JPH02150273A - 新規なモエノマイシン分解微生物および分解方法 - Google Patents
新規なモエノマイシン分解微生物および分解方法Info
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- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/44—Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
- C12P7/42—Hydroxy-carboxylic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/07—Bacillus
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
モエノマイシンA11l参、裸)は家畜栄養物に用いら
れるフラボマイシン■の主成分である。
れるフラボマイシン■の主成分である。
他の公知のホスホグリコリピド抗生物質のよさにそれは
細菌細胞壁のペプチドグリカン骨格の生合成を阻害する
。より精密な調査により大腸菌のペニシリン−結合タン
/−?り質1bのグリコジル転移反応がこれらの物質に
よって阻害されることが示された。(Huber G、
、 Antibiotics。
細菌細胞壁のペプチドグリカン骨格の生合成を阻害する
。より精密な調査により大腸菌のペニシリン−結合タン
/−?り質1bのグリコジル転移反応がこれらの物質に
よって阻害されることが示された。(Huber G、
、 Antibiotics。
V−1,135〜156頁(1979年)〕今までのと
ころ、ホスホグリコリピド抗生物質の特定の酵素による
または微生物による分解における試みは成功していない
。
ころ、ホスホグリコリピド抗生物質の特定の酵素による
または微生物による分解における試みは成功していない
。
予想外なことに今般ホスホグリコリピド抗生物質を開裂
して所定の末端生成物とすることのできる新規なバチル
ス種がストレプトミセスガーナエンシス(Strept
omyces ghanaenais)を用いるフラボ
マイシンの製造のための汚染発酵槽から単離された。こ
れらの末端生成物は抗生作用活性を有し、または新規な
トランスグリコシラーゼ阻害剤の合成における基礎単位
として使用することができる。
して所定の末端生成物とすることのできる新規なバチル
ス種がストレプトミセスガーナエンシス(Strept
omyces ghanaenais)を用いるフラボ
マイシンの製造のための汚染発酵槽から単離された。こ
れらの末端生成物は抗生作用活性を有し、または新規な
トランスグリコシラーゼ阻害剤の合成における基礎単位
として使用することができる。
すなわち、本発明は
t /Jチルス種DSM 4675その変異体および突
然変異体。
然変異体。
で表わされるモエノマイシン人の開裂生成物。
五
一般式
(式中、R1は水素またはホスホノ基C−PO(O(至
)2〕であり、そしてR2は分枝鎖または非分枝鎖の飽
和または不飽和の(Cs−C55)−アルキル基である
)で表わされるホスホグリコリピド抗生物質の開裂生成
物。
)2〕であり、そしてR2は分枝鎖または非分枝鎖の飽
和または不飽和の(Cs−C55)−アルキル基である
)で表わされるホスホグリコリピド抗生物質の開裂生成
物。
4、 その助けによりホスホグリコリピド抗生物質がホ
スホグリコシP結合で開裂され、または3に記載の開裂
生成物がモノホス7工−トエステル結合で開裂される酵
素。
スホグリコシP結合で開裂され、または3に記載の開裂
生成物がモノホス7工−トエステル結合で開裂される酵
素。
5、 ホスホグリコリピド抗生物質をバチルス徨DAM
4675とともにインキュベートすることからなる2
および3に記載の分解生成物の製造方法。
4675とともにインキュベートすることからなる2
および3に記載の分解生成物の製造方法。
& 2および3に記載の物質のトランスグリコシラーゼ
阻害剤の合成における構築単位として、または抗生作用
活性を有する物質としての使用。
阻害剤の合成における構築単位として、または抗生作用
活性を有する物質としての使用。
本発明を以後詳細に特に好ましい実施態様について述べ
る。さらに特許請求の範囲において定義づける。バチル
ス種は1988年6月23日西Pイツのブラウンシュヴ
アイクにおけるDeutscheSammlung v
an Mikroorganismen und Zs
llkulturenC)mbH(German Mi
croorganism and Ce1l Cu1t
ureCollec tion)でブダペスト条約の規
定に基づいて番号DSM 4675とともに供託された
。該菌株の特徴は下記のものでありうる。
る。さらに特許請求の範囲において定義づける。バチル
ス種は1988年6月23日西Pイツのブラウンシュヴ
アイクにおけるDeutscheSammlung v
an Mikroorganismen und Zs
llkulturenC)mbH(German Mi
croorganism and Ce1l Cu1t
ureCollec tion)でブダペスト条約の規
定に基づいて番号DSM 4675とともに供託された
。該菌株の特徴は下記のものでありうる。
1、ノクチルス種DAM 4675の分類特性ハ 形態
学 0運動性の桿状体;5μmまでの長さ:幾らかは短鎖 0末端胞子(terminal 5pore);膨張し
た胞子嚢 0グラム陽性 B)各種培地における成長(28℃;48時間)t 抗
生物質培地5 (Difco) 01〜2m径の粗い浅裂のコロニー λ ルリアブイヨン(バクトドリプトン10 ?/i
;バクトイ−スト5 f/l ; NaCA 5 f/
l )02〜3m径のなめらかで光沢のある円いコロニ
ー:不透明 五 栄養プロス(Dirco) 0不規則な縁を有する白色で光沢のあるコロクリステン
七ン尿素寒天(pifco)0成長陽性 5、マツコンキー寒天(DlfCo) 0成長陽性 4゜ EIROLAC’寒天(ラクトース) (vltco)
0成長陽性 シモンズクエン酸塩寒天(Difco)0成長陰性 ペプトン/肉エキス培地(Difco)中7または10
%NaC1の存在下では成長しない。
学 0運動性の桿状体;5μmまでの長さ:幾らかは短鎖 0末端胞子(terminal 5pore);膨張し
