JP7490204B2 - 脳機能改善剤 - Google Patents
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Description
さらに、うつ病と同様に精神疾患のひとつである統合失調症の患者数は、日本では約80万人いるといわれている。世界各国でも生涯のうちに統合失調症を発症する人は全体の人口の0.7%と推計されている。統合失調症の症状は主に幻覚と妄想が現れ、記憶、思考、理解、計算、学習、言語、判断などの認知機能に障害が見られ、生活や社会活動全般に支障をきたすことが知られている。このような精神疾患は、社会活動の生産性を上げるために、メンタルヘルスケアという観点で、多くの企業で発症予防に向けた取り組みがなされている。
認知症の中でも最も患者数の多いアルツハイマー型認知症の発症原因は、加齢による脳細胞の減少から生じる脳の萎縮、脳内アセチルコリンなどの神経伝達物質の減少などが関与していると考えられている。また、認知症患者は顕著に脳内アセチルコリン量が低い事が知られ、アセチルコリンの増加を指標とした創薬の取り組みも多くなされている(非特許文献1)。
うつ病や統合失調症などの精神疾患は、遺伝素因とともに、環境要因、特に、社会的・心理的ストレスが発症の引き金になる。うつ病患者の血液中で炎症性サイトカインが上昇すること、うつ病の患者の脳内では炎症担当のミクログリアが活性化されていることなどから、うつ病と脳内炎症の関連性が示唆されている。近年、ストレス負荷によりグリア細胞が過剰に炎症応答することで、神経細胞の応答性減弱や萎縮が誘導されることが明らかになってきた(非特許文献2)。
抗うつ薬に関しては、三環系抗うつ薬、四環系抗うつ薬と呼ばれる薬が以前から用いられてきたが、最近は、代表的な抗うつ薬としてSSRI、SNRI、NaSSAの3種類が新規抗うつ薬と呼ばれ、使用されている。これらの薬剤は、脳内神経伝達物質の放出を促すことで脳内の情報伝達を促進する抗うつ効果を目的としているが、既存の抗うつ薬を使った治療では、症状が改善する人の割合は50%と低く、治療抵抗性患者が3割存在していると言われており、QOL(Quality of Life)の低下や社会復帰にも影響を与えていると考えられている。
その他、イチョウ葉エキスを有効成分とするサプリメントも一般的に認知度は高いが、抗血液凝固剤禁忌のため中高齢者には不向きという課題がある。このように認知機能の維持改善のためのサプリメントは既にいくつかが市販されているが、使用に制限がある製品もあり、有効な効果が得られるものは殆どない。また、うつ症状については、セント・ジョンズ・ワート(ハーブ)のサプリメントが市販されているが、過剰摂取の危険性や、薬品との相互作用に関する危険情報も複数あるため、日常的な摂取には課題がある。このように認知機能やうつ症状のためのサプリメントにも素材によっては課題があり、ヒトでの有効性が報告されているものは殆どない。
本発明は、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体を有効成分とする、新しい認知症、うつ病、統合失調症などの中枢神経疾患における認知機能障害ならびにうつ症状の発症予防、症状改善、または治療のための剤を提供するものである。また、本発明は食品由来成分を有効成分とするため、サプリメント、飲食品、医薬品などに幅広く応用できる、安全で汎用性の高いものであり、認知機能障害やうつ症状の予防および/または改善につなげることができる。
[1]下記式(I)で表される、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体の少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする、中枢神経系疾患の発症予防、治療および/または症状改善用の脳機能改善剤。
(式中、波線は立体配置がR配置又はS配置を表す。)
[2] 中枢神経系疾患が、神経変性疾患または精神疾患である[1]に記載の脳機能改善剤。
[3] 中枢神経系疾患が、記憶障害をもたらす疾患である[1]または[2]に記載の脳機能改善剤。
[4] 脳内の細胞外アセチルコリンの遊離を促進することによって、ムスカリン受容体を活性化させる、[1]乃至[3]のいずれか一項に記載の脳機能改善剤。
[5] [1]乃至[4]のいずれか一項に記載の脳機能改善剤を含有する、中枢神経系疾患における認知機能障害およびうつ症状の発症予防、治療および/または症状改善のための脳機能改善用組成物。
[6] [5]に記載の組成物を含有する脳機能改善用サプリメント。
[7] [5]に記載の組成物を含有する脳機能改善用飲食品。
[8] [5]に記載の組成物を含有する脳機能改善用医薬品又は医薬部外品。
