JPH0269182A - ケトヘキソキナーゼの製造法 - Google Patents
ケトヘキソキナーゼの製造法Info
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- JPH0269182A JPH0269182A JP21854288A JP21854288A JPH0269182A JP H0269182 A JPH0269182 A JP H0269182A JP 21854288 A JP21854288 A JP 21854288A JP 21854288 A JP21854288 A JP 21854288A JP H0269182 A JPH0269182 A JP H0269182A
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はケトヘキソキナーゼ(以下、に)IKと略す、
)の製造法に関するものである。
)の製造法に関するものである。
更に詳細には、本発明は、フルクトース培地で生育する
菌をフルクトース培地で培養してKHにを生産する方法
に関するものである。
菌をフルクトース培地で培養してKHにを生産する方法
に関するものである。
従来、 KHKは動物起源の酵素として知られており、
微生物による生産は知られていなかった。
微生物による生産は知られていなかった。
本発明によって、にHKを微生物によって生産すること
ができるようになったので、本発明は、にHKの大量生
産を可能とし、酵素界に大きく貢献するものである。
ができるようになったので、本発明は、にHKの大量生
産を可能とし、酵素界に大きく貢献するものである。
(従来技術及び問題点)
一般的に、K)IK(EC,2,7,1,3)は次式で
表わされる反応を行う酵素 KHに フルクトース+ATPy−F−1−P+ADPとして知
られているが、にHKの存在は、高等動物の肝、腎、腸
粘膜、脂肪組織に知られている程度であった。
表わされる反応を行う酵素 KHに フルクトース+ATPy−F−1−P+ADPとして知
られているが、にHKの存在は、高等動物の肝、腎、腸
粘膜、脂肪組織に知られている程度であった。
また、 KHKの一般的な製法として、ウシの肝臓をP
H5とし、熱処理し、硫安分別し、セファデックスG−
100、DEAE−セルロース%CM−セルロースクロ
マトの各処理を行って精製する方法(酵素ハンドブック
331頁)が知られているが、その操作は煩雑であり、
また得られる酵素もきわめて少量であるに過ぎない。
H5とし、熱処理し、硫安分別し、セファデックスG−
100、DEAE−セルロース%CM−セルロースクロ
マトの各処理を行って精製する方法(酵素ハンドブック
331頁)が知られているが、その操作は煩雑であり、
また得られる酵素もきわめて少量であるに過ぎない。
(問題点を解決するための手段)
本発明者らは、微生物にKHにの給源を求めて鋭意研究
したところ、グルコース培地では生育しにくく、フルク
トース培地でよく生育する菌がにHKを生産することを
知ったのである。
したところ、グルコース培地では生育しにくく、フルク
トース培地でよく生育する菌がにHKを生産することを
知ったのである。
本発明は、フルクトース培地で生育する菌をフルクトー
ス含有培地でインキユベー トすることを特徴とするK
l+にの製造法である。
ス含有培地でインキユベー トすることを特徴とするK
l+にの製造法である。
本発明において、グルコース培地で生育しにくく、フル
クトース培地でよく生育する菌で、K)IKを生産する
ものの1例として、Psaudomonas AMI
−0YAが得られ、この菌株はFERM P−1015
2として微工研に寄託されている。
クトース培地でよく生育する菌で、K)IKを生産する
ものの1例として、Psaudomonas AMI
−0YAが得られ、この菌株はFERM P−1015
2として微工研に寄託されている。
次に、Pseudomonas AMI −OYAの菌
学的性質を示す。
学的性質を示す。
■、 ダラム陰性菌である。
2、 0.8μ×2.0μの桿菌で、単鞭毛を有す。
3、運動性あり。
4、 フルクトース寒天培地で、ピンクで、盛り」二つ
