JPH0157A - 新規コリン誘導体及びそれを用いたコリンエステラ−ゼ活性測定法 - Google Patents
新規コリン誘導体及びそれを用いたコリンエステラ−ゼ活性測定法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
3.1 産業上の利用分野
本発明は一般式(I)
(式中Xはハロゲン原子を表わす)で表わされる新規コ
リン誘導体及びそれを鼠賀として用いることを特徴とす
るコリンエステラーゼ活性の測定法に関する。
リン誘導体及びそれを鼠賀として用いることを特徴とす
るコリンエステラーゼ活性の測定法に関する。
本発明の測定法は、コリンエステラーゼ活性を正確かつ
簡便に測定することができ、血清中のコリンエステラー
ゼを測定するための臨床検査用測定法として極めて有用
である。
簡便に測定することができ、血清中のコリンエステラー
ゼを測定するための臨床検査用測定法として極めて有用
である。
3.2 従来の技術
一般的(、例えば肝iI陣害を有する患者のff1Iv
4中のコリンエステラーゼ1lffは低下し、他方、例
えば腎障害を有する患者のコリンエステラーゼ濃度は上
昇することが知られている。従って、これら患者の血清
中のコリンエステラーゼ活性を測定することにより、こ
れら疾患の診断が可能であり、血清中のコリンエステラ
ーゼ活性を正確に測定できる測定法は臨床検査用に使用
し得る。
4中のコリンエステラーゼ1lffは低下し、他方、例
えば腎障害を有する患者のコリンエステラーゼ濃度は上
昇することが知られている。従って、これら患者の血清
中のコリンエステラーゼ活性を測定することにより、こ
れら疾患の診断が可能であり、血清中のコリンエステラ
ーゼ活性を正確に測定できる測定法は臨床検査用に使用
し得る。
従来、血清中のコリンエステラーゼ(以下CtlEと記
す)活性の測定法としては、合成基質を使用り°る秤々
の方法が報告され、また日常の臨床検査に実用化されて
いるものもある。それら測定法の例をあげると、ガス分
析法、pHメーター法、pH指示薬比色法、チオコリン
発色法、酵素法、UV法等がある。
す)活性の測定法としては、合成基質を使用り°る秤々
の方法が報告され、また日常の臨床検査に実用化されて
いるものもある。それら測定法の例をあげると、ガス分
析法、pHメーター法、pH指示薬比色法、チオコリン
発色法、酵素法、UV法等がある。
(2)、カス分析法[R,八−won; Pfluge
rs Arch、 Ge5Physio1.、233.
487 (1933) ]は合成基質としてアセチルコ
リンを用い、ChEのMA作用で生成した酢酸より炭酸
水素ナトリウムから発生する炭酸ガスを定量する方法で
ある。
rs Arch、 Ge5Physio1.、233.
487 (1933) ]は合成基質としてアセチルコ
リンを用い、ChEのMA作用で生成した酢酸より炭酸
水素ナトリウムから発生する炭酸ガスを定量する方法で
ある。
0、pHメーター法[H,0,Hichel:J、 L
ab、 &Cl1n、 led、、 34.1564
(1949) ]もガス分析払と同様に、合成基質とし
てアセデルコリンを用い、ChEの酵素作用によって生
じた酢酸によるONの変化をpHメーターで測定する方
法である。
ab、 &Cl1n、 led、、 34.1564
(1949) ]もガス分析払と同様に、合成基質とし
てアセデルコリンを用い、ChEの酵素作用によって生
じた酢酸によるONの変化をpHメーターで測定する方
法である。
(ODnm指示薬比色決はpHメーター法とは異なり、
合成IIとしてアセチルコリンを用い、ChEに゛より
生じた酢酸によるpHの変化を指示薬の分子吸光度によ
り測定する方法で、指示薬としてフェノールレッド[6
橋浩、柴田進;医学と生物学、2Ω、96(1951)
]、ブロムチモールブルー[nm,G、 Bioos
etal:^−er、 J、 Cl1n、
Path、、30゜181 (1958)]、m−二ト
ロフェノール[佐々木匡秀:臨床病理、二、555 (
1964)1などが使用されている。
合成IIとしてアセチルコリンを用い、ChEに゛より
生じた酢酸によるpHの変化を指示薬の分子吸光度によ
り測定する方法で、指示薬としてフェノールレッド[6
橋浩、柴田進;医学と生物学、2Ω、96(1951)
]、ブロムチモールブルー[nm,G、 Bioos
etal:^−er、 J、 Cl1n、
Path、、30゜181 (1958)]、m−二ト
ロフェノール[佐々木匡秀:臨床病理、二、555 (
1964)1などが使用されている。
鋳、ブーオフリン法[P、 Garry;J、 Cl1
n、 Chcii、。
n、 Chcii、。
上ユ、(2)、91 (1965)1は基質としてアセ
チルチオコリン、プロピルチオコリン、ブチルチオコリ
ン等が使用されている。これら基質はChEの酵素作用
でチオコリンを生成し、それが5.51−ジチオビス−
2−・ニトロ安息香酸(DTNB)と反応して黄色を生
じる。この黄色の吸光度を比色語で測定する方法である
。
チルチオコリン、プロピルチオコリン、ブチルチオコリ
ン等が使用されている。これら基質はChEの酵素作用
でチオコリンを生成し、それが5.51−ジチオビス−
2−・ニトロ安息香酸(DTNB)と反応して黄色を生
じる。この黄色の吸光度を比色語で測定する方法である
。
(2)、酵素法はベンゾイルコリン[岡部紘明他:臨床
病理、■、751 (1977)]、オルソトルオイル
コリン[特開昭54−138533]などをJulとし
て用い、G t+ Eの酵素作用で生成したコリンをコ
リンオキシダーゼによりベタインに変化させ、その時生
成する過酸化水素によりペル1キシダーゼの存在下で4
−7ミノアンチとリンをフェノールなどとの酸化的縮合
反応で発色させる方法である。
病理、■、751 (1977)]、オルソトルオイル
コリン[特開昭54−138533]などをJulとし
て用い、G t+ Eの酵素作用で生成したコリンをコ
リンオキシダーゼによりベタインに変化させ、その時生
成する過酸化水素によりペル1キシダーゼの存在下で4
−7ミノアンチとリンをフェノールなどとの酸化的縮合
反応で発色させる方法である。
(0、UV法には2種類があり、1つは賛、 Kalo
a(7)ベンゾイルコリン[賀、にalow andに
、 GOnOt :Canad、 J、 Bioch
es、 & Phyoiol、、35 、 339(1
