JPH0343280B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、ヒトのT−抗原決定基を有する人工
抗原に関する。 50年以上前にトムゼン(Thomsen)注1) はヒ
トの赤血球細胞を試験管内でトランスフオーメー
シヨンさせて通常のABO適合血清によつて凝集
するようにできることを観察した。フリーデンラ
イヒ(Friedenreich)2) は広範な研究の後トム
ゼンの物質が、天然の抗原決定基を分解していわ
ゆるTレセプタ、すなわちヒト血清中に一般に産
生する凝集素によつて結合される構造体を遊離す
る細菌酵素であると結論した。現在ではこのトラ
ンスフオーメーシヨンに関係する酵素がノイラミ
ニダーゼであり、これが特定のシアログリコプロ
テイン3) からN−アセチル−α−D−ノイラミ
ニン酸残基(α−シアロシド)を除去することに
よりT−決定基を露出させたことが確証されてい
る。 1966年この決定基の構造がキム(Kim)およ
びウーレンブルツク(Uhlenbruck)4) によつて
糖蛋白質中でトレオニンまたはセリン残基とグリ
コシド結合したジサツカリドβ D Gal(1→
3)&D Gal NAcであることが示された。現
在ではT−決定基が広範囲の糖蛋白質5,6) 中
に産生することが知られている。 この構造体が腫瘍を伴う抗原中に産生するとの
最近の発見によりこの抗原および相応する抗体の
研究に関心の復活が見られる。特に種々の研究者
によつてT−抗原を動物およびヒト由来7〜10)
の腫瘍細胞上に示すことができること;T−抗原
に対する即時型および遅延型過敏症反応を特定の
形状のガン11) を有する患者で示すことができる
こと、かつ血清抗−T濃度の変化が若干のガン11〜
12) に関して診断学的に重要であり得ることが示
された。 これらの観察の全てが明らかに重要な臨床的
な、潜在的および顕在的両方の合意を有してい
る。しかし臨床的適用を開発する、1つの大きな
困難は本発明以前にはキー成分のT−抗原が主と
して酵素処理されたヒト赤血球膜13) の困難な抽
出を通して天然源からしか入手し得ないことであ
つた。この方法は比較的少量の物質しか得られ
ず、この物質はその由来から精製および特性づけ
るのが本来困難である。その上に例えばT−抗原
物質をヒトに注射する遅延型過敏症反応のような
適用についてはヒトの血液生成物に由来する、か
かる物質は肝炎を伝搬する危険を有する。 T−抗原決定基の末端ジサツカリドを含有する
化合物O−β−D−ガラクトピラノシル−(1→
3)−O−(2−アセトアミド−2−デオキシ−α
−D−ガラクトピラノシル)−N−トシル−L−
セリンの合成が報告された14) 。しかしこの化合
物がヒトのT−抗原決定基としての有用性を持つ
ことは立証されなかつた。該化合物を抗原形成支
持体に結合し得たかどうか、および更に形成され
たとして得られる結合体が人工T−抗原として機
能したかどうかを明らかにするのは容易ではな
い。実際にはアグリコン部分に存在する非天然性
の、高度に抗原性のN−トシル基がこの化合物か
らの抗原を免疫化学的に天然のT−抗原とは似て
いないものにすると予想された。 米国特許第4137401号明細書(レミユー
(Lemieux)、バンドル(Bundle)およびベーカ
ー(Baker))にはアルドース部分にO−β−グ
リコシド結合した側鎖が記載されている。この側
鎖は構造式:O−R−COR″(ここでRはC−原
子数3〜17を有する脂肪族炭化水素部分であり、
かつR″はH、OH、NH2、NHNH2、N3または
低級アルコキシ基である)を有している。この側
鎖は炭化水素抗原決定基を支持分子または固体の
支持体に結合して人工抗原を作ることができる。
該側鎖をアルドース部分に結合することに関する
文献に明示されている反応条件はβ−D−アノマ
ーのグリコシド結合を作るものであるが優れてい
ると認められる。α−D−アノマーの側鎖がT−
抗原決定基では望ましい。 米国特許第4195174号明細書(3月25日、1980
年)、レミユー(Lemieux)およびラトクリフ
(Ratcliffe))には、O−アシル化2−アジド−
2−デオキシグリコシルハライドの合成法が記載
されている。これらのハライドはO−アシル化−
2−アジド−2−デオキシグリコシドに変換する
ことができる。特に該特許には3,4,6−トリ
−O−アセチル−2−アジド−2−デオキシ−β
−D−ガラクトピラノシルクロリドの合成および
これをアグリコン側鎖を含有するアルコールと反
応させて3,4,6−トリ−O−アセチル−2−
アジド−2−デオキシ−α−D−ガラクトピラノ
シドを形成することが報告されている。 T−抗原物質を得る問題を解決するため、本発
明によればT−抗原決定基の化学的合成に成功
し、該決定基を有する人工T−抗原を大量に製造
する方法が提供される。本発明により合成された
人工T−抗原は、ガンの存在を診断するための遅
延型過敏症反応(DTH)を誘発し得るため特に
重要であり、免疫抗原が従来の天然抗原に対する
ハプテン特異的DTHが人工抗原にも応答するこ
とがはじめて見出された。 本発明で使用されるT−抗原決定基は次のよう
にして製造される: 3,4,6−トリ−O−アシル−2−アジド−
2−デオキシ−α−D−ガラクトピラノシルブロ
ミドと一般式: HO(CH2)oCOR 〔式中nは3〜19であり、かつRはアルコキシ
またはアリールオキシ保護基である〕のモノヒド
ロキシカルボキシレートとをR′4NBr(ここで
