JPH0380091A - 新規微生物及び該微生物を用いた2,6―ナフタレンジカルボン酸の製造法 - Google Patents
新規微生物及び該微生物を用いた2,6―ナフタレンジカルボン酸の製造法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、シュードモナス属に属する新規微生物、及び
該微生物、その休止菌体または菌体由来の酵素を用いて
2,6−ジメチルナフタレンを酸化1,2.6−ナフタ
レンジカルボン酸を製造する方法に関する。
該微生物、その休止菌体または菌体由来の酵素を用いて
2,6−ジメチルナフタレンを酸化1,2.6−ナフタ
レンジカルボン酸を製造する方法に関する。
2.6−ナフタレンジカルボン酸は高機能性樹脂原料、
合成中間体として有用な化合物であり、現在化学合成法
により生産されている。ところで、この2,6−ナフタ
レンジカルボン酸を高機能性樹脂原料として用いる場合
、同−芳香環主にカルボキシル基が複数個導入されたも
のが混入していると重合度を低下させるため、純度の高
い2,6−ナフタレンジカルボン酸が必要とされる。
合成中間体として有用な化合物であり、現在化学合成法
により生産されている。ところで、この2,6−ナフタ
レンジカルボン酸を高機能性樹脂原料として用いる場合
、同−芳香環主にカルボキシル基が複数個導入されたも
のが混入していると重合度を低下させるため、純度の高
い2,6−ナフタレンジカルボン酸が必要とされる。
しかしながら、化学合成法は高温反応であるため、官能
基の転移が起こりやすく、純度の高い2゜6−ナフタレ
ンジカルボン酸が得られにくい。・また、化学合成法は
高温高圧反応であるため爆発の危険性があり、大量のエ
ネルギーを消費する等の問題点もあった。
基の転移が起こりやすく、純度の高い2゜6−ナフタレ
ンジカルボン酸が得られにくい。・また、化学合成法は
高温高圧反応であるため爆発の危険性があり、大量のエ
ネルギーを消費する等の問題点もあった。
これらの問題点を解決する方法として、微生物を用いた
微生物酸化法の研究が進められている。
微生物酸化法の研究が進められている。
微生物酸化法は常温常圧で反応させることができるうえ
、官能基の転移が起こらないため副生物の生産がほとん
どないという優れた特徴を有している。
、官能基の転移が起こらないため副生物の生産がほとん
どないという優れた特徴を有している。
しかしながら、これまでの方法では微生物を用いて2.
6−シメチルナフタ、レンを酸化しても、一方のメチル
基しか酸化されず、2,6−ナフタレンジカルボン酸を
生産することはできなかった(B、 八、 BへR
NSLBY 八PPLIIED AND BNV
IRONMBNT八LMICROBIOへOGY VO
L、 54. No、2 Feb、 1988
年。
6−シメチルナフタ、レンを酸化しても、一方のメチル
基しか酸化されず、2,6−ナフタレンジカルボン酸を
生産することはできなかった(B、 八、 BへR
NSLBY 八PPLIIED AND BNV
IRONMBNT八LMICROBIOへOGY VO
L、 54. No、2 Feb、 1988
年。
428〜433頁)。また、糖質との共酸化により2.
6−ナフタレンジカルボン酸の生産を確認した報告もあ
るが、収量が低く定性的な研究にとどまっている(G、
K、 5KRYABIN、 et al、、 DOK
L。
6−ナフタレンジカルボン酸の生産を確認した報告もあ
るが、収量が低く定性的な研究にとどまっている(G、
K、 5KRYABIN、 et al、、 DOK
L。
AKAD、 NへlIK[l5sR202,973〜
974 頁。
974 頁。
1972年)。
このため、新規な2,6−ナフタレンジカルボン酸生産
菌を見出し、微生物酸化法により2,6ジメチルナフタ
レンから2.6−ナフタレンジカルボン酸を製造する方
法の開発が望まれていた。
菌を見出し、微生物酸化法により2,6ジメチルナフタ
レンから2.6−ナフタレンジカルボン酸を製造する方
法の開発が望まれていた。
斯かる実情において、本発明者らは、前記課題を解決せ
んと鋭意検討を重ね、幾多の微生物をスクリーニングし
た結果、2.6−ジメチルナフタレンの両側のメチル基
を酸化できる酸化力の強い新規微生物を見出し、本発明
を完成した。
んと鋭意検討を重ね、幾多の微生物をスクリーニングし
た結果、2.6−ジメチルナフタレンの両側のメチル基
を酸化できる酸化力の強い新規微生物を見出し、本発明
を完成した。
すなわち、本発明は、シュードモナス属に属し、2.6
−ジメチルナフタレンを単一炭素源として生育可能であ
る2、6−ナフタレンジカルボン酸生産菌ならびに該2
,6−ナフタレンジカルボン酸生産菌を、2,6−ジメ
チルナフタレンを含む培地で培養することを特徴とする
2、6−ナフタレンジカルボン酸の製造法及び該2.6
−ナフタレンジカルボン酸生産菌の体止菌体もしくは菌
体由来の酵素を2.6−ジメチルナフタレンと接触させ