だ生育を示し、表面は湿潤1円形で、周辺は円滑なコロ
ニーを形成する。
だ生育を示し、表面は湿潤1円形で、周辺は円滑なコロ
ニーを形成する。
5、 pH6,0〜8.5で生育し、pH7,0で最
高の生育を示し、ρ115.0では生育しない。
高の生育を示し、ρ115.0では生育しない。
6.30℃で良好な生育を示し、25℃ではゆるやかな
生育となり、37℃では生育しない。
生育となり、37℃では生育しない。
7、炭素源の利用(コーザの培地を用い、0.1%によ
る)メタノール、メチルアミン塩酸、 Naフォルメー
ト、エタノール、ラクテート、サクシネート、マレート
、フマレートでよく生育し、グルコース、フルクトース
、アスパルテート5グルタメート、グリコレート、サイ
トレートでゆるやかに生育し、オキザレート、グルタレ
ート、タートレート、アラニン、炭素源を添加しないミ
ネラル培地ではほとんど生育しない。
る)メタノール、メチルアミン塩酸、 Naフォルメー
ト、エタノール、ラクテート、サクシネート、マレート
、フマレートでよく生育し、グルコース、フルクトース
、アスパルテート5グルタメート、グリコレート、サイ
トレートでゆるやかに生育し、オキザレート、グルタレ
ート、タートレート、アラニン、炭素源を添加しないミ
ネラル培地ではほとんど生育しない。
本発明においては、 Pseudomonas AMI
−OYAを培養し、菌体を多量取得し、この菌体をフ
ルクトース含有培地で20〜50℃、5〜20時間イン
キュベートすれば、菌体内に多量のK)IKが生成する
。
−OYAを培養し、菌体を多量取得し、この菌体をフ
ルクトース含有培地で20〜50℃、5〜20時間イン
キュベートすれば、菌体内に多量のK)IKが生成する
。
Pseudomonas AMI−OYAの菌体を得る
には、Pseudomonas AMI −OYAの増
殖できるいかなる培地でもよい。例えば、0.2%に、
)IPO,、0,2%NaN0..0.2%(NH4)
2Soい0.1%K)12POい0.02%MgSO4
・7H,0,0,01%酵母エキス(Oriantal
酵母、Co)と1%メタノールを含む培地で25〜40
℃、20〜50時間で連続釣上トウ培養し、大量の菌体
を生産させる。
には、Pseudomonas AMI −OYAの増
殖できるいかなる培地でもよい。例えば、0.2%に、
)IPO,、0,2%NaN0..0.2%(NH4)
2Soい0.1%K)12POい0.02%MgSO4
・7H,0,0,01%酵母エキス(Oriantal
酵母、Co)と1%メタノールを含む培地で25〜40
℃、20〜50時間で連続釣上トウ培養し、大量の菌体
を生産させる。
得られた培養液は遠心処理し1分離湿菌体をフルクトー
ス含有培地に添加し、25〜40℃でゆっくり攪拌しつ
つ、1〜30時間インキュベートし、菌体内にKHKを
生成させる。
ス含有培地に添加し、25〜40℃でゆっくり攪拌しつ
つ、1〜30時間インキュベートし、菌体内にKHKを
生成させる。
得られたインキュベート処理液は、KHKを含有する菌
体を含んでいるので、例えば、O,]8MD−フルクト
ース、1mMEDTA、10d 2−メルカプトエタノ
ール、0.5a+M phenylmethyl 5u
lfonylfluoridaを含んだPH6,8の5
mM−リン酸ナトリウムbuffer(KPB)に菌体
想濁液として4℃に冷却してFrenchpressu
re cell pressなどにより菌体を破砕し、
得られたホモジネート液は60,0OOX g以上で遠
心処理し、菌体を分離する。
体を含んでいるので、例えば、O,]8MD−フルクト
ース、1mMEDTA、10d 2−メルカプトエタノ
ール、0.5a+M phenylmethyl 5u
lfonylfluoridaを含んだPH6,8の5
mM−リン酸ナトリウムbuffer(KPB)に菌体
想濁液として4℃に冷却してFrenchpressu
re cell pressなどにより菌体を破砕し、
得られたホモジネート液は60,0OOX g以上で遠
心処理し、菌体を分離する。
得られた上清はDEAE−セルロースカラムに吸着させ
て、溶出させ、溶出液は透析処理を行い、処理液はブル
ーデキストランセファロースカラムに吸着させ、溶出し
