン３０で４倍に濃縮し、１×ＰＢＳで希釈し（最終濃度１０mg／ml）、続く抗体開発のために取っておいた。Ｆ）ホモシステインアセチル安息香酸−アルカリホスファターゼコンジュゲートの製造Ｈcy−ＡＢＡ−ＡＰコンジュゲートを上記ＢＳＡコンジュゲートの場合と同様のやり方で製造した。ＡＰ１０mlを１００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.０、１５mlで希釈し、セントリコン３０で３倍に濃縮し、その後、２００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.０を最終容量２.０mlまで加えた。２つの反応物を調製した：ＡＰ溶液０.４８mlをＤＭＳＯ中１００mＭＢＡＢＡ−ＮＨＳ（＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ rxn）４５μlまたはＤＭＳＯ単独（−ＢＡＢＡ−ＮＨＳ rxn）４５μlに加え、反応物を２.５時間混合した。次いで、反応物を２.０mlＨ₂Ｏで希釈し、０.４５μシリンジフィルターを通して濾過し、セントリコン３０で５倍に濃縮し、最終的に１００mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.０で１.０mlまで希釈した。各試料２０μlを１.０mlまで希釈し、吸光度を記録し、ＡＰに対するタンパク質結合ＢＡＢＡの比率を前記のように測定した（ＡＰ、ε₂₈₀＝110,000；ＢＡＢＡ、ε₂₆ ₀ ＝13,600）。ＢＡＢＡ−活性化ＡＰを下記のようにＨcyと反応させた。１−ホモシステインチオラクトン９.３mgを１.０ＭＮaＯＨ０.５mlに溶解し、３７℃で１５分間インキュベートした。Ｈcyを０.５ＭＮa₂ＨＰＯ₄およびＨ₂Ｏで中性化し、最終容量５mlおよびｐＨ７.０にした。Ｈcy溶液２００μlを上記製造した両方のＡＰ溶液に加え、３７℃で４時間インキュベートした。次いで、反応物をセントリコン３０で濃縮し、濾液を確保した。ＢＡＢＡ−活性化ＡＰとＨcyとの結合反応度は、放出されたＢr^-の濃度から見積もった。標準溶液は、貯蔵ＫＢr溶液２μlを組成物中の濾液に似た緩衝液（０ .５ＭＨcy２００μlに加えた１００mＭリン酸ナトリウム、７.０、１.０ml）９８μlと混合し、０.０、０.０５、０.１、０.１５、および０.２mＭ臭化物イオンの標準を得ることにより製造した。Ｂr^-標準または＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ rxn由来の濾液８０μlを、０.１Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ５.５、０.９mlに加え、次いで、０.４mＭフルオレセイン４０μlおよび５０mＭクロラミンＴ３０μlを加え、１０分間インキュベートした。０.１ＭＮa₂ＣＯ₃中１５mＭチオスルフェート５０μlを加えて反応を止め、５１５nmでの吸光度を記録した。＋ＢＡＢＡ −ＮＨＳ rxn濾液中に含まれるＢr^-濃度を標準曲線から測定し、Ｈcyとの反応の効率を見積もるのに使用した。−ＢＡＢＡ−ＮＨＳと＋ＢＡＢＡ−ＮＨＳ反応物の両方をセントリコン３０で５倍に濃縮し、１×ＰＢＳを加えて最終容量４００μlにした。誘導体化ＡＰの活性は、Ｈ₂Ｏ１００μlの各ＡＰ溶液の２μlを希釈し、希釈溶液２μlを５０mＭトリスＣl、ｐＨ９.４中、１mg／mlのＰＮＰＰ１.０mlに加えることにより評価し、３０秒にわたり記録した吸光度の変化を比較した。Ｇ）Ｈcy-ＡＢＡ−ＢＳＡモノクローナル抗体の生成および単離１）免疫原、免疫感作、および酵素コンジュゲートＨｃｙ−ＡＢＡ−ＢＳＡ免疫原を上記のように製造した。マウスを、ＲＩＢＩアジュバント系に乳化させた免疫原１００μgで１回、５０μgで２回腹腔内免疫感作させた。融合前の３日、マウスには免疫原２５０μgを含有する塩水ブーストを腹腔内的に与えた。