JPH0295260A - HBs抗原測定試薬 - Google Patents
HBs抗原測定試薬Info
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- JPH0295260A JPH0295260A JP24705188A JP24705188A JPH0295260A JP H0295260 A JPH0295260 A JP H0295260A JP 24705188 A JP24705188 A JP 24705188A JP 24705188 A JP24705188 A JP 24705188A JP H0295260 A JPH0295260 A JP H0295260A
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-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、HBs抗原の測定試薬、更に詳細には、補体
依存性り?ンーム膜損傷反応を利用した簡単な操作によ
ってHBs抗原を測定することのできるHBs抗原測定
試薬に関する。
依存性り?ンーム膜損傷反応を利用した簡単な操作によ
ってHBs抗原を測定することのできるHBs抗原測定
試薬に関する。
B型肝炎は、血清肝炎ともよばれ、潜伏期は通′$−6
週間から6ケ月間で、本疾患はA型肝炎よシもより重症
な症状を伴う。B型肝炎は、その後、いくつかの臨床経
過をとシうるが、多くの患者は、慢性肝炎に発展し、そ
して少数の患者は致死的な肝壊死まで進展する。
週間から6ケ月間で、本疾患はA型肝炎よシもより重症
な症状を伴う。B型肝炎は、その後、いくつかの臨床経
過をとシうるが、多くの患者は、慢性肝炎に発展し、そ
して少数の患者は致死的な肝壊死まで進展する。
かなシの数の患者は症状的には回復するが、しかし、血
液中には、B型肝炎の血清学的なマーカーを保持し続け
、潜在的に感染性を持っていると考えられる。これらの
慢性B型肝炎保菌者は、輸血のだめの血液を準備する際
に、かならずチエツクされなければならない。
液中には、B型肝炎の血清学的なマーカーを保持し続け
、潜在的に感染性を持っていると考えられる。これらの
慢性B型肝炎保菌者は、輸血のだめの血液を準備する際
に、かならずチエツクされなければならない。
B型肝炎ウィルスの検査方法には、従来、寒天ゲル免疫
拡散法、カウンター免疫電気泳動法、補体結合法、逆受
身凝集法、固相放射免疫測定法(RIA )、酵素免疫
測定法(EIA)などが知られている。しかし、寒天ゲ
ル免疫拡散法、カウンター免疫電気泳動法は操作が煩雑
であり、測定時間もかかり、感度も比較的低い。また補
体結合法は、やはり操作が煩雑で、感度も低い。逆受身
凝集法は、安定した抗体被覆赤血球を用意することに問
題があシ、試薬価格も高い。RIA、EIAは、感度の
点では、寒天グル免疫拡散の2,000−1o、o o
o倍にもなるが、試薬価格が高く、RIAでは、放射
性元素を用いるため、特別な放射性元素処理施設が必要
となるという欠点があった。
拡散法、カウンター免疫電気泳動法、補体結合法、逆受
身凝集法、固相放射免疫測定法(RIA )、酵素免疫
測定法(EIA)などが知られている。しかし、寒天ゲ
ル免疫拡散法、カウンター免疫電気泳動法は操作が煩雑
であり、測定時間もかかり、感度も比較的低い。また補
体結合法は、やはり操作が煩雑で、感度も低い。逆受身
凝集法は、安定した抗体被覆赤血球を用意することに問
題があシ、試薬価格も高い。RIA、EIAは、感度の
点では、寒天グル免疫拡散の2,000−1o、o o
o倍にもなるが、試薬価格が高く、RIAでは、放射
性元素を用いるため、特別な放射性元素処理施設が必要
となるという欠点があった。
斯かる実状において、本発明者は鋭意研究を行った結果
、補体依存性り?ンーム膜損傷反応を利用すれば、RI
A 、 EIAと同じ感度で、しかもこれらに必要な
り/F分離を要することなくホモゾニアス系での測定が
可能なことを見出し、本発明を完成した。
、補体依存性り?ンーム膜損傷反応を利用すれば、RI
A 、 EIAと同じ感度で、しかもこれらに必要な
り/F分離を要することなくホモゾニアス系での測定が
可能なことを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明はリン脂質及びコレステロールを主要
構成成分とするリポソームの表面に架橋剤を介して抗H
Bi抗体を固定し、かつ該り?ソーム内に親水性標識物
