JPH0155274B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、新規な抗腫瘍性物質SPF−100及び
その製法に関するものである。 従来、溶連菌の生菌体を弱毒化して製剤化した
ものは、すでに制癌剤として使用されている。 また、ストレプトコツカス・ピオゲネスの菌体
を破砕後水または塩類溶液で有効成分を抽出し、
有機溶媒を加えて、抗腫瘍性成分を沈澱として、
回収する方法(特公昭38−1647)、溶連菌を溶菌
酵素、リゾチーム、セルラーゼまたは蛋白質分解
酵素により、溶菌し、活性画分を水溶性区分とし
て分画する方法(英国特許第1163865号)などが
知られている。 このように、ストレプトコツカス属細菌そのも
のもしくはその菌体成分に抗腫瘍活性があること
は広く知られているのであるが、従来知られたも
のは、菌体もしくは水可溶性もしくは不溶性高分
子細胞構成物質であるに過ぎなかつた。菌体もし
くは菌体内から有効成分を単離しようとすれば、
菌体を溶菌したり、機械的に破砕したりして全体
を分画しなければならなかつた。このような処理
によれば、精製は複雑となり、有効成分の単離は
きわめて困難であつた。実際に分離し、有効成分
として測定された例では分子量150000の蛋白質が
知られている。(特公昭48−43841) 本発明者らは、よりすぐれた抗腫瘍性有効成分
を溶連菌に求めて鋭意研究した結果、全く新規な
抗腫瘍性物質SPF−100を培養液中に見出すに至
つたのである。 本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は培養中菌体
外に排出され、培養液中に存在するようになるの
で、菌体を過して除去し、培養液を精製すれ
ばよいので、単離はかなり容易なものとなる。 本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は培養液中に
排出されるとともに、分子量が約500〜25000であ
ることによつて特長づけれる。 従来、溶連菌関連の抗腫瘍性物質で、培養液中
に蓄積されたものではなく、また分子量も数万以
下のものは知られておらず、本発明の抗腫瘍性物
質SPF−100は全く新規な物質と認められる。 また、本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は、元
素分析、呈色反応等からペプチド性物質と認めら
れるが、紫外線吸収スペクトルで特異な吸収があ
り、従来広く知られた抗腫瘍活性物質などとも明
らかに相違する物質であつて、物質として新規な
ものと認められるものである。 本発明は、ストレプトコツカス属に属する抗腫
瘍性物質SPF−100生産菌を培養し、培養物から
抗腫瘍性物質SPF−100を採取することを特徴と
する抗腫瘍性物質SPF−100の製法を包含するも
のである。 本発明においては、ストレプトコツカス属に属
する抗腫瘍性物質SPF−100生産菌が広く使用さ
れるが、その一例としてストレプトコツカス・ピ
オゲネス(Streptococcus pyogenes)
ATCC21060があげられる。 培養液は、肉エキス培地、酵母エキス培地、ブ
レイン・ハート・インフユージヨン培地(BHI
培地)等の天然培地がよく用いられるが、ストレ
プトコツカス属細菌が有効に生育する培地であれ
ば炭素源、窒素源等含んだ一般培地も使用するこ
とができる。 培養はpH5.0〜8.0、好ましくは6.1〜7.2で30〜
40℃好ましくは35〜37℃であり嫌気的に静置培養
をおこなうのが一般的であるが、その他撹拌培養
等の変法も採用することができる。 本発明においては、培養中の適当な時期にペニ
シリン又はその関連物質を添加することが、抗腫
瘍性物質SPF−100の取得に重要な役割をはたす
ことになる。 ペニシリン又はその関連物質の添加時期は37℃
の培養で対数増殖期にかかつて後3〜20時間の
間、特に5〜10時間が好ましい。その後1時間及
至20時間好ましくは3〜15時間そのまま培養を続
けることによつて、培養液中に抗腫瘍性物質SPF
−100を多量蓄積させることができる。 ペニシリン又はその関連物質としてはすでに知
られたペニシリンと類似の作用をもつ関連物質で
あればいかなるものでもよいが、ペニシリンGが
普通用いられる。添加量はペニシリンGで100〜
3000単位/ml、好ましくは300〜1500単位/ml培
養液程度で十分である。 得られた培養液は、遠心分離によつて菌体を除
去し、液に硫安を添加し50〜90%飽和度の画分
を分散して得られた沈澱物を安定剤を加えた緩衝
液に溶解する。 抗腫瘍性物質SPF−100含有液は凍結状態で又
は凍結乾燥して保存することができる。この物質
は必要に応じてイオン交換体あるいはゲル過剤
と接触せしめてさらに精製することができる。イ
オン交換体としてはイオン交換樹脂、イオン交換
セルローズ、イオン交換セフアデツクス(フアル
マシア社製)等が用いられ、ゲル過剤として
は、トヨパールHW50FまたはHW−50SF(東洋
曹達(株)製)、セフアデツクス(フアルマシア社製)
等が用いられる。またカルシウムホスフエートゲ
ルはそのままでも使用できるが、ハイドロキシル
アパタイトの形で使用するのが便利である。前記
のようにして得られた物質の水溶液をこれらのイ
オン交換体又はゲル過剤を充填したカラムに、
適当な速度で通過せしめるか、あるいはイオン交
換体又はゲル過剤を入れた一定容器中に一度に
その水溶液を加えて、これらの処理剤と有効物質
を接触させる。溶出は適当な塩濃度とpHの緩衝
液を用いて行なう。イオン交換体、ゲル過剤又
はカルシウムホスフエートゲルは2種以上組合わ