ることを特徴とする2、6−ナフタレンジカルボン酸の
製造法を提供するものである。
−ジメチルナフタレンを単一炭素源として生育可能であ
る2、6−ナフタレンジカルボン酸生産菌ならびに該2
,6−ナフタレンジカルボン酸生産菌を、2,6−ジメ
チルナフタレンを含む培地で培養することを特徴とする
2、6−ナフタレンジカルボン酸の製造法及び該2.6
−ナフタレンジカルボン酸生産菌の体止菌体もしくは菌
体由来の酵素を2.6−ジメチルナフタレンと接触させ
ることを特徴とする2、6−ナフタレンジカルボン酸の
製造法を提供するものである。
本発明の新規微生物は、通常の手段、例えば炭素源とし
て2,6−ジメチルナフタレンのみを添加した培地を用
いて、該培地で生育し、2,6ナフタレンジカルボン酸
生産能力があるか否かをもってスクリーニングすること
により分離することができる。
て2,6−ジメチルナフタレンのみを添加した培地を用
いて、該培地で生育し、2,6ナフタレンジカルボン酸
生産能力があるか否かをもってスクリーニングすること
により分離することができる。
当該分離方法の詳細を以下に例示する。すなわち、微生
物の増殖に必要な成分のうち炭素源を含まない培地(以
下、培地という)を試験管等に分注、滅菌した後、予め
採取した土壌を添加する。
物の増殖に必要な成分のうち炭素源を含まない培地(以
下、培地という)を試験管等に分注、滅菌した後、予め
採取した土壌を添加する。
これに2.6−ジメチルナフタレンを加え、試験管振と
う機等により培養を行なう。この培養液を予め培地を分
注しておいた別の試験管等に白金耳等を用いて植えつぎ
した後、2.6−ジメチルナフタレンを添加し試験管振
とう機等によりさらに培養する。この培養液もしくは滅
菌水等で希釈した培養液を寒天培地等に塗布した後、2
.6−ジメチルナフタレンを添加し、さらに培養する。
う機等により培養を行なう。この培養液を予め培地を分
注しておいた別の試験管等に白金耳等を用いて植えつぎ
した後、2.6−ジメチルナフタレンを添加し試験管振
とう機等によりさらに培養する。この培養液もしくは滅
菌水等で希釈した培養液を寒天培地等に塗布した後、2
.6−ジメチルナフタレンを添加し、さらに培養する。
培養によって得られたコロニーを単離し、それぞれの菌
株について2.6−ナフタレンジカルボン酸生産能力を
確g忍することにより、2,6−ナツタレンジカルボン
酸生産菌を選択することができる。
株について2.6−ナフタレンジカルボン酸生産能力を
確g忍することにより、2,6−ナツタレンジカルボン
酸生産菌を選択することができる。
前記分離操作に用いる培地には炭素源以外は一般的な培
地成分を使用することができる。すなわち、窒素源とし
ては、例えばアンモニア、塩化アンモニウム、燐酸アン
モニウム、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸
アンモニウム、硝酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、尿
素等が、無機塩類としては、例えばカリウ・ム、ナトリ
ウム、鉄、マクネシウム、マンガン、銅、カルシウム、
コバルト等の各塩類等が使用できる。また、前記分離操
作における培養条件は、一般に微生物が死滅しない培養
条件であればよく、例えばpH約4〜9、温度約10〜
40℃で約1〜30日間好気的に培養すればよい。得ら
れた菌株の2,6−ナフタレンジカルボン酸の生産能力
の確認は、それぞれの菌株を前記分離操作に用いたと同
様の培地に2゜6−ジメチルナフタレンを添加した培地
中で、同様の条件で培養した培養液を遠心分離等で分離
した後、上清を適当な分析手法、例えば高速液体クロマ
トグラフィー(HPLC) 、ガスクロマトグラフイー
(GC) 、核磁気共鳴スペクトル(NMR)、赤外線
吸収スペクトル(IR) 、紫外線吸収スペクトル(I
IV)等を用いて分析すればよい。
地成分を使用することができる。すなわち、窒素源とし
ては、例えばアンモニア、塩化アンモニウム、燐酸アン
モニウム、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸
アンモニウム、硝酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、尿
素等が、無機塩類としては、例えばカリウ・ム、ナトリ
ウム、鉄、マクネシウム、マンガン、銅、カルシウム、
コバルト等の各塩類等が使用できる。また、前記分離操
作における培養条件は、一般に微生物が死滅しない培養
条件であればよく、例えばpH約4〜9、温度約10〜
40℃で約1〜30日間好気的に培養すればよい。得ら
れた菌株の2,6−ナフタレンジカルボン酸の生産能力
の確認は、それぞれの菌株を前記分離操作に用いたと同
様の培地に2゜6−ジメチルナフタレンを添加した培地
中で、同様の条件で培養した培養液を遠心分離等で分離
