JPH0527394B2 - - Google Patents
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- JPH0527394B2 JPH0527394B2 JP59127118A JP12711884A JPH0527394B2 JP H0527394 B2 JPH0527394 B2 JP H0527394B2 JP 59127118 A JP59127118 A JP 59127118A JP 12711884 A JP12711884 A JP 12711884A JP H0527394 B2 JPH0527394 B2 JP H0527394B2
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- antibody
- monoclonal antibody
- interferon
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ヒトγ−インターフエロン(以下ヒ
トγ−IFNと略す)に対して特異性があるモノク
ローナル抗体に関する。
トγ−IFNと略す)に対して特異性があるモノク
ローナル抗体に関する。
ヒトγ−IFNは、ヒト白血球が産生する糖蛋白
質で、生態がウイルスに感染したとき、或は生体
内で免疫反応が生じたとき産生されるものであ
り、このものはモデル動物の癌疾患モデルにおい
てα型やβ型よりも強い癌の成長抑制がみられ、
このものは極めて微量で高い活性を持つたもので
ある。
質で、生態がウイルスに感染したとき、或は生体
内で免疫反応が生じたとき産生されるものであ
り、このものはモデル動物の癌疾患モデルにおい
てα型やβ型よりも強い癌の成長抑制がみられ、
このものは極めて微量で高い活性を持つたもので
ある。
従来、ヒト白血球からヒトγ−IFNを製造する
方法は、アイ・アール・シー・エス・メデイカ
ル・サイエンス:7巻、559頁、1979(エツチ・エ
イ・ジエンソン)、ユーロピアン・ジヤーナル・
オブ・イミユノロジー:10巻、871〜883頁、1980
(マクデリー)、プロシーデイングス・オブ・ザ・
ナシヨナル・アカデミー・オブ・サイエンス・ユ
ー・エス・エイ:78巻、3号、1601〜1605頁、
1981(ワイ・ケイ・イツプ)などにより知られて
いる。しかし、これらの方法により得られた培養
瀘液中には、誘発物質として加えられた異種蛋白
や毒素及び多くの血清蛋白が混在しつているた
め、これを人体に投与するには充分精製する必要
がある。
方法は、アイ・アール・シー・エス・メデイカ
ル・サイエンス:7巻、559頁、1979(エツチ・エ
イ・ジエンソン)、ユーロピアン・ジヤーナル・
オブ・イミユノロジー:10巻、871〜883頁、1980
(マクデリー)、プロシーデイングス・オブ・ザ・
ナシヨナル・アカデミー・オブ・サイエンス・ユ
ー・エス・エイ:78巻、3号、1601〜1605頁、
1981(ワイ・ケイ・イツプ)などにより知られて
いる。しかし、これらの方法により得られた培養
瀘液中には、誘発物質として加えられた異種蛋白
や毒素及び多くの血清蛋白が混在しつているた
め、これを人体に投与するには充分精製する必要
がある。
この精製法について培養瀘液から吸着剤を用い
てヒトγ−IFNを吸着・溶出する方法、例えば
SPセフアデツクス、CMセフアデツクス(以上特
開昭55−64799)、コンカナバリンAセフアロー
ス、バイオ、ゲルP−200(プロシーデイングス・
オブ・ザ・ナチヨナル・アカデミー・オブ・サイ
エンス・ユー・エス・エイ:78巻、3号、1601〜
1605頁、1981)などの吸着剤を用いる方法は公知
である。しかしながら、より有効、効率的なイン
ターフエロンの精製法が求められている。本発明
者は、鋭意研究の結果、抗ヒトγ−IFNモノクロ
ーナル抗体に着目し、ヒトγ−IFNに対する特異
性を有する新規な2種類の抗ヒトγ−IFNモノク
ローナル抗体を取得し、この抗ヒトγ−IFNモノ
