JP7828987B2 - ポンガミア組成物、その調製方法および分析方法、ならびにそれらの使用 - Google Patents
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Description
本出願は2018年10月4日に出願された米国仮出願第62/741,351号の優先権および利益を主張し、その開示全体は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本開示は、一般に、ポンガミア油料種子の製品に関し、より具体的には、残留ポンガミア油、カランジンおよびポンガモールの低い濃度を有するポンガミア組成物、並びにそのようなポンガミア組成物を調製および使用する方法に関する。本開示はまた、本明細書に記載の方法によって、および当技術分野で公知の他の処理方法によって調製されたポンガミア組成物を分析するための方法に関する。本開示はまた、ウシおよび他の反芻動物のための飼料としてのポンガミア組成物の使用に関する。
ポンガミア種子のケーキはポンガミア油料種子からの油抽出の副産物であり、食品に使用するための潜在的な再生可能な蛋白質源を提供する。しかしながら、粗製のポンガミア種子のケーキには、残油と、カランジンやポンガモールなどの固有の化学成分とが含まれている。適切な食物源として使用するために、種子のケーキ中におけるカランジンおよびポンガモールの量を減少させることが望ましい。特に、カランジンおよびポンガモールはそれら自体の利点で経済的に価値があると確認されており、その結果、粗ポンガミア種子のケーキから高純度のカランジンおよびポンガモールを抽出するための様々な処理が検討されてきた。しかしながら、既存の方法はしばしば、ポンガミア種子のケーキからの残留油、カランジンおよびポンガモールの不完全な除去をもたらし、したがって、種子ケーキ自身の下流での使用を妨げる。
一態様では、ポンガミア組成物をアルカン酸アルキル溶媒と混合して抽出混合物を準備することと、前記抽出混合物にマイクロ波放射線を照射して照射混合物を準備することと、前記照射混合物を、抽出されたポンガミア組成物とアルカン酸アルキル抽出物とに分離し、アルカン酸アルキル抽出物中のカランジン濃度を測定することと、を含む方法が本明細書において提供される。
本出願は、添付の図面と共に以下の説明を参照することによって理解することができる。
以下の説明は、例示的な方法、パラメータなどを記載する。しかしながら、そのような説明は本開示の範囲に対する限定として意図されておらず、代わりに、例示的な実施形態の説明として提供されることが認識されるべきである。
いくつかの態様において、本明細書中に提供されるのは、ポンガミア組成物を分析する方法である。いくつかの実施形態では、ポンガミア中のカランジンおよびポンガモールの濃度を測定する方法が本明細書に提供される。
式中、
R1はC1-C4のアルキルであり、
R2は、水素またはC1-C4のアルキルである。
ドC、グラブラI、オバリテノン、ポンガノンIX、およびポンガロテンからなる群より選択される少なくとも1つ以上のフラノフラボノイドを含む。
上記のように、低濃度の残留油、カランジンおよびポンガモールを有するポンガミア組成物を調製する目的で改良された方法を開発するための従来の努力は、このような濃度を測定するための既存の分析方法の信頼性の欠如および不一致によって、以前は妨げられていた。しかしながら、低濃度のカランジンを有するポンガミア組成物を調製するための改善された方法の開発は、今や、上記の分析方法のおかげで可能になる。上記のような分析方法は、カランジン濃度測定のためのより高い精度および信頼性を提供する。したがって、本開示は、ポンガミア種子および種子のケーキからカランジンおよび他のフラノフラボノイドを除去するためのより効率的な方法を提供する。本開示は、以下に記載されるような、ポンガミア組成物が低いカランジン濃度を有するポンガミア組成物の調製方法を含む。より具体的には、本開示は、ポンガミア組成物がカランジンを含み、100ppm以下のカランジン濃度を有するポンガミア組成物の調製方法を提供する。
式中、
R1はC1-C4のアルキルであり、
R2は、水素またはC1-C4のアルキルである。
前述のように、低濃度のカランジンおよび他の抗栄養素を有するポンガミア組成物は、下流で使用することが望ましい。しかしながら、ポンガミア組成物を分析するための上記の方法の開発前に、処理されたポンガミア組成物中の残留カランジン濃度は、正確かつ一貫して評価することが困難であり、したがって、同様に、低カランジン濃度を有するポンガミア組成物の調製を達成することが困難であった。本開示のマイクロ波支援アルカン酸アルキル溶媒抽出分析法は、低カランジン濃度を有するポンガミア組成物の調製および検証を可能にした。本発明は、カランジン濃度が100ppm以下であるポンガミア組成物を提供する。本明細書に記載される方法によって調製されるように、および/または本明細書に記載されるマイクロ波支援アルカン酸アルキル溶媒抽出分析法によって測定されるように、カランジン濃度が100ppm以下であるポンガミア組成物もまた、本明細書に開示される。
