JPH0337B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は特定の芳香族アシルアミノ酸を特異的
に分解する新規なアミノアシラーゼに関するもの
である。 アミノアシラーゼは各種のものが知られている
が、そのほとんどは脂肪族アシルアミノ酸に対し
て高分解活性を示し、芳香族アシルアミノ酸を分
解するものは微生物起源のものがいくか知られて
いるにすぎない。 本発明者は、サルコイド−シスの診断などに利
用されるアンジオテンシン変換酸素の活性測定法
(特公昭58−23080号など)、あるいはカルボキシ
ペプチダーゼAの活性測定法(特願昭57−193466
号など)にアミノアシラーゼを利用するために、
芳香族アシルアミノ酸を分解する活性の高いアミ
ノアシラーゼを取得するべく広く微生物を探索
し、先にコリネバクテリウム・エクイ
(Corynebacterium equi)H−7株がN−ベンゾ
イル−L−アラニンに高分解活性を有するアミノ
アシラーゼを産生することを見出した(特開昭57
−86292号)。そして、さらに研究を進め、今回N
−ベンゾイルグリシンに高分解活性を有する新規
なアミノアシラーゼをシユードモナス属に属する
細菌が産生することを見出し、これに基いて本発
明を完成するに至つた。 本発明のアミノアシラーゼはN−ベンゾイルグ
リシン及びN−ベンゾイル−L−アラニンを分解
し、N−ベンゾイルグリシンを分解する活性がN
−ベンゾイル−L−アラニンを分解する活性より
大きく、かつN−アセチルグリシン及びN−ベン
ゾイル−D−アラニンを分解する活性がいずれも
N−ベンゾイルグリシンを分解する活性の1/20以
下のものである。 実施例で得られた精製酵素標品の理化学的性質
を次に示す。 (1) 作用 本酵素はN−ベンゾイルグリシンを加水分解し
て安息香酸とグリシンを生成する。 (2) 基質特異性 各種アミノ酸のN−アシル誘導体を基質として
酵素活性を測定した結果を第1表に示す。表中の
酵素活性はN−ベンゾイルグリシンに対する活性
を100とした相対活性で表示してある。この表に
示すように本酵素はN−ベンゾイルグリシン、N
−ベンゾイル−L−アラニン、N−ベンゾイル−
DL−2−アミノ酢酸及びN−ベンゾイル−L−
フエニルアラニンを分解するN−アセチルグリシ
ン、N−ベンゾイル−DL−メチオニン及びN−
ベンゾイル−D−フエニルアラニンを実質的に分
解しない。特に、N−ベンゾイルグリシン及びN
−ベンゾイル−L−アラニンをよく分解し、とり
わけN−ベンゾイルグリシンを分解する活性が大
きく、かつN−アセチルグリシンを分解する活性
がN−ベンゾイルグリシンを分解する活性の1/10
0以下である。
に分解する新規なアミノアシラーゼに関するもの
である。 アミノアシラーゼは各種のものが知られている
が、そのほとんどは脂肪族アシルアミノ酸に対し
て高分解活性を示し、芳香族アシルアミノ酸を分
解するものは微生物起源のものがいくか知られて
いるにすぎない。 本発明者は、サルコイド−シスの診断などに利
用されるアンジオテンシン変換酸素の活性測定法
(特公昭58−23080号など)、あるいはカルボキシ
ペプチダーゼAの活性測定法(特願昭57−193466
号など)にアミノアシラーゼを利用するために、
芳香族アシルアミノ酸を分解する活性の高いアミ
ノアシラーゼを取得するべく広く微生物を探索
し、先にコリネバクテリウム・エクイ
(Corynebacterium equi)H−7株がN−ベンゾ
イル−L−アラニンに高分解活性を有するアミノ
アシラーゼを産生することを見出した(特開昭57
−86292号)。そして、さらに研究を進め、今回N
−ベンゾイルグリシンに高分解活性を有する新規
なアミノアシラーゼをシユードモナス属に属する
細菌が産生することを見出し、これに基いて本発
明を完成するに至つた。 本発明のアミノアシラーゼはN−ベンゾイルグ
リシン及びN−ベンゾイル−L−アラニンを分解
し、N−ベンゾイルグリシンを分解する活性がN
−ベンゾイル−L−アラニンを分解する活性より
大きく、かつN−アセチルグリシン及びN−ベン
ゾイル−D−アラニンを分解する活性がいずれも
N−ベンゾイルグリシンを分解する活性の1/20以
下のものである。 実施例で得られた精製酵素標品の理化学的性質
を次に示す。 (1) 作用 本酵素はN−ベンゾイルグリシンを加水分解し