R′は低級アルキル基である)の存在で好適な溶
剤中で反応させる。次いで反応生成物を任意の順
序で還元およびN−アセチル化してアジド基をア
セトアミド基に変え、かつ脱O−アシル化して構
造式: を有するO−α−グリコシドを製造する。 もう1つの方法によれば、O−アシル化2−ア
ジド−2−デオキシ−β−D−ガラクトピラノシ
ルクロリドと一般式: HO(CH2)oCOR 〔式中nは3〜19であり、かつRはアルコキシ
またはアリールオキシ保護基である〕のモノヒド
ロキシカルボキシレートとを促進剤シアン化水銀
の存在で好適な溶剤中で反応させることにより前
記のO−α−グリコシドを形成する。次いで反応
生成物を任意の順序で還元かつN−アセチル化し
てアジド基をアセトアミド基に変え、かつ脱O−
アシル化して前記のO−α−グリコシドを製造す
る。 次いでO−α−グリコシドを4,6−O−位で
選択的に保護し、かつ2,3,4,6−テトラ−
O−アシル−α−D−ガラクトピラノシルハライ
ドと促進剤の存在で縮合させ、保護基脱離の後、
構造式: を有するT−抗原決定ハプテンを形成する。 本発明によるT抗原決定基を有する人口抗原
は、式 [式中nは3〜19であり、かつRはアミノ基に
よりアミド結合せる可溶性の、アミン化されたか
またはアミンを含有する抗原形成支持体残基を表
わす]で示される構造を有する。 望ましいT抗原決定基は8−メトキシカルボニ
ルオクチル−2−アセトアミド−2−デオキシ−
3−0−(β−D−ガラクトピラノシル)−α−D
−ガラクトピラノシドである。 支持体はアルブミン、ヘモグロビンおよびイム
ノグロブリンGの群から、とくにウシアルブミ
ン、ウマヘモグロビン、ヒト血清アルブミンおよ
びヒトイムノグロブミンGの群から選択され、殊
にヒト血清アルブミンであるのが望ましい。 従つて、優れた人工抗原は、ヒト血清アルブミ
ンに結合した8−メトキシカルボニルオクチル−
2−アセトアミド−2−デオキシ−3−0−(β
−D−ガラクトピラノシル)−α−D−ガラクト
ピラノシドからなる。この場合、支持体に結合し
たT−抗原決定基の量は、望ましくは約7〜16当
量/モルである。 本発明による人工抗原は遅延型過敏症反応を確
認するのに利用することが可能であり、該方法は
本発明によるT−抗原決定基を人工抗原をヒトの
身体に皮内注射し、次いでヒトの身体による遅延
型過敏症反応を観察することより成る。 参考例 下記一般式で示されるT−抗原決定ハプテン8
−メトキシカルボニルオクチル−2−アセトア
ミド−2−デオキシ−3−O−(β−D−ガラ
クトピラノシル)−α−D−ガラクトピラノシ
ド(6)の合成 ベンゼン(2ml)中の2,3,5,6−テトラ
−O−アセチル−α−D−ガラクトピラノシルブ
ロミド(0.315g)の溶液を化合物(4) (0.30g)、シアン化水銀(0.18g)、無水硫酸
カルシウム(0.97g)および無水ベンゼン/ニト
ロメタン(1:1v/v)(50ml)の混合物に添加
した。この混合物を50゜で3時間撹拌し、この時
点で更にブロミド(0.05g)を添加し、かつ反応
を付加的に1時間続けた。固体を除去し、かつ濾
液をジクロルメタン(100ml)で希釈し、水(50
ml×2)で洗い、かつ乾かした。溶剤を除去する
と、フオーム状生成物(5) 8−メトキシカルボニルオクチル−2−アセト
アミド−4,6−O−ベンジリデン−2−デオキ
シ−3−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ア
セチル−β−D−ガラクトピラノシル)−α−D
−ガラクトピラノシド(0.50g)が残り、これは
結晶しなかつた。この物質をジクロルメタン(5
ml)に溶かし、かつ90%−水性トリフルオル酢酸
(1ml)を加えた(水性酢酸または水素化を4−
および6−ヒドロキシル基の脱保護基に使用する
こともできる。室温で2分後トルエン(5ml)を
加え、次いで溶剤を30゜で真空下に除いた。残渣
をシリカゲル(40g)のカラム(20×1.5cm)に
加え、ベンゼン/酢酸エチル/エタノール(3:
3:1)で溶離した。主フラクシヨンはシロツプ
状物(0.30g)〔13Cnmr(CDCl3):97.7(C−1)、
101.7(C−1′)〕を与え、これをメタノール中の
接触的ナトリウムメトキシドで脱O−アセチル化
し、引続きナトリウムイオンを酸樹脂で除いた。
濾過および蒸発によりフオーム状物(0.175g、
収率51%)が得られ、これはイソプロパノール/
水酸化アンモニウム/水(v/v)(7:1:2)
により展開したTLCによれば1つの均一なスポ
ツトであり、かつn−ブタノール/エタノールか
ら晶出させて純粋な8−メトキシカルボニルオク
チル2−アセトアミド−2−デオキシ−3−O−
(β−D−ガラクトピラノシル)−α−D−ガラク
トピラノシド(6)が得られた。融点:208〜210゜。
〔α〕25 D+92.7゜(c、1.05、水);1Hnmr(D2O)〓
:
4.91(d、1H、J1.2 3.5Hz、H−1)、4.49(d、
1H、J1′.2′ 6.25Hz、H−1′)、2.05(s、CH2)。
13Cnmr(CD3OD)δ:98.1(C−1)、105.7(C−
1′)。 分 析 C24H43N1O13・H2O: 計算値 C50.42;H7.93;N2.45。 実測値 C50.62;H8.00;N2.53 例 1 化合物(6)によるヒト抗−Tの抑制 ヒト抗−T(滴定1/32)による、ノイラミダー
ゼで処理されたO−赤血球20)の凝集は濃度1