上記のような低濃度のカランジンおよびポンガモールを有し、上記の方法によって調製されたポンガミア組成物は、ウシ飼料組成物のような反芻動物用飼料組成物中の栄養サプリメントまたは主要飼料として特に有用であり得る。本明細書中に記載されるポンガミア組成物を調製する非破壊的方法は、許容される飼料変換効率を達成するために非常に重要な多量栄養素(例えば、タンパク質および炭水化物)を含む他の成分の量を減少させることなく、抗栄養成分カランジンおよびポンガモールの首尾よい除去を生じる。ポンガミア組成物は、反芻動物飼料組成物中で単独で、または非ポンガミア由来のベース飼料と組み合わせて使用されて、複合反芻動物飼料組成物を提供し得る。
以下に列挙する実施形態は、本発明のいくつかの態様を代表するものである。
(1)ポンガミア組成物をアルカン酸アルキル溶媒と混合して抽出混合物を準備することと、
前記抽出混合物にマイクロ波放射を照射して照射混合物を準備することと、
前記照射混合物を、抽出されたポンガミア組成物とアルカン酸アルキル抽出物とに分離し、前記アルカン酸アルキル抽出物中におけるカランジン濃度を測定することとを含む、方法。
(2)前記アルカン酸アルキル溶媒が、メタン酸メチル、エタン酸メチル、プロパン酸メチル、ブタン酸メチル、ペンタン酸メチル、メタン酸エチル、エタン酸エチル、プロパン酸エチル、ブタン酸エチル、ペンタン酸エチル、メタン酸プロピル、エタン酸プロピル、プロパン酸プロピル、ブタン酸プロピル、ペンタン酸プロピル、メタン酸ブチル、エタン酸ブチル、プロパン酸ブチル、ブタン酸ブチル、およびペンタン酸ブチル、ならびにそれらの任意の組合せからなる群から選択されるアルカン酸アルキルを含む、実施態様(1)に記載の方法。
(3)前記アルカン酸アルキル溶媒が酢酸エチルを含む、実施形態(1)または(2)に記載の方法。
(4)前記ポンガミア組成物が脱油したポンガミア種子のケーキである、実施形態(1)~(3)に記載の方法。
(5)前記ポンガミア組成物が、機械的抽出、溶媒抽出、またはそれらの組み合わせによって得られる、実施形態(1)~(4)のいずれか1つに記載の方法。
(6)前記アルカン酸アルキル抽出物中の前記カランジン濃度を測定することが、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によって前記カランジン濃度を測定することを含む、実施形態(1)~(5)のいずれか1つに記載の方法。
(7)第1のポンガミア組成物を準備することと、
前記第1のポンガミア組成物とアルカン酸アルキル溶媒を混合することで抽出混合物を準備することと、
前記抽出混合物をミセラと第2のポンガミア組成物とに分離し、
ここで、前記第2のポンガミア組成物は、(i)前記第1のポンガミア組成物中における前記カランジン濃度の20%未満のカランジン濃度、または(ii)100ppm以下であるカランジン濃度を有することと、を含む、方法。
(8)実施形態1~5のいずれか1つに記載の方法によって測定したときに、前記第2のポンガミア組成物が、100ppm以下のカランジン濃度を有する、実施形態7に記載の方法。
(9)前記第1のポンガミア組成物が脱油した前記ポンガミア種子のケーキである、実施形態(7)または(8)に記載の方法。
(10)前記第1のポンガミア組成物が、機械的抽出によって得られる脱油した前記ポンガミア種子のケーキである、実施態様(9)に記載の方法。
(11)前記第1のポンガミア組成物が、溶媒抽出によって得られる脱油した前記ポンガミア種子のケーキではない、実施態様(9)または(10)に記載の方法。
(12)前記第1のポンガミア組成物が、少なくとも200ppmのカランジン濃度を有する、実施形態(7)~(11)のいずれか1つに記載の方法。
(13)前記第1のポンガミア組成物が、8~30重量%の油を含む、実施形態(7)~(12)に記載の方法。
(14)前記ミセラが、約4,000ppm以上のカランジン濃度を有する、実施形態(7)~(13)のいずれか1つに記載の方法。
(15)前記第2のポンガミア組成物が、100ppm以下のポンガモールの濃度を有する、実施形態(7)~(14)のいずれか1つに記載の方法。
(16)前記アルカン酸アルキル溶媒が酢酸エチルを含む、実施形態(7)~(15)のいずれか1つに記載の方法。
(17)前記方法が、前記抽出混合物にマイクロ波放射を照射することをさらに含む、実施形態(7)~(16)のいずれか1つに記載の方法。
(18)ポンガミア組成物が、