[9] 下記式(I)で表される、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体の少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とするアセチルコリン遊離促進剤。
(式中、波線は立体配置がR配置又はS配置を表す。)
本発明における神経変性疾患における発病予防、治療および/または症状改善の効果は、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体の作用により大脳皮質における細胞外アセチルコリンの遊離を促進することによって、ムスカリン受容体を活性化させることを作用機序とする。アルツハイマー型認知症では脳内コリン作動性神経の機能低下が認知症発症の主因であるとする、コリン仮説が1982年にWhitehouseらにより提唱された。アセチルコリンと結合するアセチルコリン受容体のひとつであるムスカリン受容体は、5種類のサブタイプに分類され、いずれもGタンパク質共役型受容体(GPCR)と呼ばれる膜タンパク質であり、創薬のターゲットとして知られている。アセチルコリンのムスカリン性受容体拮抗薬であるスコポラミンを投与した健忘モデルラットでは、記憶の想起が障害されることが報告されており(Front. Aging Neurosci., 08 April 2014 、doi.org/10.3389/fnagi.2014.00063)、代表的な認知機能の評価系として使用されている。
また、中枢神経系疾患における神経変性疾患または精神疾患は、長期的なストレスまたは脳内炎症によって生じたものであり、本発明の式(I)の化合物を摂取することにより、長期的なストレスによる精神疾患が改善される。
即ち、本発明の脳機能改善作用の有効成分である式(I)の化合物と同様に、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトンの抱合体も脳機能改善効果があると考えられる。
これらの塩は、従来の方法により得ることができ、例えば、ナトリウム塩であれば、式(I)の化合物を水酸化ナトリウムと接触させることにより得ることができる。
エガーテラ・レンタJCM9979株を30mlのGAMブイヨンに植菌し、37℃で48時間嫌気培養し、前培養液とした。大腸菌K12株及びユウバクテリウム・プラウティ(フラボニフラクター・プラウティ)ATCC29863株は10mlのGAMブイヨンで24時間嫌気培養し、前培養液とした。(-)-エピガロカテキン290mgを含む100mlのGAMブイヨンにJCM9979株、大腸菌K12株の前培養液を加え、37℃で48時間嫌気培養した。培養液1mlをサンプリングして高速遠心分離(15000×g、10分)により菌体を除去し、上清をLC/MS分析することで(S)-1-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-3-(2,4,6-トリヒドロキシフェニル)-プロパン-2-オールの生成を確認した。この時のLC/MS条件を以下に記載する。
・カラム:CAPCELLPAK C18 MG(2.0i.d.×100.0mm、5μm、((株)資生堂製)、
・流速:0.2ml/分
・カラム温度:40℃
・移動相:
溶媒A:(水/アセトニトリル/酢酸=100:2.5:0.1、容量比(v/v/v))
溶媒B:(水/アセトニトリル/メタノール/酢酸=35:2.5:65:0.1、容量比(v/v/v/v))
グラジエント;0分:A100% B0%、3分:A100% B0%、25分:A0% B100%、25.1分:A100% B0%、33分:A100% B0%
・検出:UV270nm
・インターフェース:ESI
・ポラリティ:ネガティブ
・カラム:CAPCELL PAK MG(20i.d.×150mm、5μm、((株)資生堂製)
・流速:15ml/分
・カラム温度:40℃
・移動相:
溶媒A:アセトニトリル:メタノール:水:酢酸(5:5:90:0.3、容量比(v/v/v))
溶媒B:アセトニトリル:メタノール:水:酢酸(5:65:30:0.5、容量比(v/v/v))
グラジエント;0分:A80% B20%、5分:A80% B20%、20分:A10% B90%、25分:A1% B90%、26分:A80% B20%、35分:A80% B20%
・検出:UV270nm
製造例1で得られた(R)-5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン163.1mg(0.78mmol)に、ピリジン10mlと硫酸ナトリウム5mgを加え、室温で10分間攪拌した。次に、三酸化硫黄ピリジンを790.4mg(4.68mmol)加え、室温で1時間攪拌させた。攪拌後、0.2Mリン酸二水素ナトリウムバッファー(pH7.2)を加えて反応停止させ、エバポレーターで減圧濃縮して得られた濃縮残渣を3mlの水で溶解し分取HPLCに供した。分取HPLC条件を以下に記載する。