した後、上清を適当な分析手法、例えば高速液体クロマ
トグラフィー(HPLC) 、ガスクロマトグラフイー
(GC) 、核磁気共鳴スペクトル(NMR)、赤外線
吸収スペクトル(IR) 、紫外線吸収スペクトル(I
IV)等を用いて分析すればよい。
前記分離操作によって得られた微生物の一例であるI)
−186株を、細菌の分類同定法〔パージエイズ・マニ
ュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー(
Bergey’s Manual ofSystema
tic Bacteriology)第1版、 198
4年〕に従って同定試験を行なった。その結果、本発明
の新規微生物D−186は、以下のような菌学的性質を
有する。
−186株を、細菌の分類同定法〔パージエイズ・マニ
ュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー(
Bergey’s Manual ofSystema
tic Bacteriology)第1版、 198
4年〕に従って同定試験を行なった。その結果、本発明
の新規微生物D−186は、以下のような菌学的性質を
有する。
(a) 形態
■細胞の形及び大きさ
長桿菌、0.3〜0.5×
2μm
なし
あり、極鞭毛(車名)
なし
陰性
なし
■細胞の多形性の有無
■運動性の有無
■胞子の有無
■ダラム染色性
■抗酸性
(b)各培地における生育状態
■肉汁寒天平板培養 良好な生育、黄色、(形)円形
、(隆起) 半レンズ状、(周辺) 金縁、(表面)粗面、 (光沢)にぷい光沢、 (性質)粘稠 ■肉汁寒天斜面培養 良好な生育、黄色、(隆起)台
状、(表 面)粒状、(光沢)に ぷい光沢 ■肉汁液体培養 良好な生育、 (混濁)なし、(沈 澱)少、(菌膜)厚膜 状 ■肉汁ゼラチン穿刺培養 中程度の生育、ゼラチンを液
化する ■リドマスミルク 脱色する、凝固しない(C)生
理学的性質 ■硝酸塩の還元 (+) ■脱窒反応 (−) 只 ■MRテスト ■VPテスト ■インドールの生成 ■硫化水素の生成 ■デンプンの加水分解 ■クエン酸の利用 Koserの培地 Chr 1stensenの培地 ■無機窒素源の利用 硝酸塩 アンモニウム塩 [相]色素の生成 ■ウレアーゼ ■オキシダーゼ [相]カタラーゼ ■生育の範囲 温度 (−) (−) なし なし く−) 利用する 利用する 利用する 利用する なし く−) (+) (十) l0℃で生育しない、 15〜37℃で生育す る、41℃で生育しな い pH3,51で生育しない、 4.19〜8.93で生育する、 9.08で生育しない [相]酸素に対する態度 好気性 [相]○−Fテスト 酸化的 ■糖類から酸及びガスの生成の有無 (1)L−アラビノース 酸(−)、ガス(−)(2)
D−キシロース 酸く+)、ガス(−)(3)D−グ
ルコース 酸(+)、ガス(−)(4)D−マンノー
ス 酸(−)、ガス(−)(5)D−フラクトース
酸(+)、ガス(−)(6)D−ガラクトース 酸(+
)、ガス(−)(7)麦芽糖 酸く+〉、ガ
ス(−)(8)ショ糖 酸(+)、ガス(−
)(9)乳 糖 酸(+)、ガス(−8)Q
、G )レバロース 酸く+)、ガス(−)Ql)
D−ソルビット 酸(−)、ガス(−)0のD−マン
ニット 酸(−)、ガス(−)0つイノジット
酸(−)、ガス (−)04)グリセリン 酸
(−)、ガス〈−)Q!itデンプン 酸(+
)、ガス(−)[相]アルコール酸化能 あり 以上の同定結果から、本菌はシュードモナス属に属する
ものと認められる。さらに、本菌は2゜6−ジメチルナ
フタレンを単一炭素源として生育可能であり、かつ培地
中に2,6−ナフタレンジカルボン酸を蓄積する。芳香
族炭化水素を酸化する酸化力の強い菌株としてシュード
モナス プチダ(Pseudomonas Putid
a)八TCC17484株、12633株、ロドコッカ
ス エスピー(Rhodococcus sp、)八T
CC19070株、シュードモナス エスピー(Pse
udomonas sp、)八TCC17483株等が
あり、2゜6−ジメチルナフタレンの一方のメチル基の
みを酸化して6−メチルナフタレン−2−カルボン酸を
蓄積する例としてロドコッカス エスピーATCC19
070株が知られている。しかしながら、シュードモナ
ス属に属し、2,6−ジメチルナフタレンを単一炭素源
として生育可能である2、6ナフタレンジカルボン酸生
産菌は、まだ報告されていない。本菌は前記の菌よりも
はるかに強い酸化力を有しており、様々な酸化反応に利
用可能である。以上の菌学的性質より本発明者らは、木
菌はシュードモナス属に属する新菌種であると判定し、
本菌をシュードモナス(Pseudomonas)sp
、 D186株と命名し、工業技術院微生物工業技術
研究所に寄託した〔微工研菌寄第10953号(FBR
MP−10953) :l。
、(隆起) 半レンズ状、(周辺) 金縁、(表面)粗面、 (光沢)にぷい光沢、 (性質)粘稠 ■肉汁寒天斜面培養 良好な生育、黄色、(隆起)台
