JPH0256633B2 - - Google Patents
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Description
本発明はその目的として人間及び動物における
或る種の生理学的または病理学的状態の診断の助
けとして血清、尿、脳脊髄液またはその類似物の
ような体液中の抗原の存在または不在を目的とし
て測定する直接粒子凝集試験に関する。 体液中の微生物抗原の検知は増加する多数伝染
病の急速な診断に役立ちうるものである。しかし
ながら主要な問題は広く利用しうる方法の感度が
充分でなく(免疫拡散、CIE)従つて感染した患
者の実際比率において抗原の存在を誤つて指示し
たり、あるいは急速な診断(RIA、ELISA)に
対し時間を多く消費しすぎることである。場合に
よつては、抗原−抗体複合体の形成が遅すぎ、か
つ(または)形成された粒子が確実性を以て観察
されるには小さすぎることがある。検知能は抗原
または抗体分子が吸着または拘束される表面上の
担体として粒子を使用する凝集試験の利用によつ
て改良されてきた。 かような凝集試験は臨床試料が特定の稀釈度に
抗体と混合され、適当な培養期間後、粒状担体に
結合された抗原複合体から成る指示システムを混
合物に添加する間接方法によつて達成できる。若
し抗原が臨床試料中に存在すれば、抗体は抗原−
担体複合体と反応するのに利用されず、凝集は起
らない。このように凝集の不在は抗原に対する陽
性試験である。これとは逆に、もし抗原が臨床試
料中に存在しなければ、抗体は抗原担体複合体と
反応し、指示試料の凝集を起すであろう。かよう
な凝集試験が作用する理論は米国特許第3171783
号;3775536号;3873683号;3879262号、4003988
号及び4045384号に例示したようにこの技術分野
ではよく知られている。 感染性疾患領域に対する唯一の真に意味深長な
診断方法は感染病毒を持つたものと組み合わされ
た抗原の初期の急速な検知であつて、かようにし
て有効な処置に対する即座の指示を与えうること
は長い間感じて来た処である。 本発明は抗原検知の直接凝集試験に関するもの
である。すなわち、本発明は臨床体液1mlにつ
き、0.2ng(ナノグラム)位の小さな抗原を日常
的に検知することができ、かつ均等な感度並びに
安定性が1mlにつき0.2ngの感度を有する被覆粒
子と同様に明示されることを特徴とする高感度の
直接粒子凝集試験と、かような被覆粒子の調製方
法を提供し、これに加えて人間の血清に関する不
明確な凝集の頻度を2%またはそれ以下に減少す
る方法が記載されている。 本発明によれば、体液内で低濃度にある細菌、
原生動物類、及び菌類を含む種々の微生物のたん
白質及び多糖類の如き抗原検知のための極めて感
度の高い凝集試験が今回開発された。本発明によ
る試験は病原性細菌と関係のあるカプセル状多糖
類1mlにつき0.2ng位の小さなものを日常検知す
ることが記載されている。これは広く使用されて
いる向流免疫電気泳動法(CIE)より25乃至250
倍大なる感度及び放射免疫分析(RIA)に少なく
とも等しい感度を示す。これに加えて、CIEは急
速であるが、それは訓練された研究室の人員と、
かなり高価な試薬と装置を要し、かつ大抵の細菌
性多糖類に対し1ml当り10乃至50ngの限定され
た感度を生ずる。体液中にはもつと低濃度の抗原
を生ずることが多いので、培養基で実証された細
菌性感染の患者には為陰性CIE試験が多く観察さ
れる。一方RIAはCIEより10乃至100倍も感度は
大きいが、さらに時間がかかり、かつ費用を要す
る。 本発明以前には、粒子凝集試験の広範な使用は
極めて簡単でかつ安価であつたが、かような試験
は低感度によつて小濃度の抗原及び特に血清供試
験品に関する不明確凝集(non−specific
agglutination)の発生によつて明らかになつた
明確性の不足に拘束されて来た。この後で説明す
るように、本発明の方法論を使用することにより
0.2ng/mlの桁の感度が達成され、人間の血清に
関する不明確凝集の頻度は2%またはそれ以下に
減少された。さらに明敏な選択と抗血清の調製は
均等な感度、良好な安定性及び明確性を特徴とす
る試験法に発展させた。なお、この明細書で『不
明確凝集(non−specific agglutination)』 それ故に、体液1mlにつき0.2ng位の低濃度の
体液内の微生物抗原を検知するための敏感な粒子
凝集試験を提供するのが本発明の目的である。 他の目的は2%またはそれ以下の人間血清との
不明確凝集の比率を特徴とする粒子凝集試験を提
供するに在る。 ポリリボホスフエート〔Polyibophosphate
(PRP)〕、ヘモフイルス インフルエンザ
(Haemophilus Inluenzae)型b(略称H・I.b)
のカプセル状多糖類の急速な検知のための改良さ
れた粒子凝集が本発明の特別な目的である。 制限された感度は微生物性抗原検知の以前に記
載された方法に関する主要な問題である。その結
果、細菌性抗原は文書に示された感染性をもつす
べての患者では検知できないことになる。例え
ば、多くの試験はH.I.b脳膜炎をもつ患者の7〜
22%;H.I.b会厭(軟骨)症の患者の38%;細菌
性肺炎球菌肺炎を持つ患者の20〜39%;そして非
細菌性肺炎球菌肺炎症をもつ50〜90%の患者が、
利用可能な向流免疫電気泳動または粒子凝集分析
によつて試験された時、血清または脳脊髄液中に
検知しうる抗原を持つことに失敗していることを
明らかにした。しかしながら、0.5ng/mlまたは
それ以下を検知できる放射免疫分析は最初にそれ
らを医師に提出すれば実際にH.I.b.のすべての場
合脳膜炎と診断できるであろう。試験の結果はま
た患者の37%の抗原濃度が10ng/ml以下であ
り、それ故多くの利用しうる向流免疫電気泳動技
術の感度以下であることを示す。 本発明によれば、放射免疫分析に比較しうる感
度を有する粒子凝集分析が今回開発されたのであ
る。本発明の分析によつて達成された高感度は以
前から知られた粒子凝集分析の変形、すなわち明
確なH.I.b.抗血清の選択、抗血清のグロブリン
(水不溶たん白群)留分の使用、感知された粒子
の洗浄、及び粒子凝集分析の培養時間を通常の5
分から約45分またはそれより長くしたことに由来
する。 a 感度 抗血清の選択は分析の感度に著るしく影響す
る。動物の3つの種で調製した6つの抗血清は
