JPH0398583A - 新規α―L―フコシダーゼ - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、糖鎮の構造解析に有用な新規エキソ型α−L
−フコシダーゼに関する。
−フコシダーゼに関する。
α−L−フコシダーゼはα一L−フコシド結合に作用し
て、L−フコースを遊離する酵素で、細菌、カビ、放線
菌、植物、軟体動物、ほ乳類に見出されている。一方、
高等動物由来の糖蛋白質、糖脂質等の複合糖質中の糖鎖
部分には、α−L−フコシル基が頻繁に見出され、これ
らの糖鎮の構造と機能が検討されているが、このために
は、特異性の高いα−L−フコシダーゼが重要な役割を
果す。
て、L−フコースを遊離する酵素で、細菌、カビ、放線
菌、植物、軟体動物、ほ乳類に見出されている。一方、
高等動物由来の糖蛋白質、糖脂質等の複合糖質中の糖鎖
部分には、α−L−フコシル基が頻繁に見出され、これ
らの糖鎮の構造と機能が検討されているが、このために
は、特異性の高いα−L−フコシダーゼが重要な役割を
果す。
従来より、サザエ〔アーカイブズ・オブ・バイオケミス
トリー・アンド・バイオフィジクス(^rchives
Biochem, & Biophys, ) 、第
145巻、第50頁(1 9 7 1年)〕、ホラガイ
〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリ−( J,Bi
ochem.)第70巻、第75頁(1 9 7 1年
)〕等の軟体動物及びほ乳動物臓器にアグリコン特異性
の広いα−L−フコシダーゼが見出されている。しかし
、これらの酵素はその広いアグリコン特異性のために、
フコシル基の置換位置を推定することはできない。一方
、クロストリディウム属〔ジャーナル・オブ・バイオロ
ジカル・ ケ ミ ス ト リ ー ( J.
Biol . Chem, ) 第 2 4 5
巻、第1659頁(1 9 7 0年)〕、アスペルギ
ルス属(ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミスト
リー第245巻、第299頁(1970年)〕、フサリ
ウム属〔アグリカルチコラル・バイオロジカル・ケミス
トリ−( Agr. Bio1、Chem, )第49
巻、第3179頁(1 9 8 5年)及びコリネバク
テリウム属(特開昭62−155086号)等の酵素の
基質特異性は比較的限定的で、α1→2フコシル基には
作用するが、他のフコシド結合には作用しないか、又は
弱く作用する。またアーモンドエムルシンのフコシダー
ゼ■〔ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー第257巻、第8205頁(1 9 8 2年〉〕は
α1→3及びα1→4フコシド結合に作用し、α1→2
とα1→6フコシド結合及び合戒基質には全く作用しな
い。
トリー・アンド・バイオフィジクス(^rchives
Biochem, & Biophys, ) 、第
145巻、第50頁(1 9 7 1年)〕、ホラガイ
〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリ−( J,Bi
ochem.)第70巻、第75頁(1 9 7 1年
)〕等の軟体動物及びほ乳動物臓器にアグリコン特異性
の広いα−L−フコシダーゼが見出されている。しかし
、これらの酵素はその広いアグリコン特異性のために、
フコシル基の置換位置を推定することはできない。一方
、クロストリディウム属〔ジャーナル・オブ・バイオロ
ジカル・ ケ ミ ス ト リ ー ( J.
