JPH01174383A - 酵素によるn−アセチルキトオリゴ糖の製造法 - Google Patents
酵素によるn−アセチルキトオリゴ糖の製造法Info
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Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、酵素によるN−アセチルキトオリゴ糖の製造
方法に関するものである。
方法に関するものである。
N−アセチルキトオリゴ糖の応用用途については、6量
体であるN−アセチルキトヘキサオースの免疫機能増強
作用、抗腫瘍効果など、医薬面での効果が期待されてい
る。臨床検査薬分野においては、β−N−アセチルグル
コサミニダーゼやリゾチームの測定基質として使用する
ことができる。
体であるN−アセチルキトヘキサオースの免疫機能増強
作用、抗腫瘍効果など、医薬面での効果が期待されてい
る。臨床検査薬分野においては、β−N−アセチルグル
コサミニダーゼやリゾチームの測定基質として使用する
ことができる。
従来の技術
N−アセチルキトオリゴ糖の製造法としては、酸による
部分分解により各種オリゴ糖を得る方法〔ジェイ・エイ
・ルプリー;ハイオケミカ・バイオフィジカ・アクタ
(Biochem、Biophys、Acta) 83
゜245−255(1964) 〕があるが、本方法に
よっては、特定のオリゴ糖を選択的に得ることはできず
、また分解条件を必ずしも一定に保つことは難しく、そ
のため収率も低い。
部分分解により各種オリゴ糖を得る方法〔ジェイ・エイ
・ルプリー;ハイオケミカ・バイオフィジカ・アクタ
(Biochem、Biophys、Acta) 83
゜245−255(1964) 〕があるが、本方法に
よっては、特定のオリゴ糖を選択的に得ることはできず
、また分解条件を必ずしも一定に保つことは難しく、そ
のため収率も低い。
一方、キチンを原料としてキチナーゼにより酵素分解し
て調製する方法〔アール・エフ・パウニングら;ネイチ
+ −(Nature) 200.1128(1963
) 〕もあるが、本方法によっても、特定のN−アセチ
ルキトオリゴ糖を効率的に調製することは同様に困難で
ある。
て調製する方法〔アール・エフ・パウニングら;ネイチ
+ −(Nature) 200.1128(1963
) 〕もあるが、本方法によっても、特定のN−アセチ
ルキトオリゴ糖を効率的に調製することは同様に困難で
ある。
さらに、N−アセチルキトオリゴ糖の製造方法について
は、ノカルジア属に属する微生物の生産するキチナーゼ
の逆反応を利用する方法が報告されている(特開昭62
−146598)。本方法は、硫安沈殿、カラムクロマ
ト分離などにより精製された精製キチナーゼを用いて、
N−アセチルキトテトラオースからN−アセチルキトヘ
キサオース、N−アセチルキトペンフォースからN−ア
セチルキトテトラオースなど2糖単位の付加転移を行う
ものである。本方法の場合、高度に精製した酵素を用い
ることが必須であり、必ずしも安価なN−アセチルキト
オリゴ糖の製造法とはいえない。
は、ノカルジア属に属する微生物の生産するキチナーゼ
の逆反応を利用する方法が報告されている(特開昭62
−146598)。本方法は、硫安沈殿、カラムクロマ
ト分離などにより精製された精製キチナーゼを用いて、
N−アセチルキトテトラオースからN−アセチルキトヘ
キサオース、N−アセチルキトペンフォースからN−ア
セチルキトテトラオースなど2糖単位の付加転移を行う
ものである。本方法の場合、高度に精製した酵素を用い
ることが必須であり、必ずしも安価なN−アセチルキト
オリゴ糖の製造法とはいえない。
発明が解決しようとする問題点
本発明は、酵素を用いてより安価に重合度の高いN−ア
セチルキトオリゴ糖を製造する方法を提供する。
セチルキトオリゴ糖を製造する方法を提供する。
問題点を解決するための手段
本発明者らは、より安価なN−セチルキトオリゴ糖の製
造方法について鋭意検討した結果、トリコデルマ属に属
する微生物の培養物に、糖転移付加反応の強いキチナー
ゼ活性を見出し、さらにノカルジア属に属する微生物の
培養物より精製されたキチナーゼに見出されている2糖
の転移付加活性に加え、1糖単位が転移付加される活性
を新たに見出し本発明を完成させるに至った。本発明に
示す微生物の培養物中のキチナーゼの糖転移付加活性は
、ノカルジア属に属する微生物の場合に比べはるかに強
力であって、従って、ノカルs、;゛r属に属する微生
物の場合と同様に微生物の培養物から精製した酵素を反