質を封入したことを特徴とするHBs抗原測定試薬を提
供するものである。
構成成分とするリポソームの表面に架橋剤を介して抗H
Bi抗体を固定し、かつ該り?ソーム内に親水性標識物
質を封入したことを特徴とするHBs抗原測定試薬を提
供するものである。
本発明において、す?ンームはリン脂質及びコレステロ
ールを主要構成成分とするものであれば、従来使用され
ている倒れのものでもよいが、リン脂質とコレステロー
ルのモル比が1:1前後であるとき、安定なり?ソーム
が得られる。また、リン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原
子数が12〜18であることが好ましく、更には偶数で
あるのがより好ましい。
ールを主要構成成分とするものであれば、従来使用され
ている倒れのものでもよいが、リン脂質とコレステロー
ルのモル比が1:1前後であるとき、安定なり?ソーム
が得られる。また、リン脂質中の脂肪酸残基は、炭素原
子数が12〜18であることが好ましく、更には偶数で
あるのがより好ましい。
す?ソーム内に封入される標識物質は、親水性であって
、す?ソーム外に溶出された際に定量可能な物質でなけ
ればならない。かかる物質としては、例えば、高濃度で
は自己消光により螢光は示さないが、低濃度(10”−
3M以下)で非常に強い螢光を発するカルゲキシルフル
オレセインのような螢光性化合物:す?ンーム外で酸化
反応により発光するルミノールやルシフェリンのような
発光性化合物;可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯
を有する吸光性化合物(水溶性色素等);酸化酵素の作
用により分解され酸素消費あるいは過酸化水素生成をも
たらすグルコース及びシュークロースなどの糖類;テト
ラペンチルアンモニウムのような比較的大きなイオン性
化合物:ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NA
D )のような補酵素類:メチルピオログンを初めとす
るラジカル化合物などが望ましい。
、す?ソーム外に溶出された際に定量可能な物質でなけ
ればならない。かかる物質としては、例えば、高濃度で
は自己消光により螢光は示さないが、低濃度(10”−
3M以下)で非常に強い螢光を発するカルゲキシルフル
オレセインのような螢光性化合物:す?ンーム外で酸化
反応により発光するルミノールやルシフェリンのような
発光性化合物;可視部あるいは紫外部に特異的な吸収帯
を有する吸光性化合物(水溶性色素等);酸化酵素の作
用により分解され酸素消費あるいは過酸化水素生成をも
たらすグルコース及びシュークロースなどの糖類;テト
ラペンチルアンモニウムのような比較的大きなイオン性
化合物:ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NA
D )のような補酵素類:メチルピオログンを初めとす
るラジカル化合物などが望ましい。
す?ソームの表面に固定化される抗HBs抗体としては
モノクローナル抗体が好ましく、特に異なるエピトープ
を認識するモノクローナル抗体(ad、my、w、r
)を2種以上組合せて使用すれば広範囲のHBs抗原
を測定することができる。
モノクローナル抗体が好ましく、特に異なるエピトープ
を認識するモノクローナル抗体(ad、my、w、r
)を2種以上組合せて使用すれば広範囲のHBs抗原
を測定することができる。
本発明のHBs抗原測定試薬は、例えば次の方法で製造
される。
される。
まず、リン脂質とコレステロールをフラスコに入れ、溶
媒を加えて反応させた後、溶媒を留去し、吸引乾燥する
。しかる後、壁面に薄膜が形成されたフラスコ内に所定
の標識物質の水溶液を加え、密栓をして振とうし標識物
質封入り?ソームを得る。
媒を加えて反応させた後、溶媒を留去し、吸引乾燥する
。しかる後、壁面に薄膜が形成されたフラスコ内に所定
の標識物質の水溶液を加え、密栓をして振とうし標識物
質封入り?ソームを得る。
一方、抗HBs抗体と架橋剤とを緩簀液中で反応させて
架橋基を導入し、しかる後、必要であれば、該架橋基を
還元する試薬(例えばジチオスレイトール: DTT
)と更に反応させ、修飾抗体を得る。
架橋基を導入し、しかる後、必要であれば、該架橋基を
還元する試薬(例えばジチオスレイトール: DTT
)と更に反応させ、修飾抗体を得る。
最後に、標識物質封入り?ソームと修飾抗体とを緩衝液
中で反応せしめることにより、本発明の抗HBs抗体感