Biol . Chem, ) 第 2 4 5
巻、第1659頁(1 9 7 0年)〕、アスペルギ
ルス属(ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミスト
リー第245巻、第299頁(1970年)〕、フサリ
ウム属〔アグリカルチコラル・バイオロジカル・ケミス
トリ−( Agr. Bio1、Chem, )第49
巻、第3179頁(1 9 8 5年)及びコリネバク
テリウム属(特開昭62−155086号)等の酵素の
基質特異性は比較的限定的で、α1→2フコシル基には
作用するが、他のフコシド結合には作用しないか、又は
弱く作用する。またアーモンドエムルシンのフコシダー
ゼ■〔ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー第257巻、第8205頁(1 9 8 2年〉〕は
α1→3及びα1→4フコシド結合に作用し、α1→2
とα1→6フコシド結合及び合戒基質には全く作用しな
い。
また、ストレプトマイセス属よりのムシン分解酵素は、
α1−2フコシド結合を持つムシン及びα−グリコシド
結合を持つp−ニトロフェニルーα一L−フコシドに作
用すると報告されている(特開平1−168283号公
報)以上のように現在のところ、α1→2フコシド結合
に特異的なフコシダーゼを用いて、糖釦中のα1→2フ
コシル基の有無を直接推定することはできるが、α1→
3フコシド結合に特異〕、的なフコシダーゼはもとより
、αl→3及びα1→2フコシド結合に特異的なフコシ
ダーゼも知られていないため、フコシダーゼを用いて糖
鎖中のα1→3フコシル基の有無を直接推定することは
できない。
α1−2フコシド結合を持つムシン及びα−グリコシド
結合を持つp−ニトロフェニルーα一L−フコシドに作
用すると報告されている(特開平1−168283号公
報)以上のように現在のところ、α1→2フコシド結合
に特異的なフコシダーゼを用いて、糖釦中のα1→2フ
コシル基の有無を直接推定することはできるが、α1→
3フコシド結合に特異〕、的なフコシダーゼはもとより
、αl→3及びα1→2フコシド結合に特異的なフコシ
ダーゼも知られていないため、フコシダーゼを用いて糖
鎖中のα1→3フコシル基の有無を直接推定することは
できない。
したがって本発明の目的は、α1→3フコシド結合構造
解析に有用なα一L−フコシダーゼを提供することにあ
る。
解析に有用なα一L−フコシダーゼを提供することにあ
る。
本発明を概説すれば、本発明は下記の理化学的性質を有
することを特徴とするエキソ型α−L−フコシダーゼに
関する。
することを特徴とするエキソ型α−L−フコシダーゼに
関する。
(I)作用:
α−L−フコシドに作用して、L−フコースを遊離する
(n)基質特異性:
α1→3及びα1→2フコシド結合に作用する。α1→
4及びα1→6フコシド結合に作用しない。また、p−
ニトロフェニル−αL−フコシドにも作用しない (III)至適pH:pH6付近 (IV)至適温度=37℃付近 (V)分子量:約93000 (ゲルろ過法による) 本発明者らは、上記現状にかんがみ、αl→3フコシド
結合分解フコシダーゼを探索中のところ、ある種の放線
菌がα1→3及びαl→2フコシド結合に特異的なα−
L−フコシダーゼを産生ずることを見出し、本発明に到
達した。
4及びα1→6フコシド結合に作用しない。また、p−
ニトロフェニル−αL−フコシドにも作用しない (III)至適pH:pH6付近 (IV)至適温度=37℃付近 (V)分子量:約93000 (ゲルろ過法による) 本発明者らは、上記現状にかんがみ、αl→3フコシド
結合分解フコシダーゼを探索中のところ、ある種の放線
菌がα1→3及びαl→2フコシド結合に特異的なα−
L−フコシダーゼを産生ずることを見出し、本発明に到
達した。
以下、本発明について詳細に説明する。
本発明に使用される菌株は、α−L−フコシダーゼ生産
能を有する菌株であればいかなる菌株でもよく、またこ
れらの菌株の変異株でもよい。α一L−フコシダーゼ生
産能を有する菌株の具体例としては、例えば、ストレブ
トマイセス(Streptomyces) S P 1
4 2が挙げられる。
能を有する菌株であればいかなる菌株でもよく、またこ
れらの菌株の変異株でもよい。α一L−フコシダーゼ生
産能を有する菌株の具体例としては、例えば、ストレブ
トマイセス(Streptomyces) S P 1
4 2が挙げられる。
本菌は、滋賀県内の土壌中より本発明者らが新たに検索
して得た菌株で、その菌学的性質は次のとおりである。
して得た菌株で、その菌学的性質は次のとおりである。
(1)形態的性質
基生菌糸は長く伸張し、よく分岐するが、通常は分断し
ない。胞子はオートミール寒天培地、イースト・麦芽寒
天培地で良く形或される。顕微鏡で観察すると気菌糸の
分岐方法は単純分岐で、輪生分岐は見られない。気菌糸
先端の形状は直状ないしかぎ型で、まれにはループ状も
認められる。胞子は通常lO〜20個の連鎖が認められ
、表面はスムーズである。胞子の形状は円筒形ないし楕
円形で、その大きさは、0.7〜0.8X0.9〜1.
