JP2863557B2 - 新規なモエノマイシン分解微生物および分解方法 - Google Patents

新規なモエノマイシン分解微生物および分解方法

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Description

【発明の詳細な説明】 モエノマイシンＡ（図式参照）は家畜栄養物に用いら
れるフラボマイシ の主成分である。他の公知のホスホ
グリコリピド抗生物質のようにそれは細菌細胞壁のペプ
チドグリカン骨格の生合成を阻害する。より精密な調査
により大腸菌のペニシリン−結合タンパク質1bのグリコ
シル転移反応がこれらの物質によつて阻害されることが
示された。〔Huber G.,Antibiotics,V−１、135〜153頁
（1979年）〕今までのところ、ホスホグリコリピド抗生
物質の特定の酵素によるまたは微生物による分解におけ
る試みは成功していない。
予想外なことに今般ホスホグリコリピド抗生物質を開
裂して所定の末端生成物とすることのできる新規なバチ
ルス種がストレプトミセスガーナエンシス（Streptomyc
es ghanaensis）を用いるフラボマイシンの製造のため
の汚染発酵槽から単離された。これらの末端生成物は抗
生作用活性を有し、または新規なトランスグリコシラー
ゼ阻害剤の合成における基礎単位として使用することが
できる。
すなわち、本発明は 1. バチルス種DSM4675その変異体および突然変異体。
2. 式（Ｉ） で表わされるモエノマイシンＡの開裂生成物。
3. 一般式 （式中、R1は水素またはホスホノ基〔−PO（OH）２〕で
あり、そしてR2は分枝鎖または非分枝鎖の飽和または不
飽和の（C5〜C55）−アルキル基である）で表わされる
ホスホグリコリピド抗生物質の開裂生成物。
4. その助けによりホスホグリコリピド抗生物質がホス
ホグリコシド結合で開裂され、または３に記載の開裂生
成物がモノホスフエートエステル結合で開裂される酵
素。
5. ホスホグリコリピド抗生物質をバチルス種DSM4675
とともにインキユベートすることからなる２および３に
記載の分解生成物の製造方法。
6. ２および３に記載の物質のトランスグリコシラーゼ
阻害剤の合成における構築単位として、または抗生作用
活性を有する物質としての使用。
本発明を以後詳細に特に好ましい実施態様について述
べる。さらに特許請求の範囲において定義づける。バチ
ルス種は1988年６月23日西ドイツのブラウンシユヴアイ
クにおけるDeutsche Sammlung von Mikroorganismen un
d Zellkulturen GmbH（German Microorganism and Cell
Culture Collection）でブダペスト条約の規定に基づ
いて番号DSM4675とともに供託された。該菌株の特徴は
下記のものでありうる。
1. バチルス種DSM4675の分類特性 Ａ） 形態学 運動性の桿状体;5μｍまでの長さ；幾らかは短鎖 末端胞子（terminal spore）；膨張した胞子嚢 グラム陽性 Ｂ） 各種培地における成長（28℃;48時間） 1. 抗生物質培地３（Difco） １〜2mm径の粗い浅裂のコロニー 2. ルリアブイヨン（バクトトリプトン10g/；バクト
イースト5g/;NaCl5g/） ２〜3mm径のなめらかで光沢のある円いコロニー；不
透明 3. 栄養ブロス（Difco） 不規則な縁を有する白色で光沢のあるコロニー 4. クリステンセン尿素寒天（Difco） 成長陽性 5. マツコンキー寒天（Difco） 成長陽性 6. BROLAC寒天（ラクトース）（Difco） 成長陽性 7. シモンズクエン酸塩寒天（Difco） 成長陰性 8. ペプトン／肉エキス培地（Difco）中７または10％N
aClの存在下では成長しない。