作り?ソームが得られる。
中で反応せしめることにより、本発明の抗HBs抗体感
作り?ソームが得られる。
このようにするとき、HBg抗原測定試薬は、通常、標
識物質を内包し、表面に固定化烙れた抗HBs抗体を担
持したマイクロカfセルとして得られる。
識物質を内包し、表面に固定化烙れた抗HBs抗体を担
持したマイクロカfセルとして得られる。
上記製造法における架橋剤としては、例えば、N−スク
シンイミジル3−(2−1?リゾルゾチオ)fロビオネ
ー) (5PDP )、N−スクシンイミジル4−(p
−マレイミドフェニル)ブチレート(SMPB)、N−
スクシンイミジル4−(p−マレイミドフェニル)アセ
テ++−) (SMPA )、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)プロピオネート(5MP
P )、N −(γ−マレイミドグチリルオキシ)スク
シンイミド(GMBS )及びN−(ε−7レイミトカ
ノロイルオキシ)スクシンイミド(EMC8)が挙げら
れる。
シンイミジル3−(2−1?リゾルゾチオ)fロビオネ
ー) (5PDP )、N−スクシンイミジル4−(p
−マレイミドフェニル)ブチレート(SMPB)、N−
スクシンイミジル4−(p−マレイミドフェニル)アセ
テ++−) (SMPA )、N−スクシンイミジル4
−(p−マレイミドフェニル)プロピオネート(5MP
P )、N −(γ−マレイミドグチリルオキシ)スク
シンイミド(GMBS )及びN−(ε−7レイミトカ
ノロイルオキシ)スクシンイミド(EMC8)が挙げら
れる。
このようにして調製したHB3抗原測定試薬を用いて被
検体中のHBs抗原を測定するには、被検体中に該試薬
及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引き
起こさせる。すると、かかる反応量に比例してり破ンー
ム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この標識
物質に応じた分析方法(例えば、標識物質が螢光物質で
あれば、螢光分析法)により定量を行ない、例えば、予
め作成した検量線によシ、試料中の抗原の量を測定する
ことができる。
検体中のHBs抗原を測定するには、被検体中に該試薬
及び補体を加え、抗原−抗体と補体との結合反応を引き
起こさせる。すると、かかる反応量に比例してり破ンー
ム内から標識物質が放出されてくる。次いで、この標識
物質に応じた分析方法(例えば、標識物質が螢光物質で
あれば、螢光分析法)により定量を行ない、例えば、予
め作成した検量線によシ、試料中の抗原の量を測定する
ことができる。
この測定操作において使用する補体は、格別限定されず
、通常はモルモット血清が用いられるが、ウサギ、マウ
ス、ヒト等の血清を使用してもよい。
、通常はモルモット血清が用いられるが、ウサギ、マウ
ス、ヒト等の血清を使用してもよい。
斜上の如く、本発明のHBs抗原測定試薬を使用すれば
、簡単な操作で、EIA% RIAと同等又はそれ以上
の測定感度をもって被検体中のHBs抗原を正確に測定
することができる。
、簡単な操作で、EIA% RIAと同等又はそれ以上
の測定感度をもって被検体中のHBs抗原を正確に測定
することができる。
また本発明のHBs抗原測定試薬は抗H1ts抗体感作
り?ンーム懸濁液1 m (1raM脂質濃度)で約2
万検体の測定が可能であるので極めて安価である。
り?ンーム懸濁液1 m (1raM脂質濃度)で約2
万検体の測定が可能であるので極めて安価である。
次に実施例を挙げて説明する。
参考例1(抗HBsモノクローナル抗体の製造)ヒトH
Bs抗原陽性血清から精製したadw、ay型抗原をB
ALB / cマウスに免疫し、その牌細胞とマウスミ
エローマ細胞株N5−1と細胞融合して、ヒトHBs抗
原に対するモノクローナル抗体を得た。このようにして
得られた抗体は型別抗原との反応性からそれぞれ抗ad
、抗ay抗体と判明した。このようにして得られた抗体
のうち、本発明に用いることのできる抗体は、三種類で
あった。抗体は、イオンクロマトグラフィーにより精製
した後、サブクラスと凝集法(PHA)により、力価が
決定された。
Bs抗原陽性血清から精製したadw、ay型抗原をB
ALB / cマウスに免疫し、その牌細胞とマウスミ
エローマ細胞株N5−1と細胞融合して、ヒトHBs抗
原に対するモノクローナル抗体を得た。このようにして
得られた抗体は型別抗原との反応性からそれぞれ抗ad