0μmある。胞子のう、運動性胞子、菌核などは観察さ
れない。
ない。胞子はオートミール寒天培地、イースト・麦芽寒
天培地で良く形或される。顕微鏡で観察すると気菌糸の
分岐方法は単純分岐で、輪生分岐は見られない。気菌糸
先端の形状は直状ないしかぎ型で、まれにはループ状も
認められる。胞子は通常lO〜20個の連鎖が認められ
、表面はスムーズである。胞子の形状は円筒形ないし楕
円形で、その大きさは、0.7〜0.8X0.9〜1.
0μmある。胞子のう、運動性胞子、菌核などは観察さ
れない。
(2)各種培地上での生育状態
各種培地上に27℃で14日間培養したときの肉眼での
観察結果を第l表に示す。
観察結果を第l表に示す。
飄
第
表
(3)生理的性質
(イ)生育温度範囲(酵母・麦芽寒天培地):10〜3
7℃の温度範囲で生育し、25〜30℃で良好に生育す
る。
7℃の温度範囲で生育し、25〜30℃で良好に生育す
る。
(0ゼラチンの液化:陽性
(ハ)スターチの加水分解:陽性
(二)脱脂乳のペプトン化:陽性
脱脂乳の凝固:陰性
(ネ)メラニン様色素の生或:陰性
(4)炭素源の利用(プリドハム・ゴトリーブ寒天培地
上で27℃、14日間培養) (イ)利用する:D−グルコース,D−フラクトース,
L−アラビノース.D〜キシロース,L−ラムノース.
D−マンニトール,ラフィノース,L−フコース (ロ)利用しない:イノシトール.シュクロース以上の
性状より、本菌株は、放線菌の中でストレブトマイセス
属に属し、気菌糸の色調は“白色”〜“灰色”シリーズ
、気菌糸先端は直状ないしかぎ型で、胞子表面はスムー
ズ、コロ二一裏面の色調は白色〜淡褐色で、メラニン様
色素を生産しない菌株と要約される。本発明者らは本菌
株をストレプトマイセス・エスピー142と称し、本菌
株はStreptomyces sp 142と表示し
、工業技術院微生物工業技術研究所に、微工研菌寄第1
0806号(FERM P−10 8 0 6)とし
て寄託されている。
上で27℃、14日間培養) (イ)利用する:D−グルコース,D−フラクトース,
L−アラビノース.D〜キシロース,L−ラムノース.
D−マンニトール,ラフィノース,L−フコース (ロ)利用しない:イノシトール.シュクロース以上の
性状より、本菌株は、放線菌の中でストレブトマイセス
属に属し、気菌糸の色調は“白色”〜“灰色”シリーズ
、気菌糸先端は直状ないしかぎ型で、胞子表面はスムー
ズ、コロ二一裏面の色調は白色〜淡褐色で、メラニン様
色素を生産しない菌株と要約される。本発明者らは本菌
株をストレプトマイセス・エスピー142と称し、本菌
株はStreptomyces sp 142と表示し
、工業技術院微生物工業技術研究所に、微工研菌寄第1
0806号(FERM P−10 8 0 6)とし
て寄託されている。
本発明のα−L−フコシダーゼは、例えば上述した菌を
栄養培地中で培養し、該培養物から酵素を分離すること
によって得られる。培養に当っては、通常の微生物の培
養方法が用いられる。
栄養培地中で培養し、該培養物から酵素を分離すること
によって得られる。培養に当っては、通常の微生物の培
養方法が用いられる。
培地に加える栄養源は、本菌株が利用し、α−L−フコ
シダーゼを生産するものであればよく、炭素源としては
、例えばグリセロール、グルコース、マルトース、ラク
トース、L−フコースなどが利用でき、窒素源としては
、酵母エキス、ペプトン、コーンスティーブリカー、肉
エキス、脱脂大豆、硫安、塩化アンモニウムなどが適当
である。その゜他にリン酸塩、カリウム塩、マグネシウ
ム塩、亜鉛塩などの無機質及び金属塩類を加えてもよい
。なお、本発明のα−L−フコシダーゼは誘導酵素であ
るため、L−フコースを培地に添加すれば著しく酵素生
産量が増大する。
シダーゼを生産するものであればよく、炭素源としては