Ｃ） 生理学的特性 1. オキシダーゼ ＋ 2. カタラーゼ ＋ 3. 溶血反応 − 4. アミノペプチダーゼ − 5. 硝酸還元 − 6. フエニルアラニンデアミナーゼ − 7. 成 長 30℃ ＋ 40℃ ＋ 50℃ ＋ 8. 嫌気性成長 固 体 − 液 体 − 9. グルコースからのガス生成 − 10. インドール生成 − 11. アルギニンジヒドラーゼ − 12. 尿素分解 − 13. エスクリン加水分解 ＋ 14. ゼラチン分解 − 15. β−ガラクトシダーゼ ＋ 16. リシンデカルボキシラーゼ − 17. オルニチンデカルボキシラーゼ − 18. H2S生産 − 19. トリプトフアンデアミナーゼ − 20. アルカリホスフアターゼ − 21.フオゲス−プロスカウエル反応 − Ｄ） 炭水化物の発酵 分類特性を考慮し、「Bergey′s Manual of Systemat
ic Bacteriology」（第２巻、Williams ＆ Wilkins発
行、ボルテイモア、1986年）によれば該菌株はバチルス
属と指定できる。その種を決定するためにBacilus mace
rans,circulans,lentus,alcalophilus,stearothermophi
lus,licheniformis,polymyxaおよびfastidiosusのタイ
プカルチヤーの平行比較実験を行なつた。すべての比較
菌株はバチルス種DSM4675と明確に異なつた性質を示し
た。これらの菌株は何れもホスホグリコリピド抗生物
質、特にモエノマイシンＡを分解することができなかつ
た。このことから菌株DSM4675は新しい種であることが
結論づけられる。
本発明は各場合において、さらに知られているように
自然に発生し、または物理的動因、例えば紫外線または
Ｘ線のような照射線もしくは化学的突然変異誘発物質、
例えばエチルメタンスルホネート（EMS）、Ｎ−メチル
−Ｎ′−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（MNNG）また
は２−ヒドロキシ−４−メトキシ−ベンゾフエノン（MO
B）を用いて処理することにより発生する突然変異体お
よび変異体に関する。
バチルス種DSM4675の好気性発酵用炭素源として好適
で好ましいものは同化できる炭水化物およびグルコー
ス、ラクトースまたはマンニトールのような糖アルコー
ル、並びに麦芽エキスのような炭水化物含有天然産物で
ある。好適で好ましい窒素含有栄養物はアミノ酸、ペプ
チドおよびタンパク質並びにその分解生成物、例えばペ
プトンまたはトリプトンさらに肉エキス、例えばトウモ
ロコシ、豆、大豆またはワタの粉砕された種子、アルコ
ール製造の際の蒸留残留物、ミートミールまたはイース
トエキス並びにアンモニウム塩および硝酸塩である。栄
養物溶液はさらに付加的な無機塩として、例えばアルカ
リ金属またはアルカリ土類金属、鉄、亜鉛およびマンガ
ンの塩化物、炭酸塩、硫酸塩またはリン酸塩を含有して
もよい。
本発明の微生物の成長および分解反応に必要な酵素の
生成は、特に炭素および窒素源としてコーンスターチ、
大豆ミール、スクロース、グリセロール、ペプトンおよ
び／またはコーンスチープを含有する栄養培地において
良好である。
発酵は好気的に行なわれ、すなわち、例えば振とうフ
ラスコまたは発酵槽中空気または酸素を取り入れて振と
うまたは撹拌しながら液内で培養する。発酵はおよそ室
温から50℃の範囲の温度、好ましくは約35〜37℃で行な
うことができる。培養時間は一般に24〜48時間である。
このようにして得られたバチルスDSM4675の培養物ま
たはその調製物は、ホスホグリコリピド抗生物質を開裂
させるのに使用することができる。これらのものには特
にモエノマイシン群の抗生物質、例えばホリポマイシン
1)、プラジノマイシ2)、ジウマイシン（マカルボマイシ
ン）3)、エサンコマイシン、プレノマイシンおよびタイ
コマイシンそして相応じて官能可されたホスホグリセリ
ン酸を有する他の構造的に関連のある物質が包含され
る。
〔１）S.Takahashiら、Tetrahedron Lett.1983,499 ２）F.L.Weisenbornら、Nature213,1092（1967） ３）S.Takahashiら、J.Antibiot.26,542（1973）〕 酵素は特に好ましく、モエノマイシン例えばフラボマ