せて用いることもできる。たとえばDEAEセフア
デツクスと接触させ、溶出した液を更にトヨパー
ルHW50Fまたは50SFと接触させそして溶出を行
なうと、更に精製の効果を上げることができる。 実施例8で得られた本発明の抗腫瘍性物質SPF
−100はペプチド性物質で、凍結乾燥すると淡黄
色の粉末となる。 次に、抗腫瘍性物質SPF−100の理化学的性質
を示す。 1 元素分析 C:46.42%〜43.69% H: 5.94%〜 4.85% N:11.42%〜 9.50% 2 分子量 ゲル過法による測定では、分子量約500〜
25000である。 3 分解点 本物質は160℃で褐変し、200℃になると黒色
となり分解する。 4 比旋光度 〔α〕20 D=+45.0゜(c=1.00) 5 紫外線吸収スペクトル 本物質の0.1%の水溶液の紫外線吸収スペク
トルは第1図に示される。257nm、265nm、
280nm、287nmおよび325nmに吸収がみられ、
特徴的である。 6 赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。 1760cm-1、1630cm-1付近、1500cm-1付近、
1400cm-1付近、1070cm-1 に吸収が認められる。 7 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノール、エタノール
には一部溶解し、n−ブタノール、イソブタノ
ール、n−プロパノール、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、アセトン、メチルイソブチルケト
ン、エチルエーテル等の溶剤には難溶又は不溶
である。 8 塩基性、酸性、中性の区別 本物質の1.0%水溶液のpHは6.5である。 9 物質の色 淡黄色粉末状である。 10 呈色反応 ニンヒドリン反応 + ビユウレツト反応 + モーリツシユ反応 − デイシエ反応 − アンスロン反応 − システイン硫酸反応 − 11 安定化 本物質はL−システイン、ジチオスレイトー
ル(DTT)、グリセロール、アルブミン、グロ
ブリン、α−およびβ−サイクロデキストリ
ン、(NH4)2SO4、食塩等の添加によつて安定
化される。 次に本発明の実施例を示す。 なお実施例における抗腫瘍性物質SPR−100の
活性単位の測定は鵜高法(Journal of
Antibiotics vol35No.10 1319〜1325OCT 1982)
によつた。測定には高分子透過性大腸菌変異株
MP−2(FERM−P5432)(Agric.Biol.Chem.43
371(1979))を使用してMP−2に対する抗菌活
性を指標としてバイオ・アツセイする。 すなわち、パクト・アンチバイオチツクメデイ
アム(デイフコ社製品)1.75%、寒天1.3%より
成る培地(M3培地)を120℃、15分加熱殺菌し、
20mlずつシヤーレに分注し、放冷してプレート培
地を調製する。 一方、ペプトン0.5%、肉エキス0.5%、
NaCl0.3%、寒天0.8%より成る培地を120℃、15
分加熱殺菌する。その後42℃の恒温槽に保ち、培
地の温度が42℃になつたらあらかじめ37℃で17時
間培養したMP−2菌を1ml中に104個の細胞が
存在する様に培地中に加える。ピペツトによつて
2mlを採取し、あらかじめ作製して置いたM3培
地表面上に加え、すばやく均一にひろげ固化させ
る。抗腫瘍性物質SPF−100を含む被験液を適当
に希釈して、その溶液0.05mlをペーパー・デイス
ク(直径8mm)(東洋紙)にしみ込ませる。こ
のペーパー・デイスクを前記作製プレート上に置
き、37℃で17時間培養し、抗腫瘍性物質SPF−
100によつてできる阻止円の大きさを測定する。
阻止円の直径10mmを与えるSPF−100の濃度を1
単位(1μ)と定義する。 実施例 1 次の組成の培地A 9を用いた。 肉エキス 1% ポリペプトン 1% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% NaCl 0.1% pH=6.9 Streptococcus pyogenes ATCC21060をBHI
培地100mlに接種して37℃、8時間静置培養おこ
なつた種培養液10mlを培地A1に接種し、種培
養と同一条件で前培養する。この培養液を培地
A8に接種し、10のジヤーフアーメンターを
用いて37℃、11.5hr300rpmで撹拌しながら嫌気
的に培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加
し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を
遠心分離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が256単
位/ml含有されていた。 実施例 2 次の組成の培地B 9を用いた。 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% NaCl 0.1% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地B8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、11hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養後、
ペニシリンG800単位/mlを添加し、更に培養を
5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、菌