クローナル抗体を用いて高純度のヒトγ−IFNに
精製することができるという知見を得、本発明を
完成した。
てヒトγ−IFNを吸着・溶出する方法、例えば
SPセフアデツクス、CMセフアデツクス(以上特
開昭55−64799)、コンカナバリンAセフアロー
ス、バイオ、ゲルP−200(プロシーデイングス・
オブ・ザ・ナチヨナル・アカデミー・オブ・サイ
エンス・ユー・エス・エイ:78巻、3号、1601〜
1605頁、1981)などの吸着剤を用いる方法は公知
である。しかしながら、より有効、効率的なイン
ターフエロンの精製法が求められている。本発明
者は、鋭意研究の結果、抗ヒトγ−IFNモノクロ
ーナル抗体に着目し、ヒトγ−IFNに対する特異
性を有する新規な2種類の抗ヒトγ−IFNモノク
ローナル抗体を取得し、この抗ヒトγ−IFNモノ
クローナル抗体を用いて高純度のヒトγ−IFNに
精製することができるという知見を得、本発明を
完成した。
すなわち、本発明はヒトγ−IFNに対して特異
性があり、還元剤存在下でのSDS電気泳動法によ
る分子量が26000及び50000を示し、IgG1サブク
ラスに属するものであつて、ヒトγ−インターフ
エロンの吸着容量が1.55×107U/mgであることを
特徴とする、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体
である。
性があり、還元剤存在下でのSDS電気泳動法によ
る分子量が26000及び50000を示し、IgG1サブク
ラスに属するものであつて、ヒトγ−インターフ
エロンの吸着容量が1.55×107U/mgであることを
特徴とする、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体
である。
本発明における抗ヒトγ−IFNモノクローナル
抗体の製造方法としては、ヒトγ−IFNで免疫し
たBALB/Cマウスの抗体産生細胞とBALB/
Cマウスの骨髄腫細胞との間にハイブリドーマを
形成させ、該ハイブリドーマをクローン化して抗
ヒトγ−IFN抗体を産生するクローンを選択し、
このように選択されたクローンを使用する方法で
ある。
抗体の製造方法としては、ヒトγ−IFNで免疫し
たBALB/Cマウスの抗体産生細胞とBALB/
Cマウスの骨髄腫細胞との間にハイブリドーマを
形成させ、該ハイブリドーマをクローン化して抗
ヒトγ−IFN抗体を産生するクローンを選択し、
このように選択されたクローンを使用する方法で
ある。
ここでいう抗体産生細胞としては、ヒトγ−
IFNで免疫したBALB/Cマウスの脾臓またはリ
ンパ節の細胞中に存在する抗体産生細胞であり、
ここで用いるヒトγ−IFNとしては、ヒト末梢白
血球由来のもので、フエニルセフアロース、ケイ
酸、コンカナバリンAセフアロース、CM−トヨ
パール650S及びバイオ・ゲルP−100の順に用い
て精製したものがよい。BALB/Cマウスの骨
髄腫細胞としては、X63−Ag8.653、P3−X63−
Ag8−U1などが用いられる。
IFNで免疫したBALB/Cマウスの脾臓またはリ
ンパ節の細胞中に存在する抗体産生細胞であり、
ここで用いるヒトγ−IFNとしては、ヒト末梢白
血球由来のもので、フエニルセフアロース、ケイ
酸、コンカナバリンAセフアロース、CM−トヨ
パール650S及びバイオ・ゲルP−100の順に用い
て精製したものがよい。BALB/Cマウスの骨
髄腫細胞としては、X63−Ag8.653、P3−X63−
Ag8−U1などが用いられる。
ハイブリドーマの形成とクローン化は、例えば
次のようにして行なう、ポリエチレングリコール
(PEG)、センダイウイルス(HVJ)などを用い
て、前記抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合させ
る。生じたハイブリドーマはヒポキサンチン、ア
ミノプテリン、チミジンを含む培地中で生育す
る。融合しなかつた抗体産生細胞と骨髄腫細胞
