JPH0486557A - 抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法 - Google Patents
抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法Info
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- JPH0486557A JPH0486557A JP19918790A JP19918790A JPH0486557A JP H0486557 A JPH0486557 A JP H0486557A JP 19918790 A JP19918790 A JP 19918790A JP 19918790 A JP19918790 A JP 19918790A JP H0486557 A JPH0486557 A JP H0486557A
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は抗体価測定試薬、更に詳細には補体依存性リポ
ソーム損傷反応を利用した、簡単な自動操作によって抗
体価を測定することができ、大量生産可能な抗体価測定
試薬に関する。
ソーム損傷反応を利用した、簡単な自動操作によって抗
体価を測定することができ、大量生産可能な抗体価測定
試薬に関する。
〔従来の技術及び発明が解決しようとする課題〕一般に
、輸血や血清中の抗体価を測定することは、成人下細胞
白血病(ATL)等のウィルス感染に起因する様々な疾
患を診断し、予防する上で極めて重要なことである。
、輸血や血清中の抗体価を測定することは、成人下細胞
白血病(ATL)等のウィルス感染に起因する様々な疾
患を診断し、予防する上で極めて重要なことである。
従来、抗体価の測定法としては、間接蛍光抗体法、EI
A法、凝集法、Western−blot法等が採用さ
れているが、上述のような臨床上の重要性に鑑み、測定
化の自動化が望まれている。しかしながら、間接蛍光抗
体法やWestern−blot法は操作が煩雑である
ため自動化は困難であり、EIA法は洗浄操作か必要で
あるため、自動化のためには洗浄機構を必要とするとい
う問題かあった。また、凝集法は操作は比較的簡単では
あるものの、判定が目視であるために測定結果に個人差
を生じるという問題かあった。
A法、凝集法、Western−blot法等が採用さ
れているが、上述のような臨床上の重要性に鑑み、測定
化の自動化が望まれている。しかしながら、間接蛍光抗
体法やWestern−blot法は操作が煩雑である
ため自動化は困難であり、EIA法は洗浄操作か必要で
あるため、自動化のためには洗浄機構を必要とするとい
う問題かあった。また、凝集法は操作は比較的簡単では
あるものの、判定が目視であるために測定結果に個人差
を生じるという問題かあった。
そこで、本発明者は鋭意検討した結果、補体依存性リポ
ソーム損傷反応を利用すれば抗体価測定の自動化が可能
であることを見出し先に特許出願した(特開平2−42
360号)。しかしながら、この方法はリン脂質、コレ
ステロール及び架橋剤導入リン脂質から調製したリポソ
ームに、架橋剤を介して抗原を共有結合させて用いてい
るが、ここで使用される抗原は精製度の高いものである
ことが必要であり、該抗原を大量に入手することは困難
であるという問題があった。
ソーム損傷反応を利用すれば抗体価測定の自動化が可能
であることを見出し先に特許出願した(特開平2−42
360号)。しかしながら、この方法はリン脂質、コレ
ステロール及び架橋剤導入リン脂質から調製したリポソ
ームに、架橋剤を介して抗原を共有結合させて用いてい
るが、ここで使用される抗原は精製度の高いものである
ことが必要であり、該抗原を大量に入手することは困難
であるという問題があった。
斯かる実情において、本発明者は上記課題を解決せんと
鋭意研究を行った結果、安価で大量入手の容易な特異抗
体を介して抗原をリポソーム上に結合させれば、入手困
難な精製度の高い抗原を用いなくとも補体依存性リポソ
ーム損傷反応を利用した抗体価測定試薬が得られること
を見出し本発明を完成した。
鋭意研究を行った結果、安価で大量入手の容易な特異抗
体を介して抗原をリポソーム上に結合させれば、入手困
難な精製度の高い抗原を用いなくとも補体依存性リポソ
ーム損傷反応を利用した抗体価測定試薬が得られること
を見出し本発明を完成した。
すなわち、本発明はリン脂質及びコレステロールを主要
構成成分とするリポソームの表面に架橋剤を用いて特異
抗体を結合させ、この特異抗体を介して特異抗原を固定
化し、かつ該リポソーム内に親水性標識物質を封入した
ことを特徴とする抗体価測定試薬を提供するものである
。
構成成分とするリポソームの表面に架橋剤を用いて特異
抗体を結合させ、この特異抗体を介して特異抗原を固定
化し、かつ該リポソーム内に親水性標識物質を封入した
ことを特徴とする抗体価測定試薬を提供するものである
。
本発明において、リポソームはリン脂質及びコレステロ
ールを主要構成成分とするものであれば、従来使用され
ている何れのものでもよいが、リン脂質とコレステロー