体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が351単
位/ml含有されていた。 実施例 3 次の組成の培地 9を用いた 肉エキス 1% ポリペプトン 1% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% pH=6.2 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地C8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、14hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養後、
ペニシリンG1000単位mlを添加し、更に培養を
5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し菌体
を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が298単
位/ml含有されていた。 実施例 4 次の組成の培地D9を用いた。 肉エキス 0.5% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% NaCl 0.5% pH=6.5 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地D8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、15.5hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養
後、ペニシリンG1200単位/mlを添加し、更に培
養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、
菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が285単
位/ml含有されていた。 実施例 5 次の組成の培地 9を用いた。 酵母エキス 3.0% pH=6.5 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した種培養液1を培地E8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて
37℃、15hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養
後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更に培
養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、
菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が182単
位/ml含有されていた。 実施例 6 下記の培地 9を用いた。 マルトース 0.3% 肉エキス 2.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様にして前培養した培養液1を培地
F8に接種し、10ジヤーフアーメンターを用
いて、37℃、10.5hr30rpm撹拌しながら嫌気的に
培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更
に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分
離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が250単
位/ml含有されていた。 実施例 7 下記の培地G 9を用いた。 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% NaCl 0.5% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様にして前培養した培養液1を培地
G8に接種し、10ジヤーフアーメンターを用
いて、37℃、15hr300rpm撹拌しながら嫌気的に
培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更
に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分
離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が200単
位/ml含有されていた。 実施例 8 実施例4の培養で得た培養液5は抗腫瘍性
物質SPF−100を143×104単位含有していた。 培養液には硫安を添加し50〜90%飽和度の画
分を分取して沈澱物を得た。この沈澱物は抗腫瘍
性物質SPF−100を118×104単位含有していた。 この沈澱物全量を安定剤含有緩衝液300mlに溶
解し、溶解液をDEAE−セルロースカラム(5×
70cm)に加え、抗腫瘍性物質SPF−100を吸着さ
せた。これに0.3M NaCl溶液を用いて段階的に
溶出させ、活性部分を分取する。得られた活性は
102.2×104単位であつた。 活性部分をDEAE−セフアデツクスA−25のカ
ラム(2.6×70cm)に加え、活性部分を吸着させ、
これに燐酸緩衝液中の食塩濃度を直線的に上昇さ
せつつ溶出を行い、活性部分を分取する。得られ
た活性は79.3×10単位であつた。 更に、この溶出液を濃縮しゲル過材トヨパー
ルHW−50Fのカラム(2.6×100cm)に加えて吸