イシンを分解するのに用いられる。
バチルス細胞を用いた場合、後者を例えばセチルトリ
メチルアンモニウム塩を用いて浸透化することが有利で
ある。同様にバチルス細胞からの蛋白質単離物または例
えば塩析またはクロマトグラフイーにより部分的に濃縮
された酵素抽出物またはもちろん精製された酵素を用い
ることができる。さらに酵素および細胞を自由または固
定化形態で使用することができる。
酵素分解を例としてモエノマイシンＡを用いて次の図
式で説明する。
この図式より開裂生成物を製造するためには２つの酵
素が必要であることが明らかである。本発明者わがモエ
ノマイシナーゼと呼んでいる酵素がホスホグリコシド結
合を開裂するのに必要とされる。モエノマイシナーゼは
バチルス種DSM4675の細胞質膜に随伴され、それ自体既
知の酵素分離法により微生物から得られる。
モエノマイシナーゼの最適なpH値は約8.0〜8.5、特に
8.2〜8.3である。酵素の最適な温度は45〜55℃、特に49
〜51℃である。モエノマイシナーゼのKm値はモエノマイ
シンＡについて４〜10ミリモルである。
２つの開裂生成物が得られる。開裂生成物Ｉはホスホ
グリコリピド抗生物質の糖成分からなる。一般式（II） （式中、R1はホスホノ基であり、R2は（C5〜C55）−ア
ルキル基、好ましくは（C10〜C30）−アルキル基、特に
（C20〜C25）−アルキル基（各々は分枝鎖または非分枝
鎖の飽和または不飽和の好ましくは分枝鎖で不飽和の基
でありうる）である） で表わされる開裂生成物もまた得られる。
モエノマイシンは好ましく基質として用いられ、従つ
てその結果得られる開裂生成物は化合物MC並びに化合物
MBおよびMAに相当する物質である。（反応式図を参照） 別の酵素がモエノマイシナーゼを用いてのインキユベ
ーシヨンにより得られる一般式（II）（式中R1は水素で
ある）のホスホグリセリン酸リピドの脱ホスホリル化の
ために必要であり、同じく本発明の微生物から得ること
ができる。本発明においてこの酵素をMBアーゼと呼ぶ。
MBアーゼは同様にしてそれ自体既知の方法によりこの微
生物から分離することができる。例えば、細胞を超音波
で分裂し、その結果得られた粗抽出物を硫酸アンモニウ
ム分別（25〜55％飽和）または超遠心分離の何れかによ
りさらに濃縮する。次いでこれを透析する。モエノマイ
シナーゼおよびMBアーゼを最後にクロマトグラフイーに
より分離する。
MBアーゼは37℃より高い温度で、並びにpHがpH5より
低い酸性pH範囲内である時だんだん不活性化される。
モエノマイシンおよびホスホグリコリピド抗生物質の
開裂は上述したように全細胞または酵素単離物を用いて
行なうことができる。
反応は一般にpH約5.5〜8.5、好ましくはpH7〜８で水
性媒体中行なわれる。反応時間は一般に５〜48時間、好
ましくは約24時間である。反応温度は４〜60℃、好まし
くは30〜37℃である。基質濃度は0.1〜５％、好ましく
は１〜２％の範囲内がよい。
反応が上述よりも高いまたは低い温度またはpH値で行
なうこともできる。しかしながらその場合モエノマイシ
ナーゼはより活性が低い。
モエノマイシンＡから得られる反応生成物は図に描か
れている物質MBおよびMCである。生成物MAはMBをMBアー
ゼを用いて30〜37℃、好ましくは35〜37℃で、そしてpH
5.5〜8.5、好ましくはpH6〜８で約24時間にわたつてイ
ンキユベーシヨンすることにより得られる。
該反応生成物は抗生物質（例えばMB）としてまたはト
ランスグリコシラーゼ阻害剤の合成における基礎単位
（例えばMAおよびMC）として使用することができる。
本発明を実施例により更に詳細に説明する。特に記載
がなければパーセント値は重量に基づくものである。
実施例 １ バチルス種DSM4675菌株の維持 バチルス種DSM4675を下記の図形栄養培地（培地１）
上で維持する： バクトトリプトン（Difco） 10g/ イーストエキス（Difco） 5g/ Nacl 5g/ 寒 天 15g/ pH7.2 培地を試験管に振り分け、121℃で30分間滅菌し、次