957)]を基質とする方法であり、もう1つはp−ヒ
ドロキシベンゾイルコリン[5f1開昭57−nm01
98、特開昭58−1299991を基質とする方法で
ある。前者はChEの酵素作用によって基質が加水分解
し、その基質が減少していく様子を測定波長240n−
で追跡していく方法である。後行は、ChFのII?索
作用によって生成するp−ヒドロキシ安息香酸を補酵素
N A D P Hの存在下でp−ヒトOキシ安息香酸
水酸化酵素の作用によりNADPHが酸化されNADP
に変化する際の吸光度の減少を波長34Qna+で測定
追跡する方法である。
a(7)ベンゾイルコリン[賀、にalow andに
、 GOnOt :Canad、 J、 Bioch
es、 & Phyoiol、、35 、 339(1
957)]を基質とする方法であり、もう1つはp−ヒ
ドロキシベンゾイルコリン[5f1開昭57−nm01
98、特開昭58−1299991を基質とする方法で
ある。前者はChEの酵素作用によって基質が加水分解
し、その基質が減少していく様子を測定波長240n−
で追跡していく方法である。後行は、ChFのII?索
作用によって生成するp−ヒドロキシ安息香酸を補酵素
N A D P Hの存在下でp−ヒトOキシ安息香酸
水酸化酵素の作用によりNADPHが酸化されNADP
に変化する際の吸光度の減少を波長34Qna+で測定
追跡する方法である。
3.3 1 L、 〜と るU −これらの測
定法には種々の問題点があり、測定値の不正確さの原因
になっている。即ち、例えばガス分析法(2)、pHメ
ーター法0は、操作が煩雑で多数の検体を処理すること
ができないなど実用上の問題がある。pH指示薬比色決
幻は、操作も簡便で多数の検体を処理することもできる
が、反応時間が長く、反応中にもpHが一定でなく、低
値と高値で再現性があまり良くないなどの欠点がある。
定法には種々の問題点があり、測定値の不正確さの原因
になっている。即ち、例えばガス分析法(2)、pHメ
ーター法0は、操作が煩雑で多数の検体を処理すること
ができないなど実用上の問題がある。pH指示薬比色決
幻は、操作も簡便で多数の検体を処理することもできる
が、反応時間が長く、反応中にもpHが一定でなく、低
値と高値で再現性があまり良くないなどの欠点がある。
また上述した(2)〜(へ)の方法は、いずれもアセチ
ルコリンを基質として用いる方法であり、これらの方法
では、アセチルコリンは非酵素的加水分解を起しやすく
、また基質特異性もあまりないので、基質そのものにも
問題がある。
ルコリンを基質として用いる方法であり、これらの方法
では、アセチルコリンは非酵素的加水分解を起しやすく
、また基質特異性もあまりないので、基質そのものにも
問題がある。
チオコリン法ゆは反応性に優れ、91度が高く、操作も
afで多数の検体を処理することができるとともに初速
度広でも測定できるなど優れた点もあるが、呈色が黄色
であるため血清中のビリルビンの影響を強く受け、また
グルタチオンのようなチオール基を有する化合物の影響
もまぬがれえないし、さらにnmそのものが不安定であ
り、測定値の誤差原因になっている。
afで多数の検体を処理することができるとともに初速
度広でも測定できるなど優れた点もあるが、呈色が黄色
であるため血清中のビリルビンの影響を強く受け、また
グルタチオンのようなチオール基を有する化合物の影響
もまぬがれえないし、さらにnmそのものが不安定であ
り、測定値の誤差原因になっている。
酵素法(43)は9色が赤色になるので、血清中のビリ
ルビンなどの干渉を受けず、多数の検体を処理づること
もできるが、発色系の試薬として使用するフェノールや
4−アミノ7ンヂピリンがChEに対して拮抗阻害作用
を有するので、それらの使用けが非常に限定され、十分
な発色が難しい。またこれら酵素法は過酸化水素を利用
する方法であり、一般に過酸化水素を経由する定量法は
血清中°のビリルビンやアスコルビン酸などの還元性物
質による彰費はまぬがれえないし、リン脂質の分解など
で生じるコリンの影響も受ける。ベンゾイルコリンを基
質として用いた酵素法の場合は、非酵集的加水分解性も
問題になっているなど種々問題がある。
ルビンなどの干渉を受けず、多数の検体を処理づること
もできるが、発色系の試薬として使用するフェノールや
4−アミノ7ンヂピリンがChEに対して拮抗阻害作用
を有するので、それらの使用けが非常に限定され、十分
な発色が難しい。またこれら酵素法は過酸化水素を利用
する方法であり、一般に過酸化水素を経由する定量法は
血清中°のビリルビンやアスコルビン酸などの還元性物
質による彰費はまぬがれえないし、リン脂質の分解など
で生じるコリンの影響も受ける。ベンゾイルコリンを基
質として用いた酵素法の場合は、非酵集的加水分解性も
問題になっているなど種々問題がある。
Uv法(0でベンゾイルコリンを基質として使用するー
、にalowの方法は、直接基質の減少を測定している
ので測定原理は単純明解であるが、測定波長が24On
−であるため血清成分の干渉を受けやすく、ベンゾイル
コリンの非酵素的加水分解が起りやすいので、ChEの
至適pHで反応が行われていない。また測定波長として
M’llの吸収曲線のスロープの所が使われており、こ
れにより波長のずれによる吸光係数のずれが大きくなる
など問題がある。
、にalowの方法は、直接基質の減少を測定している
ので測定原理は単純明解であるが、測定波長が24On
−であるため血清成分の干渉を受けやすく、ベンゾイル
コリンの非酵素的加水分解が起りやすいので、ChEの
至適pHで反応が行われていない。また測定波長として
M’llの吸収曲線のスロープの所が使われており、こ
れにより波長のずれによる吸光係数のずれが大きくなる
など問題がある。
p−ヒドロキシベンゾイルコリンを1!質と(るUv法
は、はぼ至適pHで反応が行えるし、過酸化水素−発色
系における欠点を除くことができ、チオコリン法の欠点
もなく、さらに多数の検体処理が可能な自動分析装置に
適した優れたChE活性測定測定あるが、使用する補酵
素NADPH!高価な試薬であり、安定性も悪いので一
定の品質に維持および管理するのが難しいし、また酵素
としてp−ヒドロキシ安息香酸水酸化酵素やプ0トカテ
キュj!−3,4−ジオキシゲナーぜなどを使用し、測
定値の誤差要因が多い。
は、はぼ至適pHで反応が行えるし、過酸化水素−発色
系における欠点を除くことができ、チオコリン法の欠点