着させ、次いで1/100Mリン酸緩衝液
(KH2PO4−Na2HPO4)で溶出し、活性画分を分
取し、これをSPF−100とした。得れた活性は
71.1×104単位であつた。 ここに得られた溶出液を凍結乾燥し抗腫瘍性物
質SPF−100の淡黄色粉末1780mgを得た。 実施例8で得た抗腫瘍性物質SPF−100を被媒
薬として、in vitro、in vitro in vivo、in vivo
それぞれの実験に供し、抗腫瘍活性について効果
を確認した。 試験例 1 (in vitro試験) in vitroにおける被験薬の抗腫瘍活性測定試験
に細胞生長度測定法にもとづき実施した。 癌細胞としてはP−388およびL−
1210Lymphoma(リンパ腫)(DBA/2系マウス
同系移植腫瘍をin vitroで継代培養)を用い、こ
れをそれぞれ10%FCS添加RPMI1640培地(5×
10-5M2−メルカプトエタノール、50mg/カナ
マイシン含有)に懸濁する。この培養液1mlをフ
アルコン3047プレートに注入し、癌細胞が5×
104cells/wellになるようにする。ついでこの培
養液に所定量の被験薬(0.1mlの培養液に溶解又
は懸濁)を注入して、37℃で5%CO2存在下に培
養する。被験薬注入後48時間経過してから生体染
色(ニグロシンBを使用)を行ない、次式により
細胞生長度を算出した。 細胞生長度=各実験群の細胞数/対照群の細胞数×
100 この結果を第1表に示す。
その製法に関するものである。 従来、溶連菌の生菌体を弱毒化して製剤化した
ものは、すでに制癌剤として使用されている。 また、ストレプトコツカス・ピオゲネスの菌体
を破砕後水または塩類溶液で有効成分を抽出し、
有機溶媒を加えて、抗腫瘍性成分を沈澱として、
回収する方法(特公昭38−1647)、溶連菌を溶菌
酵素、リゾチーム、セルラーゼまたは蛋白質分解
酵素により、溶菌し、活性画分を水溶性区分とし
て分画する方法(英国特許第1163865号)などが
知られている。 このように、ストレプトコツカス属細菌そのも
のもしくはその菌体成分に抗腫瘍活性があること
は広く知られているのであるが、従来知られたも
のは、菌体もしくは水可溶性もしくは不溶性高分
子細胞構成物質であるに過ぎなかつた。菌体もし
くは菌体内から有効成分を単離しようとすれば、
菌体を溶菌したり、機械的に破砕したりして全体
を分画しなければならなかつた。このような処理
によれば、精製は複雑となり、有効成分の単離は
きわめて困難であつた。実際に分離し、有効成分
として測定された例では分子量150000の蛋白質が
知られている。(特公昭48−43841) 本発明者らは、よりすぐれた抗腫瘍性有効成分
を溶連菌に求めて鋭意研究した結果、全く新規な
抗腫瘍性物質SPF−100を培養液中に見出すに至
つたのである。 本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は培養中菌体
外に排出され、培養液中に存在するようになるの
で、菌体を過して除去し、培養液を精製すれ
ばよいので、単離はかなり容易なものとなる。 本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は培養液中に
排出されるとともに、分子量が約500〜25000であ
ることによつて特長づけれる。 従来、溶連菌関連の抗腫瘍性物質で、培養液中
に蓄積されたものではなく、また分子量も数万以
下のものは知られておらず、本発明の抗腫瘍性物
質SPF−100は全く新規な物質と認められる。 また、本発明の抗腫瘍性物質SPF−100は、元
素分析、呈色反応等からペプチド性物質と認めら
れるが、紫外線吸収スペクトルで特異な吸収があ
り、従来広く知られた抗腫瘍活性物質などとも明
らかに相違する物質であつて、物質として新規な
ものと認められるものである。 本発明は、ストレプトコツカス属に属する抗腫
瘍性物質SPF−100生産菌を培養し、培養物から
抗腫瘍性物質SPF−100を採取することを特徴と
する抗腫瘍性物質SPF−100の製法を包含するも
のである。 本発明においては、ストレプトコツカス属に属
する抗腫瘍性物質SPF−100生産菌が広く使用さ
れるが、その一例としてストレプトコツカス・ピ
オゲネス(Streptococcus pyogenes)
ATCC21060があげられる。 培養液は、肉エキス培地、酵母エキス培地、ブ
レイン・ハート・インフユージヨン培地(BHI
培地)等の天然培地がよく用いられるが、ストレ
プトコツカス属細菌が有効に生育する培地であれ
ば炭素源、窒素源等含んだ一般培地も使用するこ
とができる。 培養はpH5.0〜8.0、好ましくは6.1〜7.2で30〜
40℃好ましくは35〜37℃であり嫌気的に静置培養
をおこなうのが一般的であるが、その他撹拌培養
等の変法も採用することができる。 本発明においては、培養中の適当な時期にペニ
シリン又はその関連物質を添加することが、抗腫
瘍性物質SPF−100の取得に重要な役割をはたす
ことになる。 ペニシリン又はその関連物質の添加時期は37℃
の培養で対数増殖期にかかつて後3〜20時間の
間、特に5〜10時間が好ましい。その後1時間及
至20時間好ましくは3〜15時間そのまま培養を続
けることによつて、培養液中に抗腫瘍性物質SPF
−100を多量蓄積させることができる。 ペニシリン又はその関連物質としてはすでに知
られたペニシリンと類似の作用をもつ関連物質で
あればいかなるものでもよいが、ペニシリンGが
普通用いられる。添加量はペニシリンGで100〜
3000単位/ml、好ましくは300〜1500単位/ml培
養液程度で十分である。 得られた培養液は、遠心分離によつて菌体を除