1mlにつき0.2ナノグラム乃至1000ナノグラム
以上の範囲内のPRP感度をもつ粒子を生ずる。
明確な抗体の官能性並びにその濃度が重要であ
る。最高感度の粒子を生じる抗血清は放射抗原
結合分析により測定されるように最高濃度の抗
体を持たない。 全ヘモフイリス インフルエンザ型bに対す
る6つの抗血清は、ジヤーナル オブ、インミ
ユノロジイ(Journal of Inmmunology)54:
207〜211、1946年のH.E.アレキサンダーその
他により記載さされた免疫計画によれば4匹の
兎、ろば及び馬とで調製された。 本発明に関して使用した「粒子」なる用語は
不活性で他の成分に対し中性であり、かつ不可
逆的な方法で抗血清を吸着しうる粒子を意味す
る。かような粒子は平均粒子の大きさ約0.15乃
至約0.9ミクロンを有するガラス小球、ポリブ
タジエン、ポリスチレン、ポリブタジエン−ス
チレンなどがよい。蒸留水中の10%重量/容積
懸濁液として約0.81μの均一直径を有するポリ
スチレンラテツクス粒子を次のようにして前記
抗血清で増感するのが望ましい。 ろば及び兎の全抗血清は各々1/500に、そし
て馬の全抗血清は1/200に標準グリシン緩衝食
塩水(0.1Mグリシン、0.9%塩化ナトリウム、
PH8.2)中に稀釈された。抗体は1部の10%ラ
テツクス懸濁液を80部の稀釈された抗血清に添
加してラテツクス粒子上に吸着させ、室温で1
時間培養した。遊離抗血清は12000Gで10分間
遠心分離した後、傾潟した。この場合0.125%
のラテツクス懸濁液をつくるためであるから、
ラテツクス ペレツトは少量のたん白質、すな
わち0.1%の人間血清アルブミン、または0.1%
のろば、兎または馬の血清を用いグリシン緩衝
食塩水中に懸濁し、再遠心分離を行い、グリシ
ン緩衝食塩水中に再懸濁させた。放射免疫分析
により抗−PRP抗体を持たないことが示され
た子牛胎児の血清をPRP抗原標準溶液の稀釈
剤として使用した。 凝集はセラミツクの環を備えた血清学的スラ
イド上で抗原を含む液体の0.05ml分割部分を
0.01mlの増感したラテツクス溶液に添加して行
われた。スライドを環境温度にある加湿した室
温で回転し(毎分180回)、45分後に凝集を試験
した。凝集は凝集混合物が透明でラテツクス粒
子の粗い塊が認められた時4+に、混合物が濁つ
ままであるが、粗い塊が認められた時3+に、混
合物が濁つたままであるが、粒状が容易に認め
られた時2+に、そして混合物が濁つたままであ
るが最小の粒子が認められた時1+に等級づけら
れた。2+またはそれより大なる凝集は陽性とし
た。比較感度を表−1に示す。
或る種の生理学的または病理学的状態の診断の助
けとして血清、尿、脳脊髄液またはその類似物の
ような体液中の抗原の存在または不在を目的とし
て測定する直接粒子凝集試験に関する。 体液中の微生物抗原の検知は増加する多数伝染
病の急速な診断に役立ちうるものである。しかし
ながら主要な問題は広く利用しうる方法の感度が
充分でなく(免疫拡散、CIE)従つて感染した患
者の実際比率において抗原の存在を誤つて指示し
たり、あるいは急速な診断(RIA、ELISA)に
対し時間を多く消費しすぎることである。場合に
よつては、抗原−抗体複合体の形成が遅すぎ、か
つ(または)形成された粒子が確実性を以て観察
されるには小さすぎることがある。検知能は抗原
または抗体分子が吸着または拘束される表面上の
担体として粒子を使用する凝集試験の利用によつ
て改良されてきた。 かような凝集試験は臨床試料が特定の稀釈度に
抗体と混合され、適当な培養期間後、粒状担体に
結合された抗原複合体から成る指示システムを混
合物に添加する間接方法によつて達成できる。若
し抗原が臨床試料中に存在すれば、抗体は抗原−
担体複合体と反応するのに利用されず、凝集は起
らない。このように凝集の不在は抗原に対する陽
性試験である。これとは逆に、もし抗原が臨床試
料中に存在しなければ、抗体は抗原担体複合体と
反応し、指示試料の凝集を起すであろう。かよう
な凝集試験が作用する理論は米国特許第3171783
号;3775536号;3873683号;3879262号、4003988
号及び4045384号に例示したようにこの技術分野
ではよく知られている。 感染性疾患領域に対する唯一の真に意味深長な
診断方法は感染病毒を持つたものと組み合わされ
た抗原の初期の急速な検知であつて、かようにし
て有効な処置に対する即座の指示を与えうること
は長い間感じて来た処である。 本発明は抗原検知の直接凝集試験に関するもの
である。すなわち、本発明は臨床体液1mlにつ
き、0.2ng(ナノグラム)位の小さな抗原を日常
的に検知することができ、かつ均等な感度並びに
安定性が1mlにつき0.2ngの感度を有する被覆粒
子と同様に明示されることを特徴とする高感度の
直接粒子凝集試験と、かような被覆粒子の調製方
法を提供し、これに加えて人間の血清に関する不
明確な凝集の頻度を2%またはそれ以下に減少す
る方法が記載されている。 本発明によれば、体液内で低濃度にある細菌、
原生動物類、及び菌類を含む種々の微生物のたん
白質及び多糖類の如き抗原検知のための極めて感
度の高い凝集試験が今回開発された。本発明によ
る試験は病原性細菌と関係のあるカプセル状多糖
類1mlにつき0.2ng位の小さなものを日常検知す
ることが記載されている。これは広く使用されて
いる向流免疫電気泳動法(CIE)より25乃至250
倍大なる感度及び放射免疫分析(RIA)に少なく
とも等しい感度を示す。これに加えて、CIEは急
速であるが、それは訓練された研究室の人員と、
かなり高価な試薬と装置を要し、かつ大抵の細菌
性多糖類に対し1ml当り10乃至50ngの限定され
た感度を生ずる。体液中にはもつと低濃度の抗原
を生ずることが多いので、培養基で実証された細
菌性感染の患者には為陰性CIE試験が多く観察さ
れる。一方RIAはCIEより10乃至100倍も感度は
大きいが、さらに時間がかかり、かつ費用を要す
る。 本発明以前には、粒子凝集試験の広範な使用は
極めて簡単でかつ安価であつたが、かような試験
は低感度によつて小濃度の抗原及び特に血清供試
験品に関する不明確凝集(non−specific
agglutination)の発生によつて明らかになつた
明確性の不足に拘束されて来た。この後で説明す
るように、本発明の方法論を使用することにより
0.2ng/mlの桁の感度が達成され、人間の血清に