Ｈｃｙ−ＡＢＡ−ＡＰをスクリーニングに用いた。２）組織培養Ｓ−ＤＭＥＭを全ての組織培養に用いたが、これは下記のものを補足したＤＭＥＭからなる：１０％ＦＢＳ１０％ＮＣＴＣ−１３５（Gibco♯440-1100EC）４mＭグルタミン１mＭオキサロ酢酸１mＭピルビン酸ナトリウム０.１４８nＭＬ−システイン２００単位インシュリン３７.９mＭ重炭酸ナトリウムならし培地は、Ｐ３８８Ｄ１細胞（ＡＴＣＣ TIB 63）をＳ−ＤＭＥＭ中で生育させ、４ないし５日毎に１：４に分ける（split）ことにより調製した。スペント培地（spent media）を１５００rpmで１５分間遠心分離した。次いでこのスペント培地を０.２ミクロン滅菌組織培養フィルターユニットを用いて濾過し、残っている細胞および異物を除去した。グルタミン（１００×ストック＝５８. ５g／Ｌ）をこのスペント培地に加え、その後使用するか、または先の使用のために−２０℃で凍結した。ならしＳ−ＤＭＥＭは、Ｓ−ＤＭＥＭに１０％Ｐ３８Ｄ１スペント培地を補足しすることにより製造し、次いで、それを融合後のおよびクローニング中のハイブリドーマ成長を支持するために使用した。マウス骨髄腫細胞ラインＰ３Ｘ６３Ａg８.６５３（Ａg８.６５３、ＡＴＣＣ CRL 1580）は、毎日１：２ないし１：４に分けることにより、または２日間の６ −ウェルプレートでの連続希釈により培養中維持された。３）融合融合は、実質的に、MilsteinおよびKohler、Nature 256:495-497(1975)の方法に従って行った。２匹の免疫感作マウスから脾臓を無菌的に除去し、１０mlＤＭＥＭを含有する６０mm組織培養皿に置いた。これらを２・３回切り刻み、その後、つや消しスライド２枚の端に挟んですり漬した。脾臓細胞の単一細胞懸濁液は細胞懸濁液を単繊維スクリーンクロスに通すことにより得られた。脾臓細胞、約２×１０⁸細胞を、４０×１０⁶Ａg８.６５３細胞と一緒にし、８００rpmで５分間遠心分離し、ＤＭＥＭで１ないし２回洗浄した。ＰＥＧ（７５ｍＭヘペス中５０％溶液）４. ０mlを穏やかに撹拌しながら３分間かけて添加することにより融合を行い、次いでＳ−ＤＭＥＭ３０ないし４０mlを加えてＰＥＧを不活性化した。細胞懸濁液を８００rpmで５分間遠心分離した。上清を流し捨て、細胞をＳ−ＤＭＥＭ−ＨＡＴ（ストックＨＡＴ＝５０×Sigma♯Ｈ0262；培地中：１００μＭヒポキサンチン、０.４μＭアミノプテリン、および１６μＭチミジン）で再懸濁させ、１２個の９６−ウェル培養プレートに２００μL／ウェルで培養した。細胞は、スペント培地１００μl／ウェルを除去し、ならしＳ−ＤＭＥＭ−ＨＡＴの２００μl／ウェルを融合後４ないし５日連続添加することにより育てた。融合後約７ないし１０日、融合物をスクリーンした。この場合、ハイブリドーマコロニーは、通常、目で見ることができ、培地は依然ピンクであるか、またはちょうど黄色に変わったところであった。４）連続希釈によるクローニング次いで、ＥＬＩＳＡ陽性抗体を生成するハイブリドーマを確実に単一細胞コロニーを得るために連続希釈により数回クローンした。その操作は下記の通りである。９６−ウェルプレートの１ウェルから内容物をならしＳ−ＤＭＥＭ１.５ml／ウェルを含有する２４−ウェルプレート中の１ウェルに移した。細胞をピペット操作により混合し、１００μl／ウェルを、ならしＳ−ＤＭＥＭ２００μl／ウェルを含有する９６−ウェルプレートの第１列に加えた。１００μl／ウェルをフロウ・マルチチャンネルピペッターを用いて第２列に移し、ピペット操作により混合し、再度、１００μl／ウェルを次の列に移した。各“クローン’を連続的に７倍に希釈し、プレート当たり１ないし４クローンにした。細胞を３ないし４倍の制限希釈により、または安定するまで再クローンした。５）細胞ラインの凍結および解凍ＥＬＩＳＡ＋であるクローン化かつ安定化した細胞ラインを−１００℃で貯蔵した。９６−ウェルプレートから選択したウェル（クローン）は、細胞を毎日継代し、１.