た胞子嚢 0グラム陽性 B)各種培地における成長(28℃;48時間)t 抗
生物質培地5 (Difco) 01〜2m径の粗い浅裂のコロニー λ ルリアブイヨン(バクトドリプトン10 ?/i
;バクトイ−スト5 f/l ; NaCA 5 f/
l )02〜3m径のなめらかで光沢のある円いコロニ
ー:不透明 五 栄養プロス(Dirco) 0不規則な縁を有する白色で光沢のあるコロクリステン
七ン尿素寒天(pifco)0成長陽性 5、マツコンキー寒天(DlfCo) 0成長陽性 4゜ EIROLAC’寒天(ラクトース) (vltco)
0成長陽性 シモンズクエン酸塩寒天(Difco)0成長陰性 ペプトン/肉エキス培地(Difco)中7または10
%NaC1の存在下では成長しない。
C)生理学的特性
1、 オキシダーゼ +2 カタラー
ゼ +6、 溶血反応 4、7ミノベデチダーゼ 5、 硝酸還元 6 フェニルアラニンデアミナーゼ 8゜ & 50 ℃ + グルコースからのガス生成 インP−ル生成 アルーニンジヒPラーゼ 尿素分解 エスクリン加水分解 ゼラチン分解 β−ガラクトシダーゼ リシンデカルボキシラーゼ オルニチンデカルボキシラーゼ H2B生産 トリプトファンデアミナーゼ アルカリホス7アターゼ フオゲスープロスカウェル反応 D)炭水化物の発酵 + + ア・クピン酸塩 液体 アPニトール アラビノース カプリン酸基 クエン酸塩 ズルシトール 7ラクトース がラクトース グルコン酸塩 グルコース イノシトール ラクトース リンが酸塩 マロン酸塩 マルトース マンニトール マンノース メリビオース 酢酸フェニル + + + + + + + + + ラフィノース + +ラムノース スクロース + +サリシン ンルビトール トレハロース + +キシリトール
− −キシロース
+ +N−7セチルーグルコサミン −
+分類特性を考慮し、「Bargey’s
Manual of 5ys−ちematic Ba
cteriology J (第2巻、William
s &Wilkins発行、ポルティモア、1986年
)によれば該菌株はバチルス属と指定できる。その種を
決定するためにBacillus macerans、
circulans。
ゼ +6、 溶血反応 4、7ミノベデチダーゼ 5、 硝酸還元 6 フェニルアラニンデアミナーゼ 8゜ & 50 ℃ + グルコースからのガス生成 インP−ル生成 アルーニンジヒPラーゼ 尿素分解 エスクリン加水分解 ゼラチン分解 β−ガラクトシダーゼ リシンデカルボキシラーゼ オルニチンデカルボキシラーゼ H2B生産 トリプトファンデアミナーゼ アルカリホス7アターゼ フオゲスープロスカウェル反応 D)炭水化物の発酵 + + ア・クピン酸塩 液体 アPニトール アラビノース カプリン酸基 クエン酸塩 ズルシトール 7ラクトース がラクトース グルコン酸塩 グルコース イノシトール ラクトース リンが酸塩 マロン酸塩 マルトース マンニトール マンノース メリビオース 酢酸フェニル + + + + + + + + + ラフィノース + +ラムノース スクロース + +サリシン ンルビトール トレハロース + +キシリトール
− −キシロース
+ +N−7セチルーグルコサミン −
+分類特性を考慮し、「Bargey’s
Manual of 5ys−ちematic Ba
cteriology J (第2巻、William
s &Wilkins発行、ポルティモア、1986年
)によれば該菌株はバチルス属と指定できる。その種を
決定するためにBacillus macerans、
circulans。
1entua、 alcalophilus、 5te
arot、hermophilus、licheni−
formis、 polymyxaおよびfas ti
dlosusのタイプカルチャーの平行比較実験を行な
った。すべての比較菌株はバチルス[DSM 4675
と明確に異なった性質を示した。これらの菌株は倒れも
ホスホグリコリピr抗生物質、特にモエノマイシンAを
分解することができなかった。このことから菌株D8M
4675は新しい種であることが結論づけられる。
arot、hermophilus、licheni−
formis、 polymyxaおよびfas ti
dlosusのタイプカルチャーの平行比較実験を行な
った。すべての比較菌株はバチルス[DSM 4675
と明確に異なった性質を示した。これらの菌株は倒れも
ホスホグリコリピr抗生物質、特にモエノマイシンAを
分解することができなかった。このことから菌株D8M
4675は新しい種であることが結論づけられる。
本発明は各場合において、さらに知られているように自
然に発生し、または物理的動因、例えば紫外線またはX
線のような照射線もしくは化学的突然変異誘発物質1例
えばエチルメタンスルホネート(gMs) 、N−メチ
ル−N′−二トローN−二トロソグアニジ7 (MNN
G)または2−ヒPロキシー4−メトキシーベンゾフェ
ノン(MOB)を用いて処理することにより発生する突
然変異体および変異体に関する。
然に発生し、または物理的動因、例えば紫外線またはX
線のような照射線もしくは化学的突然変異誘発物質1例
えばエチルメタンスルホネート(gMs) 、N−メチ
ル−N′−二トローN−二トロソグアニジ7 (MNN
G)または2−ヒPロキシー4−メトキシーベンゾフェ
ノン(MOB)を用いて処理することにより発生する突
然変異体および変異体に関する。
・々チルス種DAM 4675の好気性発酵用炭素源と
して好適で好ましいものは同化できる炭水化物およびグ
ルコース、ラクトースまたはマンニトールのような糖ア
ルコール、並びに麦芽エキスのような炭水化物含有天然
産物である。好適で好ましい窒素含有栄養物はアミノ酸
、ペプチPおよびタン、Rり質並びにその分解生成物、
例えばペプトンまたはトリプトンさらに肉エキス、例え
ばトウモロコシ、豆、大豆またはワタの粉砕された種子
、アルコール製造の際の蒸留残留物、ミートミールまた
はイーストエキス並びにアンモニウム塩および硝酸塩で
ある。栄養物溶液はさらに付加的な無機塩として、例え
ばアルカリ金属またはアルカリ土類金属、鉄、亜鉛およ
びマンガンの塩化物、炭酸塩、硫酸塩またはリン酸塩を
含有してもよい。
して好適で好ましいものは同化できる炭水化物およびグ
ルコース、ラクトースまたはマンニトールのような糖ア
ルコール、並びに麦芽エキスのような炭水化物含有天然
産物である。好適で好ましい窒素含有栄養物はアミノ酸