去し、液に硫安を添加し50〜90%飽和度の画分
を分散して得られた沈澱物を安定剤を加えた緩衝
液に溶解する。 抗腫瘍性物質SPF−100含有液は凍結状態で又
は凍結乾燥して保存することができる。この物質
は必要に応じてイオン交換体あるいはゲル過剤
と接触せしめてさらに精製することができる。イ
オン交換体としてはイオン交換樹脂、イオン交換
セルローズ、イオン交換セフアデツクス(フアル
マシア社製)等が用いられ、ゲル過剤として
は、トヨパールHW50FまたはHW−50SF(東洋
曹達(株)製)、セフアデツクス(フアルマシア社製)
等が用いられる。またカルシウムホスフエートゲ
ルはそのままでも使用できるが、ハイドロキシル
アパタイトの形で使用するのが便利である。前記
のようにして得られた物質の水溶液をこれらのイ
オン交換体又はゲル過剤を充填したカラムに、
適当な速度で通過せしめるか、あるいはイオン交
換体又はゲル過剤を入れた一定容器中に一度に
その水溶液を加えて、これらの処理剤と有効物質
を接触させる。溶出は適当な塩濃度とpHの緩衝
液を用いて行なう。イオン交換体、ゲル過剤又
はカルシウムホスフエートゲルは2種以上組合わ
せて用いることもできる。たとえばDEAEセフア
デツクスと接触させ、溶出した液を更にトヨパー
ルHW50Fまたは50SFと接触させそして溶出を行
なうと、更に精製の効果を上げることができる。 実施例8で得られた本発明の抗腫瘍性物質SPF
−100はペプチド性物質で、凍結乾燥すると淡黄
色の粉末となる。 次に、抗腫瘍性物質SPF−100の理化学的性質
を示す。 1 元素分析 C:46.42%〜43.69% H: 5.94%〜 4.85% N:11.42%〜 9.50% 2 分子量 ゲル過法による測定では、分子量約500〜
25000である。 3 分解点 本物質は160℃で褐変し、200℃になると黒色
となり分解する。 4 比旋光度 〔α〕20 D=+45.0゜(c=1.00) 5 紫外線吸収スペクトル 本物質の0.1%の水溶液の紫外線吸収スペク
トルは第1図に示される。257nm、265nm、
280nm、287nmおよび325nmに吸収がみられ、
特徴的である。 6 赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。 1760cm-1、1630cm-1付近、1500cm-1付近、
1400cm-1付近、1070cm-1 に吸収が認められる。 7 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノール、エタノール
には一部溶解し、n−ブタノール、イソブタノ
ール、n−プロパノール、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、アセトン、メチルイソブチルケト
ン、エチルエーテル等の溶剤には難溶又は不溶
である。 8 塩基性、酸性、中性の区別 本物質の1.0%水溶液のpHは6.5である。 9 物質の色 淡黄色粉末状である。 10 呈色反応 ニンヒドリン反応 + ビユウレツト反応 + モーリツシユ反応 − デイシエ反応 − アンスロン反応 − システイン硫酸反応 − 11 安定化 本物質はL−システイン、ジチオスレイトー
ル(DTT)、グリセロール、アルブミン、グロ
ブリン、α−およびβ−サイクロデキストリ
ン、(NH4)2SO4、食塩等の添加によつて安定
化される。 次に本発明の実施例を示す。 なお実施例における抗腫瘍性物質SPR−100の
活性単位の測定は鵜高法(Journal of
Antibiotics vol35No.10 1319〜1325OCT 1982)
によつた。測定には高分子透過性大腸菌変異株
MP−2(FERM−P5432)(Agric.Biol.Chem.43
371(1979))を使用してMP−2に対する抗菌活
性を指標としてバイオ・アツセイする。 すなわち、パクト・アンチバイオチツクメデイ
アム(デイフコ社製品)1.75%、寒天1.3%より
成る培地(M3培地)を120℃、15分加熱殺菌し、
20mlずつシヤーレに分注し、放冷してプレート培
地を調製する。 一方、ペプトン0.5%、肉エキス0.5%、
NaCl0.3%、寒天0.8%より成る培地を120℃、15
分加熱殺菌する。その後42℃の恒温槽に保ち、培
地の温度が42℃になつたらあらかじめ37℃で17時
間培養したMP−2菌を1ml中に104個の細胞が
存在する様に培地中に加える。ピペツトによつて
2mlを採取し、あらかじめ作製して置いたM3培
地表面上に加え、すばやく均一にひろげ固化させ
る。抗腫瘍性物質SPF−100を含む被験液を適当
に希釈して、その溶液0.05mlをペーパー・デイス
ク(直径8mm)(東洋紙)にしみ込ませる。こ
のペーパー・デイスクを前記作製プレート上に置
き、37℃で17時間培養し、抗腫瘍性物質SPF−
100によつてできる阻止円の大きさを測定する。
阻止円の直径10mmを与えるSPF−100の濃度を1
単位(1μ)と定義する。 実施例 1 次の組成の培地A 9を用いた。 肉エキス 1% ポリペプトン 1% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% NaCl 0.1% pH=6.9 Streptococcus pyogenes ATCC21060をBHI
培地100mlに接種して37℃、8時間静置培養おこ
なつた種培養液10mlを培地A1に接種し、種培
養と同一条件で前培養する。この培養液を培地
A8に接種し、10のジヤーフアーメンターを
用いて37℃、11.5hr300rpmで撹拌しながら嫌気