は、該培地中では共に死滅し、ハイブリドーマだ
けが個々のクローンから増殖してくる。生育した
ハイブリドーマから抗γ−IFN抗体を産生するク
ローンが選択される。全てのハイブリドーマクロ
ーンが抗体を産生するわけではない。また個々の
クローンによつて産生される抗体は特異性が異な
り、全てのクローンが抗ヒトγ−IFN抗体を産生
するのではない。従つて、ヒトγ−IFNに対して
特異性を示す抗体を産生するクローンを選択しな
ければならない。
次のようにして行なう、ポリエチレングリコール
(PEG)、センダイウイルス(HVJ)などを用い
て、前記抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合させ
る。生じたハイブリドーマはヒポキサンチン、ア
ミノプテリン、チミジンを含む培地中で生育す
る。融合しなかつた抗体産生細胞と骨髄腫細胞
は、該培地中では共に死滅し、ハイブリドーマだ
けが個々のクローンから増殖してくる。生育した
ハイブリドーマから抗γ−IFN抗体を産生するク
ローンが選択される。全てのハイブリドーマクロ
ーンが抗体を産生するわけではない。また個々の
クローンによつて産生される抗体は特異性が異な
り、全てのクローンが抗ヒトγ−IFN抗体を産生
するのではない。従つて、ヒトγ−IFNに対して
特異性を示す抗体を産生するクローンを選択しな
ければならない。
抗ヒトγ−IFN抗体産生クローンの選択は、例
えば予めうさぎの抗マウスIgG抗体をコーテイン
グしたウエル内にハイプリドーマクローンの培養
上清を入れ、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体
を吸着させた後、一定濃度のヒトγ−IFN溶液を
加え、このものを吸着させる。充分洗浄した後、
ヒトγ−IFNを溶出し、溶出液中のヒトγ−IFN
含量は、FL細胞に対するシンドビスウイルスの
細胞病変効果によつて測定される。
えば予めうさぎの抗マウスIgG抗体をコーテイン
グしたウエル内にハイプリドーマクローンの培養
上清を入れ、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体
を吸着させた後、一定濃度のヒトγ−IFN溶液を
加え、このものを吸着させる。充分洗浄した後、
ヒトγ−IFNを溶出し、溶出液中のヒトγ−IFN
含量は、FL細胞に対するシンドビスウイルスの
細胞病変効果によつて測定される。
選択されたアイブリドーマは、インビトロで長
期連続継代培養することができ、或は組織適合性
動物または胸腺欠如ヌードマウス中において生育
することができる。
期連続継代培養することができ、或は組織適合性
動物または胸腺欠如ヌードマウス中において生育
することができる。
前述の培地、腹水中に産生された目的とするモ
ノクローナル抗体は、通常の塩析、アフイニテイ
ークロマトグラフイー糖の精製操作により回収で
きる。
ノクローナル抗体は、通常の塩析、アフイニテイ
ークロマトグラフイー糖の精製操作により回収で
きる。
而して、本発明により得られた抗ヒトγ−IFN
モノクローナル抗体を担体樹脂などに結合させ
て、アフイニテイークロマトグラフイーを行なう
ことによつて、ヒトγ−IFNを特異的に精製して
極めて純度の高いヒトγ−IFNを容易に得ること
ができる。また従来、微量にしか血中に存在しな
いために困難とされていた血中ヒトγ−IFNの定
量が可能となつた。すなわち、血中のヒトγ−
IFNは、抗ヒトγ−IFNを用いたラジオイム/ア
ツセイ或はエンザイムイム/アツセイにより容易
に定量することができる。
モノクローナル抗体を担体樹脂などに結合させ
て、アフイニテイークロマトグラフイーを行なう
ことによつて、ヒトγ−IFNを特異的に精製して
極めて純度の高いヒトγ−IFNを容易に得ること
ができる。また従来、微量にしか血中に存在しな
いために困難とされていた血中ヒトγ−IFNの定
量が可能となつた。すなわち、血中のヒトγ−
IFNは、抗ヒトγ−IFNを用いたラジオイム/ア