カランジンと、
炭水化物、タンパク質、繊維、灰分、タンニン、トリプシン阻害剤、他のフラノフラボノイド、およびカルコンからなる群から選択される少なくとも1つ以上の成分と、を含み、
ここで、前記ポンガミア組成物は、100ppm以下のカランジン濃度を有する、ポンガミア組成物。
(19)前記ポンガミア組成物が、実施形態(1)~(6)のいずれか1つの方法によって測定したときに、100ppm以下のカランジン濃度を有する、実施形態(18)に記載のポンガミア組成物。
(20)前記ポンガミア組成物がポンガモールをさらに含む、実施形態(18)または(19)に記載のポンガミア組成物。
(21)前記ポンガミア組成物が100ppm以下のポンガモールの濃度を有する、実施形態(18)~(20)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(22)アルカン酸アルキル溶媒をさらに含む、実施形態(18)~(21)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(23)前記ポンガミア組成物が100,000ppm未満のアルカン酸アルキル溶媒濃度を有する、実施形態(22)に記載のポンガミア組成物。
(24)前記ポンガミア種子のミールが5,000ppm未満のアルカン酸アルキル溶媒濃度を有する、実施形態(22)または(23)に記載のポンガミア組成物。
(25)前記アルカン酸アルキル溶媒が酢酸エチルを含む、実施形態(22)~(24)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(26)前記ポンガミア組成物が、乾燥重量で5%未満の油を含む、実施形態(18)~(25)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(27)前記ポンガミア組成物が、乾燥重量で1%~5%の油を含む、実施形態(18)~(26)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(28)前記ポンガミア組成物が、乾燥重量で少なくとも30%のタンパク質を含む、実施形態(18)~(27)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(29)前記ポンガミア組成物が、乾燥重量で30~40%のタンパク質を含む、実施形態(18)~(28)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(30)前記ポンガミア組成物が、少なくとも20重量%の総アミノ酸含量を有する、実施形態(18)~(29)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(31)前記ポンガミア組成物が20~30重量%の総アミノ酸含量を有する、実施形態(18)~(30)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(32)前記ポンガミア組成物が、少なくとも40重量%の炭水化物を含む、実施形態(18)~(31)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(33)前記ポンガミア組成物が、50~70重量%の炭水化物の総アミノ酸含量を有する、実施形態(18)~(32)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(34)前記ポンガミア組成物が、少なくとも200ppmのカランジン濃度を有する最初のポンガミア組成物から得られる、実施形態(18)~(33)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(35)前記ポンガミア組成物が、アルカン酸アルキル溶媒による脱油したポンガミア種子のケーキの溶媒抽出から得られる、実施形態(18)~(34)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(36)前記ポンガミア組成物が、アルカン酸アルキル溶媒による脱油したポンガミア種子のケーキの溶媒抽出およびマイクロ波照射から得られる、実施形態(18)~(35)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(37)実施形態(1)~(17)のいずれか1つに記載の方法によって得られるか、または得ることができる、ポンガミア組成物。
(38)ポンガミア組成物が、
炭水化物、タンパク質、繊維、灰分、タンニン、トリプシン阻害剤、他のフラノフラボノイド、およびカルコンからなる群から選択される少なくとも1つ以上の成分を含み、
ここで、前記ポンガミア組成物は、100ppm以下のカランジン濃度を有する、ポンガミア組成物。