いで冷却し培養物を植え付け、そして37℃で２〜３日イ
ンキユベートする。
成長培養物を洗い出して下記のモエノマイシン含有主
培養物（培地２）のための接種物を得る。
コーンスターチ 40 g/ 大豆ミール 35 g/ スクロース 10 g/ CaCO3 8 g/ コーンスチープ 4 g/ CoSO4 20mg/ Genapol（アルキルポリグリコールエステル） 5ml/ モエノマイシンＡ 3 g/ （滅菌ろ過されたもの） pH7.6 それぞれこの培地を30ml含有する300mlのエルレンマ
イヤーフラスコに植え付け、次いで37℃、190rpmで８〜
48時間インキユベートする。培養ろ液の薄層クロマトグ
ラフイー分析は化合物MA、MBおよびMCがモエノマイシン
の開裂生成物として検出可能であり、そして反応終了近
く用いたモエノマイシンが完全に消滅することを示す。
実施例 ２ 細胞を含有しない抽出物の製造 細胞を含有しない抽出物を製造するためにバチルス種
DSM4675を発酵槽中で培養する。このため寒天プレート
の細胞を洗い出して前培養物（２のエルレンマイヤー
フラスコ中、フラボマイシンを含まない500mlの培地
２）のための10mlの接種物を得、次いでこれを37℃、19
0rpmで24時間インキユベートする。
９の培地３を含む12の実験室用発酵槽が主培養段
階で使用される： ペプトン 12.5 g/ グリセロール 20.0tg/ クエン酸塩 2.0 g/ K2HPO4 1.5 g/ MgSO4×7H2O 0.5 g/ FeCl3×6H2O 0.04g/ デスモフエン（プロピレングリコール） 5.0ml/ pH6.8 これに500mlの前培養物を植え付け、次いで37℃、300
rpmそして0.5vvmの曝気速度で24時間インキユベーシヨ
ンする。
成長培養物を遠心分離し、細胞ペーストをリン酸カリ
ウム緩衝剤（pH7.0）50mM（1gの湿潤細胞＋2mlの緩衝
剤）中で再懸濁する。次いで細胞を超音波すなわちFren
ch Press またはDyno Mill を用いて分裂し、その結
果得られる粗抽出物を転換のために使用する。
100μの粗抽出物、12mgのモエノマイシンおよび900
μのリン酸カリウム緩衝剤（pH8.0）50mMを含有する
試験混合物において７〜24時間内37℃で50％の用いられ
た基質の分解が行なわれる。見い出された反応生成物は
MA、MBおよびMCである。
実施例 ３ モエノマイシンＡの調製用転換 調製用転換はリン酸カリウム緩衝剤（pH8.0）50mM、8
00mlの粗酵素抽出物および100gのモエノマイシンＡを含
有する12の発酵槽中、37℃、100rpmで行なわれる。転
換過程はTLCで追跡する。全体の反応混合物を８〜48時
間後凍結乾燥する。モエノマイシン分解は一般に40〜60
％である（TLCでのUV分析）。その結果得られた反応生
成物はMA、MBおよびMCである。
実施例 ４ 分解生成物の製造 酵素転換からの凍結乾燥混合物100gを２の水に溶解
し、そして各々２の酢酸エチルを用いて２回抽出し
た。この場合完全な相分離とするために遠心分離が必要
である。合一した有機抽出物を硫酸ナトリウム上で乾燥
し、ろ過し、そして蒸発乾固した。0.4g（0.4％）の暗
い褐色の油状物が得られ、モリブデートリン酸／硫酸セ
リウム（IV）発色剤（以下、PMS試薬と省略する）でス
プレーしたシリカゲル（Merck60 F254アルミニウムTLC
シート）上ｎ−ブタノール／酢酸／水＝3/1/2系での薄
層クロマトグラフイーによりその主成分がMAであること
がわかつた（Rf値＝0.85）。
残留の水性相を次いで各回２のｎ−ブタノールで２
回抽出した。再び相を分離させるために遠心分離が必要
であつた。次いで合一したブタノール相をできるだけ濃
縮しそして残留物を少しの水に溶解し最終的に凍結乾燥
した。7.4g（7.4％）の黄色粉末が得られ、薄層クロマ
トグラフイー（上述の条件および同じ検出を用いる）に
よる分析から主成分がMBであることがわかつた（Rf＝0.