５ml／ウェルＳ−ＤＭＥＭの２４−ウェルプレートから、次に８ml／ウェルＳ−ＤＭＥＭの６−ウェルプレートへ、最終的に５０mlＳ−ＤＭＥＭのＴ −７５フラスコへと広げることにより、増殖させた。Ｔ−７５フラスコからの細胞を８００rpmで５分間遠心分離し、凍結用培地、即ちＳ−ＤＭＥＭ中１０％ＤＭＳＯ（ＡＴＣＣ♯76-68-5）および更に１０％ＦＢＳ、３mlに再懸濁した。１ml（３ないし５×１０⁶細胞）ずつをピペットでクリオバイアルに移し、次いで、凍結容器に入れた。それから、その容器を−１００℃で１−２日間貯蔵し、次いでバイアルを後に使用するために−１００℃の凍結貯蔵ボックスに移した。バイアルを３７℃の水浴中で暖めて細胞を解凍した。細胞懸濁液をＳ−ＤＭＥＭ５mlを含有する１５ml遠心分離管に移し、次いで、８００rpmで５分間遠心分離した。上清をデカントし、細胞をＳ−ＤＭＥＭ８mlに再懸濁し、細胞拡張（ce ll expansion）のために６−ウェルプレートにピペットで移した。６）スクリーニングまず、ハイブリドーマを競合型逆ＥＬＩＳＡスクリーンによりスクリーンし、その後、逆ＥＬＩＳＡによりスクリーンした。ＥＬＩＳＡスクリーンは全て室温で行った。競合型逆ＥＬＩＳＡプロトコールは、唯一濃度の、Ｈcyの修飾形態であるＨcy−ＡＢＡを用いる一次スクリーンに使用して、抗体を同定した。最善の抗体を同定するために、Ｈcy−ＡＢＡを抗体の相対感度を測定するための２つの異なるレベルで用いて競合型逆ＥＬＩＳＡを行った。望ましくない交差反応性があるかどうかを測定するためにＢＡＢＡおよびＣys−ＡＢＡも使用した。逆ＥＬＩＳＡプロトコールは、続くクローニングプレートのスクリーンのために使用した。競合型逆ＥＬＩＳＡおよび逆ＥＬＩＳＡ用の試薬は下記の通りである：ＤＰＢＳ（１０×）、ｐＨ７.４、１：１０希釈５０mＭ炭酸緩衝液、ｐＨ９.０ＥＬＩＳＡ洗浄緩衝液：ＤＰＢＳ中０.５％ツイーン２０プレートコート：ウサギ抗マウスＩgＧ、Ａ、Ｍ；ヘビーおよびライト（Z ymed）、製造元説明書により水２mlで再構成、ＤＰＢＳ（ＲＡＭ）中１：１００希釈プレートブロック：ＤＰＢＳ中１％ＢＳＡ希釈液：ＤＰＢＳ中０.５％ＢＳＡ；ＤＰＢＳ中１：２希釈したプレートブロックＥＬＩＳＡ酵素−リガンドコンジュゲート：ＡＰ−Ｈcy−ＡＢＡ、希釈液中１：１５００希釈；競合型逆ＥＬＩＳＡ：一次スクリーン用、Ｈcy−ＡＢＡを希釈Ｈcy−ＡＢＡ−ＡＰ中０.８μg／mlに希釈した；抗体の特性化用、Ｈcy−ＡＢＡ、Ｃys−ＡＢＡ、およびＢＡＢＡを炭酸緩衝液中希釈Ａ−Ｈcy−ＡＢＡの１ μg／mlおよび１ng／mlに希釈した。基質緩衝液：１Ｍジエタノールアミン、０.２５mＭＭgＣl₂、ｐＨ９.８基質：基質緩衝液ml当たりｐ−ニトロフェニルホスフェート０.２５mg。競合型逆ＥＬＩＳＡおよび逆ＥＬＩＳＡのプロトコールは、下記の通りである：１．プレートをＲＡＭ５０μl／ウェルでコートし、１時間または１週間まで４ ℃でインキュベートし、次いで、ウェルの中身を空にした。２．プレートを３００μl／ウェルでブロックし、１５分インキュベートし、次いで、ウェルの中身を空にした。３．抗体（スペント培地）を５０μl／ウェル加え、４５分インキュベートし、３回洗浄した。４．競合型逆ＥＬＩＳＡ：５０μl／ウェルのＡＰ−Ｈcy−ＡＢＡまたはＡＰ −Ｈcy−ＡＢＡ加えるＨcy−ＡＢＡ、ＡＰ−Ｈcy−ＡＢＡ加えるＣys−ＡＢＡ、またはＨcy−ＡＢＡ−ＡＰ加えるＢＡＢＡを加えてプレートを複製した。逆ＥＬＩＳＡ：５０μl／ウェルのＡＰ−Ｈcy−ＡＢＡを加えた。プレートを４５分インキュベートし、３回洗浄した。５．基質を１００μl／ウェル加え、振盪器で２０ないし３０分インキュベートし、４０５nmで読んだ。６．１次スクリーンで陽性のものは、ＡＰ−Ｈｃｙ−ＡＢＡ単独の場合０.９以上のＯＤsを有する抗体であり、Ｈcy−ＡＢＡ−ＡＰ＋Ｈcy−ＡＢＡの場合、５０％以上競合した。