(39)ポンガミア組成物が、
炭水化物、タンパク質、繊維、灰分、タンニン、トリプシン阻害剤、他のフラノフラボノイド、およびカルコンからなる群から選択される少なくとも1つ以上の成分を含み、
ここで、前記ポンガミア組成物は100ppm以下のカランジン濃度を有し、
ここで、前記ポンガミア組成物は、100ppm以下のポンガモール濃度を有する、ポンガミア組成物。
(40)ポンガミア組成物が、
カランジン、またはポンガモール、もしくはカランジンとポンガモールとの混合物と、
炭水化物、タンパク質、繊維、灰分、タンニン、トリプシン阻害剤、他のフラノフラボノイド、およびカルコンからなる群から選択される少なくとも1つ以上の成分と、を含み、
ここで、カランジンが存在する場合、前記ポンガミア組成物は100ppm以下のカランシン濃度を有し、
ここで、ポンガモールが存在する場合、前記ポンガミア組成物は100ppm以下のポンガモール濃度を有する、ポンガミア組成物。
(41)ポンガミア組成物が、
カランジンと、
炭水化物、タンパク質、繊維、灰分、タンニン、トリプシン阻害剤、他のフラノフラボノイド、およびカルコンからなる群から選択される少なくとも1つ以上の成分と、を含み、
ここで、前記ポンガミア組成物は100ppm以下のカランジン濃度を有し、前記カランジン濃度は、マイクロ波照射下において、アルカン酸アルキル溶媒を用いて前記ポンガミア組成物を処理することによって測定される、ポンガミア組成物。
(42)前記ポンガミア組成物が、ポンガミアの木または植物由来の植物原料から得られる、実施形態(18)~(41)のいずれか一項に記載のポンガミア組成物。
(43)前記ポンガミア組成物がミールである、実施形態(18)~(42)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物。
(44)飼料組成物が、
実施形態(18)から(43)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物と、
ベースウシ飼料と、を含む、飼料組成物。
(45)飼料組成物が、
実施形態18から43のいずれか1つに記載のポンガミア組成物と、
ベース飼料と、を含む、飼料組成物。
(46)前記飼料組成物が、少なくとも30重量%または少なくとも40重量%のポンガミア組成物を含む、実施形態(44)または(45)に記載の飼料組成物。
(47)前記飼料組成物が、60重量%未満または70重量%未満のベース飼料を含む、実施形態(44)~(46)のいずれか1つに記載の飼料組成物。
(48)前記飼料組成物がペレット状飼料である、実施形態(44)~(47)のいずれか1つに記載の飼料組成物。
(49)実施形態(18)~(43)のいずれか1つに記載のポンガミア組成物または実施形態(44)~(48)のいずれか1つに記載の飼料組成物を反芻動物に提供することを含む、反芻動物に飼料を与える方法。
(50)前記反芻動物が、ウシ、ヤク、バッファロー、ヤギ、ヒツジ、シカ、ガゼル、およびアンテロープからなる群より選択される、実施態様(49)に記載の方法。
(51)前記反芻動物がウシである、実施形態(50)に記載の方法。
本開示の主題は以下の実施例を参照することによってより良く理解され、実施例は本発明の例示として提供され、限定として提供されるものではない。
<実施例A1:メタノールベースの抽出物の比較方法>
以下の例では、溶媒としてメタノールを用いたポンガミア種子のケーキからのカランジンおよびポンガモールの抽出を比較した実験について述べる。
0.5gのポンガミア種子のケーキを、最終比10:1(溶媒:固体)となるように5mLのメタノールを含む50mLのポリプロピレン遠心管に入れた。次に、試料を植物/組織ホモジナイザーに入れ、1500rpmで2分間振盪した。次に、試料を3000rpmで5分間遠心分離して、固体から溶媒を分離し、上清を清潔な50mLポリプロピレンチューブに注いだ。前記抽出プロセスを5回繰り返して、カランジンおよびポンガモールの抽出を向上させた。
均質化抽出の前に、0.5gのポンガミア種子のケーキを、1mLの2%NaOHを含む50mLポリプロピレン遠心管に入れた。次に、混合物を24時間インキュベートした。インキュベーション後、10mLの水を添加し、チューブを機械的シェーカー上に置き、10分間高速で(on high)振盪した。次に、チューブを3000rpmで遠心分離して、固体物質をペレット化した。水を分析のために保存し、洗浄処理をもう一度繰り返して、NaOHの除去を確実にした。NaOHでのインキュベーション後、試料を上記のようにメタノールで抽出した。
