JPH09286779A - 新規化合物レブラスタチン - Google Patents
新規化合物レブラスタチンInfo
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- JPH09286779A JPH09286779A JP30603596A JP30603596A JPH09286779A JP H09286779 A JPH09286779 A JP H09286779A JP 30603596 A JP30603596 A JP 30603596A JP 30603596 A JP30603596 A JP 30603596A JP H09286779 A JPH09286779 A JP H09286779A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- lebrastatin
- salt
- measured
- hygroscopicus
- streptomyces
- Prior art date
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- Pending
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Other In-Based Heterocyclic Compounds (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【課題】 細胞内Ｒｂタンパク質のリン酸化を阻害する
ことにより細胞周期をＧ１期で停止させる生物活性を有
し、制癌剤として有用な新規化合物を提供する。 【解決手段】 式 【化１】
ことにより細胞周期をＧ１期で停止させる生物活性を有
し、制癌剤として有用な新規化合物を提供する。 【解決手段】 式 【化１】
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、医薬、殊にＲｂタ
ンパク質リン酸化阻害を作用点とし、細胞周期阻害活性
を有する、制癌剤として有用な新規化合物レブラスタチ
ン、該化合物の製造法および該化合物を生産する新規微
生物に関する。
ンパク質リン酸化阻害を作用点とし、細胞周期阻害活性
を有する、制癌剤として有用な新規化合物レブラスタチ
ン、該化合物の製造法および該化合物を生産する新規微
生物に関する。
【０００２】
【従来の技術】近年、細胞増殖に関与する因子に関する
研究の進展に伴い、上皮細胞、内皮細胞および各種腫瘍
細胞の増殖をＧ１期で強力に抑制するサイトカインとし
て、トランスフォーミング成長因子β（ｔｒａｎｓｆｏ
ｒｍｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ β；以下
「ＴＧＦβ」という）の存在が明らかとなり、その作用
メカニズムについての研究が進んでいる［Koff, A., Oh
tsuki, M., Polyak, K., Roberts, J. M. and Massagu
e, J.,(1993) Science 260, 536参照］。しかるに、Ｔ
ＧＦβ自体は、それ以外にも細胞外マトリクスタンパク
質の産生促進、免疫抑制等の多彩な生理作用を示すた
め、抗腫瘍活性のみを期待することは難しい［Massagu
e, J.,(1990) Ann. Rev. Cell Biol. 6, 579 参照］。
研究の進展に伴い、上皮細胞、内皮細胞および各種腫瘍
細胞の増殖をＧ１期で強力に抑制するサイトカインとし
て、トランスフォーミング成長因子β（ｔｒａｎｓｆｏ
ｒｍｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ β；以下
「ＴＧＦβ」という）の存在が明らかとなり、その作用
メカニズムについての研究が進んでいる［Koff, A., Oh
tsuki, M., Polyak, K., Roberts, J. M. and Massagu
e, J.,(1993) Science 260, 536参照］。しかるに、Ｔ
ＧＦβ自体は、それ以外にも細胞外マトリクスタンパク
質の産生促進、免疫抑制等の多彩な生理作用を示すた
め、抗腫瘍活性のみを期待することは難しい［Massagu
e, J.,(1990) Ann. Rev. Cell Biol. 6, 579 参照］。
【０００３】このＴＧＦβ刺激による細胞周期のＧ１期
停止の作用メカニズムとして、細胞内のＲｂタンパク質
のリン酸化抑制が重要であることが報告されている［La
iho,M., DeCaprio, J. A., Ludlow, J. W., Livingston
D. M., and Massague, J.,(1990) Cell 62, 175 参
照］。Ｒｂタンパク質をマイクロインジェクションで細
胞に導入したり、該タンパク質をコードする遺伝子を細
胞に導入して大量に発現させたりすると、細胞の増殖が
停止する［Bookstein, J., Shew, J. Y., Chen,P. L.,
Scully, P. and Lee, W. H. (1990) Science 247, 712
参照］。一方、Ｒｂタンパク質をリン酸化すると考えら
れている酵素複合体、ｃｄｋ２／サイクリンＥをコード
する遺伝子を細胞に発現させると、細胞増殖のＧ１期停
止が解除され、細胞が増殖するようになることが報告さ
れている［Hinds, P. W., Mittnacht, S., Dulic, V.,
Arnold, A., Reed, S. I. and Weinberg, R. A. (1992)
Cell 70, 993 参照］。すなわち、Ｒｂタンパク質は非
リン酸化型で細胞増殖を抑制し、リン酸化されると結果
的に細胞周期をＧ１期からＳ期へ移行させる。
停止の作用メカニズムとして、細胞内のＲｂタンパク質
のリン酸化抑制が重要であることが報告されている［La
iho,M., DeCaprio, J. A., Ludlow, J. W., Livingston
D. M., and Massague, J.,(1990) Cell 62, 175 参
照］。Ｒｂタンパク質をマイクロインジェクションで細
胞に導入したり、該タンパク質をコードする遺伝子を細
胞に導入して大量に発現させたりすると、細胞の増殖が
停止する［Bookstein, J., Shew, J. Y., Chen,P. L.,
Scully, P. and Lee, W. H. (1990) Science 247, 712
参照］。一方、Ｒｂタンパク質をリン酸化すると考えら
れている酵素複合体、ｃｄｋ２／サイクリンＥをコード
する遺伝子を細胞に発現させると、細胞増殖のＧ１期停
止が解除され、細胞が増殖するようになることが報告さ
れている［Hinds, P. W., Mittnacht, S., Dulic, V.,
Arnold, A., Reed, S. I. and Weinberg, R. A. (1992)
Cell 70, 993 参照］。すなわち、Ｒｂタンパク質は非
リン酸化型で細胞増殖を抑制し、リン酸化されると結果
的に細胞周期をＧ１期からＳ期へ移行させる。
【０００４】非リン酸化Ｒｂタンパク質は、Ｅ２Ｆと呼
ばれる転写制御因子と複合体を形成し、細胞周期をＧ１
期からＳ期へ移行させるために必要な、ＤＮＡ複製に関
与する一連の遺伝子群の発現を抑制する［Chellappan,
S. P., Hiebert, S., Mudryj, M., Horowitz, J. M. an
d Nevins, J. R. (1991) Cell 65, 1053参照］。Ｒｂタ
ンパク質がリン酸化されると、Ｅ２Ｆとの複合体形成が
解除され、Ｅ２Ｆの転写活性が回復し、その結果細胞周
期がＧ１期からＳ期へ進行する。
ばれる転写制御因子と複合体を形成し、細胞周期をＧ１
期からＳ期へ移行させるために必要な、ＤＮＡ複製に関
与する一連の遺伝子群の発現を抑制する［Chellappan,
S. P., Hiebert, S., Mudryj, M., Horowitz, J. M. an
d Nevins, J. R. (1991) Cell 65, 1053参照］。Ｒｂタ
ンパク質がリン酸化されると、Ｅ２Ｆとの複合体形成が
解除され、Ｅ２Ｆの転写活性が回復し、その結果細胞周
期がＧ１期からＳ期へ進行する。
【０００５】従って、各種腫瘍細胞に存在するリン酸化
型Ｒｂタンパク質を非リン酸化型に回復させ、Ｇ１期か
らＳ期への移行を阻害することにより細胞増殖を抑制す
る薬理作用を有する化合物は、制癌剤として有用である
と考えられる。
型Ｒｂタンパク質を非リン酸化型に回復させ、Ｇ１期か
らＳ期への移行を阻害することにより細胞増殖を抑制す
る薬理作用を有する化合物は、制癌剤として有用である
と考えられる。
【０００６】従来臨床において利用されている制癌剤
は、細胞周期のＳ期に直接的に作用するＤＮＡ複製阻害
剤（アルキル化剤や代謝拮抗剤）、Ｍ期に作用する細胞
分裂阻害剤がほとんどである。一方、細胞周期をＧ１期
で停止させるタイプの薬剤としては、ラパマイシン［Pr
ice, D. J., Grove, J. R., Calvo, V., Avruch, J. an
d Bierer, B. E. (1992) Science 257, 973-977 参
照］、ロバスタチン［Keyomersi, K., et al. (1991) C
ancer Res. 51, 3602-3609参照］、ブチロラクトンＩ
［Kitagawa, M., et al. (1993) Oncogene 8, 2425-243
2 参照］等が報告されているが、現在までに制癌剤とし
て利用されている例はない。
は、細胞周期のＳ期に直接的に作用するＤＮＡ複製阻害
剤（アルキル化剤や代謝拮抗剤）、Ｍ期に作用する細胞
分裂阻害剤がほとんどである。一方、細胞周期をＧ１期
で停止させるタイプの薬剤としては、ラパマイシン［Pr
ice, D. J., Grove, J. R., Calvo, V., Avruch, J. an
d Bierer, B. E. (1992) Science 257, 973-977 参
照］、ロバスタチン［Keyomersi, K., et al. (1991) C
ancer Res. 51, 3602-3609参照］、ブチロラクトンＩ
［Kitagawa, M., et al. (1993) Oncogene 8, 2425-243
2 参照］等が報告されているが、現在までに制癌剤とし
て利用されている例はない。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、Ｒｂ
タンパク質リン酸化阻害を作用点とし、細胞周期阻害活
性を有する、制癌剤として有用な新規化合物、該化合物
の製造法および該化合物を生産する新規微生物を提供す
ることにある。
タンパク質リン酸化阻害を作用点とし、細胞周期阻害活
性を有する、制癌剤として有用な新規化合物、該化合物
の製造法および該化合物を生産する新規微生物を提供す
ることにある。
【０００８】
【課題を解決するための手段】本発明は、 （１） 下記の式（Ｉ）：
【０００９】
【化２】
【００１０】で表わされる化合物レブラスタチンまたは
その塩、 （２） 下記の物理化学的性状； １）物質の性状： 白色粉末状物質 ２）融点： ２２２〜２３１℃ ３）溶解性： メタノール、ジメチルスルホキシドに可
溶、ノルマルヘキサン、クロロホルム、水に不溶 ４）分子式： Ｃ29Ｈ44Ｎ2 Ｏ8 ５）分子量： ５４８（ＦＡＢマススペクトル法により
測定） ６）高分解能ＦＡＢマススペクトル法により測定した精
密質量［Ｍ+ ］は以下の通りである： 実測値： ５４８．３０５５ 計算値： ５４８．３０９９ ７）紫外部吸収スペクトル： メタノール中で測定した
紫外部吸収スペクトルは、次に示す極大吸収を示す： 225 nm (ε 16100, sh.), 250 nm (ε 6900), 285 nm
(ε 5800) ８）赤外部吸収スペクトル： 臭化カリウム（ＫＢｒ）
錠剤法で測定した赤外部吸収スペクトルは、以下に示す
極大吸収 (λmax ) を示す： 3355, 2930, 1712, 1660, 1605, 1500, 1380, 1310, 10
90, 1040,870 cm-1 ９） 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホキ
シド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用いて
測定した、 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示す
通りである： 9.40 (1H, br. s), 9.26 (1H, s), 6.88 (1H, br. s),
6.51 (2H, br. s), 6.30 (1H, br. s), 5.87 (1H, br.
t),5.31 (1H, d, J = 9.8 Hz), 4.87 (1H, d, J = 7.5
Hz),4.37 (1H, br. d, J = 4.9 Hz), 3.63 (3H, s), 3.