mg/mlの化合物(6)により完全に抑制された。それ
に対してメチルβ−D−ガラクトピラノシドおよ
び一般式: で示される8−メトキシカルボニルオクチル−2
−アセトアミド−2−デオキシ−α−D−ガラク
トピラノシド(3)はこの濃度で抑制を示さなかつ
た。 人工抗原の製造に関する化合物(6)の有用性はこ
のジサツカリドをカルボニル基のアミド結合を介
して可溶性支持体に結合することにより示され
た。参考例2で化合物(6)をヒドラジンヒドレート
で処理してアシルヒドラジドに変え、次いで前記
のアシルアジドカツプリング法19) により可溶性
支持体に結合して人工T−抗原が得られた。好適
な抗原形成支持分子は当業者によつて可溶性、高
分子量のアミン化された、または天然のアミン含
有化合物であると認められる。支持体の例はたん
白質、糖たん白質およびポリサツカリドである。 参考例 2 下記一般式で示される8−ヒドラジノカルボニ
ルオクチル−2−アセトアミド−2−デオキシ
−3−O−(β−D−ガラクトピラノシル)−α
−D−ガラクトピラノシド(7)の製造 化合物(6)をヒドラジンヒドレートに溶かし、か
つ2時間放置した。溶剤をブタノール/水(1:
1v/v)(5ml×3)とともに共蒸発させて除去
して、下記の人工抗原の製造に使用されるヒドラ
ジド(7)が得られた。 例 2 8−ヒドラジノカルボニルオクチル−2−アセ
トアミド−2−デオキシ−3−O(β−D−ガ
ラクトピラノシル−α−D−ガラクトピラノシ
ド(7)からの人工抗原の製造 ジメチルホルムアミド(1.5ml)中の化合物(7)
(0.109g)の懸濁液を不活性ガス雰囲気下に約−
20℃に冷却し、これに塩酸(186μ)及び硝酸
t−ブチル(50μ)中の4.5Nジオキサンを加え
た。生じた溶液を2時間冷却下に撹拌した。次
に、この反応をジメチルホルムアミド(0.408ml)
中に溶かしたスルフアミン酸(0.01g)を添加す
ることにより終わらせ、撹拌及び冷却を更に15分
間継続した。次に、この混合物をヒト血清アルブ
ミン(HSA)及び0.2N N−エチルジエタノール
アミン水溶液の溶液(36ml、PH9.03)に直接加
え、0〜4℃に冷却した。20時間後、この混合物
を水に対して透析し、塩及び未反応試薬を除去
し、人工抗原を得るために凍結乾燥させる。カル
ボヒドレート測定はHSA1分子あたりハプテン基
13の混入を示した。 混入の値は使用するHSAの量に対して使用す
る化合物(7)の量を減少又は増加させることにより
6〜30の範囲で変化させることができる。有利な
ハプテン混入値は約7〜16当量/モルの範囲であ
る。硼酸塩緩衝剤のような他の緩衝剤を使用する
こともできるし、他の支持分子を使用することも
できる。 製造された抗原の例を次の表に示す:
抗原に関する。 50年以上前にトムゼン(Thomsen)注1) はヒ
トの赤血球細胞を試験管内でトランスフオーメー
シヨンさせて通常のABO適合血清によつて凝集
するようにできることを観察した。フリーデンラ
イヒ(Friedenreich)2) は広範な研究の後トム
ゼンの物質が、天然の抗原決定基を分解していわ
ゆるTレセプタ、すなわちヒト血清中に一般に産
生する凝集素によつて結合される構造体を遊離す
る細菌酵素であると結論した。現在ではこのトラ
ンスフオーメーシヨンに関係する酵素がノイラミ
ニダーゼであり、これが特定のシアログリコプロ
テイン3) からN−アセチル−α−D−ノイラミ
ニン酸残基(α−シアロシド)を除去することに
よりT−決定基を露出させたことが確証されてい
る。 1966年この決定基の構造がキム(Kim)およ
びウーレンブルツク(Uhlenbruck)4) によつて
糖蛋白質中でトレオニンまたはセリン残基とグリ
コシド結合したジサツカリドβ D Gal(1→
3)&D Gal NAcであることが示された。現
在ではT−決定基が広範囲の糖蛋白質5,6) 中
に産生することが知られている。 この構造体が腫瘍を伴う抗原中に産生するとの
最近の発見によりこの抗原および相応する抗体の
研究に関心の復活が見られる。特に種々の研究者
によつてT−抗原を動物およびヒト由来7〜10)
の腫瘍細胞上に示すことができること;T−抗原
に対する即時型および遅延型過敏症反応を特定の
形状のガン11) を有する患者で示すことができる
こと、かつ血清抗−T濃度の変化が若干のガン11〜
12) に関して診断学的に重要であり得ることが示
された。 これらの観察の全てが明らかに重要な臨床的
な、潜在的および顕在的両方の合意を有してい
る。しかし臨床的適用を開発する、1つの大きな
困難は本発明以前にはキー成分のT−抗原が主と
して酵素処理されたヒト赤血球膜13) の困難な抽
出を通して天然源からしか入手し得ないことであ
つた。この方法は比較的少量の物質しか得られ
ず、この物質はその由来から精製および特性づけ
るのが本来困難である。その上に例えばT−抗原
物質をヒトに注射する遅延型過敏症反応のような
適用についてはヒトの血液生成物に由来する、か
かる物質は肝炎を伝搬する危険を有する。 T−抗原決定基の末端ジサツカリドを含有する
化合物O−β−D−ガラクトピラノシル−(1→
3)−O−(2−アセトアミド−2−デオキシ−α
−D−ガラクトピラノシル)−N−トシル−L−
セリンの合成が報告された14) 。しかしこの化合
物がヒトのT−抗原決定基としての有用性を持つ
ことは立証されなかつた。該化合物を抗原形成支
持体に結合し得たかどうか、および更に形成され
たとして得られる結合体が人工T−抗原として機