関する不明確凝集の頻度は2%またはそれ以下に
減少された。さらに明敏な選択と抗血清の調製は
均等な感度、良好な安定性及び明確性を特徴とす
る試験法に発展させた。なお、この明細書で『不
明確凝集(non−specific agglutination)』 それ故に、体液1mlにつき0.2ng位の低濃度の
体液内の微生物抗原を検知するための敏感な粒子
凝集試験を提供するのが本発明の目的である。 他の目的は2%またはそれ以下の人間血清との
不明確凝集の比率を特徴とする粒子凝集試験を提
供するに在る。 ポリリボホスフエート〔Polyibophosphate
(PRP)〕、ヘモフイルス インフルエンザ
(Haemophilus Inluenzae)型b(略称H・I.b)
のカプセル状多糖類の急速な検知のための改良さ
れた粒子凝集が本発明の特別な目的である。 制限された感度は微生物性抗原検知の以前に記
載された方法に関する主要な問題である。その結
果、細菌性抗原は文書に示された感染性をもつす
べての患者では検知できないことになる。例え
ば、多くの試験はH.I.b脳膜炎をもつ患者の7〜
22%;H.I.b会厭(軟骨)症の患者の38%;細菌
性肺炎球菌肺炎を持つ患者の20〜39%;そして非
細菌性肺炎球菌肺炎症をもつ50〜90%の患者が、
利用可能な向流免疫電気泳動または粒子凝集分析
によつて試験された時、血清または脳脊髄液中に
検知しうる抗原を持つことに失敗していることを
明らかにした。しかしながら、0.5ng/mlまたは
それ以下を検知できる放射免疫分析は最初にそれ
らを医師に提出すれば実際にH.I.b.のすべての場
合脳膜炎と診断できるであろう。試験の結果はま
た患者の37%の抗原濃度が10ng/ml以下であ
り、それ故多くの利用しうる向流免疫電気泳動技
術の感度以下であることを示す。 本発明によれば、放射免疫分析に比較しうる感
度を有する粒子凝集分析が今回開発されたのであ
る。本発明の分析によつて達成された高感度は以
前から知られた粒子凝集分析の変形、すなわち明
確なH.I.b.抗血清の選択、抗血清のグロブリン
(水不溶たん白群)留分の使用、感知された粒子
の洗浄、及び粒子凝集分析の培養時間を通常の5
分から約45分またはそれより長くしたことに由来
する。 a 感度 抗血清の選択は分析の感度に著るしく影響す
る。動物の3つの種で調製した6つの抗血清は
1mlにつき0.2ナノグラム乃至1000ナノグラム
以上の範囲内のPRP感度をもつ粒子を生ずる。
明確な抗体の官能性並びにその濃度が重要であ
る。最高感度の粒子を生じる抗血清は放射抗原
結合分析により測定されるように最高濃度の抗
体を持たない。 全ヘモフイリス インフルエンザ型bに対す
る6つの抗血清は、ジヤーナル オブ、インミ
ユノロジイ(Journal of Inmmunology)54:
207〜211、1946年のH.E.アレキサンダーその
他により記載さされた免疫計画によれば4匹の
兎、ろば及び馬とで調製された。 本発明に関して使用した「粒子」なる用語は
不活性で他の成分に対し中性であり、かつ不可
逆的な方法で抗血清を吸着しうる粒子を意味す
る。かような粒子は平均粒子の大きさ約0.15乃
至約0.9ミクロンを有するガラス小球、ポリブ
タジエン、ポリスチレン、ポリブタジエン−ス
チレンなどがよい。蒸留水中の10%重量/容積
懸濁液として約0.81μの均一直径を有するポリ
スチレンラテツクス粒子を次のようにして前記
抗血清で増感するのが望ましい。 ろば及び兎の全抗血清は各々1/500に、そし
て馬の全抗血清は1/200に標準グリシン緩衝食
塩水(0.1Mグリシン、0.9%塩化ナトリウム、
PH8.2)中に稀釈された。抗体は1部の10%ラ
テツクス懸濁液を80部の稀釈された抗血清に添
加してラテツクス粒子上に吸着させ、室温で1
時間培養した。遊離抗血清は12000Gで10分間
遠心分離した後、傾潟した。この場合0.125%
のラテツクス懸濁液をつくるためであるから、
ラテツクス ペレツトは少量のたん白質、すな
わち0.1%の人間血清アルブミン、または0.1%
のろば、兎または馬の血清を用いグリシン緩衝
食塩水中に懸濁し、再遠心分離を行い、グリシ
ン緩衝食塩水中に再懸濁させた。放射免疫分析
により抗−PRP抗体を持たないことが示され
た子牛胎児の血清をPRP抗原標準溶液の稀釈
剤として使用した。 凝集はセラミツクの環を備えた血清学的スラ
イド上で抗原を含む液体の0.05ml分割部分を
0.01mlの増感したラテツクス溶液に添加して行
われた。スライドを環境温度にある加湿した室
温で回転し(毎分180回)、45分後に凝集を試験
した。凝集は凝集混合物が透明でラテツクス粒
子の粗い塊が認められた時4+に、混合物が濁つ
ままであるが、粗い塊が認められた時3+に、混
合物が濁つたままであるが、粒状が容易に認め
られた時2+に、そして混合物が濁つたままであ
るが最小の粒子が認められた時1+に等級づけら
れた。2+またはそれより大なる凝集は陽性とし
た。比較感度を表−1に示す。
【表】
表−1は明らかにラテツクス粒子を増感する
に用いられる抗血清の品質がPRP抗原検知の
ためのラテツクス粒子凝集の感度にとつて限界
であることを例示している。表−1に説明され
た結果をみるに、感度を単に放射抗原結合分析
によつて測定したような抗血清中のPRP濃度
を基にして予言できないことは極めて明白であ
る。最上の兎抗血清と同じ位の抗体を僅か12%
含有するろばの孔血清は5倍以上の感度のラテ
ツクス粒子調製物を生じた。この感度の相違
は、兎の抗血清で被覆されたラテツクス粒子が
2.3倍以上の吸着抗体を有していたので、ろば
抗体をそれ以上有効に被覆しているラテツクス
粒子によつて説明することができなかつた。
PRPで被覆された羊の赤い血液細胞に対する
ろば及び免抗血清の凝集活性は免抗血清中の
PRP結合活性が遥かに高い濃度にも拘らず活
性は等しかつた。 結合比率は測定ろば抗体が兎抗体の結合する
よりも遥かに急速にPRP抗原と結合すること
を示している。結合半−寿命はろば抗体に対し
20分であり、兎抗体に対する60分よりも多い。
この結合比率相違の理由は明らかでない。 過剰抗体の存在下での抗原−抗体複合体の解
離比率は抗体の結合または親和力の堅さのもの
さしとなるものである。兎の抗体はろばの抗体
が解離するよりもさらにゆるやかにポリリボー
スーホスフエートから理解し、従つて抗原への
より大きな親和力を有するわけである。この結
果は、抗原と抗体との結合比率が抗原−抗体相