ルの比が1=1前後であるとき、安定なリポソームか得
られ易い。また、リン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原子
数が12〜18であることが好ましく、更には偶数であ
ることが好ましい。
ールを主要構成成分とするものであれば、従来使用され
ている何れのものでもよいが、リン脂質とコレステロー
ルの比が1=1前後であるとき、安定なリポソームか得
られ易い。また、リン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原子
数が12〜18であることが好ましく、更には偶数であ
ることが好ましい。
リポソーム内に封入される標識物質は、親水性であって
、リポソーム外に溶出された際に定量可能な物質でなけ
ればならない。斯かる物質としては、例えば、高濃度で
は自己消光により蛍光は示さないが、低能度(10−3
M以下)で非常に強い蛍光を発するカルボキシルフルオ
レセインのような蛍光性化合物;リポソーム外で酸化反
応により発光するルミノールやルシフェリンのような発
光性化合物;可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯を
有する吸光性化合物(水溶性色素等);酸化酵素の作用
により分解された酸素消費あるいは過酸化水素生成をも
たらすグルコース及びシュークロースナトの糖類;テト
ラペンチルアンモニウムの様な比較的大きなイオン性化
合物;ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NAD
)のような補酵素類;メチルビオロゲンを初めとするラ
ジカル化合物などが望ましい。
、リポソーム外に溶出された際に定量可能な物質でなけ
ればならない。斯かる物質としては、例えば、高濃度で
は自己消光により蛍光は示さないが、低能度(10−3
M以下)で非常に強い蛍光を発するカルボキシルフルオ
レセインのような蛍光性化合物;リポソーム外で酸化反
応により発光するルミノールやルシフェリンのような発
光性化合物;可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯を
有する吸光性化合物(水溶性色素等);酸化酵素の作用
により分解された酸素消費あるいは過酸化水素生成をも
たらすグルコース及びシュークロースナトの糖類;テト
ラペンチルアンモニウムの様な比較的大きなイオン性化
合物;ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NAD
)のような補酵素類;メチルビオロゲンを初めとするラ
ジカル化合物などが望ましい。
また、本発明において用いられる架橋剤としては、例え
ばN−スクシンイミジル3−(2−ピリジルジチオ)プ
ロピオネート(SPDP) 、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)ブチレート(SMPB)
、N−スクシンイミジル4−(p−マレイミドフェニ
ル)アセテート(SMPA)、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)プロピオネート(SMP
P) 、N−(γ−マレイミドブチリルオキシ)スクシ
ンイミド(GMBS)及びN−(ε−マレイミドカプロ
イルオキシ)スクシンイミド(EMCS)等か挙げられ
る。
ばN−スクシンイミジル3−(2−ピリジルジチオ)プ
ロピオネート(SPDP) 、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)ブチレート(SMPB)
、N−スクシンイミジル4−(p−マレイミドフェニ
ル)アセテート(SMPA)、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)プロピオネート(SMP
P) 、N−(γ−マレイミドブチリルオキシ)スクシ
ンイミド(GMBS)及びN−(ε−マレイミドカプロ
イルオキシ)スクシンイミド(EMCS)等か挙げられ
る。
また、リポソームに感作させる特異抗体としては、用い
る抗原の反応部位の一部に特異的な抗体であって補体の
活性化を起こさないもの又はF (ab ’ ) x化
したものを使用することが好ましい。
る抗原の反応部位の一部に特異的な抗体であって補体の
活性化を起こさないもの又はF (ab ’ ) x化
したものを使用することが好ましい。
更に、本発明において抗原としては、抗体価を測定しよ
うとする抗体に対する抗原が用いられる。
うとする抗体に対する抗原が用いられる。
斯かる抗原は、リポソームへの固相化に際しては、免疫
反応を利用するために何の修飾をする必要がなく、また
固定化される抗原は特異抗体に特異的なタンパクのみで
あるため、用いる抗原の精製度はなんら制限を受けるも
のではない。また、従来の方法により抗原を直接リポソ
ームに固相化するには大量の抗原が必要とされていたが
、本発明の抗体価測定試薬は使用される抗原量が従来の
1/loo〜1/1000と非常に少量においても、同
等の測定感度が得られる。