的に培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加
し、更に培養を5hr継続する。得られた培養液を
遠心分離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が256単
位/ml含有されていた。 実施例 2 次の組成の培地B 9を用いた。 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% NaCl 0.1% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地B8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、11hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養後、
ペニシリンG800単位/mlを添加し、更に培養を
5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、菌
体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が351単
位/ml含有されていた。 実施例 3 次の組成の培地 9を用いた 肉エキス 1% ポリペプトン 1% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% pH=6.2 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地C8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、14hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養後、
ペニシリンG1000単位mlを添加し、更に培養を
5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し菌体
を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が298単
位/ml含有されていた。 実施例 4 次の組成の培地D9を用いた。 肉エキス 0.5% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% カザミノ酸 0.25% NaCl 0.5% pH=6.5 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した培養液1を培地D8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて37
℃、15.5hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養
後、ペニシリンG1200単位/mlを添加し、更に培
養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、
菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が285単
位/ml含有されていた。 実施例 5 次の組成の培地 9を用いた。 酵母エキス 3.0% pH=6.5 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様に前培養した種培養液1を培地E8
に接種し、10ジヤーフアーメンターを用いて
37℃、15hr300rpmで撹拌しながら嫌気的に培養
後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更に培
養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分離し、
菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が182単
位/ml含有されていた。 実施例 6 下記の培地 9を用いた。 マルトース 0.3% 肉エキス 2.0% ポリペプトン 1.0% 酵母エキス 0.25% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様にして前培養した培養液1を培地
F8に接種し、10ジヤーフアーメンターを用
いて、37℃、10.5hr30rpm撹拌しながら嫌気的に
培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更
に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分
離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が250単
位/ml含有されていた。 実施例 7 下記の培地G 9を用いた。 肉エキス 1.0% ポリペプトン 1.0% NaCl 0.5% pH=7.0 Streptococcus pyogenes ATCC21060を実施
例1と同様にして前培養した培養液1を培地
G8に接種し、10ジヤーフアーメンターを用
いて、37℃、15hr300rpm撹拌しながら嫌気的に
培養後、ペニシリンG1000単位/mlを添加し、更
に培養を5hr継続する。得られた培養液を遠心分
離し、菌体を除去した。 培養液には抗腫瘍性物質SPF−100が200単
位/ml含有されていた。 実施例 8 実施例4の培養で得た培養液5は抗腫瘍性
物質SPF−100を143×104単位含有していた。 培養液には硫安を添加し50〜90%飽和度の画