互作用の力よりも凝集過程においてさらに著る
しいとの仮説に支持を与えるものである。 b LPを被覆するマクログロブリン留分の使用 細菌性多糖類に対する種々の動物抗血清の分
子篩クロマトグラフイーは馬のような動物(ろ
ば、馬)における抗−多糖類抗体の大多数がこ
のカラムの空虚な容積内に溶離するマクログロ
ブリン級のものに見出される。これに反して兎
抗体の大多数はもつと徐々に溶離する1gG級
の中に見出される。表−2に示されるように、
ラテツクス粒子を増感するには濃度50μg/ml
のろばまたは馬の抗血清マクログロブリン留分
の使用が比較的弱い馬のような抗血清の感度を
著るしく改良する。凝集反応の透明性は一般に
空虚な容積留分については良好であるが、最上
の抗血清の感度はこの変形によつてさらに改良
されてはいない。兎血清の1gG留分の使用は
凝集の感度または透明性に匹敵できる改良を生
じない。
に用いられる抗血清の品質がPRP抗原検知の
ためのラテツクス粒子凝集の感度にとつて限界
であることを例示している。表−1に説明され
た結果をみるに、感度を単に放射抗原結合分析
によつて測定したような抗血清中のPRP濃度
を基にして予言できないことは極めて明白であ
る。最上の兎抗血清と同じ位の抗体を僅か12%
含有するろばの孔血清は5倍以上の感度のラテ
ツクス粒子調製物を生じた。この感度の相違
は、兎の抗血清で被覆されたラテツクス粒子が
2.3倍以上の吸着抗体を有していたので、ろば
抗体をそれ以上有効に被覆しているラテツクス
粒子によつて説明することができなかつた。
PRPで被覆された羊の赤い血液細胞に対する
ろば及び免抗血清の凝集活性は免抗血清中の
PRP結合活性が遥かに高い濃度にも拘らず活
性は等しかつた。 結合比率は測定ろば抗体が兎抗体の結合する
よりも遥かに急速にPRP抗原と結合すること
を示している。結合半−寿命はろば抗体に対し
20分であり、兎抗体に対する60分よりも多い。
この結合比率相違の理由は明らかでない。 過剰抗体の存在下での抗原−抗体複合体の解
離比率は抗体の結合または親和力の堅さのもの
さしとなるものである。兎の抗体はろばの抗体
が解離するよりもさらにゆるやかにポリリボー
スーホスフエートから理解し、従つて抗原への
より大きな親和力を有するわけである。この結
果は、抗原と抗体との結合比率が抗原−抗体相
互作用の力よりも凝集過程においてさらに著る
しいとの仮説に支持を与えるものである。 b LPを被覆するマクログロブリン留分の使用 細菌性多糖類に対する種々の動物抗血清の分
子篩クロマトグラフイーは馬のような動物(ろ
ば、馬)における抗−多糖類抗体の大多数がこ
のカラムの空虚な容積内に溶離するマクログロ
ブリン級のものに見出される。これに反して兎
抗体の大多数はもつと徐々に溶離する1gG級
の中に見出される。表−2に示されるように、
ラテツクス粒子を増感するには濃度50μg/ml
のろばまたは馬の抗血清マクログロブリン留分
の使用が比較的弱い馬のような抗血清の感度を
著るしく改良する。凝集反応の透明性は一般に
空虚な容積留分については良好であるが、最上
の抗血清の感度はこの変形によつてさらに改良
されてはいない。兎血清の1gG留分の使用は
凝集の感度または透明性に匹敵できる改良を生
じない。
【表】
【表】
最低濃度を示す。
c 被覆LPの洗浄 ろば抗血清の感度をさらに改良する目的でグ
リシン緩衝食塩水中の種々のろば抗血清稀釈液
を被覆した抗体被覆ラテツクス粒子を、未洗浄
及び1回、2回、及び3回1/1000部の子牛胎児
の血清を含有するグリシン緩衝食塩水で洗浄し
たものと比較してその結果を表−3に示した。
c 被覆LPの洗浄 ろば抗血清の感度をさらに改良する目的でグ
リシン緩衝食塩水中の種々のろば抗血清稀釈液
を被覆した抗体被覆ラテツクス粒子を、未洗浄
及び1回、2回、及び3回1/1000部の子牛胎児
の血清を含有するグリシン緩衝食塩水で洗浄し
たものと比較してその結果を表−3に示した。
【表】
表3に報告された結果から判るように、抗血
清の低濃度稀釈は感度を下げる。1/500に稀釈
すると、より大きな最大の感度はラテツクス粒
子を洗浄した場合に達成される。未洗浄ラテツ
クス粒子は狭い範囲の稀釈についてのみ最高の
感度に到達した。2回の洗浄は最高感度を生じ
たが、これに反し3回洗浄は感度を減少させる
結果となつた。 洗浄実験からの増感されたラテツクス粒子は
40℃に貯蔵され、12ケ月及び24ケ月後に再試験
した。ろば抗血清を1/500及び1/1000に稀釈し
て増感し、2回洗浄したラテツクス粒子はそれ
らの元の感度を保持したが、これに反し未洗浄
ラテツクス粒子は24ケ月後に1/2乃至1/4に感度
を減少した。 d 培養期間の持続 添付図面の第1図は培養期間と分析感度の関
係を示す。高濃度の抗原はラテツクス粒子を5
分以内に凝集させた。感度は最初の45分乃至60
分の間に急速に増加し、その後最高0.05ng/
mlに達するが最高感度の見本は10時間で得られ
る。本発明の馬のような血清はすべての培養期
間において兎の血清よりも敏感であつた。この
後に記載するように、試料溶液50ミクロリツト
ルと、被覆ラテツクス粒子10ミクロリツトルと
の比較研究を実施するに当つて、血清学のスラ
イド上で混合し、毎分180回転で室温において
回転した。このスライドを掩い、熱水で飽和し
たスポンジを以て湿度を保持した。スライドは
示された時間に検査した。 培養時間を5分から45分またはそれ以上に長
くすることは感度を10〜20倍に増加させた。実
際的な臨床目的には、馬のような抗血清で被覆
したラテツクス粒子を用いる時には普通5〜15
分間隔で読みとる45分の培養時間が選ばれる。
かようなラテツクス粒子は液1mlにつき0.2ng
の抗原感度を有していた。 粒子凝集分析の感度を増加することは不明確
な凝集の影響をも増すことが予期され、実際に
血清見本の場合に入院加療させた子供達からの
血清の69%はこれらラテツクス粒子を凝集し
た。この主要な欠点は前もつてこの分析法の広
範な使用を制限した。ガンマ グロブリンで被
覆されたラテツクス粒子の凝集に含まれる因子
は熱に不安定な血清成分(多分補充物)と、熱
に安定な抗−グロブリンと、特に慢性の炎症性
疾患を持つ患者からの人間の血清内に通常見出
される低基準のものとである。 不明確な凝集は全非免疫動物血清で増感され
た対照ラテツクス粒子の凝集によつて確認され
た。マクログロブリンで被覆されたラテツクス