52）。
このようにして非極性物質の除去された水性相を凍結
乾燥した。これから得られる残留物の量は76.9gであつ
た（総量が85％での76.9％）。薄層クロマトグラフイー
によりこの淡黄色の粉末はMC（Rf＝0.1）と称する極性
の主物質、残留するモエノマイシンＡおよび副生成物か
ら成ることがわかつた。
このようにして得られる成分MA、MBおよびMCから成る
粗生成物をさらに下記のようにして精製した。
実施例 ５ ａ） 分解生成物MAの精製 400mgのMA粗生成物をpH7.5に調整した120gのシリカゲ
ル（Merck60、15〜40mcm）上のクロマトグラフイーに付
した（カラム物質をこの目的のために下記のようにして
前処理した：シリカゲルを500mlの2N HCl中１時間撹拌
し、次いで吸引しながらろ去しそして洗浄して中性とし
た。次に1N NaOHを用いてpHを7.5に調整しそして最後に
２の水および500mlのメタノールを用いての洗浄を行
なつた。このようにして前処理した物質を乾燥しそして
一晩120℃で活性化した）。クロロホルム／エタノール
＝1/1を溶離剤として用いた。物質を3mlの溶媒混合物中
カラムに充てんしそして各々2.5mlの216個のフラクシヨ
ンを集めた。TLC分析（実施例１と同じTLCプレートおよ
び検出、カラム溶離剤と同じ溶媒系）を用いて、フラク
シヨン115〜175を合一し、硫酸ナトリウム上乾燥しそし
て最後に蒸発乾固した。27mgの分光学的に純粋なMAが得
られた。
ｂ） 分解生成物MBの精製 抽出により得られる3.1gのMB−含有粗生成物を実施例
２で説明した方法を用いてpH7.5に調整した500gのシリ
カゲル上のクロマトグラフイーに付した。中圧クロマト
グラフイーシステム（MPLC）を用いて、クロロホルム／
エタノール／水＝4/7/1.5を流速10ml/分および圧力２〜
５バールで溶離するために用いた。最初の600mlの流出
の後各々10mlの220個のフラクシヨンを集め、TLCに基づ
いて合一した。MBを含有する混合されたフラクシヨンの
他にフラクシヨン90〜170を蒸発させ水に溶解しそして
凍結乾燥した後1.28gの純粋なMBが得られた。
ｃ） 分解生成物MCの精製 抽出物の水性相からの2.2gの極性粗生成物を同様に圧
力下でのクロマトグラフイー（MPLC）に付した。pHが7.
5のシリカゲル500gを用い（実施例２の方法）、そして
溶離剤として酢酸エチル/i−プロパノール／水＝4/5/5
を用いた。充てんする量を15gのシリカゲルとともにメ
タノール中で懸濁し溶媒を留去しそしてこのようにして
処理した保持体をプレカラムに導入し、次いで２〜４バ
ールの圧力下5ml/分の流速で溶離した。最初の940mlの
流出の後各各10mlの250個のフラクシヨンを分別した。
フラクシヨンをPMS発色剤を用いる酢酸エチル/i−プロ
パノール／水＝1/1/1系での薄層クロマトグラフイーお
よび254nmでのUV吸収の検出により試験を行ない。そし
て合一した。混合されたフラクシヨンの他にフラクシヨ
ン120〜190を濃縮して水性相とし次いで凍結乾燥して1.