もなく、さらに多数の検体処理が可能な自動分析装置に
適した優れたChE活性測定測定あるが、使用する補酵
素NADPH!高価な試薬であり、安定性も悪いので一
定の品質に維持および管理するのが難しいし、また酵素
としてp−ヒドロキシ安息香酸水酸化酵素やプ0トカテ
キュj!−3,4−ジオキシゲナーぜなどを使用し、測
定値の誤差要因が多い。
以上に述べたごとく、従来のChEの酵素活性測定法に
は種々の1Filfflがあり、測定値の誤差の原因に
なっている。
は種々の1Filfflがあり、測定値の誤差の原因に
なっている。
3.4 II を するための。
我々は従来法の欠点を解決すべく鋭意研究し本発明に′
fq達した。即ち、新規化合物である2−ナツトイルコ
リンアイオダイド(以下2−NClと略称する)を合成
し、かかる化合物を基質として用いるUv法によるCh
Eh性測定について検討した所、測定波長として約33
7〜約355n*の波長を使用することができ、この場
合ChEh外の他のth清酸成分干渉を受けることが少
なく、また2−NClは非酵素的加水分解に対して極め
て安定であり、血清中のChE特にプソイドコリンエス
テラーゼと特異的に反応し、従って2−NClを用いる
ことにより極めて正確に再現性よく血清中のChEh性
を測定することが可能であり、また、非イオン界面活性
剤などの界面活性剤、ジメチルスルホキシドなどの有機
溶媒の存在下にChEh性を測定することにより高単位
のChEh性を測定することが可能となり、その他種々
の利点を有する測定が可lとなることを知見し本発明に
到達した。
fq達した。即ち、新規化合物である2−ナツトイルコ
リンアイオダイド(以下2−NClと略称する)を合成
し、かかる化合物を基質として用いるUv法によるCh
Eh性測定について検討した所、測定波長として約33
7〜約355n*の波長を使用することができ、この場
合ChEh外の他のth清酸成分干渉を受けることが少
なく、また2−NClは非酵素的加水分解に対して極め
て安定であり、血清中のChE特にプソイドコリンエス
テラーゼと特異的に反応し、従って2−NClを用いる
ことにより極めて正確に再現性よく血清中のChEh性
を測定することが可能であり、また、非イオン界面活性
剤などの界面活性剤、ジメチルスルホキシドなどの有機
溶媒の存在下にChEh性を測定することにより高単位
のChEh性を測定することが可能となり、その他種々
の利点を有する測定が可lとなることを知見し本発明に
到達した。
即ち、本発明は一般式(1)
(式Xはハロゲン原子を表わす)で表わされる新規コリ
ン誘導体、及び該新規コリン誘導体を基質として用いる
ことを特徴とするコリンエステラーゼ活性の測定法であ
る。
ン誘導体、及び該新規コリン誘導体を基質として用いる
ことを特徴とするコリンエステラーゼ活性の測定法であ
る。
一般式(1)のXとしては、例えば沃素、塩素、臭素、
フッ素などのハロゲン原子が挙げられる。
フッ素などのハロゲン原子が挙げられる。
かかる新規コリン誘導体は、2−ナフトイルクロライド
等の2−ナフトイルハライドと2−ジメチルアミノエタ
ノールと反応せしめ、次いで得られる反応生成物と、ヨ
ウ化メチル等のハロゲン化メチルとを反応することによ
り合成できる。かかる反応それ自体は公知であり通常の
反応条件下で合成することが可能である。
等の2−ナフトイルハライドと2−ジメチルアミノエタ
ノールと反応せしめ、次いで得られる反応生成物と、ヨ
ウ化メチル等のハロゲン化メチルとを反応することによ
り合成できる。かかる反応それ自体は公知であり通常の
反応条件下で合成することが可能である。
次に、新規コリン誘導体として、2−NG Iを例にと
って本発明のChE活伯の測定法について説明する。
って本発明のChE活伯の測定法について説明する。
第1図に2−NClと2−ナフトイック酸のUvスペク
トルを示した。2−N CIがChEの作用で加水分解
するとコリンと2−ナフトイック酸を生成する。コリン
は波長300 nm以上ではUV吸収はない。2−ナフ
トイック酸は波長337ns以上ではtJ V吸収はは
とんどない。一方、2−NCIは波長355n−以下で
UV吸収する。したがって、UV法によりChE活竹を
測定する方法において2−NClをChF活性を測定す
る基質として使用し、測定波長337から355 no
+で反応を追跡することができ、この場合他の自消成分
の干渉を受けることが少ない。従って基質の2−NCI
の減少を正確に追跡することができ、ChE活性を正確
に測定することが可能である。
トルを示した。2−N CIがChEの作用で加水分解
するとコリンと2−ナフトイック酸を生成する。コリン
は波長300 nm以上ではUV吸収はない。2−ナフ
トイック酸は波長337ns以上ではtJ V吸収はは
とんどない。一方、2−NCIは波長355n−以下で
UV吸収する。したがって、UV法によりChE活竹を
測定する方法において2−NClをChF活性を測定す
る基質として使用し、測定波長337から355 no
+で反応を追跡することができ、この場合他の自消成分
の干渉を受けることが少ない。従って基質の2−NCI
の減少を正確に追跡することができ、ChE活性を正確
に測定することが可能である。
また、後述する如<2−NClは多くの優れた利点を有
し、2−NC[以外の伯の一般式(Ilのコリン誘導体
も同様に優れた効果を有する。
し、2−NC[以外の伯の一般式(Ilのコリン誘導体
も同様に優れた効果を有する。
従って、一般式II)の新規コリン誘導体を用いた好ま
しいChE活性測定法として、例えば次の測定法が捉供
される。即ち、ChEを含む検体と一般式(I)で表わ
される新規コリン誘導体とを混合し、次いで吸光度、特
に波長約337〜約3550−での吸光度を測定するこ
とによりChE活性を測定する方法である。
しいChE活性測定法として、例えば次の測定法が捉供
される。即ち、ChEを含む検体と一般式(I)で表わ
される新規コリン誘導体とを混合し、次いで吸光度、特
に波長約337〜約3550−での吸光度を測定するこ
とによりChE活性を測定する方法である。
前述の賛、にalowのUV法では測定波長が240n
sであるので初期吸収において血清成分の干渉を大きく
受けるが、本発明の測定波長約337から約355 n
mではあまり干渉を受けないので至適な測定条件が容易
である。また賛、 KalowのUV法で基質として使
用しているベンゾイルコリンは、1/15MIJ)1!