粒子を使用する時、対照ラテツクス粒子は非免
疫血清のマクログロブリン留分で被覆される。 本発明によれば、人間血清との不明確な凝集の
頻度は次の(i)、(ii)及び(iii)により2%またはそれ以
下に減少された。 (i) 非免疫動物血清の増感されたラテツクス粒子
への添加 (i) ポリアニオンおよび(または)還元剤を含有
する血清緩衝液を直接培養混合物に添加するこ
とにより、および(または) (iii) 血清の熱不活性化。 不明確な凝集の影響は病院加療を要する小児科
及び大人の患者でH.I.b.疾患を持たないものから
集められた血清を用いて測定された。すべての血
清はろばの抗血清(抗−PRP LP)で増感された
ラテツクス粒子及び非免疫ろば血清(対照LP)
で増感されたラテツクス粒子を用いて試験され
た。 予備実験において、熱に安定な凝集剤を含む血
清は培養の開始時に培養混合物に添加された1,
4−ジチオスレイトール(DTT)または2−メ
ルカポエタノール(ME)のような還元剤10ミク
ロリツトルの添加によつて試験された。最適濃度
はDTTに対し0.018M、そしてMEに対し0.35M
であつた。(培養混合物中の最終濃度はDTTに対
して0.0026M、そしてMEに対しては0.05Mであ
つた) 次に表−4は試験前4℃において少なくとも24
時間貯蔵された104の小児科血清で得た結果を総
括したものである。
清の低濃度稀釈は感度を下げる。1/500に稀釈
すると、より大きな最大の感度はラテツクス粒
子を洗浄した場合に達成される。未洗浄ラテツ
クス粒子は狭い範囲の稀釈についてのみ最高の
感度に到達した。2回の洗浄は最高感度を生じ
たが、これに反し3回洗浄は感度を減少させる
結果となつた。 洗浄実験からの増感されたラテツクス粒子は
40℃に貯蔵され、12ケ月及び24ケ月後に再試験
した。ろば抗血清を1/500及び1/1000に稀釈し
て増感し、2回洗浄したラテツクス粒子はそれ
らの元の感度を保持したが、これに反し未洗浄
ラテツクス粒子は24ケ月後に1/2乃至1/4に感度
を減少した。 d 培養期間の持続 添付図面の第1図は培養期間と分析感度の関
係を示す。高濃度の抗原はラテツクス粒子を5
分以内に凝集させた。感度は最初の45分乃至60
分の間に急速に増加し、その後最高0.05ng/
mlに達するが最高感度の見本は10時間で得られ
る。本発明の馬のような血清はすべての培養期
間において兎の血清よりも敏感であつた。この
後に記載するように、試料溶液50ミクロリツト
ルと、被覆ラテツクス粒子10ミクロリツトルと
の比較研究を実施するに当つて、血清学のスラ
イド上で混合し、毎分180回転で室温において
回転した。このスライドを掩い、熱水で飽和し
たスポンジを以て湿度を保持した。スライドは
示された時間に検査した。 培養時間を5分から45分またはそれ以上に長
くすることは感度を10〜20倍に増加させた。実
際的な臨床目的には、馬のような抗血清で被覆
したラテツクス粒子を用いる時には普通5〜15
分間隔で読みとる45分の培養時間が選ばれる。
かようなラテツクス粒子は液1mlにつき0.2ng
の抗原感度を有していた。 粒子凝集分析の感度を増加することは不明確
な凝集の影響をも増すことが予期され、実際に
血清見本の場合に入院加療させた子供達からの
血清の69%はこれらラテツクス粒子を凝集し
た。この主要な欠点は前もつてこの分析法の広
範な使用を制限した。ガンマ グロブリンで被
覆されたラテツクス粒子の凝集に含まれる因子
は熱に不安定な血清成分(多分補充物)と、熱
に安定な抗−グロブリンと、特に慢性の炎症性
疾患を持つ患者からの人間の血清内に通常見出
される低基準のものとである。 不明確な凝集は全非免疫動物血清で増感され
た対照ラテツクス粒子の凝集によつて確認され
た。マクログロブリンで被覆されたラテツクス
粒子を使用する時、対照ラテツクス粒子は非免
疫血清のマクログロブリン留分で被覆される。 本発明によれば、人間血清との不明確な凝集の
頻度は次の(i)、(ii)及び(iii)により2%またはそれ以
下に減少された。 (i) 非免疫動物血清の増感されたラテツクス粒子
への添加 (i) ポリアニオンおよび(または)還元剤を含有
する血清緩衝液を直接培養混合物に添加するこ
とにより、および(または) (iii) 血清の熱不活性化。 不明確な凝集の影響は病院加療を要する小児科
及び大人の患者でH.I.b.疾患を持たないものから
集められた血清を用いて測定された。すべての血
清はろばの抗血清(抗−PRP LP)で増感された
ラテツクス粒子及び非免疫ろば血清(対照LP)
で増感されたラテツクス粒子を用いて試験され
た。 予備実験において、熱に安定な凝集剤を含む血
清は培養の開始時に培養混合物に添加された1,
4−ジチオスレイトール(DTT)または2−メ
ルカポエタノール(ME)のような還元剤10ミク
ロリツトルの添加によつて試験された。最適濃度
はDTTに対し0.018M、そしてMEに対し0.35M
であつた。(培養混合物中の最終濃度はDTTに対
して0.0026M、そしてMEに対しては0.05Mであ
つた) 次に表−4は試験前4℃において少なくとも24
時間貯蔵された104の小児科血清で得た結果を総
括したものである。
【表】
血清の69%が抗−PRPとの不明確な凝集を生
じ、4%を除くすべてが対照LPによつて確認さ
れた。 熱不活性化(60℃15分間)が不明確凝集をほん
の僅か53%に減少した。そして非免疫ろば血清の
抗−PRP及び対照LP両者への添加が不明確凝集
を31%に減少した。そして10ミクロリツトルの還
元剤;すなわちジチオスレイトールの添加が不明
確反応の影響を2%に下げた。52の貯蔵した大人
の血清について得た結果も同様であつた。2.5の
通常のろば血清をラテツクス粒子に添加し、
DTTを培養混合物に添加した時に、僅か1つの
血清が不明確凝集(抗−PRP LP及び対照LPに
は陽性)を生じた。 新鮮な血清がより高い比率の不明確凝集を生ず
るか否かを測定するために、大人からの100血清
を集め、直ちに氷上に置いて同日に分析した。各
血清は還元剤(ME)を用いた場合及び用いない
場合、そして熱不活性化(60℃5分間)を用いた
場合及び用いない場合について試験した。凝集は
抗−PRP LP及び対照LPが各々2.5%の通常ろば
血清を含む場合について試験し、すべての場合に
対応させた。凝集見本は次の表−5に総括して示
した。
じ、4%を除くすべてが対照LPによつて確認さ
