JPH0680A - フラボバクテリウム属に属する新規微生物 - Google Patents
フラボバクテリウム属に属する新規微生物Info
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/20—Flavobacterium
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 炭化水素分解性、亜硫酸耐性、食塩耐性、有
機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフラボバクテリウム
(Flavobacterium)属に属する新規微生物。フラボバク
テリウム(Flavobacterium)属DS−711株微工研菌
寄第12449号である前記新規微生物。 【効果】 本発明の新規微生物は、炭化水素に対して優
れた分解作用を示す。また、一般的に微生物に対して有
毒である亜硫酸や、食塩、さらにヘキサンを含めた各種
の有機溶媒に対しても耐性を兼ね備えているので、海上
等に流出したケロシンや重油等の汚染石油製品を有効に
分解することができる。さらに、海上での石油製品の分
解に限らず、それ以外の種々の環境下において、種々の
汚染有機溶媒を有効に分解することができる。
機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフラボバクテリウム
(Flavobacterium)属に属する新規微生物。フラボバク
テリウム(Flavobacterium)属DS−711株微工研菌
寄第12449号である前記新規微生物。 【効果】 本発明の新規微生物は、炭化水素に対して優
れた分解作用を示す。また、一般的に微生物に対して有
毒である亜硫酸や、食塩、さらにヘキサンを含めた各種
の有機溶媒に対しても耐性を兼ね備えているので、海上
等に流出したケロシンや重油等の汚染石油製品を有効に
分解することができる。さらに、海上での石油製品の分
解に限らず、それ以外の種々の環境下において、種々の
汚染有機溶媒を有効に分解することができる。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、フラボバクテリウム
(Flavobacterium)属に属する新規微生物に関する。さ
らに詳しく言うと、本発明は、炭化水素分解性、亜硫酸
耐性、食塩耐性、有機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフ
ラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属する新規微
生物に関する。
(Flavobacterium)属に属する新規微生物に関する。さ
らに詳しく言うと、本発明は、炭化水素分解性、亜硫酸
耐性、食塩耐性、有機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフ
ラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属する新規微
生物に関する。
【0002】
【従来の技術】近年、石油による海上汚染が頻繁に起こ
り、問題となっている。このような問題を解決する手段
として、海上に流出した汚染石油に含まれる全ての炭化
水素を効率良くかつ容易に分解する微生物が望まれてい
るが、このような能力を十分に備えた微生物は未だ発見
されていない。石油に含まれる単一の炭化水素を資化、
分解する微生物としては、これまでに、バチルス(Baci
llus) 属、アシネトバクター(Acinetobacter) 属、シュ
ードモナス(Pseudomonas) 属、モラキセラ(Moraxella)
属、アルカヂア(Arcadia) 属またはキャンヂダ(Candid
a) 属に属する数種類の微生物が土壌や海水から単離さ
れているが、これらは海上での汚染石油等の分解に必要
とされる食塩耐性、有機溶媒耐性等の耐性を備えておら
ず、満足できるものではない。
り、問題となっている。このような問題を解決する手段
として、海上に流出した汚染石油に含まれる全ての炭化
水素を効率良くかつ容易に分解する微生物が望まれてい
るが、このような能力を十分に備えた微生物は未だ発見
されていない。石油に含まれる単一の炭化水素を資化、
分解する微生物としては、これまでに、バチルス(Baci
llus) 属、アシネトバクター(Acinetobacter) 属、シュ
ードモナス(Pseudomonas) 属、モラキセラ(Moraxella)
属、アルカヂア(Arcadia) 属またはキャンヂダ(Candid
a) 属に属する数種類の微生物が土壌や海水から単離さ
れているが、これらは海上での汚染石油等の分解に必要
とされる食塩耐性、有機溶媒耐性等の耐性を備えておら
ず、満足できるものではない。
【0003】海上に流出した汚染石油等を分解するため