33 (3H, s),3.28 (1H, m), 3.23 (3H, s), 3.03 (1H,
m),2.58 (1H, dd, J = 6.3, 13.4 Hz), 2.38 (1H, m),
2.35 (1H, m),2.20 (1H, m), 2.12 (1H, m), 1.73 (1H,
m), 1.68 (3H, s),1.55 (1H, m), 1.44 (3H, s), 1.35
(1H, m), 1.29 (1H, m),1.17 (1H, m), 0.91 (3H, d,
J = 6.5 Hz),0.81 (3H, d, J = 6.5 Hz) ppm. １０）13Ｃ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホ
キシド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用い
て測定した、13Ｃ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示
す通りである： 170.1 (s), 156.1 (s), 150.0 (s), 142.5 (s), 134.6
(d),134.5 (s), 133.4 (d), 133.4 (s), 132.2 (s), 12
9.7 (s),114.6 (d), 107.2 (d), 81.1 (d), 80.6 (d),
79.6 (d), 73.8 (d),59.7 (q), 58.2 (q), 56.4 (q), 3
5.8 (t), 34.4 (t), 33.6 (d),31.1 (d), 29.8 (t), 2
3.6 (t), 19.8 (q), 15.9 (q), 13.0 (q),11.6 (q) pp
m. １１）高速液体クロマトグラフィー： カラム： センシューパックＯＤＳ−Ｈ−２１５１、６
φ×１５０ｍｍ（センシュー科学（株）社製） 溶媒： ２５％アセトニトリル−６７ｍＭリン酸緩衝液
（ｐＨ６．８） 流速： １．５ｍｌ／分 検出： ＵＶ２１０ｎｍ 保持時間： １３．１分； を有する化合物レブラスタチンまたはその塩、 （３） ストレプトマイセス属に属するレブラスタチン
生産菌を培養し、その培養物よりレブラスタチンを採取
することを特徴とする、レブラスタチンの製造法、 （４） ストレプトマイセス属に属するレブラスタチン
生産菌がストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyceshygros
copicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９
５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、（３）記載の
製造法、 （５） ストレプトマイセス属に属し、（１）または
（２）記載の化合物を生産することを特徴とする微生
物、 （６） ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygro
scopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９
５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、（５）記載の
微生物、 （７） （１）または（２）記載の化合物、もしくはそ
れらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる医
薬、 （８） （１）または（２）記載の化合物、もしくはそ
れらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる制癌
剤、に関する。
その塩、 （２） 下記の物理化学的性状； １）物質の性状： 白色粉末状物質 ２）融点： ２２２〜２３１℃ ３）溶解性： メタノール、ジメチルスルホキシドに可
溶、ノルマルヘキサン、クロロホルム、水に不溶 ４）分子式： Ｃ29Ｈ44Ｎ2 Ｏ8 ５）分子量： ５４８（ＦＡＢマススペクトル法により
測定） ６）高分解能ＦＡＢマススペクトル法により測定した精
密質量［Ｍ+ ］は以下の通りである： 実測値： ５４８．３０５５ 計算値： ５４８．３０９９ ７）紫外部吸収スペクトル： メタノール中で測定した
紫外部吸収スペクトルは、次に示す極大吸収を示す： 225 nm (ε 16100, sh.), 250 nm (ε 6900), 285 nm
(ε 5800) ８）赤外部吸収スペクトル： 臭化カリウム（ＫＢｒ）
錠剤法で測定した赤外部吸収スペクトルは、以下に示す
極大吸収 (λmax ) を示す： 3355, 2930, 1712, 1660, 1605, 1500, 1380, 1310, 10
90, 1040,870 cm-1 ９） 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホキ
シド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用いて
測定した、 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示す
通りである： 9.40 (1H, br. s), 9.26 (1H, s), 6.88 (1H, br. s),
6.51 (2H, br. s), 6.30 (1H, br. s), 5.87 (1H, br.
t),5.31 (1H, d, J = 9.8 Hz), 4.87 (1H, d, J = 7.5
Hz),4.37 (1H, br. d, J = 4.9 Hz), 3.63 (3H, s), 3.
33 (3H, s),3.28 (1H, m), 3.23 (3H, s), 3.03 (1H,
m),2.58 (1H, dd, J = 6.3, 13.4 Hz), 2.38 (1H, m),
2.35 (1H, m),2.20 (1H, m), 2.12 (1H, m), 1.73 (1H,
m), 1.68 (3H, s),1.55 (1H, m), 1.44 (3H, s), 1.35
(1H, m), 1.29 (1H, m),1.17 (1H, m), 0.91 (3H, d,
J = 6.5 Hz),0.81 (3H, d, J = 6.5 Hz) ppm. １０）13Ｃ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホ
キシド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用い
て測定した、13Ｃ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示
す通りである： 170.1 (s), 156.1 (s), 150.0 (s), 142.5 (s), 134.6
(d),134.5 (s), 133.4 (d), 133.4 (s), 132.2 (s), 12
9.7 (s),114.6 (d), 107.2 (d), 81.1 (d), 80.6 (d),
79.6 (d), 73.8 (d),59.7 (q), 58.2 (q), 56.4 (q), 3
5.8 (t), 34.4 (t), 33.6 (d),31.1 (d), 29.8 (t), 2
3.6 (t), 19.8 (q), 15.9 (q), 13.0 (q),11.6 (q) pp
m. １１）高速液体クロマトグラフィー： カラム： センシューパックＯＤＳ−Ｈ−２１５１、６
φ×１５０ｍｍ（センシュー科学（株）社製） 溶媒： ２５％アセトニトリル−６７ｍＭリン酸緩衝液
（ｐＨ６．８） 流速： １．５ｍｌ／分 検出： ＵＶ２１０ｎｍ 保持時間： １３．１分； を有する化合物レブラスタチンまたはその塩、 （３） ストレプトマイセス属に属するレブラスタチン
生産菌を培養し、その培養物よりレブラスタチンを採取
することを特徴とする、レブラスタチンの製造法、 （４） ストレプトマイセス属に属するレブラスタチン
生産菌がストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyceshygros
copicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９
５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、（３）記載の
製造法、 （５） ストレプトマイセス属に属し、（１）または
（２）記載の化合物を生産することを特徴とする微生
物、 （６） ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygro
scopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９
５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、（５）記載の
微生物、 （７） （１）または（２）記載の化合物、もしくはそ
れらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる医
薬、 （８） （１）または（２）記載の化合物、もしくはそ
れらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる制癌
剤、に関する。
【００１１】本発明者らは、微生物二次代謝産物中より
Ｒｂタンパク質リン酸化阻害作用を有する物質を探索し
た結果、オーストラリア国アリススプリングにて採取さ
れた土壌より分離した、ストレプトマイセス属に属する
ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピ
ー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus
subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５株の培
養液中に、Ｒｂタンパク質リン酸化阻害作用を有する新
規化合物レブラスタチンが生産されることを見出し、本
発明を完成した。
Ｒｂタンパク質リン酸化阻害作用を有する物質を探索し
た結果、オーストラリア国アリススプリングにて採取さ
れた土壌より分離した、ストレプトマイセス属に属する
ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピ
ー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus
subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５株の培
養液中に、Ｒｂタンパク質リン酸化阻害作用を有する新
規化合物レブラスタチンが生産されることを見出し、本
発明を完成した。
【００１２】本発明の前記式（Ｉ）を有するレブラスタ
チンは、いくつかの不斉炭素原子およびいくつかの二重
結合を有する。それゆえ、種々の光学および幾何異性体
が存在する。本発明においては、これらのレブラスタチ
ン異性体がすべて単一の式で示されているが、本発明は
ラセミ化合物を含むこれらの異性体およびこれらの異性
体の混合物をもすべて含むものである。立体特異的合成
法が使用される場合、または光学活性化合物が原料化合
物として使用される場合、個々のレブラスタチン異性体
は直接的に製造してもよいし、一方、異性体の混合物が
製造されれば、個々の異性体は常法により得てもよい。
チンは、いくつかの不斉炭素原子およびいくつかの二重
結合を有する。それゆえ、種々の光学および幾何異性体
が存在する。本発明においては、これらのレブラスタチ
ン異性体がすべて単一の式で示されているが、本発明は
ラセミ化合物を含むこれらの異性体およびこれらの異性
体の混合物をもすべて含むものである。立体特異的合成
法が使用される場合、または光学活性化合物が原料化合
物として使用される場合、個々のレブラスタチン異性体
は直接的に製造してもよいし、一方、異性体の混合物が
製造されれば、個々の異性体は常法により得てもよい。
【００１３】本発明の化合物レブラスタチンは、当業者
に周知の方法を用いて塩にすることができる。本発明は
そのようなレブラスタチンの塩も包含する。レブラスタ
チンの塩としては、医学的に使用され、薬理学的に許容
されるものであれば特に限定はない。なお、レブラスタ
チンの塩が医薬以外の用途に用いられる場合、例えば中
間体として使用される場合にはなんら限定はない。その
ような塩としては、好適にはナトリウム塩、カリウム
塩、リチウム塩のようなアルカリ金属塩；カルシウム
塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩；アル
ミニウム塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩、ニッケル塩、コバル
ト塩等の金属塩；アンモニウム塩のような無機塩；ｔ−
オクチルアミン塩、ジベンジルアミン塩、モルホリン
塩、グルコサミン塩、フェニルグリシンアルキルエステ
ル塩、エチレンジアミン塩、Ｎ−メチルグルカミン塩、
グアニジン塩、ジエチルアミン塩、トリエチルアミン
塩、ジシクロヘキシルアミン塩、Ｎ，Ｎ’−ジベンジル
エチレンジアミン塩、クロロプロカイン塩、プロカイン
塩、ジエタノールアミン塩、Ｎ−ベンジル−フェネチル
アミン塩、ピペラジン塩、テトラメチルアンモニア塩、
トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩のような有
機塩等のアミン塩；および、グリシン塩、リジン塩、ア
ルギニン塩、オルニチン塩、アスパラギン塩のようなア
ミノ酸塩を挙げることができる。より好適には、薬理学
的に許容される塩として好ましく使用されるもの、すな
わち、ナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩、カルシ
ウム塩およびマグネシウム塩等を挙げることができる。
に周知の方法を用いて塩にすることができる。本発明は
そのようなレブラスタチンの塩も包含する。レブラスタ
チンの塩としては、医学的に使用され、薬理学的に許容
されるものであれば特に限定はない。なお、レブラスタ
チンの塩が医薬以外の用途に用いられる場合、例えば中
間体として使用される場合にはなんら限定はない。その
ような塩としては、好適にはナトリウム塩、カリウム
塩、リチウム塩のようなアルカリ金属塩；カルシウム
塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩；アル
ミニウム塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩、ニッケル塩、コバル
ト塩等の金属塩；アンモニウム塩のような無機塩；ｔ−
オクチルアミン塩、ジベンジルアミン塩、モルホリン
塩、グルコサミン塩、フェニルグリシンアルキルエステ
ル塩、エチレンジアミン塩、Ｎ−メチルグルカミン塩、
グアニジン塩、ジエチルアミン塩、トリエチルアミン
塩、ジシクロヘキシルアミン塩、Ｎ，Ｎ’−ジベンジル
エチレンジアミン塩、クロロプロカイン塩、プロカイン
塩、ジエタノールアミン塩、Ｎ−ベンジル−フェネチル
アミン塩、ピペラジン塩、テトラメチルアンモニア塩、
トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩のような有
機塩等のアミン塩；および、グリシン塩、リジン塩、ア
ルギニン塩、オルニチン塩、アスパラギン塩のようなア
ミノ酸塩を挙げることができる。より好適には、薬理学
的に許容される塩として好ましく使用されるもの、すな
わち、ナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩、カルシ
ウム塩およびマグネシウム塩等を挙げることができる。
【００１４】また、本発明の化合物レブラスタチンまた
はその塩は、溶剤和物となることがある。例えば、大気
中に放置したり、または、再結晶をすることにより、水
分を吸収し、吸着水が付いたり、水和物となる場合があ
るが、そのような溶剤和物も本発明に包含される。
はその塩は、溶剤和物となることがある。例えば、大気
中に放置したり、または、再結晶をすることにより、水
分を吸収し、吸着水が付いたり、水和物となる場合があ
るが、そのような溶剤和物も本発明に包含される。
【００１５】さらに本発明は、生体内において代謝され
てレブラスタチンに変換される化合物、いわゆるプロド
ラッグもすべて含むものである。
てレブラスタチンに変換される化合物、いわゆるプロド
ラッグもすべて含むものである。
【００１６】
【発明の実施の形態】本発明の化合物レブラスタチン
は、ストレプトマイセス属に属する該化合物の生産菌を
適当な培地で培養し、該培養物から採取することによっ
て得られる。好適なレブラスタチン生産菌であるストレ
プトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピー・ハ
イグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus subs
p. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５株（以下
「ＳＡＮＫ ６１９９５株」という）は、オーストラリ
ア国アリススプリングの土壌から常法に従って採集、分
離されたものである。
は、ストレプトマイセス属に属する該化合物の生産菌を
適当な培地で培養し、該培養物から採取することによっ
て得られる。好適なレブラスタチン生産菌であるストレ
プトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピー・ハ
イグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus subs
p. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５株（以下
「ＳＡＮＫ ６１９９５株」という）は、オーストラリ
ア国アリススプリングの土壌から常法に従って採集、分
離されたものである。
【００１７】ＳＡＮＫ ６１９９５株の菌学的性状は次
の通りである。
の通りである。
【００１８】１）形態学的特徴 インターナショナル・ストレプトマイセス・プロジェク
ト（International Streptomyces Project；以下「ＩＳ
Ｐ」という）規定［Shirling, E. B. and Gottlieb, D.