均質化抽出の前に、0.5gのポンガミア種子のケーキを、最終比50:1(溶媒:固体)となるように、25mLのメタノールを含む50mLポリプロピレン遠心管に入れた。次に、混合物を室温で24時間、48時間、72時間または96時間インキュベートした。インキュベーション後、試料を植物/組織ホモジナイザーに入れ、1500rpmで2分間振盪した。均質化後、試料を3000rpmで5分間遠心分離して、溶媒を固体から分離し、上清を清潔な50mLポリプロピレンチューブに注いだ。均質化を5回繰り返して、カランジンおよびポンガモールの抽出を向上させた。
0.5gのポンガミア種子のケーキを、最終比50:1(溶媒:固体)となるように25mLのメタノールを含む50mLポリプロピレン遠心管に入れた。次に、試料を植物/組織ホモジナイザーに入れ、1500rpmで2分間振盪した。次に、試料を濾過して、メタノールから固体を分離した。抽出プロセスを5回繰り返して、カランジンおよびポンガモール抽出を向上させた。
0.5gのポンガミア種子のケーキを、125mLのメタノールを含む抽出シンブルに入れた。抽出を24時間または48時間進行させ、その時点で、ソックスレー抽出物を清潔なポリプロピレンチューブに移した。
市販のカランジンおよびポンガモールをメタノールと混合して、以下のHPLC標準を生成した:0.05、0.1、0.2、0.5、1.0、5.0、および20.0μg/mL。
HPLC分析は、溶媒A(HPLC水中0.1%ギ酸)および溶媒B(アセトニトリル中0.1%ギ酸)からなる移動相を用いて行った。注入容量は2μLであり、流速は0.75mL/分であった。カラムは、C18 5μm,50×2mmHPLCカラムを使用した。全てのHPLC分析は、陰イオンモードで行った。MSパラメータは、カーテンガス30psi、衝突ガス4psi、ネブライザーガス(GS1)50psi、乾燥ガス(GS2)50psi、イオン噴霧電圧5000、温度500℃、デクラスタリングポテンシャル(DP)51V、エントランスポテンシャル10V、衝突エネルギー(CE) カランジンでは60eV、ポンガモールでは30eVであった。
多重反応モニタリング(MRM)イオン遷移を、カランジンおよびポンガモールの両方についてモニターした。抽出試料中に存在するカランジンおよびポンガモールのレベルを、Analyst version 1.6.3を用いて計算した。簡潔には、抽出試料中のカランジンおよびポンガモールのピーク面積を校正標準のピーク面積と比較して、カランジンおよびポンガモールの百万分率を決定した。
表1は、抽出溶媒としてメタノール(10:1の溶媒:固体比)を使用する均質化抽出法下で、ポンガミア種子のケーキ(図3Aおよび3B)から抽出することができるカランジンおよびポンガモールのレベルを示した。5回の連続抽出のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの量を総合して加え、表1に示すように、抽出された総カランジンおよび抽出された総ポンガモールの測定値をそれぞれ得た。
(カランジンおよびポンガモールの抽出における24時間のNaOH浸漬の影響評価)
5回の連続抽出のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの量を総合して加え、表2に示すように、抽出されたカランジンの総量および抽出されたポンガモールの総量の測定値をそれぞれ得た。表2は、メタノール均質化抽出(10:1の溶媒:固体比)の前にポンガミア種子のケーキをNaOHで処理したとき、未処理抽出と比較して、抽出および残留カランジンおよびポンガモールの総レベルが減少したことを示した(図3Aおよび3B)。
(NaOH洗浄水中のカランジンおよびポンガモールの濃度測定)
表3は、カランジンとポンガモールがNaOH浸漬後に洗浄水に浸出したことを示している。しかし、洗浄水中のカランジンおよびポンガモールのレベルは、NaOH処理後に単離されたカランジンおよびポンガモールのレベル低下を説明するのに十分ではなかった。
(カランジン抽出におけるメタノール浸漬の影響評価)
5回の連続抽出のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの量を総合して加え、表4に示すように、抽出されたカランジンの総量および抽出されたポンガモールの総量の測定値をそれぞれ得た。表4は、抽出前のポンガミア種子のケーキのメタノールへの任意の時間の浸漬が、メタノール浸漬なしの抽出(50:1の溶媒:固体比)と比較してカランジンの回収率を減少させたことを示した(図3Aおよび3B)。
(メタノール均質化抽出後に遠心分離よりむしろ濾過を用いた場合のカランジンおよびポンガモールの回収率評価)