には、ケロシン、重油等の石油製品を効率よく分解でき
ることが要求されるとともに、これらの製品に含まれて
いる有機溶媒の一つであるヘキサンの毒性に対する耐
性、海水中に高濃度で含まれる食塩に対する耐性、さら
に、圧力に対する耐性も要求される。このような耐性を
すべて備えた微生物は、これまでに発見されていない。
には、ケロシン、重油等の石油製品を効率よく分解でき
ることが要求されるとともに、これらの製品に含まれて
いる有機溶媒の一つであるヘキサンの毒性に対する耐
性、海水中に高濃度で含まれる食塩に対する耐性、さら
に、圧力に対する耐性も要求される。このような耐性を
すべて備えた微生物は、これまでに発見されていない。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の目的
は、炭化水素分解性、食塩耐性、有機溶媒耐性等に優れ
た微生物を提供することにある。
は、炭化水素分解性、食塩耐性、有機溶媒耐性等に優れ
た微生物を提供することにある。
【0005】
【課題を解決するための手段】海洋科学技術センターで
は、有人潜水艇「しんかい2000」や「しんかい65
00」を開発し、これにより最大6500メートルの深
海の泥を採取できるようになった。本願発明者らは、こ
の有人潜水艇によって採取された深海泥の中から、上記
条件を兼ね備えた微生物を見出すべく鋭意研究を重ねた
結果、フラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属す
る新規微生物が上記条件を兼ね備えていることを見出
し、その発見に基づいて本発明を完成させた。
は、有人潜水艇「しんかい2000」や「しんかい65
00」を開発し、これにより最大6500メートルの深
海の泥を採取できるようになった。本願発明者らは、こ
の有人潜水艇によって採取された深海泥の中から、上記
条件を兼ね備えた微生物を見出すべく鋭意研究を重ねた
結果、フラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属す
る新規微生物が上記条件を兼ね備えていることを見出
し、その発見に基づいて本発明を完成させた。
【0006】即ち、本発明は、炭化水素分解性、亜硫酸
耐性、食塩耐性、有機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフ
ラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属する新規微
生物を提供するものである。この新規微生物のひとつと
して、フラボバクテリウム(Flavobacterium)属DS−
711株が挙げられる。このフラボバクテリウム(Flav
obacterium)属DS−711株の単離は下記の方法によ
って行う。
耐性、食塩耐性、有機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフ
ラボバクテリウム(Flavobacterium)属に属する新規微
生物を提供するものである。この新規微生物のひとつと
して、フラボバクテリウム(Flavobacterium)属DS−
711株が挙げられる。このフラボバクテリウム(Flav
obacterium)属DS−711株の単離は下記の方法によ
って行う。
【0007】即ち、予め深海海底土を2%濃度のヘキサ
ンで処理し、さらに処理後、50%のケロシンで処理す
る。ケロシン相に移行した親油性の細胞をプロテオース
ペプトンNo.3 0.1%、フィトン0.05%、塩化カル
シウム0.1%、亜硫酸ナトリウム0.005%、塩化マグネ
シウム0.01%からなる培地(Moriya培地と命名し、以下
「M−培地」と記す。)を基準に、さらにケロシン0.1
%、食塩1モル及び寒天1.5 %を添加した寒天培地で培
養し、コロニーの数株を得る。これらの株についてさら
にケロシン1.0%及び食塩1モルを含むM−培地で培養
し、培養後の細胞の増殖が最も優れたものを選択した。
これが、本発明の新規微生物であるフラボバクテリウム
(Flavobacterium)属DS−711株である。このDS
−711株は、駿河湾の深さ1945メートルの海底土
より単離された微生物であり、工業技術院微生物工業技
術研究所に平成3年8月27日付で寄託され、その微生
物受託番号は、微工研菌寄第12449号(P−12449)(
以下、「DS−711株」と記す。) である。
ンで処理し、さらに処理後、50%のケロシンで処理す
る。ケロシン相に移行した親油性の細胞をプロテオース
ペプトンNo.3 0.1%、フィトン0.05%、塩化カル
シウム0.1%、亜硫酸ナトリウム0.005%、塩化マグネ
シウム0.01%からなる培地(Moriya培地と命名し、以下
「M−培地」と記す。)を基準に、さらにケロシン0.1
%、食塩1モル及び寒天1.5 %を添加した寒天培地で培
