JP7268202B2 - 代謝性疾患を治療するための融合タンパク質 - Google Patents
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Description
ssandro Pocaiらは、オキシントモジュリン(Oxyntomodulin,OXM)ベースのGLP-1R/GCGRデュアルアゴニストについて報告している(非特許文献6)。或いは、Richard D.DiMarchiらは、GCGベースのGLP-1R/GCGRデュアルアゴニスト(特許文献1)、更には、GLP-1R/GCGR/GIPRトリプルアゴニスト(特許文献2)について報告している。これら多重特異性のハイブリッドペプチドは、大部分がGLP-1又はGCGベースであり、配列の突然変異によって活性を向上させるとともに、プロテアーゼ加水分解に抵抗している。また、これらの類似物は、大部分が2番目のセリン(Ser)を非天然アミノ酸Aibに突然変異させることでDPP-IVの酵素分解に抵抗している。しかし、ロシュ(Roche)とイプセン(Ipsen)が共同開発していたGLP-1Rアゴニスト血糖値降下薬タスポグルチド(Taspoglutide)(非天然アミノ酸Aibを導入)は、抗体産生率が49%に達したことから、最終的に全ての第3相臨床試験を停止した(非特許文献7)。一方、少数ではあるが、2番目に天然のセリン(Ser)を維持した脂肪酸架橋のグルカゴン類似物も報告されている(非特許文献8)。当該類似物(MEDI0382)は30個のアミノ酸を含んでおり、天然のグルカゴンと比較して、9つのアミノ酸が突然変異している。また、MEDI0382の2番目には天然アミノ酸であるSerが維持されてはいるが、1日1回の投薬回数を保つしかない。現在のところ、投薬回数を減らすために常用されている技術手段には、PEG架橋又は脂肪酸架橋(例えば、セマグルチド(Semaglutide)等)があるが、この場合には化学合成や架橋の手順が関わってくるため、調製工程がやや複雑となる。
アミノ酸の一部を非天然アミノ酸に置換することで安定性と活性を向上させる必要があり、ひいては、脂肪酸又はPEGで修飾する必要もある。そのため、FGF21類似物との融合発現により単一分子を調製することは技術的に極めて難しい。また、現在のところ、デュアル又はマルチアゴニスト系ポリペプチドとFGF21類似物を組み合わせて使用したとの報告もない。
X1SX3GTFTSDYSKYLDX16X17X18AQDFVQWLX27X28X29Xz(SEQ ID No.81)
、W及びH以外のいずれかのアミノ酸から選択される。X17は、P、L、T、F及びH以外のいずれかのアミノ酸から選択される。X18は、P、F、H及びW以外のいずれかのアミノ酸から選択される。X17とX18は同時にRとなることはない。X27は、M又はLから選択される。X28は、D又はAから選択される。X29は、T又は欠失とする。Xzは、GGPSSGAPPPS又はGPSSGAPPPSから選択される。
ID NO.29、SEQ ID NO.32、SEQ ID NO.33、SEQ ID NO.35、SEQ ID NO.38、SEQ ID NO.42、SEQ ID NO.43、SEQ ID NO.44のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントから選択される。
HPIPDSSPLLQFGGQVRQX 19YLYTDDAQQTEX 31HLEIX
36EDGTVGX 43AX 45DQSPESLLQLX 56ALKPGVIQILGVKTSRFLCQRPDGALYGSLHFDPEACSFREX 98LLEDGYNVYQSEAHGLPLHX 118PGNX 122SPHRDPAPRGPX 134RFLPLPGLPPALPEPPGILAPQPPDVGSSDPLX 167MVX 170 X 171SQX 174RSPSX 179 X 180 X 181;
ID NO.87~90のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントから選択される。
よるインスリン分泌(グルコース依存性のインスリン分泌(GSIS)とも称する)を強化することで血糖をコントロールする消化管ホルモンである(Lancet,368:1696-705,2006)。また、インクレチンは、胃排出を遅らせることで栄養の吸収速度を緩やかにし、食物の吸収を直接的に減少させることも可能である。更に、インクレチンは、腸管やα細胞からのグルカゴン(Glucagon)の分泌を抑制する。今のところ、インクレチンとしては、グルカゴン様ペプチド-1(GLP-1)とグルコース依存性インスリン分泌刺激ポリペプチド(GIP)の2種類が知られている。