、ペプチPおよびタン、Rり質並びにその分解生成物、
例えばペプトンまたはトリプトンさらに肉エキス、例え
ばトウモロコシ、豆、大豆またはワタの粉砕された種子
、アルコール製造の際の蒸留残留物、ミートミールまた
はイーストエキス並びにアンモニウム塩および硝酸塩で
ある。栄養物溶液はさらに付加的な無機塩として、例え
ばアルカリ金属またはアルカリ土類金属、鉄、亜鉛およ
びマンガンの塩化物、炭酸塩、硫酸塩またはリン酸塩を
含有してもよい。
本発明の微生物の成長および分解反応に必要な酵素の生
成は、特に炭素および窒素源とじてコーンスターチ、大
豆ミール、 スフo−X、/リセロール、ペプトンおよ
び/またはコーンスターチを含有する栄養培地において
良好である。
成は、特に炭素および窒素源とじてコーンスターチ、大
豆ミール、 スフo−X、/リセロール、ペプトンおよ
び/またはコーンスターチを含有する栄養培地において
良好である。
発酵は好気的に行なわれ、すなわち、例えば振とうフラ
スコまたは発酵槽中空気または酸素を取り入れて根とう
または攪拌しながら液内で培養する。発酵はおよそ室温
から50℃の範囲の温度、好ましくは約65〜67℃で
行なうことができる。培養時間は一般に24〜48時間
である。
スコまたは発酵槽中空気または酸素を取り入れて根とう
または攪拌しながら液内で培養する。発酵はおよそ室温
から50℃の範囲の温度、好ましくは約65〜67℃で
行なうことができる。培養時間は一般に24〜48時間
である。
このようにして得られたバチルスDSM 4675の培
養物またはその調製物は、ホスホグリコリピP抗生物質
を開裂させるのに使用することができる。これらのもの
には特にモエノマイシン群、1) 2、し4えばホリボマイゾン プラ・ジ1イシン 、
ジウマイシン(マカルボマイシン) エサンコマイ
シン、デレノマイシンおよびタイコマイシンそして相応
じて官能化されたホスホグリセリン酸を有する他の構造
的に関連のある物質が包含される。
養物またはその調製物は、ホスホグリコリピP抗生物質
を開裂させるのに使用することができる。これらのもの
には特にモエノマイシン群、1) 2、し4えばホリボマイゾン プラ・ジ1イシン 、
ジウマイシン(マカルボマイシン) エサンコマイ
シン、デレノマイシンおよびタイコマイシンそして相応
じて官能化されたホスホグリセリン酸を有する他の構造
的に関連のある物質が包含される。
(1) 8 、 Takahashiら、 Tetra
hsdron Lett、 1985+2) F、L、
Weissnbornら、 Nature 213
、10923)8. Takahashiら、 J、
/1tltibiot、 26 、542酵素は特に好
ましく、モエノマイシン例えばフラボマイシンを分解す
るのく用いられる。
hsdron Lett、 1985+2) F、L、
Weissnbornら、 Nature 213
、10923)8. Takahashiら、 J、
/1tltibiot、 26 、542酵素は特に好
ましく、モエノマイシン例えばフラボマイシンを分解す
るのく用いられる。
バチルス細胞を用いた場合、後者を例えばセチルトリメ
チルアンモニウム塩を用いて浸透化することが有利であ
る。同様にバチルス細胞からの蛋白質単離物または例え
ば塩析またはクロマトグラフィーにより部分的に濃縮さ
れた酵素抽出物またはもちろん精製された酵素を用いる
ことができる。さらに酵素および細胞を自由または固定
化形態で使用することができる。
チルアンモニウム塩を用いて浸透化することが有利であ
る。同様にバチルス細胞からの蛋白質単離物または例え
ば塩析またはクロマトグラフィーにより部分的に濃縮さ
れた酵素抽出物またはもちろん精製された酵素を用いる
ことができる。さらに酵素および細胞を自由または固定
化形態で使用することができる。
酵素分解を例としてモエノマイシンAを用いて次の図式
で説明する。
で説明する。
この図式より開裂生成物を製造するためには2つの酵素
が必要であることが明らかである。
が必要であることが明らかである。
本発明者らがモエノマイシナーゼと呼んでいる酵素がホ
スホグリコシP結合を開裂するのに必要とされる。モエ
ノマイシナーゼはバチルス種DSM 4675の細旭質
膜に随伴され、それ自体既知の酵素分離法により微生物
から得られる。
スホグリコシP結合を開裂するのに必要とされる。モエ
ノマイシナーゼはバチルス種DSM 4675の細旭質
膜に随伴され、それ自体既知の酵素分離法により微生物
から得られる。
モエノマイシナーゼの最適な一値は約8.0〜8.5、
特K 8.2〜a3である。酵素の最適な温度は45〜
55℃、特に49〜51℃である。
特K 8.2〜a3である。酵素の最適な温度は45〜
55℃、特に49〜51℃である。
モエノマイシナーゼのKDl値はモエノマイシンAにつ
いて4〜10ミリモルである。
いて4〜10ミリモルである。
2つの開裂生成物が得られる。開裂生成ウニはホスホグ
リコリピP抗生物質の糖成分からなる。一般式(II) L:tJtJl−t (式中、R1はホスホノ基であり、R2は(as−as
5)−アルキル基、好ましくは(C10〜C30)−ア
ルキル基、特VC(C20−C25)−アルキル基(各
々は分枝鎖または非分枝鎖の飽和または不飽和の好まし
くは分枝鎖で不飽和の基でありうる)である)で表わさ
れる開裂生成物もまた得られる。
リコリピP抗生物質の糖成分からなる。一般式(II) L:tJtJl−t (式中、R1はホスホノ基であり、R2は(as−as
5)−アルキル基、好ましくは(C10〜C30)−ア
ルキル基、特VC(C20−C25)−アルキル基(各
々は分枝鎖または非分枝鎖の飽和または不飽和の好まし
くは分枝鎖で不飽和の基でありうる)である)で表わさ
れる開裂生成物もまた得られる。
モエノマイシンは好ましく基質として用いられ、従って
その結果得られる開裂生成物は化合物MC並びに化合物
MBおよび息に相当する物質である。(反応式図を参照
) 別の酵素がモエノマイシナーゼを用いてのインキュベー
ションにより得られる一般式(■)(式中R1は水素で
ある)のホスホグリセリン[IJビPの脱ホスホリル化
のために必要であり、同じく本発明の微生物から得るこ
とができる。本発明においてこの酵素をMBアーゼと呼
ぶ。■アーゼは同様にしてそれ自体既知の方法によりこ
の微生物から分離することができる。例えば、細胞を超
音波で分裂し、その結果得られた粗抽出物を硫酸アンモ