養し、コロニーの数株を得る。これらの株についてさら
にケロシン1.0%及び食塩1モルを含むM−培地で培養
し、培養後の細胞の増殖が最も優れたものを選択した。
これが、本発明の新規微生物であるフラボバクテリウム
(Flavobacterium)属DS−711株である。このDS
−711株は、駿河湾の深さ1945メートルの海底土
より単離された微生物であり、工業技術院微生物工業技
術研究所に平成3年8月27日付で寄託され、その微生
物受託番号は、微工研菌寄第12449号(P−12449)(
以下、「DS−711株」と記す。) である。
【0008】次に本発明の微生物の菌学的性質、その培
養法について詳細に説明する。本発明の微生物は、上記
DS−711株の他、その自然的及び人工的変異株をも
含むものである。DS−711株は、次の菌学的性質を
有する。 (1)形態 大きさが(0.5〜0.7)×(1.0〜2.0)μmの短桿菌
である。胞子は形成しない。運動性が有り、周べん毛を
有する。グラム染色は陰性である。 (2)生理学的性質 硝酸塩の還元 :陰性 デンプンの加水分解 :陰性 色素の生成 :有り(コロニー:オレンジ−
ピンク) オキシダーゼ :陽性 カタラーゼ :陽性 生育範囲 :pH5.0〜9.5(最適7.0〜
8.0) 温度12〜42℃(最適35〜37℃) 酸素要求性 :絶対好気性 O−Fテスト :酸化 糖類からの酸及び :無し ガスの生成 (3)その他の性質 塩化ナトリム耐性 :3モル濃度の塩化ナトリウム
で生育 DNAのGC含量 :67.4 mol% フォスファターゼ :陽性 ゼラチン加水分解 :陰性 カゼイン加水分解 :陽性 ツイーン20加水分解 :陽性 ツイーン80加水分解 :陽性 以上の菌学的性質からをバージーのマニュアル第8巻の
分類方法に従って、フラボバクテリウム(Flavobacteri
um)属に属する新規の菌株であると判断し、フラボバク
テリウム(Flavobacterium)属DS−711株と命名し
た。
養法について詳細に説明する。本発明の微生物は、上記
DS−711株の他、その自然的及び人工的変異株をも
含むものである。DS−711株は、次の菌学的性質を
有する。 (1)形態 大きさが(0.5〜0.7)×(1.0〜2.0)μmの短桿菌
である。胞子は形成しない。運動性が有り、周べん毛を
有する。グラム染色は陰性である。 (2)生理学的性質 硝酸塩の還元 :陰性 デンプンの加水分解 :陰性 色素の生成 :有り(コロニー:オレンジ−
ピンク) オキシダーゼ :陽性 カタラーゼ :陽性 生育範囲 :pH5.0〜9.5(最適7.0〜
8.0) 温度12〜42℃(最適35〜37℃) 酸素要求性 :絶対好気性 O−Fテスト :酸化 糖類からの酸及び :無し ガスの生成 (3)その他の性質 塩化ナトリム耐性 :3モル濃度の塩化ナトリウム
で生育 DNAのGC含量 :67.4 mol% フォスファターゼ :陽性 ゼラチン加水分解 :陰性 カゼイン加水分解 :陽性 ツイーン20加水分解 :陽性 ツイーン80加水分解 :陽性 以上の菌学的性質からをバージーのマニュアル第8巻の
分類方法に従って、フラボバクテリウム(Flavobacteri
um)属に属する新規の菌株であると判断し、フラボバク
テリウム(Flavobacterium)属DS−711株と命名し
た。
【0009】
【実施例】以下、実施例により本発明をさらに詳しく説
明する。 実施例1 DS−711株の採取工程 深海海底土から採取した海水懸濁堆積土の5mLに10
0μLのn−ヘキサンを添加し、4℃の温度で1週間、
穏やかに振盪を行った。振盪後、さらに5mLのケロシ
ンを重層し、再び室温で、2日間激しく振盪培養した。
培養後、培養物を30分間静置し、ケロシン層と水層を
分離し、ケロシン層の50μLを食塩1モル及び寒天1.
5 %を含むM−寒天培地に塗沫し、20〜30℃の温度
で5日間静置培養を行った。培養後、生育した多くのコ
ロニーを釣菌し、単離後ケロシン1%及び食塩1モルを
含むM−培地に各々接種し、30℃で2日間振盪培養を
行った。これらの操作の後、多くのコロニーの中で最も
よい増殖を示したのが、本発明のDS−711株であっ
た。 実施例2 DS−711株によるケロシン分解 菌体の前培養:大型試験管に食塩1モルを含むM−培地
10mLを入れ、シリコン栓を付し、滅菌した。滅菌
後、DS−711株の菌株を保存スラントから一白金耳
かきとり、培地に接種し、37℃で一昼夜激しく振盪培
養した。
明する。 実施例1 DS−711株の採取工程 深海海底土から採取した海水懸濁堆積土の5mLに10
0μLのn−ヘキサンを添加し、4℃の温度で1週間、
穏やかに振盪を行った。振盪後、さらに5mLのケロシ
ンを重層し、再び室温で、2日間激しく振盪培養した。
培養後、培養物を30分間静置し、ケロシン層と水層を
分離し、ケロシン層の50μLを食塩1モル及び寒天1.