ツセイ或はエンザイムイム/アツセイにより容易
に定量することができる。
ヒトγ−IFNを特異的に精製する方法として
は、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体をブロモ
シアンて活性化したセフアロース等の支持体に結
合させ、カラムを作成し、アフイニテイークロマ
トグラフイーを行なうことによつて精製すること
ができる。すなわち、PHが中性付近の溶媒を用い
てヒトγ−IFNを特異的に抗体カラムに吸着させ
た後、同一の溶媒で充分洗浄し、PHを10〜11付近
で溶媒で結合していたヒトγ−IFNを溶出し、得
られた溶出液をただちにPHを中性付近に戻すこと
により、活性を失うことなく、高純度のヒトγ−
IFNを得ることができる。
は、抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体をブロモ
シアンて活性化したセフアロース等の支持体に結
合させ、カラムを作成し、アフイニテイークロマ
トグラフイーを行なうことによつて精製すること
ができる。すなわち、PHが中性付近の溶媒を用い
てヒトγ−IFNを特異的に抗体カラムに吸着させ
た後、同一の溶媒で充分洗浄し、PHを10〜11付近
で溶媒で結合していたヒトγ−IFNを溶出し、得
られた溶出液をただちにPHを中性付近に戻すこと
により、活性を失うことなく、高純度のヒトγ−
IFNを得ることができる。
次に、本発明の抗ヒトγ−IFNモノクローナル
抗体を製造するための一例を挙げるが、本発明を
さらに詳細にするためのものである。
抗体を製造するための一例を挙げるが、本発明を
さらに詳細にするためのものである。
(1) 抗体産生ハイブリドーマの製造例
抗原に用いたヒトγ−IFNは、比活性が1×
104U/mg蛋白の粗材料をフエニルセフアロー
ス(フアルマシア社製)、ケイ酸、コンカナバ
リンAセフアロース(フアルマシア社製)、
CM−トヨパール650S(東洋ソーダ社製)及び
バイオ・ゲルP−100(バイオ・ラツド社製)の
順に用いて精製して、比活性4×105U/mg蛋
白としたものである。このヒトγ−IFN8×
104Uを雌BALB/Cマウスの皮下に注射し免
疫する。30日後、さらにこのヒトγ−IFN7×
104Uを皮下に注射し、補助免疫する。さらに、
28日後このヒトγ−IFN1.8×106Uを腹腔内注
射し、補助免疫する。
104U/mg蛋白の粗材料をフエニルセフアロー
ス(フアルマシア社製)、ケイ酸、コンカナバ
リンAセフアロース(フアルマシア社製)、
CM−トヨパール650S(東洋ソーダ社製)及び
バイオ・ゲルP−100(バイオ・ラツド社製)の
順に用いて精製して、比活性4×105U/mg蛋
白としたものである。このヒトγ−IFN8×
104Uを雌BALB/Cマウスの皮下に注射し免
疫する。30日後、さらにこのヒトγ−IFN7×
104Uを皮下に注射し、補助免疫する。さらに、
28日後このヒトγ−IFN1.8×106Uを腹腔内注
射し、補助免疫する。
最終補助免疫から3日後に、この雌
BALB/Cマウスの脾臓を摘出し、細胞浮遊
液をユーロピアン・ジヤーナル・オブ・イミユ
ノロジー:5巻、720頁、1975(ゲルハルト)の
方法に従つて調整し、融合のための抗体産生細
胞とする。
BALB/Cマウスの脾臓を摘出し、細胞浮遊
液をユーロピアン・ジヤーナル・オブ・イミユ
ノロジー:5巻、720頁、1975(ゲルハルト)の
方法に従つて調整し、融合のための抗体産生細
胞とする。
次に、上記で調整した抗体産生細胞と、15%
半胎児血清を含むRPMI−1640培地(日水製薬
社製)中で増殖させたBALB/Cマウスの骨
髄腫細胞X63−Ag8.653とをプロシーデイング
ス・オブ・ザ・ナシヨナル・アカデミー・オ
ブ・サイエンス・ユー・エス・エイ:74巻、
2985頁、1977(コプロフスキー)の方法に従つ
てポリエチレングリコール1500(BDHケミカル
ズ社製)存在下に融合させる。
半胎児血清を含むRPMI−1640培地(日水製薬