(1966) Int. J. Syst. Bacteriol. 16, 313-340参照］
の寒天培地上で２８℃、１４日間培養後の観察では、本
菌株の基生菌糸は非常に良好に伸長、分岐し、オリーブ
灰、茶味灰ないし黄味茶色を示すが、ノカルディア (No
cardia)属菌株様の断裂やジグザグ伸長は観察されな
い。気菌糸は単純分岐する。胞子鎖の形態は螺旋状を示
す。走査型電子顕微鏡による観察では、胞子の表面構造
はしわ状を示す。胞子は気菌糸上のみに形成されるが、
明瞭な胞子の境界を観察することは困難である。また、
菌核、菌糸の断裂、胞子嚢などの特殊器官は観察されな
い。
ト（International Streptomyces Project；以下「ＩＳ
Ｐ」という）規定［Shirling, E. B. and Gottlieb, D.
(1966) Int. J. Syst. Bacteriol. 16, 313-340参照］
の寒天培地上で２８℃、１４日間培養後の観察では、本
菌株の基生菌糸は非常に良好に伸長、分岐し、オリーブ
灰、茶味灰ないし黄味茶色を示すが、ノカルディア (No
cardia)属菌株様の断裂やジグザグ伸長は観察されな
い。気菌糸は単純分岐する。胞子鎖の形態は螺旋状を示
す。走査型電子顕微鏡による観察では、胞子の表面構造
はしわ状を示す。胞子は気菌糸上のみに形成されるが、
明瞭な胞子の境界を観察することは困難である。また、
菌核、菌糸の断裂、胞子嚢などの特殊器官は観察されな
い。
【００１９】２）各種培養基上での諸性質 各種培養基上で２８℃、１４日間培養後の性状は以下の
表１に示す通りである。表中、ＩＳＰ番号の記されてい
る培地の組成はそれぞれＩＳＰの規定の通りである。ま
た、項目Ｇは生育、同ＡＭは気菌糸、同Ｒは裏面、同Ｓ
Ｐは可溶性色素をそれぞれ表す。色調の記述は「色の標
準（日本色彩研究所版）」によるものであり、カッコ内
の色調の表示は、マンセル方式に準拠したカラーナンバ
ーである。
表１に示す通りである。表中、ＩＳＰ番号の記されてい
る培地の組成はそれぞれＩＳＰの規定の通りである。ま
た、項目Ｇは生育、同ＡＭは気菌糸、同Ｒは裏面、同Ｓ
Ｐは可溶性色素をそれぞれ表す。色調の記述は「色の標
準（日本色彩研究所版）」によるものであり、カッコ内
の色調の表示は、マンセル方式に準拠したカラーナンバ
ーである。
【００２０】
【表１】 ３）生理学的性質 ２８℃で培養後、２乃至２１日間に観察した本菌株の生
理学的性質は、表２に示した通りである。表中、培地１
は、イーストエキス・麦芽エキス寒天培地（ＩＳＰ
２）を表す。
理学的性質は、表２に示した通りである。表中、培地１
は、イーストエキス・麦芽エキス寒天培地（ＩＳＰ
２）を表す。
【００２１】
【表２】 また、プリドハム・ゴトリーブ寒天培地（ＩＳＰ ９）
を使用して、２８℃で１４日間培養後に観察した本菌株
の炭素源の資化性は表３に示す通りである。表中、
「＋」は資化する、「±」は弱く資化する、「−」は資
化しないことを示す。
を使用して、２８℃で１４日間培養後に観察した本菌株
の炭素源の資化性は表３に示す通りである。表中、
「＋」は資化する、「±」は弱く資化する、「−」は資
化しないことを示す。
【００２２】
【表３】 ４）化学的分類学的性質 本菌株の細胞壁をベッカーらの方法［Becker, B., et a
l.,(1984) Applied Microbiology, 12, 421-423 参照］
に従い検討した結果、ＬＬ−ジアミノピメリン酸が検出
されたことから細胞壁タイプＩであることが確認され
た。また、本菌株の全細胞中の糖成分を長谷川らの方法
［Hasegawa, T., et al. (1983) J. Gen.Appl. Microbi
ol. 29, 319-322参照］に従い検討した結果、特徴的な
パターンは認められなかった。
l.,(1984) Applied Microbiology, 12, 421-423 参照］
に従い検討した結果、ＬＬ−ジアミノピメリン酸が検出
されたことから細胞壁タイプＩであることが確認され
た。また、本菌株の全細胞中の糖成分を長谷川らの方法
［Hasegawa, T., et al. (1983) J. Gen.Appl. Microbi
ol. 29, 319-322参照］に従い検討した結果、特徴的な
パターンは認められなかった。
【００２３】以上の菌学的性質から、本菌株は放線菌の
中でもストレプトマイセス (Streptomyces) 属に属する
ことが明らかとなった。さらに、シャーリングとゴトリ
ーブによるＩＳＰ菌株記載［Shirling E. B. and Gottl
ieb, D., Int. J. Syst. Bacteriol. 18, 68-189 and 2
79-392 (1968); 19, 391-512 (1969); 22, 265-394 (19
72) 参照］、ワックスマン著、ジ・アクチノミセーテス
第２巻［Waksman, S.A. (1961) The Actinomycetes 2
参照］、ウィリアムズ等編、バージーズ・マニュアル・
オブ・システマチック・バクテリオロジー第４巻［Will
iams, S. T. etal. (1989） Bergey's Manual of Syste
matic Bacteriology 4 参照］を参照することにより既
知の菌種と比較したところ、本菌株はストレプトマイセ
ス・ハイグロスコピカス・サブエスピー・ハイグロスコ
ピカス（Streptomyces hygroscopicus subsp. hygrosco
picus ）に極めて近縁であることが判明した。しかしな
がら、ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブ
エスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygrosc
opicus subsp. hygroscopicus ）とは、炭素源の資化
性、特にラフィノース資化性が陽性である点において差
異が認められた。
中でもストレプトマイセス (Streptomyces) 属に属する
ことが明らかとなった。さらに、シャーリングとゴトリ
ーブによるＩＳＰ菌株記載［Shirling E. B. and Gottl
ieb, D., Int. J. Syst. Bacteriol. 18, 68-189 and 2
79-392 (1968); 19, 391-512 (1969); 22, 265-394 (19
72) 参照］、ワックスマン著、ジ・アクチノミセーテス
第２巻［Waksman, S.A. (1961) The Actinomycetes 2
参照］、ウィリアムズ等編、バージーズ・マニュアル・
オブ・システマチック・バクテリオロジー第４巻［Will
iams, S. T. etal. (1989） Bergey's Manual of Syste
matic Bacteriology 4 参照］を参照することにより既
知の菌種と比較したところ、本菌株はストレプトマイセ
ス・ハイグロスコピカス・サブエスピー・ハイグロスコ
ピカス（Streptomyces hygroscopicus subsp. hygrosco
picus ）に極めて近縁であることが判明した。しかしな
がら、ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブ
エスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygrosc
opicus subsp. hygroscopicus ）とは、炭素源の資化
性、特にラフィノース資化性が陽性である点において差
異が認められた。
【００２４】このような菌学的特徴を有する本菌株は、
明らかにストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygro
scopicus subsp. hygroscopicus ）とは異なる新菌株で
あると考えられるが、これらの差異のみをもって種を区
別することはできない。そこで、本発明者らは本菌株を
ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピ
ー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus
subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５と同定
した。該菌株は平成７年（１９９５年）６月２０日付で
工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託され、受
託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０が付された。
明らかにストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サ
ブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygro
scopicus subsp. hygroscopicus ）とは異なる新菌株で
あると考えられるが、これらの差異のみをもって種を区
別することはできない。そこで、本発明者らは本菌株を
ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス・サブエスピ
ー・ハイグロスコピカス（Streptomyces hygroscopicus
subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６１９９５と同定
した。該菌株は平成７年（１９９５年）６月２０日付で
工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託され、受
託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０が付された。
【００２５】以上、ＳＡＮＫ ６１９９５株について説
明したが、放線菌の諸性質は一定したものではなく、自
然的、人工的に容易に変異を起こし得ることは周知の通
りである。本発明で使用しうる菌株は、そのようなすべ
ての変異株を包含する。すなわち本発明は、ストレプト
マイセス属に属し、レブラスタチンを生産するすべての
菌株を包含するものである。
明したが、放線菌の諸性質は一定したものではなく、自
然的、人工的に容易に変異を起こし得ることは周知の通
りである。本発明で使用しうる菌株は、そのようなすべ
ての変異株を包含する。すなわち本発明は、ストレプト
マイセス属に属し、レブラスタチンを生産するすべての
菌株を包含するものである。
【００２６】本発明のレブラスタチン生産菌を培養する
に際し使用される培地としては、炭素源、窒素源、無機
イオンおよび有機栄養源等より選択されたものを適宜含
有する培地であれば、合成または天然培地のいずれでも
使用可能である。
に際し使用される培地としては、炭素源、窒素源、無機
イオンおよび有機栄養源等より選択されたものを適宜含
有する培地であれば、合成または天然培地のいずれでも
使用可能である。
【００２７】該栄養源としては、従来真菌類や放線菌類
の菌株の培養に利用されている公知の、微生物が資化で
きる炭素源、窒素源および無機塩が使用できる。
の菌株の培養に利用されている公知の、微生物が資化で
きる炭素源、窒素源および無機塩が使用できる。
【００２８】具体的には、例えば炭素源としてはグルコ
ース、フルクトース、マルトース、シュクロース、マン