5 %を含むM−寒天培地に塗沫し、20〜30℃の温度
で5日間静置培養を行った。培養後、生育した多くのコ
ロニーを釣菌し、単離後ケロシン1%及び食塩1モルを
含むM−培地に各々接種し、30℃で2日間振盪培養を
行った。これらの操作の後、多くのコロニーの中で最も
よい増殖を示したのが、本発明のDS−711株であっ
た。 実施例2 DS−711株によるケロシン分解 菌体の前培養:大型試験管に食塩1モルを含むM−培地
10mLを入れ、シリコン栓を付し、滅菌した。滅菌
後、DS−711株の菌株を保存スラントから一白金耳
かきとり、培地に接種し、37℃で一昼夜激しく振盪培
養した。
【0010】ケロシン分解実験:500mL容のひだ付
三角フラスコに食塩1モルを含むM−培地100mLを
入れ、滅菌後、上記前培養物懸濁液1mLを接種した。
接種後、10mLのケロシンを重層し、35℃で1週
間、振盪培養した。培養後、遠心分離を行い、菌体を除
去し、さらに上澄を分液漏斗に移し、残余のケロシン相
と培地の水相とに分け、各々に0.1gのオクタコサンを
含むベンゼン50mLを加え、炭化水素を抽出した。抽
出後、ベンゼンに無水硫酸ナトリウムを加え、脱水後、
濃縮し、ガスクロマトグラフィで炭素数6から16まで
の個々の直鎖炭化水素を分析した。結果を下記表1に示
す。
三角フラスコに食塩1モルを含むM−培地100mLを
入れ、滅菌後、上記前培養物懸濁液1mLを接種した。
接種後、10mLのケロシンを重層し、35℃で1週
間、振盪培養した。培養後、遠心分離を行い、菌体を除
去し、さらに上澄を分液漏斗に移し、残余のケロシン相
と培地の水相とに分け、各々に0.1gのオクタコサンを
含むベンゼン50mLを加え、炭化水素を抽出した。抽
出後、ベンゼンに無水硫酸ナトリウムを加え、脱水後、
濃縮し、ガスクロマトグラフィで炭素数6から16まで
の個々の直鎖炭化水素を分析した。結果を下記表1に示
す。
【0011】ガスクロマトグラフィの条件:ガスクロマ
トグラフィ: Shimadzu GC −14A 、検出器:Single−fl
ame ionization detecter 、カラム:ガラスカラム(2.
1m×3.2m/m) 、担体:silicone 10 % OV −101 、60/8
0 メッシュ クロモソーブWAW−DMCS、キャリヤーガ
ス:N2 (40〜50ml/ 分) 、温度:35〜300 ℃(プログ
ラム速度10℃/分) 表1 ケロシンに含まれる炭化水素の分解 炭化水素量 対照区炭化水素 実験区炭化水素 (菌体無接種) (mg) ケロシン相 水相 ケロシン相 水相 n−ヘキサン 0.8 不検出 不検出 不検出 不検出 n−ヘプタン 56 34 不検出 不検出 0.02 n−オクタン 72 39 不検出 7 不検出 n−ノナン 236 190 不検出 34 不検出 n−デカン 312 245 不検出 70 不検出 n−ウンデカン 320 270 0.04 85 1.4 n−ドデカン 704 652 0.08 150 1.7 n−トリデカン 596 501 0.09 134 2.4 n−テトラデカン 364 332 0.09 78 1.7 n−ペンタデカン 212 188 0.07 12 1.3 n−ヘキサデカン 48 39 0.02 7 0.6 上記供試ケロシンに含まれる炭素数6から16までの炭
化水素の全濃度は、ケロシン当たり29.2容量%に相当
する。 実施例3 DS−711株による5%n−ヘキサン添加ケロシンに
含まれる炭化水素の分解 菌体の前培養:実施例2と同じ方法で行った。
トグラフィ: Shimadzu GC −14A 、検出器:Single−fl
ame ionization detecter 、カラム:ガラスカラム(2.
1m×3.2m/m) 、担体:silicone 10 % OV −101 、60/8
0 メッシュ クロモソーブWAW−DMCS、キャリヤーガ
ス:N2 (40〜50ml/ 分) 、温度:35〜300 ℃(プログ
ラム速度10℃/分) 表1 ケロシンに含まれる炭化水素の分解 炭化水素量 対照区炭化水素 実験区炭化水素 (菌体無接種) (mg) ケロシン相 水相 ケロシン相 水相 n−ヘキサン 0.8 不検出 不検出 不検出 不検出 n−ヘプタン 56 34 不検出 不検出 0.02 n−オクタン 72 39 不検出 7 不検出 n−ノナン 236 190 不検出 34 不検出 n−デカン 312 245 不検出 70 不検出 n−ウンデカン 320 270 0.04 85 1.4 n−ドデカン 704 652 0.08 150 1.7 n−トリデカン 596 501 0.09 134 2.4 n−テトラデカン 364 332 0.09 78 1.7 n−ペンタデカン 212 188 0.07 12 1.3 n−ヘキサデカン 48 39 0.02 7 0.6 上記供試ケロシンに含まれる炭素数6から16までの炭
化水素の全濃度は、ケロシン当たり29.2容量%に相当
する。 実施例3 DS−711株による5%n−ヘキサン添加ケロシンに
含まれる炭化水素の分解 菌体の前培養:実施例2と同じ方法で行った。
【0012】ケロシン分解試験:500mL容のひだ付
き三角フラスコに食塩1モルを含むM−培地100mL
を入れ、滅菌後、DS−711株の前記培養物懸濁液1
mLを接種した。接種後、予めヘキサン濃度が5重量%
となるように調製したケロシンを10mL重層し、以下
実施例2と同様の条件で実験を行った。結果を表2に示
す。
き三角フラスコに食塩1モルを含むM−培地100mL
を入れ、滅菌後、DS−711株の前記培養物懸濁液1
mLを接種した。接種後、予めヘキサン濃度が5重量%
となるように調製したケロシンを10mL重層し、以下
実施例2と同様の条件で実験を行った。結果を表2に示
す。