1衝液E)H7,40中で230 Fil附近に極大吸
収をもち、測定波長である240nmではスロープであ
る。これは波長のずれによる吸光係数のずれが大きくな
る。本発明の新規1質の2−NCIは335 ns附近
に極大吸収をもち、測定波長をピークに設定する事がで
きる。この事は分析装置の波長精度の問題から発生する
分子吸光係数の違いなどが非常に小さくなり測定値の機
種問差などが非常に小さくなることを示している。
sであるので初期吸収において血清成分の干渉を大きく
受けるが、本発明の測定波長約337から約355 n
mではあまり干渉を受けないので至適な測定条件が容易
である。また賛、 KalowのUV法で基質として使
用しているベンゾイルコリンは、1/15MIJ)1!
1衝液E)H7,40中で230 Fil附近に極大吸
収をもち、測定波長である240nmではスロープであ
る。これは波長のずれによる吸光係数のずれが大きくな
る。本発明の新規1質の2−NCIは335 ns附近
に極大吸収をもち、測定波長をピークに設定する事がで
きる。この事は分析装置の波長精度の問題から発生する
分子吸光係数の違いなどが非常に小さくなり測定値の機
種問差などが非常に小さくなることを示している。
更に、この基質2−NClは非酵素的加水分解に対して
非常に安定である。たとえばpl+が8.0の200m
Mトリス−マレイン酸緩衝液中37℃の条件下で30分
間ではほとんど加水分解は起きなかった(第6図参照)
。この結果は測定中非酵素的加水分解は無?R′r−き
、正確にChE活竹を測定することができることを示し
ている。
非常に安定である。たとえばpl+が8.0の200m
Mトリス−マレイン酸緩衝液中37℃の条件下で30分
間ではほとんど加水分解は起きなかった(第6図参照)
。この結果は測定中非酵素的加水分解は無?R′r−き
、正確にChE活竹を測定することができることを示し
ている。
pHを一定に保持するための緩衝剤として、バルビター
ル酸塩、リン酸塩、ビロリンFl塩、グリシン、グリシ
ルグリシン、トリスヒドロキシメチルアミノメタンなど
が使用できる。上記以外の緩衝剤でもpHを7.5〜1
0.0の間において緩衝能を輔持できるものであれば用
いることが可能である。
ル酸塩、リン酸塩、ビロリンFl塩、グリシン、グリシ
ルグリシン、トリスヒドロキシメチルアミノメタンなど
が使用できる。上記以外の緩衝剤でもpHを7.5〜1
0.0の間において緩衝能を輔持できるものであれば用
いることが可能である。
ChEに対する2−NClのに一値はベンゾイルコリン
の約1/8程度で200+eHトリス−マレイン酸緩衝
液(1)nm8.0)では約7.0X10−6sol/
Jである。2−NClのに鴎値が十分小さいので、本発
明の測定法の反応系では十分な基質濃度で反応を行うこ
とができ、経時的直線範囲が広くなり、高甲位の活性ま
で十分測定が可能である。
の約1/8程度で200+eHトリス−マレイン酸緩衝
液(1)nm8.0)では約7.0X10−6sol/
Jである。2−NClのに鴎値が十分小さいので、本発
明の測定法の反応系では十分な基質濃度で反応を行うこ
とができ、経時的直線範囲が広くなり、高甲位の活性ま
で十分測定が可能である。
また、界面活性剤や有機溶媒の存在下で種々条件を検討
した結果、基質8i1度を高くする事ができ、さらにへ
単位のChE活性まで測定可能になった。
した結果、基質8i1度を高くする事ができ、さらにへ
単位のChE活性まで測定可能になった。
前者は非イオン界面活性剤であるNIKKOLNP−1
5(日光ケミカルズ利製:ポリオキシエチレンノニルフ
ェニルエーテル)が特によく、測定系全最に対して1〜
10?fi&t%の範囲で使用可能であるが、好ましく
は2〜7重量%を用いるとよい。後者は、ジメチルスル
ホギシド(DMSO)が特によく、測定系全量に対して
1〜10重開%の範囲で使用可能であるが好ましくは1
〜5重量%を用いるとよい。界面活性剤と有機溶媒を添
加した測定系で、それぞれ直線性を調べたところ、前者
は3000nm1/J(第16図参照)、後者は294
010/J(第17図参照)まで直線性があり、界面活
性剤や有機溶媒を添加しない測定系が250010/l
までしか直線性がない(第15図参照)のに比べ反応全
液暴を70%少なく(実施例9.10)し反応速麿を早
くしたにもかかわらず直線性は20%も高く出来る。
5(日光ケミカルズ利製:ポリオキシエチレンノニルフ
ェニルエーテル)が特によく、測定系全最に対して1〜
10?fi&t%の範囲で使用可能であるが、好ましく
は2〜7重量%を用いるとよい。後者は、ジメチルスル
ホギシド(DMSO)が特によく、測定系全量に対して
1〜10重開%の範囲で使用可能であるが好ましくは1
〜5重量%を用いるとよい。界面活性剤と有機溶媒を添
加した測定系で、それぞれ直線性を調べたところ、前者
は3000nm1/J(第16図参照)、後者は294
010/J(第17図参照)まで直線性があり、界面活
性剤や有機溶媒を添加しない測定系が250010/l
までしか直線性がない(第15図参照)のに比べ反応全
液暴を70%少なく(実施例9.10)し反応速麿を早
くしたにもかかわらず直線性は20%も高く出来る。
2−NOIを基質として用いた場合、200−Hトリス
−マレイン酸II衝液ではChEの至適pHは8.01
44近であった(第4図参照)。前述のごと<2−NC
lはpH8,0で非醪素的加水分解安定竹があるので、
本発明の測定法はChEの至適のpHで反応を行うこと
ができる。
−マレイン酸II衝液ではChEの至適pHは8.01
44近であった(第4図参照)。前述のごと<2−NC
lはpH8,0で非醪素的加水分解安定竹があるので、
本発明の測定法はChEの至適のpHで反応を行うこと
ができる。
検体中の共存物質が測定値に影響する場合、測定値の誤
差原因になることは前述の通りである。
差原因になることは前述の通りである。
本発明の方法は基質そのものがUv吸収をもっており、
それを直接測定する方法であり、測定原理的にみても共
存物質の影響を受は難い。共存物質たとえ−ば、アスコ
ルビンR20q/d1、WFIJ20#F/d 1 、
グルコース500ay/dlヘモグロビン200#I!