代表的なGLP-1Rアゴニストには、天然GLP-1及びその突然変異体、類似物(例えば、エキセナチド、リラグルチド(Liraglutide)等)が含まれる。
た、プラークは、動脈内で突然崩壊して血管を閉塞させ、最終的に心臓病を誘発する恐れを常に有している。
X1SX3GTFTSDYSKYLDX16X17X18AQDFVQWLX27X28X29Xz(SEQ ID No.81)
SEQ ID NO.33、SEQ ID NO.35、SEQ ID NO.38、SEQ ID NO.42、SEQ ID NO.43、SEQ ID NO.44のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントとすることができる。本発明の発明者は、本発明でスクリーニングにより取得したGCG類似物は、2番目に天然のSerを維持していても、FCとの融合後、安定性が1週間に1回の投薬回数を十分可能とするため、免疫原性の潜在的リスクが低下することを見出した。また、16番目、17番目及び18番目を改変することで、エンドペプチダーゼによるGCG類似物の分解が弱まるだけでなく、GCGRアゴニスト活性を良好に維持することも可能となる。
の他の好ましい実施例において、前記FCドメインはヒトIgG4由来であり、SEQ ID NO.9で示される。また、SEQ ID NO.5、SEQ ID NO.9のように、発現産物の均一性を高めるために、前記FCの鎖末端のKを除去してもよい。本発明で提供する好ましいGCG類似物をFCと融合することで、極めて高いDPP-IV抵抗性が得られる。これに対し、現在のところ、FCとの融合によりGCG類似物のDPP-IV酵素抵抗性を向上させられる旨を開示した従来技術は存在しない。且つ、薬効学実験の結果、安定性が1週間に1回の投薬回数を可能とすることが明らかとなった。融合によってこのような効果が達成されることは、現在のところ前例がない。また、2番目のSerを維持することで、免疫原性のリスクが低下するほか、GCGRのアゴニスト活性が最大限保持されるため、体重減少効果を効果的に達成可能となる。
HPIPDSSPLLQFGGQVRQX 19YLYTDDAQQTEX 31HLEIX 36EDGTVGX 43AX 45DQSPESLLQLX 56ALKPGVIQILGVKTSRFLCQRPDGALYGSLHFDPEACSFREX 98LLEDGYNVYQSEAHGLPLHX 118PGNX 122SPHRDPAPRGPX 134RFLPLPGLPPALPEPPGILAPQPPDVGSSDPLX 167MVX 170 X 171SQX 174RSPSX 179 X 180 X 181;
る。X174は、G、A又はLから選択される。X179は、Y、A又はFから選択される。X180は、A又はEから選択される。X181は、S、Kから選択されるか、欠失している。
FGF21類似物(F6L5M2)併用投与群に比べて著しい体重減少効果を有していた。つまり、当該融合タンパク質A352L1F6L5M2は副作用が低く、安全性が向上する可能性のあることが証明された(実施例7)。
投与量を大幅に減少させられることから、潜在的な副作用発生リスクが明らかに低下することを見出した。
Chem.;60(10):4293-4303,2017)によると、GCG類似物のC末端にcex配列を追加したあと、GLP-1Rアゴニスト活性は逆に3倍程度低下し、GCGRアゴニスト活性は14倍程度低下したという(文中の表2、ペプチド7及び8)。つまり、天然グルカゴンのC末端にExendin-4のC末端におけるペプチドcex配列GPSSGAPPPS(SEQ ID NO.3)を単純に追加しただけでは、GLP-1Rのアゴニスト活性が明らかに向上することはなく、更に弱まることすらある。一方、グルカゴン、GLP-1のような低分子ペプチドとFc、及びアルブミンのようなベクター融合タンパク質を融合発現する場合には、往々にして立体障害により活性が著しく低下する(J.Pept.Sci.,14:588-595,2008)。且つ、このような活性の変化は予測不可能である。