ニウム分別(25〜55%飽和)または超遠心分離の何
れかによりさらに濃縮する。次いでこれを透析する。モ
エノマイシナーゼおよび■アーゼを最後にクロマトグラ
フィーにより分離する。
その結果得られる開裂生成物は化合物MC並びに化合物
MBおよび息に相当する物質である。(反応式図を参照
) 別の酵素がモエノマイシナーゼを用いてのインキュベー
ションにより得られる一般式(■)(式中R1は水素で
ある)のホスホグリセリン[IJビPの脱ホスホリル化
のために必要であり、同じく本発明の微生物から得るこ
とができる。本発明においてこの酵素をMBアーゼと呼
ぶ。■アーゼは同様にしてそれ自体既知の方法によりこ
の微生物から分離することができる。例えば、細胞を超
音波で分裂し、その結果得られた粗抽出物を硫酸アンモ
ニウム分別(25〜55%飽和)または超遠心分離の何
れかによりさらに濃縮する。次いでこれを透析する。モ
エノマイシナーゼおよび■アーゼを最後にクロマトグラ
フィーにより分離する。
飄アーゼは67℃より高い温度で、並びに−がP115
より低い酸性−範囲内である時だんだん不活性化される
。
より低い酸性−範囲内である時だんだん不活性化される
。
モエノマイシンおよびホスホグリコリビr抗生物質の開
裂は上述したように全細胞または酵素単離物を用いて行
なうことができる。
裂は上述したように全細胞または酵素単離物を用いて行
なうことができる。
反応は一般に一約5.5〜8.5、好ましくは−7〜8
で水性媒体中性なわれる。反応時間は一般に5〜48時
間、好ましくは約24時間である。反応温度は4〜60
℃、好ましくは30〜37℃である。基質濃度は0.1
〜5%、好ましくは1〜2%の範囲内がよい。
で水性媒体中性なわれる。反応時間は一般に5〜48時
間、好ましくは約24時間である。反応温度は4〜60
℃、好ましくは30〜37℃である。基質濃度は0.1
〜5%、好ましくは1〜2%の範囲内がよい。
反応を上述よりも高いまたは低い温度または一値で行な
うこともできる。しかしながらその場合モエノマイシナ
ーゼはより活性が低い。
うこともできる。しかしながらその場合モエノマイシナ
ーゼはより活性が低い。
モエノマイシン人から得られる反応生成物は図に描かれ
ている物質迎およびMCである。生成物界、はMBをM
Bアーゼを用いて3o〜37℃、好ましくは35〜37
℃で、そしてpH5,5〜8.5、好ましくはPI(6
〜8で約24時間にわたってインキュベーションするこ
とにより得られる。
ている物質迎およびMCである。生成物界、はMBをM
Bアーゼを用いて3o〜37℃、好ましくは35〜37
℃で、そしてpH5,5〜8.5、好ましくはPI(6
〜8で約24時間にわたってインキュベーションするこ
とにより得られる。
該反応生成物は抗生物質(例えばMB)としてまたはト
ランスグリコシラーゼ阻害剤の合成における基礎単位(
例えば胤およびMC)として使用することができる。
ランスグリコシラーゼ阻害剤の合成における基礎単位(
例えば胤およびMC)として使用することができる。
本発明を実施例により更に詳細に説明する。
特に記載がなければJR−セント値は重量に基づくもの
である。
である。
実施例 1
ノ々チルス種DSM 4675菌株の維持バチルスg
DSM 4675を下記の固形栄養培地(培地1)上で
維持する: バクトトリプトン(Difco) 10 t/1
イーストエキス(Difco) s f/IN
aCA 5t/1寒
天 15f/1pH7
,2 培地を試験管に振り分け、121℃で30分間滅菌し、
次いで冷却し培養物を植え付け、そして37℃で2〜3
日インキュベートする。
DSM 4675を下記の固形栄養培地(培地1)上で
維持する: バクトトリプトン(Difco) 10 t/1
イーストエキス(Difco) s f/IN
aCA 5t/1寒
天 15f/1pH7
,2 培地を試験管に振り分け、121℃で30分間滅菌し、
次いで冷却し培養物を植え付け、そして37℃で2〜3
日インキュベートする。
成長培養物を洗い出して下記のモエノマイシン含有主培
養物(培地2)のための接種物を得る。
養物(培地2)のための接種物を得る。
コーンスターチ 40 t/1大豆ミール
35 f/1スクロース
10f/JC5LCO389/1 コーンスチーデ 4 f/lCo80
420 W/ 1 @C)enapol (アルキルポリグリコールエステ
ル) 5rd/1それぞれこの培地を30m/含有
する300 dのエルレンマイヤーフラスコに植え付け
、次いで67℃、190 rpmで8〜48時間インキ
ュベートする。培養ろ液の薄層クロマトグラフィー分析
は化合物鳳、MBおよびMCがモエノマイシンの開裂生
成物として検出可能であり、そして反応終了近く用いた
モエノマイシンが完全に消滅することを示す。
35 f/1スクロース
10f/JC5LCO389/1 コーンスチーデ 4 f/lCo80
420 W/ 1 @C)enapol (アルキルポリグリコールエステ
ル) 5rd/1それぞれこの培地を30m/含有
する300 dのエルレンマイヤーフラスコに植え付け
、次いで67℃、190 rpmで8〜48時間インキ
ュベートする。培養ろ液の薄層クロマトグラフィー分析
は化合物鳳、MBおよびMCがモエノマイシンの開裂生
成物として検出可能であり、そして反応終了近く用いた
モエノマイシンが完全に消滅することを示す。
実施例 2
細胞を含有しない抽出物の製造
細胞を含有I2ない抽出物を製造するためにバチルス種
D8M 4675を発酵槽中で培養する。このため寒天
プレートの細胞を洗い出して前培養物(21のエルシン
マイヤーフラスコ中、フラホマイシンを含まない500
R1の培地2)のための1、0 dの接種物を得、次
いでこれを37’CC190rpで24時間インキュベ
ートする。
D8M 4675を発酵槽中で培養する。このため寒天
プレートの細胞を洗い出して前培養物(21のエルシン
マイヤーフラスコ中、フラホマイシンを含まない500
R1の培地2)のための1、0 dの接種物を得、次
いでこれを37’CC190rpで24時間インキュベ
ートする。
91の培地6を含む121の実験室用発酵槽が主培養段
階で使用される: ペゾトン グリセロール クエン酸塩 に2HPO4 MgSO4x 7H20 FeCLs X 6H20 デスモフエン(テロピレングリコール)−&8 12.5 タ/1 20、Obf/1 2.0 f/1 1.5 t/1 0.5 f/1 0.04?/1 5、Orxl/1 これk 500 dの前培養物を植え付け、次いで57