能したかどうかを明らかにするのは容易ではな
い。実際にはアグリコン部分に存在する非天然性
の、高度に抗原性のN−トシル基がこの化合物か
らの抗原を免疫化学的に天然のT−抗原とは似て
いないものにすると予想された。 米国特許第4137401号明細書(レミユー
(Lemieux)、バンドル(Bundle)およびベーカ
ー(Baker))にはアルドース部分にO−β−グ
リコシド結合した側鎖が記載されている。この側
鎖は構造式:O−R−COR″(ここでRはC−原
子数3〜17を有する脂肪族炭化水素部分であり、
かつR″はH、OH、NH2、NHNH2、N3または
低級アルコキシ基である)を有している。この側
鎖は炭化水素抗原決定基を支持分子または固体の
支持体に結合して人工抗原を作ることができる。
該側鎖をアルドース部分に結合することに関する
文献に明示されている反応条件はβ−D−アノマ
ーのグリコシド結合を作るものであるが優れてい
ると認められる。α−D−アノマーの側鎖がT−
抗原決定基では望ましい。 米国特許第4195174号明細書(3月25日、1980
年)、レミユー(Lemieux)およびラトクリフ
(Ratcliffe))には、O−アシル化2−アジド−
2−デオキシグリコシルハライドの合成法が記載
されている。これらのハライドはO−アシル化−
2−アジド−2−デオキシグリコシドに変換する
ことができる。特に該特許には3,4,6−トリ
−O−アセチル−2−アジド−2−デオキシ−β
−D−ガラクトピラノシルクロリドの合成および
これをアグリコン側鎖を含有するアルコールと反
応させて3,4,6−トリ−O−アセチル−2−
アジド−2−デオキシ−α−D−ガラクトピラノ
シドを形成することが報告されている。 T−抗原物質を得る問題を解決するため、本発
明によればT−抗原決定基の化学的合成に成功
し、該決定基を有する人工T−抗原を大量に製造
する方法が提供される。本発明により合成された
人工T−抗原は、ガンの存在を診断するための遅
延型過敏症反応(DTH)を誘発し得るため特に
重要であり、免疫抗原が従来の天然抗原に対する
ハプテン特異的DTHが人工抗原にも応答するこ
とがはじめて見出された。 本発明で使用されるT−抗原決定基は次のよう
にして製造される: 3,4,6−トリ−O−アシル−2−アジド−
2−デオキシ−α−D−ガラクトピラノシルブロ
ミドと一般式: HO(CH2)oCOR 〔式中nは3〜19であり、かつRはアルコキシ
またはアリールオキシ保護基である〕のモノヒド
ロキシカルボキシレートとをR′4NBr(ここで
R′は低級アルキル基である)の存在で好適な溶
剤中で反応させる。次いで反応生成物を任意の順
序で還元およびN−アセチル化してアジド基をア
セトアミド基に変え、かつ脱O−アシル化して構
造式: を有するO−α−グリコシドを製造する。 もう1つの方法によれば、O−アシル化2−ア
ジド−2−デオキシ−β−D−ガラクトピラノシ
ルクロリドと一般式: HO(CH2)oCOR 〔式中nは3〜19であり、かつRはアルコキシ
またはアリールオキシ保護基である〕のモノヒド
ロキシカルボキシレートとを促進剤シアン化水銀
の存在で好適な溶剤中で反応させることにより前
記のO−α−グリコシドを形成する。次いで反応
生成物を任意の順序で還元かつN−アセチル化し
てアジド基をアセトアミド基に変え、かつ脱O−
アシル化して前記のO−α−グリコシドを製造す
る。 次いでO−α−グリコシドを4,6−O−位で
選択的に保護し、かつ2,3,4,6−テトラ−
O−アシル−α−D−ガラクトピラノシルハライ
ドと促進剤の存在で縮合させ、保護基脱離の後、
構造式: を有するT−抗原決定ハプテンを形成する。 本発明によるT抗原決定基を有する人口抗原
は、式 [式中nは3〜19であり、かつRはアミノ基に
よりアミド結合せる可溶性の、アミン化されたか
またはアミンを含有する抗原形成支持体残基を表
わす]で示される構造を有する。 望ましいT抗原決定基は8−メトキシカルボニ
ルオクチル−2−アセトアミド−2−デオキシ−
3−0−(β−D−ガラクトピラノシル)−α−D
−ガラクトピラノシドである。 支持体はアルブミン、ヘモグロビンおよびイム
ノグロブリンGの群から、とくにウシアルブミ
ン、ウマヘモグロビン、ヒト血清アルブミンおよ
びヒトイムノグロブミンGの群から選択され、殊
にヒト血清アルブミンであるのが望ましい。 従つて、優れた人工抗原は、ヒト血清アルブミ
ンに結合した8−メトキシカルボニルオクチル−
2−アセトアミド−2−デオキシ−3−0−(β
−D−ガラクトピラノシル)−α−D−ガラクト
ピラノシドからなる。この場合、支持体に結合し
たT−抗原決定基の量は、望ましくは約7〜16当
量/モルである。 本発明による人工抗原は遅延型過敏症反応を確
認するのに利用することが可能であり、該方法は
本発明によるT−抗原決定基を人工抗原をヒトの
身体に皮内注射し、次いでヒトの身体による遅延
型過敏症反応を観察することより成る。 参考例 下記一般式で示されるT−抗原決定ハプテン8
−メトキシカルボニルオクチル−2−アセトア
ミド−2−デオキシ−3−O−(β−D−ガラ
クトピラノシル)−α−D−ガラクトピラノシ
ド(6)の合成 ベンゼン(2ml)中の2,3,5,6−テトラ
−O−アセチル−α−D−ガラクトピラノシルブ
ロミド(0.315g)の溶液を化合物(4) (0.30g)、シアン化水銀(0.18g)、無水硫酸
カルシウム(0.97g)および無水ベンゼン/ニト
ロメタン(1:1v/v)(50ml)の混合物に添加