れた。 熱不活性化(60℃15分間)が不明確凝集をほん
の僅か53%に減少した。そして非免疫ろば血清の
抗−PRP及び対照LP両者への添加が不明確凝集
を31%に減少した。そして10ミクロリツトルの還
元剤;すなわちジチオスレイトールの添加が不明
確反応の影響を2%に下げた。52の貯蔵した大人
の血清について得た結果も同様であつた。2.5の
通常のろば血清をラテツクス粒子に添加し、
DTTを培養混合物に添加した時に、僅か1つの
血清が不明確凝集(抗−PRP LP及び対照LPに
は陽性)を生じた。 新鮮な血清がより高い比率の不明確凝集を生ず
るか否かを測定するために、大人からの100血清
を集め、直ちに氷上に置いて同日に分析した。各
血清は還元剤(ME)を用いた場合及び用いない
場合、そして熱不活性化(60℃5分間)を用いた
場合及び用いない場合について試験した。凝集は
抗−PRP LP及び対照LPが各々2.5%の通常ろば
血清を含む場合について試験し、すべての場合に
対応させた。凝集見本は次の表−5に総括して示
した。
【表】
未処理血清(熱活性化なし、還元剤なし)の42
%は不明確凝集を生じた。還元剤(ME)を添加
する場合血清の28は陰性(供試試料2)となり抗
グロブリンの存在を示した。初め陰性であつた14
血清は陽性(供試試料4)となり、熱不安定凝集
がメルカプトエタノールにより再活性化されたこ
とを示す。ME単独の正味の効果は不明確凝集を
38%に減少することであつた。同様な不明確凝集
の比率は熱不活性化のみで達成される。しかしな
がら、血清の熱不活性化及び還元剤の培養混合物
への添加の組合せは不明確凝集の影響を2%また
はそれ以下の桁に減少した。 熱不活性化が時間を浪費するため、熱に不安定
な血清因子による不明確凝集を除去する別の方法
が開発された。ナトリウムポリアンエトート ス
ルホネート(SPS)、デキストラン サルフエー
ト、キヤラゲニン及びヘパリンを含む多数のポリ
アニオンは熱不安定な血清因子によりグロブリン
で被覆されたラテツクス粒子の不明確凝集を防止
する。 大人からの100の新鮮な血清は濃度0.05%にお
けるME(上記のような)と、SPSの両者を含む
血清緩衝剤を用い試験した。100の血清の僅か1
つが抗−PRP及び対照LPによる不明確凝集を生
じた。この血清を用いた不明確凝集は加熱により
除去された。 還元剤及びポリアニオンの両者を含む血清緩衝
液を安定化増感ラテツクス粒子及び血清供試試料
の培養混合物に添加することが望ましい。 かような血清緩衝液は次のようにして調製す
る。 14モルの2−メルカプトエタノール(標準の濃
厚溶液)をグリシンの緩衝食塩水(GBS)(0.1M
グリシン、0.9%塩化ナトリウム、PH8.2)中で1/
40に稀釈した。ポリアンエトール、スルホネート
5%水溶液を同じGBS中で1/100に稀釈した。 血清緩衝液は2−メルカプトエタノールの代り
にジチオスレイトール、グルタチオン、システイ
ン及びその類似物の如き他の還元剤を含んでもよ
い。これに加えて、デキストラン サルフエー
ト、ヘパリン及びキヤラゲニン及びその類似物の
ような他のポリアニオンも、それらが抗原−抗体
反応を妨害しない限り使用してもよい。 次の表−6は血清緩衝液中の試薬の最適濃度を
示す。還元剤またはポリアニオンの濃度を高くす
ると分析感度を減少させ、これより低い濃度はす
べての血清において不明確凝集を除去するのに失
敗した。
%は不明確凝集を生じた。還元剤(ME)を添加
する場合血清の28は陰性(供試試料2)となり抗
グロブリンの存在を示した。初め陰性であつた14
血清は陽性(供試試料4)となり、熱不安定凝集
がメルカプトエタノールにより再活性化されたこ
とを示す。ME単独の正味の効果は不明確凝集を
38%に減少することであつた。同様な不明確凝集
の比率は熱不活性化のみで達成される。しかしな
がら、血清の熱不活性化及び還元剤の培養混合物
への添加の組合せは不明確凝集の影響を2%また
はそれ以下の桁に減少した。 熱不活性化が時間を浪費するため、熱に不安定
な血清因子による不明確凝集を除去する別の方法
が開発された。ナトリウムポリアンエトート ス
ルホネート(SPS)、デキストラン サルフエー
ト、キヤラゲニン及びヘパリンを含む多数のポリ
アニオンは熱不安定な血清因子によりグロブリン
で被覆されたラテツクス粒子の不明確凝集を防止
する。 大人からの100の新鮮な血清は濃度0.05%にお
けるME(上記のような)と、SPSの両者を含む
血清緩衝剤を用い試験した。100の血清の僅か1
つが抗−PRP及び対照LPによる不明確凝集を生
じた。この血清を用いた不明確凝集は加熱により
除去された。 還元剤及びポリアニオンの両者を含む血清緩衝
液を安定化増感ラテツクス粒子及び血清供試試料
の培養混合物に添加することが望ましい。 かような血清緩衝液は次のようにして調製す
る。 14モルの2−メルカプトエタノール(標準の濃
厚溶液)をグリシンの緩衝食塩水(GBS)(0.1M
グリシン、0.9%塩化ナトリウム、PH8.2)中で1/
40に稀釈した。ポリアンエトール、スルホネート
5%水溶液を同じGBS中で1/100に稀釈した。 血清緩衝液は2−メルカプトエタノールの代り
にジチオスレイトール、グルタチオン、システイ
ン及びその類似物の如き他の還元剤を含んでもよ
い。これに加えて、デキストラン サルフエー
ト、ヘパリン及びキヤラゲニン及びその類似物の
ような他のポリアニオンも、それらが抗原−抗体
反応を妨害しない限り使用してもよい。 次の表−6は血清緩衝液中の試薬の最適濃度を
示す。還元剤またはポリアニオンの濃度を高くす
ると分析感度を減少させ、これより低い濃度はす
べての血清において不明確凝集を除去するのに失
敗した。
【表】
上に記載した血清緩衝液を使用する試験システ
ムにおいて、ラテツクス懸濁液中の非免疫動物血
清の有効濃度を再試験してみた。 粒子懸濁液中0.25%以下の非−免疫動物血清濃
度(最終分析混合物中0.035%以下)は血清緩衝
液を使用したにも拘らず時々不明確凝集を生じ
た。 ラテツクス懸濁液中約25%までの非免疫動物血
清濃度(最終分析混合物中3.5%)は不明確凝集
の影響を減少するのに有効であるが、最高濃度す
なわち25%はポリリボホスフエートに対する分析
の感度を1/2に減少した。 他の体液における不明確凝集 多くの尿供試試料は抗−PRP及び対照LPに関
し不明確凝集を生ずる。これは尿を加熱(100℃
5分間)するか、または過することによつて除