をベースに設計・開発されているGCGR、GLP-1R、GIPRマルチアゴニストは、いずれも2番目にDPP-IV抵抗性の突然変異を導入している。例えば、L型をD型アミノ酸に突然変異させたり(L-SerをD-Serに突然変異)、非天然アミノ酸Aibを導入したりしている(Cell Metabolism,24:51-62,2016)。しかし、本発明の実施例において、2番目に天然のL-Serを保持する二量体融合タンパク質は、非常に高い血清安定性を示し、24時間経過しても明らかなDPP-IV分解の兆候は見られなかった。一方、FCと融合しなかった対応ポリペプチドは、DPP-IVによって急速に加水分解された(表3)。本発明の発明者は、天然グルカゴンとFCを融合した活性タンパク質A001L1F6(SEQ ID NO.51)と、Joseph R.Chabenneらの報告によるGlucagon-cexとFCを融合した活性タンパク質A012L1F6(SEQ ID NO.52)を対照とし、FC融合によって安定性が向上するか否かを検証した。しかし、A001L1F6(SEQ ID NO.51)及びA012L1F6(SEQ ID NO.52)は、いずれも明らかなDPP-IV抵抗性の兆候を示さなかった(実施例4)。且つ、実施例4では、更に、同じく16~18番目を突然変異させたGCG類似物のFC融合タンパク質であっても、安定性の差が極めて大きいことが示された。タンパク質の空間構造は極めて複雑である。そのため、SEQ ID NO.81を満たす突然変異は、ペプチド鎖内部の安定性を向上させるだけでなく、GCG類似物とFC鎖間の相互作用する立体配座を変化させる可能性があり、これにより、融合タンパク質のN末端の安定性が更に向上した。血清アルブミン(例えば、HSA)との結合によりタンパク質の安定性向上に有利となり得るとの報告(例えば、リラグルチド)もあるが、2番目を突然変異させていなければ、半減期を12時間以上持続させることはできない。即ち、1週間に1回の投薬回数を可能とすることはできない。これに対し、本発明で提供するGCG類似物薬は、薬物代謝及び薬効試験において、一般的に報告されている1日1回(例えば、アルブミンと結合したリラグルチド)ではなく、1週間に1回の投薬回数で十分なことが示された。また、天然アミノ酸を維持することで免疫原性のリスクが更に低下し、化学架橋を回避できるため、調製過程がより簡易的且つ便利となる。
試薬が含まれるが、これらに限らない。
各数値範囲の2つの端点及び2つの端点間の任意の数値をいずれも選択可能であると解釈すべきである。また、別途定義している場合を除き、本発明で使用するあらゆる技術及び科学用語は、当業者により一般的に理解される意味と等しい。更に、実施例で使用している具体的方法、デバイス、材料のほかに、当業者による従来技術の理解及び本発明の記載に基づいて、本発明の実施例で述べる方法、デバイス、材料と類似又は同等の従来技術における任意の方法、デバイス及び材料を用いて本発明を実現してもよい。
本実施例で調製した融合タンパク質は式Iで表され、具体的構造は、A-L-F(式I)である。好ましくは、GCG類似物フラグメント(式IのAに対応)、連結ペプチドフラグメント(式IのLに対応)、及びFc(式IのFに対応)を融合して得られる二量体融合タンパク質のアミノ酸配列は、後述の表1に示す通りとする。
子を取得したあと、目的遺伝子を哺乳動物細胞の発現ベクターpTT5(Yves Durocher)にクローニングして、大腸菌Top10F’に形質転換した。そして、陽性クローンが鑑定されたあと、500mlのLB培地に移植して一晩培養し、遠心分離により菌体を収集してから、オメガ社製E.Z.N.A(登録商標)エンドフリープラスミドマキシキット又は類似の方法でプラスミドを抽出した。
実施例1で取得した融合タンパク質につき、GLP-1Rアゴニスト活性測定及びGCGRアゴニスト活性測定を含むin vitro活性測定を行った。
GLP-1Rアゴニスト活性測定には、ルシフェラーゼレポーター遺伝子アッセイを使用した。ヒト由来GLP-1R遺伝子を哺乳動物細胞の発現プラスミドpCDNA3.1にクローニングし、組換え発現プラスミドpCDNA3.1-GLP-1Rを作製した。また、ルシフェラーゼ(luciferase)全長遺伝子をpCRE-EGFPプラスミドにクローニングし、EGFP遺伝子を置換して、pCRE-Luc組換えプラスミドを取得した。次に、pCDNA3.1-GLP-1RとpCRE-Lucプラスミドをモル比1:10の比率でCHO細胞にトランスフェクションし、安定トランスフェクション発現株をスクリーニングすることで、組換えCHO/GLP-1R安定トランスフェクション細胞株を取得した。
000rpmで5min間遠心分離したあと上清を捨て、10%FBS及び300μg/mlのG418を含む2mlのDMEM/F12培地を加えて再懸濁し、カウントした。続いて、10%FBSを含むDMEM/F12培地を用いて細胞を5×105細胞/mlまで希釈し、96ウェルマイクロプレートに1ウェルあたり100μl(即ち、5×104/ウェル)でプレーティングした。これにより、単層培養したあと、0.2%FBSを含むDMEM/F12培地に交換して培養した。そして、96ウェルマイクロプレートにプレーティングした細胞から上清を捨てたあと、精製した組換えタンパク質(表1及び表2)又は天然グルカゴン(チャイニーズ ペプチド カンパニー(中国語表記:杭州中▼タイ▲生化有限公司)、GLUC-004)と天然GLP-1(チャイニーズ ペプチド