て安息香酸とグリシンを生成する。 (2) 基質特異性 各種アミノ酸のN−アシル誘導体を基質として
酵素活性を測定した結果を第1表に示す。表中の
酵素活性はN−ベンゾイルグリシンに対する活性
を100とした相対活性で表示してある。この表に
示すように本酵素はN−ベンゾイルグリシン、N
−ベンゾイル−L−アラニン、N−ベンゾイル−
DL−2−アミノ酢酸及びN−ベンゾイル−L−
フエニルアラニンを分解するN−アセチルグリシ
ン、N−ベンゾイル−DL−メチオニン及びN−
ベンゾイル−D−フエニルアラニンを実質的に分
解しない。特に、N−ベンゾイルグリシン及びN
−ベンゾイル−L−アラニンをよく分解し、とり
わけN−ベンゾイルグリシンを分解する活性が大
きく、かつN−アセチルグリシンを分解する活性
がN−ベンゾイルグリシンを分解する活性の1/10
0以下である。
【表】
(3) 至適PH及び安定PH範囲
N−ベンゾイルグリシンを基質として、0.1M
リン酸ナトリウム緩衝液PH6.0〜8.0(白丸)、0.2M
ホウ酸緩衝液PH8.0〜9.0(黒丸)及び0.1M炭酸緩
衝液PH9.0〜10.0(三角)を用いて、37℃で10分間
反応させて至適PHを測定した結果を第1図に示
す。図から明らかなように本酵素の至適PHは7.0
〜8.0にある。 次に、本酵素を0.1M酢酸緩衝液PH4.0〜5.5(三
角)、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液PH6.0〜8.0(白
丸)、0.2Mホウ酸緩衝液PH8.0〜9.5(黒丸)及び
0.1M炭酸緩衝液PH9.0〜10.5(四角)の各緩衝液中
で37℃1時間加熱し、残存する酸素活性を測定し
た結果を第2図に示す。本酵素はPH6.0〜7.0の範
囲において最も安定である。 (4) 力価の測定法 酵素液0.05mlに100mMリン酸ナトリウム緩衝
液(PH8.0)0.45mlを加え、37℃で5分間予熱し
た後、10mM N−ベンゾイルグリシン溶液1.0
mlを加えて37℃で10分間反応させる。反応液にト
リクロル酢酸1.0mlを加えて反応を停止させ、生
成したグリシンをニンヒドリン法で定量する。 ニンヒドリン法による定量はムーアらの方法
(S.Moore and W.H.Stein,J.Biol.Chem.,
vol.211,P907(1954))に準じて下記のように行
なつた。すなわち、反応液を遠心分離し、その上
清1.0mlにニンヒドリン試乗0.2mlを加え煮沸水浴
中で15分間加熱し、ただちに50%エタノール2.0
mlを加える。水冷後、575nmで比色し、同様にし
て求めたグリシンの標準曲線からグリシンの生成
量を定量した。 酵素活性は、1分間に1μmolのグリシンを生成
する酵素量を1単位とした。 (5) 作用適温の範囲 各温度において、力価の測定方法に準じて酵素
活性を測定した結果を第3図に示す。図から明ら
かなように、本酵素の作用適温の範囲は20〜50℃
であり、至適温度は50℃付近にある。 (6) PH、温度などによる失活の条件 本酵素は、第2図に示したように、37℃1時間
の処理でPH4以下及びPH10.5以上でほぼ完全に失
活し、PH5及びPH9では活性がほぼ半分になる。 次に、本酵素を、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝
液PH7.0中で各温度で30分間加熱後、残存活性を
測定した結果を第4図に示す。図に示すように、
本酵素は50℃30分間の加熱では失活しないが、60
℃30分間の処理で70%が失活し、70℃30分間の処
理でほぼ完全に失活する。 (7) 阻害、活性化及び安定化 各種金属イオン、金属キレート剤及びSH阻害
剤を終濃度が第2表に示す濃度になるように反応
液に加えたときの本酵素の活性に及ぼす影響を第
2表にまとめて示す。この表の相対活性は無添加
の場合の活性を100として表示してある。尚、表
には示していないが、本酵素はクロルイオンの存
在によつて安定化される。
リン酸ナトリウム緩衝液PH6.0〜8.0(白丸)、0.2M
ホウ酸緩衝液PH8.0〜9.0(黒丸)及び0.1M炭酸緩
衝液PH9.0〜10.0(三角)を用いて、37℃で10分間
反応させて至適PHを測定した結果を第1図に示
す。図から明らかなように本酵素の至適PHは7.0
〜8.0にある。 次に、本酵素を0.1M酢酸緩衝液PH4.0〜5.5(三