状、(表 面)粒状、(光沢)に ぷい光沢 ■肉汁液体培養 良好な生育、 (混濁)なし、(沈 澱)少、(菌膜)厚膜 状 ■肉汁ゼラチン穿刺培養 中程度の生育、ゼラチンを液
化する ■リドマスミルク 脱色する、凝固しない(C)生
理学的性質 ■硝酸塩の還元 (+) ■脱窒反応 (−) 只 ■MRテスト ■VPテスト ■インドールの生成 ■硫化水素の生成 ■デンプンの加水分解 ■クエン酸の利用 Koserの培地 Chr 1stensenの培地 ■無機窒素源の利用 硝酸塩 アンモニウム塩 [相]色素の生成 ■ウレアーゼ ■オキシダーゼ [相]カタラーゼ ■生育の範囲 温度 (−) (−) なし なし く−) 利用する 利用する 利用する 利用する なし く−) (+) (十) l0℃で生育しない、 15〜37℃で生育す る、41℃で生育しな い pH3,51で生育しない、 4.19〜8.93で生育する、 9.08で生育しない [相]酸素に対する態度 好気性 [相]○−Fテスト 酸化的 ■糖類から酸及びガスの生成の有無 (1)L−アラビノース 酸(−)、ガス(−)(2)
D−キシロース 酸く+)、ガス(−)(3)D−グ
ルコース 酸(+)、ガス(−)(4)D−マンノー
ス 酸(−)、ガス(−)(5)D−フラクトース
酸(+)、ガス(−)(6)D−ガラクトース 酸(+
)、ガス(−)(7)麦芽糖 酸く+〉、ガ
ス(−)(8)ショ糖 酸(+)、ガス(−
)(9)乳 糖 酸(+)、ガス(−8)Q
、G )レバロース 酸く+)、ガス(−)Ql)
D−ソルビット 酸(−)、ガス(−)0のD−マン
ニット 酸(−)、ガス(−)0つイノジット
酸(−)、ガス (−)04)グリセリン 酸
(−)、ガス〈−)Q!itデンプン 酸(+
)、ガス(−)[相]アルコール酸化能 あり 以上の同定結果から、本菌はシュードモナス属に属する
ものと認められる。さらに、本菌は2゜6−ジメチルナ
フタレンを単一炭素源として生育可能であり、かつ培地
中に2,6−ナフタレンジカルボン酸を蓄積する。芳香
族炭化水素を酸化する酸化力の強い菌株としてシュード
モナス プチダ(Pseudomonas Putid
a)八TCC17484株、12633株、ロドコッカ
ス エスピー(Rhodococcus sp、)八T
CC19070株、シュードモナス エスピー(Pse
udomonas sp、)八TCC17483株等が
あり、2゜6−ジメチルナフタレンの一方のメチル基の
みを酸化して6−メチルナフタレン−2−カルボン酸を
蓄積する例としてロドコッカス エスピーATCC19
070株が知られている。しかしながら、シュードモナ
ス属に属し、2,6−ジメチルナフタレンを単一炭素源
として生育可能である2、6ナフタレンジカルボン酸生
産菌は、まだ報告されていない。本菌は前記の菌よりも
はるかに強い酸化力を有しており、様々な酸化反応に利
用可能である。以上の菌学的性質より本発明者らは、木
菌はシュードモナス属に属する新菌種であると判定し、
本菌をシュードモナス(Pseudomonas)sp
、 D186株と命名し、工業技術院微生物工業技術
研究所に寄託した〔微工研菌寄第10953号(FBR
MP−10953) :l。
本発明微生物を用いて2.6−ジメチルナフタレンを酸
化し、2,6−ナフタレンジカルボン酸を生産するには
、本発明微生物を培養してもよいし、該微生物の体止菌
体または菌体由来の酵素と2.6−ジメチルナフタレン
を接触させてもよい。
化し、2,6−ナフタレンジカルボン酸を生産するには
、本発明微生物を培養してもよいし、該微生物の体止菌
体または菌体由来の酵素と2.6−ジメチルナフタレン
を接触させてもよい。
次に本発明微生物としてD−186株(以下、本菌とい
う)を用いた場合の2.6−ナフタレンジカルボン酸の
製造法について説明する。本菌を培養する場合の使用培
地としては、炭素源として2.6−ジメチルナフタレン
を含有すること以外は、本閑の生育が良好であれば他の
培地成分は特に制限されない。すなわち、窒素源として
は、例えばアンモニア、塩化アンモニウム、燐酸アンモ
1 ニウム、硫酸アンモニウム、l1ll12アンモニウム
、酢酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、硝酸ナトリウ
ム、尿素等が、無機塩類としては、例えばカリウム、ナ
トリウム、鉄、マグネシウム、マンガン、銅、カルシウ
ム、コバルト等の各塩類等が使用できる。炭素源として
は、2.6−ジメチルナフタレン以外に安息香酸、サリ
チル酸、2−メチルナフタレン、ナフタレン、アントラ
セン、グルコース、フラクトース、デンプン等の補助基
質を添加することも可能である。
う)を用いた場合の2.6−ナフタレンジカルボン酸の
製造法について説明する。本菌を培養する場合の使用培
地としては、炭素源として2.6−ジメチルナフタレン