応に用いることができるにとどまらず、精製した酵素を
用いずに、その培養液、。
造方法について鋭意検討した結果、トリコデルマ属に属
する微生物の培養物に、糖転移付加反応の強いキチナー
ゼ活性を見出し、さらにノカルジア属に属する微生物の
培養物より精製されたキチナーゼに見出されている2糖
の転移付加活性に加え、1糖単位が転移付加される活性
を新たに見出し本発明を完成させるに至った。本発明に
示す微生物の培養物中のキチナーゼの糖転移付加活性は
、ノカルジア属に属する微生物の場合に比べはるかに強
力であって、従って、ノカルs、;゛r属に属する微生
物の場合と同様に微生物の培養物から精製した酵素を反
応に用いることができるにとどまらず、精製した酵素を
用いずに、その培養液、。
菌体あるいは、培養物よりキトビアーゼ活性を除去した
粗精製酵素を用いてもN−アセチルキトオリゴ糖を製造
することができる。例えば、ノカルジア属に属する微生
物の場合には、菌体を除去した培養液から塩析により取
得した沈殿物を、さらに、溶解、透析、イオン交換体ク
ロマトグラフィー、塩析、溶解、透析、ゲルクロマトグ
ラフィーの順に従って精製した酵素を用いることが必須
であったが、本発明による微生物の場合には、菌体を除
去した培養液から塩析により取得した沈殿物を、単に、
緩衝液に溶解し、イオン交換体クロマトグラフィーによ
って精製するだけで、N−アセチルキトオリゴ糖を製造
することのできる酵素を取得することができる。
粗精製酵素を用いてもN−アセチルキトオリゴ糖を製造
することができる。例えば、ノカルジア属に属する微生
物の場合には、菌体を除去した培養液から塩析により取
得した沈殿物を、さらに、溶解、透析、イオン交換体ク
ロマトグラフィー、塩析、溶解、透析、ゲルクロマトグ
ラフィーの順に従って精製した酵素を用いることが必須
であったが、本発明による微生物の場合には、菌体を除
去した培養液から塩析により取得した沈殿物を、単に、
緩衝液に溶解し、イオン交換体クロマトグラフィーによ
って精製するだけで、N−アセチルキトオリゴ糖を製造
することのできる酵素を取得することができる。
本発明の方法において用いられる酵素は、トリコデルマ
属に属する微生物の生産するキチナーゼであって少なく
とも3種類の酵素である。そのうちの1種は精製単離さ
れており次に示す如き理化学的性質を有する。
属に属する微生物の生産するキチナーゼであって少なく
とも3種類の酵素である。そのうちの1種は精製単離さ
れており次に示す如き理化学的性質を有する。
(a)作用
N−アセチルキトオリゴ糖に作用し、強い2糖単位の糖
転移反応を起こす。本酵素の酵素量に対し過剰のN−ア
セチルキトオリゴ糖を作用させた場合、糖転移反応によ
り重合度の高いN−アセチルキトオリゴ糖を生成する。
転移反応を起こす。本酵素の酵素量に対し過剰のN−ア
セチルキトオリゴ糖を作用させた場合、糖転移反応によ
り重合度の高いN−アセチルキトオリゴ糖を生成する。
またキチンまたはN−アセチルキトオリゴ糖に作用し、
これを加水分解する。
これを加水分解する。
(b) 至適pH
コロイドキチンを基質として40℃で反応を行った場合
、本酵素はp H5,5に至適pHを有する。
、本酵素はp H5,5に至適pHを有する。
(c)pH安定性
本酵素は4℃で24時間の処理においてpH4〜8で安
定である。
定である。
(d”l 至適温度
コロイドキチンを基質としてp H5,5で反応を行っ
た場合、本酵素は40℃付近に至適温度を有する。
た場合、本酵素は40℃付近に至適温度を有する。
(e) 熱安定性
本酵素はp H5,5で30分間の処理において55℃
以下で安定である。
以下で安定である。
(f) 分子量
5DS−ディスク電気泳動により測定される本酵素の分
子量は約68000である。
子量は約68000である。
〔励 等電点
アクリルアミドゲル焦点電気泳動により測定される本酵
素の等電点は4.5〜4.6である。
素の等電点は4.5〜4.6である。
本発明のキチナーゼは、次のようにして製造することが
できる。
できる。
本発明に用いられるキチナーゼは、トリコデルマ属に属
するキチナーゼ生産菌を培地に培養し、培養物中にキチ
ナーゼを生成させ、これを採取することにより得ること
ができる。
するキチナーゼ生産菌を培地に培養し、培養物中にキチ
ナーゼを生成させ、これを採取することにより得ること
ができる。
酵素生産に用いるトリコデルマ属に属するキチナーゼ生
産菌としては、トリコデルマ属に属しキチナーゼを生産
する菌であればいずれでも用いることができる。その例