5回の連続抽出(50:1の溶媒:固体比)のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの量を総合して加え、表5に示すように、抽出された総カランジンおよび抽出された総ポンガモールの測定値をそれぞれ得た。表5は、濾過によるメタノール均質化抽出が、遠心分離によるメタノール均質化抽出と比較して、ポンガミア種子のケーキから同様のレベルのカランジンおよびポンガモールを回収できることを実証した(図3Aおよび3B)。
(カランジンおよびポンガモールのソックスレー抽出)
表6は、メタノール均質化抽出(50:1の溶媒:固体比)とメタノールソックスレー抽出との比較を示す。メタノール均質化処理で抽出された総カランジンおよびポンガモールは、5回の連続抽出のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの合計であり、ソックスレー処理で抽出されたカランジンおよびポンガモールの総量は、示された時間の間の単一のソックスレー実験から得られたカランジンおよびポンガモールの量である。24時間および48時間のメタノールソックスレー抽出で測定された値を、それぞれ2つの別々の実験の平均とした。表6は、24時間および48時間のメタノールソックスレー抽出がメタノール均質化抽出技術(図3Aおよび3B)より多くのカランジンおよびポンガモールを単離したことを示している。
<実施例A2:抽出方法の溶媒依存性>
以下の実施例は、ポンガミア種子のケーキからカランジンおよびポンガモールを抽出する様々な溶媒の能力を評価するための実験的努力を記載する。
本実施例では、実施例A1と同様に均質化抽出を行った。しかしながら、試験した溶媒はエタノール、ヘキサン、メチルtert-ブチルエーテル(MTBE)、トルエン、ジエチルエーテル、酢酸エチル、およびアセトンを含み、すべて溶媒:固体比は50:1であった。最後に、酢酸エチル溶媒抽出における均質化時間の影響を評価するために実験を行い、10分(2分/サイクル、5サイクル)および50分(10分/サイクル、5サイクル)の均質化を比較した。
本実施例では、実施例A1と同様にソックスレー抽出を行った。しかしながら、試験した溶媒は、メタノール、MTBE、および酢酸エチルであった。さらに、酢酸エチルを試験した反応時間は、6時間、24時間、48時間、72時間および96時間を包含した。
5回の連続抽出のそれぞれから得られたカランジンおよびポンガモールの量を総合して加え、表7に示すように、抽出された総カランジンおよび抽出された総ポンガモールの測定値をそれぞれ得た。表7は、酢酸エチルが均質化技術を用いて試験した他の溶媒よりも多くのカランジンおよびポンガモールを抽出したことを示す(図3A、3B、4Aおよび4B)。
(酢酸エチルでのカランジンおよびポンガモール抽出における均質化時間の延長による影響評価)
表8は、溶媒として酢酸エチルを用いた合計10分間の均質化抽出と、溶媒として酢酸エチルを用いた合計50分間の均質化抽出の比較を示した。表8は、10分から50分までの総均質化時間の増加がカランジンおよびポンガモールの酢酸エチル抽出効率を低下させることを実証している(図4Aおよび4B)。
(ソックスレー抽出を用いた異なる溶媒でのカランジンおよびポンガモール抽出効率の評価)
表9は、種々の溶媒を用いた異なる時間の単一のソックスレー実験から抽出された総カランジンおよび総ポンガモールを示した。表9は、酢酸エチルが、ソックスレー抽出技術(図3A、3B、4Aおよび4B)を用いて試験した他の溶媒よりも多くのカランジンおよびポンガモールを抽出したことを示す。さらに、表9は、短いソックスレー抽出時間は、長い抽出時間よりもカランジンを単離するのに効率的であったことを示す。しかしながら、一般的に、より長いソックスレー抽出時間は、短い抽出時間よりもポンガモールを単離するのに効率的であった。
<実施例A3:マイクロ波支援抽出法(MAE)>
以下の実施例は、カランジンおよびポンガモールへの酢酸エチルMAE方法を開発するための実験的努力を記載する。
イオン液体を、40.1gの1-ブチル-3-メチルイミダゾリウムブロミドおよび75mLの0.8N HClをガラス瓶に添加することによって調製した。次に、混合物を渦流撹拌(vortexed)して固体を溶解した。
0.5gのポンガミア種子のケーキをマイクロ波抽出管に添加した。次いで、15mLの酢酸エチルまたはイオン液体のいずれかを試料管に添加し、渦流撹拌して混合した。次に、試料を、マイクロ波抽出器を用いて以下の条件下で抽出した:1)70℃まで15分間傾斜、2)70℃で10分間保持。一度冷却し、上清をブフナー漏斗中の濾紙を用いて真空下で濾過した。
表10は、酢酸エチルMAEがポンガミア種子のケーキから、9600ppmを超えるカランジンおよび790ppmを超えるポンガモールを抽出したことを示す(図5Aおよび5Bも参照)。
(種子のケーキ抽出の要約)
表11は、実施例A1~A3に詳述されるカランジンおよびポンガモール抽出データの要約を示す。図6Aおよび6Bは、抽出されたカランジンの総量およびポンガモールの総量をppmで測定したときの各抽出処理の相対効率の棒グラフを示す。