F/dJ!、アルブミン5g/d1、ビリルビン20M
3/d 1 、グルタチオン(還元型)50g9/d1
、までは添加試験では問題はなかった(第7図〜第13
図参照)。抗凝固剤EDTA・2Na、クエン酸塩、ヘ
パリン4nm!塩、二重蓚酸等の添加試験でも問題はな
かった(第14図参照)。本発明は共存物質の影響を非
常に受は難い方法であり、測定値の誤差原因が大幅に解
消された。
それを直接測定する方法であり、測定原理的にみても共
存物質の影響を受は難い。共存物質たとえ−ば、アスコ
ルビンR20q/d1、WFIJ20#F/d 1 、
グルコース500ay/dlヘモグロビン200#I!
F/dJ!、アルブミン5g/d1、ビリルビン20M
3/d 1 、グルタチオン(還元型)50g9/d1
、までは添加試験では問題はなかった(第7図〜第13
図参照)。抗凝固剤EDTA・2Na、クエン酸塩、ヘ
パリン4nm!塩、二重蓚酸等の添加試験でも問題はな
かった(第14図参照)。本発明は共存物質の影響を非
常に受は難い方法であり、測定値の誤差原因が大幅に解
消された。
コリンエステラービには血清中に存在するプソイドコリ
ンエステラーゼと赤血球中に存在するツルーコリンエス
テラーゼの二種が知られている。
ンエステラーゼと赤血球中に存在するツルーコリンエス
テラーゼの二種が知られている。
通常臨床検査で測定されているのは血清中のプソイドコ
リンエステラーゼであるが、血清中にツルーコリンエス
テラーゼが混入している場合があるので、検査目的とし
てはプソイドコリンエステラーゼのみと選択的に反応す
る基質が望ましい。本発明の方法に用いる2−NCIは
プソイドコリンエステラーゼとは良く反応するが、ツル
ーコリンエステラーゼとはほとんど反応しない非常に特
異性の^い基質である。
リンエステラーゼであるが、血清中にツルーコリンエス
テラーゼが混入している場合があるので、検査目的とし
てはプソイドコリンエステラーゼのみと選択的に反応す
る基質が望ましい。本発明の方法に用いる2−NCIは
プソイドコリンエステラーゼとは良く反応するが、ツル
ーコリンエステラーゼとはほとんど反応しない非常に特
異性の^い基質である。
外Hおよび精神科領域で麻酔剤とプソイドコリンエステ
ラーゼの関係で異型プソイドコリンエステラーゼ検査が
重要である。即ち、異型プソイドコリンエステラーゼが
多い人は麻酔の際にショック死等を生じる場合があり、
異型プソイドコリン1ステラーゼ活竹を麻酔前に測定す
ることがイセである。本発明の測定方法は反応機構的に
単純明解なのでかかる異型プソイドコリンエステラーゼ
検査法として非常に適している。
ラーゼの関係で異型プソイドコリンエステラーゼ検査が
重要である。即ち、異型プソイドコリンエステラーゼが
多い人は麻酔の際にショック死等を生じる場合があり、
異型プソイドコリン1ステラーゼ活竹を麻酔前に測定す
ることがイセである。本発明の測定方法は反応機構的に
単純明解なのでかかる異型プソイドコリンエステラーゼ
検査法として非常に適している。
また2−NCl以外の他の一般式山のコリン誘導体の場
合においても上記した好ましい測定が可能である。
合においても上記した好ましい測定が可能である。
本発明のChE測定法の具体的方法は、後述する実施例
2に示されており、通常のUv法の手順を採用づること
ができる。
2に示されており、通常のUv法の手順を採用づること
ができる。
3.5 発明の効果
本発明のChE活性測定法は種々の点で従来法の問題点
が解決されている。本発明の利点を記すと次のごとくで
ある。
が解決されている。本発明の利点を記すと次のごとくで
ある。
(1) 測定系の反応機構が単純明解で、測定値の誤
差原因が非常に少い。
差原因が非常に少い。
(2) ピークの*Ee(335,4n+s)で測定
可能である。
可能である。
(3) 基質に用いる本発明の新規コリン誘導体、例
えば2−NCIが非酵素的加水分解に対して安定なのr
1測定値の再現性が非常に良い。
えば2−NCIが非酵素的加水分解に対して安定なのr
1測定値の再現性が非常に良い。
(4) 本発明の新規コリン誘導体、例えば2−NC
lはプソイドコリンエステラーゼに対して、基質特異性
が高い。
lはプソイドコリンエステラーゼに対して、基質特異性
が高い。
(5) 前記のごと(、ビリルビン、アスコルビン酸
等の検体成分や抗凝固剤の影響をほとんど受けない。
等の検体成分や抗凝固剤の影響をほとんど受けない。
(6) 検体ごとに検体ブランクをたてる必要がない
ので簡易かつ迅速に測定でき、多数の検体を処理するこ
とが可能である。・ (7) 異型プソイドコリンエステラーゼ検査が可能
である。
ので簡易かつ迅速に測定でき、多数の検体を処理するこ
とが可能である。・ (7) 異型プソイドコリンエステラーゼ検査が可能
である。
(8)本発明の新規コリン誘導体、例えば2−NClが
安定なので、至適pH(8,0〜8.2)での反応が可
能である。
安定なので、至適pH(8,0〜8.2)での反応が可
能である。
(9) 高単位まで測定可能である。
(至)界面活性剤や有Ill溶媒の存在下で基質nm度
を古くする事が出来、さらに高単位まで測定可能である
。また測定時間の大幅な延長が可能になり、これは多種
の自動分析製品に適用でき、測定精度の白子ができる。
を古くする事が出来、さらに高単位まで測定可能である
。また測定時間の大幅な延長が可能になり、これは多種
の自動分析製品に適用でき、測定精度の白子ができる。
以上のごとく、本発明のChE活+IFalll定方法
は従来法の有する問題点を解決し、多くの利点や特徴を
有し、正確かつ簡便にChE活性を測定でき、日常の臨
床検査のChE活性測定に充分貢献できるものである。
は従来法の有する問題点を解決し、多くの利点や特徴を
有し、正確かつ簡便にChE活性を測定でき、日常の臨
床検査のChE活性測定に充分貢献できるものである。