としては、例えば、トリコブル’?・リーセイ (Tr
ichoderma reesei)が挙げられ、具体
的にはトリコデルマ・リーセイKDD−10(NRRL
−15497)(特開昭6O−27385)、同KDR
−11(FERM−P6635)(特開昭59−179
84)、同p c −3−7(NRRL−15500)
(特開昭6O−2731114)、同P CD −1
0(FBRM−P8172) (特開昭6l−2650
89)、同CDU−11(FERM−P8173)(特
開昭6l−265089)などが挙げられる。培養に用
いられる培地は、上記微生物が利用し得る炭素源、窒素
源、無機物など程よく含むものであれば天然培地または
合成培地のいづれでも用いることができる。
産菌としては、トリコデルマ属に属しキチナーゼを生産
する菌であればいずれでも用いることができる。その例
としては、例えば、トリコブル’?・リーセイ (Tr
ichoderma reesei)が挙げられ、具体
的にはトリコデルマ・リーセイKDD−10(NRRL
−15497)(特開昭6O−27385)、同KDR
−11(FERM−P6635)(特開昭59−179
84)、同p c −3−7(NRRL−15500)
(特開昭6O−2731114)、同P CD −1
0(FBRM−P8172) (特開昭6l−2650
89)、同CDU−11(FERM−P8173)(特
開昭6l−265089)などが挙げられる。培養に用
いられる培地は、上記微生物が利用し得る炭素源、窒素
源、無機物など程よく含むものであれば天然培地または
合成培地のいづれでも用いることができる。
炭素源としては、アビセル、ホエー、沖紙、一般紙類(
°例えば、新聞紙、トイレットペーパー)、バガス、も
みがら、稲わらなどの植物繊維質およびその含有物、シ
ュークロース、グルコース、ケーンモラセス、グリセロ
ール、セロビオース、キシロース、アラビノースなどが
単独もしくは組み合わせて用いられる。
°例えば、新聞紙、トイレットペーパー)、バガス、も
みがら、稲わらなどの植物繊維質およびその含有物、シ
ュークロース、グルコース、ケーンモラセス、グリセロ
ール、セロビオース、キシロース、アラビノースなどが
単独もしくは組み合わせて用いられる。
窒素源としては、硫安などの無機アンモニウム塩、尿素
、アミノ酸、肉エキス、ポリペプトン、ペプトンなどの
有機物が単独もしくは組み合わせて用いられる。
、アミノ酸、肉エキス、ポリペプトン、ペプトンなどの
有機物が単独もしくは組み合わせて用いられる。
無機塩類としては、リン酸第−カリウム、リン酸第二カ
リウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシウム、塩化銅、
硫酸鉄、硫酸マグネシウム、硫酸亜鉛などが単独もしく
は組み合わせて用いられる。
リウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシウム、塩化銅、
硫酸鉄、硫酸マグネシウム、硫酸亜鉛などが単独もしく
は組み合わせて用いられる。
さらに必要に応じて、培地に界面活性剤などを添加して
もよい。
もよい。
また、キチナーゼの生産能をより高めるには誘導基質で
あるキチンを添加することが好ましい。
あるキチンを添加することが好ましい。
培地は、液体培地でも固体培地でも良いが、大量に行う
場合には液体培地が好ましい。培養方法としては通常、
通気攪拌培養などの方法が用いられる。培養条件は、培
地の組成、菌株の種類によって異なるが、培養温度は2
5〜35℃、p)1は3〜6、培養時間は2〜15日間
である。培養は、培養途中でさらに新たな培地を該培養
培地に一括添加または間欠もしくは連続添加しながら行
うこともできる。目的とするキチナーゼは通常菌体外に
蓄積されるので、公知の分離精製手段により、培養物か
ら分離精製される。例えば、培養物から遠心分離あるい
は濾過により菌体を除去した後、培養ν液に飽和量の芒
硝(硫酸ナトリウム10水塩)または硫酸アンモニウム
などの塩を加えて沈殿物を得る。
場合には液体培地が好ましい。培養方法としては通常、
通気攪拌培養などの方法が用いられる。培養条件は、培
地の組成、菌株の種類によって異なるが、培養温度は2
5〜35℃、p)1は3〜6、培養時間は2〜15日間
である。培養は、培養途中でさらに新たな培地を該培養
培地に一括添加または間欠もしくは連続添加しながら行
うこともできる。目的とするキチナーゼは通常菌体外に
蓄積されるので、公知の分離精製手段により、培養物か