分を分取して沈澱物を得た。この沈澱物は抗腫瘍
性物質SPF−100を118×104単位含有していた。 この沈澱物全量を安定剤含有緩衝液300mlに溶
解し、溶解液をDEAE−セルロースカラム(5×
70cm)に加え、抗腫瘍性物質SPF−100を吸着さ
せた。これに0.3M NaCl溶液を用いて段階的に
溶出させ、活性部分を分取する。得られた活性は
102.2×104単位であつた。 活性部分をDEAE−セフアデツクスA−25のカ
ラム(2.6×70cm)に加え、活性部分を吸着させ、
これに燐酸緩衝液中の食塩濃度を直線的に上昇さ
せつつ溶出を行い、活性部分を分取する。得られ
た活性は79.3×10単位であつた。 更に、この溶出液を濃縮しゲル過材トヨパー
ルHW−50Fのカラム(2.6×100cm)に加えて吸
着させ、次いで1/100Mリン酸緩衝液
(KH2PO4−Na2HPO4)で溶出し、活性画分を分
取し、これをSPF−100とした。得れた活性は
71.1×104単位であつた。 ここに得られた溶出液を凍結乾燥し抗腫瘍性物
質SPF−100の淡黄色粉末1780mgを得た。 実施例8で得た抗腫瘍性物質SPF−100を被媒
薬として、in vitro、in vitro in vivo、in vivo
それぞれの実験に供し、抗腫瘍活性について効果
を確認した。 試験例 1 (in vitro試験) in vitroにおける被験薬の抗腫瘍活性測定試験
に細胞生長度測定法にもとづき実施した。 癌細胞としてはP−388およびL−
1210Lymphoma(リンパ腫)(DBA/2系マウス
同系移植腫瘍をin vitroで継代培養)を用い、こ
れをそれぞれ10%FCS添加RPMI1640培地(5×
10-5M2−メルカプトエタノール、50mg/カナ
マイシン含有)に懸濁する。この培養液1mlをフ
アルコン3047プレートに注入し、癌細胞が5×
104cells/wellになるようにする。ついでこの培
養液に所定量の被験薬(0.1mlの培養液に溶解又
は懸濁)を注入して、37℃で5%CO2存在下に培
養する。被験薬注入後48時間経過してから生体染
色(ニグロシンBを使用)を行ない、次式により
細胞生長度を算出した。 細胞生長度=各実験群の細胞数/対照群の細胞数×
100 この結果を第1表に示す。
【表】
試験例 2
(in vitro in vivo試験)
in vitro in vivoにおける試験薬の抗腫瘍活性
試験はddy系雌性、4又は5週齢マウスを使用し
て実施した。 癌細胞としてはエーリツヒ腹水癌細胞を用い、
これをKRP緩衝液に懸濁し、次いで被験薬の所
定量を混合して37℃で60分又は80分インキユベー
トする。この液0.2ml(癌細胞4×106cells又は8
×106cells)をマウス1個体当り1日1回7日間
連続して腹腔内に接種して、これらのマウスの生
存数を観察した。この結果を第2表及び第3表に
示す。
試験はddy系雌性、4又は5週齢マウスを使用し
て実施した。 癌細胞としてはエーリツヒ腹水癌細胞を用い、
これをKRP緩衝液に懸濁し、次いで被験薬の所
定量を混合して37℃で60分又は80分インキユベー
トする。この液0.2ml(癌細胞4×106cells又は8
×106cells)をマウス1個体当り1日1回7日間
連続して腹腔内に接種して、これらのマウスの生
存数を観察した。この結果を第2表及び第3表に
示す。
【表】
第2〜5表において、表示は生存数/使用
数を示す。
数を示す。
【表】
試験例 3
(in vivo試験)
in vivoにおける被験薬の抗腫瘍活性試験は
CRJ−CD−1(ICR)系、雄性、7週齢マウスを
使用して実施した。 癌細胞としてSarcoma−180腹水癌細胞を用
い、これをHank溶液に浮遊させ、マウスの腹腔
内に0.1ml(癌細胞2×106cells)接種した。 この癌細胞接種前1日1回5日間又は前後に1
日1回、前に5日間、後に5日間連続して被験薬
の所定量を腹腔内に投与して、その生存数を観察
した。その結果を第4表および第5表に示す。
CRJ−CD−1(ICR)系、雄性、7週齢マウスを
使用して実施した。 癌細胞としてSarcoma−180腹水癌細胞を用
い、これをHank溶液に浮遊させ、マウスの腹腔
内に0.1ml(癌細胞2×106cells)接種した。 この癌細胞接種前1日1回5日間又は前後に1
日1回、前に5日間、後に5日間連続して被験薬
の所定量を腹腔内に投与して、その生存数を観察
した。その結果を第4表および第5表に示す。
【表】
第1図は抗腫瘍性物質SPF−100 0.1%水溶液
の紫外線吸収スペクトルを示し、第2図は同じく
赤外線吸収スペクトルを示す。
の紫外線吸収スペクトルを示し、第2図は同じく
赤外線吸収スペクトルを示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 下記の理化学的性質を有する抗腫瘍性物質
SPF−100。 1 元素分析 C:46.42%〜43.69% H: 5.94%〜 4.85% N:11.42%〜 9.50% 2 分子量 ゲル濾過法による測定では分子量約500〜
25000である。 3 分解点 本物質は160℃で褐変し200℃になると黒色と
なり分解する。 4 比旋光度 〔α〕20 D=+45.0゜(C=1.00) 5 紫外線吸収スペクトル 本物質の0.1%の水溶液の紫外線吸収スペク
トルは、257nm、265nm、280nm、287nmおよ
び325nmに吸収が認められる。 6 赤外線吸収スペクトル 1760cm-1、1630cm-1付近、1500cm-1付近、
1400cm-1付近、1070cm-1 に吸収が認められる。 7 溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノール、エタノール