従って本発明のChE活竹測定法は、正常人、肝疾患患
者、腎障害を右する患苫等の血清中のChE活牲を測定
する方法として、極めて有用である。
者、腎障害を右する患苫等の血清中のChE活牲を測定
する方法として、極めて有用である。
3.6 実施例
以下に実施例により、本発明をさらに詳細に説明−46
が、本発明はこれによって限定されるものではない。
が、本発明はこれによって限定されるものではない。
2−ナフトイル゛クロライド9.59をベンゼン5ON
1に溶解した液を、2−ジメチルアミノエタノール10
dlをベンゼン200dに溶解した液に5〜10℃に冷
却しながら滴下した。滴下後、室温で一晩攪拌し、反応
させた後、水及び飽和食塩水で洗浄しベンゼン相を無水
硫酸マグネシウム上で乾燥し、?nm媒を減圧留去し、
13.79の油状吻を得た。これをアセトン300−に
溶解し、ヨウ化メチル7.4gの酢酸エチル80Id溶
液を加え室温で一晩放直し、析出した結晶を濾集し、ア
セトンで洗浄後方酸化リン上で真空乾燥し、2−ナフト
イルコリンアイオダイド17.1SFを得た。
1に溶解した液を、2−ジメチルアミノエタノール10
dlをベンゼン200dに溶解した液に5〜10℃に冷
却しながら滴下した。滴下後、室温で一晩攪拌し、反応
させた後、水及び飽和食塩水で洗浄しベンゼン相を無水
硫酸マグネシウム上で乾燥し、?nm媒を減圧留去し、
13.79の油状吻を得た。これをアセトン300−に
溶解し、ヨウ化メチル7.4gの酢酸エチル80Id溶
液を加え室温で一晩放直し、析出した結晶を濾集し、ア
セトンで洗浄後方酸化リン上で真空乾燥し、2−ナフト
イルコリンアイオダイド17.1SFを得た。
この結晶はシリカゲル1層クロマトグラフィー(n−ブ
タノール:酢酸:水−4:1:2)上で単一スポット(
R,=0.38)を与えた。
タノール:酢酸:水−4:1:2)上で単一スポット(
R,=0.38)を与えた。
融点 271〜272℃
元素分析値 016H2oNo□I (m、w、 38
5.247)実測値(%)C:49.88 H:
5.31N : 3.53 計算値(%) C:49.88 H: 5.23N
:3.64 U、■スペクトルおよび1.Rスペクトルをそれぞれ第
1図と第2図に示した。
5.247)実測値(%)C:49.88 H:
5.31N : 3.53 計算値(%) C:49.88 H: 5.23N
:3.64 U、■スペクトルおよび1.Rスペクトルをそれぞれ第
1図と第2図に示した。
実施例2
血清ChE活性測定方法
Ill 200mMトリス−マレイン耐緩耐液DH8
,0(25℃) (お 検体 +3) 0.43318基質(2−NCr>i*(1
)の緩衝液3.0dに検体0.05dを加え、2〜10
分間稈麿37℃で予加温し、それに(3)のl;J。
,0(25℃) (お 検体 +3) 0.43318基質(2−NCr>i*(1
)の緩衝液3.0dに検体0.05dを加え、2〜10
分間稈麿37℃で予加温し、それに(3)のl;J。
質液0.5dを加え、同時にストップウォッチをスター
トさせ正確に20秒、80秒の337 nmにおける吸
光度を測定し1分間当りの吸光度変化を求める。第3図
はタイムコースを示した。
トさせ正確に20秒、80秒の337 nmにおける吸
光度を測定し1分間当りの吸光度変化を求める。第3図
はタイムコースを示した。
検体はコンセーラI(日永製薬社製)を使用した。Ch
E活性値は下2の式により8口>される。
E活性値は下2の式により8口>される。
1)Δ0. D、 /m1ldよ測定波長337nmに
おける1分間当りの吸光度の変化耐。
おける1分間当りの吸光度の変化耐。
2)波長3370−における分子吸光係数は1462で
ある。
ある。
上式より使用した血清は、902 (Ill/j! )
中位であった。第3図に示したごとく、ChE単位90
2(II/jりでは3分nm1目f時的にタイムラグの
ない直線を示した。これは自動分析製品が使用可能なこ
とを示している。
中位であった。第3図に示したごとく、ChE単位90
2(II/jりでは3分nm1目f時的にタイムラグの
ない直線を示した。これは自動分析製品が使用可能なこ
とを示している。
実施例3
実施例2の(1)の緩衝液のDHを7.8から8.4ま
で変化さI!、この方法におけるChEの至適pHを求
めた。緩衝液のpl+以外は全て実施例2に従った。そ
の結果を第4図に示した。この条件下では至適pl+は
8.0であった。
で変化さI!、この方法におけるChEの至適pHを求
めた。緩衝液のpl+以外は全て実施例2に従った。そ
の結果を第4図に示した。この条件下では至適pl+は
8.0であった。
実施例4
実施例2の(1)の緩衝液濃度を50aHから300m
Mまで変化させ、この方法における最適緩衝液濃度を求
めた。緩衝液のS度以外は全て実施例2に従った。その
結果を第5図に示した。この条件下では最適緩衝液濃度
は200mMから30018であった。
Mまで変化させ、この方法における最適緩衝液濃度を求
めた。緩衝液のS度以外は全て実施例2に従った。その
結果を第5図に示した。この条件下では最適緩衝液濃度
は200mMから30018であった。
宋J1九塁
実施例2の(1)のI耐液3. Ojd!に(3)の基
質液0.5aeを加え、37℃の保温セルに入れ、波長
337 rvにおくjる吸光度の変化を経時的に追跡し
、IJ質の非M素的加水分解安定竹を調べた。その結果
は第6図に示したごとく、30分まではほとんど安定で
あった。基質2−NCIは至適pH8,0にa3いて安
定であるので、検体ごとの試薬ブランクを測定する必要
はない。
質液0.5aeを加え、37℃の保温セルに入れ、波長
337 rvにおくjる吸光度の変化を経時的に追跡し
、IJ質の非M素的加水分解安定竹を調べた。その結果
は第6図に示したごとく、30分まではほとんど安定で