去することができる。好ましい態様では0.45ミク
ロンのフイルターが使用される。 脳脊髄液供試試料は極めて稀れに不明確凝集を
生ずるが、これは加熱(100℃5分間)により除
去される。PRP抗原は上の加熱及び過操作に
安定である。 次の特別な例は本発明の好ましい態様を例示し
たものである。 a ラテツクス粒子の被覆 抗−PRPラテツクス粒子を調製するため
H・インフルエンザ型bの全ろば抗血清をグリ
シン緩衝食塩水(GBS)中で1/500に稀釈し、
56℃で30分間加熱した。1部のラテツクス懸濁
液(蒸留水中の直径0.81μ粒子の10%懸濁液)
を80部の稀釈した抗血清に添加し、最終ラテツ
クス粒子濃度を0.125%とした。混合物を室温
で1時間培養し、12000Gで10分間遠心分離し、
上澄液を棄てた。ペレツトを0.1%の非−免疫
ろば血清を含有する等容量のGBS中に再懸濁
し、上のように再遠心分離した後、2.5%非免
疫ろば血清を含む等容量のGBS中に再懸濁し
た。GBS中で1/500に稀釈した非免疫ろば血清
を初めにラテツクス粒子の被覆に使用した以外
は上記と同じように対照ラテツクス粒子を調製
した。全体を通じ使用した非免疫ろば血清は免
疫された同一動物から免疫する以前に血清を採
取すべきである。 マクログロブリン留分を使用する場合には、
予め免疫したもの及び免疫ろば血清の全部をセ
フアクリルG−200ゲル過コラム上のクロマ
トグラフイーにかけ、コラムの空虚な容量に溶
離する留分を貯蔵する。この貯蔵した空虚な容
量留分GBS中1ミリリツトルにつき50μgのた
ん白のたん白濃度に稀釈し、次に前に述べた方
法中の稀釈全血清と代替した。 b 血清緩衝液の調製 14モルの2−メルカプトエタノール(標準濃
厚溶液)をGBS中で1/40に稀釈した。ナトリ
ウムポリアンエトール サルホネートを最終濃
度0.05%になるように添加した。 c 分析操作 分析操作は本発明に従い次のように実施し
た。 次の図式につき清浄な乾燥した血清学のスラ
イドの2つの溜めの各々に陽性対照血清、陰性
対照血清及び試験さるべ脳脊髄液及び尿供試試
料50ミクロリツトルを添加する。陽性対照血清
は2ngPRP抗原/mlを含有する。陰性対照血
清はもしSBが添加されなければ、抗−PRP
LP及び対照LPの両方を凝集する抗−グロブリ
ンを含有し、かくしてSBの活性の検査を与え
る。尿の供試試料は0.45ミクロンフイルターに
より予め過される。
ムにおいて、ラテツクス懸濁液中の非免疫動物血
清の有効濃度を再試験してみた。 粒子懸濁液中0.25%以下の非−免疫動物血清濃
度(最終分析混合物中0.035%以下)は血清緩衝
液を使用したにも拘らず時々不明確凝集を生じ
た。 ラテツクス懸濁液中約25%までの非免疫動物血
清濃度(最終分析混合物中3.5%)は不明確凝集
の影響を減少するのに有効であるが、最高濃度す
なわち25%はポリリボホスフエートに対する分析
の感度を1/2に減少した。 他の体液における不明確凝集 多くの尿供試試料は抗−PRP及び対照LPに関
し不明確凝集を生ずる。これは尿を加熱(100℃
5分間)するか、または過することによつて除
去することができる。好ましい態様では0.45ミク
ロンのフイルターが使用される。 脳脊髄液供試試料は極めて稀れに不明確凝集を
生ずるが、これは加熱(100℃5分間)により除
去される。PRP抗原は上の加熱及び過操作に
安定である。 次の特別な例は本発明の好ましい態様を例示し
たものである。 a ラテツクス粒子の被覆 抗−PRPラテツクス粒子を調製するため
H・インフルエンザ型bの全ろば抗血清をグリ
シン緩衝食塩水(GBS)中で1/500に稀釈し、
56℃で30分間加熱した。1部のラテツクス懸濁
液(蒸留水中の直径0.81μ粒子の10%懸濁液)
を80部の稀釈した抗血清に添加し、最終ラテツ
クス粒子濃度を0.125%とした。混合物を室温
で1時間培養し、12000Gで10分間遠心分離し、
上澄液を棄てた。ペレツトを0.1%の非−免疫
ろば血清を含有する等容量のGBS中に再懸濁
し、上のように再遠心分離した後、2.5%非免
疫ろば血清を含む等容量のGBS中に再懸濁し
た。GBS中で1/500に稀釈した非免疫ろば血清
を初めにラテツクス粒子の被覆に使用した以外
は上記と同じように対照ラテツクス粒子を調製
した。全体を通じ使用した非免疫ろば血清は免
疫された同一動物から免疫する以前に血清を採
取すべきである。 マクログロブリン留分を使用する場合には、
予め免疫したもの及び免疫ろば血清の全部をセ
フアクリルG−200ゲル過コラム上のクロマ
トグラフイーにかけ、コラムの空虚な容量に溶
離する留分を貯蔵する。この貯蔵した空虚な容
量留分GBS中1ミリリツトルにつき50μgのた
ん白のたん白濃度に稀釈し、次に前に述べた方
法中の稀釈全血清と代替した。 b 血清緩衝液の調製 14モルの2−メルカプトエタノール(標準濃
厚溶液)をGBS中で1/40に稀釈した。ナトリ
ウムポリアンエトール サルホネートを最終濃
度0.05%になるように添加した。 c 分析操作 分析操作は本発明に従い次のように実施し
た。 次の図式につき清浄な乾燥した血清学のスラ
イドの2つの溜めの各々に陽性対照血清、陰性
対照血清及び試験さるべ脳脊髄液及び尿供試試
料50ミクロリツトルを添加する。陽性対照血清
は2ngPRP抗原/mlを含有する。陰性対照血
清はもしSBが添加されなければ、抗−PRP
LP及び対照LPの両方を凝集する抗−グロブリ
ンを含有し、かくしてSBの活性の検査を与え
る。尿の供試試料は0.45ミクロンフイルターに
より予め過される。
【表】
緩衝液を加える。
陽性対照血清、陰性対照血清または血清供試
料を含有する各溜めに血清緩衝液10ミクロリツ
トルを加える。 ラテツクス懸濁液を泡立たないように静かに
撹拌し、抗−PRPラテツクス粒子10ミクロリ
ツトルを各対(列A)の1つの溜めに加えて試
剤を十分に撹拌した。 対照ラテツクス粒子の10ミクロリツトルを各
対の第2の溜めに添加し、試剤を十分に混合し
た。 スライドを血清振盪機上に置き、約45分間回
転した。凝縮が工程を通じて見られるよう室を
熱水に浸漬したスポンジにより加湿すべきであ
る。スライドを室から取り出し、凝縮物を拭い
とり、凝集を次のようにして黒色の背景上で斜
めの光線中で前後に傾斜させながら読みを取
る。 4+ 大きな塊−透明な背景 3+ 大きな塊−乳白色の背景 2+ 小さな塊 1+ 微細な粒 0 乳白状 3+及び4+の反応はスライドを腕の長さで