した。この混合物を50゜で3時間撹拌し、この時
点で更にブロミド(0.05g)を添加し、かつ反応
を付加的に1時間続けた。固体を除去し、かつ濾
液をジクロルメタン(100ml)で希釈し、水(50
ml×2)で洗い、かつ乾かした。溶剤を除去する
と、フオーム状生成物(5) 8−メトキシカルボニルオクチル−2−アセト
アミド−4,6−O−ベンジリデン−2−デオキ
シ−3−O−(2,3,4,6−テトラ−O−ア
セチル−β−D−ガラクトピラノシル)−α−D
−ガラクトピラノシド(0.50g)が残り、これは
結晶しなかつた。この物質をジクロルメタン(5
ml)に溶かし、かつ90%−水性トリフルオル酢酸
(1ml)を加えた(水性酢酸または水素化を4−
および6−ヒドロキシル基の脱保護基に使用する
こともできる。室温で2分後トルエン(5ml)を
加え、次いで溶剤を30゜で真空下に除いた。残渣
をシリカゲル(40g)のカラム(20×1.5cm)に
加え、ベンゼン/酢酸エチル/エタノール(3:
3:1)で溶離した。主フラクシヨンはシロツプ
状物(0.30g)〔13Cnmr(CDCl3):97.7(C−1)、
101.7(C−1′)〕を与え、これをメタノール中の
接触的ナトリウムメトキシドで脱O−アセチル化
し、引続きナトリウムイオンを酸樹脂で除いた。
濾過および蒸発によりフオーム状物(0.175g、
収率51%)が得られ、これはイソプロパノール/
水酸化アンモニウム/水(v/v)(7:1:2)
により展開したTLCによれば1つの均一なスポ
ツトであり、かつn−ブタノール/エタノールか
ら晶出させて純粋な8−メトキシカルボニルオク
チル2−アセトアミド−2−デオキシ−3−O−
(β−D−ガラクトピラノシル)−α−D−ガラク
トピラノシド(6)が得られた。融点:208〜210゜。
〔α〕25 D+92.7゜(c、1.05、水);1Hnmr(D2O)〓
:
4.91(d、1H、J1.2 3.5Hz、H−1)、4.49(d、
1H、J1′.2′ 6.25Hz、H−1′)、2.05(s、CH2)。
13Cnmr(CD3OD)δ:98.1(C−1)、105.7(C−
1′)。 分 析 C24H43N1O13・H2O: 計算値 C50.42;H7.93;N2.45。 実測値 C50.62;H8.00;N2.53 例 1 化合物(6)によるヒト抗−Tの抑制 ヒト抗−T(滴定1/32)による、ノイラミダー
ゼで処理されたO−赤血球20)の凝集は濃度1
mg/mlの化合物(6)により完全に抑制された。それ
に対してメチルβ−D−ガラクトピラノシドおよ
び一般式: で示される8−メトキシカルボニルオクチル−2
−アセトアミド−2−デオキシ−α−D−ガラク
トピラノシド(3)はこの濃度で抑制を示さなかつ
た。 人工抗原の製造に関する化合物(6)の有用性はこ
のジサツカリドをカルボニル基のアミド結合を介
して可溶性支持体に結合することにより示され
た。参考例2で化合物(6)をヒドラジンヒドレート
で処理してアシルヒドラジドに変え、次いで前記
のアシルアジドカツプリング法19) により可溶性
支持体に結合して人工T−抗原が得られた。好適
な抗原形成支持分子は当業者によつて可溶性、高
分子量のアミン化された、または天然のアミン含
有化合物であると認められる。支持体の例はたん
白質、糖たん白質およびポリサツカリドである。 参考例 2 下記一般式で示される8−ヒドラジノカルボニ
ルオクチル−2−アセトアミド−2−デオキシ
−3−O−(β−D−ガラクトピラノシル)−α
−D−ガラクトピラノシド(7)の製造 化合物(6)をヒドラジンヒドレートに溶かし、か
つ2時間放置した。溶剤をブタノール/水(1:
1v/v)(5ml×3)とともに共蒸発させて除去
して、下記の人工抗原の製造に使用されるヒドラ
ジド(7)が得られた。 例 2 8−ヒドラジノカルボニルオクチル−2−アセ
トアミド−2−デオキシ−3−O(β−D−ガ
ラクトピラノシル−α−D−ガラクトピラノシ
ド(7)からの人工抗原の製造 ジメチルホルムアミド(1.5ml)中の化合物(7)
(0.109g)の懸濁液を不活性ガス雰囲気下に約−
20℃に冷却し、これに塩酸(186μ)及び硝酸
t−ブチル(50μ)中の4.5Nジオキサンを加え
た。生じた溶液を2時間冷却下に撹拌した。次
に、この反応をジメチルホルムアミド(0.408ml)
中に溶かしたスルフアミン酸(0.01g)を添加す
ることにより終わらせ、撹拌及び冷却を更に15分
間継続した。次に、この混合物をヒト血清アルブ
ミン(HSA)及び0.2N N−エチルジエタノール
アミン水溶液の溶液(36ml、PH9.03)に直接加
え、0〜4℃に冷却した。20時間後、この混合物
を水に対して透析し、塩及び未反応試薬を除去
し、人工抗原を得るために凍結乾燥させる。カル
ボヒドレート測定はHSA1分子あたりハプテン基
13の混入を示した。 混入の値は使用するHSAの量に対して使用す
る化合物(7)の量を減少又は増加させることにより
6〜30の範囲で変化させることができる。有利な
ハプテン混入値は約7〜16当量/モルの範囲であ
る。硼酸塩緩衝剤のような他の緩衝剤を使用する
こともできるし、他の支持分子を使用することも
できる。 製造された抗原の例を次の表に示す:
【表】
参考例 3
8−ヒドロキシカルボニルオクチル−2−アセ
トアミド−2−デオキシ−3−O−(β−D−
ガラクトピラノシル)−α−D−ガラクトピラ
ノシド(8)の製造 エステル化合物(6)(0.17g)を0.1N NaOH(4