角)、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液PH6.0〜8.0(白
丸)、0.2Mホウ酸緩衝液PH8.0〜9.5(黒丸)及び
0.1M炭酸緩衝液PH9.0〜10.5(四角)の各緩衝液中
で37℃1時間加熱し、残存する酸素活性を測定し
た結果を第2図に示す。本酵素はPH6.0〜7.0の範
囲において最も安定である。 (4) 力価の測定法 酵素液0.05mlに100mMリン酸ナトリウム緩衝
液(PH8.0)0.45mlを加え、37℃で5分間予熱し
た後、10mM N−ベンゾイルグリシン溶液1.0
mlを加えて37℃で10分間反応させる。反応液にト
リクロル酢酸1.0mlを加えて反応を停止させ、生
成したグリシンをニンヒドリン法で定量する。 ニンヒドリン法による定量はムーアらの方法
(S.Moore and W.H.Stein,J.Biol.Chem.,
vol.211,P907(1954))に準じて下記のように行
なつた。すなわち、反応液を遠心分離し、その上
清1.0mlにニンヒドリン試乗0.2mlを加え煮沸水浴
中で15分間加熱し、ただちに50%エタノール2.0
mlを加える。水冷後、575nmで比色し、同様にし
て求めたグリシンの標準曲線からグリシンの生成
量を定量した。 酵素活性は、1分間に1μmolのグリシンを生成
する酵素量を1単位とした。 (5) 作用適温の範囲 各温度において、力価の測定方法に準じて酵素
活性を測定した結果を第3図に示す。図から明ら
かなように、本酵素の作用適温の範囲は20〜50℃
であり、至適温度は50℃付近にある。 (6) PH、温度などによる失活の条件 本酵素は、第2図に示したように、37℃1時間
の処理でPH4以下及びPH10.5以上でほぼ完全に失
活し、PH5及びPH9では活性がほぼ半分になる。 次に、本酵素を、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝
液PH7.0中で各温度で30分間加熱後、残存活性を
測定した結果を第4図に示す。図に示すように、
本酵素は50℃30分間の加熱では失活しないが、60
℃30分間の処理で70%が失活し、70℃30分間の処
理でほぼ完全に失活する。 (7) 阻害、活性化及び安定化 各種金属イオン、金属キレート剤及びSH阻害
剤を終濃度が第2表に示す濃度になるように反応
液に加えたときの本酵素の活性に及ぼす影響を第
2表にまとめて示す。この表の相対活性は無添加
の場合の活性を100として表示してある。尚、表
には示していないが、本酵素はクロルイオンの存
在によつて安定化される。
【表】
【表】
(8) 精製方法
培養後、菌体から酵素を抽出した液を、0.1M
塩化ナトリウムを含む0.01Mリン酸ナトリウム緩
衝液で平衡化したジエチルアミノエチルセルロー
スに流して酵素を吸着させ、0.25M塩化ナトリウ
ムを含む同緩衝液で溶出し、活性区分を集める。
この活性区分に硫酸アンモニウムを40%飽和にな
るように加え、生成した沈澱を集める。この沈澱
を少量の0.1M塩化ナトリウムを含む同緩衝液に
溶解し、同緩衝液に対して一夜透析する。透析物
0.1M塩化ナトリウム及び5mMメルカプトエタ
ノールを含む同緩衝液で平衡化したセフアロース
CL−6Bのカラムを用いてゲル過を行ない、活
性画分を集めてそれに硫酸アンモニウムを20%飽
和になるように加える。生成した沈澱物を遠心し
て除去し、上清液にさらに硫酸アンモニウムを40
%飽和になるように加えて生成した沈澱物を集め
る。この沈澱物を少量の0.1M塩化ナトリウム及
び5mMメルカプトエタノールを含む0.0.1Mリ
ン酸ナトリウム緩衝液に溶解後同緩衝液に対して
一夜透析し、精製酵素標品を得る。 (9) 分子量 ゲル過法によつて求めた分子量は18万であつ
た。 (10) 等電点 PH3.5〜10.0のキヤリアアンホラインを用いた
アイソエレクトリツクフオーカシング法によつて
測定した等電点は4.3であつた。 以上の理化学的性質のうち、本酵素は特に基質
特異性が従来のアミノアシラーゼと異なる。すな
わち、従来のアミノアシラーゼのほとんどは脂肪
族アシルアミノ酸に対してのみ高分解活性を示
し、芳香族アシルアミノ酸を分解するものは微生
物起源のもにいくつか知られているにすぎない。
そして、この芳香族アシルアミノ酸を分解するも