・カラム:CAPCELLPAK MG(20i.d.×150mm、5μm、(株)資生堂製)
・流速:19.0ml/分
・カラム温度:40℃
・移動相:
溶媒A:過塩素酸ナトリウム/水(122.4:500、重量/容量比(w/v))
溶媒B:過塩素酸ナトリウム/アセトニトリル(122.4:500、重量/容量比(w/v))
グラジエント;0分:A100% B0%、3分:A100% B0%、15分:A0% B100%、16分:A100% B0%、20分:A100% B0%
・検出:UV280nm
(R)-5-(3-スルフォオキシ-5-ヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン:1H-NMR(400MHz,重水素化メタノール):δ6.24(2H,s),6.19(1H,s),4.79(1H,m),2.91(2H,d,J=6.8Hz),2.55(1H,m),2.46(1H,m),2.33(1H,m),2.00(1H,m)
8週齢のWistar系ラット(雄性、日本チャールスリバー株式会社から購入)6匹を精製飼料で1週間予備飼育し、試験前日より絶食させて試験に用いた。投与サンプルは(-)-エピガロカテキンを生理食塩水に溶解させた溶液とし、各ラットに20mg/1.7mLずつ胃内強制投与した。投与は4日間反復して行い、それぞれ投与後6時間~24時間の尿を回収した。
・カラム:Mightysil RP18 GP(20i.d.×250mm、5μm、(関東化学(株)製)
・流速:15ml/分
・移動相:
溶媒A:メタノール/水/酢酸(5/95/0.2、容量比(v/v/v))
溶媒B:メタノール/水/酢酸(60/40/0.2、容量比(v/v/v))
グラジエント;0分:A80% B20%、5分:A80% B20%、15分:A0% B100%、18分:A0% B100%、18.1分:A80% B20%、25分:A80% B20%
・検出:UV270nm
・カラム:Mightysil RP18 GP(20i.d.×250mm、5μm、(関東化学(株)製)
・流速:15ml/分
・移動相:アセトニトリル/水/酢酸(15/85/0.2、容量比(v/v/v))
・検出:UV270nm
化合物A、B、Cをマウスに経口投与し、脳内の細胞外アセチルコリン(Acetylcholine)量への影響を検証した。アルツハイマー型認知症を含む、認知機能を評価するための試験として、マウスでの脳マイクロダイアリシス法が提唱されている。脳マイクロダイアリシス法は、被験動物を無麻酔、自由行動下の状態で、脳内局所での細胞外の神経伝達物質遊離の変動をリアルタイムでモニタリングすることが可能なシステムである。
7週齢の雄性ddYマウスを日本SLC株式会社より購入し、1週間の馴化期間の後、実験に供した。動物は、空調設備のある飼育室(温度22℃±1℃、相対湿度50±10%、照射時間12時間(8:00-20:00)の条件下)で飼育した。給餌は、市販MF粉末飼料(オリエンタル酵母工業株式会社製)及び、水道水を自由摂取とした。
脳内アセチルコリンの測定段階では、透析プローブ(膜長3mm)(株式会社エイコム製)をガイドカニューレに挿入し、日本薬局方リンゲル液(NaCl(147.2mM),KCl(4.0mM),CaCl2(2.2mM)を含有;扶桑薬品工業株式会社製)を流速1μL/分で灌流した。灌流により得られたサンプルを20分単位で回収し、内部標準物質(イソプロピルホモコリン,250fmol)とともに直ちに高速液体クロマトグラフィー/電気化学検出器(HPLC/ECD)システム(株式会社エイコム製HTEC-500)に連続自動インジェクションし、以下に示す条件でアセチルコリンの測定を行った。
・カラム:Eicompak AC-GEL(2.0mm;i.d.×150mm)(株式会社エイコム製)
・プレカラム:PC-05-03(3.0mm;i.d.×40mm)(株式会社エイコム製)
・酵素カラム:AC-Enzympak(3.0mm;i.d.)(株式会社エイコム製)
・移動相:400mg/Lのデカンスルホン酸ソーダ、134μMのEDTAを含む50mM炭酸水素カリウム緩衝液(pH8.3)
・流速:150μL/分
・カラム温度:33℃
・ECDの加圧電圧:+450mV
・参照電極:Ag/AgCl電極
・作用電極:白金電極
製造例1記載の方法に従って調製した化合物Aを、予め2.5% DMSO水溶液に溶解し、試験用として調製した。試験区は化合物Aを30mg/kg投与群、コントロール群の2群を設定し、各群n=5ずつの設定で試験を実施した。透析プローブをマウスの大脳皮質に挿入し、3時間以上経過後、細胞外アセチルコリンの遊離量が安定したことを確認し、これを基礎遊離量(ベースライン)とした。この後に化合物Aを30mg/kgの投与量で経口投与した。投与後120分間の、前述の(a)使用動物および方法に記載の方法で、細胞外アセチルコリン遊離量をリアルタイムで測定した。Vehicle群では同様に2.5%DMSO水溶液のみを経口摂取し、脳内アセチルコリン量を測定した。化合物の比較群として、化合物B、化合物Cも同様に試験を行った。