、抗ay抗体と判明した。このようにして得られた抗体
のうち、本発明に用いることのできる抗体は、三種類で
あった。抗体は、イオンクロマトグラフィーにより精製
した後、サブクラスと凝集法(PHA)により、力価が
決定された。
サグクラス 力価(PHA)
■ 抗ayモノクローナル抗体 IgG、 4
00,000■ 抗adモノクローナル抗体 rgc
l 1.ooo、oo。
00,000■ 抗adモノクローナル抗体 rgc
l 1.ooo、oo。
■ 抗adモノクローナル抗体 IgG、 2
00,000実施例1 (1) リポソームの調製 ゾノQルミトイルホスファチゾルコリン(DPPC)
1 /Jn+01 、 コレステロール(Chol
)1μmolおよびゾテオビリゾル化ゾ、eルミトイル
ホスファチゾルエタノールアミン(DTPDPPE )
0.04 μn+ol fナシ型フラスコにとす、脂
質を溶解していたクロロホルムをエバーレータ−で留去
した。芒らに、−時間真空デジケータ−で乾燥後、ナシ
型フラスコに0.2Mカルボキシフルオレセイン(CF
)200μtを入れ、激しく振とうし、ナシ型フラスコ
のガラス壁土の脂質薄膜をはがしてCF封入り?ソーム
を調製した。未封入のCFは、0.01Mヘペス緩衝液
(0,15M NaCt含有;pH7,5)で遠心洗浄
を三回行なって分離した。
00,000実施例1 (1) リポソームの調製 ゾノQルミトイルホスファチゾルコリン(DPPC)
1 /Jn+01 、 コレステロール(Chol
)1μmolおよびゾテオビリゾル化ゾ、eルミトイル
ホスファチゾルエタノールアミン(DTPDPPE )
0.04 μn+ol fナシ型フラスコにとす、脂
質を溶解していたクロロホルムをエバーレータ−で留去
した。芒らに、−時間真空デジケータ−で乾燥後、ナシ
型フラスコに0.2Mカルボキシフルオレセイン(CF
)200μtを入れ、激しく振とうし、ナシ型フラスコ
のガラス壁土の脂質薄膜をはがしてCF封入り?ソーム
を調製した。未封入のCFは、0.01Mヘペス緩衝液
(0,15M NaCt含有;pH7,5)で遠心洗浄
を三回行なって分離した。
1) 抗HBsモノクローナル抗体のリポソームへの
感作 0.01Mヘペス緩衝液(0,15M N&Ct含有z
pH7,5)に透析した、参考例1の■及び■のモノ
クローナル抗体1■/ ytlを750μjfつ混合し
たものに、30 mM 5PDPエタノール溶液5μl
を添加し、室温で30分間反応させた。引き続き、過剰
の5PDPを除去するために、0、1 M酢酸緩衝液(
0,15M NaC1; pH4,5)で平衡化したセ
ファデックスG−25でグル濾過した。ゲル濾過により
得られたタン/Qり分画に、DTT 7.711fiを
添加し、室温で30分間反応させた後、α01Mヘベス
緩衝液で平衡化しておいたセファデックスG−25でグ
ル濾過し、過剰のDTTとタン、eりを分離した。
感作 0.01Mヘペス緩衝液(0,15M N&Ct含有z
pH7,5)に透析した、参考例1の■及び■のモノ
クローナル抗体1■/ ytlを750μjfつ混合し
たものに、30 mM 5PDPエタノール溶液5μl
を添加し、室温で30分間反応させた。引き続き、過剰
の5PDPを除去するために、0、1 M酢酸緩衝液(
0,15M NaC1; pH4,5)で平衡化したセ
ファデックスG−25でグル濾過した。ゲル濾過により
得られたタン/Qり分画に、DTT 7.711fiを
添加し、室温で30分間反応させた後、α01Mヘベス
緩衝液で平衡化しておいたセファデックスG−25でグ
ル濾過し、過剰のDTTとタン、eりを分離した。
こうして得られたタンノQり分画1 atに、(1)で
調製したり?ソームペレソトを加え、6−10℃で18
〜24時間ゆっくり攪拌しながら反応させた。
調製したり?ソームペレソトを加え、6−10℃で18
〜24時間ゆっくり攪拌しながら反応させた。
その後、リポソーム懸濁液を遠心洗浄し、未反応のタン
)Qりを分離した後、0.1%N a N3含有ゼラチ
ンペロナール緩衝液(pH74)1dに再懸濁した。
)Qりを分離した後、0.1%N a N3含有ゼラチ
ンペロナール緩衝液(pH74)1dに再懸濁した。
(1i)抗HBsモノクローナル抗体感作りlL′ソー
ムを用いたHB畠抗原の測定 96大のマイクロプレート(住友ベークライト製)を用
いて測定を行なった。希釈には、すべて0.5 mM
MgC22と0.15mM CaCl2を含む什 ゼラチンベロナール緩衝液(GVB )を用いた。