競合パーセントは下記のようにして求める：逆ＥＬＩＳＡプロトコールを用いるスクリーニングクローニングプレートに由来する陽性のものは、高いＯＤの単一コロニーまたは極少数のコロニーを有するウェルであった。７）イン・ビトロでの抗体の製造および精製その後、クローン化し、安定化したＥＬＩＳＡ陽性ハイブリドーマを静置培養に移した。ハイブリドーマを２つのＴ２２５フラスコ（スペント培地５００ml）または４つのＴ２２５フラスコ（スペント培地１Ｌ）に過剰増殖させた。細胞および異物を遠心分離および濾過により分離した。精製する前にアジ化ナトリウムを０.０２％で加えた。静置培養で生じた抗体をプロテインＧカラムクロマトグラフィーにより精製した。精製は、室温で行った。プロテインＧ精製に使用した試薬は下記の通りである：洗浄／結合緩衝液、ＰＢＳｐＨ７.０：０.０１Ｍリン酸ナトリウム、０.１５Ｍ塩化ナトリウム、および０.０２％アジ化ナトリウム溶離緩衝液：水酸化アンモニウムでｐＨ３.０に調整した０.５Ｍ酢酸中性化溶液：１Ｍトリス塩基クリーニング緩衝液：１Ｍ酢酸。プロテインＧ精製に使用したプロトコールは下記の通りである：１．カラムにプロテインＧ１０mlを充填し、洗浄／結合緩衝液２５mlで洗浄した。２．抗体（スペント培地）、０.５ないし１Ｌをカラムにのせる。３．カラムを洗浄／結合緩衝液で、ＯＤが基線にもどるまで、または約５０ml を用いて洗浄した。４．抗体を溶離緩衝液で溶出した。１画分当たり２mlを既に中性化溶液１mlを含有する試験管に集めた。５．抗体ピークをプールし、ＤＰＢＳ、ｐＨ７.４の４Ｌに対して一晩透析した。６．カラムをクリーニング緩衝液約２５mlで洗浄し、次いで、洗浄／結合緩衝液で再平衡化した。７．抗体純度は、単一バンドの存在についてパラゴン電気泳動によりチェックした。抗体濃度は、まず２８０nmでの抗体溶液のＯＤを得、次いで、ＩgＧに対する消光係数を用いて抗体濃度を計算することにより決定した：Ａ₂₈₀（１mg／m l）＝１.３５。結果：競合逆ＥＬＩＳＡデータから、Ｈcy−ＡＢＡと十分に競合した、およびあったとしてもＣys−ＡＢＡまたはＢＡＢＡと不完全に競合した３０の抗体が示された。Ｈcy−ＡＢＡの１μg／mlでの感度は、非常に良好であった。Ｈcy Ｉ５Ｃ１２と称するクローンから抗体を下記実施例に用いるために選択した。Ｈ）ビオチン−Ｈcy Ｉ５Ｃ１２の製造０.７mg／ml抗体溶液（Ｈcy Ｉ５Ｃ１２）４００μlをセントリコン３０で２倍に濃縮し、１００mＭ炭酸ナトリウム、ｐＨ８.５で希釈した。溶液を濾過し、緩衝液を加えて、容量を３００μl（最終濃度１mg/ml）にした。抗体溶液に、ＤＭＳＯ中１mg／mlビオチンアミド−カプロエート−ＮＨＳエステル３６μlを加え、２時間インキュベートした。反応物をセントリコン３０で５倍に濃縮し、最後に、５０mＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７.５を加えて、最終容量１mlにした。抗体の濃度(１００μg／ml)は２８０nm吸光度から測定した(１.２mg／ml→吸光度１.０)。ビオチニル化の成功は、ストレプトアビジンの不在下または存在下で非修飾化抗体とビオチニル化抗体との移動度を比較することにより、パラゴンゲル電気泳動により評価した。ビオチン−Ｈcy Ｉ５Ｃ１２溶液は、最後にセントリコン３０で容量５０μlまで濃縮した。実施例ＩＤＴＴ−亜砒酸塩還元を用いるＨＰＬＣモノシステインアッセイＥＤＴＡで凝固停止した全血液の試料２００μlに、等分の１.０mＭＨcyを加え、最終濃度０、１０、２０、３０、４０μＭにした。血液を室温で２時間インキュベートし、次いで、４℃で３日間貯蔵して、Ｈcyの遊離還元型、遊離ジスルフィド型およびタンパク質結合型の間で平衡にした。各血液試料から得られた血漿２０μlを、１００mＭＤＴＴ１０μlおよび１.０Ｍ炭酸ナトリウム、ｐＨ８. ２、３０μlを加え、３７℃で３０分間インキュベートすることにより還元した。続いて、試料中のタンパク質をミリポア・ウルトラフリーＭＣ（１０Ｋ分子量カットオフ）で濾過して除去した。