のはいずれもアシル−D−アミノ酸をも分解す
る。 一方、本酵素はN−ベンゾイルグリシンなどの
芳香族アシルアミノ酸に対しては高分解活性を示
すがN−アセチルグリシンなどの脂肪族アシルア
ミノ酸をほとんど分解せず、N−ベンゾイル−D
−アラニンなどのアシル−D−アミノ酸に対する
分解活性も低い。 また、本発明者らの既出願のものは芳香族アシ
ルアミノ酸に対して高分解活性を有するが、この
酵素はそのうちで特にN−ベンゾイル−L−アラ
ニンに対する分解活性が高く、N−ベンゾイルグ
リシンに対する活性はあまり大きくない。しかる
に、本酵素は、芳香族アシルアミノ酸のなかでも
特にN−ベンゾイルグリシンに対する分解活性が
大きく、このような酵素は従来知られていなかつ
たのであるから、本酵素は明らかに新規である。 本発明の酵素は、例えば本発明者らが北海道の
土壌から分離した微生物シユードモナス・プチダ
(Pseudomonas putida)No.C692−3から産生さ
せることができる。このシユードモナス・ブチダ
No.C692−3は工業技術院微生物工業技術研究所
に微工研菌寄第7082号(FERM−P7082)として
寄託されている。 シユードモナス・プチダNo.C692−3の菌学的
性質を次に示す。 1 形態(肉汁寒天培地、28℃24時間培養) (1) 細胞の形及び大きさ 細胞は桿状(0.8〜1.0×1.3〜1.6ミクロン)
であり、多形性は示さない。 (2) 運動性あり。鞭毛は単極鞭毛であり、複数
本形成する。 (3) 胞子:形成しない (4) グラム染色性:陰性 2 生育状態 (1) 肉汁寒天平板培養 コロニーは円板状で、全縁、半透明、軟質で
あり、表面は光沢がある。可溶性色素は産生しな
い。コロニーの大きさは直径1.8〜2.2mmである。 (2) 肉汁寒天斜面培養 線状に良好に生育し、軟質である。表面は光
沢がある。凝縮水でも良く生育する。可溶性色素
は産生しない。 (3)肉汁液体培養 適度に生育し、混濁する。沈渣を生ずる。膜
は形成しない。 (4) 肉汁ゼラチン穿刺培養 表層部分で増殖するが液化しない。沈渣を生
ずる。 (5) リトマスミルク 液化及び凝固しない。PHは微アルカリ性。 3 生理学的性質 (1) 硝酸塩の還元:陽性 (2) 脱窒反応:陰性 (3) MRテスト:陰性 (4) VPテスト:陰性 (5) インドールの生成:陰性 (6) 硫化水素の生成:陰性 (7) デンプンの加水分解:陰性 (8) クエン酸塩の利用:陽性 (9) 無機窒素源の利用:硝酸塩及びアンモニウ
ム塩のいずれも利用する。 (10) 色素の生成:キングB培地で黄色螢光色素
を培地中に生成する。 (11) ウレアーゼ:陰性 (12) オキシダーゼ:陽性 (13) カタラーゼ:陽性 (14) 生育温度:4〜39℃ 最適生育温度:25〜30℃ (15) 酸素に対する態度:好気性 (16) OF試験:酸化型 (17) 糖からの酸の生成 D−グルコース、D−ガラクトース、L−アラ
ビノース、D−キシロース、D−フラクトー
ス及びD−マンノースから酸を生成するが、
マルトース、トレハロース、シヨ糖、イノシ
トール、D−マンニトール、乳糖、D−ソル
ビトール及び可溶性デンプンからは酸を生成
しない。 以上の諸性質をバージエイズ・マニユアル・オ
ブ・デターミネイテイブ・バクテリオロジー
(Bergey′s Mannual of Determinative
Bacteriology)第8版、1974版の記載と照合し
た結果、本菌はシユードモナス属に属し、そのな
かでシユードモナス・プチダの性質と極めてよく
一致するところから、本菌をシユードモナス・プ
チダと同定した。 このような微生物を培養して本発明の酵素を産
生させる方法は微生物を培養する一般的な方法に
準じて行なうことができる。すなわち、培地には
炭素源、窒素源、無機塩類、その他の栄養物質な
どを含有するものを用いる。炭素源としては、グ
ルコース、麦芽糖のような糖類、グリセロールの
ようなアルコール類を使用できるが、馬尿酸とか
N−ベンゾイルアラニンのような本酵素の誘導基
質が特に効果的である。窒素源としては硫酸アン
モニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウムな
どの無機態のものでもよく、酵母エキス、肉エキ
ス、ペプトンのような有機態のものでもよい。無
機塩類としては塩化ナトリウムのほかには、リン