<実施例A4:アルカン酸アルキルを用いたマイクロ波支援抽出法(MAE)>
以下の実施例は、マイクロ波支援抽出下でポンガミア種子のケーキからカランジンおよびポンガモールを抽出する種々のアルカン酸アルキル溶媒の能力を評価するための実験的努力を記載する。
LCMS/MSバイアルまたはメスフラスコを直接使用して、LCMS/MS分析のために、すべての試料抽出物を10倍および100倍に希釈した。(10倍希釈:100μLの試料抽出物を900μLの適切な溶媒に添加し、渦流撹拌した。100倍希釈:10μLの試料抽出物を990μLの適切な溶媒に添加し、渦流撹拌した。)LCMS/MS分析のためのパラメータは、上記の実施例A1で説明したパラメータと同一であった。
表12は、マイクロ波支援抽出条件下で列挙された溶媒を使用してポンガミア種子のケーキ試料から抽出されたカランジンの総量およびポンガモールの総量を示す(図7Aおよび7Bも参照)。
〔実施例B:大規模抽出方法〕
本実施例は、カランジンおよびポンガモールの抽出を商業的に実行可能なレベルにスケールアップするための実験的努力を詳述する。
(熱間押出法及び連続圧搾機の圧搾抽出法)
ポンガミア種子のケーキ試料を、別々に、熱間押出法(「種子コンディショニング」)および連続圧搾機圧搾法(「連続圧搾機圧搾」、1回(第1)または2回(第2)の圧搾)にかけて、ポンガミア種子のケーキから油、カランジンおよびポンガモールを除去した。
ポンガミア種子のケーキ試料を、マイクロ波支援酢酸エチル溶媒抽出(上記実施例A3のプロトコールに従って)によって分析し、種子のコンディショニングおよび連続圧搾機圧搾加工法による処理後に、処理されたポンガミア種子のケーキ中に残存するカランジンおよびポンガモールの量を測定した。表13および14は、種子のコンディショニングおよび連続圧搾機圧搾の両方の機械的加工法を使用して、商業的規模でポンガミア種子のケーキからカランジンおよびポンガモールを抽出することができることを実証している(図8Aおよび8B)。
<パートII-溶媒抽出>
(カランジンおよびポンガモールの単一溶媒抽出)
ポンガミア種子のケーキを、定量供給機を用いて浸漬抽出器に導入した。供給速度は、各抽出器のパドル部が約50%満杯になるように調節した。表15は、各溶媒についての具体的な抽出設定を示す。
(カランジンおよびポンガモールの二重溶媒抽出)
上記に詳述したヘキサンによる一次抽出に続いて、ポンガミア種子のケーキを収集し、定量供給機を用いて浸漬抽出器に導入した。供給速度は、各抽出器のパドル部が約50%満杯になるように調節した。表16は、各溶媒についての具体的な抽出設定を示す。
(カランジンとポンガモールの大規模溶媒抽出の評価)
表15および16に概説した機械的抽出法および溶媒抽出法の組み合わせから製造したそれぞれ試料を、マイクロ波支援酢酸エチル抽出(上記実施例A3のプロトコールに従って)によって分析して、抽出処置後のポンガミア種子のケーキ中に残存する残留カランジンおよび残留ポンガモールの量を測定した。表17Aは、従来の機械的抽出法にかかわらず、酢酸エチルによる単一抽出が、ポンガミア種子のケーキからカランジンおよびポンガモールを除去するための最も効率的な溶媒であることを示す(図9Aおよび9B)。
連続圧搾機圧搾(第2圧搾)、酢酸エチル抽出した種子のケーキは、以前に使用した実施例A3の条件下で、後日、カランジンおよびポンガモール濃度について2回目の分析を行い、表17Aにおける最初の測定を確認した。第2の実験の結果は、最初の測定よりもわずかに高いことが観察された。第1の実験(実験番号1、上記の表17Aと同じ)、第2の実験(実験番号2)、および2つの測定の平均(「平均」)を以下の表17Bに示した。
<パートIII-抽出した種子のケーキの組成プロファイル>
上記のパートIIにおけるポンガミア種子のケーキの抽出に続いて、パートIにおける出発ポンガミア種子のケーキ試料およびパートIIにおける溶媒抽出ポンガミア種子のケーキ試料を、種子のケーキの組成プロファイルにおける機械的加工および溶媒抽出の効果がもしあれば測定するために、評価した。機械的に圧搾したポンガミア種子のケーキおよび機械的に圧搾した酢酸エチル抽出種子のケーキの総タンパク質、総炭水化物、およびアミノ酸プロファイルを測定した。
上記の表18に示すように、種子のケーキ試料の相対アミノ酸含量およびプロファイルは、カランジンおよびポンガモールを除去するための酢酸エチル溶媒抽出後に大部分保存された。溶媒抽出種子のケーキは、一般的に、リジン含量が減少したことを除いて、出発種子のケーキよりもわずかに高いアミノ酸濃度を示した。溶媒抽出ミール中のアミノ酸のより高い濃度は、一部には溶媒抽出中のポンガミア油の除去、したがって種子のケーキの総重量の減少に起因し得る。