、これを濃縮し、更にセファデックスG−100カラム
に吸着させ、溶出し、溶出液をセファデックスG−10
0ゲル濾過の操作をくり返し、精製を行い、ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動において単一バンドを示すまで精
製されたKIIKを得ることができる。
て、溶出させ、溶出液は透析処理を行い、処理液はブル
ーデキストランセファロースカラムに吸着させ、溶出し
、これを濃縮し、更にセファデックスG−100カラム
に吸着させ、溶出し、溶出液をセファデックスG−10
0ゲル濾過の操作をくり返し、精製を行い、ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動において単一バンドを示すまで精
製されたKIIKを得ることができる。
本発明の実施例で得られたKHKの理化学的性質は次の
通りである。
通りである。
1、 次式の反応を行う。
フルクトース+ATPuF−1−P+八〇P2、分子量
は60 、000で、30 、000の分子量をもつ2
つの同一サブユニットから構成される。
は60 、000で、30 、000の分子量をもつ2
つの同一サブユニットから構成される。
3、等電点は焦点電気泳動による測定で4.5である。
4、熱安定性は第1図に示す通りで、70℃で30分間
加熱してもほとんど失活はない。
加熱してもほとんど失活はない。
精製酵素液(5+mM KPB中、0.1mg/m Q
)が図示の時間で別々に70℃、80℃で加熱された
。その加熱された酵素は急速にアイスバスで冷却された
、残存している酵素活性は相対的な酵素活性を示してい
る。
)が図示の時間で別々に70℃、80℃で加熱された
。その加熱された酵素は急速にアイスバスで冷却された
、残存している酵素活性は相対的な酵素活性を示してい
る。
5、pH安定性は第2図に示す通りで、pH6〜10で
きわめて安定である。
きわめて安定である。
6、 ポリアクリルアミドゲル電気泳動と等電点電気泳
動は第3図に示される。
動は第3図に示される。
精製酵素(50μg)をポリアクリルアミドゲルに加え
、電気泳動は約2時間3mA″cpl(8,5Tri
5−glycineで行なわれた。そのゲルカラムはC
ommassie brilliant blueで染
色される。
、電気泳動は約2時間3mA″cpl(8,5Tri
5−glycineで行なわれた。そのゲルカラムはC
ommassie brilliant blueで染
色される。
精製KHK(1,2mg KHK/10m Q )をg
lycarol濃度勾配下でp+(3,5〜10のキャ
リヤーAmpholinaから成る等電点電気泳動の中
間付近に現れる。電気泳動はChromato cha
IIIber内(4℃)で100時間400vで行なわ
れた。その内容量は3.6−フラクションに画分され、
pHとKHK活性の両方がそれぞれのフラクションで測
定された。
lycarol濃度勾配下でp+(3,5〜10のキャ
リヤーAmpholinaから成る等電点電気泳動の中
間付近に現れる。電気泳動はChromato cha
IIIber内(4℃)で100時間400vで行なわ
れた。その内容量は3.6−フラクションに画分され、
pHとKHK活性の両方がそれぞれのフラクションで測
定された。
次に本発明の実施例を示す。
実施例
Pseudomonas AMI −OYA、 FER
N P−10152の種菌培養液を、0.2%に21(
PO,,0,2%NaNOs、0.2%(Nl(、)。
N P−10152の種菌培養液を、0.2%に21(
PO,,0,2%NaNOs、0.2%(Nl(、)。
so、、 o、t%KH,PO,,0,02%MgSO
4・71(、Olo、01%酵母エキス(Orient
al酵母、Co)と1%メタノールを含む培地5011
1に接種し、連続釣上トウで30℃。
4・71(、Olo、01%酵母エキス(Orient
al酵母、Co)と1%メタノールを含む培地5011
1に接種し、連続釣上トウで30℃。
;16時間培養した。
培養液を遠心処理し、得られた菌体(50gWet。
wt) を0.IM D−フルクトース、1mM E
DTA、io+++82−メルカプトエタノール、0.