過剰のＤＴＴを、濾液２０μlに１.０Ｍ亜砒酸ナトリウム１０μlを加えて、１０分間インキュベートすることにより、封鎖した。１０mＭＢＡＢＡの１０μlを加え、反応物を更に１０分間インキュベートした。その後、得られた血漿試料をＨＰＬＣで分析し、Ｈcy−ＡＢＡピークを定量し、総血漿Ｈcyを正確に測定した。（２０μl注入、１.０ml／分、１０cmAllt ech Econosphere C18カラム、勾配：１００mＭＥt₃Ｎ−ＨＯＡc中１−１０％ＣＨ₃ＣＮ、ｐＨ５.５、１５分以上）。データは、線形最小二乗分析に十分に一致した。ゼロ領域に外挿すると、血漿単独試料は、予想値（１２μＭが正常である）以上の値、２８ mＭＨcyを記録した。しかしながら、貯蔵血液中のＨcy濃度は、実質的に経時増加することが示された。実施例II 低mＭ濃度でのＴＣＥＰは、緩衝液中のＨcyを定量的に還元することが示された。ＴＣＥＰが血漿中のジスルフィドを還元する場合にもまた有効であることを示すために、血漿単独（Ｈcyなし）を、ＴＣＥＰで前還元するか、またはしないでＢＡＢＡと反応させた。血漿２０μlを１.０Ｍ重炭酸ナトリウム３０μlおよび１０μlのＨ₂Ｏまたは２０mＭＴＣＥＰ１０μlに加え、３７℃で５分間インキュベートした。その後、１０mＭＢＡＢＡ６０μlを加え、反応物を５分間インキュベートした：タンパク質を上記のように濾過して除去し、反応物をＨＰＬＣ（勾配：１％トリフルオロ酢酸中１−２０％ＣＨ₃ＣＮで１５分以上；これ以外は上記の条件）によりＨcy−ＡＢＡについて分析した。ＴＣＥＰが存在しなければ何等生成物は観察されなかった。ＨＰＬＣ分析は、Ｈcy−ＡＢＡピークが完全に他の化合物から分離されていないこと、およびＴＣＥＰでの還元が血漿（または血清）中のジスルフィド還元をもたらす証拠として、実験を定量的な点で考察しなければならないことも示していた。実施例III Ｈcy−ＡＢＡ−ＡＰのビオチン−Ｈcy I 5Ｃ12への結合のＨcy−ＡＢＡ阻害１×ＰＢＳ、５ngのＨcy−ＡＢＡ−ＡＰを含有する０.０５％トゥイーンの１００μlを、Ｈcy−ＡＢＡを含有するＨ₂Ｏ１００μlに、濃度０.１２５、０.２５、０.５、１.０、または４.０μＭで加えた。ビオチン−Ｈcy Ｉ５Ｃ１２１０ngを含有するＰＢＳ−トゥイーン１００μlを加え、反応物を２０分間インキュベートした。前線上したストレプトアビジン−被覆粒子（１ペレット）を３００μlＰＢＳ−トゥイーンに懸濁し、２０μlを反応物に加えた。粒子が懸濁状態であるように反応管を１５分間撹拌した。次いで、粒子をＰＢＳ−トゥイーンで５回洗浄し、粒子の溶液からの分離を、磁気ストリップを含有するチューブホルダーで粒子を側面に引っ張ることにより、容易にした。５０mＭトリスＣl、ｐＨ９.３中１mg／mlＰＮＰＰ基質３００μlを加え、２０分間混合した。各反応管から溶液２００μlをマイクロタイタープレートへ移し、プレートリーダーで４１４nmでの吸光度を記録した。予想したとおり、Ｈcy−ＡＢＡの濃度が増加すると、記録される吸光度の大きさの低減が生じた。シグナル調節は、０.０４ないし０.６７ mＭの有効溶液濃度範囲の＞５０％であり(ゼロ濃度データポイントは記録せず) 、血清試料の実質的な希釈が可能であって、依然、イムノアッセイにおける適当な感度レベルを維持した。実施例IV ホモシステイン−スパイク化血清のアッセイ血清試料を１０、２０、３０および４０μＭＨcyでスパイク(spike)した（Ｈc yとして、即ち、Ｈcyの二量体形態として加えた）。６つの反応物を準備したが、その内、５μlの各Ｈcy−スパイク化血清試料または血清試料単独（２つの反応物）は、１.０Ｍリン酸ナトリウム、ｐＨ７.５、１０μlおよび１０mＭＴＣＥＰ１０μlを加え、１０分間インキュベートすることにより、還元した。５試料中得られた遊離のＨcyを誘導体化、即ち、８mＭＢＡＢＡ４０μlを加え、１０分間インキュベートすることにより“修飾”した。