ムを用いたHB畠抗原の測定 96大のマイクロプレート(住友ベークライト製)を用
いて測定を行なった。希釈には、すべて0.5 mM
MgC22と0.15mM CaCl2を含む什 ゼラチンベロナール緩衝液(GVB )を用いた。
400倍希釈したり?ソーム液25μtに、非廿
勧化したHB+抗原陽性のヒト血清をGVB で希釈
し、25μtを加え、37°Cで1時間反応した。その
後、適当に希釈した二次抗体25μtとモルモット補体
25μtを加え、更に、37℃で1時間反応した。反応
はjOrnblEDTA含有ベロナール緩衝液(pH7
,5)を100μを加えて停止した。HB−抗原量に依
存したCF量は、マイクロプレート用螢光光度計MTP
−32(コロナ社)を用いて励起光490nrn、螢光
530 nrnで測定した。
し、25μtを加え、37°Cで1時間反応した。その
後、適当に希釈した二次抗体25μtとモルモット補体
25μtを加え、更に、37℃で1時間反応した。反応
はjOrnblEDTA含有ベロナール緩衝液(pH7
,5)を100μを加えて停止した。HB−抗原量に依
存したCF量は、マイクロプレート用螢光光度計MTP
−32(コロナ社)を用いて励起光490nrn、螢光
530 nrnで測定した。
(iv) 反応のタイムコース
逆受身凝集反応(R−PHA )で1600倍のHBs
抗原陽性ヒト血清を10〜320倍希釈し、二次抗体と
してウサギ抗HBs抗体(MBL社)を100倍希釈し
たものを用いた。補体価は3単位で行なった。
抗原陽性ヒト血清を10〜320倍希釈し、二次抗体と
してウサギ抗HBs抗体(MBL社)を100倍希釈し
たものを用いた。補体価は3単位で行なった。
アッセイの一次反応である抗原と抗体感作リポソームの
反゛応を15〜120分まで追った。その後、二次抗体
と補体を加えた後の反応時間は、1時間に固定した。そ
の結果は、第1図に示すように、高濃度では60分てほ
ぼ反応が終了していたが、低濃度では、60分以降も反
応が徐々に進んでいることがわかった。これらの結果を
基に、反応時間は、次反応60分とした。これは、検体
希釈320倍(R−PHAと同様に反応系全容量中での
希釈倍数に換算すると2560倍に当たる)におけるC
F +711−スがHBs抗原陰性検体のCFIJリー
ス%から求めたHBs陽性カットオフ値をうわまわった
からである。
反゛応を15〜120分まで追った。その後、二次抗体
と補体を加えた後の反応時間は、1時間に固定した。そ
の結果は、第1図に示すように、高濃度では60分てほ
ぼ反応が終了していたが、低濃度では、60分以降も反
応が徐々に進んでいることがわかった。これらの結果を
基に、反応時間は、次反応60分とした。これは、検体
希釈320倍(R−PHAと同様に反応系全容量中での
希釈倍数に換算すると2560倍に当たる)におけるC
F +711−スがHBs抗原陰性検体のCFIJリー
ス%から求めたHBs陽性カットオフ値をうわまわった
からである。
(V) 第1図の結果から求めた反応時間で、(ii
)に従ってHBs抗原の検量線を作成した(第2図)。
)に従ってHBs抗原の検量線を作成した(第2図)。
条件は次のとおりで行った。
標準血清:HB−抗原陽性検体(R−PI(A1600
升 倍)をGVB で10倍から320 倍まで希釈した。
升 倍)をGVB で10倍から320 倍まで希釈した。
補体価:3単位
二次抗体: MBL社ウサつ抗HBs抗体を100倍希
釈したもの。
釈したもの。
CFリリース%: 10%トライ トンX−100で遊
出したCF量を100%と し、HBs抗原陽性血清を加え る代りに、250 uL tD GVB+を加えたとき
に得られるCF遊 出量を0%として、計算で求 めた。
出したCF量を100%と し、HBs抗原陽性血清を加え る代りに、250 uL tD GVB+を加えたとき
に得られるCF遊 出量を0%として、計算で求 めた。
(vl)従来法との相関
R−PHA法と本測定法との相関性を、HBm陽性およ
び陰性の検体25検体で調べ、その結果を第1表に示し
た。尚、本性によるHBs抗原価は、5%以上のCF
+717−スが観測される最大希釈倍数(例えば検体希
釈が160倍であるならば、反応系の容量が200μt
であシ、検体25μtは更に8倍希釈されることになる
ので最終的には、1280倍となる)で表わした。また
5%のカットオフは、HBs陰性検体によるCF遊出量
から決定された。水沫とR−PHA法は、それぞれ検体
希釈8倍から始めた。
び陰性の検体25検体で調べ、その結果を第1表に示し