ら分離精製される。例えば、培養物から遠心分離あるい
は濾過により菌体を除去した後、培養ν液に飽和量の芒
硝(硫酸ナトリウム10水塩)または硫酸アンモニウム
などの塩を加えて沈殿物を得る。
この沈殿物を濾過あるいは遠心分離などの方法により分
離取得した後、風乾、凍結乾燥、アセトンなど親水溶媒
による脱水乾燥などの方法で乾燥粉末とする。このよう
な方法で得られた材料を、粗酵素粉末とする。粗酵素粉
末からのキチナーゼの分離精製は、D E A E −
3epharose(ファルマシア・ファイン・ケミカ
ル社製)などの1段階のイオン交換クロマトク゛ラフイ
ー、または硫安分画操作など、キトビアーゼ活性を除く
ことのできる操作ならいずれの操作でもよく、簡単な単
位操作で精製を行うことができる。
離取得した後、風乾、凍結乾燥、アセトンなど親水溶媒
による脱水乾燥などの方法で乾燥粉末とする。このよう
な方法で得られた材料を、粗酵素粉末とする。粗酵素粉
末からのキチナーゼの分離精製は、D E A E −
3epharose(ファルマシア・ファイン・ケミカ
ル社製)などの1段階のイオン交換クロマトク゛ラフイ
ー、または硫安分画操作など、キトビアーゼ活性を除く
ことのできる操作ならいずれの操作でもよく、簡単な単
位操作で精製を行うことができる。
この精製方法により、3種のキチナーゼを得ることがで
きる。1種は1糖単位の転移付加反応を有し、他の2種
は2糖単位の転移付加反応を有する。2糖単位の転移付
加反応の活性が強い方の酵素の理化学的性質は前記のと
おりである。
きる。1種は1糖単位の転移付加反応を有し、他の2種
は2糖単位の転移付加反応を有する。2糖単位の転移付
加反応の活性が強い方の酵素の理化学的性質は前記のと
おりである。
このようにして得られるキチナーゼの活性や糖転移反応
は次のようにして測定する。
は次のようにして測定する。
(1)キチナーゼの活性
0.2%コロイドキチンを含む0.2M酢酸緩衝液(p
H5,6)2.0mlに酵素液を加えて40℃で10分
間反応させる。反応後シャール試薬(05gのフェリシ
アン化カリウムを0.5M炭酸す) IJウム溶液11
に溶解したもの>3.0mlを加え沸騰渦中で15分間
加熱する。水で冷却後、遠心分離して不溶物を除き上清
液の420nmにおける吸光度の減少を測定する。還元
糖の生成はN−アセデルグルコサミンを用いた標準曲線
から求める。酵素活性IUは1分間に1μmoleのN
−アセデルグルコサミンを生成する酵素量とした。
H5,6)2.0mlに酵素液を加えて40℃で10分
間反応させる。反応後シャール試薬(05gのフェリシ
アン化カリウムを0.5M炭酸す) IJウム溶液11
に溶解したもの>3.0mlを加え沸騰渦中で15分間
加熱する。水で冷却後、遠心分離して不溶物を除き上清
液の420nmにおける吸光度の減少を測定する。還元
糖の生成はN−アセデルグルコサミンを用いた標準曲線
から求める。酵素活性IUは1分間に1μmoleのN
−アセデルグルコサミンを生成する酵素量とした。
(2)糖転移反応
5%のN−アセチルキトオリゴ糖を含む0.1Mリン酸
緩衝液(pH5,6)2mlに酵素溶液を加えて40℃
で60時間反応させる。
緩衝液(pH5,6)2mlに酵素溶液を加えて40℃
で60時間反応させる。
一定時間ごとに反応液を採取し沸騰渦中で10分加熱し
反応を停止させる。これら溶液を高速液体クロマトグラ
フィーに供し、反応生成物を確認する。
反応を停止させる。これら溶液を高速液体クロマトグラ
フィーに供し、反応生成物を確認する。
本発明の原料としては、キチン部分加水分解物、N−ア
セチルキトオリゴ糖などが用いられる。
セチルキトオリゴ糖などが用いられる。
これらキチン部分加水分解物は、キチンを濃塩酸で40
℃で2〜3時間加水分解しアルカリで中和した後、活性
炭に吸着させアルコ一ルで溶出することによって調製で
きる。また、キチン部分加水分解物は、キチンを酸また
はアルカリで可溶化機中和し、キチナーゼを作用させて
部分分解させ、その後、OF膜で処理した透過液を活性
炭に吸着させアルコールで溶出することによって調製で
きる。キチン部分加水分解物は、2〜8量体のN−アセ
チルキトオリゴ糖を含むそれぞれのN−アセチルキトオ
リゴ糖は、上記アルコール溶出時に、アルコール濃度勾
配をかけて溶出したり、あるいは、ゲル沖過や高速液体
クロマトグラフィーなどの手段により分離し調製するこ
とができる。
℃で2〜3時間加水分解しアルカリで中和した後、活性
炭に吸着させアルコ一ルで溶出することによって調製で