酸1カリウム、リン酸2ナトリウム、硫酸マグネ
シウム等の通常の無機塩を使用することができ
る。 培養方法としては、通常は液体培養が好まし
く、15〜37℃、好ましくは25〜35℃で、PH5〜8
で10〜50時間好気的条件下で培養する。この培養
によつて本酵素の大部分は菌体内で蓄積される。 培養終了後は培養物をそのまま酵素源として利
用してもよいが、通常は分離精製を行なう。分離
方法としては、まず菌体を遠心等の常法により分
離し、磨砕、リゾチーム等の溶菌酵素による溶
菌、超音波処理、圧力シヨツク法、自己消化法等
によつて菌体を破壊し、酵素を抽出する。破壊し
た菌体残渣を分離して酵素抽出液を得、硫酸アン
モニウム等を用いる塩析法、アセトン、エタノー
ル等を用いる溶媒沈澱法、セフアデツクス、セフ
アロースゲル等を用いるゲル過法、イオン交換
樹脂等を用いる吸着法等を適宜組合せて精製を行
ない、目的とする純度の酵素標品を得る。 本発明の酵素はN−ベンゾイルグリシン及びN
−ベンゾイル−L−アラニンをよく分解するとこ
ろに特徴があり、アンジオテンシンエ変換酵素の
活性測定法及びカルボキシペプチダーゼAの活性
測定法などに有用である。 以下実施例を示す。 実施例 グルコース1%、ペプトン1%、肉エキス0.5
%、塩化ナトリウム0.3%、酵母エキス0.25%、
リン酸2カリウム0.05%及び硫酸マグシウム0.05
%からなるPH7.0培地200mlを500ml容三角フラス
コに分注し、120℃で20分間加熱して滅菌した。
冷却後、シユードモナス・プチダNo.C692−3(微
工研菌寄第7082号)を接種し、28℃で20時間振盪
培養して種培養液とした。 本培養の培地として、馬尿酸1%、酵母エキス
0.3%、硝酸ナトリウム0.2%、リン酸2カリウム
0.1%、塩化ナトリウム0.05%及び硫酸マグネシ
ウム0.05%からなるPH7.0の培地60を90容ジ
ヤーフアーメンターに仕込み、120℃で20分間滅
菌した。冷却後、種培養液1.2を接種し、28℃
で20時間通気撹拌培養を行なつた。その後、通気
量は0.5vvmとし、撹拌羽根の回転数は300rpmと
した。 培養終了後、培養液を遠心して700gの湿菌体
を得た。この菌体を0.1M塩化ナトリウムを含む
0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液(PH7.0)3に
懸濁し、ダイノーミル(KDL型)を用いて
3000rpm、流量30ml/minで菌体を破砕した。遠
心して菌体残渣を除き、酵素抽出液3.5を得た。 0.1M塩化ナトリウムを含むリン酸ナトリウム
緩衝液PH7.0で平衡化したDEAEセルロース1Kg
をこの酵素抽出液に加え、6℃で2時間撹拌して
酵素を吸着させた。このDEAEセルロースを同緩
衝液で充分に洗浄し、0.25M塩化ナトリウム及び
5mMメルカプトエノールを含むリン酸ナトリウ
ム緩衝液(PH7.0)2で本酵素を溶出した。溶
出液に硫酸アンモニウムを40%飽和になるように
加え、生じた沈澱を集めた。この沈澱を、少量の
0.1M塩化ナトリウム及び5mMメルカプトエタ
ノールを含む0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液(PH
7.0)に溶解し、同緩衝液に対して一夜透析した。
透析物を同緩衝液で平衡化したセフアロースCL
−6Bのカラムに流してゲル過を行なつた。得
られた活性区分に硫酸アンモニウムを20%飽和に
なるように加え、生じた沈澱を遠心して除去し
た。上清にさらに硫酸アンモニウムを40%飽和に
なるように加え、生じた沈澱を遠心分離した。こ
の沈澱を少量の同緩衝液に溶解し、同じ緩衝液に
対して一夜透析して、比活性560単位/mg(蛋白)
の精製酵素標品470000単位を収率60%で得た。
塩化ナトリウムを含む0.01Mリン酸ナトリウム緩
衝液で平衡化したジエチルアミノエチルセルロー
スに流して酵素を吸着させ、0.25M塩化ナトリウ
ムを含む同緩衝液で溶出し、活性区分を集める。
この活性区分に硫酸アンモニウムを40%飽和にな
るように加え、生成した沈澱を集める。この沈澱
を少量の0.1M塩化ナトリウムを含む同緩衝液に
溶解し、同緩衝液に対して一夜透析する。透析物
0.1M塩化ナトリウム及び5mMメルカプトエタ
ノールを含む同緩衝液で平衡化したセフアロース
CL−6Bのカラムを用いてゲル過を行ない、活