5mM phenyl methylsulfonyl
fluorj、deを含んだpH6,8の5mM リン
酸ナトリウムbuffer(KPB)に)鵠濁した。
DTA、io+++82−メルカプトエタノール、0.
5mM phenyl methylsulfonyl
fluorj、deを含んだpH6,8の5mM リン
酸ナトリウムbuffer(KPB)に)鵠濁した。
菌体懸濁液を1,000kg/cJでFrench p
ressurecell pressに通して細胞を破
砕する。なお、以下に述べるすべての操作も特に記さな
いかぎり、4℃で行なった。
ressurecell pressに通して細胞を破
砕する。なお、以下に述べるすべての操作も特に記さな
いかぎり、4℃で行なった。
得られたホモジネートを60分間68,0OOX gで
遠沈する。上述した同じ成分を含む5mM KPBで平
衡化させたDEAE−セルロースカラム(2、5x 3
0cm)にその上澄を吸着させる。そのカラムを、同じ
bufferで完全に洗った後、KHKは0.3MKC
lを含んだbufferで溶出される。酵素活性はRa
ushslとC1elandによって提唱された方法に
よって測定さ1% れた。タンパク含量はE28□値を15.0として決定
された。KHK画分は透析チューブの中に注ぎ込み、p
olyethyleneglycol 6,000中に
入れる。濃縮された透析チューブはSmMKPB中で一
晩、透析される。
遠沈する。上述した同じ成分を含む5mM KPBで平
衡化させたDEAE−セルロースカラム(2、5x 3
0cm)にその上澄を吸着させる。そのカラムを、同じ
bufferで完全に洗った後、KHKは0.3MKC
lを含んだbufferで溶出される。酵素活性はRa
ushslとC1elandによって提唱された方法に
よって測定さ1% れた。タンパク含量はE28□値を15.0として決定
された。KHK画分は透析チューブの中に注ぎ込み、p
olyethyleneglycol 6,000中に
入れる。濃縮された透析チューブはSmMKPB中で一
晩、透析される。
不溶性の物質が60分間の68,000x gの遠心分
離で除去される。透明なローズレッドの上澄は5mMに
PBで平衡化されたブルーデキストランセファロースカ
ラム(’l X 20cm)にチャージする。カラムに
同様のbufferを流した後、 Kl(Kは1.M
KCIを含む5!LMKPBで溶出される。溶出曲線は
第4図に示される。
離で除去される。透明なローズレッドの上澄は5mMに
PBで平衡化されたブルーデキストランセファロースカ
ラム(’l X 20cm)にチャージする。カラムに
同様のbufferを流した後、 Kl(Kは1.M
KCIを含む5!LMKPBで溶出される。溶出曲線は
第4図に示される。
KHK活性を含む両分はpol、yethylewgl
ycol 6,000で濃縮され、同様のbuffer
で平衡化させた5aphadax G−100カラム(
1、3X 200cm)にかけられる。主な不純物がv
oid volu肩aあたりに溶出された後にKHKは
すぐにカラムから溶出される。 5ephadax G
−100ゲル濾過の操作がくり返される。2回目のゲル
濾過の溶出パターンはKHKの活性を伴うタンパク質の
ほぼ均整のとれたパターンである(第5図)。
ycol 6,000で濃縮され、同様のbuffer
で平衡化させた5aphadax G−100カラム(
1、3X 200cm)にかけられる。主な不純物がv
oid volu肩aあたりに溶出された後にKHKは
すぐにカラムから溶出される。 5ephadax G
−100ゲル濾過の操作がくり返される。2回目のゲル
濾過の溶出パターンはKHKの活性を伴うタンパク質の
ほぼ均整のとれたパターンである(第5図)。
この段階における酵素標品はポリアクリルアミドゲル電
気泳動において50μgのタンパク質が加えられた場合
でも単一のタンパク質のバンドを示す。
気泳動において50μgのタンパク質が加えられた場合
でも単一のタンパク質のバンドを示す。
KHKは40%の精製収率をもって約1000倍精製さ
れた。D−fructose−1−phosphate
からD−fructoseを生成する後方への反応に対
するD−fructoseを生成する前方向への反応の
酵素活性の速度が酵素の精製の全過程を通してほとんど