、例えばグリセロール、グルコース、マルトース、ラク
トース、L−フコースなどが利用でき、窒素源としては
、酵母エキス、ペプトン、コーンスティーブリカー、肉
エキス、脱脂大豆、硫安、塩化アンモニウムなどが適当
である。その゜他にリン酸塩、カリウム塩、マグネシウ
ム塩、亜鉛塩などの無機質及び金属塩類を加えてもよい
。なお、本発明のα−L−フコシダーゼは誘導酵素であ
るため、L−フコースを培地に添加すれば著しく酵素生
産量が増大する。
α一L−フコシダーゼ生産菌を培養するに当り、生産量
は培養条件により大きく変動するが、一般に培養温度は
20〜35℃、培地のpH5〜8が良く、1日〜7日の
通気かくはん培養で、本発明によるα−L−フコシダー
ゼが生産される。培養条件は使用する菌株、培地組或な
どに応じ、α一L−フコシダーゼの生産量が最大になる
ように設定するのは当然である。
は培養条件により大きく変動するが、一般に培養温度は
20〜35℃、培地のpH5〜8が良く、1日〜7日の
通気かくはん培養で、本発明によるα−L−フコシダー
ゼが生産される。培養条件は使用する菌株、培地組或な
どに応じ、α一L−フコシダーゼの生産量が最大になる
ように設定するのは当然である。
上述の放線菌によって生産されたα一L−フコシダーゼ
は主に菌体内に存在するので、培養物を固液分離し、得
られた湿菌体から通常用いられる超音波処理、フレンチ
プレス、ダイナミルなどの種々の破壊手段を用いて菌体
を破壊すると、あるいはりゾチームのごとき細胞壁溶解
酵素を用いて菌体細胞壁を溶解すると無細胞抽出液が得
られる。次いで、この抽出液から通常用いられる精製手
段により精製酵素標品を得ることができる。例えば、塩
析、有機溶媒沈殿、イオン交換カラムクロマト、疎水結
合カラムクロマト、ゲルろ過、凍結乾燥などにより、精
製を行い、ポリアクリルアミドゲルディスク電気泳動的
に単一な精製α−L−フコシダーゼを得ることができる
。
は主に菌体内に存在するので、培養物を固液分離し、得
られた湿菌体から通常用いられる超音波処理、フレンチ
プレス、ダイナミルなどの種々の破壊手段を用いて菌体
を破壊すると、あるいはりゾチームのごとき細胞壁溶解
酵素を用いて菌体細胞壁を溶解すると無細胞抽出液が得
られる。次いで、この抽出液から通常用いられる精製手
段により精製酵素標品を得ることができる。例えば、塩
析、有機溶媒沈殿、イオン交換カラムクロマト、疎水結
合カラムクロマト、ゲルろ過、凍結乾燥などにより、精
製を行い、ポリアクリルアミドゲルディスク電気泳動的
に単一な精製α−L−フコシダーゼを得ることができる
。
本発明により得られるα−L−フコシダーゼの酵素化学
的及び理化学的性質は次のとおりである。
的及び理化学的性質は次のとおりである。
(1) 作 用 :
α一L−フコシドに作用して、L−フコースを遊離する
。
。
(2)基質特異性:
本酵素は、ヒトα1一酸性糖蛋白質由来のα1→3フコ
シル基を有する複合型糖鎖に作用して、L−フコースを
遊離させる。また人乳白来の2′−フコシルラクトース
にも作用するが、ブタサイログロプリン由来のα1→6
フコシル基を還元末端に有する複合型糖鎮及びα1→4
フコシル基を有するシアリルールイスa型糖鎖には作用
しない。すなわち、本酵素はα1→3及びα1→2フコ
シド結合に特異的で、αl→4とα1→6フコシド結合
には作用しない。
シル基を有する複合型糖鎖に作用して、L−フコースを
遊離させる。また人乳白来の2′−フコシルラクトース
にも作用するが、ブタサイログロプリン由来のα1→6
フコシル基を還元末端に有する複合型糖鎮及びα1→4
フコシル基を有するシアリルールイスa型糖鎖には作用
しない。すなわち、本酵素はα1→3及びα1→2フコ
シド結合に特異的で、αl→4とα1→6フコシド結合