ml)を用いて室温で2時間処理した。次いでこの
溶液を酸性イオン交換樹脂で脱イオンし、溶剤を
除去すると表題化合物の酸(8)が得られた。 例 2 T−ハプテン化細胞の製造 包装された赤血球細胞(OLea+b-型)1mlを3
回少量の緩衝液(N−エチルジエタノールアミン
0.01モル、NaCl0.15モル、PH6.0)で洗浄した。
これら洗浄した細胞のmlの3/4を同じ緩衝液1.75
ml中に懸濁させると、30%懸濁液が得られるか
ら、これを12×75mm試験管中で冷却した。 酸誘導体(8)(5mg)及び1−エチル−3−
(3′−ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミ
ド、塩酸塩(3mg)0.15M NaCl150μ中に溶か
した。この溶液を室温で5分間保持し、次いで赤
血球細胞懸濁液に4℃で加えた。この反応混合物
をおだやかな揺動下に2時間4℃に恒温保持し、
試薬を燐酸塩緩衝生理含塩水5倍容量で5回洗浄
することにより除却した。 ハプテン化はヒト抗−T抗体により処理された
赤血球の凝集反応を示す血清学的試験により確認
された。 過去においては免疫応答は2つの独立した型を
有するものとみなされていた、1方は抗体が介在
する応答であり、ここでは病原がリンパ球Bによ
つて合成された特異的な抗体分子により効力を失
ない、もう1方は胸腺に由来する(T)リンパ球
の保護機能を基礎とする、細胞が介在する免疫性
である。しかし現在では、免疫系のこれらの部分
間に多くの相互作用が存在し、かつ抗原の攻撃に
対する固体の適合反応が細胞及び可溶性細胞生成
物間の複雑な相互作用を包含するということが明
らかになつたので、前記の考え方はあまりにも単
純化されすぎていることは公知である。現在この
相互作用を調節するフアクターに関する理解は全
く限られている。遅延型過敏症反応、すなわち
“細胞介在”応答に関しては、所与のハプテンの
例えば支持体型及びハプテン混入度のような多く
のフアクターがハプテン特異性DTH反応を起こ
すことを決定はするが22) 、この事に関して従来
十分に解明されていないということは公知であ
る。 T抗原の場合、すべての健康な個体はその血清
中に抗−T凝集素を有しているが、一般に彼らは
T抗原の皮内注射11) に全くDTH反応を起こさな
い。それに対して、一定の型の癌、特に肺癌はT
抗原に対してDTH反応を示す11) 。こうして天然
T抗原へのこの反応は癌の存在を強力に指示し、
診断上非常に重要である。癌患者における本発明
の生成物、人工T抗原、T−ESAへのDTH反応
について以下に詳説する。 参考例 4 転移性肺癌の患者におけるT−HSA人工抗原
に対する遅延型過敏腫DTHのデモンストレー
シヨン 患者:実験グループ(23人)は現在W.W.
Cross Cancer Institute(カナダ・アルバータ
州・エドモントン)で治療を受けている術後第4
期の転移性肺癌患者からなる。この実験に加わる
ことを志願したすべての患者から同意は得られ
た。 抗原:ヒト血清アルブミン(HSA)とT−ハ
プテンとの結合は前記無菌条件下に製造した。人
体に使用するために、抗原形成支持体分子は非毒
性であるべきである。4種の異なる混入度n=
7、12、14及び22を試験した。使用したHSAは
米国フツト・アンド・ドラツグ・アドミニストレ
イシヨン(U.S.Food and Drug
Administration)の要求に従つてヒト血漿のコ
ーン分割法により製造した。同様にすべての患者
にハプテンを反応混合物中に使用しないというこ
と以外はT−HSA抗原の製造のために記載した
と同じように加工されたHSAをも投与した。 抗原の投与:T−HSA及びHSAを上腕の異な
つた位置に総合量生理食塩水0.1mlで皮内注射し
た。抗原の濃度は100及び200mg/mlであつた(注
射あたり抗原10及び20mg) 遅延型過敏症反応:陽性反応を24時間後に硬化
をともなつているか又は硬化をともなわない直径
5mmより大きい紅斑とする。疑問のある場合に
は、重点を硬化の度合いに置く。T−HSAへの
陽性の応答は8〜20mmで変化する。TT−HSAに
対して陽性の場合、血管周囲リンパ球浸潤を示す
スキン・パンチ(skin punch)生検により確認
された。 結果:試験した患者においてもだれもHSAに
陽性を示さず16人(70%)がT−HSAにDTH反
応を示した(n=12又は14)。陽性反応を示した
患者に関しては、応答は高抗原濃度でより大であ
つた。DTH応答はハプテン混入度によつても影
響され、最も大きな応答は“n”の値が12〜14の
間である抗原に対してである。T−HSAに反応
しないこれらの患者は最近種々の治療プログラム
を受けており(3ケ月以内)、これによつて多分
T抗原に対するアネルギーとなつたということが
わかつた。このような患者は後で、この実験から
除外した。 本発明はその有利な実施形式に関して記載して
おり、本発明の思想及び範囲内で他の実施形式も
可能である。 注 1 O.Thomsen著、“Z.Immun.−Forsch.”52
(1927)85−107頁。 2 V.Friedenreich著,“The Thomsen
Hemagglutination Phenmenon,“Levin&
Munksgaard,Copenhagen(1930)。 3 C.M.Chu著,“Nature,”161(1948)606−
607頁。 4 Z.KimおよびG.Uhlenbruck共著,“Z.