3gの純粋なMCを得、これを分光分析した。
実施例 ６ モエノマイシンＡから酵素分解により得られる生成物MA
およびMBの構造の解明 （構造の番号は後記の反応式図に関連する） MAについての推定構造は1aであつた。1aの13C NMRス
ペクトルに基づいて、この構造が指定される。1aとジア
ゾメタンの反応によりメチルエステル1bが得られ、これ
は1H NMRおよびEIマススペクトルにより同定される。
13C NMRおよびFABマススペクトルに基づいてMBの推定
構造は２であつた。２の水素添加によりデカヒドロ誘導
体3aが生成し、これをジアゾメタンと反応させることに
より3bを与えるがこれは以前にすでに別のルートでモエ
ノマイシンＡから得られたものである。２（MB）を酵素
によつて1a（MA）に転換することができたということは
提唱した構造に矛盾がないことを支持するものである。
実験の説明 1a: 13C NMR（100.6MHz,CD3OD）：モエノシノール部分：
δ＝67.5（Ｃ−１）、123.5（Ｃ−２）、141.6および14
1.8（Ｃ−３およびＣ−７）、32.3および32.5（Ｃ−４
およびＣ−５）、126.7（Ｃ−６）、35.9（Ｃ−８）、4
0.9（Ｃ−９）、30.7（Ｃ−10）、151.1（Ｃ−11）、3
3.4（Ｃ−12）、122.7（Ｃ−13）、137.3（Ｃ−14）、3
6.4（Ｃ−15）、27.7（Ｃ−16）、125.3（Ｃ−17）、13
2.2（Ｃ−18）、25.9（Ｃ−19）、17.8（Ｃ−20）、16.
1（Ｃ−21）、109.2（Ｃ−22）、27.3（Ｃ−23およびＣ
−24）、23.8（Ｃ−25）。グリセリン酸部分：δ＝175.
9（Ｃ−１）、80.6（Ｃ−２）、64.1（Ｃ−３）。
C28H46O4（446.6） 1b: 1aを Dowex50（H+型）を用いて水溶液中でH+型に転
換した。1a（H+型、18.5mg、0.04ミリモル）をメタノー
ル（3ml）に溶解し、そして０℃で過剰のエーテル性ジ
アゾメタン溶液を加えた。反応混合物を０℃で２時間そ
して20℃で12時間維持し、次いで蒸発乾固した。カラム
クロマトグラフイー（5gのSiO2、石油エーテル／酢酸エ
チル2:1）により1b（3mg）が得られた。
1H NMR（80MHz,CDCl3）：δ＝0.96（s,6H,CH3−23お
よびCH3−24）、1.61（s,6H）、1.68（s,3H）、1.73
（s,3H）（４×CH3）、1.90〜2.12（アリルHs）、26.2
（ブロードd,J＝7Hz,CH2−12）、3.78（s,OCH3）、3.60
〜4.30（OCH2およびOCHシグナル）、4.62（ブロードs,C
H2−22）、4.87〜5.47（オレフイン性Hs）。−C29H48O4
（460.7）、MS:m/z（％）＝460（0.03）、271（10）、2
30（19）、199（68）、43（100）。
2: 13C NMR（100.6MHz,D2O）：モエノシノール部分：δ
＝68.6（Ｃ−１）、124.5（Ｃ−２）、142.9（Ｃ−
３）、34.6（Ｃ−４）、34.0（Ｃ−5,C−10）、128.1
（Ｃ−６）、143.6（Ｃ−７）、37.8（Ｃ−８）、44.1
（Ｃ−９）、151.4（Ｃ−11）、37.2（Ｃ−12）、123.5
（Ｃ−13）、138.3（Ｃ−14）、42.2（Ｃ−15）、29.1
（Ｃ−16）、126.9（Ｃ−17）、133.1（Ｃ−18）、28.0
（Ｃ−19）、19.9（Ｃ−20）、18.2（Ｃ−21）、111.2
（Ｃ−22）、29.7（Ｃ−23,24）、25.9（Ｃ−25）。グ
リセリン酸部分：δ＝179.0（Ｃ−１）、81.8（Ｃ−
２）、68.6（Ｃ−３）。−C28H47O7P（526.7）、FAB−M
S（マトリツクス:DMSO/グリセロール）:m/z＝615（Ｍ−
3H＋4Na）＋、593（Ｍ−2H＋3Na）＋、571（Ｍ−Ｈ＋2N
a）＋、492、267、231、185、165、143、115。
3a: ２（14.9mg、28.3マイクロモル）およびPtO2（4mg）
を通常の条件下H2雰囲気下でメタノール（3ml）および
酢酸（50μ）中３日間撹拌した。触媒をろ去し次いで
蒸発させることにより3a（13.5mg）が得られた。
−C28H57O7P（536.7）、FAB−MS（マトリツクス:DMSO
/グリセロール:m/z＝625（Ｍ−3H＋4Na）＋、603（Ｍ−
