JPH04198198A - k―カゼイングリコマクロペプチドの製造法 - Google Patents
k―カゼイングリコマクロペプチドの製造法Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
クロペプチドを簡便に製造する方法に関する。
インにレンネット又はペプシンを作用させた時に生成す
るシアル酸結合ペプチドであって、チーズホエー中に含
まれることが、従来から知られている。
ては、実験室的には、牛乳から単離したに一カゼインを
脱イオン水に溶解したものにペプシンを作用させた後、
トリクロル酢酸を加えてバラ−に一カゼイン画分を沈澱
させ、次いで得られた上滑を脱イオン水に対して透析し
て脱塩した後、凍結乾燥することより調製する方法(ス
タン等「プルティン オブ エクスペリメンタル バイ
オロジー アンド メディシンJ (Bulluti
n ofExperimental Biology
and Medicine) 96 889(1983
)) 、または、上記に一カゼインを脱イオン水に溶解
し、該溶液のpHを6.7に調整した後、レンネットを
作用させ、次いで更にpHを4.6に調整してパラ−に
一カゼインを沈澱させて除去し、得られた上滑を透析に
付して脱塩した後、凍結乾燥して調製する方法(アカデ
ミツクブレス社発行「ミルクプロティンJ (Mil
k Protein) pp200)等が行われていた
。
当然大量生産には適さない。
用性が従来知られていなかったため、その大量生産のた
めの方法についても検討されていなかった。
チドが犬の食欲を低下させる作用を有すること(スタン
等、「プルティン オブ エクスペリメンタル バイオ
ロジー アンド メディシンJ (Bullutin
of Experimental Biology
andMedicine) 96.889 (1983
))が報告されたことから、肥満防止用食品素材として
利用され得ることが判った。
大腸菌の腸管細胞への付着を阻止したり、インフルエン
ザウィルスの感染を防御する効果(特開昭63−284
133号)や抗歯垢効果(特開昭63−233911号
)のあることが判明したことから、その工業的規模での
生産が強く望まれるようになった。
ーからκ−カゼイングリコマクロペプチドを調製する方
法が開発されたく特開昭63−284199号)。この
方法は、従来用いてきたトリクロル酢酸を使わなくても
良いことから食品素材として充分利用可能であり、また
、大量生産も可能である。しかし、レンネットカゼイン
カードホエーを得る際に副生じてくるレンネットカゼイ
ンカードの上手な利用法を開発しない限り、カードの処
理にコストがかかり、ひいては、に−カゼイングリコマ
クロペプチドの製造コストを引き上げることになり、実
際的ではない。
プチドの分子量がpH4を境にしてシャープに変化する
性質を見出し、この性質を利用して簡便で、安価にκ−
カゼイングリコマクロペプチドを製造する方法を見い出
した(特開平2−276542号)。
する乳質原料物質、例えばチーズホエー、ホエー蛋白質
濃縮物、除蛋白質チーズホエー等を、まずpH4未満に
調整した後、分画分子量10,000〜so 、 oo
oの膜を用い、限外濾過処理をして透過液を得、好まし
くは再度、該透過液をpH4以上に調整した後、分画分
子量so 、 ooo以下の膜を用いて脱塩し濃縮する
ことを特徴とするκ−カゼイングリコマクロペプチドの
製造法である。
除蛋白質チーズホエー等のpHを制御するだけで、に−
カゼイングリコマクロペプチドを簡便に、大量にかつ安
価に製造し得る。しかもその純度も高い。
ては新たに設備投資しなくても、既存の限外濾過装置や
逆浸透濾過装置を用いてκ−カゼイングリコマクロペプ
チドを製造することが可能であり、に−カゼイングリコ
マクロペプチド以外の蛋白質画分は、ホエー蛋白質濃縮
物として利用することが可能である。
ドの製造コストを引き下げるため、実際には製造時に副
生ずるホエー蛋白質を中和してから脱塩、乾燥し、ホエ
ー蛋白濃縮物とせねばならなかった。又、ホエーを限外
濾過にて濃縮し、に−カゼイングリコマクロペプチドを
回収する際、タンパク質のファウリングにより透過流束
が低下するため、運転に長時間を要する等の問題も残さ
れていた。
大量生産する技術として特願平2−95686号の方法