きる。また、キチン部分加水分解物は、キチンを酸また
はアルカリで可溶化機中和し、キチナーゼを作用させて
部分分解させ、その後、OF膜で処理した透過液を活性
炭に吸着させアルコールで溶出することによって調製で
きる。キチン部分加水分解物は、2〜8量体のN−アセ
チルキトオリゴ糖を含むそれぞれのN−アセチルキトオ
リゴ糖は、上記アルコール溶出時に、アルコール濃度勾
配をかけて溶出したり、あるいは、ゲル沖過や高速液体
クロマトグラフィーなどの手段により分離し調製するこ
とができる。
本発明で上記原料と上記キチナーゼを作用させるには、
原料を0.5〜30重量%含むものを基質とし、pH3
〜7、温度30〜60℃で酵素量は基質1g当り1〜2
000Uを用いて反応させると良い。反応時間は、基質
量、反応pH,温度、酵素量などによって大きく異なる
が、通常30分〜60時間である。
原料を0.5〜30重量%含むものを基質とし、pH3
〜7、温度30〜60℃で酵素量は基質1g当り1〜2
000Uを用いて反応させると良い。反応時間は、基質
量、反応pH,温度、酵素量などによって大きく異なる
が、通常30分〜60時間である。
かくして酵素反応を終了した反応混合物は沸騰湯中で1
0分間加熱し反応を停止させる。
0分間加熱し反応を停止させる。
上記酵素反応により1以上の糖が転移付加したN−アセ
チルキトオリゴ糖を含む反応混合物が得られる。
チルキトオリゴ糖を含む反応混合物が得られる。
このようにして得られる反応混合物からのN−アセチル
キトオリゴ糖の分離精製は、周知の分離、精製手段によ
り行うことができる。
キトオリゴ糖の分離精製は、周知の分離、精製手段によ
り行うことができる。
たとえば、活性炭に反応混合物を吸着させ、アルコール
濃度勾配法により分離溶出させる方法や、ゲルp過、高
速液体クロマトグラフィーなどの手段により分離、精製
することができる。
濃度勾配法により分離溶出させる方法や、ゲルp過、高
速液体クロマトグラフィーなどの手段により分離、精製
することができる。
次に、本発明の参考例および実施例についてさらに具体
的に説明するが、これらは本発明の範囲を制限するもの
ではない。
的に説明するが、これらは本発明の範囲を制限するもの
ではない。
参考例I
KDR−11をポテトデキストロース寒天培地で28℃
で7日間培養し活性化した。該活性化胞子を生理食塩水
に均一に懸濁したく約108個/m1)。
で7日間培養し活性化した。該活性化胞子を生理食塩水
に均一に懸濁したく約108個/m1)。
その懸濁液Q、5mlを5Qmlの第1表に示す標準培
地に植菌し、28℃、pH4で2日間培養した。
地に植菌し、28℃、pH4で2日間培養した。
第 1 表 (標準培地)
アビセルpH301(旭化成社製) 1 %
ポリペプトン 0.1 %酵母
エキス 0.05%(NH=)s
so< 0.14%K H2P
04 0.2 %MgSO4・
7H,OO,03% Ca CAx ・2 H2O0,03%トゥイーンー8
0(花王アトラス社製> 1 1111/β微量金属
塩液” 1ml/j!*〔ホウ
酸 6 mgモリブデン酸ア
ンモニウム 26’ mg塩化第二鉄
100 mg硫酸銅 40 mg 塩化マンガン 8 mg塩化亜鉛
200 mg を100 mlのイオン交換水に溶かしたもの〕ついで
、該培養液25 Qml (フラスコ5本分)を250
Qmlの標準培地を含有する5βジャーファーメンタ
−に添加して28℃、pH4で2日間種培養した。さら
に核種培養液25 Qmlを2500m1の培地(第1
表の標準培地において、アビセルpH301を6%に代
え、さらにコロイドキチン0.5%を加えたもの)を含
有する5Ilジャーファーメンタ−に添加し、28℃、
pH4で10日間培養した。
ポリペプトン 0.1 %酵母
エキス 0.05%(NH=)s
so< 0.14%K H2P
04 0.2 %MgSO4・
7H,OO,03% Ca CAx ・2 H2O0,03%トゥイーンー8
0(花王アトラス社製> 1 1111/β微量金属
塩液” 1ml/j!*〔ホウ
酸 6 mgモリブデン酸ア
ンモニウム 26’ mg塩化第二鉄
100 mg硫酸銅 40 mg 塩化マンガン 8 mg塩化亜鉛
200 mg を100 mlのイオン交換水に溶かしたもの〕ついで
、該培養液25 Qml (フラスコ5本分)を250
Qmlの標準培地を含有する5βジャーファーメンタ
−に添加して28℃、pH4で2日間種培養した。さら
に核種培養液25 Qmlを2500m1の培地(第1
表の標準培地において、アビセルpH301を6%に代