ニトール、グリセロール、デキストリン、オート麦、ラ
イ麦、トウモロコシ澱粉、ジャガイモ、トウモロコシ
粉、大豆粉、綿実油、水飴、糖蜜、大豆油、クエン酸、
酒石酸などを単一で、あるいは併用して使用することが
できる。培地中の該炭素源の含量は、一般には培地量の
１〜１０重量％で変量するが、この範囲に限定されな
い。
ース、フルクトース、マルトース、シュクロース、マン
ニトール、グリセロール、デキストリン、オート麦、ラ
イ麦、トウモロコシ澱粉、ジャガイモ、トウモロコシ
粉、大豆粉、綿実油、水飴、糖蜜、大豆油、クエン酸、
酒石酸などを単一で、あるいは併用して使用することが
できる。培地中の該炭素源の含量は、一般には培地量の
１〜１０重量％で変量するが、この範囲に限定されな
い。
【００２９】また、窒素源としては、一般にタンパク質
またはその水解物を含有する物質を用いることができ
る。好適な窒素源としては、例えば大豆粉、フスマ、落
花生粉、綿実粉、カゼイン加水分解物、ファーマミン、
魚粉、コーンスチープリカー、ペプトン、肉エキス、生
イースト、乾燥イースト、イーストエキス、マルトエキ
ス、ジャガイモ、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウ
ム、硝酸ナトリウム等を使用し得る。該窒素源は、単一
または併用して培地量の０．２〜６重量％の範囲で用い
られることが好ましい。
またはその水解物を含有する物質を用いることができ
る。好適な窒素源としては、例えば大豆粉、フスマ、落
花生粉、綿実粉、カゼイン加水分解物、ファーマミン、
魚粉、コーンスチープリカー、ペプトン、肉エキス、生
イースト、乾燥イースト、イーストエキス、マルトエキ
ス、ジャガイモ、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウ
ム、硝酸ナトリウム等を使用し得る。該窒素源は、単一
または併用して培地量の０．２〜６重量％の範囲で用い
られることが好ましい。
【００３０】さらに栄養無機塩としては、ナトリウム、
アンモニウム、カルシウム、フォスフェート、サルフェ
ート、クロライド、カーボネート等のイオンを得ること
のできる通常の塩類を使用し得る。また、カリウム、カ
ルシウム、コバルト、マンガン、鉄、マグネシウム等の
微量の金属も使用され得る。
アンモニウム、カルシウム、フォスフェート、サルフェ
ート、クロライド、カーボネート等のイオンを得ること
のできる通常の塩類を使用し得る。また、カリウム、カ
ルシウム、コバルト、マンガン、鉄、マグネシウム等の
微量の金属も使用され得る。
【００３１】なお、液体培養に際しては、消泡剤として
シリコン油、植物油、界面活性剤等を使用することがで
きる。
シリコン油、植物油、界面活性剤等を使用することがで
きる。
【００３２】ＳＡＮＫ ６１９９５株を培養してレブラ
スタチンを生産するための培地のｐＨは、好適には５．
０〜８．０である。
スタチンを生産するための培地のｐＨは、好適には５．
０〜８．０である。
【００３３】ＳＡＮＫ ６１９９５株の生育温度は１２
〜３６℃であるが、レブラスタチンを生産させるために
は該菌株を２０〜２８℃で培養することが好ましく、よ
り好適には２６〜２８℃で培養することが好ましい。
〜３６℃であるが、レブラスタチンを生産させるために
は該菌株を２０〜２８℃で培養することが好ましく、よ
り好適には２６〜２８℃で培養することが好ましい。
【００３４】レブラスタチンは、ＳＡＮＫ ６１９９５
株を好気的に培養することにより得られるが、そのよう
な培養法としては、通常用いられる好気的培養法、例え
ば固体培養法、振とう培養法、通気攪拌培養法等を用い
ることができる。
株を好気的に培養することにより得られるが、そのよう
な培養法としては、通常用いられる好気的培養法、例え
ば固体培養法、振とう培養法、通気攪拌培養法等を用い
ることができる。
【００３５】小規模の培養においては、２８℃で数日間
振とう培養を行うのが好適である。培養は、バッフル
（水流調節壁）のついた、あるいは通常の三角フラスコ
中で、１〜２段階の種の発育工程により開始する。種発
育段階の培地には、炭素源および窒素源を併用できる。
種フラスコは定温インキュベーター中で２８℃、５日間
振とうするか、または充分に成長するまで振とうする。
成長した種は、第二の種培地、または、生産培地に接種
するのに用いる。中間の発育工程を用いる場合には、本
質的に同様の方法で成長させ、その一部を生産培地に接
種する。接種したフラスコを一定の温度で数日間振とう
培養し、培養終了後フラスコ内の培養物を遠心分離また
はろ過する。
振とう培養を行うのが好適である。培養は、バッフル
（水流調節壁）のついた、あるいは通常の三角フラスコ
中で、１〜２段階の種の発育工程により開始する。種発
育段階の培地には、炭素源および窒素源を併用できる。
種フラスコは定温インキュベーター中で２８℃、５日間
振とうするか、または充分に成長するまで振とうする。
成長した種は、第二の種培地、または、生産培地に接種
するのに用いる。中間の発育工程を用いる場合には、本
質的に同様の方法で成長させ、その一部を生産培地に接
種する。接種したフラスコを一定の温度で数日間振とう
培養し、培養終了後フラスコ内の培養物を遠心分離また
はろ過する。
【００３６】大量培養の場合には、攪拌機や通気装置が
付いたジャーファーメンターあるいはタンクで培養する
のが好ましい。そのためにはまず栄養培地を１２１℃ま
で加熱して滅菌し冷却しておき、次いで、該滅菌済培地
に前述したような方法によって予め成長させておいた種
を接種する。その後の培養は２８℃で通気攪拌して行
う。この方法は多量の化合物を得るのに適している。
付いたジャーファーメンターあるいはタンクで培養する
のが好ましい。そのためにはまず栄養培地を１２１℃ま
で加熱して滅菌し冷却しておき、次いで、該滅菌済培地
に前述したような方法によって予め成長させておいた種
を接種する。その後の培養は２８℃で通気攪拌して行
う。この方法は多量の化合物を得るのに適している。
【００３７】培養の経過に伴って生産されるレブラスタ
チンの量は、培養液の一部を採取して高速液体クロマト
グラフィーを実施することにより測定することができ
る。レブラスタチン生産量は、通常３〜９日で最高値に
達する。
チンの量は、培養液の一部を採取して高速液体クロマト
グラフィーを実施することにより測定することができ
る。レブラスタチン生産量は、通常３〜９日で最高値に
達する。
【００３８】培養終了後、培養液中の菌体成分を、珪藻
土をろ過操作助剤とするろ過操作または遠心分離によっ
て分別し、そのろ液または上清中に存在するレブラスタ
チンを、高速液体クロマトグラフィーを指標にして、そ
の物理化学的性状を利用し抽出精製する。例えば、この
ろ液中に存在するレブラスタチンは、まず中性またはｐ
Ｈ３程度の酸性条件下で、水と混和しない有機溶剤、例
えばノルマルブタノール、メチルエチルケトン、酢酸エ
チル等の単独使用、またはそれらの組み合わせにより抽
出精製することができる。あるいは、吸着剤として、例
えば活性炭または吸着用樹脂であるアンバーライトＸＡ
Ｄ−２、ＸＡＤ−４（以上ローム・アンド・ハース社
製）等や、ダイヤイオンＨＰ−１０、ＨＰ−２０、ＣＨ
Ｐ−２０Ｐ、ＨＰ−５０（以上三菱化成（株）社製）等
を使用することができる。レブラスタチンを含む溶液を
上記のごとき吸着剤の層を通過させて不純物を吸着させ
て取り除き、素通り画分を回収するか、または逆にレブ
ラスタチンを吸着させた後、メタノール水、アセトン
水、ノルマルブタノール水などを用いて溶出させる事に
より、レブラスタチンを分離することができる。
土をろ過操作助剤とするろ過操作または遠心分離によっ
て分別し、そのろ液または上清中に存在するレブラスタ
チンを、高速液体クロマトグラフィーを指標にして、そ
の物理化学的性状を利用し抽出精製する。例えば、この
ろ液中に存在するレブラスタチンは、まず中性またはｐ
Ｈ３程度の酸性条件下で、水と混和しない有機溶剤、例
えばノルマルブタノール、メチルエチルケトン、酢酸エ
チル等の単独使用、またはそれらの組み合わせにより抽
出精製することができる。あるいは、吸着剤として、例
えば活性炭または吸着用樹脂であるアンバーライトＸＡ
Ｄ−２、ＸＡＤ−４（以上ローム・アンド・ハース社
製）等や、ダイヤイオンＨＰ−１０、ＨＰ−２０、ＣＨ
Ｐ−２０Ｐ、ＨＰ−５０（以上三菱化成（株）社製）等
を使用することができる。レブラスタチンを含む溶液を
上記のごとき吸着剤の層を通過させて不純物を吸着させ
て取り除き、素通り画分を回収するか、または逆にレブ
ラスタチンを吸着させた後、メタノール水、アセトン
水、ノルマルブタノール水などを用いて溶出させる事に
より、レブラスタチンを分離することができる。
【００３９】さらに、このようにして得られたレブラス
タチンは、シリカゲル、フロリジル、コスモシル（ナカ
ライテスク社製）のような担体を用いた吸着カラムクロ
マトグラフィー、セファデックスＬＨ−２０（ファルマ
シア社製）などを用いた分配カラムクロマトグラフィ
ー、トヨパールＨＷ４０Ｆ（東ソー（株）社製）などを
用いたゲルろ過クロマトグラフィー、または順相、逆相
カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー等により精
製することができる。
タチンは、シリカゲル、フロリジル、コスモシル（ナカ
ライテスク社製）のような担体を用いた吸着カラムクロ
マトグラフィー、セファデックスＬＨ−２０（ファルマ
シア社製）などを用いた分配カラムクロマトグラフィ
ー、トヨパールＨＷ４０Ｆ（東ソー（株）社製）などを
用いたゲルろ過クロマトグラフィー、または順相、逆相
カラムを用いた高速液体クロマトグラフィー等により精
製することができる。
【００４０】以上の分離、精製の手段を単独または適宜
組み合わせ、場合によっては反復して用いることによ
り、本発明の化合物レブラスタチンを分離精製すること
ができる。
組み合わせ、場合によっては反復して用いることによ
り、本発明の化合物レブラスタチンを分離精製すること
ができる。
【００４１】以上のごとくして得られる本発明の化合物
レブラスタチンは、文献未掲載の新規化合物であるが、
そのＲｂタンパク質リン酸化阻害活性、または細胞周期
阻害活性は以下のようにして調べることができる。
レブラスタチンは、文献未掲載の新規化合物であるが、
そのＲｂタンパク質リン酸化阻害活性、または細胞周期
阻害活性は以下のようにして調べることができる。
【００４２】（ａ）Ｒｂタンパク質リン酸化阻害活性
［DeCaprio, J. A., Ludlow, J. W.,Figge, J., Shew,
J. Y., Huang, C. M., Lee, W. H., Marsilio, E., Pau
cha,E. and Livingston, D. M. (1988) Cell 54, 275参
照］ Ｒｂタンパク質リン酸化阻害活性は以下に記載す
るようなウエスタンブロット法を利用した方法により調
べることができる。すなわち、まずレブラスタチン存在
下、または非存在下で培養した細胞の細胞内タンパク質
を、界面活性剤および各種プロテアーゼ阻害剤を含む溶
液で抽出したものについてＳＤＳ−ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動を行い、ゲル内で分画されたタンパク質を
当業者に周知の方法を用いてニトロセルロース膜に転写
する。このニトロセルロース膜を抗Ｒｂタンパク質抗体
を含む緩衝液中に浸すことにより膜上のＲｂタンパク質
に抗Ｒｂタンパク質抗体を結合させる。さらに、該抗体
を、放射性同位元素や酵素等で標識された抗イムノグロ