社製)中で増殖させたBALB/Cマウスの骨
髄腫細胞X63−Ag8.653とをプロシーデイング
ス・オブ・ザ・ナシヨナル・アカデミー・オ
ブ・サイエンス・ユー・エス・エイ:74巻、
2985頁、1977(コプロフスキー)の方法に従つ
てポリエチレングリコール1500(BDHケミカル
ズ社製)存在下に融合させる。
融合処理後、これらの細胞をHT培地に懸濁
し、組織培養プレートの192個のウエルにそれ
ぞれ接種する。培養開始後1日目、2日目、4
日目、7日目、9日目、10日目に培地の半量を
HAT培地に交換する。
し、組織培養プレートの192個のウエルにそれ
ぞれ接種する。培養開始後1日目、2日目、4
日目、7日目、9日目、10日目に培地の半量を
HAT培地に交換する。
培養開始後15日目に、この培養上清の一部を
取り、予めうさぎの抗マウスIgG抗体をコーテ
イングしたウエル内に入れ、抗体を吸着させた
後、ヒトγ−IFN103U/ml溶液0.1mlを加えて、
ヒトγ−IFNを吸着させる。燐酸緩衝液で十分
洗浄した後、0.5M塩化ナトリウム及び0.1%牛
血清アルブミンを含有する50mM炭酸ナトリウ
ム溶液(PH11)にて、ヒトγ−IFNを溶出す
る。溶出液中のヒトγ−IFN含量をFL細胞に
対するシントビスウイルスの細胞病変効果によ
つて測定した。192ウエル中11ウエルの培養上
清にヒトγ−IFN吸着活性を認めた。活性を認
めた11ウエル中5ウエルのハイプリドーマにつ
いて限界希釈法によりクローニングを行い、
163のモノクローンを得、うち104クローンにつ
いてヒトγ−IFN吸着活性を認めた。これらの
うちから、活性の高い2クローン(E4−18及
びG4−15)を選択した。
取り、予めうさぎの抗マウスIgG抗体をコーテ
イングしたウエル内に入れ、抗体を吸着させた
後、ヒトγ−IFN103U/ml溶液0.1mlを加えて、
ヒトγ−IFNを吸着させる。燐酸緩衝液で十分
洗浄した後、0.5M塩化ナトリウム及び0.1%牛
血清アルブミンを含有する50mM炭酸ナトリウ
ム溶液(PH11)にて、ヒトγ−IFNを溶出す
る。溶出液中のヒトγ−IFN含量をFL細胞に
対するシントビスウイルスの細胞病変効果によ
つて測定した。192ウエル中11ウエルの培養上
清にヒトγ−IFN吸着活性を認めた。活性を認
めた11ウエル中5ウエルのハイプリドーマにつ
いて限界希釈法によりクローニングを行い、
163のモノクローンを得、うち104クローンにつ
いてヒトγ−IFN吸着活性を認めた。これらの
うちから、活性の高い2クローン(E4−18及
びG4−15)を選択した。
(2) 抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体の製造例
前記工程で得られたE4−18クローン或はG4
−15クローンの各々の細胞107個をBALB/C
マウスの腹腔内に移植し、2〜3週間後に腹水
を採取する。採取した腹水は、遠心分離によ
り、細胞を除去し、各々の上清を得た。この上
清を50%飽和の硫酸アンモニウムで塩析し、生
じた沈澱を小量の燐酸緩衝液(PH7.2)に溶解
する。溶液を20%飽和の硫酸アンモニウムで再
度塩析し、生じた沈澱を除去し、上清に50%飽
和となるよう硫酸アンモニウムを添加し、再度
塩析を行ない、生じた沈澱を採取する。沈澱を
少量の10mM、燐酸緩衝液(PH8)に溶解した
後、同じ緩衝液で一昼夜透析を行なう。透析後
の各々のサンプルは、予め同じ緩衝液で平衡化
したプロテインAセフアロース(フアルマシア
社製)のカラムに吸着させ、次いで0.5M、塩
化ナトリウムを含む0.1Mクエン酸緩衝液(PH
5)で溶出する。溶出した蛋白含有画分を集
め、0.5M塩化ナトリウムを含む燐酸緩衝液
(PH7.2)で透析する。得られた抗体溶液は0.05
%のナトリウムアザイドを添加して4℃で保存
する。
−15クローンの各々の細胞107個をBALB/C
マウスの腹腔内に移植し、2〜3週間後に腹水
を採取する。採取した腹水は、遠心分離によ