℃、300 rpmそして13.5 vvmの曝気速度
で24時間インキュベーションすル。
階で使用される: ペゾトン グリセロール クエン酸塩 に2HPO4 MgSO4x 7H20 FeCLs X 6H20 デスモフエン(テロピレングリコール)−&8 12.5 タ/1 20、Obf/1 2.0 f/1 1.5 t/1 0.5 f/1 0.04?/1 5、Orxl/1 これk 500 dの前培養物を植え付け、次いで57
℃、300 rpmそして13.5 vvmの曝気速度
で24時間インキュベーションすル。
成長培養物を遠心分離し、細胞(−ストをリン酸カリウ
ム緩衝剤(Pl(70)50mM(IPの湿潤細胞+2
−の緩衝剤)中で再懸濁する。次いで細胞を超音波すな
わちFr8nch Press”またはDyno Mi
ll−■を用いて分裂し、その結果得られる粗抽出物を
転換のために使用する。
ム緩衝剤(Pl(70)50mM(IPの湿潤細胞+2
−の緩衝剤)中で再懸濁する。次いで細胞を超音波すな
わちFr8nch Press”またはDyno Mi
ll−■を用いて分裂し、その結果得られる粗抽出物を
転換のために使用する。
100μlの粗抽出物、12■のモエノマイシンおよび
900μ!のリン酸カリウム緩衝剤(PH8,())5
0mMを含有する試験混合物において7〜24時間内3
7℃で50%の用いられた基質の分解が行なわれる。見
い出された反応生成物は凧、■およびMCである。
900μ!のリン酸カリウム緩衝剤(PH8,())5
0mMを含有する試験混合物において7〜24時間内3
7℃で50%の用いられた基質の分解が行なわれる。見
い出された反応生成物は凧、■およびMCである。
実施例 3
モエノマイシンAの調製用転換
調製用転換はリン酸カリウム緩衝剤(pH8,0)50
mM、800m/の粗酵素抽出物および100Pのモエ
ノマイシンAを含有する12/の発酵槽中、57℃、1
00 rpmで行なわれる。転換過程はTLCで追跡す
る。全体の反応混合物を8〜48時間後凍結乾燥する。
mM、800m/の粗酵素抽出物および100Pのモエ
ノマイシンAを含有する12/の発酵槽中、57℃、1
00 rpmで行なわれる。転換過程はTLCで追跡す
る。全体の反応混合物を8〜48時間後凍結乾燥する。
モエノマイシン分解は一般に40〜60%である( T
LCでのUV分析)。
LCでのUV分析)。
その結果得られた反応生成物はMA、MBおよびMCで
ある。
ある。
実施例 4
分解生成物の製造
酵素転換からの凍結乾燥混合物100?を21の水に溶
解し、そして各々21の酢酸エチルを用いて2回抽出し
た。この場合完全な相分離とするために遠心分離が必要
である。合一した有機抽出物を硫酸ナトリウム上で乾燥
し、ろ過し、そして蒸発乾固した。0.4 t (α4
%)の暗い褐色の油状物が得られ、モリブデートリン酸
/硫酸セリウム(fV)発色剤(以下、FMS試薬と省
略する)でスプレーしたシリカゲル(Merck60
F254アルミニウムTLCシート)上n−ブタノール
/酢酸/水=3/1/2系での薄層クロマトグラフィー
によりその主成分が風であることがわかった( Rf値
=O,SS)。
解し、そして各々21の酢酸エチルを用いて2回抽出し
た。この場合完全な相分離とするために遠心分離が必要
である。合一した有機抽出物を硫酸ナトリウム上で乾燥
し、ろ過し、そして蒸発乾固した。0.4 t (α4
%)の暗い褐色の油状物が得られ、モリブデートリン酸
/硫酸セリウム(fV)発色剤(以下、FMS試薬と省
略する)でスプレーしたシリカゲル(Merck60
F254アルミニウムTLCシート)上n−ブタノール
/酢酸/水=3/1/2系での薄層クロマトグラフィー
によりその主成分が風であることがわかった( Rf値
=O,SS)。
残留の水性相を次いで各回2ノのn−ブタノールで2回
抽出した。再び相を分離させるために遠心分離が必要で
あった。次いで合一したブタノール相をできるだけ濃縮
しそして残留物を少しの水に溶解し最終的に凍結乾燥し
た。ス4fc7.4%)の黄色粉末が得られ、薄層クロ
マトグラフィー(上述の条件および同じ検出を用いる)
による分析から主成分が■であることがわかった(Rf
=152)。
抽出した。再び相を分離させるために遠心分離が必要で
あった。次いで合一したブタノール相をできるだけ濃縮
しそして残留物を少しの水に溶解し最終的に凍結乾燥し
た。ス4fc7.4%)の黄色粉末が得られ、薄層クロ
マトグラフィー(上述の条件および同じ検出を用いる)
による分析から主成分が■であることがわかった(Rf
=152)。
このよ5にして非極性物質の除去された水性相を凍結乾
燥した。これから得られる残留物の量は76.9fであ
った(総量が85%での76.9%)。
燥した。これから得られる残留物の量は76.9fであ
った(総量が85%での76.9%)。
薄層クロマトグラフィーによりこの淡黄色の粉末はMC
(Rf = 0.1 )と称する極性の主物質、残留す
るモエノマイシンAおよび副生成物から成ることがわか
った。
(Rf = 0.1 )と称する極性の主物質、残留す
るモエノマイシンAおよび副生成物から成ることがわか
った。
この上うにして得られる成分界1、MBおよびMCから
成る粗生成物をさらに下記のようにして精製した。
成る粗生成物をさらに下記のようにして精製した。
実施例 5
a)分解生成物W、の精製
400■の恵、粗生成物をP)!7.5に調整した12
0Vのシリカゲル(Merck 60.15〜40 m
cm )上のクロマトグラフィーに付した(カラム物質
をこの目的のために下記のようKして前処理したニジリ
カゲルを500dの2 N HC6中1時間攪拌し、次
いで吸引しなからろ去しそして洗浄して中性とした。次
にI N NaOHを用いて−を7.5 K、調整しそ
して最後に21の水および50CIa/のメタノールを
用いての洗浄を行なった。このようにして前処理した物
質を乾燥しそして一晩120℃で活性化した)。クロロ
ホルム/エタノール=171を溶離剤とし【用いた。物
質を6−の溶媒混合物中カラムに充てんしそして各々2
.51の216個のフラクションを集めた。TLC分析
(実施例1と同じTLCプレートおよび検出、カラム溶
離剤と同じ溶媒系)を用いて、フラクション115〜1
75を合一し、硫酸ナトリウム上乾燥しそして最後に蒸