溶媒抽出過程は、ポンガミア種子のケーキ中のタンパク質または炭水化物含量の損失をもたらさなかった。上記のアミノ酸プロファイルと同様に、溶媒抽出種子のケーキ試料は、連続圧搾機圧搾された出発種子のケーキよりもわずかに高濃度の総タンパク質および総炭水化物を示した。
以下の実施例は、酢酸エチル抽出ポンガミアミールをウシに投与する実現可能性を評価するための実験的努力を詳述する。
以下の実施例は、ウシにおける低品質飼料食に関して、別々のサプリメントタンパク質源としての酢酸エチル抽出ポンガミア種子のケーキの使用と、大豆ミールの使用とを比較した研究を記載する。
表21は、干し草、大豆ミールおよびポンガミア種子のケーキの化学組成を示す。
試験去勢ウシには、適応のために13日間、および試料収集のために8日間を含む、合計21日間の持続時間、指定された食餌を与えた。乾燥物質摂取量および消化率の測定は、6日間の糞袋による全糞採取によって促進した。
SAS 9.2(SAS InstInc.,Cary,NC)のMIXED手順を使用して、乾燥物質の摂取量および消化率を分析した。モデルの用語は処置および期間を含み、無作為効果として去勢ウシを用いた。モデルの用語は処置、期間、時間、および時間×処置であり、去勢ウシおよび処置×期間×去勢ウシを無作為な用語として含めた。反復期間は1時間であり、処置×去勢ウシを対象とした。処置手段は、LSMEANSオプションを用いて計算した。表22は、3つの処置群にわたる統計分析の結果を示した。
表22に示すように、大豆ミールおよびポンガミア種子のケーキ含有食の両方における飼料乾燥物質摂取量は、干し草対照食よりも大きかった。大豆ミールおよびポンガミア種子のケーキ含有食における消化性乾燥物質摂取量も、干し草対照食より大きかった。飼料消化率に差は認められなかった。大豆ミール試験群とポンガミア種子のケーキ試験群との間に有意差は認められなかった。
本実施例は、ポンガミアタンパク質サプリメントを含む飼料(グループA)、飼料のみ(グループB)、および市販のタンパク質サプリメントを含む飼料(グループC)を含んだ、表23に示すような3つの食餌のうちの1つを試験ウシに与えた比較研究を詳述する。
各試験群(計9頭の去勢ウシ)にブラックアンガス×和牛肉用ウシ(去勢雄、22~24ヶ月齢)を使用し、各試験群に指定されたサイズの3~5エーカーの畜舎に収容した。各畜舎内における飲用水および畜舎内の飼料への接触は、試験期間中、自由に提供した。試験処置群(A群)には、試験処置用畜舎のウシ3頭すべてが接近可能な共同試料槽にポンガミアベースのタンパク質サプリメントをそれぞれ1kg投与した。陽性対照群(C群)のウシには、SweetPro槽ベースのタンパク質サプリメントの標準配合物を与えた。Bグループのウシには、タンパク質サプリメントは投与しなかった。
表25に示すように、ポンガミアミール由来タンパク質サプリメントを含むウシの食餌は、飼料のみの食餌と比較して体重増加の改善をもたらし、市販のタンパク質サプリメントを含む食餌と比較して、試験去勢ウシについて同等の平均体重増加を示した。
Claims (5)
- 連続圧搾機圧搾を用いてポンガミアの油料種子を機械的に抽出することで、脱油したポンガミア種子のケーキを製造し、
ここで、脱油した前記ポンガミア種子のケーキは8~30重量%の油を含むことと、
脱油した前記ポンガミア種子のケーキを酢酸エチルと混合することで抽出混合物を準備することと、
前記抽出混合物をミセラとポンガミア組成物とに分離し、
ここで、前記ポンガミア組成物は、100ppm以下であるカランジン濃度を有するミールであることと、を含む、ポンガミア組成物を調製する方法。 - 以下の分析方法によって測定したときに、前記ポンガミア組成物が、100ppm以下のカランジン濃度を有する、請求項1に記載の方法:
ポンガミア組成物を酢酸エチルと混合して抽出混合物を準備することと、
前記抽出混合物にマイクロ波放射を照射して照射混合物を準備することと、
前記照射混合物を、抽出されたポンガミア組成物と酢酸エチル抽出物とに分離し、前記酢酸エチル抽出物中におけるカランジン濃度を測定することとを含む、分析方法。 - 脱油した前記ポンガミア種子のケーキが少なくとも200ppmのカランジン濃度を有する、請求項1または2に記載の方法。
- 前記ミセラが約4000ppm以上のカランジン濃度を有する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ポンガミア組成物が、100ppm未満のポンガモール濃度を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
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