あった。基質2−NCIは至適pH8,0にa3いて安
定であるので、検体ごとの試薬ブランクを測定する必要
はない。
実/if!VA6
実施例2の測定法に従い、基質特異性を調べた。
検体として、プソイドコリンエステラーゼ(シグマ社)
10LJ/d、ツルーコリンエステラーゼ(シグマ社>
10U/ml!を使用した。反応性は、吸光度の減少速
度から判断するとプソイドコリンエステラーゼ1に対し
てツルーコリンエステラーゼは0.02であった。この
ことは、基質2−N(lの特異性の非常に高い事を示し
ている。
10LJ/d、ツルーコリンエステラーゼ(シグマ社>
10U/ml!を使用した。反応性は、吸光度の減少速
度から判断するとプソイドコリンエステラーゼ1に対し
てツルーコリンエステラーゼは0.02であった。この
ことは、基質2−N(lの特異性の非常に高い事を示し
ている。
実施例7
実施例2の測定法に従い、反応系での下記の添加物の影
響を調べた。
響を調べた。
添加物 添加量
中 アスコルビン酸 0〜20#!F/d 1(J
グルコース Oへ一500ay/dl(3)
尿 酸 0〜2 Qa
!F/d 1(4) ヘモグロビン O〜50
01g/d!(!]) アルブミン O〜5
g/dJtel ビリルビン 0〜20#F
/d 1(7) ゲルタブオン O〜50j1
!F/dJ(還元型) (0)抗凝固剤 二nm′1蓚酸 400JI!F/d1酢
酸 400Jllff/dJヘパ
リン 20WI/dlクエン酸ソーダ
1び/di EDTΔ−2Na 2005y/djNaF
1g/d1 測定結果は相対活性(%)で第7図〜第14図に示した
。NaFはプソイドコリン1ステラーゼの阻害剤である
ので、NaFの存在下では一般にCh [三g性の測定
はいかなる測定法でも正しい測定法を与えない。従って
、第14図のNaFの結果よりプソイドコリンエステラ
ーゼ活性を測定する場合には、抗凝固剤としてNaFは
使用することができない。
グルコース Oへ一500ay/dl(3)
尿 酸 0〜2 Qa
!F/d 1(4) ヘモグロビン O〜50
01g/d!(!]) アルブミン O〜5
g/dJtel ビリルビン 0〜20#F
/d 1(7) ゲルタブオン O〜50j1
!F/dJ(還元型) (0)抗凝固剤 二nm′1蓚酸 400JI!F/d1酢
酸 400Jllff/dJヘパ
リン 20WI/dlクエン酸ソーダ
1び/di EDTΔ−2Na 2005y/djNaF
1g/d1 測定結果は相対活性(%)で第7図〜第14図に示した
。NaFはプソイドコリン1ステラーゼの阻害剤である
ので、NaFの存在下では一般にCh [三g性の測定
はいかなる測定法でも正しい測定法を与えない。従って
、第14図のNaFの結果よりプソイドコリンエステラ
ーゼ活性を測定する場合には、抗凝固剤としてNaFは
使用することができない。
1m
実施例2に従い、dn清の希釈率と酵素活性の関係を調
べた(第15図)。血清希釈は5%アルブミンを含む生
理食塩水で行った。第15図に示したごとく、血清希釈
と酵素活性は原点を通過するi線内な比例関係にありG
hE活性が低甲位からnmrnm1位まで幅広く測定で
きることが明らかになった。
べた(第15図)。血清希釈は5%アルブミンを含む生
理食塩水で行った。第15図に示したごとく、血清希釈
と酵素活性は原点を通過するi線内な比例関係にありG
hE活性が低甲位からnmrnm1位まで幅広く測定で
きることが明らかになった。
実施例9
血清CnmE活 測flJ法(NIKKOL NP−
15添加) (1) 200mHトリスーマレイン酸!l衝液6%
(w/v)NIKKOL NP−15pH8,00(
25℃) (2) 検体 (3) 0.622mN基質<2−NCl>液(1)
の!nmi液2.0IIlに検体0.05−を加え2〜
10分間程度37℃で予加温し、それに(3)の基質液
0.5M!を加え(測定系全部に対してN[KKOL
NP−154,フル吊%含有)同時にストップウォッ
チをスタートさせ1確に20秒、80秒の337nlに
おける吸光度を測定し1分間当りの吸光度変化を求める
。ChE活性値は実施例2と同様に求める。
15添加) (1) 200mHトリスーマレイン酸!l衝液6%
(w/v)NIKKOL NP−15pH8,00(
25℃) (2) 検体 (3) 0.622mN基質<2−NCl>液(1)
の!nmi液2.0IIlに検体0.05−を加え2〜
10分間程度37℃で予加温し、それに(3)の基質液
0.5M!を加え(測定系全部に対してN[KKOL
NP−154,フル吊%含有)同時にストップウォッ
チをスタートさせ1確に20秒、80秒の337nlに
おける吸光度を測定し1分間当りの吸光度変化を求める
。ChE活性値は実施例2と同様に求める。
(1) 200sHトリス−マレイン酸緩衝液pH8
,00(25℃) (2) 検体 (3) 0. 622g*H基質 (2−NG!>
25. 5%(v/v)DMSO水溶液測定方法は実施
例9に従う(測定系全部に対してDMSO5,0重罎%
含有) 実施例nm 実施例9.10に従い、血清の希釈率と酵素活性の関係
を調べた(第16.17図)。血清希釈は5%アルブミ
ンを含む生理食塩水で行った。第16.17図に示した
ごとく、血清希釈と酵素活性は原点を通過する直線的な
比P14III係にあり(第16閃rGJ30001U
/l第17図t’は294010/ 1まで直線性あり
) 、ChE活性が低単位から^単位まで幅広く測定で
きることが明らかになった。
,00(25℃) (2) 検体 (3) 0. 622g*H基質 (2−NG!>
25. 5%(v/v)DMSO水溶液測定方法は実施
例9に従う(測定系全部に対してDMSO5,0重罎%
含有) 実施例nm 実施例9.10に従い、血清の希釈率と酵素活性の関係
を調べた(第16.17図)。血清希釈は5%アルブミ