性画分を集めてそれに硫酸アンモニウムを20%飽
和になるように加える。生成した沈澱物を遠心し
て除去し、上清液にさらに硫酸アンモニウムを40
%飽和になるように加えて生成した沈澱物を集め
る。この沈澱物を少量の0.1M塩化ナトリウム及
び5mMメルカプトエタノールを含む0.0.1Mリ
ン酸ナトリウム緩衝液に溶解後同緩衝液に対して
一夜透析し、精製酵素標品を得る。 (9) 分子量 ゲル過法によつて求めた分子量は18万であつ
た。 (10) 等電点 PH3.5〜10.0のキヤリアアンホラインを用いた
アイソエレクトリツクフオーカシング法によつて
測定した等電点は4.3であつた。 以上の理化学的性質のうち、本酵素は特に基質
特異性が従来のアミノアシラーゼと異なる。すな
わち、従来のアミノアシラーゼのほとんどは脂肪
族アシルアミノ酸に対してのみ高分解活性を示
し、芳香族アシルアミノ酸を分解するものは微生
物起源のもにいくつか知られているにすぎない。
そして、この芳香族アシルアミノ酸を分解するも
のはいずれもアシル−D−アミノ酸をも分解す
る。 一方、本酵素はN−ベンゾイルグリシンなどの
芳香族アシルアミノ酸に対しては高分解活性を示
すがN−アセチルグリシンなどの脂肪族アシルア
ミノ酸をほとんど分解せず、N−ベンゾイル−D
−アラニンなどのアシル−D−アミノ酸に対する
分解活性も低い。 また、本発明者らの既出願のものは芳香族アシ
ルアミノ酸に対して高分解活性を有するが、この
酵素はそのうちで特にN−ベンゾイル−L−アラ
ニンに対する分解活性が高く、N−ベンゾイルグ
リシンに対する活性はあまり大きくない。しかる
に、本酵素は、芳香族アシルアミノ酸のなかでも
特にN−ベンゾイルグリシンに対する分解活性が
大きく、このような酵素は従来知られていなかつ
たのであるから、本酵素は明らかに新規である。 本発明の酵素は、例えば本発明者らが北海道の
土壌から分離した微生物シユードモナス・プチダ
(Pseudomonas putida)No.C692−3から産生さ
せることができる。このシユードモナス・ブチダ
No.C692−3は工業技術院微生物工業技術研究所
に微工研菌寄第7082号(FERM−P7082)として
寄託されている。 シユードモナス・プチダNo.C692−3の菌学的
性質を次に示す。 1 形態(肉汁寒天培地、28℃24時間培養) (1) 細胞の形及び大きさ 細胞は桿状(0.8〜1.0×1.3〜1.6ミクロン)
であり、多形性は示さない。 (2) 運動性あり。鞭毛は単極鞭毛であり、複数
本形成する。 (3) 胞子:形成しない (4) グラム染色性:陰性 2 生育状態 (1) 肉汁寒天平板培養 コロニーは円板状で、全縁、半透明、軟質で
あり、表面は光沢がある。可溶性色素は産生しな
い。コロニーの大きさは直径1.8〜2.2mmである。 (2) 肉汁寒天斜面培養 線状に良好に生育し、軟質である。表面は光
沢がある。凝縮水でも良く生育する。可溶性色素
は産生しない。 (3)肉汁液体培養 適度に生育し、混濁する。沈渣を生ずる。膜
は形成しない。 (4) 肉汁ゼラチン穿刺培養 表層部分で増殖するが液化しない。沈渣を生
ずる。 (5) リトマスミルク 液化及び凝固しない。PHは微アルカリ性。 3 生理学的性質 (1) 硝酸塩の還元:陽性 (2) 脱窒反応:陰性 (3) MRテスト:陰性 (4) VPテスト:陰性 (5) インドールの生成:陰性 (6) 硫化水素の生成:陰性 (7) デンプンの加水分解:陰性 (8) クエン酸塩の利用:陽性 (9) 無機窒素源の利用:硝酸塩及びアンモニウ
ム塩のいずれも利用する。 (10) 色素の生成:キングB培地で黄色螢光色素
を培地中に生成する。 (11) ウレアーゼ:陰性 (12) オキシダーゼ:陽性 (13) カタラーゼ:陽性 (14) 生育温度:4〜39℃ 最適生育温度:25〜30℃ (15) 酸素に対する態度:好気性 (16) OF試験:酸化型 (17) 糖からの酸の生成 D−グルコース、D−ガラクトース、L−アラ
ビノース、D−キシロース、D−フラクトー
ス及びD−マンノースから酸を生成するが、
マルトース、トレハロース、シヨ糖、イノシ
トール、D−マンニトール、乳糖、D−ソル
ビトール及び可溶性デンプンからは酸を生成
しない。 以上の諸性質をバージエイズ・マニユアル・オ
ブ・デターミネイテイブ・バクテリオロジー