見る時、容易に対照と識別されるべきである。
2+の反応はより精密な検査を要する。 結果の判断 ヘモフイルスLP 対照LP 判 断 (+) (−) Hインフルエンザ
型b抗原に対し陽
性 (−) (−) H.インフルエン
ザ型b抗原に対し
陰性 (+) (+) 不明確な凝集 H−インフルエ
ンザ型b抗原は存
在するかも知れず
存在しないかも知
れない 2+陽性凝集は「弱い陽性」として報告される
べきである。 この明細書を通じ使用されたように熱処理及び
培養の間使用された持続時間と温度とは最適であ
る。より短い時間間隔に対しより高温または逆に
より長い時間間隔に対しより低温で同一結果の得
られうることが理解される。さらに前記の明細者
は本発明の作業能力を確保するため使用された試
薬、媒体及び技術を明示している。しかしなが
ら、技術、時間、容量及び材料、媒体及び装置の
型における変化は本発明の範囲から離れることな
く使用しうることはこの技術の熟達者には極めて
明らかであり、本発明の範囲は付属の請求の範囲
によつてのみ限定されるものである。
料を含有する各溜めに血清緩衝液10ミクロリツ
トルを加える。 ラテツクス懸濁液を泡立たないように静かに
撹拌し、抗−PRPラテツクス粒子10ミクロリ
ツトルを各対(列A)の1つの溜めに加えて試
剤を十分に撹拌した。 対照ラテツクス粒子の10ミクロリツトルを各
対の第2の溜めに添加し、試剤を十分に混合し
た。 スライドを血清振盪機上に置き、約45分間回
転した。凝縮が工程を通じて見られるよう室を
熱水に浸漬したスポンジにより加湿すべきであ
る。スライドを室から取り出し、凝縮物を拭い
とり、凝集を次のようにして黒色の背景上で斜
めの光線中で前後に傾斜させながら読みを取
る。 4+ 大きな塊−透明な背景 3+ 大きな塊−乳白色の背景 2+ 小さな塊 1+ 微細な粒 0 乳白状 3+及び4+の反応はスライドを腕の長さで
見る時、容易に対照と識別されるべきである。
2+の反応はより精密な検査を要する。 結果の判断 ヘモフイルスLP 対照LP 判 断 (+) (−) Hインフルエンザ
型b抗原に対し陽
性 (−) (−) H.インフルエン
ザ型b抗原に対し
陰性 (+) (+) 不明確な凝集 H−インフルエ
ンザ型b抗原は存
在するかも知れず
存在しないかも知
れない 2+陽性凝集は「弱い陽性」として報告される
べきである。 この明細書を通じ使用されたように熱処理及び
培養の間使用された持続時間と温度とは最適であ
る。より短い時間間隔に対しより高温または逆に
より長い時間間隔に対しより低温で同一結果の得
られうることが理解される。さらに前記の明細者
は本発明の作業能力を確保するため使用された試
薬、媒体及び技術を明示している。しかしなが
ら、技術、時間、容量及び材料、媒体及び装置の
型における変化は本発明の範囲から離れることな
く使用しうることはこの技術の熟達者には極めて
明らかであり、本発明の範囲は付属の請求の範囲
によつてのみ限定されるものである。
ここに添附の第1図は、種々の培養期間後
LPAによつて検知された最少濃度のPRP−5に
関するグラフであり、2+またはそれより大なる凝
集は陽性の結果と考えられる。△−△LPは兎
#144の抗血清で被覆〇−〇LPはロバ#132抗血
清で被覆したものを示す。
LPAによつて検知された最少濃度のPRP−5に
関するグラフであり、2+またはそれより大なる凝
集は陽性の結果と考えられる。△−△LPは兎
#144の抗血清で被覆〇−〇LPはロバ#132抗血
清で被覆したものを示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 化学的及び生物学的に安定なシステムを形成
し得る生理学的緩衝システム内に懸濁された抗原
に対し作用する動物抗血清又はその免疫グロブリ
ン留分にて被覆された担体粒子を含有する液状試
薬と体液の試験血清とを結合させることより成
り、抗原を含有する疑いのある体液内の抗原を検
知する直接凝集方法において、試験血清内での熱
不安定凝集素の影響を最小にできるポリアニオン
と試験血清内での熱安定凝集素の影響を最小にで
きる還元剤を含む血清緩衝システムを反応混合物
に付加することによつて不明確凝集の影響を実質
的に除去したことを特徴とする直接凝集方法。 2 前記ポリアニオンがナトリウムポリアンエト
ール、デキストランサルフエート、カラゲニン及
びヘパリンより成る群から選ばれる特許請求の範
囲第1項に記載の直接凝集方法。 3 前記還元剤が2−メルカプトエタノール、ジ
チオスレイトール、グルタチオン及びシステイン
より成る群から選ばれる特許請求の範囲第1項に
記載の直接凝集方法。 4 試験血清と液状試薬の結合前に試験血清に前
記血清緩衝システムを付加する特許請求の範囲第
1項に記載の直接凝集方法。 5 試験血清と液状試薬の結合前に液状試薬に前
記血清緩衝システムを結合する特許請求の範囲第
1項に記載の直接凝集方法。 6 前記血清緩衝システムが、前記試験血清と前
記液状試薬より成る反応混合物に付加される特許
請求の範囲第1項に記載の直接凝集方法。 7 試験血清、血清緩衝システム及び液状試薬の
結合前に、通常の動物血清又はその免疫グレブリ
ン留分が試験血清に付加される特許請求の範囲第
1項に記載の直接凝集方法。 8 液状試薬、血清緩衝システム及び試験血清の
結合前に通常の動物血清を液状試薬に付加する特
許請求の範囲第1項に記載の直接凝集方法。 9 液状試薬と試験血清の付加の前に通常の動物
の血清又はその免疫グロブリン留分を血清緩衝シ
ステムに結合する特許請求の範囲第1項に記載の
直接凝集方法。 10 通常の動物の血清又はその免疫グロブリン
留分を、液状試薬、血清緩衝システム及び試験血
清より成る反応混合体に付加する特許請求の範囲
第1項に記載の直接凝集方法。 11 前記試薬は、前記抗原に対する抗体を含有
しない通常の動物の血清を含む特許請求の範囲第
1項に記載の直接凝集方法。 12 抗原に対する抗体を吸着して有する微細粒
子と血清緩衝システムの懸濁より成り、該血清緩
衝システムは、血清供試品中の熱不安定凝集素の
影響を最小にできるポリアニオンと血清供試品中
の熱安定凝集素の影響を最小にできる還元剤の混
合物を含むことより成る、抗原を含有する凝いの
ある体液内の抗原を検知する試薬。
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