(c)統計処理方法
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示し、Turkey-Kramer’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準は*p<0.05、**p<0.01とした。その結果を図1に示す。図1の縦軸は、脳内アセチルコリン遊離量の基礎遊離量に対する比率を示す。
化合物Aをマウスに経口投与または皮下(腹腔)投与し、短期作業記憶の低下抑制効果を検証した。
(a)使用動物および飼育方法
7週齢の雄性ddYマウスを日本SLC株式会社より購入し、1週間の馴化期間の後、実験に供した。動物は、空調設備のある飼育室(温度22℃±1℃、相対湿度50±10%、照射時間12時間(8:00-20:00)の条件下)で飼育した。給餌は市販MF粉末飼料(オリエンタル酵母工業株式会社製)及び、水道水を自由摂取とした。
製造例1記載の方法に従って調製した化合物Aを、予め2.5% DMSO水溶液に溶解した。当該化合物をマウスに30mg/kg投与群、10mg/kg投与群を設定し、各群n=15で、経口投与を実施した。コントロール群、Vehicle群は2.5% DMSO水溶液のみをマウスに経口投与した。同様にして、化合物Bと化合物Cについて30mg/kgの投与量にて各群n=10で経口投与した。また、化合物A~C投与群とVehicle群は、投与30分後にムスカリン性アセチルコリン受容体拮抗薬であるスコポラミン臭化水素酸塩(シグマアルドリッチ社製S1875)を各マウスに腹腔内投与(投与量1mg/kg)した。また、スコポラミン臭化水素酸塩を投与しないコントロール群では、(局)生理食塩液(大塚生食注3311401A2026)をマウスに腹腔投与した。最終投与から30分後に、Y字型迷路試験を行い、作業記憶の評価を行った。腹腔投与の比較評価として別途に上記同様の条件で経口投与の試験を行った。
自発的交替率(%)=交替行動数÷(総選択数-2)×100
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示し、Turkey-Kramer’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準は、*p<0.05、**p<0.01とした。経口投与時の自発的交替率を図2(A)および(B)に、投与方法についての自発的交替率の評価結果を図2(C)に示した。
また、図2(C)に示したように、化合物Aは経口投与、皮下投与のいずれの投与法でも、スコポラミン投与による作業記憶低下を改善した。以上の結果より、化合物Aは、マウスで有意に短期作業記憶の低下を改善し、症状に対する治療効果を有する事が見出された。
長期隔離飼育マウスに化合物Aを経口投与し、物体認知機能低下に対する改善作用を検討した。うつ・不安といった感情障害や、統合失調症でみられる認知機能障害などをあらわす精神疾患モデル動物として、長期隔離飼育マウスの使用が提唱されている(Neurosci Biobehav Rev.2008;32:1087-1102)。本試験では以下の条件で長期隔離飼育したマウスを、精神疾患のモデルマウスとして用いた。
3週齢の雄性ddYマウスを日本SLC株式会社より購入した。飼育は、空調設備のある飼育室(温度22℃±1℃、相対湿度50±10%、照射時間12時間(8:00-20:00)の条件下)で行い、市販のMF粉末飼料(オリエンタル酵母工業株式会社)及び、水道水を自由摂取とした。
3週齢の雄性ddYマウス(n=60)を、周囲の見えない灰色の不透明ケージ(24×17×12cm)で6週間個別飼育し、認知機能の低下を示す精神疾患モデルマウスとして使用した。また、5匹のマウスを透明ケージ(24×17×12cm)で集団飼育したマウス(n=20)を、コントロール群として用いた。
実験開始4日前に長期隔離飼育マウスおよび集団飼育マウスを個々に試験用の観察箱に10分間入れ、3日間馴化飼育をした。試験前日に色と形が異なる2個の物体を自由に探索させ(獲得試行)、物体認知のトレーニングを10分間実施した。
化合物Aは予め、2.5% DMSO水溶液に溶解した。長期隔離したマウスを20匹ずつ3群に分け、化合物投与群(10mg/kg、あるいは30mg/kg)およびVehicle群とした。また、対照として集団飼育したマウスに2.5% DMSO水溶液を投与したものを、コントロール群として試験に用いた。