(Bergey′s Mannual of Determinative
Bacteriology)第8版、1974版の記載と照合し
た結果、本菌はシユードモナス属に属し、そのな
かでシユードモナス・プチダの性質と極めてよく
一致するところから、本菌をシユードモナス・プ
チダと同定した。 このような微生物を培養して本発明の酵素を産
生させる方法は微生物を培養する一般的な方法に
準じて行なうことができる。すなわち、培地には
炭素源、窒素源、無機塩類、その他の栄養物質な
どを含有するものを用いる。炭素源としては、グ
ルコース、麦芽糖のような糖類、グリセロールの
ようなアルコール類を使用できるが、馬尿酸とか
N−ベンゾイルアラニンのような本酵素の誘導基
質が特に効果的である。窒素源としては硫酸アン
モニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウムな
どの無機態のものでもよく、酵母エキス、肉エキ
ス、ペプトンのような有機態のものでもよい。無
機塩類としては塩化ナトリウムのほかには、リン
酸1カリウム、リン酸2ナトリウム、硫酸マグネ
シウム等の通常の無機塩を使用することができ
る。 培養方法としては、通常は液体培養が好まし
く、15〜37℃、好ましくは25〜35℃で、PH5〜8
で10〜50時間好気的条件下で培養する。この培養
によつて本酵素の大部分は菌体内で蓄積される。 培養終了後は培養物をそのまま酵素源として利
用してもよいが、通常は分離精製を行なう。分離
方法としては、まず菌体を遠心等の常法により分
離し、磨砕、リゾチーム等の溶菌酵素による溶
菌、超音波処理、圧力シヨツク法、自己消化法等
によつて菌体を破壊し、酵素を抽出する。破壊し
た菌体残渣を分離して酵素抽出液を得、硫酸アン
モニウム等を用いる塩析法、アセトン、エタノー
ル等を用いる溶媒沈澱法、セフアデツクス、セフ
アロースゲル等を用いるゲル過法、イオン交換
樹脂等を用いる吸着法等を適宜組合せて精製を行
ない、目的とする純度の酵素標品を得る。 本発明の酵素はN−ベンゾイルグリシン及びN
−ベンゾイル−L−アラニンをよく分解するとこ
ろに特徴があり、アンジオテンシンエ変換酵素の
活性測定法及びカルボキシペプチダーゼAの活性
測定法などに有用である。 以下実施例を示す。 実施例 グルコース1%、ペプトン1%、肉エキス0.5
%、塩化ナトリウム0.3%、酵母エキス0.25%、
リン酸2カリウム0.05%及び硫酸マグシウム0.05
%からなるPH7.0培地200mlを500ml容三角フラス
コに分注し、120℃で20分間加熱して滅菌した。
冷却後、シユードモナス・プチダNo.C692−3(微
工研菌寄第7082号)を接種し、28℃で20時間振盪
培養して種培養液とした。 本培養の培地として、馬尿酸1%、酵母エキス
0.3%、硝酸ナトリウム0.2%、リン酸2カリウム
0.1%、塩化ナトリウム0.05%及び硫酸マグネシ
ウム0.05%からなるPH7.0の培地60を90容ジ
ヤーフアーメンターに仕込み、120℃で20分間滅
菌した。冷却後、種培養液1.2を接種し、28℃
で20時間通気撹拌培養を行なつた。その後、通気
量は0.5vvmとし、撹拌羽根の回転数は300rpmと
した。 培養終了後、培養液を遠心して700gの湿菌体
を得た。この菌体を0.1M塩化ナトリウムを含む
0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液(PH7.0)3に
懸濁し、ダイノーミル(KDL型)を用いて
3000rpm、流量30ml/minで菌体を破砕した。遠
心して菌体残渣を除き、酵素抽出液3.5を得た。 0.1M塩化ナトリウムを含むリン酸ナトリウム
緩衝液PH7.0で平衡化したDEAEセルロース1Kg
をこの酵素抽出液に加え、6℃で2時間撹拌して
酵素を吸着させた。このDEAEセルロースを同緩
衝液で充分に洗浄し、0.25M塩化ナトリウム及び
5mMメルカプトエノールを含むリン酸ナトリウ
ム緩衝液(PH7.0)2で本酵素を溶出した。溶
出液に硫酸アンモニウムを40%飽和になるように
加え、生じた沈澱を集めた。この沈澱を、少量の
0.1M塩化ナトリウム及び5mMメルカプトエタ
ノールを含む0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液(PH
7.0)に溶解し、同緩衝液に対して一夜透析した。