え、さらにコロイドキチン0.5%を加えたもの)を含
有する5Ilジャーファーメンタ−に添加し、28℃、
pH4で10日間培養した。
培養終了後、培養液を濾過し、その上澄液中のキチナー
ゼ活性を求めたところ、6.2 ロ/ll1lであった
。
ゼ活性を求めたところ、6.2 ロ/ll1lであった
。
さらに、培養液を800 Qr、p、m、15分間で遠
心分離した。得られた炉液に硫安を0.8飽和度で添加
し、5℃で24時間塩析した。沈殿したタンパク質と塩
の混合物を炉別しp液を水に溶解抽出後、セファデック
スG−25(ファルマシア・ファイン・ケミカル社製)
カラムに通液し蒸留水で溶出を行い脱塩した。
心分離した。得られた炉液に硫安を0.8飽和度で添加
し、5℃で24時間塩析した。沈殿したタンパク質と塩
の混合物を炉別しp液を水に溶解抽出後、セファデック
スG−25(ファルマシア・ファイン・ケミカル社製)
カラムに通液し蒸留水で溶出を行い脱塩した。
ついで溶出液を凍結乾燥し、粗酵素標品的50gを得た
。本粗酵素標品のキチナーゼ活性は0、280/mgで
あった。
。本粗酵素標品のキチナーゼ活性は0、280/mgで
あった。
この粗酵素標品2gを、予め50mM酢酸緩衝液(pH
5,0)で平衡化しておいたDEAE−3epharo
se Fast Flow (7yルマシア・ファイ
1ン・ケミカル社製)イオン交換体カラム(3,2φX
50cm>に通塔し、18m1ずつ分取したところ、素
通り画分に2つのキチナーゼ活性を有する画分F−I(
フラクション番号10−30)とF−II (フラクシ
ョン番号40−45)を得た。
5,0)で平衡化しておいたDEAE−3epharo
se Fast Flow (7yルマシア・ファイ
1ン・ケミカル社製)イオン交換体カラム(3,2φX
50cm>に通塔し、18m1ずつ分取したところ、素
通り画分に2つのキチナーゼ活性を有する画分F−I(
フラクション番号10−30)とF−II (フラクシ
ョン番号40−45)を得た。
さらに、吸着部を0〜0.5M NaCl2直線濃度
勾配により溶出させると、フラクション130〜140
にキチナーゼ活性を有するF−III画分を得た。第1
図に本カラムの溶出パターンを示した。
勾配により溶出させると、フラクション130〜140
にキチナーゼ活性を有するF−III画分を得た。第1
図に本カラムの溶出パターンを示した。
F−I[[画分をさらに5ephacryl S−20
0(7yルマシア・ファイン・ケミカル社製1.6φX
95cm)に通塔し、50mMの酢酸緩衝液(pH5,
5)で溶出を行った。2mlずつ分取し、キチナーゼ活
性を有するフラクション40−52を集め、濃縮し、凍
結乾燥したところ、精製酵素粉末的250mgを得た。
0(7yルマシア・ファイン・ケミカル社製1.6φX
95cm)に通塔し、50mMの酢酸緩衝液(pH5,
5)で溶出を行った。2mlずつ分取し、キチナーゼ活
性を有するフラクション40−52を集め、濃縮し、凍
結乾燥したところ、精製酵素粉末的250mgを得た。
このようにして得られたキチナーゼはSDS一ゾイスク
電気泳動で均一であった。
電気泳動で均一であった。
実施例1
N−アセチルキトトリオース1gを40m1の0.1M
リン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、30℃に保った
後、参考例10F−I画分を4〜5U相当分添加して、
30℃で24時間反応させた。
リン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、30℃に保った
後、参考例10F−I画分を4〜5U相当分添加して、
30℃で24時間反応させた。
反応終了後、100℃で10分間加熱し、反応を停止さ
せた。得られた反応混合物を3.00Or、 p、 m
。
せた。得られた反応混合物を3.00Or、 p、 m
。
10分間遠心分離し、その上清を高速液体クロマトグラ
フィーにかけ、その組成を調べたところ、N−アセチル
キトテトラオース13%、N−アセチルキトペンフォー
ス2%、N−アセチルキトトリオース47%、N−アセ
チルキトビオース26%、N−アセチルグルコサミン1
2%であった。
フィーにかけ、その組成を調べたところ、N−アセチル
キトテトラオース13%、N−アセチルキトペンフォー
ス2%、N−アセチルキトトリオース47%、N−アセ
チルキトビオース26%、N−アセチルグルコサミン1
2%であった。
実施例2
N−アセチルキトテトラオース1gを4 Qmlの0.