には作用しない。
また、本酵素は、α−グリコシド結合を持つp−ニトロ
フェニルーα−L−フコシドにも作用しない。
フェニルーα−L−フコシドにも作用しない。
(3)至適pt+及びpH安定性
本酵素の至適pHは第1図の曲線で表されるごと<p8
6.0付近に高い活性を有している。
6.0付近に高い活性を有している。
本酵素を37℃において、それぞれのJ)Hで60分間
処理したときのpH安定性を第2図に示した。第2図よ
り明らかなように本酵素はpH6.0〜7.5の間で安
定である。なお、第1図ば本発明により得られるα−L
−フコシダーゼのpH (横軸)と相対活性(%、縦軸
)の関係を表すグラフ、第2図はpH (横軸)と残存
活性(%、縦軸)との関係を示すグラフである。
処理したときのpH安定性を第2図に示した。第2図よ
り明らかなように本酵素はpH6.0〜7.5の間で安
定である。なお、第1図ば本発明により得られるα−L
−フコシダーゼのpH (横軸)と相対活性(%、縦軸
)の関係を表すグラフ、第2図はpH (横軸)と残存
活性(%、縦軸)との関係を示すグラフである。
(4)至適温度及び熱安定性
本酵素の作用最適温は37℃であり、25℃〜40℃の
範囲で適用可能である。本酵素は37℃で一夜間安定で
あり、凍結品は−30℃で少なくとも数か月間安定であ
る。
範囲で適用可能である。本酵素は37℃で一夜間安定で
あり、凍結品は−30℃で少なくとも数か月間安定であ
る。
(5)分子量
分子量は約93000である(トヨパールHW−553
を用いたゲルろ過法による)(6)酵素活性の測定 α一L−フコシダーゼ活性の測定は次のようにして求め
た。基質として下記式: ,/ \一 T ↑ 句 句 1 5 一一/\一 ↑ ↑ ↑ 一一一 曵亀 亀 二;\ 二 ↑ ↑ ↑ ↑ 一一一一 QIQI む Ql を意味する。〕 で表される構造のピリジルアミノ化糖鎖を用いた。本基
質及びこれからフコースが遊離した酵素反応生戒物は還
元末端をピリジルアミノ基で標識してあるために、蛍光
検出器を備えた逆相系あるいはアミド系高速液体クロマ
トグラフイーで直接定性定量分析が可能である。上記の
基質2 0 pmolを含む250m[Iン酸ナトリウ
ム緩衝液4μlに酵素液6μlを加えて混合し、37℃
で20分間反応させた後、1%のトリフルオロ酢酸溶液
40μlを加えて反応を停止させ、高速液体クロマトグ
ラフィーに供した。この条件下で、1分間に1μmol
のアフコ糖鎮を生じる酵素量を1単位とする。
を用いたゲルろ過法による)(6)酵素活性の測定 α一L−フコシダーゼ活性の測定は次のようにして求め
た。基質として下記式: ,/ \一 T ↑ 句 句 1 5 一一/\一 ↑ ↑ ↑ 一一一 曵亀 亀 二;\ 二 ↑ ↑ ↑ ↑ 一一一一 QIQI む Ql を意味する。〕 で表される構造のピリジルアミノ化糖鎖を用いた。本基
質及びこれからフコースが遊離した酵素反応生戒物は還
元末端をピリジルアミノ基で標識してあるために、蛍光
検出器を備えた逆相系あるいはアミド系高速液体クロマ
トグラフイーで直接定性定量分析が可能である。上記の
基質2 0 pmolを含む250m[Iン酸ナトリウ
ム緩衝液4μlに酵素液6μlを加えて混合し、37℃
で20分間反応させた後、1%のトリフルオロ酢酸溶液
40μlを加えて反応を停止させ、高速液体クロマトグ
ラフィーに供した。この条件下で、1分間に1μmol
のアフコ糖鎮を生じる酵素量を1単位とする。
本発明のα−L−フコシダーゼを利用して以下の事項を
解明することができる。
解明することができる。
(1)複合糖質中のフコース残基の役割を知ることがで
きる。
きる。
(2) 本酵素と、例えばコリネバクテリウム属の生
産するα1−2フコシド結合特異的α−L−フコシダー
ゼを用いれば、複合糖質中のフコシル基の有無及び置換