カンパニー、GLUC-016B)を対照とし、0.2%FBSを含むDMEM/F12培地で一連の所定濃度まで希釈してから、細胞培養ウェルに100μl/ウェルで加え、6hの刺激後に測定した。測定は、ルシフェラーゼレポーターアッセイキット(Lucifersae reporter kit、Ray Biotech社、Cat:68-LuciR-S200)の説明書に従って行った。
GCGRアゴニスト活性測定にも同様に、ルシフェラーゼレポーター遺伝子アッセイを使用した。GCGR遺伝子を哺乳動物細胞の発現プラスミドpCDNA3.1にクローニングし、組換え発現プラスミドpCDNA3.1-GCGRを作製した。CHO細胞へのトランスフェクション及び安定トランスフェクション細胞株CHO/GCGRの作製については上記と同様とした。
ID NO.85)、G402L1F6(SEQ ID NO.86)についても、GLP-1Rアゴニスト活性測定及びGCGRアゴニスト活性測定を含むin vitro活性測定を行った(調製及び精製の方式は実施例1と同様)。
精製した融合タンパク質を10mMのHEPES緩衝液(0.05mg/mlのBSAを
含む)に溶解し、最終濃度を5μMとしてから、最終濃度10nMの組換えDPP-IV酵素を加えた。これを37℃で24時間水浴したあと、in vitroのGCGR細胞活性を測定した。ここで、活性維持率≒(DPP-IV酵素処理後の活性/処理前の活性)×100%とした。
GAibGS:H-Aib-QGTFTSDYSKYLDSQAAQDFVQWLMNGGPSSGAPPPS(SEQ ID NO.80);
A123(SEQ ID NO.30)、A137(SEQ ID NO.32)、A175(SEQ ID NO.33)、A352(SEQ ID NO.42)、A382(SEQ
ID NO.43)及びA395(SEQ ID NO.44)を本実施例における安定性実験の対照として用いた。
in vitro細胞アッセイ:
(1)融合タンパク質を取り、限外濾過によって濃縮してから、20mM PB pH7.4で1.6mg/mlまで希釈した。そして、これを除菌濾過したあと、血清(FBS、GEMINI 900-108、A97E00G)を用いて10倍に希釈し、均一に混合してから滅菌遠沈管に分割した。
本実施例で調製した融合タンパク質は式IIで表され、具体的構造は、A-L1-F-L2-B(式II)である。AはGCG類似物フラグメント、Fは長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントである。BはFGF21類似物フラグメントであって、天然FGF21(SEQ ID NO.87)又はその誘導体とすることができる。また、L1は連結ペプチドフラグメントであって、配列をSEQ ID NO.14~23のいずれかから選択可能である。L2は連結ペプチドフラグメントであって、存在しなくてもよいし、配列をSEQ ID NO.14~23のいずれかから選択してもよい。調製したアミノ酸はSEQ ID NO.91~115で示され、対応するコード番号を表4に記載している。
ピューロマイシン耐性遺伝子pacをPCR増幅し、pcDNA3.1(+)にクローニングして、元のG418耐性遺伝子と置換した。また、GAL4DBD-ELK1、IRES、KLB(β-klotho)遺伝子をPCR増幅し、pcDNA-Puroプラスミドに順にクローニングして、細胞のトランスフェクション及びスクリーニングに用いるプラスミドpcDNA-GAL4DBD-ELK1-IRES-KLB-Puroを作製した。次に、作製した組換えプラスミドとpFR-Lucプラスミド(アジレント社)をオメガ社製E.Z.N.A(登録商標)エンドフリープラスミドマキシキットで抽出し、
準備した。細胞のトランスフェクション過程は次の通りであった。
細胞がシャーレ全体に成長したあと、パンクレアチンで消化し、細胞懸濁液を調製した(1×105細胞/ml、DMEM+5%FBS+1μg/mlのピューロマイシン)。これを96ウェルマイクロプレートに1ウェルあたり100μlでプレーティングし、一晩培養した。続いて、濃度勾配を有する測定対象サンプルを加え、6h作用させたあと、ルシフェラーゼレポーターアッセイキット(Luciferase Reporter Assay Kit、Ray Biotech社、Cat:68-LuciR-S200)を用いて蛍光検出を行った。結果は、表4に示す通りとなった。