発乾固した。27■の分光学的に純粋なり、が得られた
。
0Vのシリカゲル(Merck 60.15〜40 m
cm )上のクロマトグラフィーに付した(カラム物質
をこの目的のために下記のようKして前処理したニジリ
カゲルを500dの2 N HC6中1時間攪拌し、次
いで吸引しなからろ去しそして洗浄して中性とした。次
にI N NaOHを用いて−を7.5 K、調整しそ
して最後に21の水および50CIa/のメタノールを
用いての洗浄を行なった。このようにして前処理した物
質を乾燥しそして一晩120℃で活性化した)。クロロ
ホルム/エタノール=171を溶離剤とし【用いた。物
質を6−の溶媒混合物中カラムに充てんしそして各々2
.51の216個のフラクションを集めた。TLC分析
(実施例1と同じTLCプレートおよび検出、カラム溶
離剤と同じ溶媒系)を用いて、フラクション115〜1
75を合一し、硫酸ナトリウム上乾燥しそして最後に蒸
発乾固した。27■の分光学的に純粋なり、が得られた
。
b)分解生成物MBの精製
抽出により得られる5、1?(7)MB−含有粗生成物
を実施例2で説明した方法を用いてpH7,5に調整し
たら00tのシリカゲル上のクロマトグラフィーに付し
た。中圧クロマトグラフィーシステム(MPLC)を用
いて、クロロホルム/エタノール/水=4/7/15を
流速10d/分および圧力2〜5パールで溶離するため
に用いた。最初の600dの流出の後裔々10dの22
0個の7ラクシヨンを集め、TLCに基づいて合一した
。MBを含有する混合されたフラクションの他にフラク
ション90〜170を蒸発させ水に溶解しそして凍結乾
燥した後t2Bfの純粋なMBが得られた。
を実施例2で説明した方法を用いてpH7,5に調整し
たら00tのシリカゲル上のクロマトグラフィーに付し
た。中圧クロマトグラフィーシステム(MPLC)を用
いて、クロロホルム/エタノール/水=4/7/15を
流速10d/分および圧力2〜5パールで溶離するため
に用いた。最初の600dの流出の後裔々10dの22
0個の7ラクシヨンを集め、TLCに基づいて合一した
。MBを含有する混合されたフラクションの他にフラク
ション90〜170を蒸発させ水に溶解しそして凍結乾
燥した後t2Bfの純粋なMBが得られた。
C)分解生成物MCの精製
抽出物の水性相からの2.2fの極性粗生成物を同様に
圧力下でのクロマトグラフィー(MPLc)に付した。
圧力下でのクロマトグラフィー(MPLc)に付した。
声がz5のシリカゲル500fを用い(実施例2の方法
)、モして溶離剤として酢酸エチル/1−プ四ノ々ノー
ル/水=41515を用いた。充てんする量を15tの
シリカゲルとともにメタノール中で懸濁し溶媒を留去し
そしてこのようKして処理した保持体をプレカラムに導
入し、次いで2〜4パールの圧力下5al1分の流速で
溶離した。最初の940−の流出の後裔各10t/の2
50個のフラクションを分別した。
)、モして溶離剤として酢酸エチル/1−プ四ノ々ノー
ル/水=41515を用いた。充てんする量を15tの
シリカゲルとともにメタノール中で懸濁し溶媒を留去し
そしてこのようKして処理した保持体をプレカラムに導
入し、次いで2〜4パールの圧力下5al1分の流速で
溶離した。最初の940−の流出の後裔各10t/の2
50個のフラクションを分別した。
フラクションをFM8発色剤を用いる酢酸エチル/1−
グロノ5ノール/水=1/1/1系での薄層クロマトグ
ラフィーおよび254 nmでの―′吸収の検出により
試験を行ない、そして合一した。混合されたフラクショ
ンの他にフラクション120〜190を濃縮して水性相
とし次いで凍結乾燥してt3tの純粋なMC’を得、こ
れを分光分析した。
グロノ5ノール/水=1/1/1系での薄層クロマトグ
ラフィーおよび254 nmでの―′吸収の検出により
試験を行ない、そして合一した。混合されたフラクショ
ンの他にフラクション120〜190を濃縮して水性相
とし次いで凍結乾燥してt3tの純粋なMC’を得、こ
れを分光分析した。
実施例 6
モエノマイシンAから酵素分解により得られる生成物風
およびMBの構造の解明 (構造の番号は後記の反応式図に関連する)臥について
の推定構造は1aであった。1aの CNMRスイクト
ルに基づいて、この構造が指定される。1&とジアゾメ
タンの反応によりメチルエステル1bが得られ、これは
HNMRおよびgIマススペクトルにより同定される。
およびMBの構造の解明 (構造の番号は後記の反応式図に関連する)臥について
の推定構造は1aであった。1aの CNMRスイクト
ルに基づいて、この構造が指定される。1&とジアゾメ
タンの反応によりメチルエステル1bが得られ、これは
HNMRおよびgIマススペクトルにより同定される。
”CNMRおよびFABマススペクトルに基づいて旧の
推定構造は2であった。2の水素添加によりデカ上1口
誘導体3aが生成し、これをジアゾメタンと反応させる
ことにより5bを与えるがこれは以前にすでに別のルー
トでモエノマイシンAから得られたものである。2 (
MB)を酵素によって1 a (MA)に転換すること
ができたということは提唱した構造に矛盾がないことを
支持するものである。
推定構造は2であった。2の水素添加によりデカ上1口
誘導体3aが生成し、これをジアゾメタンと反応させる
ことにより5bを与えるがこれは以前にすでに別のルー
トでモエノマイシンAから得られたものである。2 (
MB)を酵素によって1 a (MA)に転換すること
ができたということは提唱した構造に矛盾がないことを
支持するものである。
実験の説明
1a:
”CNlv[R(10Q、6MHz 、 CD5OD
) : モx/’y/ −A/部分:δ=67.5(C
−1)、123.5(C−2)、14t6および141
.8(C−3およびC−7)、32.3および32.5
(C−4およびC−5)、126.7((:’−6)、
35.9(c−8)、4α9(C−9)、5CJ−7(
C−10)、151.1(C−11)、33.4(c−
12)、122.7(C−13)、137.3(C−1
4)、s6.4(c−1s)、27.7 (C−16)
、125.3(C−17)、1!12.2(C−18)
、25.9(C−19)、17.8(C−20)、16
.1(C−21)、109.2(C−22)、27.3
(C−23お!びC−24)、23J(C−25)。
グリセリン酸部分:δ=175.9(c−1)、80.