り、細胞を除去し、各々の上清を得た。この上
清を50%飽和の硫酸アンモニウムで塩析し、生
じた沈澱を小量の燐酸緩衝液(PH7.2)に溶解
する。溶液を20%飽和の硫酸アンモニウムで再
度塩析し、生じた沈澱を除去し、上清に50%飽
和となるよう硫酸アンモニウムを添加し、再度
塩析を行ない、生じた沈澱を採取する。沈澱を
少量の10mM、燐酸緩衝液(PH8)に溶解した
後、同じ緩衝液で一昼夜透析を行なう。透析後
の各々のサンプルは、予め同じ緩衝液で平衡化
したプロテインAセフアロース(フアルマシア
社製)のカラムに吸着させ、次いで0.5M、塩
化ナトリウムを含む0.1Mクエン酸緩衝液(PH
5)で溶出する。溶出した蛋白含有画分を集
め、0.5M塩化ナトリウムを含む燐酸緩衝液
(PH7.2)で透析する。得られた抗体溶液は0.05
%のナトリウムアザイドを添加して4℃で保存
する。
E4−18クローンから得られた抗ヒトγ−
IFNモノクローナル抗体は、還元剤(2−メル
カプトエタノール)の存在下での、SDS電気泳
動法で、分子量50000と26000との2本のバンド
が得られ、G4−15クローンから得られた抗ヒ
トγ−IFNモノクローナル抗体は、同様にし
て、分子量50000と26000との2本のバンドが得
られた。
IFNモノクローナル抗体は、還元剤(2−メル
カプトエタノール)の存在下での、SDS電気泳
動法で、分子量50000と26000との2本のバンド
が得られ、G4−15クローンから得られた抗ヒ
トγ−IFNモノクローナル抗体は、同様にし
て、分子量50000と26000との2本のバンドが得
られた。
(3-1) ヒトγ−IFN精製例
前記工程で得られたE4−18クローン由来の
抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体をプロムシ
アンで活性化したセフアロース(フアルマシア
社製)に結合させ、ヒトγ−IFN精製用ゲルを
作成し、このゲル2ml(抗体吸着量2mg)でカ
ラム(直径1.3cm、長さ1.5cm)を作成した。
抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体をプロムシ
アンで活性化したセフアロース(フアルマシア
社製)に結合させ、ヒトγ−IFN精製用ゲルを
作成し、このゲル2ml(抗体吸着量2mg)でカ
ラム(直径1.3cm、長さ1.5cm)を作成した。
ヒトγ−IFNを含有するヒト末梢血リンパ球
培養液1950ml(蛋白質:1787mg、比活性:1×
104U/mg 蛋白)を、フエニル・セフアロー
ス・カラム(フアルマシア社製)を通して前処
理し、次いで限外瀘過去で濃縮し、濃縮物226
ml(蛋白質:1466mg、比活性:1×10U/mg
蛋白)を得た。
培養液1950ml(蛋白質:1787mg、比活性:1×
104U/mg 蛋白)を、フエニル・セフアロー
ス・カラム(フアルマシア社製)を通して前処
理し、次いで限外瀘過去で濃縮し、濃縮物226
ml(蛋白質:1466mg、比活性:1×10U/mg
蛋白)を得た。
前記工程で得た濃縮物226mlを前記工程で作
成したカラムに吸着させ、十分量の燐酸緩衝液
で洗浄した後、0.5Mの塩化ナトリウムを含む
50mM炭酸ナトリウム緩衝液(PH11)で、ヒト
γ−IFNを溶出した。溶出液はただちに0.5M.
燐酸二水素ナトリウムで中和し、ヒトγ−IFN
含量をFL細胞に対するシンドビスウイルスの
細胞病変効果によつて定量した。この結果、抗
ヒトγ−IFN抗体カラムからの溶出画分は3.7
mlであり、蛋白質は0.24mgであり、比活性は
1.3×105U/mg 淡白であつた。ここで抗体1
mg当りのヒトγ−IFNの吸着容量は1.55×107U
で、精製度は13000倍であることがわかる。
成したカラムに吸着させ、十分量の燐酸緩衝液
で洗浄した後、0.5Mの塩化ナトリウムを含む
50mM炭酸ナトリウム緩衝液(PH11)で、ヒト
γ−IFNを溶出した。溶出液はただちに0.5M.