も知られている。この方法はホエー蛋白含有溶液を加熱
した後、凍結し、さらにこの凍結物を解凍した時に得ら
れる上滑液を濃縮、脱塩することによってκ−カゼイン
グリコマクロペプチドを得る方法で、コスト、作業時間
の点で優れているが、純度の高いものが得られないとい
う欠点があった。
製法に関して、純度、コスト、作業時間、労力ともに有
利な方法を提供することを目的とする。さらに、ホエー
タンパク単離物質をイオン交換樹脂にて調製する際、主
要なホエー蛋白質は樹脂に吸着するが、イオン交換体に
吸着しない画分中に、に−カゼイングリコマクロペプチ
ドが豊富に含有されていることを見い出し、この画分か
らκ−カゼイングリコマクロペプチドを調製する方法を
提供することを目的とする。
る乳質原料物質をイオン交換体と接触させ、イオン交換
体に吸着しなかった百分を集め、これを濃縮脱塩するこ
とを特徴とするκ−カゼイングリコマクロペプチドの製
造法である。
かった両分のpHを4未満に調整した後、分画分子量1
0,000〜so、oooの膜を用い、限外濾過処理を
行い透過液を得て、この透過液に分画分子量50.00
0以下の膜を用いる。
を再度pH4以上に調整する。
ることが好ましい。
際、主要なホエー蛋白質は樹脂に吸着するが、イオン交
換体に吸着しない画分からκ−カゼイングリコマクロペ
プチドを得る際、そのまま濃縮、脱塩、乾燥しても良い
が、さらに高純度のものを得ようという場合においては
、(特願平1−97583号)に示す方法を用いること
ができる。すなわち−旦、この画分のpHを4以下に調
整し、分画分子量10,000〜so、 oooの限外
濾過膜にて処理を行い、得られた透過液を再びpH4以
上として濃縮、脱塩、乾燥を行い、に−カゼイングリコ
マクロペプチドを得る。
白質のファウリングが起こりに<<、大きな透過液流束
が得られるため、短い作業時間でしかも高純度のに〜カ
ゼイングリコマクロペプチドを得ることができる。
ドの調製法の詳細を記載し、説明する。
いては、すでに公知であり、例えばウィト(J、N、d
e Wit)らの方法(Neth、 Milk Dai
ry J、+40、41〜56 (1986))、エイ
ヤース(J、S、Ayers) らの方法(New Z
ealand J、 Dairy Sci、 and
Tech、+針、21〜35 (1986))、特開昭
52−151200号、特開平2−104246号など
が例示される。
チドを含有する乳質原料物質であれば何でも良く、例え
ばチーズホエー、チーズホエーを限外濾過して製造した
ホエー蛋白質濃縮物、又は、加熱等の方法でホエー蛋白
質を沈澱除去したチーズホエーや乳糖母液を用いること
ができる。
を出発原料とするが、この時の濃度については特に限定
するものではない。チーズホエーはどんなものでもよい
が、カゼインのカードや脂肪が少量残存していることが
多いので、遠心分離、クリームセパレーター、或いはタ
ラリファイヤー等でこれらを除去しておく。加熱して蛋
白を除いたチーズホエー中には乳糖が主成分となってお
り乳糖が沈澱してくることがある。この場合には沈澱し
た乳糖を遠心分離、タラリファイヤー或いはデカンタ−
等で除去しておくとよい。
を調整する。例えば、カルボキシメチル基を交換基とす
るイオン交換体ではpH3〜4.5、ジエチルアミノエ
チル基を交換基とするイオン交換体ではpH6〜7とす
る。この時、pH調整に用いる物質は何でも良いが、例
えば酸であれば塩酸、硫酸、酢酸、乳酸、クエン酸等が
例示でき、アルカリであれば、苛性ソーダ、重炭酸ソー
ダ、アンモニア等が例示される。また、イオン交換体も
これらの他にスルホン基を交換基とするもの、4級アミ
ンを交換基とするものなどが例示される。原料中のホエ
ー蛋白質をイオン交換体に吸着させる方法については前
述の公知の方法に従って行い、その後、イオン交換体に
吸着した画分と非吸着の画分に分ける。
量に処理するために、特開平2−138295号に開示
された回転型カラムを用いることが、さらに望ましい。
良いが、に−カゼイングリコマクロペプチドはpH4を
境として、それ以下では、モノマー(分子量9,000
)、それを超えるとポリマー(分子量40,000〜5
0,000)として存在するので、限外濾過にて濃縮脱
塩を行う時、溶液のp)Iが4以下の場合は、分画分子
量10,000以下の膜を用いなければならない。