【0013】 表2 ケロシンに含まれる炭化水素の分解 炭化水素量 対照区炭化水素 実験区炭化水素 (菌体無接種) (mg) ケロシン相 水相 ケロシン相 水相 n−ヘキサン 500.8 224 不検出 210 0.25 n−ヘプタン 56 34 不検出 不検出 0.02 n−オクタン 72 39 不検出 11 不検出 n−ノナン 236 190 不検出 55 不検出 n−デカン 312 245 不検出 85 不検出 n−ウンデカン 320 270 0.04 96 0.05 n−ドデカン 704 652 0.08 167 0.09 n−トリデカン 596 501 0.09 100 1.7 n−テトラデカン 364 332 0.09 45 1.5 n−ペンタデカン 212 188 0.07 16 2.3 n−ヘキサデカン 48 39 0.02 9 0.9 実施例4 DS−711株によるの重油分解 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
【0014】重油分解試験:500mL容ひだ付き三角
フラスコに食塩1モルを含むM−培地を100mL入
れ、滅菌後、前記培養物懸濁液を1mL接種し、さらに
5mLのC−重油(出光石油社製)を重層し、28℃の
温度で2週間緩やかに攪拌培養した。培養後、遠心分離
を行い、菌体を除去し、上澄を分液漏斗に移し、ヘキサ
ン100mLを加え、炭化水素を抽出し、抽出液を硫酸
マグネシウムで脱水後、ケイ酸カラムクロマトグラフィ
(ケイ酸/セライト=9/1、20g、カラム25mm×10
0mm 、溶出溶媒n−ヘキサン150mL)によって炭化水素を
溶出した。溶出液を一定量となるまでロータリーエバポ
レーターで減圧濃縮し、炭素数9から16の個々の直鎖
炭化水素をガスクロマトグラフィで分析した。結果を下
記表3に示す。
フラスコに食塩1モルを含むM−培地を100mL入
れ、滅菌後、前記培養物懸濁液を1mL接種し、さらに
5mLのC−重油(出光石油社製)を重層し、28℃の
温度で2週間緩やかに攪拌培養した。培養後、遠心分離
を行い、菌体を除去し、上澄を分液漏斗に移し、ヘキサ
ン100mLを加え、炭化水素を抽出し、抽出液を硫酸
マグネシウムで脱水後、ケイ酸カラムクロマトグラフィ
(ケイ酸/セライト=9/1、20g、カラム25mm×10
0mm 、溶出溶媒n−ヘキサン150mL)によって炭化水素を
溶出した。溶出液を一定量となるまでロータリーエバポ
レーターで減圧濃縮し、炭素数9から16の個々の直鎖
炭化水素をガスクロマトグラフィで分析した。結果を下
記表3に示す。
【0015】 表3 重油に含まれる炭化水素の分解 炭化水素量 対照区炭化水素 実験区炭化水素 (mg) (菌体無接種) n−ノナン 15 11 0.7 n−デカン 21 16 0.8 n−ウンデカン 25 22 1.1 n−ドデカン 45 39 2.6 n−トリデカン 49 41 2.4 n−テトラデカン 40 36 2.2 n−ペンタデカン 35 29 1.9 n−ヘキサデカン 29 22 1.2 ヘキサン、ヘプタン、オクタンについては測定せず。 実施例5 DS−711株の食塩耐性試験 前培養:大型試験管にM−培地を10mL入れ、DS−
711株の保存スラントから菌体を一白金耳かきとり、
接種した。接種後、37℃の温度で一昼夜、激しく振盪
培養を行った。
711株の保存スラントから菌体を一白金耳かきとり、
接種した。接種後、37℃の温度で一昼夜、激しく振盪
培養を行った。
【0016】食塩耐性試験:大型試験管に食塩濃度が下
記の表4に示すように0〜3.5モルの濃度になるように
調整したM−培地の10mLを入れ、滅菌後、上記前培
養物懸濁液を0.025mL接種し、37℃の温度で5日
間激しく攪拌培養した。培養後、菌体の増殖を波長66
0nmによる吸光度(O.D660) で測定した。結果を下記
表4に示す。
記の表4に示すように0〜3.5モルの濃度になるように
調整したM−培地の10mLを入れ、滅菌後、上記前培
養物懸濁液を0.025mL接種し、37℃の温度で5日
間激しく攪拌培養した。培養後、菌体の増殖を波長66
0nmによる吸光度(O.D660) で測定した。結果を下記
表4に示す。
【0017】 表4 食塩濃度と菌体の増殖 食塩濃度(モル)0 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 3.5 増殖(O.D660) 1.22 1.34 1.22 1.02 1.00 0.99 0.02 上記の結果から、DS−711株は、3.0 モルの食塩濃
度においても増殖できることが理解される。 実施例6 DS−711株の有機溶媒耐性試験 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
度においても増殖できることが理解される。 実施例6 DS−711株の有機溶媒耐性試験 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
【0018】有機溶媒耐性試験:大型試験管に食塩1モ
ルを含むM−培地を5mL加え、滅菌した。滅菌後、上
記前培養物懸濁液0.025mLを接種し、さらに下記表5に
示す濃度となるように種々の有機溶媒を培地に重層し
た。重層後、28℃の温度で5日間、激しく振盪し、培養
を行った。培養後、30分間静置し、有機溶媒の層と培
地の層を分離させた。培地の層の0.1mLを0.9mL の生理
的食塩水に加え、10倍に希釈し、得られた希釈液をさら
に、同じ操作で10倍ずつ適宜希釈していき10倍から106
倍の希釈液を調製した。この各希釈液の0.1mL を食塩1
モル及び寒天1.5%を含むM−寒天培地に塗沫し、37
℃の温度で2日間培養し、培養後形成するコロニーの数
を測定し、希釈倍率を乗じて、培養液中の生菌数を計算
し、生菌数濃度を培地1mLあたりの細胞数(cells/m
L) として求めた。結果を下記表5に示す。
ルを含むM−培地を5mL加え、滅菌した。滅菌後、上
記前培養物懸濁液0.025mLを接種し、さらに下記表5に
示す濃度となるように種々の有機溶媒を培地に重層し
た。重層後、28℃の温度で5日間、激しく振盪し、培養
を行った。培養後、30分間静置し、有機溶媒の層と培
地の層を分離させた。培地の層の0.1mLを0.9mL の生理
的食塩水に加え、10倍に希釈し、得られた希釈液をさら
に、同じ操作で10倍ずつ適宜希釈していき10倍から106
倍の希釈液を調製した。この各希釈液の0.1mL を食塩1