“血清単独”試料の１つには、ＢＡＢＡの代わりにブロモアセトアミドを加え、ゼロＨcy−ＡＢＡ対照を作った。次いで、ＢＡＢＡ（１試料）またはブロモアセトアミド（５試料）を加えて、試薬を均等に混合し、その後連続してＨcy−ＡＢＡ−ＡＰ１０ngを含有するＰＢＳ−トゥイーン１００μlおよびビオチン−Ｈcy Ｉ５Ｃ１２２０ngを含有するＰＢＳ−トゥイーン１００μlを加え、１５分間インキュベートした。ストレプトアビジン被覆粒子懸濁液２０μlを加え、反応物を１５分間撹拌した。ＰＢＳ −トゥイーンで５回洗浄後、反応物をＰＮＰＰで展開し、上記のように分析した。データポイントは、加えたＨcy対記録した吸光度のプロットでの滑らかな曲線に一致した。血清単独、ブロモアセトアミド誘導体化試料から読んだその吸光度は、曲線に一致しており、血清単独試料の内生Ｈcy濃度（加えたＨcy０mＭ）をゼロＨcy−ＡＢＡ（＋ブロモアセトアミド）対照との比較により見積もった。グラフから、血清試料のＨcy濃度は、１５μＭであり、その値は、正常個体の場合に予想した範囲内である。上記発明は、明確さおよび理解を求める目的で例示説明および実施例によりある程度詳細に記載したが、ある程度の変化または修飾が添付の請求の範囲内で実施され得ることは明らかであろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者ウルマン，エドウィン・エフアメリカ合衆国94025カリフォルニア州アサートン、セルビー・レイン135番

Claims

【特許請求の範囲】１．免疫学的に関連する複数化合物を含有する疑いのある試料中の第１化合物の存在または量を、第２化合物の存在下で測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)第１化合物と第２化合物を化学的に修飾して修飾第１化合物および修飾第２化合物を形成できる修飾試薬、および (３)修飾第１化合物には特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾第２化合物には結合できない抗体；を一緒にし、そして (ｂ)該試料中の該第１化合物の存在または量に相関する、該抗体の修飾第１化合物への結合度を測定する、各工程を含んでなる方法。２．該複数化合物が同族体である、請求の範囲第１項記載の方法。３．該第１および第２化合物がホモシステインおよびシステインである、請求の範囲第１項記載の方法。４．該修飾試薬がアルキル化剤、アシル化剤、および金属類からなる群から選択される、請求の範囲第１項記載の方法。５．該修飾試薬が検出可能な標識を有し、その標識を検出することにより、抗体の修飾第１化合物への結合度を測定する、請求の範囲第１項記載の方法。６．該抗体が支持体に結合しているか、または支持体に結合させることができるものである、請求の範囲第５項記載の方法。７．該抗体が検出できるように標識されているか、または検出できるように標識されることができるものであり、該標識を検出することにより、抗体の修飾第１化合物への結合度を測定する、請求の範囲第１項記載の方法。８．更に、検出可能な標識に結合させた該修飾第１化合物の類似体を一緒にすることを含んでなり、該抗体もまたその類似体に特異的に結合でき、そして該類似体の該抗体への結合度を測定することにより、該抗体の該修飾第１化合物への結合度を測定する、請求の範囲第１項記載の方法。９．該抗体が支持体に結合しているるか、または支持体に結合させることができるものである、請求の範囲第８項記載の方法。 10．ホモシステインを含有する疑いのある試料中のホモシステインの量を、システインの存在下で測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)ホモシステインとシステインを化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、および (３)修飾ホモシステインには特異的に結合して免疫複合体を形成できるが修飾システインには結合できない抗体；を一緒にし、そして (ｂ)該試料中のホモシステインの量に相関する、該免疫複合体の量を測定する、各工程を含んでなる方法。 