ブリン抗体を用いて検出することにより、各サンプル中
のＲｂタンパク質を同定することができる。
［DeCaprio, J. A., Ludlow, J. W.,Figge, J., Shew,
J. Y., Huang, C. M., Lee, W. H., Marsilio, E., Pau
cha,E. and Livingston, D. M. (1988) Cell 54, 275参
照］ Ｒｂタンパク質リン酸化阻害活性は以下に記載す
るようなウエスタンブロット法を利用した方法により調
べることができる。すなわち、まずレブラスタチン存在
下、または非存在下で培養した細胞の細胞内タンパク質
を、界面活性剤および各種プロテアーゼ阻害剤を含む溶
液で抽出したものについてＳＤＳ−ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動を行い、ゲル内で分画されたタンパク質を
当業者に周知の方法を用いてニトロセルロース膜に転写
する。このニトロセルロース膜を抗Ｒｂタンパク質抗体
を含む緩衝液中に浸すことにより膜上のＲｂタンパク質
に抗Ｒｂタンパク質抗体を結合させる。さらに、該抗体
を、放射性同位元素や酵素等で標識された抗イムノグロ
ブリン抗体を用いて検出することにより、各サンプル中
のＲｂタンパク質を同定することができる。
【００４３】リン酸化型Ｒｂタンパク質と非リン酸化型
Ｒｂタンパク質とは電気泳動での移動度が異なるため、
上記のウエスタンブロットの検出結果における両者のバ
ンドは容易に識別され得る。レブラスタチン添加によ
り、細胞内のリン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドは薄く
なり、非リン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドが濃くなる
ことから、レブラスタチンがＲｂタンパク質のリン酸化
を阻害する活性を有することが示される。
Ｒｂタンパク質とは電気泳動での移動度が異なるため、
上記のウエスタンブロットの検出結果における両者のバ
ンドは容易に識別され得る。レブラスタチン添加によ
り、細胞内のリン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドは薄く
なり、非リン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドが濃くなる
ことから、レブラスタチンがＲｂタンパク質のリン酸化
を阻害する活性を有することが示される。
【００４４】（ｂ）チミジン取り込み阻害活性［Mache
r, B. A., Lockney, M., Moskal, J.R., Fung, Y. K. a
nd Sweeley, C. C. (1978) Exp. Cell Res., 117, 95参
照］培養細胞をレブラスタチン存在下または非存在下で
培養し、さらにトリチウム標識チミジン（以下「 3Ｈ−
ＴｄＲ」という）を培地に添加して一定時間培養する。
細胞を回収し、シンチレーションカウンター等を用いて
細胞内に取り込まれた 3Ｈ−ＴｄＲの量を測定する。レ
ブラスタチンはこのチミジン取り込みを低濃度で阻害す
る。チミジンはＳ期のＤＮＡ複製の際に取り込まれるの
で、レブラスタチンが細胞周期をいずれかの段階で停止
させていることが示される。
r, B. A., Lockney, M., Moskal, J.R., Fung, Y. K. a
nd Sweeley, C. C. (1978) Exp. Cell Res., 117, 95参
照］培養細胞をレブラスタチン存在下または非存在下で
培養し、さらにトリチウム標識チミジン（以下「 3Ｈ−
ＴｄＲ」という）を培地に添加して一定時間培養する。
細胞を回収し、シンチレーションカウンター等を用いて
細胞内に取り込まれた 3Ｈ−ＴｄＲの量を測定する。レ
ブラスタチンはこのチミジン取り込みを低濃度で阻害す
る。チミジンはＳ期のＤＮＡ複製の際に取り込まれるの
で、レブラスタチンが細胞周期をいずれかの段階で停止
させていることが示される。
【００４５】（ｃ）フローサイトメトリーによる細胞周
期阻害活性の検出［Crissman, H. A. and Tobey, R. A.
(1974) Science 184, 1297 参照］ 対数増殖期にある
培養細胞をレブラスタチン存在下または非存在下で培養
した後、細胞を回収する。付着細胞や細胞どうしが接着
する細胞については、トリプシン等で分散させておく。
次いで、細胞をメタノール等を用いて固定することによ
り細胞周期を停止させる。さらに、ヨウ化プロピジウム
等、ＤＮＡに特異的に結合する蛍光標識剤を用いて細胞
内のＤＮＡを蛍光標識した後、フローサイトメーターで
各細胞の蛍光強度を測定し、蛍光強度を横軸、細胞数を
縦軸とする度数分布を取得する。各細胞の蛍光強度はそ
の細胞のＤＮＡ量に比例するので、蛍光強度によりその
細胞の細胞周期を相対的に知ることができる。すなわ
ち、Ｇ１期の染色体数は２ｎであり、Ｇ２期およびＭ期
の染色体数は４ｎであるので、Ｇ２期からＭ期にある細
胞の蛍光強度はＧ１期の約２倍となり、Ｓ期の蛍光強度
は両者の間の値となる。レブラスタチン存在下で培養し
た細胞の度数分布においては、Ｇ１期に相当する細胞の
数が有意に増加することから、レブラスタチンがＧ１期
からＳ期への移行を阻害することが示唆される。
期阻害活性の検出［Crissman, H. A. and Tobey, R. A.
(1974) Science 184, 1297 参照］ 対数増殖期にある
培養細胞をレブラスタチン存在下または非存在下で培養
した後、細胞を回収する。付着細胞や細胞どうしが接着
する細胞については、トリプシン等で分散させておく。
次いで、細胞をメタノール等を用いて固定することによ
り細胞周期を停止させる。さらに、ヨウ化プロピジウム
等、ＤＮＡに特異的に結合する蛍光標識剤を用いて細胞
内のＤＮＡを蛍光標識した後、フローサイトメーターで
各細胞の蛍光強度を測定し、蛍光強度を横軸、細胞数を
縦軸とする度数分布を取得する。各細胞の蛍光強度はそ
の細胞のＤＮＡ量に比例するので、蛍光強度によりその
細胞の細胞周期を相対的に知ることができる。すなわ
ち、Ｇ１期の染色体数は２ｎであり、Ｇ２期およびＭ期
の染色体数は４ｎであるので、Ｇ２期からＭ期にある細
胞の蛍光強度はＧ１期の約２倍となり、Ｓ期の蛍光強度
は両者の間の値となる。レブラスタチン存在下で培養し
た細胞の度数分布においては、Ｇ１期に相当する細胞の
数が有意に増加することから、レブラスタチンがＧ１期
からＳ期への移行を阻害することが示唆される。
【００４６】以上、レブラスタチンの生物活性の代表的
な評価方法を説明したが、評価方法はこれらに限定され
ず、既に当業者に知られているこれら以外の細胞周期阻
害活性の評価方法を用いることもできる。
な評価方法を説明したが、評価方法はこれらに限定され
ず、既に当業者に知られているこれら以外の細胞周期阻
害活性の評価方法を用いることもできる。
【００４７】本発明のレブラスタチンまたはその薬理学
的に許容される塩は種々の形態で投与される。その投与
形態としては、例えば錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散
剤、シロップ剤等による経口投与、または注射剤（静脈
内、筋肉内、皮下）、点滴剤、坐剤等による非経口投与
を挙げることができる。これらの各種製剤は、常法に従
って主薬に賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、矯味矯臭
剤、溶解補助剤、懸濁剤、コーティング剤などの医薬の
製剤技術分野において通常使用し得る既知の補助剤を用
いて製剤化することができる。
的に許容される塩は種々の形態で投与される。その投与
形態としては、例えば錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散
剤、シロップ剤等による経口投与、または注射剤（静脈
内、筋肉内、皮下）、点滴剤、坐剤等による非経口投与
を挙げることができる。これらの各種製剤は、常法に従
って主薬に賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、矯味矯臭
剤、溶解補助剤、懸濁剤、コーティング剤などの医薬の
製剤技術分野において通常使用し得る既知の補助剤を用
いて製剤化することができる。
【００４８】錠剤の形態に成形するに際しては、担体と
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
乳糖、白糖、塩化ナトリウム、グルコース、尿素、澱
粉、炭酸カルシウム、カオリン、結晶セルロース、ケイ
酸等の賦形剤；水、エタノール、プロパノール、単シロ
ップ、グルコース液、澱粉液、ゼラチン溶液、カルボキ
シメチルセルロース、セラック、メチルセルロース、リ
ン酸カリウム、ポリビニルピロリドン等の結合剤；乾燥
澱粉、アルギン酸ナトリウム、寒天末、ラミナラン末、
炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ポリオキシエチ
レンソルビタン脂肪酸エステル類、ラウリル硫酸ナトリ
ウム、ステアリン酸モノグリセリド、澱粉、乳糖等の崩
壊剤；白糖、ステアリン、カカオバター、水素添加油等
の崩壊抑制剤；第四級アンモニウム塩基、ラウリル硫酸
ナトリウム等の吸収促進剤；グリセリン、澱粉等の保湿
剤；澱粉、乳糖、カオリン、ベントナイト、コロイド状
ケイ酸等の吸着剤；精製タルク、ステアリン酸塩、硼酸
末、ポリエチレングリコール等の潤沢剤等が例示でき
る。さらに錠剤は必要に応じ通常の剤皮を施した錠剤、
例えば糖衣錠、ゼラチン被包錠、腸溶被錠、フィルムコ
ーティング錠あるいは二重錠、多層錠とすることができ
る。
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
乳糖、白糖、塩化ナトリウム、グルコース、尿素、澱
粉、炭酸カルシウム、カオリン、結晶セルロース、ケイ
酸等の賦形剤；水、エタノール、プロパノール、単シロ
ップ、グルコース液、澱粉液、ゼラチン溶液、カルボキ
シメチルセルロース、セラック、メチルセルロース、リ
ン酸カリウム、ポリビニルピロリドン等の結合剤；乾燥
澱粉、アルギン酸ナトリウム、寒天末、ラミナラン末、
炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ポリオキシエチ
レンソルビタン脂肪酸エステル類、ラウリル硫酸ナトリ
ウム、ステアリン酸モノグリセリド、澱粉、乳糖等の崩
壊剤；白糖、ステアリン、カカオバター、水素添加油等
の崩壊抑制剤；第四級アンモニウム塩基、ラウリル硫酸
ナトリウム等の吸収促進剤；グリセリン、澱粉等の保湿
剤；澱粉、乳糖、カオリン、ベントナイト、コロイド状
ケイ酸等の吸着剤；精製タルク、ステアリン酸塩、硼酸
末、ポリエチレングリコール等の潤沢剤等が例示でき
る。さらに錠剤は必要に応じ通常の剤皮を施した錠剤、
例えば糖衣錠、ゼラチン被包錠、腸溶被錠、フィルムコ
ーティング錠あるいは二重錠、多層錠とすることができ
る。
【００４９】丸剤の形態に成形するに際しては、担体と
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
グルコース、乳糖、カカオバター、澱粉、硬化植物油、
カオリン、タルク等の賦形剤；アラビアゴム末、トラガ
ント末、ゼラチン、エタノール等の結合剤；ラミナラン
寒天等の崩壊剤等が例示できる。