反応を利用するために何の修飾をする必要がなく、また
固定化される抗原は特異抗体に特異的なタンパクのみで
あるため、用いる抗原の精製度はなんら制限を受けるも
のではない。また、従来の方法により抗原を直接リポソ
ームに固相化するには大量の抗原が必要とされていたが
、本発明の抗体価測定試薬は使用される抗原量が従来の
1/loo〜1/1000と非常に少量においても、同
等の測定感度が得られる。
本発明の抗体価測定試薬は例えば次の方法で製造される
。
。
まず、リン脂質とコレステロールをフラスコに入れ溶媒
を留去し、吸引乾燥する。しがる後、壁面に薄膜が形成
されたフラスコ内に所定の標識物質の溶液を加え、密栓
をして振とうし、標識物質封入リポソームを得る。
を留去し、吸引乾燥する。しがる後、壁面に薄膜が形成
されたフラスコ内に所定の標識物質の溶液を加え、密栓
をして振とうし、標識物質封入リポソームを得る。
一方、特異抗体と架橋剤とを緩衝液中で反応させて架橋
基を導入し、しがる後必要であれば、該架橋基を還元す
る試薬(例えばジチオスレイトール: DTT)と更に
反応させて、修飾抗体を得る。
基を導入し、しがる後必要であれば、該架橋基を還元す
る試薬(例えばジチオスレイトール: DTT)と更に
反応させて、修飾抗体を得る。
その後、標識物質封入リポソームと修飾抗体とを緩衝液
中で反応せしめることにより抗体感作リポソームを調製
する。次いで、所定量の抗原と該抗体感作リポソームを
緩衝液中で反応せしめることにより抗原固相化リポソー
ムが得られる。斯かる抗体価測定試薬は、通常、標識物
質を内包し、表面に固定化された抗原を担持したマイク
ロカプセルとして得られる。
中で反応せしめることにより抗体感作リポソームを調製
する。次いで、所定量の抗原と該抗体感作リポソームを
緩衝液中で反応せしめることにより抗原固相化リポソー
ムが得られる。斯かる抗体価測定試薬は、通常、標識物
質を内包し、表面に固定化された抗原を担持したマイク
ロカプセルとして得られる。
斯くして調製された本発明の抗体価測定試薬を用いて、
被検体中の抗体価を測定するには、まず被検体中に該試
薬及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引
き起こさせる。すると、斯かる反応量に比例して、リポ
ソーム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この
標識物質に応じた分析方法(例えば、標識物質が蛍光物
質であれば、蛍光分析法)により定量を行い、例えば予
め作成しておいた検量線により、試料中の抗体の量を測
定すればよい。
被検体中の抗体価を測定するには、まず被検体中に該試
薬及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引
き起こさせる。すると、斯かる反応量に比例して、リポ
ソーム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この
標識物質に応じた分析方法(例えば、標識物質が蛍光物
質であれば、蛍光分析法)により定量を行い、例えば予
め作成しておいた検量線により、試料中の抗体の量を測
定すればよい。
この測定操作において使用する補体は、特に限定されな
いが、通常、モルモット血清が用いられる。また、ウサ
ギ、マウス、ヒト等の血清を使用することもできる。
いが、通常、モルモット血清が用いられる。また、ウサ
ギ、マウス、ヒト等の血清を使用することもできる。
本発明の抗体価測定試薬は、抗原をリポソームに結合さ
せるのに安価に大量入手の容易な特異抗体を使用してい
るため、入手困難な精製度の高い抗原を用いずに補体依
存性リポソーム損傷反応を利用した抗体価の測定を行う
ことができる。また、抗原の使用量も従来の1/100
〜1 /1000と非常に少量であるため、非常に経済
的であると共に大量生産が可能である。
せるのに安価に大量入手の容易な特異抗体を使用してい
るため、入手困難な精製度の高い抗原を用いずに補体依
存性リポソーム損傷反応を利用した抗体価の測定を行う
ことができる。また、抗原の使用量も従来の1/100
〜1 /1000と非常に少量であるため、非常に経済
的であると共に大量生産が可能である。
更に、本発明の抗体価測定試薬を使用すれば、簡単な操
作で正確に被検体中の抗体価を測定することができ、し
かもその自動化が可能である。
作で正確に被検体中の抗体価を測定することができ、し
かもその自動化が可能である。
以下に実施例を挙げて本発明を更に説明するが、本発明
はこれによって何ら限定されるものではない。
はこれによって何ら限定されるものではない。
実施例1
1)リポソームの調製ニ
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)1μ
mol、コレステロール(Chol) 1 μmol
及びジチオピリジル化ジパルミトイルホスファチジルエ
タノールアミン(DTP−DPPE) 0.05μmo
lをナシ型フラスコにとり、脂質を溶解していたクロロ
ホルムをエバポレーターで留去した。更に、1時間真空
デシケータ−で乾燥し、次いで、ナシ型フラスコに0.