試験はVehicle群(長期隔離飼育、n=20、2.5%DMSO経口投与)、化合物A投与群(長期隔離飼育、n=20、化合物A(30mg/kg)経口投与)および、化合物A投与群(長期隔離飼育、n=20、化合物A(10mg/kg)経口投与)、コントロール群(集団飼育、n=20、2.5%DMSO経口投与)の4群に分けて、獲得試行直後に経口投与を行った。
経口投与24時間後に、新奇物体の認知機能の評価試験を実施した。即ち、観察箱に入れた2個の物体のうち、片方の物体を新奇の物体に変え、5分間の新奇物体に対する探索時間を測定することで、マウスの物体認知機能を以下の計算式で算出されるDiscrimination index(%)により評価した。
Discrimination index(%)=(新奇物体探索時間 ― 旧物体探索時間)/(新奇物体探索時間 + 旧物体探索時間)×100
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示した。探索時間の統計処理はStudent’s t-test、Discrimination indexはTurkey-Kramer’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準はそれぞれ、###P<0.001、 **P<0.01とした。探索時間(Exploratry time)とDiscrimination indexの結果をそれぞれ図3(A)と(B)に示した。なお、図3(A)の「Familiar」、「Novel」はそれぞれ旧物体、新奇物体を示す。
以上の結果から、化合物Aの経口投与は長期隔離飼育により誘発される精神疾患の症状を有意に改善し、治療効果を発揮する事が確認できた。
化合物Aを長期に継続経口投与し、長期隔離飼育による認知機能障害の発症予防効果を検証した。
(a)使用動物および飼育方法
3週齢の雄性ddYマウスを日本SLC株式会社より購入した。飼育は、空調設備のある飼育室(温度22℃±1℃、相対湿度50±10%、照射時間12時間(8:00-20:00)の条件下)で行い、飼料はMF粉末飼料(オリエンタル酵母工業株式会社製)を基本とし、水道水を自由摂取とした。
長期投与中の化合物Aの吸湿を防ぐため、予め化合物Aと賦形剤(昭和産業株式会社製デキストリン、製品名「J-SPD」)を均一に混合し、化合物Aを10%含む粉末を調製した。
10%化合物A含有賦形剤70mgを、MF粉末飼料100gに均一に混合し、化合物A混合餌とした。給餌対照としては、化合物Aを含有しない賦形剤70mgのみ含有のMF粉末飼料を用いた。3週齢の雄性ddYマウス(n=22)を、周囲の見えない灰色の不透明ケージ(24×17×12cm)で各マウスを個別飼育した。その内、11匹のマウスには化合物A含有MF粉末飼料を給餌し、Vehicle群の11匹には、化合物を含有しないMF粉末飼料を給した。5週、継続して隔離飼育を行い、その間継続的に化合物含有MF粉末飼料の給餌を行った。
コントロール群では、マウス(n=11)を透明のケージ(24×17×12cm)内で、化合物Aを含有しないMF粉末飼料を給餌して集団飼育を行った。
5週間の長期飼育後に、試験例3に記載の方法と同様の方法で、物体認知機能を評価し、長期飼育中の化合物A投与による認知機能障害発症予防効果を検討した。
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示した。 探索時間の統計処理はStudent’s t-test、Discrimination indexはTurkey-Kramer’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準はStudent’s t-test:#P<0.05、##P<0.01、Turkey-Kramer’s test:*P<0.05,**P<0.05とした。探索時間(Exploratry time)とDiscrimination indexの結果をそれぞれ図4(A)と(B)に示した。
LPS(Lipopolysaccharide:リポ多糖)摂取により誘発されるうつ症状について、化合物Aの経口投与による症状の抑制効果を検討した。脳内炎症はうつ病発症の主要な要因の一つと考えられている。LPSは脳由来神経栄養因子の減少、ニューロンにおける樹状突起の密度変異の誘発や、ミクログリアの活性化などによる脳内の炎症反応を惹起し、うつ症状を誘発することが知られている。そこで、本試験ではLPSを腹腔内投与した脳内炎症誘発モデルマウスを使用し、経口投与による抗うつ作用を検討した。
7週齢のC57/BL6J系統雄マウス(日本SLC株式会社より購入)を使用した。飼育は、空調設備のある飼育室(温度22℃±1℃、相対湿度50±10%、照射時間12時間(8:00-20:00)の条件下)で行い、飼料はMF粉末飼料(オリエンタル酵母工業株式会社製)を給餌し、水道水を自由摂取とした。1週間の馴化期間後、8週齢のマウスを試験に用いた。