を含有すること以外は、本閑の生育が良好であれば他の
培地成分は特に制限されない。すなわち、窒素源として
は、例えばアンモニア、塩化アンモニウム、燐酸アンモ
1 ニウム、硫酸アンモニウム、l1ll12アンモニウム
、酢酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、硝酸ナトリウ
ム、尿素等が、無機塩類としては、例えばカリウム、ナ
トリウム、鉄、マグネシウム、マンガン、銅、カルシウ
ム、コバルト等の各塩類等が使用できる。炭素源として
は、2.6−ジメチルナフタレン以外に安息香酸、サリ
チル酸、2−メチルナフタレン、ナフタレン、アントラ
セン、グルコース、フラクトース、デンプン等の補助基
質を添加することも可能である。
培養条件は、本菌が死滅せず増殖可能であればよく、例
えば培養温度は約15〜37℃、より好ましくは約25
〜35℃、培地のpHは約4.2〜8.9、より好まし
くは約6.0〜8.0で、好気的雰囲気で約1〜30日
間培養するのが好ましい。
えば培養温度は約15〜37℃、より好ましくは約25
〜35℃、培地のpHは約4.2〜8.9、より好まし
くは約6.0〜8.0で、好気的雰囲気で約1〜30日
間培養するのが好ましい。
2.6−ジメチルナフタレンを単一炭素源として本菌を
培養する場合、目的とする2、6−ナフタレンジカルボ
ン酸を効率よく生産するためには、基質である2、6−
ジメチルナフタレンを本菌の増殖のための最低必要量以
上に添加することが必要である。前記の補助基質を添加
する場合は、補助基質の添加量に応じて2.6−ジメチ
ルナフタレンの添加量を調整することができる。本菌は
、26−ジメチルナフタレンによって阻害を受けないた
め、これを多量に添加することが可能であるが、生成す
る2、6−ナフタレンジカルボン酸の量が増加すると培
地中のp++が下がるので、水酸化ナトリウム、アンモ
ニア、水酸化カリウム等のアルカリ溶液でpHを調整す
ることが望ましい。
培養する場合、目的とする2、6−ナフタレンジカルボ
ン酸を効率よく生産するためには、基質である2、6−
ジメチルナフタレンを本菌の増殖のための最低必要量以
上に添加することが必要である。前記の補助基質を添加
する場合は、補助基質の添加量に応じて2.6−ジメチ
ルナフタレンの添加量を調整することができる。本菌は
、26−ジメチルナフタレンによって阻害を受けないた
め、これを多量に添加することが可能であるが、生成す
る2、6−ナフタレンジカルボン酸の量が増加すると培
地中のp++が下がるので、水酸化ナトリウム、アンモ
ニア、水酸化カリウム等のアルカリ溶液でpHを調整す
ることが望ましい。
本菌を用いて、2,6−ジメチルナフタレンから2,6
−ナフタレンジカルボン酸を生産する工程はバッチ式で
もよく、バイオリアクター等を用いる連続式でも可能で
ある。基質である2、6−ジメチルナフタレンは、例え
ば坂ロフラスコを用いたバッチ生産の場合は培地約11
に対し約0.5〜60g1−船釣なファーメンタ−を使
用し、アルカリで中和しながらバッチ生産を行なう場合
は培地約1j2に対し約0.5〜150g添加できる。
−ナフタレンジカルボン酸を生産する工程はバッチ式で
もよく、バイオリアクター等を用いる連続式でも可能で
ある。基質である2、6−ジメチルナフタレンは、例え
ば坂ロフラスコを用いたバッチ生産の場合は培地約11
に対し約0.5〜60g1−船釣なファーメンタ−を使
用し、アルカリで中和しながらバッチ生産を行なう場合
は培地約1j2に対し約0.5〜150g添加できる。
また、2,6−ジメチルナフタレン上に直接本菌を増殖
させ、培地を連続的または間欠的に噴霧することもでき
る。
させ、培地を連続的または間欠的に噴霧することもでき
る。
次に本閑の体止菌体あるいは菌体由来の酵素により2,
6−ナフタレンジカルボン酸を生産する場合、用いる菌
体の生産は、前記培養条件下での場合と同じ条件で行な
うことができる。得られた菌体培養物は、そのまま酵素
源として使用することができるが、遠心分離等の操作に
より固液分離して得た微生物菌体を用いることが好まし
い。さらに微生物菌体を燐酸緩衝液等の溶液で洗浄し、
該溶液にll!!!濁して使用することもできる。また
、菌体由来の酵素は、常法により精製することができる
。すなわち、例えば微生物菌体の懸濁液を超音波、フレ
ンチプレス、高圧ホモジナイザー等により破砕処理して
得られた菌体破砕物を、遠心分離等の操作により固液分
離した後、カラム精製、電気泳動等の一船釣@製手法を
用いて精製酵素とすることができる。また、微生物菌体
や酵素を固定化したものを使用することもでき、固定化
したものを使用することによって効率よく反応を行なう
ことができる。この固定化は、アルギン酸カル喝 シウム法、ボ・リアクリルアミドゲル法、ポリウレタン
樹脂法、光架橋樹脂法等常法により、行なうことができ
る。
6−ナフタレンジカルボン酸を生産する場合、用いる菌
体の生産は、前記培養条件下での場合と同じ条件で行な