+5(C’−2)、64.1 (cl)。
) : モx/’y/ −A/部分:δ=67.5(C
−1)、123.5(C−2)、14t6および141
.8(C−3およびC−7)、32.3および32.5
(C−4およびC−5)、126.7((:’−6)、
35.9(c−8)、4α9(C−9)、5CJ−7(
C−10)、151.1(C−11)、33.4(c−
12)、122.7(C−13)、137.3(C−1
4)、s6.4(c−1s)、27.7 (C−16)
、125.3(C−17)、1!12.2(C−18)
、25.9(C−19)、17.8(C−20)、16
.1(C−21)、109.2(C−22)、27.3
(C−23お!びC−24)、23J(C−25)。
グリセリン酸部分:δ=175.9(c−1)、80.
+5(C’−2)、64.1 (cl)。
CzsHa60a (446,6)
1b:
1aを■povex 50 (H+型)を用いて水溶液
中でH+型に転換した。1a(H型、18.5M9.0
.04ミリモル)をメタノール(6d)に溶解し、モし
て0℃で過剰のエーテル性ジアゾメタン溶液を加えた。
中でH+型に転換した。1a(H型、18.5M9.0
.04ミリモル)をメタノール(6d)に溶解し、モし
て0℃で過剰のエーテル性ジアゾメタン溶液を加えた。
反応混合物を0℃で2時間そして20℃で12時間維持
し、次いで蒸発乾固した。カラムクロマトグラフィー(
52の51o2 、石油エーテル/酢酸エチル2:1)
により1b(3■)が得られた。
し、次いで蒸発乾固した。カラムクロマトグラフィー(
52の51o2 、石油エーテル/酢酸エチル2:1)
により1b(3■)が得られた。
’HNMR(80MHz 、 CDC23’) :δ=
0.96 (s 、 6H。
0.96 (s 、 6H。
CHg−23およびcH3−24)、161(s、6H
)、+68(s、3H)、+73(s、5H) (4X
CH5)、1.90〜2.12(アリルIs)、2.6
2(ブロードd 、J=7Hz。
)、+68(s、3H)、+73(s、5H) (4X
CH5)、1.90〜2.12(アリルIs)、2.6
2(ブロードd 、J=7Hz。
CH2−12)、5.78 (8、0CH5)、!L6
0〜4.30 (OCH3および0CT(シグナル)、
4.62 (ブa −)’ s 、 CH2−22)、
4.87〜5.47 (オレフィン性Hs)。−C29
H480a(460,7>、MS : m/z f’A
=460 (α03)、271(10)、230(1
9)、199(68)、43(100)。
0〜4.30 (OCH3および0CT(シグナル)、
4.62 (ブa −)’ s 、 CH2−22)、
4.87〜5.47 (オレフィン性Hs)。−C29
H480a(460,7>、MS : m/z f’A
=460 (α03)、271(10)、230(1
9)、199(68)、43(100)。
2:
13CNMR(10o、6yz 、 D20 ) :モ
ーc/シ/−/L/部分:δ=68.6(C−1)、1
24.5(C−2)、142.9(c−3)、34.6
(C−4)、34.0 (C−5、C−10)、12s
、1(c−6)、145.6(C−7)、57.8(C
−8)、44.1(C−9)、15t4(C−11)、
37.2 (C−12)、123.5(C’−13)、
138.3(C−14)、42.2(C−15)、29
.1(C−16)、126.9(C−17)、133.
1(C−18)、28.0(C−19)、19.9 (
C’ −20)、18.2(C−21)、11 +2(
C−22)、29.7(C−23,24)、25.9(
C−25)。グリセリ/酸部分:δ=179.0(C−
1)、8t8(C−2)、68.6(c−3)。−〇2
11HJ707F(52&7)、FAB−MS (マト
リックス: pMso/グリセロール): m/z=6
15 (M−5H+4Na)”、593 (M−2H+
3Na)”、571(M−H+2N&)”、492.2
67.251,185.165.143.115゜ 3a: 2(14,9■、28.3マイクロモル)およびPt、
02(4g9)を通常の条件下H2雰囲気下でメタノー
ル(3ゴ)および酢酸(50μl)中3日間攪拌した。
ーc/シ/−/L/部分:δ=68.6(C−1)、1
24.5(C−2)、142.9(c−3)、34.6
(C−4)、34.0 (C−5、C−10)、12s
、1(c−6)、145.6(C−7)、57.8(C
−8)、44.1(C−9)、15t4(C−11)、
37.2 (C−12)、123.5(C’−13)、
138.3(C−14)、42.2(C−15)、29
.1(C−16)、126.9(C−17)、133.