モル及び寒天1.5%を含むM−寒天培地に塗沫し、37
℃の温度で2日間培養し、培養後形成するコロニーの数
を測定し、希釈倍率を乗じて、培養液中の生菌数を計算
し、生菌数濃度を培地1mLあたりの細胞数(cells/m
L) として求めた。結果を下記表5に示す。
【0019】 表5各種有機溶媒を添加した培地におけるDS−711株の増殖(×108cells/mL) 濃度(v/v %) 0 1 5 10 ヘキサン 1.22 1.24 1.10 増殖せず ベンゼン 1.35 増殖せず 増殖せず トルエン 1.29 1.30 増殖せず キシレン 1.32 1.30 増殖せず 実施例7 DS−711株の混合有機溶媒に対する耐性試験 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
【0020】耐性試験:実施例6と同じ方法で行った。
尚、菌体接種後に培地へ重層する混合有機溶媒は下記の
表に示す濃度となるように調製した。結果を下記表6に
示す。 表6各種混合有機溶媒の添加培地におけるDS−711株の増殖(×108cells/mL) 混合溶媒 増殖 ベンゼン1%、ヘキサン1%、トルエン1%及びキシレン1% 1.28 ベンゼン1%、ヘキサン5%、トルエン5%及びキシレン5% 0.23 ベンゼン1%、ヘキサン10%、トルエン10%及びキシレン10% 増殖せず 溶媒無添加 1.22 実施例8 DS−711株の圧力耐性試験 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
尚、菌体接種後に培地へ重層する混合有機溶媒は下記の
表に示す濃度となるように調製した。結果を下記表6に
示す。 表6各種混合有機溶媒の添加培地におけるDS−711株の増殖(×108cells/mL) 混合溶媒 増殖 ベンゼン1%、ヘキサン1%、トルエン1%及びキシレン1% 1.28 ベンゼン1%、ヘキサン5%、トルエン5%及びキシレン5% 0.23 ベンゼン1%、ヘキサン10%、トルエン10%及びキシレン10% 増殖せず 溶媒無添加 1.22 実施例8 DS−711株の圧力耐性試験 前培養:実施例2と同じ方法で行った。
【0021】圧力耐性試験:12mm×75mmの試験管にシ
リコンキャップを付し、滅菌した。さらに、食塩1モル
を含むM−培地50mLにO.D660が0.02となるよう
に、前記培養物懸濁液を1mL接種し、これを上記滅菌
試験管に注射器で無菌的に充填した。次に、これをチタ
ン製高圧培養装置(離合社製)に装着し、前記培養装置
内を水道水で満たし、高圧培養容器用ポンプで下記表7
に示した圧力に加圧した。加圧後、35℃の温度で1週
間、静置し、培養を行った。培養後、培地内の菌体の増
殖をO.D660で測定するとともに、実施例6で説明した方
法で培地中の生菌数濃度を測定した。結果を下記表7に
示す。
リコンキャップを付し、滅菌した。さらに、食塩1モル
を含むM−培地50mLにO.D660が0.02となるよう
に、前記培養物懸濁液を1mL接種し、これを上記滅菌
試験管に注射器で無菌的に充填した。次に、これをチタ
ン製高圧培養装置(離合社製)に装着し、前記培養装置
内を水道水で満たし、高圧培養容器用ポンプで下記表7
に示した圧力に加圧した。加圧後、35℃の温度で1週
間、静置し、培養を行った。培養後、培地内の菌体の増
殖をO.D660で測定するとともに、実施例6で説明した方
法で培地中の生菌数濃度を測定した。結果を下記表7に
示す。
【0022】 表7 圧力(atm) 増殖(O.D660) 生菌体濃度(cells/mL) 1 0.389(0.004) 6×107 200 0.191(0.005) 2×107 400 0.022(0.005) 2×106 増殖(O.D660) のかっこ内の数値は、菌体無接種の場合
を示す。また初期菌体濃度は、O.D660=0.01(1×106c
ells/mL)であった。 実施例9 DS−711株の亜硫酸耐性試験 前培養:大型試験管に食塩1モルを含む亜硫酸無添加M
−培地の10mLを入れ、滅菌した。滅菌後、DS−7
11株の保存スラントから、菌体を一白金耳かきとり接
種し、37℃の温度で一昼夜、激しく振盪培養した。
を示す。また初期菌体濃度は、O.D660=0.01(1×106c
ells/mL)であった。 実施例9 DS−711株の亜硫酸耐性試験 前培養:大型試験管に食塩1モルを含む亜硫酸無添加M
−培地の10mLを入れ、滅菌した。滅菌後、DS−7
11株の保存スラントから、菌体を一白金耳かきとり接
種し、37℃の温度で一昼夜、激しく振盪培養した。
【0023】亜硫酸耐性試験:大型試験管に食塩2モル
を含む亜硫酸無添加2倍濃縮のM−培地の5mLを入
れ、滅菌した。さらに、あらかじめ滅菌しておいた10
%酸性亜硫酸ナトリウム(pH8.0に調整したもの) 溶
液及び滅菌蒸留水を用いて、全量が10mLでしかも下記表
8に示す亜硫酸濃度になるように無菌的に調製した。調
整後、前記培養物懸濁液0.025mLを接種し、37℃
の温度で3日間激しく振盪培養した。培養後の菌体の増
殖をO.D660で測定した。結果を表8に示す。
を含む亜硫酸無添加2倍濃縮のM−培地の5mLを入
れ、滅菌した。さらに、あらかじめ滅菌しておいた10
%酸性亜硫酸ナトリウム(pH8.0に調整したもの) 溶
液及び滅菌蒸留水を用いて、全量が10mLでしかも下記表
8に示す亜硫酸濃度になるように無菌的に調製した。調
整後、前記培養物懸濁液0.025mLを接種し、37℃
の温度で3日間激しく振盪培養した。培養後の菌体の増
殖をO.D660で測定した。結果を表8に示す。
【0024】 表8 亜硫酸イオン(ppm) 0 25 50 250 500 10000 増殖(O.D660) 1.2 1.5 1.45 1.12 1.05 0.85
【0025】
【発明の効果】本発明の微生物は、炭化水素に対して優
れた分解作用を示す。また、一般的に微生物にとって有
毒である亜硫酸や、食塩、さらにヘキサンを含めた各種
の有機溶媒に対しても耐性を兼ね備えているので、海上
等に流出したケロシンや重油等の汚染石油製品を有効に
分解することができる。さらに、海上での石油製品の分