うことができる。得られた菌体培養物は、そのまま酵素
源として使用することができるが、遠心分離等の操作に
より固液分離して得た微生物菌体を用いることが好まし
い。さらに微生物菌体を燐酸緩衝液等の溶液で洗浄し、
該溶液にll!!!濁して使用することもできる。また
、菌体由来の酵素は、常法により精製することができる
。すなわち、例えば微生物菌体の懸濁液を超音波、フレ
ンチプレス、高圧ホモジナイザー等により破砕処理して
得られた菌体破砕物を、遠心分離等の操作により固液分
離した後、カラム精製、電気泳動等の一船釣@製手法を
用いて精製酵素とすることができる。また、微生物菌体
や酵素を固定化したものを使用することもでき、固定化
したものを使用することによって効率よく反応を行なう
ことができる。この固定化は、アルギン酸カル喝 シウム法、ボ・リアクリルアミドゲル法、ポリウレタン
樹脂法、光架橋樹脂法等常法により、行なうことができ
る。
これらの菌体もしくは菌体由来の酵素を用いて、26−
ナフタレンジカルボン酸を生産するためには、菌体もし
くは菌体由来の酵素を、2,6ジメチルナフタレンと燐
酸緩衝液等の中で接触させて反応させればよい。反応温
度及びpHは、前述した本閑の培養条件下の場合と同様
であるのが好ましく、また好気的雰囲気で反応させるの
が好ましい。この反応においては、エネルギー源として
メタノール、エタノール、水素、ニコチン酸アミドアデ
ニンジヌクレオチド(NへD)、ホルムアルテ′ヒト、
蟻酸等の電子供与体を適宜添加するのが好ましい。
ナフタレンジカルボン酸を生産するためには、菌体もし
くは菌体由来の酵素を、2,6ジメチルナフタレンと燐
酸緩衝液等の中で接触させて反応させればよい。反応温
度及びpHは、前述した本閑の培養条件下の場合と同様
であるのが好ましく、また好気的雰囲気で反応させるの
が好ましい。この反応においては、エネルギー源として
メタノール、エタノール、水素、ニコチン酸アミドアデ
ニンジヌクレオチド(NへD)、ホルムアルテ′ヒト、
蟻酸等の電子供与体を適宜添加するのが好ましい。
以上の如くして得られた培養液または反応液中の2.6
−ナフタレンジカルボン酸は常法により精製することが
できる。すなわち、培養液または反応液を濾過、遠心分
離等により処理した後、得られた溶液に塩酸、硫酸等の
酸溶液を加えて酸性とすることにより、2,6−ナフタ
レンジカルボン酸を回収することができる。また、溶剤
抽出等の方法により回収することも可能であり、カラム
クロマトグラフィー等公知の精製方法を適宜併用するこ
ともできる。
−ナフタレンジカルボン酸は常法により精製することが
できる。すなわち、培養液または反応液を濾過、遠心分
離等により処理した後、得られた溶液に塩酸、硫酸等の
酸溶液を加えて酸性とすることにより、2,6−ナフタ
レンジカルボン酸を回収することができる。また、溶剤
抽出等の方法により回収することも可能であり、カラム
クロマトグラフィー等公知の精製方法を適宜併用するこ
ともできる。
本発明によれば、従来知られていなかった2゜6−ジメ
チルナフタレンを単一炭素源として生育可能で、2,6
−ナフタレンジカルボン酸を生産することができる新規
微生物もしくはその休止菌体または菌体由来の酵素を用
い、2.6−ジメチルナフタレンから微生物酸化法によ
り、2.6ナフタレンジカルボン酸を効率良く生産する
ことができる。
チルナフタレンを単一炭素源として生育可能で、2,6
−ナフタレンジカルボン酸を生産することができる新規
微生物もしくはその休止菌体または菌体由来の酵素を用
い、2.6−ジメチルナフタレンから微生物酸化法によ
り、2.6ナフタレンジカルボン酸を効率良く生産する
ことができる。
以下、実施例を挙げ、本発明をさらに詳細に説明するが
、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
実施例1
第1表に示す培地成分を蒸留水11に溶解したところ、
p++は7.0であった。
p++は7.0であった。
第1表
この培地を内径21mmの試験管に10me入れ、12
1℃で15分間滅菌した。冷却後、三重県四日市地方の
石油精製施設にて採集した1、 000種類の土壌をそ
れぞれ0.5g加え、別途濾過滅菌した2、6−ジメチ
ルナフタレンをそれぞれ5 mg添加し、試験管振とう
機により30℃、25 Orpmで7日間往復振とう培
養した。別の試験管にさきに作成した培地10m1を分
注し、白金耳を用いて培養液を3白金耳植えつぎした後
、試験管振とう機により30℃、25 Orpmでさら
に7日間往復振とう培養した。増殖が認められたものに
ついて滅菌水を用いて104〜108倍の範囲で希釈し
た後、さきに調製しておいたものと同様の培地11にさ
らに15gの寒天を加えることにより予め調製しておい
たシャーレを用いた平板培地に塗布し、2.6−ジメチ
ルナフタレン5 mgを加えた後、30℃で7日間培養
した。得られたコロニーを単離した後、すべての微生物