11．該修飾試薬が該ホモシステインと該システインのスルフヒドリル基を修飾して、硫黄が環の一部でない修飾ホモシステインと、硫黄が環の一部である修飾システインとを形成する、請求の範囲第１０項記載の方法。 12．該修飾試薬がアルキル化剤、アシル化剤、および金属類からなる群から選択される、請求の範囲第１０項記載の方法。 13．該修飾試薬が検出可能な標識を有し、該標識を検出して該免疫複合体の量を測定する、請求の範囲第１０項記載の方法。 14．該抗体が支持体に結合しているか、または支持体に結合させることができるものである、請求の範囲第１３項記載の方法。 15．該抗体が検出できるように標識されているか、または検出できるように標識されることができるものであり、該標識を検出して該免疫複合体の存在または量を測定する、請求の範囲第１０項記載の方法。 16．更に、検出可能な標識に結合させた該修飾ホモシステインの類似体を一緒にすることを含んでなり、該抗体もまたその類似体に特異的に結合して第２の免疫複合体を形成でき、該類似体が該抗体へ結合して該第２の免疫複合体を形成する度合いを測定することにより、該該第１の免疫複合体の存在または量を測定する、請求の範囲第１０項記載の方法。 17．該抗体が支持体に結合しているか、または支持体に結合させることができるものである、請求の範囲第１６項記載の方法。 18．ホモシステインを含有する疑いのある試料中のホモシステインの量を、システインの存在下で測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)ホモシステインとシステインを化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、 (３)検出可能な標識に結合させた該修飾ホモシステインの類似体、および (４)該修飾ホモシステインおよび該類似体には特異的に結合するが該修飾システインには結合できない抗体；を一緒にし、そして (ｂ)該試料中のホモシステインの量に相関する、該類似体の該抗体への結合度を測定する、各工程を含んでなる方法。 19．該修飾試薬がアルキル化剤、アシル化剤、および金属類からなる群から選択される、請求の範囲第１８項記載の方法。 20．該抗体が支持体に結合しているか、または支持体に結合させることができるものである、請求の範囲第１８項記載の方法。 21．更に、第１特異的結合対構成員に結合させた支持体を一緒にすることを含んでなり、該抗体を相補的第２特異的結合対構成員に結合させる、請求の範囲第２０項記載の方法。 22．該標識が、蛍光剤類、放射性標識類、酵素類、化学発光剤類、および光増感剤からなる群から選択される、請求の範囲第１８項記載の方法。 23．該抗体をシグナル生成系の第１構成員に結合させ、該検出可能な標識がシグナル生成系の第２構成員であり、該シグナル生成系構成員の相互作用により生じたシグナルを検出することにより、該抗体の該類似体への結合度を測定する、請求の範囲第１８項記載の方法。 24．ホモシステインおよびシステインを含有する疑いのある試料中のホモシステインの量を測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)ホモシステインとシステインを化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、 (３)該修飾ホモシステインには特異的に結合して免疫複合体を形成するが該修飾システインには結合できない抗体； (４)該抗体に結合できる表面、および (５)該修飾ホモシステインの標識化類似体を一緒にし、そして (ｂ)該試料中のホモシステインの量に相関する、該類似体の該抗体への結合度を測定する、各工程を含んでなる方法。 25．