には一部溶解し、n−ブタノール、イソブタノ
ール、n−プロパノール、n−ヘキサン、クロ
ロホルム、アセトン、メチルイソブチルケト
ン、エチルエーテル等の溶剤には難溶又は不溶
である。 8 塩基性、酸性、中性の区別 本物質の1.0%の水溶液のpHは6.5である。 9 物質の色 淡黄色粉末状である。 10 呈色反応 ニンヒドリン反応 + ビユウレツト反応 + モーリツシユ反応 − デイシエ反応 − アンスロン反応 − システイン硫酸反応 − 11 安定化 本物質はL−システイン、ジチオスレイトー
ル(DTT)、グリセロール、アルブミン、グロ
ブリン、α−およびβ−サイクロデキストリン
(NH4)2SO4、食塩等の添加によつて安定化さ
れる。 2 ストレプトコツカス属に属する抗腫瘍性物質
SPF−100生産菌を培養し、培養物から抗腫瘍性
物質SPF−100を採取することを特徴とする抗腫
瘍性物質SPF−100の製法。 3 ストレプトコツカス属に属する抗腫瘍性物質
SPF−100生産菌を培養するに際し、培養中の適
当な時期にペニシリン又はその関連物質を添加し
て培養することを特徴とする特許請求の範囲第2
項に記載の抗腫瘍性物質SPF−100の製法。
Priority Applications (10)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59072865A JPS60218323A (ja) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | 抗腫瘍性物質spf―1000及びその製法 |
CA000459394A CA1237085A (en) | 1983-08-01 | 1984-07-20 | Spf-100 and process for the preparation thereof |
GB08418745A GB2146028B (en) | 1983-08-01 | 1984-07-23 | Spf-100 and process for the preparation thereof |
CH3684/84A CH663033A5 (fr) | 1983-08-01 | 1984-07-30 | Substance-melange dite ''spf-100'' et procede pour sa preparation. |
DE19843428017 DE3428017A1 (de) | 1983-08-01 | 1984-07-30 | Spf-100 und verfahren zu seiner herstellung |
KR1019840004559A KR850002276A (ko) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Spf-100의 제조방법 |
SE8403914A SE461532B (sv) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Cancermotverkande och immunaktiverande aemne (spf-100) |
FR8412119A FR2550223B1 (fr) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Spf-100 et procede de preparation |
NL8402388A NL8402388A (nl) | 1983-08-01 | 1984-07-31 | Geneesmiddel spf-100 en werkwijze voor de bereiding hiervan. |
US06/746,514 US4656037A (en) | 1983-08-01 | 1985-06-19 | SPF-100 and process for the preparation thereof |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59072865A JPS60218323A (ja) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | 抗腫瘍性物質spf―1000及びその製法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60218323A JPS60218323A (ja) | 1985-11-01 |
JPH0155274B2 true JPH0155274B2 (ja) | 1989-11-22 |
Family
ID=13501654
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59072865A Granted JPS60218323A (ja) | 1983-08-01 | 1984-04-13 | 抗腫瘍性物質spf―1000及びその製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60218323A (ja) |
-
1984
- 1984-04-13 JP JP59072865A patent/JPS60218323A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS60218323A (ja) | 1985-11-01 |
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