Immun.−Forsch.”,130(1966)88−99頁。 5 R.R.RaceおよびR.Sanger共著,“Blood
Groups in Men”,第6版,Blackwell
Scientific Publications,Oxford(1978)486−
487頁。 6 P.VaithおよびG.Uhlenbruck共著,“Z.
Immun.−Forsch.”,154(1978)1−14頁。 7 P.J.Klein,R.A.Newman,P.Muller,G.
Uhlenbruck,H.E.Schaefer,K.J.Lennartzお
よびR.Fischer共著,“Klin,Wschr.”,56
(1978)761−765頁。 8 D.R.Howard,“Vox.Sang”,37(1979)107
−110頁。 9 R.A.Newman,P.J.KleinおよびP.S.
Rudland共著,“JNCI”63、(1979)1339−
1346頁。 10 J.H.Anslin,Jr.M.P.LernerおよびR.E.
Nordquist,“Nature”,269(1977)254−255
頁。 11 G.F.Springer,P.R.Desai,M.S.Murthy,
H.TegtmeyerおよびE.F.Sanlon共著,“Prog.
Allergy”,26(1979)42−96および該論文中
の参考文献。 12 Y.D.Kim.米国特許第4241044号明細書。 13 G.F.SpringerおよびP.R.Desai共著,
“Carbohyd.Res.”,40(1975)183−192頁。 14 R.KaifuおよびT.Osawa,“Carbohyd.
Res.”,69(1979)79−88頁。 19 R.U.Lemieux,D.R.BundleおよびD.A.
Baker共著,“J.Amer.CHem.Soc.”97(1975)
4076−4083頁。 20 H.H.Sunson,F.StrattonおよびG.W.
Mnllard共著,“Brit.J.Haematol.”,18
(1970)309−316頁。 22 V.E.JonesおよびS.Leskowitz共著,
“Nature”,207(1965)596−597頁。
トアミド−2−デオキシ−3−O−(β−D−
ガラクトピラノシル)−α−D−ガラクトピラ
ノシド(8)の製造 エステル化合物(6)(0.17g)を0.1N NaOH(4
ml)を用いて室温で2時間処理した。次いでこの
溶液を酸性イオン交換樹脂で脱イオンし、溶剤を
除去すると表題化合物の酸(8)が得られた。 例 2 T−ハプテン化細胞の製造 包装された赤血球細胞(OLea+b-型)1mlを3
回少量の緩衝液(N−エチルジエタノールアミン
0.01モル、NaCl0.15モル、PH6.0)で洗浄した。
これら洗浄した細胞のmlの3/4を同じ緩衝液1.75
ml中に懸濁させると、30%懸濁液が得られるか
ら、これを12×75mm試験管中で冷却した。 酸誘導体(8)(5mg)及び1−エチル−3−
(3′−ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミ
ド、塩酸塩(3mg)0.15M NaCl150μ中に溶か
した。この溶液を室温で5分間保持し、次いで赤
血球細胞懸濁液に4℃で加えた。この反応混合物
をおだやかな揺動下に2時間4℃に恒温保持し、
試薬を燐酸塩緩衝生理含塩水5倍容量で5回洗浄
することにより除却した。 ハプテン化はヒト抗−T抗体により処理された
赤血球の凝集反応を示す血清学的試験により確認
された。 過去においては免疫応答は2つの独立した型を
有するものとみなされていた、1方は抗体が介在
する応答であり、ここでは病原がリンパ球Bによ
つて合成された特異的な抗体分子により効力を失
ない、もう1方は胸腺に由来する(T)リンパ球
の保護機能を基礎とする、細胞が介在する免疫性
である。しかし現在では、免疫系のこれらの部分
間に多くの相互作用が存在し、かつ抗原の攻撃に
対する固体の適合反応が細胞及び可溶性細胞生成
物間の複雑な相互作用を包含するということが明
らかになつたので、前記の考え方はあまりにも単
純化されすぎていることは公知である。現在この
相互作用を調節するフアクターに関する理解は全
く限られている。遅延型過敏症反応、すなわち
“細胞介在”応答に関しては、所与のハプテンの
例えば支持体型及びハプテン混入度のような多く
のフアクターがハプテン特異性DTH反応を起こ
すことを決定はするが22) 、この事に関して従来
十分に解明されていないということは公知であ
る。 T抗原の場合、すべての健康な個体はその血清
中に抗−T凝集素を有しているが、一般に彼らは
T抗原の皮内注射11) に全くDTH反応を起こさな
い。それに対して、一定の型の癌、特に肺癌はT
抗原に対してDTH反応を示す11) 。こうして天然
T抗原へのこの反応は癌の存在を強力に指示し、
診断上非常に重要である。癌患者における本発明
の生成物、人工T抗原、T−ESAへのDTH反応
について以下に詳説する。 参考例 4 転移性肺癌の患者におけるT−HSA人工抗原
に対する遅延型過敏腫DTHのデモンストレー
シヨン 患者:実験グループ(23人)は現在W.W.