化合物Aは予め、2.5%DMSO水溶液に溶解した。化合物Aを30mg/kgおよび10mg/kgの投与量でマウスに経口投与した。この際、コントロール群、Vehicle群には2.5%DMSO水溶液のみをマウスに経口投与した。各群ともに15匹の設定とした。
30分後に脳内炎症を誘発させるため、LPS(serotype O111:B4)を0.5mg/kgの投与量で、化合物A 投与群とVehicle群のマウスに腹腔内投与を実施した。コントロール群として脳内炎症を発症させないマウスには生理食塩水を、同様に腹腔内投与した。
LPS腹腔投与24時間後に強制水泳試験を実施し、無動時間の測定により、マウスのうつ症状を評価した。強制水泳試験は、アクリル樹脂製シリンダー(直径19cm、高さ25cm)内に水(25±1℃)を13cmの深さまで入れ、被験マウスを1匹ずつ6分間水泳させ、その様子をビデオ録画した。試験終了後、マウスを速やかに水中より引き上げ、ペーパータオルで清拭した。「手足などを動かすことなく水面に浮いているだけの状態」を無動とみなし、6分間の試験中における無動時間(Immobility Time(sec.))を計測した。
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示し、Turkey-Kramer’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準は、*p<0.05とした。その結果を図5に示した。図5の縦軸は試験中の無動時間を示す。LPSを投与したマウスのVehicle群ではコントロール群と比較して有意に無動時間の増加が見られたが、化合物A投与群では無動時間の上昇が抑制され、30mg/kg投与群ではコントロール群と同程度の無動時間が観察された。LPSを腹腔内投与した脳内炎症誘発モデルマウスは、うつ病のモデル動物として使用されている。本結果より、化合物Aは、脳内炎症によるうつ症状を有意に緩和し、発症予防効果を有する事が示された。
長期隔離飼育を5週間実施した精神疾患モデルマウスに化合物Aを経口投与し、投与後30分に強制水泳試験を実施し、うつ症状改善について検討した。
(a)使用動物および方法
試験例3と同様に、3週齢から5週間の長期隔離飼育を行った雄性ddYマウスを試験に用いた。
化合物Aは予め、2.5% DMSOに溶解した。長期隔離後のマウスを7匹ずつ3群に分け、化合物A(30mg/kg投与群、10mg/kg投与群)およびVehicle群(2.5%DMSO投与群)とし、経口投与を行った。
経口投与30分後に、試験例5と同様に、強制水泳試験を実施した。6分間の試験中における無動時間を計測し、マウスのうつ症状を評価した。
得られた結果を平均値(Mean)および標準誤差(SEM)で示し、Dunnett’s testにより対照群との有意差を調べた。有意水準は、*p<0.05とした。その結果を図6に示す。図6の縦軸は試験中の無動時間を示す。
Claims (8)
- 下記式(I)で表される、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体の少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする、中枢神経系疾患の発症予防、治療および/または症状改善用脳機能改善剤であって、中枢神経系疾患が、精神疾患である脳機能改善剤。
(式中、波線は立体配置がR配置又はS配置を表す。) - 中枢神経系疾患が、記憶障害をもたらす疾患である請求項1に記載の脳機能改善剤。
- 脳内の細胞外アセチルコリンの遊離を促進することによって、ムスカリン受容体を活性化させる、請求項1又は2に記載の脳機能改善剤。
- 請求項1乃至3のいずれか一項に記載の脳機能改善剤を含有する、中枢神経系疾患の発症予防、治療および/または症状改善用の組成物。
- 請求項4に記載の組成物を含有する脳機能改善用サプリメント。
- 請求項4に記載の組成物を含有する脳機能改善用飲食品。
- 請求項4に記載の組成物を含有する脳機能改善用医薬品又は医薬部外品。
- 下記式(I)で表される、5-(3,5-ジヒドロキシフェニル)-γ-バレロラクトン、その化合物の塩及びその化合物の抱合体の少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする、中枢神経系疾患の発症予防、治療および/または症状改善用の脳機能改善剤(ただし、脳神経細胞増殖による脳機能改善剤を除く。)。
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海野 けい子,カテキン 緑茶カテキンが脳の老化を予防する,化学と生物,2020年,Vol.58, No.11,p.621-627 |
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