た。尚、本性によるHBs抗原価は、5%以上のCF
+717−スが観測される最大希釈倍数(例えば検体希
釈が160倍であるならば、反応系の容量が200μt
であシ、検体25μtは更に8倍希釈されることになる
ので最終的には、1280倍となる)で表わした。また
5%のカットオフは、HBs陰性検体によるCF遊出量
から決定された。水沫とR−PHA法は、それぞれ検体
希釈8倍から始めた。
第1表かられかるように、R−PHAよ多本法の方が測
定感度が高く、陰性率では良い一致を見た。
定感度が高く、陰性率では良い一致を見た。
第1表
以下余白
1)検体希釈8倍で5%以下のCFIJI/−スであっ
たことを示す。
たことを示す。
第1図はHBs抗原陽性ヒト血清の各希釈倍数における
本発明HBs抗原測定試薬のタイムコースを示す図であ
り、第2図は本発明HBs抗原測定試薬を用いてHBs
抗原を測定したときの検量線である。 CFリリース(%) 以
本発明HBs抗原測定試薬のタイムコースを示す図であ
り、第2図は本発明HBs抗原測定試薬を用いてHBs
抗原を測定したときの検量線である。 CFリリース(%) 以
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、リン脂質及びコレステロールを主要構成成分とする
リポソームの表面に架橋剤を介して抗HBs抗体を固定
し、かつ該リポソーム内に親水性標識物質を封入したこ
とを特徴とするHBs抗原測定試薬。 2、抗HBs抗体が抗HBsモノクローナル抗体である
請求項1記載のHBs抗原測定試薬。 3、抗HBsモノクローナル抗体が、異なるエピトープ
を認識する2種以上の抗HBsモノクローナル抗体であ
る請求項2記載のHBs抗原測定試薬。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24705188A JPH0295260A (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | HBs抗原測定試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24705188A JPH0295260A (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | HBs抗原測定試薬 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0295260A true JPH0295260A (ja) | 1990-04-06 |
Family
ID=17157684
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP24705188A Pending JPH0295260A (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | HBs抗原測定試薬 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0295260A (ja) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61153569A (ja) * | 1984-12-11 | 1986-07-12 | メデイカル・アンド・サイエンテイフイツク・リサーチ・アソシエイツ | B型肝炎ウイルス特異性モノクローナル抗体 |
JPS63179253A (ja) * | 1987-01-20 | 1988-07-23 | Nitsusui Seiyaku Kk | 免疫分析用試薬 |
-
1988
- 1988-09-30 JP JP24705188A patent/JPH0295260A/ja active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61153569A (ja) * | 1984-12-11 | 1986-07-12 | メデイカル・アンド・サイエンテイフイツク・リサーチ・アソシエイツ | B型肝炎ウイルス特異性モノクローナル抗体 |
JPS63179253A (ja) * | 1987-01-20 | 1988-07-23 | Nitsusui Seiyaku Kk | 免疫分析用試薬 |
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