燐酸二水素ナトリウムで中和し、ヒトγ−IFN
含量をFL細胞に対するシンドビスウイルスの
細胞病変効果によつて定量した。この結果、抗
ヒトγ−IFN抗体カラムからの溶出画分は3.7
mlであり、蛋白質は0.24mgであり、比活性は
1.3×105U/mg 淡白であつた。ここで抗体1
mg当りのヒトγ−IFNの吸着容量は1.55×107U
で、精製度は13000倍であることがわかる。
得られた精製ヒトγ−IFNはSDS電気泳動法
により第1図に示すように、分子量約25000、
20000、15000に相当する3種のバンドを与え、
いずれもヒトγ−IFN活性を示した。(3−2)
前記工程(2)で得られたG4−15クローン由来の
抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体について、
前述の(3−1)と同様にしてほぼ同等の結果
が得られる。ここで添付の図面第1図について
説明する。
により第1図に示すように、分子量約25000、
20000、15000に相当する3種のバンドを与え、
いずれもヒトγ−IFN活性を示した。(3−2)
前記工程(2)で得られたG4−15クローン由来の
抗ヒトγ−IFNモノクローナル抗体について、
前述の(3−1)と同様にしてほぼ同等の結果
が得られる。ここで添付の図面第1図について
説明する。
(1の列)
分子量算出用の分子量既知蛋白質群を示す。
上より各々68000〜45000、31000、21000、
17800及び12600の分子量をもち、各々μgの重
量をもつ。
上より各々68000〜45000、31000、21000、
17800及び12600の分子量をもち、各々μgの重
量をもつ。
(2の列)
1の列と同じ分子量既知の蛋白質群を示し、
各々5μgの重量をもつ。
各々5μgの重量をもつ。
(3の列)
E4−18アフイニテイーカラムから溶出した
精製ヒトγ−IFN分子を示し、上より各々約
25000、20000及び15000の分子量の位置に相当
することがわかる。
精製ヒトγ−IFN分子を示し、上より各々約
25000、20000及び15000の分子量の位置に相当
することがわかる。
(4の列)
3の列と同じ精製ヒトγ−IFN分子を示す。
第1図は、E4−18クローン由来の抗体を用い
て精製されたヒトγ−IFNのSDS電気泳動法によ
る分子量約25000、20000、15000に相当する3種
のバンドである。
て精製されたヒトγ−IFNのSDS電気泳動法によ
る分子量約25000、20000、15000に相当する3種
のバンドである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 ヒトγ−インターフエロンに対して特異性が
あり、還元剤存在下でのSDS電気泳動法による分
子量が26000及び50000を示すIgG1サブクラスに
属するものであつて、ヒトγ−インターフエロン
の吸着容量が1.55×107U/mgであることを特徴と
する、抗ヒトγ−インターフエロンモノクローナ
ル抗体。 2 吸着されたヒトγ−インターフエロンが活性
を失わずに回収することができる、特許請求の範
囲第1項記載の抗ヒトγ−インターフエロンモノ
クローナル抗体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12711884A JPS617300A (ja) | 1984-06-20 | 1984-06-20 | 抗ヒトγ−インタ−フエロンモノクロ−ナル抗体並びにこれらを使用する方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12711884A JPS617300A (ja) | 1984-06-20 | 1984-06-20 | 抗ヒトγ−インタ−フエロンモノクロ−ナル抗体並びにこれらを使用する方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS617300A JPS617300A (ja) | 1986-01-13 |
JPH0527394B2 true JPH0527394B2 (ja) | 1993-04-21 |
Family
ID=14952047
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP12711884A Granted JPS617300A (ja) | 1984-06-20 | 1984-06-20 | 抗ヒトγ−インタ−フエロンモノクロ−ナル抗体並びにこれらを使用する方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS617300A (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0746105B2 (ja) * | 1986-02-05 | 1995-05-17 | 武田薬品工業株式会社 | インタ−フエロン−γの免疫化学的測定法および測定用試薬 |
-
1984
- 1984-06-20 JP JP12711884A patent/JPS617300A/ja active Granted
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
THE EMBO JOURNAL=1983 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS617300A (ja) | 1986-01-13 |
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