透析物を同緩衝液で平衡化したセフアロースCL
−6Bのカラムに流してゲル過を行なつた。得
られた活性区分に硫酸アンモニウムを20%飽和に
なるように加え、生じた沈澱を遠心して除去し
た。上清にさらに硫酸アンモニウムを40%飽和に
なるように加え、生じた沈澱を遠心分離した。こ
の沈澱を少量の同緩衝液に溶解し、同じ緩衝液に
対して一夜透析して、比活性560単位/mg(蛋白)
の精製酵素標品470000単位を収率60%で得た。
第1図は本酵素の至適PHを示す曲線を表わした
ものであり、第2図はPH安定性を示す曲線を表わ
したものである。第3図は作用適温を、そして第
4図は熱安定性をそれぞれ示すものである。
ものであり、第2図はPH安定性を示す曲線を表わ
したものである。第3図は作用適温を、そして第
4図は熱安定性をそれぞれ示すものである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 下記の性質を有するアミノアシラーゼ (1) 作用 本酵素はN−ベンゾイルグリシンを加水分解し
て安息香酸とグリシンを生成する。 (2) 基質特異性 本酵素はN−ベンゾイルグリシン、N−ベンゾ
イル−L−アラニン、N−ベンゾイル−DL−2
−アミノ酪酸及びN−ベンゾイル−L−フエニル
アラニンを分解するがN−アセチルグリシン、N
−ベンゾイル−DL−メチオニン及びN−ベンゾ
イル−D−フエニルアラニンを実質的に分解しな
い。 (3) 至適PH及び安定PH範囲 本酵素の至適PHは7.0〜8.0にあり、PH6.0〜7.0
の範囲において最も安定である。 (4) 至適温度 本酵素の至適温度は50℃付近にある。 (5) 分子量 18万(ゲル濾過法)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58120255A JPS6012977A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | アミノアシラ−ゼ |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58120255A JPS6012977A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | アミノアシラ−ゼ |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6012977A JPS6012977A (ja) | 1985-01-23 |
JPH0337B2 true JPH0337B2 (ja) | 1991-01-07 |
Family
ID=14781668
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58120255A Granted JPS6012977A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | アミノアシラ−ゼ |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6012977A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2015037289A1 (ja) | 2013-09-13 | 2015-03-19 | 富士フイルム株式会社 | レーザー彫刻用フレキソ印刷版原版の製造方法、フレキソ印刷版の製版方法、および、レーザー彫刻用樹脂組成物 |
-
1983
- 1983-07-04 JP JP58120255A patent/JPS6012977A/ja active Granted
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2015037289A1 (ja) | 2013-09-13 | 2015-03-19 | 富士フイルム株式会社 | レーザー彫刻用フレキソ印刷版原版の製造方法、フレキソ印刷版の製版方法、および、レーザー彫刻用樹脂組成物 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6012977A (ja) | 1985-01-23 |
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