解に限らず、それ以外の種々の環境下において、種々の
汚染有機溶媒を有効に分解することができる。
れた分解作用を示す。また、一般的に微生物にとって有
毒である亜硫酸や、食塩、さらにヘキサンを含めた各種
の有機溶媒に対しても耐性を兼ね備えているので、海上
等に流出したケロシンや重油等の汚染石油製品を有効に
分解することができる。さらに、海上での石油製品の分
解に限らず、それ以外の種々の環境下において、種々の
汚染有機溶媒を有効に分解することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 E02B 15/10 Z 9231−2D (C12N 1/20 C12R 1:20)
Claims (2)
- 【請求項1】 炭化水素分解性、亜硫酸耐性、食塩耐
性、有機溶媒耐性及び圧力耐性を有するフラボバクテリ
ウム(Flavobacterium) 属に属する新規微生物。 - 【請求項2】 フラボバクテリウム(Flavobacterium)
属DS−711株微工研菌寄第12449号である請求
項1に記載の新規微生物。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP3252195A JPH07100026B2 (ja) | 1991-09-30 | 1991-09-30 | フラボバクテリウム属に属する新規微生物 |
US07/950,586 US5342778A (en) | 1991-09-30 | 1992-09-25 | Microorganism belonging to the genus flavobacterium designated ferm BP-4010 |
EP92402680A EP0536046B1 (en) | 1991-09-30 | 1992-09-30 | Microorganism belonging to the genus flavobacterium, hydrocarbon emulsifier and solubilizer and separation method for organic-solvent tolerant microorganism |
DE69232789T DE69232789D1 (de) | 1991-09-30 | 1992-09-30 | Mikroorganismus des Stammes Flavobacterium, Kohlenwasserstoff-Emulgator und -Lösungsmittel, und Trennverfahren für organische lösungsmitteltolerante Mikroorganismen |
US08/242,853 US5518726A (en) | 1991-09-30 | 1994-05-16 | Hydrocarbon emulsifier or solubilizer composition produced by Flavobacterium FERM BP-4010 |
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3252195A JPH07100026B2 (ja) | 1991-09-30 | 1991-09-30 | フラボバクテリウム属に属する新規微生物 |
JP3252196A JPH0798143B2 (ja) | 1991-09-30 | 1991-09-30 | 炭化水素乳化及び可溶化剤 |
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Publication Number | Publication Date |
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JPH0680A true JPH0680A (ja) | 1994-01-11 |
JPH07100026B2 JPH07100026B2 (ja) | 1995-11-01 |
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ID=26540593
Family Applications (1)
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---|---|---|---|
JP3252195A Expired - Fee Related JPH07100026B2 (ja) | 1991-09-30 | 1991-09-30 | フラボバクテリウム属に属する新規微生物 |
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US5714378A (en) * | 1995-03-31 | 1998-02-03 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Pseudomonas chlororaphis microorganism polyurethane degrading enzyme obtained therefrom and method of using enzyme |
FR2767677B1 (fr) * | 1997-09-04 | 1999-11-05 | Moria Sa | Microkeratome pour chirurgie optalmologique |
US20040138429A1 (en) * | 2002-07-30 | 2004-07-15 | Council Of Scientific And Industrial Research | Bioemulsifier production by Acinetobacter strains isolated from healthy human skin |
US20110195505A1 (en) * | 2009-10-08 | 2011-08-11 | Butamax(Tm) Advanced Biofuels Llc | Bacterial strains for butanol production |