ンを含む生理食塩水で行った。第16.17図に示した
ごとく、血清希釈と酵素活性は原点を通過する直線的な
比P14III係にあり(第16閃rGJ30001U
/l第17図t’は294010/ 1まで直線性あり
) 、ChE活性が低単位から^単位まで幅広く測定で
きることが明らかになった。
第1図はa)2−ナフトイルコリンアイオダイド(濃度
100μHot )およびb)2−ナフトイックFa
(nmnm00μHof ) (7)Ll、 V、 ス
ヘ’) トル[2001M トリス−マレイン酸緩衝液
pH8,0(25℃)]を示す。 第2図は2−ナフトイルコリンアイオダイドのIRスペ
クトルを示す。 第3図は2−ナフトイルコリンアイオダイドを基質とし
た場合の血清中のChEg竹によるタイムコースを示す
。 第4図はChEの至適pHを示す。 第5図はChE活性におよぼす緩衝液濃度の影響を示す
。 第6図は2−ナフトイルコリンアイオダイドの非酵素的
加水分解安定性を示す。 第7図〜第14図は添加物の影響を示す。 第15図は血清希釈と酵素活性との関係を示す。 第16図は、界面活性剤(ポリオキシエチレンノニルフ
ェニル エーテル)存在下での血清希釈と酵素活性との
関係を示す。 第17図は有機溶!! (DMSO)存在下での血□ 清希釈と酵素活性との関係を示す。
100μHot )およびb)2−ナフトイックFa
(nmnm00μHof ) (7)Ll、 V、 ス
ヘ’) トル[2001M トリス−マレイン酸緩衝液
pH8,0(25℃)]を示す。 第2図は2−ナフトイルコリンアイオダイドのIRスペ
クトルを示す。 第3図は2−ナフトイルコリンアイオダイドを基質とし
た場合の血清中のChEg竹によるタイムコースを示す
。 第4図はChEの至適pHを示す。 第5図はChE活性におよぼす緩衝液濃度の影響を示す
。 第6図は2−ナフトイルコリンアイオダイドの非酵素的
加水分解安定性を示す。 第7図〜第14図は添加物の影響を示す。 第15図は血清希釈と酵素活性との関係を示す。 第16図は、界面活性剤(ポリオキシエチレンノニルフ
ェニル エーテル)存在下での血清希釈と酵素活性との
関係を示す。 第17図は有機溶!! (DMSO)存在下での血□ 清希釈と酵素活性との関係を示す。
Claims (6)
- (1)一般式( I ) ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) (式中Xはハロゲン原子を表わす)で表わされる新規コ
リン誘導体。 - (2)一般式( I ) ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) (式中Xはハロゲン原子を表わす)で表わされる新規コ
リン誘導体を基質として用いることを特徴とするコリン
エステラーゼ活性の測定法。 - (3)コリンエステラーゼを含む検体と一般式( I )
で表わされる新規コリン誘導体とを混合し、次いで紫外
線(UV)領域における吸光度を測定することによりコ
リンエステラーゼ活性を測定する特許請求の範囲第2項
記載のコリンエステラーゼ活性の測定法。 - (4)新規コリン誘導体が、2−ナフトイルコリンアイ
オダイドである特許請求の範囲第3項記載のコリンエス
テラーゼ活性の測定法。 - (5)波長約337〜約355nmでの吸光度を測定す
る特許請求の範囲第3項又は第4項記載のコリンエステ
ラーゼ活性の測定法。 - (6)界面活性剤又は有機溶媒の存在下に測定を行なう
特許請求の範囲第3項〜第5項のいずれか1項記載のコ
リンエステラーゼ活性の測定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP16937187A JPS6457A (en) | 1987-02-26 | 1987-07-07 | Novel choline derivative and method for measuring choline esterase activity using said derivative |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4146587 | 1987-02-26 | ||
JP62-41465 | 1987-02-26 | ||
JP16937187A JPS6457A (en) | 1987-02-26 | 1987-07-07 | Novel choline derivative and method for measuring choline esterase activity using said derivative |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0157A true JPH0157A (ja) | 1989-01-05 |
JPS6457A JPS6457A (en) | 1989-01-05 |
Family
ID=26381086
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP16937187A Pending JPS6457A (en) | 1987-02-26 | 1987-07-07 | Novel choline derivative and method for measuring choline esterase activity using said derivative |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6457A (ja) |
-
1987
- 1987-07-07 JP JP16937187A patent/JPS6457A/ja active Pending
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