のうちから次の方法により2,6−ナフタレンジカルボ
ン酸生産菌株を選択した。すなわち、さきに作成したの
と同様の培地10m1を試験管に分注し、121℃で滅
菌し、冷却した後、それぞれの微生物を白金耳を用いて
1白金耳植えつぎした。これに2.6−ジメチルナフタ
レン5 mgを添加した後、試験管振とう機により30
℃、25 Orpmで7日間往復振とう培養した。この
培養液を遠心分離した後、上清を高速液体クロマトグラ
フィー(HPLC)で分析することにより2,6−ナフ
タレンジカルボン酸生産菌を選択し、シュードモナスs
p、D−186株を得た。
1℃で15分間滅菌した。冷却後、三重県四日市地方の
石油精製施設にて採集した1、 000種類の土壌をそ
れぞれ0.5g加え、別途濾過滅菌した2、6−ジメチ
ルナフタレンをそれぞれ5 mg添加し、試験管振とう
機により30℃、25 Orpmで7日間往復振とう培
養した。別の試験管にさきに作成した培地10m1を分
注し、白金耳を用いて培養液を3白金耳植えつぎした後
、試験管振とう機により30℃、25 Orpmでさら
に7日間往復振とう培養した。増殖が認められたものに
ついて滅菌水を用いて104〜108倍の範囲で希釈し
た後、さきに調製しておいたものと同様の培地11にさ
らに15gの寒天を加えることにより予め調製しておい
たシャーレを用いた平板培地に塗布し、2.6−ジメチ
ルナフタレン5 mgを加えた後、30℃で7日間培養
した。得られたコロニーを単離した後、すべての微生物
のうちから次の方法により2,6−ナフタレンジカルボ
ン酸生産菌株を選択した。すなわち、さきに作成したの
と同様の培地10m1を試験管に分注し、121℃で滅
菌し、冷却した後、それぞれの微生物を白金耳を用いて
1白金耳植えつぎした。これに2.6−ジメチルナフタ
レン5 mgを添加した後、試験管振とう機により30
℃、25 Orpmで7日間往復振とう培養した。この
培養液を遠心分離した後、上清を高速液体クロマトグラ
フィー(HPLC)で分析することにより2,6−ナフ
タレンジカルボン酸生産菌を選択し、シュードモナスs
p、D−186株を得た。
実施例2
実施例1と同様の培地を内径21mmの試験管に10−
入れ、121℃で15分間滅菌した。冷却後、実施例1
の方法で得た菌株を白金耳を用いて1白金耳植えつぎ、
別途濾過滅菌した2、6−ジメチルナフタレンを5 m
g添加し、試験管振とう機により30℃、25 Orp
mで7日間往復振とう培養した。培養液を遠心分離後、
上清をHPLCによって定量分析したところ、生成した
2、6−ナフタレンジカルボン酸の収量は、20mg/
j?であった。
入れ、121℃で15分間滅菌した。冷却後、実施例1
の方法で得た菌株を白金耳を用いて1白金耳植えつぎ、
別途濾過滅菌した2、6−ジメチルナフタレンを5 m
g添加し、試験管振とう機により30℃、25 Orp
mで7日間往復振とう培養した。培養液を遠心分離後、
上清をHPLCによって定量分析したところ、生成した
2、6−ナフタレンジカルボン酸の収量は、20mg/
j?であった。
また、生成した2、6−ナフタレンジカルボン酸は、H
PLC,GC,NMR,IR,UVI、mより定性分析
を行なったところ、市販品と完全に一致した。
PLC,GC,NMR,IR,UVI、mより定性分析
を行なったところ、市販品と完全に一致した。
実施例3
補助基質として濾過滅菌した安息香酸ナトリウムを5
mg添加する以外は実施例2と同様に行なったところ、
2,6−ナフタレンジカルボン酸300mg/j!が得
られた。
mg添加する以外は実施例2と同様に行なったところ、
2,6−ナフタレンジカルボン酸300mg/j!が得
られた。
実施例4
9−
それぞれ濾過滅菌した肉汁培地100m12に2゜6−
ジメチルナフタレンlomgを添加した後、実施例1で
得られたシュードモナスsp、D−186株を白金耳を
用いて3白金耳植えつぎ、坂ロフラスコにて30℃で3
日間培養し、遠心分離法によって集菌した。この菌体を
トリスマレイン酸緩衝液にて洗浄し、同級衝液に再懸濁
させ、600nmにおける吸光度が3.0となるように
菌濃度を調節した。この菌体懸濁液100−に濾過滅菌
した2゜6−ジメチルナフタレン100mgを添加した
後、電子供与源として1Mエタノール水溶液10μlを
加え、30℃、25 Orpmで24時間往往復上うし
て反応させた。反応生成液を遠心分離した後、HP L
Cにより定量分析したところ、生成した2、6ナフタ
レンジカルボン酸の収量は700mg/j!であった。
ジメチルナフタレンlomgを添加した後、実施例1で
得られたシュードモナスsp、D−186株を白金耳を
用いて3白金耳植えつぎ、坂ロフラスコにて30℃で3
日間培養し、遠心分離法によって集菌した。この菌体を
トリスマレイン酸緩衝液にて洗浄し、同級衝液に再懸濁
させ、600nmにおける吸光度が3.0となるように
菌濃度を調節した。この菌体懸濁液100−に濾過滅菌