Cross Cancer Institute(カナダ・アルバータ
州・エドモントン)で治療を受けている術後第4
期の転移性肺癌患者からなる。この実験に加わる
ことを志願したすべての患者から同意は得られ
た。 抗原:ヒト血清アルブミン(HSA)とT−ハ
プテンとの結合は前記無菌条件下に製造した。人
体に使用するために、抗原形成支持体分子は非毒
性であるべきである。4種の異なる混入度n=
7、12、14及び22を試験した。使用したHSAは
米国フツト・アンド・ドラツグ・アドミニストレ
イシヨン(U.S.Food and Drug
Administration)の要求に従つてヒト血漿のコ
ーン分割法により製造した。同様にすべての患者
にハプテンを反応混合物中に使用しないというこ
と以外はT−HSA抗原の製造のために記載した
と同じように加工されたHSAをも投与した。 抗原の投与:T−HSA及びHSAを上腕の異な
つた位置に総合量生理食塩水0.1mlで皮内注射し
た。抗原の濃度は100及び200mg/mlであつた(注
射あたり抗原10及び20mg) 遅延型過敏症反応:陽性反応を24時間後に硬化
をともなつているか又は硬化をともなわない直径
5mmより大きい紅斑とする。疑問のある場合に
は、重点を硬化の度合いに置く。T−HSAへの
陽性の応答は8〜20mmで変化する。TT−HSAに
対して陽性の場合、血管周囲リンパ球浸潤を示す
スキン・パンチ(skin punch)生検により確認
された。 結果:試験した患者においてもだれもHSAに
陽性を示さず16人(70%)がT−HSAにDTH反
応を示した(n=12又は14)。陽性反応を示した
患者に関しては、応答は高抗原濃度でより大であ
つた。DTH応答はハプテン混入度によつても影
響され、最も大きな応答は“n”の値が12〜14の
間である抗原に対してである。T−HSAに反応
しないこれらの患者は最近種々の治療プログラム
を受けており(3ケ月以内)、これによつて多分
T抗原に対するアネルギーとなつたということが
わかつた。このような患者は後で、この実験から
除外した。 本発明はその有利な実施形式に関して記載して
おり、本発明の思想及び範囲内で他の実施形式も
可能である。 注 1 O.Thomsen著、“Z.Immun.−Forsch.”52
(1927)85−107頁。 2 V.Friedenreich著,“The Thomsen
Hemagglutination Phenmenon,“Levin&
Munksgaard,Copenhagen(1930)。 3 C.M.Chu著,“Nature,”161(1948)606−
607頁。 4 Z.KimおよびG.Uhlenbruck共著,“Z.
Immun.−Forsch.”,130(1966)88−99頁。 5 R.R.RaceおよびR.Sanger共著,“Blood
Groups in Men”,第6版,Blackwell
Scientific Publications,Oxford(1978)486−
487頁。 6 P.VaithおよびG.Uhlenbruck共著,“Z.
Immun.−Forsch.”,154(1978)1−14頁。 7 P.J.Klein,R.A.Newman,P.Muller,G.
Uhlenbruck,H.E.Schaefer,K.J.Lennartzお
よびR.Fischer共著,“Klin,Wschr.”,56
(1978)761−765頁。 8 D.R.Howard,“Vox.Sang”,37(1979)107
−110頁。 9 R.A.Newman,P.J.KleinおよびP.S.
Rudland共著,“JNCI”63、(1979)1339−
1346頁。 10 J.H.Anslin,Jr.M.P.LernerおよびR.E.
Nordquist,“Nature”,269(1977)254−255
頁。 11 G.F.Springer,P.R.Desai,M.S.Murthy,
H.TegtmeyerおよびE.F.Sanlon共著,“Prog.
Allergy”,26(1979)42−96および該論文中
の参考文献。 12 Y.D.Kim.米国特許第4241044号明細書。 13 G.F.SpringerおよびP.R.Desai共著,
“Carbohyd.Res.”,40(1975)183−192頁。 14 R.KaifuおよびT.Osawa,“Carbohyd.
Res.”,69(1979)79−88頁。 19 R.U.Lemieux,D.R.BundleおよびD.A.
Baker共著,“J.Amer.CHem.Soc.”97(1975)
4076−4083頁。 20 H.H.Sunson,F.StrattonおよびG.W.
Mnllard共著,“Brit.J.Haematol.”,18
(1970)309−316頁。 22 V.E.JonesおよびS.Leskowitz共著,
“Nature”,207(1965)596−597頁。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 構造式: [式中nは3〜19であり、かつRはアミノ基に
よりアミド結合せる可溶性の、アミン化されたか
またはアミンを含有する抗原形成支持体残基を表
わす]で示される、T−抗原決定基を有する人工
抗原。 2 T抗原決定基が8−メトキシカルボニルオク
チル−2−アセトアミド−2−デオキシ−3−0
−(β−D−ガラクトピラノシル)−α−D−ガラ
クトピラノシドからなる、特許請求の範囲第1項
記載の人工抗原。 3 支持体がアルブミン、ヘモグロビンおよびイ
ムノグロブリンGの群から選択される、特許請求
の範囲第1項または第2項記載の人工抗原。 4 支持体がウシアルブミン、ウマヘモグロビ
ン、ヒト血清アルブミンおよびヒトイムノグロブ
リンGの群から選択される、特許請求の範囲第1
項または第2項記載の人工抗原。 5 支持体がヒト血清アルブミンである、特許請
求の範囲第1項または第2項記載の人工抗原。 6 支持体がヒト血清アルブミンであり、かつ支
持体に結合されたヒトのT抗原決定ハプテンの量
が7〜16当量/モルである、特許請求の範囲第1
項または第2項記載の人工抗原。
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GB8022656 | 1980-07-10 | ||
GB8022656 | 1980-07-10 |
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