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
グルコース、乳糖、カカオバター、澱粉、硬化植物油、
カオリン、タルク等の賦形剤；アラビアゴム末、トラガ
ント末、ゼラチン、エタノール等の結合剤；ラミナラン
寒天等の崩壊剤等が例示できる。
【００５０】坐剤の形態に成形するに際しては、担体と
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
ポリエチレングリコール、カカオバター、高級アルコー
ル、高級アルコールのエステル類、ゼラチン、半合成グ
リセリド等を挙げることができる。
してこの分野で従来公知のものを広く使用でき、例えば
ポリエチレングリコール、カカオバター、高級アルコー
ル、高級アルコールのエステル類、ゼラチン、半合成グ
リセリド等を挙げることができる。
【００５１】注射剤として調製される場合には、液剤お
よび懸濁剤は殺菌され、かつ血液と等張であるのが好ま
しく、これら液剤、乳剤および懸濁剤の形態に成形する
に際しては、希釈剤としてこの分野で慣用されているも
のをすべて使用でき、例えば水、エタノール、プロピレ
ングリコール、エトキシ化イソステアリルアルコール、
ポリオキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシエ
チレンソルビタン脂肪酸エステル類等を挙げることがで
きる。なお、この場合、等張性の溶液を調製するのに十
分な量の食塩、グルコース、あるいはグリセリンを医薬
製剤中に含有せしめてもよく、また通常の溶解補助剤、
緩衝剤、無痛化剤等を添加してもよい。
よび懸濁剤は殺菌され、かつ血液と等張であるのが好ま
しく、これら液剤、乳剤および懸濁剤の形態に成形する
に際しては、希釈剤としてこの分野で慣用されているも
のをすべて使用でき、例えば水、エタノール、プロピレ
ングリコール、エトキシ化イソステアリルアルコール、
ポリオキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシエ
チレンソルビタン脂肪酸エステル類等を挙げることがで
きる。なお、この場合、等張性の溶液を調製するのに十
分な量の食塩、グルコース、あるいはグリセリンを医薬
製剤中に含有せしめてもよく、また通常の溶解補助剤、
緩衝剤、無痛化剤等を添加してもよい。
【００５２】さらに必要に応じて着色剤、保存剤、香
料、風味剤、甘味剤等や他の医薬品を含有せしめてもよ
い。
料、風味剤、甘味剤等や他の医薬品を含有せしめてもよ
い。
【００５３】上記医薬製剤中に含まれる有効成分化合物
の量は、特に限定されず広範囲に適宜選択されるが、通
常全組成物中１−７０重量％、好ましくは１−３０重量
％含まれる量とするのが適当である。
の量は、特に限定されず広範囲に適宜選択されるが、通
常全組成物中１−７０重量％、好ましくは１−３０重量
％含まれる量とするのが適当である。
【００５４】上記医薬製剤の投与方法は特に限定はな
く、各種製剤形態、患者の年齢、性別その他の条件、疾
患の程度等に応じて決定される。例えば錠剤、丸剤、液
剤、懸濁剤、乳剤、顆粒剤およびカプセル剤の場合には
経口投与される。また注射剤の場合には単独であるいは
グルコース、アミノ酸等の通常の補液と混合して静脈内
投与され、さらには必要に応じて単独で筋肉内、皮内、
皮下もしくは腹腔内投与される。坐剤の場合には直腸内
投与される。
く、各種製剤形態、患者の年齢、性別その他の条件、疾
患の程度等に応じて決定される。例えば錠剤、丸剤、液
剤、懸濁剤、乳剤、顆粒剤およびカプセル剤の場合には
経口投与される。また注射剤の場合には単独であるいは
グルコース、アミノ酸等の通常の補液と混合して静脈内
投与され、さらには必要に応じて単独で筋肉内、皮内、
皮下もしくは腹腔内投与される。坐剤の場合には直腸内
投与される。
【００５５】その使用量は症状、年齢、体重、投与方法
および剤形等によって異なるが、通常は成人に対して１
日あたり、上限として２０００ｍｇ（好ましくは１００
０ｍｇ）であり、下限として０．１ｍｇ（好ましくは１
ｍｇ、さらに好ましくは１０ｍｇ）を症状に応じて１回
または数回に分けて投与することができる。
および剤形等によって異なるが、通常は成人に対して１
日あたり、上限として２０００ｍｇ（好ましくは１００
０ｍｇ）であり、下限として０．１ｍｇ（好ましくは１
ｍｇ、さらに好ましくは１０ｍｇ）を症状に応じて１回
または数回に分けて投与することができる。
【００５６】製剤例． カプセル剤 レブラスタチン １００ｍｇ 乳糖 １００ｍｇ トウモロコシ澱粉 １４８．８ｍｇステアリン酸マグネシウム １．２ｍｇ 全量 ３５０ｍｇ 上記処方の粉末を混合し、６０メッシュのふるいに通し
た後、この粉末をゼラチンカプセルに入れ、カプセル剤
とする。
た後、この粉末をゼラチンカプセルに入れ、カプセル剤
とする。
【００５７】
【実施例】以下に実施例をあげて本発明を具体的に説明
するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００５８】１）ストレプトマイセス・ハイグロスコピ
カス・サブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyc
es hygroscopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ
６１９９５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）株の培養 以下に記載する組成の培地８０ｍｌを入れた５００ｍｌ
の三角フラスコ（種フラスコ）にＳＡＮＫ ６１９９５
株を無菌的に１白金耳接種し、次いで該種フラスコを、
ロータリー振とう機中で２８℃、２１０ｒｐｍにて振と
うして、４日間の前培養を行った。
カス・サブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyc
es hygroscopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ
６１９９５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）株の培養 以下に記載する組成の培地８０ｍｌを入れた５００ｍｌ
の三角フラスコ（種フラスコ）にＳＡＮＫ ６１９９５
株を無菌的に１白金耳接種し、次いで該種フラスコを、
ロータリー振とう機中で２８℃、２１０ｒｐｍにて振と
うして、４日間の前培養を行った。
【００５９】本実施例で使用された培地の組成は以下の
通りである： グリセロール ２５ｇ グルコース ２５ｇ 生イースト １０ｇ 脱脂大豆粉 １０ｇ リン酸一カリウム ０．５ｇ 硫酸マグネシウム・七水和物 ０．５ｇ 炭酸カルシウム ５ｇ 消泡剤 （ＣＢ−４４２：日本油脂（株）社製） ５０ｍｇ 水道水 １０００ｍｌ 滅菌前のｐＨ；７．０ 滅菌：オートクレーブにて１２１℃で滅菌する。
通りである： グリセロール ２５ｇ グルコース ２５ｇ 生イースト １０ｇ 脱脂大豆粉 １０ｇ リン酸一カリウム ０．５ｇ 硫酸マグネシウム・七水和物 ０．５ｇ 炭酸カルシウム ５ｇ 消泡剤 （ＣＢ−４４２：日本油脂（株）社製） ５０ｍｇ 水道水 １０００ｍｌ 滅菌前のｐＨ；７．０ 滅菌：オートクレーブにて１２１℃で滅菌する。
【００６０】本培養は以下に記載するようにして行っ
た。すなわち、滅菌済の上記の組成の培地８０ｍｌの入
った５００ｍｌ容の三角フラスコ１０本に、種培養液を
それぞれ１ｍｌ入れ、ロータリー振とう機で２８℃、２
１０ｒｐｍで４日間振とう培養した。
た。すなわち、滅菌済の上記の組成の培地８０ｍｌの入
った５００ｍｌ容の三角フラスコ１０本に、種培養液を
それぞれ１ｍｌ入れ、ロータリー振とう機で２８℃、２
１０ｒｐｍで４日間振とう培養した。
【００６１】２）単離精製 本培養終了後、本培養フラスコ１０本分の培養液８００
ｍｌに、等量のアセトンを添加し、１時間攪拌し可溶物
を抽出した。この抽出液を、セライトをろ過助剤として
ろ過した後、等量の酢酸エチルで３回抽出した。酢酸エ
チル層を飽和食塩水で洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾
燥し、ロータリーエバポレーターを用いて減圧濃縮を行
うことにより、褐色の油状物質９６０ｍｇが得られた。
ｍｌに、等量のアセトンを添加し、１時間攪拌し可溶物
を抽出した。この抽出液を、セライトをろ過助剤として
ろ過した後、等量の酢酸エチルで３回抽出した。酢酸エ
チル層を飽和食塩水で洗浄後、無水硫酸ナトリウムで乾
燥し、ロータリーエバポレーターを用いて減圧濃縮を行
うことにより、褐色の油状物質９６０ｍｇが得られた。
【００６２】次に、該油状物質をメタノール３００ｍｌ
に懸濁し、該懸濁液を３０００ｒｐｍで遠心分離した。
この操作を３回繰り返し、可溶性画分（上清）と不溶性
画分（沈澱）に分画した。得られた上清をロータリーエ
バポレーターを用いて１ｍｌまで減圧濃縮し、再び生じ
た沈澱を３０００ｒｐｍで遠心分離することにより除去
した。上清を２５％アセトニトリル水溶液で平衡化した
ＨＰＬＣカラム（センシューパックＨ５２５１ ＯＤ
Ｓ、２０φ×２５０ｍｍ（センシュー科学（株）社
製））にチャージし、１４ｍｌ／分で展開した。溶出液
の紫外部２１０ｎｍでの吸収を検出し、２５〜２７分の
間に溶出されるピークを分取した。得られた画分を濃
縮、凍結乾燥することにより、１１ｍｇのレブラスタチ
ンが純品として得られた。
に懸濁し、該懸濁液を３０００ｒｐｍで遠心分離した。
この操作を３回繰り返し、可溶性画分（上清）と不溶性
画分（沈澱）に分画した。得られた上清をロータリーエ
バポレーターを用いて１ｍｌまで減圧濃縮し、再び生じ
た沈澱を３０００ｒｐｍで遠心分離することにより除去
した。上清を２５％アセトニトリル水溶液で平衡化した
ＨＰＬＣカラム（センシューパックＨ５２５１ ＯＤ
Ｓ、２０φ×２５０ｍｍ（センシュー科学（株）社
製））にチャージし、１４ｍｌ／分で展開した。溶出液
の紫外部２１０ｎｍでの吸収を検出し、２５〜２７分の
間に溶出されるピークを分取した。得られた画分を濃
縮、凍結乾燥することにより、１１ｍｇのレブラスタチ
ンが純品として得られた。
【００６３】
【発明の効果】試験例１． Ｒｂタンパク質リン酸化阻害活性 レブラスタチンのＲｂタンパク質リン酸化阻害活性を、
以下に記載するウエスタンブロット法により調べた。す
なわち、まずヒト肺癌由来細胞株Ａ５４９（アメリカン
・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）Ｎ
ｏ．ＣＣＬ−１８５）を、１０％のウシ胎児血清（サミ
ット社製）を含むＲＰＭＩ１６４０培地（ギブコ−ＢＲ
Ｌ社製）で１×１０5 個／ｍｌとなるように調整し、細
胞培養用６穴プレート（コーニング社製）に３ｍｌずつ
分注した。翌日被検サンプルを添加し、さらに２４時間
培養した。培地を除いた後、細胞をトリス緩衝生理食塩
水（２５ｍＭトリス−塩酸（ｐＨ８．０）、１５０ｍＭ
塩化ナトリウム：以下「ＴＢＳ」という）で２回洗浄
し、抽出用緩衝液（５０ｍＭ トリス−塩酸（ｐＨ８．
０）、１２０ｍＭ 塩化ナトリウム、０．５％ ノニデ
ットＰ−４０、１００ｍＭ フッ化ナトリウム、２００
ｍＭ バナジン酸ナトリウム、６００ｍＭ フッ化メチ
ルフェニルスルフォニル、１０μｇ／ｍｌ ロイペプチ
ン、１０μｇ／ｍｌ アンチパイン、１００μｇ／ｍｌ
ベンザミジン、５０μｇ／ｍｌ アプロチニン、１０
０μｇ／ｍｌ ダイズ・トリプシンインヒビター：試薬
はすべてシグマ社製）１００μｌをプレートに加え、４