した2゜6−ジメチルナフタレン100mgを添加した
後、電子供与源として1Mエタノール水溶液10μlを
加え、30℃、25 Orpmで24時間往往復上うし
て反応させた。反応生成液を遠心分離した後、HP L
Cにより定量分析したところ、生成した2、6ナフタ
レンジカルボン酸の収量は700mg/j!であった。
比較例1
芳香族炭化水素に対し強い酸化力をもつ菌株として、シ
ュードモナス プチダ(Pseudomonasput
ida)八TCC17484株1こよる2、6−ナフタ
レン0 ジカルボン酸の生産を試みた。
ュードモナス プチダ(Pseudomonasput
ida)八TCC17484株1こよる2、6−ナフタ
レン0 ジカルボン酸の生産を試みた。
すなわち、実施例1と同様の培地を内径21mmの試験
管に10−入れ、121℃で15分間滅菌した。冷却後
、シュードモナス プチダ へTCC17484株を白
金耳を用いて1白金耳植えつぎ、濾過滅菌したバラキシ
レン50μlと2.6−ジメチルナフタレン5 mgを
添加した後、30℃、25 Orpmで7日間往復振と
う培養した。培養液を遠心分離した後、上清をIIPL
Cにより定量分析したところ、2,6−ナフタレンジカ
ルボン酸の生成は全くδ忍められなかった。
管に10−入れ、121℃で15分間滅菌した。冷却後
、シュードモナス プチダ へTCC17484株を白
金耳を用いて1白金耳植えつぎ、濾過滅菌したバラキシ
レン50μlと2.6−ジメチルナフタレン5 mgを
添加した後、30℃、25 Orpmで7日間往復振と
う培養した。培養液を遠心分離した後、上清をIIPL
Cにより定量分析したところ、2,6−ナフタレンジカ
ルボン酸の生成は全くδ忍められなかった。
以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 シュードモナス属に属し、2,6−ジメチルナフタ
レンを単一炭素源として生育可能である2,6−ナフタ
レンジカルボン酸生産菌。 2 請求項1記載の2,6−ナフタレンジカルボン酸生
産菌を、2,6−ジメチルナフタレンを含む培地で培養
することを特徴とする2,6−ナフタレンジカルボン酸
の製造法。3 請求項1記載の2,6−ナフタレンジカ
ルボン酸生産菌の休止菌体もしくは菌体由来の酵素を2
,6−ジメチルナフタレンと接触させることを特徴とす
る2,6−ナフタレンジカルボン酸の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21558089A JPH0380091A (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | 新規微生物及び該微生物を用いた2,6―ナフタレンジカルボン酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21558089A JPH0380091A (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | 新規微生物及び該微生物を用いた2,6―ナフタレンジカルボン酸の製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0380091A true JPH0380091A (ja) | 1991-04-04 |
Family
ID=16674792
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP21558089A Pending JPH0380091A (ja) | 1989-08-22 | 1989-08-22 | 新規微生物及び該微生物を用いた2,6―ナフタレンジカルボン酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0380091A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100850161B1 (ko) * | 2006-10-11 | 2008-08-04 | 주식회사 효성 | 미생물을 이용한 조 나프탈렌 디카르복실산의 정제방법 및상기 방법에 의해 수득된 결정 상태의 2,6-나프탈렌디카르복실산 |
-
1989
- 1989-08-22 JP JP21558089A patent/JPH0380091A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100850161B1 (ko) * | 2006-10-11 | 2008-08-04 | 주식회사 효성 | 미생물을 이용한 조 나프탈렌 디카르복실산의 정제방법 및상기 방법에 의해 수득된 결정 상태의 2,6-나프탈렌디카르복실산 |
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