2H＋3Na）＋、581（Ｍ−Ｈ＋2Na）＋、558（Ｍ−Ｈ＋N
a）＋、514、500、498、432、404、362、340、298、28
8、266、186、164、142、115、93。
3b: すべての酸性基を遊離させるために3aをイオン交換体
（Dowex50、H+型）を用いて水溶液中処理した。樹脂を
ろ去し、次いで溶液を凍結乾燥した。このようにして処
理した試料8.5mg（15.9マイクロモル）をメタノール（2
ml）中溶解した。過剰のエーテル性ジアゾメタン溶液を
０℃で加えた。混合物を０℃で２時間そして20℃で12時
間放置した。蒸発させカラムクロマトグラフイー（5gの
SiO2、石油エーテル／酢酸エチル1:1）により3b（4.0m
g）が得られた。
1H NMR（80 20MHz,CDCl3）：δ＝3.75（s,OCH3および
2d,3JH,P＝10および12Hz,P（OCH3）２）、3.20〜4.40
（OCH2およびOCH多重線）、−C13H63O7P（578.8）、MS:
m/z（％）＝563（0.1、Ｍ−CH3）、519（１、Ｍ−COOCH
3）、452（１、Ｍ−（CH3O）2P（Ｏ）OH）、381（３、
Ｍ−C14H29、25パーヒドロモエノシノール部分のＣ−８
およびＣ−９の間の結合の分裂）、229（８、ａ）、212
（６、ｂ）、127（20）、57（100）。
実施例 ７ 開裂生成物の抗生作用活性 抗菌活性を決定するためにMueller−Hinton寒天を用
いて寒天希釈試験を行なつた。（Antibio−tics in Lab
oratory Medicine,V.Lorian,Ed.,Baltimore（1986年）
１〜10頁）。
実施例 ８ トランスグリコシラーゼアツセイ 開裂生成物によるペプチドグリカン−糖鎖の重合の阻
害は、E.coli K12の細胞膜からのリピド中間体を用いる
Izakiが開示したアツセイ（J.Biol.Chem.243、3180〜31
92（1968年））により行なわれた。
このことよりモエノマイシンＡ（20μg/ml）がトラン
スグリコシラーゼ反応を52.7％阻害し、そして開裂生成
物MBがこの酵素を32.9％阻害することがわかつた。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 ＦＩ // Ｃ１２Ｎ 9/16 Ｃ１２Ｎ 9/16 Ｃ 9/99 9/99 (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ｃ１２Ｒ 1:07） (Ｃ１２Ｐ 7/42 Ｃ１２Ｒ 1:07） (Ｃ１２Ｐ 19/26 Ｃ１２Ｒ 1:07） (72)発明者 ゲールハルト・ザイベルト ドイツ連邦共和国デー‐6100ダルムシユ タツト．グレーザーヴエーク 21 (72)発明者 アーロイス・トウムルカ ドイツ連邦共和国デー‐6240ケーニヒシ ユタイン／タウヌス．ハイナーベルクヴ エーク 21 (72)発明者 ペーター・ヴエルツエル ドイツ連邦共和国デー‐4630ボーフム・ クローネン シユトラーセ10 (72)発明者 クルト・ホーベルト ドイツ連邦共和国デー‐4630ボーフム. プフアラー‐ハルベ‐シユトラーセ９

Claims (6)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】ホスホグリコリピド抗生物質におけるホス
    ホグリコシド結合の解裂能を有するバチルス属に属する
    菌株DSM4675、その変異体および突然変異体。
  2. 【請求項２】式（II） （式中、R1はホスホノ基であり、そしてR2は直鎖または
    分枝鎖の飽和または不飽和の（C5〜C55）−アルキル基
    である）で表わされる化合物。
  3. 【請求項３】アルキル基が炭素原子10〜30の鎖長を有す
    る請求項２記載の化合物。
  4. 【請求項４】アルキル基が炭素原子20〜25の鎖長を有す
    る請求項２または３記載の化合物。
  5. 【請求項５】ホスホグリコリピド抗生物質を前記バチル
    ス属に属する菌株DSM4675またはそれから得られた粗抽
    出物とインキュベートすることからなる請求項２記載の
    式（II）の化合物の製造方法。
  6. 【請求項６】インキュベーションがpH5.5〜8.5で行われ
    る請求項５記載の方法。
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