位置を直接推定することが可能である。すなわち、複合
糖質にまずα1→2フコシダーゼを作用させて、遊離α
一L−フコース量を測定すれば糖質中のα1→2フコシ
ル基の有無を推定することができ、更に続けて本発明の
α−L−フコシダーゼを作用させてα〜L−フコース生
成量を測定すれば、糖鎮中のα1→3フコシル基の有無
を直接推定することができる。
産するα1−2フコシド結合特異的α−L−フコシダー
ゼを用いれば、複合糖質中のフコシル基の有無及び置換
位置を直接推定することが可能である。すなわち、複合
糖質にまずα1→2フコシダーゼを作用させて、遊離α
一L−フコース量を測定すれば糖質中のα1→2フコシ
ル基の有無を推定することができ、更に続けて本発明の
α−L−フコシダーゼを作用させてα〜L−フコース生
成量を測定すれば、糖鎮中のα1→3フコシル基の有無
を直接推定することができる。
(3)@鎖還元末端をあらかじめ還元ピリジルアミノ化
法〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリー、第95巻
、第197〜203頁(1984))にて蛍光標識した
糖釦を用いて、上記の逐次酵素消化法と2次元糖鎮マッ
プ法〔アナリティカル・バイオケミストリー(^nal
, Biochem.)第171巻、第73頁(198
8))を組合せることによって、α1→2及びα1→3
フコシル基も含めた糖鎮構造全体を、従来の数百倍の感
度で推定することができる。
法〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリー、第95巻
、第197〜203頁(1984))にて蛍光標識した
糖釦を用いて、上記の逐次酵素消化法と2次元糖鎮マッ
プ法〔アナリティカル・バイオケミストリー(^nal
, Biochem.)第171巻、第73頁(198
8))を組合せることによって、α1→2及びα1→3
フコシル基も含めた糖鎮構造全体を、従来の数百倍の感
度で推定することができる。
(4)還元末端を〔3H〕 ・標識した糖鎖、あるい
は、末標識糖鎖を用いて、(2)の逐次酵素消化を行い
、酵素消化物をゲルろ過クロマトグラフィーやイオン交
換クロマトグラフィ一等で分析することによって、糖釦
構造を推定することができる。
は、末標識糖鎖を用いて、(2)の逐次酵素消化を行い
、酵素消化物をゲルろ過クロマトグラフィーやイオン交
換クロマトグラフィ一等で分析することによって、糖釦
構造を推定することができる。
次に、実施例を挙げて本発明を説明するが、本発明は以
下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。
下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。
実施例1
(1) 菌の培養と無細胞抽出液の調製ストレブトマ
イセス・エスビー・142〔微工研菌寄第10806号
(FERM P−10806)]・をペプトン0.3
%、イーストエキス0.05%、リン酸−カリウム0.
1%、硫酸マグネシウム7永和物0.05%及びL−フ
コース1%を含む500mll!の液体培地(pH7.
0)を用いて25〜27℃で2日間培養した後、培養液
を遠心分離して菌体を得た。菌体を1mMのエチレンジ
アミン四酢酸を含む10mMIJン酸ナトリウム緩衝液
pH7.0で洗浄後、同緩衝液に懸濁して超音波処理し
、遠心分離によって菌体残渣を除いて、無細胞抽出液を
得た。
イセス・エスビー・142〔微工研菌寄第10806号
(FERM P−10806)]・をペプトン0.3
%、イーストエキス0.05%、リン酸−カリウム0.
1%、硫酸マグネシウム7永和物0.05%及びL−フ
コース1%を含む500mll!の液体培地(pH7.