レプチン受容体欠失2型糖尿病(db/db)マウスの血糖低下実験を行った。主に、体重、非空腹時血糖、投与前OGTT反応の3つの指標に従って、db/dbマウスをスクリーニングし、均等に群分けした。各群は10匹とし、過剰に大きい又は小さい個体はできる限り排除した。次に、表5に示した投与量で皮下注射を行った。4日ごとに1回投与し、1回目を0日目、最後を16日目とした。陰性対照群には生理食塩水(PBS)(5μl/g体重)、陽性対照群にはリラグルチド(10nmol/kg体重)を皮下注射する方式で、1日1回投与し、連続18日間投与した。1回目の注射前、及び2d、6d、10d、14d、18dの午前9時に随時血糖値を測定した。随時血糖の変化の結果は図2に示すようになった。
本実施例の目的は、異なるデュアル融合タンパク質がDIOマウスの体重に及ぼす影響及び作用を研究することである。7週齢のオスのC57BL/6Jマウスに高脂質飼料(60%kcal from fat)を与えて16週間飼育を続け(合計23週間)、体重が約55gとなった時点で実験を行った。飼育条件は、12h明期/12h暗期、自由摂食、個別ケージで飼育とし、投与1日前に体重及び体重増加曲線に従ってマウスを群分けした(8匹/群)。そして、その翌日に皮下投与処理を行った。20nmol/kg体重の投与量で4日に1回投与し、その他の日はPBSを偽注射した。投与は28日間連続で行った。一方、陰性対照群には、5μl/g体重で生理食塩水(PBS)を注射した。また、陽性対照群にはリラグルチド(40nmol/kg体重)を1日1回投与した。そして、マウスの体重を毎日測定し、摂食・摂水量を記録した。マウスは最後の投与から5日目に殺処理し、眼窩から採血して血漿標本を-80℃で保管した。そして、各群の動物の投与前及び殺処理時の平均体重の変化を計算した。結果は図3に示す通りとなった。
Claims (22)
- 融合タンパク質であって、グルカゴン類似物フラグメント及び長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントを含み、前記グルカゴン類似物フラグメントは、
a)SEQIDNo.81のアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメント:
(X1は、H又はYから選択され、X3は、Q又はEから選択され、X16は、Y、N、W及びH以外のいずれかのアミノ酸から選択され、X17は、P、L、T、F及びH以外のいずれかのアミノ酸から選択され、X18は、P、F、H及びW以外のいずれかのアミノ酸から選択され、X17とX18は同時にRとなることはなく、X27は、M又はLから選択され、X28は、D又はAから選択され、X29は、T又は欠失とし、Xzは、GGPSSGAPPPS又はGPSSGAPPPSから選択される)、を含み、
前記a)のポリペプチドフラグメントは、SEQ ID NO.29、SEQ ID NO.32、SEQ ID NO.33、SEQ ID NO.35、SEQ ID NO.38、SEQ ID NO.42、SEQ ID NO.43、SEQ ID NO.44のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントから選択される融合タンパク質。 - )
前記長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントは、哺乳動物の免疫グロブリンのFC部分由来であることを特徴とする請求項1に記載の融合タンパク質。 - 前記長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントは、
c)SEQIDNO.4~13のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメント、を含むことを特徴とする請求項2に記載の融合タンパク質。 - 前記融合タンパク質は第1連結ペプチドフラグメントを更に含み、前記第1連結ペプチドフラグメントは、グルカゴン類似物フラグメントと長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントの間に位置することを特徴とする請求項1に記載の融合タンパク質。
- 前記第1連結ペプチドフラグメントはG、S及び/又はAを豊富に含むことを特徴とする請求項1に記載の融合タンパク質。
- 前記第1連結ペプチドフラグメントは、SEQIDNO.14~23のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントを含むことを特徴とする請求項4に記載の融合タンパク質。