1Mリン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、30℃に保
った後、F−n画分を4〜5U相当分添加して、30℃
で24時間反応させた。反応終了後、100℃で10分
間加熱し、反応を停止させた。
1Mリン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、30℃に保
った後、F−n画分を4〜5U相当分添加して、30℃
で24時間反応させた。反応終了後、100℃で10分
間加熱し、反応を停止させた。
得られた反応混合物を3.0OOr、 p、 m、10
分間遠心分離にかけ、その上清を高速液体クロマトグラ
フィーにかけて、その組成を調べたところ、N−アセチ
ルキトヘキサオース2%、N−アセチルキトテトラオー
ス88%、N−アセチルキトトリオース7%、N−アセ
チルキトビオース2%、N−アセチルグルコサミン1%
であった。
分間遠心分離にかけ、その上清を高速液体クロマトグラ
フィーにかけて、その組成を調べたところ、N−アセチ
ルキトヘキサオース2%、N−アセチルキトテトラオー
ス88%、N−アセチルキトトリオース7%、N−アセ
チルキトビオース2%、N−アセチルグルコサミン1%
であった。
実施例3
N−アセチルキトテトラオース10 Qmgを2mlの
0.1 M IJン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、
40℃に保った後、F−III画分を4〜5U相当分添
加して、40℃で56時間反応させた。反応が進むにつ
れて、反応液の濁りが増大し、最後には沈殿物を生成し
た。反応終了後、100℃で10分間加熱し、反応を停
止させた。沈殿物を遠心分離(3,00Or、 p、
m、 10分間)して除き、上清液をBio Gel
P−4(2,6φX95cm; バイオラッド社製
)に通塔し、蒸留水で溶出を行い、4mlずつ分取した
。フラクション番号34〜40を集めて減圧濃縮し、次
いで凍結乾燥することによりN−アセチルキトヘキツオ
ース16mgを得た。なお、反応液中の不溶物(5mg
)は、7糖以上の重合度の高い高級オリコマ−であるこ
とを確認した。
0.1 M IJン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、
40℃に保った後、F−III画分を4〜5U相当分添
加して、40℃で56時間反応させた。反応が進むにつ
れて、反応液の濁りが増大し、最後には沈殿物を生成し
た。反応終了後、100℃で10分間加熱し、反応を停
止させた。沈殿物を遠心分離(3,00Or、 p、
m、 10分間)して除き、上清液をBio Gel
P−4(2,6φX95cm; バイオラッド社製
)に通塔し、蒸留水で溶出を行い、4mlずつ分取した
。フラクション番号34〜40を集めて減圧濃縮し、次
いで凍結乾燥することによりN−アセチルキトヘキツオ
ース16mgを得た。なお、反応液中の不溶物(5mg
)は、7糖以上の重合度の高い高級オリコマ−であるこ
とを確認した。
実施例4
N−アセチルキトテトラオース100mgを2mlの0
.1Mリン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、40℃に
保った後、精製したキチナーゼ4〜51J添加して、4
0℃で56時間反応させた。反応終了後100℃で10
分間加熱し、反応を停止させた。沈殿物を遠心分離(3
,0OOr、p、m、 10分間)して除き、上清液
をBio Gel P−4(2,6φ×950m: バ
イオラッド社製)に通塔し、蒸留水で溶出を行い、4m
lずつ分取した。フラクション番号58〜65を集めて
減圧濃縮し、次いで凍結乾燥することにより、N−アセ
チルキトヘキサオース15mgを得た。
.1Mリン酸緩衝液(pH5,6)に溶解し、40℃に
保った後、精製したキチナーゼ4〜51J添加して、4
0℃で56時間反応させた。反応終了後100℃で10
分間加熱し、反応を停止させた。沈殿物を遠心分離(3
,0OOr、p、m、 10分間)して除き、上清液
をBio Gel P−4(2,6φ×950m: バ
イオラッド社製)に通塔し、蒸留水で溶出を行い、4m
lずつ分取した。フラクション番号58〜65を集めて
減圧濃縮し、次いで凍結乾燥することにより、N−アセ
チルキトヘキサオース15mgを得た。
第1図は、参考例1に示したDBAE−8epharo
seFast flowの溶出パターンを示したもので
ある。 □は280nmでの吸光度、○□0はキチナーゼ活性、
・−・はキトビオーゼ活性、 はNaCR濃度を示
す。 発明の効果 本発明により、工業的に安価に重合度の高いN−アセチ
ルキトオリゴ糖を得ることができる。 特許出願人 (102>協和醗酵工業株式会社代表者
加 藤 幹 夫 第 1 図 分伽滞号 手続補正書(方式) 1、事件の表示 昭和62年特許願第214230号 2、発明の名称 酵素によるN−アセチルキトオリゴ糖の製造法3、補正
をする者 事件との関係 特許出願人 郵便番号 100 住所 東京都千代田区大手町−丁目6番1号名称 (1
02)協和醗酵工業株式会社(TBL : 03−28
2−0036)昭和64年1月6日(全送日:平成元年
1月31日)5、補正の対象 発明の詳細な説明の欄及び図面の簡単な説明の欄6、補
正の内容 (1)明細書第20頁下から第4行の「4、図面の簡単
な説明」の前に、以下の記載を加入する。 「発明の効果 本発明により、工業的に安価に重合度の高いN−アセチ