2Mカルボキシフルオレセイン(CF)100μQを入
れ、激しく攪拌し、ナシ型フラスコのガラス壁上の脂質
薄膜を剥がしてCF封入リポソームを調製した。未封入
のCFは0.OIM Hepes緩衝液(0,15M
Nal含有、 pH7,5)で遠心洗浄3回を行って分
離した。
mol、コレステロール(Chol) 1 μmol
及びジチオピリジル化ジパルミトイルホスファチジルエ
タノールアミン(DTP−DPPE) 0.05μmo
lをナシ型フラスコにとり、脂質を溶解していたクロロ
ホルムをエバポレーターで留去した。更に、1時間真空
デシケータ−で乾燥し、次いで、ナシ型フラスコに0.
2Mカルボキシフルオレセイン(CF)100μQを入
れ、激しく攪拌し、ナシ型フラスコのガラス壁上の脂質
薄膜を剥がしてCF封入リポソームを調製した。未封入
のCFは0.OIM Hepes緩衝液(0,15M
Nal含有、 pH7,5)で遠心洗浄3回を行って分
離した。
2)抗HBsモノクローナル抗体のリポソームへの感作
: 二種類の異なった抗HBsモノクローナル抗体(ad
、 ay)溶液(1mg/m12)を750μQずつ等
しく混合したちの1.5m12に、30mM 5PDP
工タノール溶液5μgを添加し、室温で30分間反応さ
せた。引き続き、過剰の5PDPを除去するために、0
.1M酢酸緩衝液(0,15M NaCf1含有、 p
H4,5)で平衡化したセファデックスG−25でゲル
濾過した。
: 二種類の異なった抗HBsモノクローナル抗体(ad
、 ay)溶液(1mg/m12)を750μQずつ等
しく混合したちの1.5m12に、30mM 5PDP
工タノール溶液5μgを添加し、室温で30分間反応さ
せた。引き続き、過剰の5PDPを除去するために、0
.1M酢酸緩衝液(0,15M NaCf1含有、 p
H4,5)で平衡化したセファデックスG−25でゲル
濾過した。
ゲル濾過で得られたタンパク分画にDTTを50mMと
なるように添加し、室温で30分間反応させた後、0、
OIM Hepes緩衝液(0,15M NaCl2含
有、 pH7,5)で平衡化したセファデックスG−2
5でゲル濾過し、過剰のDTTとタンパクを分離した。
なるように添加し、室温で30分間反応させた後、0、
OIM Hepes緩衝液(0,15M NaCl2含
有、 pH7,5)で平衡化したセファデックスG−2
5でゲル濾過し、過剰のDTTとタンパクを分離した。
斯くして得られたタンパク分画1m1lに1)で調製し
たCF封入リポソームを加え、6〜10℃で18〜24
時間ゆっくり攪拌しながら反応させた。その後、リポソ
ーム懸濁液を遠心洗浄し、未反応のタンパクを分離し、
ゲラチンベロナール(GVB)緩衝液(0,15M N
aCff含有、 pH7,5) 1mflに再懸濁した
。
たCF封入リポソームを加え、6〜10℃で18〜24
時間ゆっくり攪拌しながら反応させた。その後、リポソ
ーム懸濁液を遠心洗浄し、未反応のタンパクを分離し、
ゲラチンベロナール(GVB)緩衝液(0,15M N
aCff含有、 pH7,5) 1mflに再懸濁した
。
3)HBs抗原のリポソームへの固相化:HBs抗原産
生細胞から得られた硫安塩析粗分画HBs抗原(比活性
10622) 1.1mg、及び)IPLCによる精製
度97.5%以上の精製HBs抗原(比活性32000
0)29μgを2)で調製したリポソーム溶液150μ
gにそれぞれ添加し、GVB緩衝液(0,15M Na
CQ含有。
生細胞から得られた硫安塩析粗分画HBs抗原(比活性
10622) 1.1mg、及び)IPLCによる精製
度97.5%以上の精製HBs抗原(比活性32000
0)29μgを2)で調製したリポソーム溶液150μ
gにそれぞれ添加し、GVB緩衝液(0,15M Na
CQ含有。
pH7,5)を加え、それぞれ500μlとして室温で
18〜24時間反応させた。その後、リポソーム懸濁液
を遠心洗浄し、未反応の抗原を分離し、GVB緩衝液(
0,15M NaCn含有、 pH7,5) 3m1l
にそれぞれ懸濁し、HBs抗原固相化リポソームを得た
。
18〜24時間反応させた。その後、リポソーム懸濁液
を遠心洗浄し、未反応の抗原を分離し、GVB緩衝液(
0,15M NaCn含有、 pH7,5) 3m1l
にそれぞれ懸濁し、HBs抗原固相化リポソームを得た