1(C−18)、28.0(C−19)、19.9 (
C’ −20)、18.2(C−21)、11 +2(
C−22)、29.7(C−23,24)、25.9(
C−25)。グリセリ/酸部分:δ=179.0(C−
1)、8t8(C−2)、68.6(c−3)。−〇2
11HJ707F(52&7)、FAB−MS (マト
リックス: pMso/グリセロール): m/z=6
15 (M−5H+4Na)”、593 (M−2H+
3Na)”、571(M−H+2N&)”、492.2
67.251,185.165.143.115゜ 3a: 2(14,9■、28.3マイクロモル)およびPt、
02(4g9)を通常の条件下H2雰囲気下でメタノー
ル(3ゴ)および酢酸(50μl)中3日間攪拌した。
触媒をろ去し次いで蒸発させることによリ5 a (1
3,5WQ)が得られた。
3,5WQ)が得られた。
−C28H5707P C536,7)、FAB−MS
(マトリックス:DMSo/グリセロール:m/z=
625(M−3H+4Na)”603 (M−2H+3
Na)”、581 (W、−H+2Na)”、558(
M−H+Na)”、514.500,498,462,
404゜362.340,298,288,266.1
86.164゜142.115.93゜ 3b: すべての酸性基を遊離させるために3aをイオン交換体
(Dowex 50 、H+型)を用いて水溶液中処理
した。樹脂をろ去し、次いで溶液を凍結乾燥した。この
よ517Cして処理した試料865■(15,9マイク
ロモル)をメタノール(2Nl)中溶解した。過剰のエ
ーテル性・ジアゾメタン溶液な0℃で加えた。混合物を
0℃で2時間そして20℃で12時間放置した。蒸発さ
せカラムクロマトグラフィー(5fのSiO2,石油エ
ーテル/酢酸エチル1:1)Kより3b(4,0ダ)が
得られた。
(マトリックス:DMSo/グリセロール:m/z=
625(M−3H+4Na)”603 (M−2H+3
Na)”、581 (W、−H+2Na)”、558(
M−H+Na)”、514.500,498,462,
404゜362.340,298,288,266.1
86.164゜142.115.93゜ 3b: すべての酸性基を遊離させるために3aをイオン交換体
(Dowex 50 、H+型)を用いて水溶液中処理
した。樹脂をろ去し、次いで溶液を凍結乾燥した。この
よ517Cして処理した試料865■(15,9マイク
ロモル)をメタノール(2Nl)中溶解した。過剰のエ
ーテル性・ジアゾメタン溶液な0℃で加えた。混合物を
0℃で2時間そして20℃で12時間放置した。蒸発さ
せカラムクロマトグラフィー(5fのSiO2,石油エ
ーテル/酢酸エチル1:1)Kより3b(4,0ダ)が
得られた。
’HNMR(8020MHz 、 CDCl2 ) :
δ=175(s。
δ=175(s。
OCH3および2d 、 3.T、、 =10および1
2Hz。
2Hz。
P(OCH3) 2)、3.20〜4.40 (OCH
2およびOCH多重線)、−C13H6s07P(57
8,8)、MS : m / ze’A= 563(0
,1、M−cHx)、519(1、M−COOCH3)
、452(1、M−(CH30) 2F(0)OH)、
381(3、M−C14H29,25/f−ヒPロモエ
ノシノール部分のC−8およびC−9の間の結合の分裂
)、229(8、a)、212(6、b)、127(2
0)、57(100)。
2およびOCH多重線)、−C13H6s07P(57
8,8)、MS : m / ze’A= 563(0
,1、M−cHx)、519(1、M−COOCH3)
、452(1、M−(CH30) 2F(0)OH)、
381(3、M−C14H29,25/f−ヒPロモエ
ノシノール部分のC−8およびC−9の間の結合の分裂
)、229(8、a)、212(6、b)、127(2
0)、57(100)。
実施例 7
開裂生成物の抗生作用活性
抗菌活性を決定するためIc Mueller−Hin
ton寒天を用いて寒天希釈試験を行なった。(Ant
、1bto−tles in Lab、oratory
Medicine、 V、 Lorian、 Ed、
。
ton寒天を用いて寒天希釈試験を行なった。(Ant
、1bto−tles in Lab、oratory
Medicine、 V、 Lorian、 Ed、
。
Baltimore (1986年)1〜10頁)。
最小阻害濃度(μ?/ld )
Str、 5taph、 E、 col
ipyogenes aureus77
5r13 DC2)100
)100 :>1003.125 25
)100>1on >1oo
>1o。
ipyogenes aureus77
5r13 DC2)100
)100 :>1003.125 25
)100>1on >1oo
>1o。
が開示したアッセイ
ビf中間体を用いるIzaki
(J、 Biol、 Chem、 243、年))Kよ
り行なわれた。
り行なわれた。
このことよりモエノマイシンA
がトランスグリコシラーゼ反応を
そして開裂生成物MBがこの酵素な
ることがわかった。
5180〜3192(1968
(20μf/l/ )
52.7%阻害し、
32.9%凪害す
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)バチルス種DSM4675その変異体および突然変
異体。 2)式( I ) ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) で表わされる化合物。 3)式(II) ▲数式、化学式、表等があります▼(II) (式中、R^1は水素またはホスホノ基であり、そして
R^2は直鎖または分枝鎖の飽和または不飽和の(C_
5〜C_5_5)−アルキル基である)で表わされる化
合物。 4)アルキル基が炭素原子10〜30の鎖長を有する請
求項3記載の化合物。 5)アルキル基が炭素原子20〜25の鎖長を有する請
求項3または4記載の化合物。 6)下記の特徴、すなわち ホスホグリコシド結合におけるホスホグリ コリピド抗生物質の開裂 最適pH8.0〜8.5 最適温度45〜55℃ Km値4〜10μモル(基質としてのモエノマイシンA
に基づいて) を有するモエノマイシナーゼ。 7)請求項3記載の化合物を脱リン酸化し、37℃より
上の温度で、そしてpHが5より低いpHで減少する時
不活性化されるバチルス種DSM4675由来の酵素。 8)モエノマイシンAをバチルス種DSM4675また
はそれから得られた酵素単離物とインキュベートするこ
とからなる請求項2記載の式( I )の化合物の製造方
法。 9)ホスホグリコリピド抗生物質をバチルス種DSM4
675またはそれから得られた酵素単離物とインキュベ
ートすることからなる請求項3記載の式(II)の化合物
の製造方法。 10)インキユベーシヨンがpH5.5〜8.5で行な
われる請求項8または9記載の方法。
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