ルキトオリゴ糖を得ること力(できる。」 (2)明細書第21頁第3行〜第5行の発明の効果の欄
を削除する。
seFast flowの溶出パターンを示したもので
ある。 □は280nmでの吸光度、○□0はキチナーゼ活性、
・−・はキトビオーゼ活性、 はNaCR濃度を示
す。 発明の効果 本発明により、工業的に安価に重合度の高いN−アセチ
ルキトオリゴ糖を得ることができる。 特許出願人 (102>協和醗酵工業株式会社代表者
加 藤 幹 夫 第 1 図 分伽滞号 手続補正書(方式) 1、事件の表示 昭和62年特許願第214230号 2、発明の名称 酵素によるN−アセチルキトオリゴ糖の製造法3、補正
をする者 事件との関係 特許出願人 郵便番号 100 住所 東京都千代田区大手町−丁目6番1号名称 (1
02)協和醗酵工業株式会社(TBL : 03−28
2−0036)昭和64年1月6日(全送日:平成元年
1月31日)5、補正の対象 発明の詳細な説明の欄及び図面の簡単な説明の欄6、補
正の内容 (1)明細書第20頁下から第4行の「4、図面の簡単
な説明」の前に、以下の記載を加入する。 「発明の効果 本発明により、工業的に安価に重合度の高いN−アセチ
ルキトオリゴ糖を得ること力(できる。」 (2)明細書第21頁第3行〜第5行の発明の効果の欄
を削除する。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、トリコデルマ属に属し、キチナーゼ生産能を有する
微生物を栄養培地に培養し、培養物中にキチナーゼを生
成蓄積させ、これを採取することを特徴とするキチナー
ゼの製造法。 2、トリコデルマ属に属し、キチナーゼ生産能を有する
微生物の培養液、菌体、またはそれらの処理物と、キチ
ン部分加水分解物またはN−アセチルキトオリゴ糖とを
水性溶液中で接触させることにより該水性溶液中に原料
中のN−アセチルキトオリゴ糖に1以上の糖が転移付加
したN−アセチルキトオリゴ糖を生成蓄積させ、これを
採取することを特徴とする酵素によるN−アセチルキト
オリゴ糖の製造法。 3、下記理化学的性質を有する新規キチナーゼ1)作用
および基質特異性:N−アセチルキトオリゴ糖に作用し
、強い2糖単位の糖転移反応を起こす。また、キチンま
たはN−アセチルキトオリゴ糖に作用し、これを加水分
解する。 2)至適pH:40℃でpH5.5に至適pHを有する
(基質:コロイドキチン) 3)至適温度:pH5.5で40℃付近に至適温度を有
する(基質:コロイドキチン) 4)熱安定性:pH5.5、55℃、30分間の処理に
安定 5)pH安定性:4℃、pH4〜8、24時間の処理に
安定 6)分子量:68000(SDS−PAGE法)7)等
電点:4.5〜4.6
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62214230A JPH0789922B2 (ja) | 1987-08-28 | 1987-08-28 | 酵素によるn−アセチルキトオリゴ糖の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62214230A JPH0789922B2 (ja) | 1987-08-28 | 1987-08-28 | 酵素によるn−アセチルキトオリゴ糖の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01174383A true JPH01174383A (ja) | 1989-07-10 |
JPH0789922B2 JPH0789922B2 (ja) | 1995-10-04 |
Family
ID=16652343
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62214230A Expired - Lifetime JPH0789922B2 (ja) | 1987-08-28 | 1987-08-28 | 酵素によるn−アセチルキトオリゴ糖の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0789922B2 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20040003228A (ko) * | 2002-07-02 | 2004-01-13 | 최형준 | 키토산 올리고당을 함유한 기능성 탁주 및 그의 제조방법 |
CN111393488A (zh) * | 2020-03-06 | 2020-07-10 | 安徽科博瑞环境科技有限公司 | 一种水溶性壳寡糖提纯和浓缩的方法 |
-
1987
- 1987-08-28 JP JP62214230A patent/JPH0789922B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20040003228A (ko) * | 2002-07-02 | 2004-01-13 | 최형준 | 키토산 올리고당을 함유한 기능성 탁주 및 그의 제조방법 |
CN111393488A (zh) * | 2020-03-06 | 2020-07-10 | 安徽科博瑞环境科技有限公司 | 一种水溶性壳寡糖提纯和浓缩的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0789922B2 (ja) | 1995-10-04 |
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