ドを得ようとする場合は、この非吸着画分のpHを4未
満、好ましくは3±0.5に調整する。
ドは互いに会合するために分子量が高くなり膜を通過し
にくくなる。pHの下限は特に制限はないが、pH2,
5以下になるとκ−カゼイングリコマクロペプチドに結
合しているシアル酸が不安定となり、生理効果が減少す
ることがある。但し、脱シアル酸κ−カゼイングリコマ
クロペプチドを得ようとする場合には、PH2,5以下
であっても構わない。pHの調整は酸であれば、塩酸、
硫酸、酢酸、乳酸、クエン酸等、アルカリであれば、苛
性ソーダ、重炭酸ソーダ、アンモニア等を例示し得る。
は10,000〜50,000である。分画分子量10
.000未満の膜を用いるとκ−カゼイングリコマクロ
ペプチドが透過しにくくなり、so 、 oooを超え
る膜ではκ−カゼイングリコマクロペプチドは透過する
ものの共存するホエー蛋白質の一部も透過し、に−カゼ
イングリコマクロペプチドの純度が低くなる。通常、ホ
エー蛋白質濃縮物の製造工程では分画分子量20,00
0程度の膜を装着したモジュールで限外濾過することが
一般的であり、これと同じ膜を用いることができる。
を向上させる上で好ましい。濃縮液に加水し、再度限外
濾過したり、これを繰り返すことは更に好ましい。又、
この際、透過流束を上げるために50℃位に加温しても
良い。しかし、60℃を超えるとホエー蛋白質が沈澱、
或いはゲル化してくるために60℃以下で行うことが望
ましい。濃縮液はpHを中性に戻した後に乾燥し、ホエ
ー蛋白質濃縮物粉末とすることができる。
マクロペプチドの他に、乳糖やミネラルが含まれ、又、
に−カゼイングリコマクロペプチドの濃度も低いので脱
塩、濃縮を行うが、これには2通りの方法がある。
分画分子量50,000以下の膜で限外濾過、ダイアフ
ィルトレージョン、又は逆浸透濾過を行う。
ナトリウム、重炭酸ナトリウム、アンモニア水等を用い
ることができる。に−カゼイングリコマクロペプチドは
pH4を境として、それ以下ではモノマー(分子量9,
000)、それを超えるとポリマー(分子量45.00
0)になることから目的に応じてpH5以上とすること
が好ましい。又、用いる膜は分画分子量50,000以
下なら何でも良いが、50,000を超える膜ではκ−
カゼイングリコマクロペプチドが透過してしまう。一般
のホエー蛋白質濃縮物製造工程中で用いられている分画
分子量20,000程度の膜を用いるのが最も簡便であ
る。
ゼイングリコマクロペプチドはモノマーで存在するので
第2の方法を用いる。すなわち、分子量分画10,00
0以下の膜、好ましくは8.000以下の膜で限外濾過
、ダイアフィルトレージョン、或いは逆浸透濾過を行い
濃縮液を得る。
よる脱塩工程を組み合わせることには全く問題がない。
コマクロペプチドしか含まれていないので、噴霧乾燥又
は凍結乾燥等の手段によって乾燥する。尚、に−カゼイ
ングリコマクロペプチドは熱に対して安定なために乾燥
工程の前に殺菌工程を入れることは更に望ましい。
製造時に副生ずるイオン交換体に非吸着の両分を利用し
て、に−カゼイングリコマクロペプチドを簡便に製造す
ることができる。この場合、原料は副生物であるため、
に−カゼイングリコマクロペプチドのコストを引き下げ
ることができ、主要なホエー蛋白質を除いであるため、
限外濾過処理時、従来法より蛋白質のファウリングによ
る透過流束の減少も起こしに<<、作業時間も短縮され
る。また、トリクロル酢酸等の添加物を一切使用してい
ないので、食品素材や医薬品素材としてκ−カゼイング
リコマクロペプチドを応用することが可能であり、産業
界にとって極めて有益である。
調整した。CM−セファデックスC−50(ファルマシ
ア社製、商品名)25gを40℃の水にて膨潤させてお
き、上記のチーズホエーと混合し、20時間ゆっくり攪
拌し、濾過用金網フィルターにて、非吸着画分とイオン
交換体を分離した。得られた非吸着画分9.9kgをプ
ールし、これを50℃にて分画分子量20.000の限
外濾過膜(DDS社製、商品名GR61pp)にて限外
濾過し、濃縮液をダイアフィルトレージョンにて脱塩し
、さらに、凍結乾燥することによってκ−カゼイングリ
コマクロペプチド粉末160mgを得た。ウレア−5O
5電気泳動で分析したところ純度55%であった。
、CM−セファデックスC−50に吸着しない画分9.