0)を用いて25〜27℃で2日間培養した後、培養液
を遠心分離して菌体を得た。菌体を1mMのエチレンジ
アミン四酢酸を含む10mMIJン酸ナトリウム緩衝液
pH7.0で洗浄後、同緩衝液に懸濁して超音波処理し
、遠心分離によって菌体残渣を除いて、無細胞抽出液を
得た。
(2)酵素の調製
上記に得た無細胞抽出液100mlを、1 mMエチレ
ンジアミン四酢酸を含む10mMリン酸ナトリウム緩衝
液pH7.3を用いて平衡化したDEAE−セファロー
スCL−6Bのカラム(7,O x 3 8cm)にか
けた。カラムをその3倍容量の同一の緩衝液で洗浄し、
次いで200mM塩化ナトリウムを含む同緩衝液で溶出
し、活性画分を集めた。活性画分は限外ろ過(分画分子
量1万)にて濃縮後1mMエチレンジアミン四酢酸を含
む10mMIJン酸ナトリウム緩衝液pH7Jに対して
透析し、同緩衝液で平衡化したDEAE−セファロース
CL−6Bのカラム(2.O X 2 5cm)にかけ
た。
ンジアミン四酢酸を含む10mMリン酸ナトリウム緩衝
液pH7.3を用いて平衡化したDEAE−セファロー
スCL−6Bのカラム(7,O x 3 8cm)にか
けた。カラムをその3倍容量の同一の緩衝液で洗浄し、
次いで200mM塩化ナトリウムを含む同緩衝液で溶出
し、活性画分を集めた。活性画分は限外ろ過(分画分子
量1万)にて濃縮後1mMエチレンジアミン四酢酸を含
む10mMIJン酸ナトリウム緩衝液pH7Jに対して
透析し、同緩衝液で平衡化したDEAE−セファロース
CL−6Bのカラム(2.O X 2 5cm)にかけ
た。
カラムをその2倍容量の同一の緩衝液で洗浄し、次いで
塩化ナトリウムの0−0.3M直線濃度勾配液で溶出し
た。43−47の両分から本発明のα−L−フコシダー
ゼを得た。こうして得られたα−L−フコシダーゼの比
活性は0.9m単位/mgであり、構造解析用試薬とし
て充分使用可能であった。
塩化ナトリウムの0−0.3M直線濃度勾配液で溶出し
た。43−47の両分から本発明のα−L−フコシダー
ゼを得た。こうして得られたα−L−フコシダーゼの比
活性は0.9m単位/mgであり、構造解析用試薬とし
て充分使用可能であった。
なお、上記酵素を比活性は前記の測定法によって測定し
た。
た。
本発明により、複合糖鎖の構造と機能の解明に有用な新
規α一L−フコシダーゼが提供された。
規α一L−フコシダーゼが提供された。
第1図は本発明により得られるα−L−フコシダーゼの
poと活性の関係を表すグラフ、第2図はα一L−フコ
シダーゼを37℃において、それぞれのpHで60分間
処理した後のpHと活性の関係を表すグラフである。 a文寸ラ舌+生 (%)
poと活性の関係を表すグラフ、第2図はα一L−フコ
シダーゼを37℃において、それぞれのpHで60分間
処理した後のpHと活性の関係を表すグラフである。 a文寸ラ舌+生 (%)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記の理化学的性質を有することを特徴とするエキ
ソ型α−L−フコシダーゼ。 ( I )作用: α−L−フコシドに作用して、L−フコ ースを遊離する (II)基質特異性: α1→3及びα1→2フコシド結合に作 用する。α1→4及びα1→6フコシド結 合に作用しない。また、p−ニトロフェニ ル−α−L−フコシドにも作用しない (III)至適pH:pH6付近 (IV)至適温度:37℃付近 (V)分子量:約93000(ゲルろ過法による)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23479189A JPH0398583A (ja) | 1989-09-12 | 1989-09-12 | 新規α―L―フコシダーゼ |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23479189A JPH0398583A (ja) | 1989-09-12 | 1989-09-12 | 新規α―L―フコシダーゼ |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0398583A true JPH0398583A (ja) | 1991-04-24 |
Family
ID=16976445
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP23479189A Pending JPH0398583A (ja) | 1989-09-12 | 1989-09-12 | 新規α―L―フコシダーゼ |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0398583A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0919237A4 (en) * | 1996-01-26 | 2004-10-13 | Takara Bio Inc | APOPTOSIS INDUCERS |
-
1989
- 1989-09-12 JP JP23479189A patent/JPH0398583A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0919237A4 (en) * | 1996-01-26 | 2004-10-13 | Takara Bio Inc | APOPTOSIS INDUCERS |
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