。
4)HBs抗原固相化リポソームを用いたHBs抗体価
の測定: 96穴マイクロプレート(注文ベークライト社製)を用
いて測定を行った。ここで希釈にはすべて0.5mM
MgCLと0.15M CaC11zを含むGVB緩衝
液を用いた。3)で調製したリポソームを25倍希釈し
た溶液25μlii:、IgG化したウサギ抗HBs抗
体を10000IU/1から倍々希釈したものを50μ
g加え、37℃で2時間反応させた。その後、適当に希
釈したモルモット補体25μaを加え、更に37℃で2
時間反応させた。反応は10mM EDTA含有GVB
緩衝液(0,15M NaC1含有、 pH7,5)
100μm1を加え停止させた。
の測定: 96穴マイクロプレート(注文ベークライト社製)を用
いて測定を行った。ここで希釈にはすべて0.5mM
MgCLと0.15M CaC11zを含むGVB緩衝
液を用いた。3)で調製したリポソームを25倍希釈し
た溶液25μlii:、IgG化したウサギ抗HBs抗
体を10000IU/1から倍々希釈したものを50μ
g加え、37℃で2時間反応させた。その後、適当に希
釈したモルモット補体25μaを加え、更に37℃で2
時間反応させた。反応は10mM EDTA含有GVB
緩衝液(0,15M NaC1含有、 pH7,5)
100μm1を加え停止させた。
HBs抗体量に依存したCF量はマイクロプレート用蛍
光光度計MTP−32(コロナ社製)を用いて励起光4
90nm、蛍光530nmで測定した。その結果を第1
図に示す。
光光度計MTP−32(コロナ社製)を用いて励起光4
90nm、蛍光530nmで測定した。その結果を第1
図に示す。
第1図から明らかなように本発明の抗体価測定試薬を用
いれば、粗HBs抗原を用いた場合においても精製HB
s抗原を用いた場合と同様な遊出曲線が得られ、抗原の
精製程度によって測定精度の差が生じないことがわかる
。
いれば、粗HBs抗原を用いた場合においても精製HB
s抗原を用いた場合と同様な遊出曲線が得られ、抗原の
精製程度によって測定精度の差が生じないことがわかる
。
第1図は、実施例1において本発明の抗体価測定試薬を
用いて、被検体中のHBs抗原を測定したときの遊出曲
線を示す図面である。 以上
用いて、被検体中のHBs抗原を測定したときの遊出曲
線を示す図面である。 以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、リン脂質及びコレステロールを主要構成成分とする
リポソームの表面に架橋剤を用いて特異抗体を結合させ
、この特異抗体を介して特異抗原を固定化し、かつ該リ
ポソーム内に親水性標識物質を封入したことを特徴とす
る抗体価測定試薬。 2、請求項1記載の抗体価測定試薬を用いる免疫分析法
。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19918790A JPH0486557A (ja) | 1990-07-30 | 1990-07-30 | 抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19918790A JPH0486557A (ja) | 1990-07-30 | 1990-07-30 | 抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0486557A true JPH0486557A (ja) | 1992-03-19 |
Family
ID=16403589
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP19918790A Pending JPH0486557A (ja) | 1990-07-30 | 1990-07-30 | 抗体価測定試薬およびこれを用いた免疫分析法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0486557A (ja) |
-
1990
- 1990-07-30 JP JP19918790A patent/JPH0486557A/ja active Pending
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