8kgを得た。これを塩酸にてpH3,0とし、分画分
子量20,000の限外濾過膜を用い、50℃にて限外
濾過し、透過液8.9kgを得た。この透過液に25%
苛性ソーダを加え、p)17.0とし、分画分子量20
.000の限外濾過膜にて濃縮し、続いてダイアフィル
トレージョンにて脱塩、さらに凍結乾燥し、に−カゼイ
ングリコマクロペプチド811mgを得た。
であった。
、CM−セファデックスC−50に吸着しない画分9.
8kgを得た。これを塩酸にてpH3,5とし、分画分
子量20,000の限外濾過膜を用い、50℃にて限外
濾過し、透過液8.9kgを得た。この透過液を分画分
子量8,000の限外濾過膜(DDS社製、GR81p
p)にて濃縮し、続いてダイアフィルトレージョンにて
脱塩、さらに凍結乾燥し、に−カゼイングリコマクロペ
プチド90mgを得た。ウレア−3DSt気泳動で分析
したところ純度80%であった。
の水で膨潤させたDFAEセファデックスA−50(フ
ァルマシア社製)25gを充填した充填層型カラムに、
毎時0.51!の流速で通した。その後、水でカラムを
洗浄し、合計12kgの非吸着ホエーを得た。
に−カゼイングリコマクロペプチド粉末55Psgを得
た。ウレア−3DSi4気泳動で分析したところ純度8
0%であった。
kgを50℃の水で膨潤させたインジオン(India
n)S2 (フェニノクスケミカル社製) 400gを
充填した内容積2.31の回転カラムに毎時100I!
の流速で1時間通液した。次いで、水を同じ流速で10
分間通液し、樹脂を洗った。循環通液したホエーおよび
洗液、合計約26kgについて実施例2と同様の処理を
行い、に−カゼイングリコマクロペプチド粉末59mg
を得た。ウレア−3DS電気泳動による分析の結果、純
度82%であった。
0kgを50℃の水で膨潤させたビスチク(Viste
c)CM (ビスコースグループ社製)51を充填した
内容積14βの回転カラムに毎時10007!の流速で
4時間通液した。さらに、水で同じ流速で3分間洗浄し
、非吸着ホエーおよび洗液、合計約230kgを得た。
0.2モルNaJPO4を含む1モルNaCl (pH
8,4)を通液し、吸着ホエー蛋白質を回収した。回収
蛋白質は、分画分子量20,000の膜を備えた限外濾
過装置(DDS社製、GR61pp)で限外濾過し、濃
縮液は、さらにダイアフィルトレージョンを行った。
約2kgを得た。
後、実施例2と同様に限外濾過および脱塩を行い、約2
01を得た。これをさらにロータリーエバポレーターで
120m1まで濃縮し、パルビスミニスプレーGA−3
1(ヤマト社)を用い、入口温度150℃、出口温度8
5℃にて噴霧乾燥し、に−カゼイングリコマクロペプチ
ド17gの粉末を得た。ウレア−3O5電気泳動で分析
した結果、純度79%であった。
Claims (4)
- (1)κ−カゼイングリコマクロペプチドを含有する乳
質原料物質をイオン交換体と接触させ、イオン交換体に
吸着しなかった画分を集め、これを濃縮脱塩することを
特徴とするκ−カゼイングリコマクロペプチドの製造法
。 - (2)濃縮脱塩に際し、イオン交換体に吸着しなかった
画分のpHを4未満に調整した後、分画分子量10,0
00〜50,000の膜を用い、限外濾過処理を行い透
過液を得て、この透過液に分画分子量50,000以下
の膜を用いることを特徴とする請求項1記載のκ−カゼ
イングリコマクロペプチドの製造法。 - (3)限外濾過処理により得られた透過液を再度pH4
以上に調整する請求項2記載のκ−カゼイングリコマク
ロペプチドの製造法。 - (4)透過液を処理するに際し、分画分子量10,00
0以下の膜を用いる請求項2記載のκ−カゼイングリコ
マクロペプチドの製造法。
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