℃にて１５〜２０分放置して細胞内タンパク質を抽出し
た。
以下に記載するウエスタンブロット法により調べた。す
なわち、まずヒト肺癌由来細胞株Ａ５４９（アメリカン
・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）Ｎ
ｏ．ＣＣＬ−１８５）を、１０％のウシ胎児血清（サミ
ット社製）を含むＲＰＭＩ１６４０培地（ギブコ−ＢＲ
Ｌ社製）で１×１０5 個／ｍｌとなるように調整し、細
胞培養用６穴プレート（コーニング社製）に３ｍｌずつ
分注した。翌日被検サンプルを添加し、さらに２４時間
培養した。培地を除いた後、細胞をトリス緩衝生理食塩
水（２５ｍＭトリス−塩酸（ｐＨ８．０）、１５０ｍＭ
塩化ナトリウム：以下「ＴＢＳ」という）で２回洗浄
し、抽出用緩衝液（５０ｍＭ トリス−塩酸（ｐＨ８．
０）、１２０ｍＭ 塩化ナトリウム、０．５％ ノニデ
ットＰ−４０、１００ｍＭ フッ化ナトリウム、２００
ｍＭ バナジン酸ナトリウム、６００ｍＭ フッ化メチ
ルフェニルスルフォニル、１０μｇ／ｍｌ ロイペプチ
ン、１０μｇ／ｍｌ アンチパイン、１００μｇ／ｍｌ
ベンザミジン、５０μｇ／ｍｌ アプロチニン、１０
０μｇ／ｍｌ ダイズ・トリプシンインヒビター：試薬
はすべてシグマ社製）１００μｌをプレートに加え、４
℃にて１５〜２０分放置して細胞内タンパク質を抽出し
た。
【００６４】上記のごとくして得られた細胞内タンパク
質抽出液に、電気泳動試料用緩衝液（０．５Ｍ トリス
−塩酸（ｐＨ６．８）、４０％（ｖ／ｖ）グリセロー
ル、８％（ｗ／ｖ）ラウリル硫酸ナトリウム（以下「Ｓ
ＤＳ」という）、０．０５％（ｗ／ｖ）ブロムフェノー
ルブルー、０．４Ｍ ジチオスレイトール）５０μｌを
加え、９５℃で２分間加熱した。この処理液を、ＳＤＳ
ポリアクリルアミドゲル（７．５％プレキャストゲル
（第一化学薬品（株）社製）を使用）で電気泳動した。
分子量マーカーとして着色済β−ガラクトシダーゼ（分
子量約１１５ｋＤａ；シグマ社製）を別のレーンで同時
に電気泳動した。該マーカーのバンドがゲル上端から
６．５ｃｍ移動するまで泳動を行い、該マーカーのバン
ドの位置を中心としてその上下各１．５ｃｍまでの部分
（合計３ｃｍ幅）を泳動方向に対して直角に切り取り、
バッファータンク型転写装置（トランスブロット；バイ
オラッド社製）を用いてブロッティング用緩衝液（２５
ｍＭ トリスヒドロキシメチルアミノメタン、１９０ｍ
Ｍ グリシン、２０％メタノール）中でニトロセルロー
ス膜に転写した（３０Ｖ定電圧、一晩）。この際、緩衝
液の温度を該転写装置に付属の冷却装置を用いて４℃に
保持した。
質抽出液に、電気泳動試料用緩衝液（０．５Ｍ トリス
−塩酸（ｐＨ６．８）、４０％（ｖ／ｖ）グリセロー
ル、８％（ｗ／ｖ）ラウリル硫酸ナトリウム（以下「Ｓ
ＤＳ」という）、０．０５％（ｗ／ｖ）ブロムフェノー
ルブルー、０．４Ｍ ジチオスレイトール）５０μｌを
加え、９５℃で２分間加熱した。この処理液を、ＳＤＳ
ポリアクリルアミドゲル（７．５％プレキャストゲル
（第一化学薬品（株）社製）を使用）で電気泳動した。
分子量マーカーとして着色済β−ガラクトシダーゼ（分
子量約１１５ｋＤａ；シグマ社製）を別のレーンで同時
に電気泳動した。該マーカーのバンドがゲル上端から
６．５ｃｍ移動するまで泳動を行い、該マーカーのバン
ドの位置を中心としてその上下各１．５ｃｍまでの部分
（合計３ｃｍ幅）を泳動方向に対して直角に切り取り、
バッファータンク型転写装置（トランスブロット；バイ
オラッド社製）を用いてブロッティング用緩衝液（２５
ｍＭ トリスヒドロキシメチルアミノメタン、１９０ｍ
Ｍ グリシン、２０％メタノール）中でニトロセルロー
ス膜に転写した（３０Ｖ定電圧、一晩）。この際、緩衝
液の温度を該転写装置に付属の冷却装置を用いて４℃に
保持した。
【００６５】後の操作における抗体の非特異的吸着を防
ぐため、転写終了後のニトロセルロース膜を、ブロッキ
ング溶液（０．１％のＴｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ（以
下「ＴＢＳＴ」という）にスキムミルク（雪印（株）社
製）を５％（ｗ／ｖ）濃度に溶解した溶液）中に１時間
浸した後、ＴＢＳＴで３回洗浄した。次いで、膜をＴＢ
ＳＴで１００倍希釈（終濃度１μｇ／ｍｌ）したモノク
ローナルマウス抗ヒトＲｂ抗体（Ｇ３−２４５：ファー
ミンジェン社製）に接触させ、１時間穏やかに振とうし
た。さらに、ＴＢＳＴで膜を３回洗浄した後、ＴＢＳＴ
で１００００倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウス
イムノグロブリン抗体（アマシャム社製）に接触させ３
０分間穏やかに振とうした。膜をＴＢＳＴで５回洗浄し
た後、ＥＣＬシステム（アマシャム社製）を用いて、膜
上に残存するペルオキシダーゼの触媒反応による化学発
光を開始させた。その後直ちに、この化学発光を通常の
オートラジオグラフィーと同様の方法で検出した。すな
わち、膜をＸ線フィルムに重ねて３０秒から１０分間感
光させ、以下現像、固定した。
ぐため、転写終了後のニトロセルロース膜を、ブロッキ
ング溶液（０．１％のＴｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ（以
下「ＴＢＳＴ」という）にスキムミルク（雪印（株）社
製）を５％（ｗ／ｖ）濃度に溶解した溶液）中に１時間
浸した後、ＴＢＳＴで３回洗浄した。次いで、膜をＴＢ
ＳＴで１００倍希釈（終濃度１μｇ／ｍｌ）したモノク
ローナルマウス抗ヒトＲｂ抗体（Ｇ３−２４５：ファー
ミンジェン社製）に接触させ、１時間穏やかに振とうし
た。さらに、ＴＢＳＴで膜を３回洗浄した後、ＴＢＳＴ
で１００００倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウス
イムノグロブリン抗体（アマシャム社製）に接触させ３
０分間穏やかに振とうした。膜をＴＢＳＴで５回洗浄し
た後、ＥＣＬシステム（アマシャム社製）を用いて、膜
上に残存するペルオキシダーゼの触媒反応による化学発
光を開始させた。その後直ちに、この化学発光を通常の
オートラジオグラフィーと同様の方法で検出した。すな
わち、膜をＸ線フィルムに重ねて３０秒から１０分間感
光させ、以下現像、固定した。
【００６６】非リン酸化型とリン酸化型のＲｂタンパク
質の移動度の違いから、上記の電気泳動条件により、ウ
エスタンブロットの結果における両者のバンドは明瞭に
区別される。すなわち、非リン酸化型Ｒｂタンパク質の
バンドは分子量１１０ｋＤａに相当する位置に検出さ
れ、一方リン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドは分子量１
１２〜１１６ｋＤａに相当する位置に検出される。
質の移動度の違いから、上記の電気泳動条件により、ウ
エスタンブロットの結果における両者のバンドは明瞭に
区別される。すなわち、非リン酸化型Ｒｂタンパク質の
バンドは分子量１１０ｋＤａに相当する位置に検出さ
れ、一方リン酸化型Ｒｂタンパク質のバンドは分子量１
１２〜１１６ｋＤａに相当する位置に検出される。
【００６７】培地中にレブラスタチンを添加しなかった
細胞のサンプルでは、リン酸化型Ｒｂタンパク質のバン
ドのみ検出された。一方、終濃度３μｇ／ｍｌのレブラ
スタチンを添加して２４時間培養した細胞のサンプルで
は、リン酸化型と非リン酸化型のバンドがほぼ同じ濃さ
で検出された。従って、レブラスタチンがＡ５４９細胞
のＲｂタンパク質のリン酸化を阻害していることが示唆
された。
細胞のサンプルでは、リン酸化型Ｒｂタンパク質のバン
ドのみ検出された。一方、終濃度３μｇ／ｍｌのレブラ
スタチンを添加して２４時間培養した細胞のサンプルで
は、リン酸化型と非リン酸化型のバンドがほぼ同じ濃さ
で検出された。従って、レブラスタチンがＡ５４９細胞
のＲｂタンパク質のリン酸化を阻害していることが示唆
された。
【００６８】試験例２． チミジン取り込み阻害活性 Ａ５４９細胞を、被検サンプルを含む培地（１０％のウ
シ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０）中で２４時間培養
した後、比活性０．５μＣｉ／２５μｌのトリチウム標
識チミジン（以下「 3Ｈ−ＴｄＲ」という）／リン酸緩
衝生理食塩液（８．０ｇ／リットル 塩化ナトリウム、
０．２ｇ／リットル 塩化カリウム、２．９ｇ／リット
ル リン酸二ナトリウム・１２水和物、０．２ｇ／リッ
トル リン酸一カリウム；以下「ＰＢＳ」という）を添
加し、３７℃、２時間培養することにより、細胞をパル
スラベルした。インキュベーション終了後、プレートご
と冷凍庫に入れて凍結させ、次いでプレートを室温に戻
した。セルハーベスター（スキャトロン社製）を用いて
グラスフィルター上に細胞を集め、ベータプレートシス
テム（ファルマシア社製）を用いて、取り込まれた 3Ｈ
−ＴｄＲの量を測定した。
シ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０）中で２４時間培養
した後、比活性０．５μＣｉ／２５μｌのトリチウム標
識チミジン（以下「 3Ｈ−ＴｄＲ」という）／リン酸緩
衝生理食塩液（８．０ｇ／リットル 塩化ナトリウム、
０．２ｇ／リットル 塩化カリウム、２．９ｇ／リット
ル リン酸二ナトリウム・１２水和物、０．２ｇ／リッ
トル リン酸一カリウム；以下「ＰＢＳ」という）を添
加し、３７℃、２時間培養することにより、細胞をパル
スラベルした。インキュベーション終了後、プレートご
と冷凍庫に入れて凍結させ、次いでプレートを室温に戻
した。セルハーベスター（スキャトロン社製）を用いて
グラスフィルター上に細胞を集め、ベータプレートシス
テム（ファルマシア社製）を用いて、取り込まれた 3Ｈ
−ＴｄＲの量を測定した。
【００６９】その結果、レブラスタチンがＡ５４９細胞
のチミジン取り込みを５０％阻害する濃度（ＩＣ50）は
１．５μｇ／ｍｌであったことから、レブラスタチンが
低濃度でＤＮＡ複製を阻害することが示された。
のチミジン取り込みを５０％阻害する濃度（ＩＣ50）は
１．５μｇ／ｍｌであったことから、レブラスタチンが
低濃度でＤＮＡ複製を阻害することが示された。
【００７０】試験例３． フローサイトメトリーによる
細胞周期阻害活性の検出 対数増殖期にあるＡ５４９細胞を、１０％のウシ胎児血
清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０5 個／ｍｌに
調整し、６０ｍｍφディッシュ（底面積２１ｃｍ2 ）に
撒き、翌日被検サンプルを添加後、２４時間培養した。
０．０５％トリプシン−０．０２％エチレンジアミン四
酢酸溶液（シグマ社製）で細胞を単細胞化し、ＰＢＳで
２回洗浄した。次いで、５０％メタノール／ＰＢＳ中に
細胞を浮遊させ、−２０℃に１５分間以上置くことによ
り細胞を固定した。固定した細胞をＰＢＳで２回洗浄し
た後、１ｍｇ／ｍｌのリボヌクレアーゼＡ／ＰＢＳを１
００μｌ加え、３７℃で６０分間保温した。２０μｇ／
ｍｌのヨウ化プロピジウム（シグマ社製）／ＰＢＳを１
００μｌ加え、室温にて１０分間以上インキュベートす
ることにより、ＤＮＡをヨウ化プロピジウムで標識した
後、ＰＢＳを５０μｌ添加し、解析用試料とした。該試
料をフローサイトメーター（サイトエース１８０；日本
分光（株）社製）で解析し、蛍光強度（横軸）による細
胞数（縦軸）の度数分布を取得した。フローサイトメー
ターの測定条件設定は以下の通りであった。
細胞周期阻害活性の検出 対数増殖期にあるＡ５４９細胞を、１０％のウシ胎児血