該修飾試薬がアルキル化剤、アシル化剤、および金属類からなる群から選択される、請求の範囲第２４項記載の方法。 26．該標識化類似体の標識が、蛍光剤類、放射性標識類、酵素類、化学発光剤類、および光増感剤からなる群から選択される、請求の範囲第２４項記載の方法。 27．更に、標識化第１特異的結合対構成員を一緒にすることを含んでなり、該標識化類似体の標識が相補的第２特異的結合対構成員である、請求の範囲第２４項記載の方法。 28．ホモシステインおよびシステインを含有する疑いのある試料中のホモシステインの量を測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)ホモシステインとシステインを化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、 (３)該修飾ホモシステインには特異的に結合して免疫複合体を形成するが該修飾システインには結合できない抗体、および (４)該修飾ホモシステイン上に存在する、該修飾試薬の一部に結合できる受容体；を一緒にし、そして (ｂ)該試料中のホモシステインの量に相関する、該抗体の該受容体への結合度を測定する、各工程を含んでなる方法。 29．該修飾試薬の一部がハプテン類、ビオチン、およびフルオレセインからなる群から選択され；該受容体が、抗体類、アビジン、およびストレプトアビジンからなる群から選択される、請求の範囲第２８項記載の方法。 30．ホモシステインを含有する疑いのある血清試料中のホモシステインの量を、システインの存在下で測定する方法であって： (ａ)水性媒質中で： (１)該試料、 (２)該ホモシステインを解離してジスルフィド形態を形成させる解離剤、 (３)ホモシステインとシステインのスルフヒドリル基を化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、および (４)該修飾ホモシステインには特異的に結合して免疫複合体を形成するが該修飾システインには結合できない抗体；を一緒にし、そして (ｂ)該試料中のホモシステインの量に相関する、該免疫複合体の量について該媒質を検査する、各工程を含んでなる方法。 31．システインのスルフヒドリル基を化学的に修飾することが、６員環の形成を含んでなる、請求の範囲第３０項記載の方法。 32．ホモシステインのスルフヒドリル基を化学的に修飾することが、６員環の形成を含まない、請求の範囲第３１項記載の方法。 33．解放剤が還元剤である、請求の範囲第３０項記載の方法。 34．該修飾試薬が、Ｃl、Ｂr、Ｉ、スルホネート類、およびスルホニウム塩からなる群から選択される脱離基によりアルファ位で置換されたケトンである、請求の範囲第３０項記載の方法。 35．酵素活性、化学発光、光吸収、または放射能の検出により、該免疫複合体の量を測定する、請求の範囲第３０項記載の方法。 36．第１化合物を第２化合物の存在下で検出する方法において使用するためのキットであって、該化合物群は免疫学的に関連しており、パッケージした組物中に：第１化合物および第２化合物を化学的に修飾して修飾第１化合物および修飾第２化合物を形成できる修飾試薬、および該修飾第１化合物には特異的に結合できるが該修飾第２化合物には結合できない抗体を含んでなる、キット。 37．更に該修飾第１化合物の標識化類似体を含んで成る、請求の範囲第３６項記載のキット。 38．ホモシステインを検出する方法において使用するためのキットであって、パッケージした組物中に：ホモシステインおよびシステインを化学的に修飾して修飾ホモシステインおよび修飾システインを形成できる修飾試薬、および該修飾ホモシステインには特異的に結合できるが該修飾システインには結合できない抗体、を含んでなる、キット。 39．更に該修飾ホモシステインの標識化類似体を含んで成る、請求の範囲第３８項記載のキット。 40．更にジスルフィド形態中に存在するあらゆるホモシステインを解放する解放剤を含んで成る、請求の範囲第３８項記載のキット。