RU2547175C1 (ru) * | 2013-10-29 | 2015-04-10 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский государственный университет нефти и газа имени И.М. Губкина" | Способ получения биоэмульгатора |
CN108083450B (zh) * | 2017-12-10 | 2021-03-02 | 陈云兰 | 一种稀土废水用复合剂 |
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DE1792003C3 (de) * | 1967-07-19 | 1973-11-08 | Kyowa Hakko Kogyo Co. Ltd., Tokio | Verfahren zur Abtrennung der nach der Fermentation zurückbleibenden Koh lenwasserstoffe und Mikroorganismenzellen aus einer Fermentationsflussigkeit |
US3642577A (en) * | 1968-09-04 | 1972-02-15 | Mobil Oil Corp | Growing hydrocarbon-utilizing microorganisms |
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US3898959A (en) * | 1970-07-27 | 1975-08-12 | Mobil Oil Corp | Process for the growth of hydrocarbon-consuming microorganisms |
US3904476A (en) * | 1973-05-29 | 1975-09-09 | Mobil Oil Corp | Treatment of cells of a hydrocarbon-consuming microorganism |
AU527434B2 (en) * | 1980-09-19 | 1983-03-03 | Soc Nat Elf Aquit (Prod) | Microemulsion of nutrients for microorganisms |
US4410625A (en) * | 1982-02-04 | 1983-10-18 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Salt-tolerant microbial xanthanase and method of producing same |
EP0161511B1 (en) * | 1984-04-16 | 1990-11-28 | The Board Of Trustees Of The University Of Illinois | Pseudomonas bacteria, emulsifying composition comprising pseudomonas bacteria and method of producing a composition comprising pseudomonas bacteria |
JPS6269983A (ja) * | 1985-09-24 | 1987-03-31 | Mitsubishi Heavy Ind Ltd | ビルジ資化微生物の育種方法 |
DE3882156T2 (de) * | 1987-03-05 | 1993-12-09 | Japan Res Dev Corp | Pseudomonasstamm. |
JP2562139B2 (ja) * | 1987-03-30 | 1996-12-11 | 新技術事業団 | 微生物の培養法 |
JPH084515B2 (ja) * | 1987-11-09 | 1996-01-24 | 出光興産株式会社 | 有機化合物の製造方法 |
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- 1991-09-30 JP JP3252195A patent/JPH07100026B2/ja not_active Expired - Fee Related
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1992
- 1992-09-25 US US07/950,586 patent/US5342778A/en not_active Expired - Fee Related
- 1992-09-30 EP EP92402680A patent/EP0536046B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1992-09-30 DE DE69232789T patent/DE69232789D1/de not_active Expired - Lifetime
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- 1994-05-16 US US08/242,853 patent/US5518726A/en not_active Expired - Fee Related
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US5518726A (en) | 1996-05-21 |
EP0536046A3 (en) | 1993-09-01 |
US5342778A (en) | 1994-08-30 |
EP0536046B1 (en) | 2002-09-25 |
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