清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０5 個／ｍｌに
調整し、６０ｍｍφディッシュ（底面積２１ｃｍ2 ）に
撒き、翌日被検サンプルを添加後、２４時間培養した。
０．０５％トリプシン−０．０２％エチレンジアミン四
酢酸溶液（シグマ社製）で細胞を単細胞化し、ＰＢＳで
２回洗浄した。次いで、５０％メタノール／ＰＢＳ中に
細胞を浮遊させ、−２０℃に１５分間以上置くことによ
り細胞を固定した。固定した細胞をＰＢＳで２回洗浄し
た後、１ｍｇ／ｍｌのリボヌクレアーゼＡ／ＰＢＳを１
００μｌ加え、３７℃で６０分間保温した。２０μｇ／
ｍｌのヨウ化プロピジウム（シグマ社製）／ＰＢＳを１
００μｌ加え、室温にて１０分間以上インキュベートす
ることにより、ＤＮＡをヨウ化プロピジウムで標識した
後、ＰＢＳを５０μｌ添加し、解析用試料とした。該試
料をフローサイトメーター（サイトエース１８０；日本
分光（株）社製）で解析し、蛍光強度（横軸）による細
胞数（縦軸）の度数分布を取得した。フローサイトメー
ターの測定条件設定は以下の通りであった。
【００７１】 励起波長： ４８８ｎｍ 検出波長： ６００±２０ｎｍ 前方散乱ゲイン： ２ 側方散乱ゲイン： １８０ 蛍光強度ゲイン： ３９０ 上記方法により取得される度数分布は、蛍光強度の大き
さにより以下の表４に示す３つの領域に分けることがで
きる。
さにより以下の表４に示す３つの領域に分けることがで
きる。
【００７２】
【表４】 解析の結果、終濃度１０μｇ／ｍｌのレブラスタチンを
含む培地で培養した細胞から調製した試料では、上記の
Ｇ１期に相当する領域の度数（細胞数）の合計がレブラ
スタチン非添加細胞と比較して有意に増加していた。従
って、レブラスタチンがＡ５４９細胞のＧ１期からＳ期
への移行を阻害することが示された。
含む培地で培養した細胞から調製した試料では、上記の
Ｇ１期に相当する領域の度数（細胞数）の合計がレブラ
スタチン非添加細胞と比較して有意に増加していた。従
って、レブラスタチンがＡ５４９細胞のＧ１期からＳ期
への移行を阻害することが示された。
【００７３】以上のごとく、本発明の化合物レブラスタ
チンは、低濃度でＲｂ蛋白のリン酸化阻害作用を示す新
規細胞周期阻害剤であり、制癌剤として有用である。
チンは、低濃度でＲｂ蛋白のリン酸化阻害作用を示す新
規細胞周期阻害剤であり、制癌剤として有用である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:55） (Ｃ１２Ｐ 17/10 Ｃ１２Ｒ 1:55） (72)発明者 蔵方 慎一 東京都品川区広町１丁目２番58号 三共株 式会社内 (72)発明者 榎田 竜三 茨城県つくば市御幸が丘33 三共株式会社 内
Claims (8)
- 【請求項１】 下記の式（Ｉ）： 【化１】 で表わされる化合物レブラスタチンまたはその塩。
- 【請求項２】 下記の物理化学的性状； １）物質の性状： 白色粉末状物質 ２）融点： ２２２〜２３１℃ ３）溶解性： メタノール、ジメチルスルホキシドに可
溶、ノルマルヘキサン、クロロホルム、水に不溶 ４）分子式： Ｃ29Ｈ44Ｎ2 Ｏ8 ５）分子量： ５４８（ＦＡＢマススペクトル法により
測定） ６）高分解能ＦＡＢマススペクトル法により測定した精
密質量［Ｍ+ ］は以下の通りである： 実測値： ５４８．３０５５ 計算値： ５４８．３０９９ ７）紫外部吸収スペクトル： メタノール中で測定した
紫外部吸収スペクトルは、次に示す極大吸収を示す： 225 nm (ε 16100, sh.), 250 nm (ε 6900), 285 nm
(ε 5800) ８）赤外部吸収スペクトル： 臭化カリウム（ＫＢｒ）
錠剤法で測定した赤外部吸収スペクトルは、以下に示す
極大吸収 (λmax ) を示す： 3355, 2930, 1712, 1660, 1605, 1500, 1380, 1310, 10
90, 1040,870 cm-1 ９） 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホキ
シド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用いて
測定した、 1Ｈ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示す
通りである： 9.40 (1H, br. s), 9.26 (1H, s), 6.88 (1H, br. s),
6.51 (2H, br. s), 6.30 (1H, br. s), 5.87 (1H, br.
t),5.31 (1H, d, J = 9.8 Hz), 4.87 (1H, d, J = 7.5
Hz),4.37 (1H, br. d, J = 4.9 Hz), 3.63 (3H, s), 3.
33 (3H, s),3.28 (1H, m), 3.23 (3H, s), 3.03 (1H,
m),2.58 (1H, dd, J = 6.3, 13.4 Hz), 2.38 (1H, m),
2.35 (1H, m),2.20 (1H, m), 2.12 (1H, m), 1.73 (1H,
m), 1.68 (3H, s),1.55 (1H, m), 1.44 (3H, s), 1.35
(1H, m), 1.29 (1H, m),1.17 (1H, m), 0.91 (3H, d,
J = 6.5 Hz),0.81 (3H, d, J = 6.5 Hz) ppm. １０）13Ｃ−核磁気共鳴スペクトル： ジメチルスルホ
キシド−ｄ６中、内部基準にテトラメチルシランを用い
て測定した、13Ｃ−核磁気共鳴スペクトルは、以下に示
す通りである： 170.1 (s), 156.1 (s), 150.0 (s), 142.5 (s), 134.6
(d),134.5 (s), 133.4 (d), 133.4 (s), 132.2 (s), 12
9.7 (s),114.6 (d), 107.2 (d), 81.1 (d), 80.6 (d),
79.6 (d), 73.8 (d),59.7 (q), 58.2 (q), 56.4 (q), 3
5.8 (t), 34.4 (t), 33.6 (d),31.1 (d), 29.8 (t), 2
3.6 (t), 19.8 (q), 15.9 (q), 13.0 (q),11.6 (q) pp
m. １１）高速液体クロマトグラフィー： カラム： センシューパックＯＤＳ−Ｈ−２１５１、６
φ×１５０ｍｍ（センシュー科学（株）社製） 溶媒： ２５％アセトニトリル−６７ｍＭリン酸緩衝液
（ｐＨ６．８） 流速： １．５ｍｌ／分 検出： ＵＶ２１０ｎｍ 保持時間： １３．１分； を有する化合物レブラスタチンまたはその塩。 - 【請求項３】 ストレプトマイセス属に属するレブラス
タチン生産菌を培養し、その培養物よりレブラスタチン
を採取することを特徴とする、レブラスタチンの製造
法。 - 【請求項４】 ストレプトマイセス属に属するレブラス
タチン生産菌がストレプトマイセス・ハイグロスコピカ
ス・サブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces
hygroscopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６
１９９５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、請求項
３記載の製造法。 - 【請求項５】 ストレプトマイセス属に属し、請求項１
または２記載の化合物を生産することを特徴とする微生
物。 - 【請求項６】 ストレプトマイセス・ハイグロスコピカ
ス・サブエスピー・ハイグロスコピカス（Streptomyces
hygroscopicus subsp. hygroscopicus ）ＳＡＮＫ ６
１９９５（ＦＥＲＭ ＢＰ−５１４０）である、請求項
５記載の微生物。 - 【請求項７】 請求項１または２記載の化合物、もしく
はそれらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる
医薬。 - 【請求項８】 請求項１または２記載の化合物、もしく
はそれらの薬理学的に許容される塩を含むことからなる
制癌剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP30603596A JPH09286779A (ja) | 1996-02-22 | 1996-11-18 | 新規化合物レブラスタチン |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8-34649 | 1996-02-22 | ||
| JP3464996 | 1996-02-22 | ||
| JP30603596A JPH09286779A (ja) | 1996-02-22 | 1996-11-18 | 新規化合物レブラスタチン |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09286779A true JPH09286779A (ja) | 1997-11-04 |
Family
ID=26373474
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP30603596A Pending JPH09286779A (ja) | 1996-02-22 | 1996-11-18 | 新規化合物レブラスタチン |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH09286779A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005061461A1 (ja) * | 2003-12-24 | 2005-07-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | ヒートショックプロテイン90（hsp90）ファミリー蛋白質阻害剤 |
| WO2007001049A1 (ja) | 2005-06-29 | 2007-01-04 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | ベンゼノイドアンサマイシン誘導体 |
-
1996
- 1996-11-18 JP JP30603596A patent/JPH09286779A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005061461A1 (ja) * | 2003-12-24 | 2005-07-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | ヒートショックプロテイン90（hsp90）ファミリー蛋白質阻害剤 |
| WO2007001049A1 (ja) | 2005-06-29 | 2007-01-04 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | ベンゼノイドアンサマイシン誘導体 |
| US7776849B2 (en) | 2005-06-29 | 2010-08-17 | Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. | Benzenoid ansamycin derivative |
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