一定して2.6であった。これはその2つの酵素反応が
1つの酵素タンパク質によって触媒作用を受けていると
いうことを示唆している。その前方向への反応において
は精製KHKの比活性は178units/mg pr
oteinと決定された。 KHKの分子量は60 、
000と評価され、KHKは30゜000の分子量をも
つ2つの同一サブユニットから構成されている。KHK
の等電点は焦点電気泳動によって4.5であると分かっ
た。微生物のKHKはその熱安定性によって特徴づけら
れる(第1図)。
れた。D−fructose−1−phosphate
からD−fructoseを生成する後方への反応に対
するD−fructoseを生成する前方向への反応の
酵素活性の速度が酵素の精製の全過程を通してほとんど
一定して2.6であった。これはその2つの酵素反応が
1つの酵素タンパク質によって触媒作用を受けていると
いうことを示唆している。その前方向への反応において
は精製KHKの比活性は178units/mg pr
oteinと決定された。 KHKの分子量は60 、
000と評価され、KHKは30゜000の分子量をも
つ2つの同一サブユニットから構成されている。KHK
の等電点は焦点電気泳動によって4.5であると分かっ
た。微生物のKHKはその熱安定性によって特徴づけら
れる(第1図)。
μg Protein/mQのレベルのような希釈酵素
液で実験した時でさえ70℃で30分間酵素液を加熱し
た後でKHKの失活はほとんど見られなかった。80℃
においては少なくとも15分間は安定であった。
液で実験した時でさえ70℃で30分間酵素液を加熱し
た後でKHKの失活はほとんど見られなかった。80℃
においては少なくとも15分間は安定であった。
第1図はNHKの熱安定性を示す図で、第2図はKHに
のpH安定性を示す図で、第3図は精製したにIIKの
ポリアクリルアミドゲル電気泳動と等電点電気泳動の結
果を示す図で、第4図はK)IKのプルーデキストラン
セファロースカラムの溶出曲線を示す図で。 第5図はKHKのセファデックスG−100ゲル濾過の
結果を示す図である。
のpH安定性を示す図で、第3図は精製したにIIKの
ポリアクリルアミドゲル電気泳動と等電点電気泳動の結
果を示す図で、第4図はK)IKのプルーデキストラン
セファロースカラムの溶出曲線を示す図で。 第5図はKHKのセファデックスG−100ゲル濾過の
結果を示す図である。
Claims (1)
- (1)フルクトース培地で生育する菌をフルクトース含
有培地でインキュベートすることを特徴とするケトヘキ
ソキナーゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21854288A JP2770030B2 (ja) | 1988-09-02 | 1988-09-02 | ケトヘキソキナーゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21854288A JP2770030B2 (ja) | 1988-09-02 | 1988-09-02 | ケトヘキソキナーゼの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0269182A true JPH0269182A (ja) | 1990-03-08 |
JP2770030B2 JP2770030B2 (ja) | 1998-06-25 |
Family
ID=16721562
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP21854288A Expired - Fee Related JP2770030B2 (ja) | 1988-09-02 | 1988-09-02 | ケトヘキソキナーゼの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2770030B2 (ja) |
-
1988
- 1988-09-02 JP JP21854288A patent/JP2770030B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2770030B2 (ja) | 1998-06-25 |
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