- 前記融合タンパク質は、N末端からC末端にかけて、グルカゴン類似物フラグメント、第1連結ペプチドフラグメント及び長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントを順に含むことを特徴とする請求項4に記載の融合タンパク質。
- 前記融合タンパク質のアミノ酸配列は、SEQIDNO.56、SEQIDNO.59、SEQIDNO.60、SEQIDNO.62、SEQIDNO.65、SEQIDNO.69、SEQIDNO.70、SEQIDNO.71のいずれかで示されることを特徴とする請求項1に記載の融合タンパク質。
- 前記融合タンパク質は、更に、FGF21類似物フラグメントを含み、
前記FGF21類似物フラグメントは、
e)SEQIDNO.119のアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメント:
(N末端のHPIPDSSは、欠失していてもよいし、一部を欠失していてもよく、X 19 は、R、Y、V、E又はCから選択され、X 31 は、A又はCから選択され、X 36 は、R又はKから選択され、X 43 は、G又はCから選択され、X 45 は、A、K、E又はVから選択され、X 56 は、K、R、V又はIから選択され、X 98 は、L、R又はDから選択され、X 118 は、L又はCから選択され、X 122 は、K又はRから選択され、X 134 は、A又はCから選択され、X 167 は、S、A又はRから選択され、X 170 は、G又はEから選択され、X 171 は、P又はGから選択され、X 174 は、G、A又はLから選択され、X 179 は、Y、A又はFから選択され、X 180 は、A又はEから選択され、X 181 は、S、Kから選択されるか、欠失している)、を含むことを特徴とする請求項1に記載の融合タンパク質。 - 前記e)のポリペプチドフラグメントは、SEQIDNO.87~90のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントから選択されることを特徴とする請求項9に記載の融合タンパク質。
- 前記融合タンパク質は第2連結ペプチドフラグメントを更に含み、前記第2連結ペプチドフラグメントは、長時間作用型タンパク質ユニットフラグメントとFGF21類似物フラグメントの間に位置することを特徴とする請求項9に記載の融合タンパク質。
- 前記第2連結ペプチドフラグメントはG、S及び/又はAを豊富に含むことを特徴とする請求項11に記載の融合タンパク質。
- 前記第2連結ペプチドフラグメントは、SEQIDNO.14~23のいずれかのアミノ酸配列で示されるポリペプチドフラグメントを含むことを特徴とする請求項11に記載の融合タンパク質。
- 前記融合タンパク質は、N末端からC末端にかけて、グルカゴン類似物フラグメント、第1連結ペプチドフラグメント、長時間作用型タンパク質ユニットフラグメント及びFGF21類似物フラグメントを順に含み、
或いは、前記融合タンパク質は、N末端からC末端にかけて、グルカゴン類似物フラグメント、第1連結ペプチドフラグメント、長時間作用型タンパク質ユニットフラグメント、第2連結ペプチドフラグメント及びFGF21類似物フラグメントを順に含むことを特徴とする請求項11に記載の融合タンパク質。 - 前記融合タンパク質のアミノ酸配列は、SEQIDNO.91~115のいずれかで示されることを特徴とする請求項14に記載の融合タンパク質。
- 請求項1~15のいずれか1項に記載の融合タンパク質をコードする、分離したポリヌクレオチド。
- 請求項16に記載の分離したポリヌクレオチドを含む構造体。
- 請求項17に記載の構造体、又はゲノムに外来遺伝子が組み込まれている請求項16に記載のポリヌクレオチドを含む発現システム。
- 請求項1~15のいずれか1項に記載の融合タンパク質の調製方法であって、
請求項18に記載の発現システムを適切な条件で培養し、当該発現システムに前記融合タンパク質を発現させ、分離及び精製により前記融合タンパク質を提供することを含む調製方法。 - 請求項1~15のいずれか1項に記載の融合タンパク質、又は請求項18に記載の発現システムの培養物を含む薬物組成物。
- 請求項1~15のいずれか1項に記載の融合タンパク質、又は請求項20に記載の薬物組成物の、薬物製造における使用。
- 前記薬物は、代謝性疾患の治療のための薬物から選択されることを特徴とする請求項21に記載の使用。
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