JP6898539B2 - 免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対するt細胞輸注療法の前処置薬 - Google Patents
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Description
T細胞の活性化時に発現増強する膜蛋白質PD-1は、免疫チェックポイント分子の一種である。PD-1に結合するリガンドとして、PD-L1が知られている。PD-L1は、多くの腫瘍細胞及び活性化した免疫細胞に発現する。PD-L1がT細胞上のPD-1に結合すると、PD-1シグナルによって、抗原刺激時のTCRシグナルが抑制される。その結果、T細胞のサイトカイン産生や細胞殺傷活性が低下する。PD-1シグナルは、T細胞の増殖や生存を抑制する作用がある。
これらの報告は、全て免疫チェックポイント阻害剤と他のがん治療薬を組み合わせることを特徴としている。治療効果が認められる腫瘍は、免疫チェックポイント阻害剤の標的分子を発現するものに限定される。
1)免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対するT細胞輸注療法において、抗原に特異的なT細胞を投与する前に投与される医薬組成物であって、前記抗原に由来するCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ及び/又はCD4陽性ヘルパーT細胞認識エピトープを含む長鎖ペプチド抗原又は蛋白質抗原を疎水化多糖ナノゲルに搭載した抗原搭載ナノゲルを含有する医薬組成物。
2)免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対するT細胞輸注療法において、前記抗原搭載ナノゲルを投与した後に投与するための前記抗原に特異的なT細胞を含む医薬組成物であって、前記抗原搭載ナノゲルが前記抗原に由来するCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ及び/又はCD4陽性ヘルパーT細胞認識エピトープを含む長鎖ペプチド抗原又は蛋白質抗原を疎水化多糖ナノゲルに搭載した医薬組成物。
上記発明において、長鎖ペプチド抗原又は蛋白質抗原としては、組換え蛋白質抗原を用いることもできる。この場合には、所定のアミノ酸配列を持つ蛋白質をコードする塩基配列を持つ核酸を作製し、これを組み込んだ細胞(真核細胞又は原核細胞)を用いて、組換え蛋白質を発現させた後、公知の方法によって精製することで、組換え蛋白質抗原を得る。
4)前記抗原に特異的なT細胞が、前記抗原を認識するT細胞受容体又はキメラ抗原受容体を発現するT細胞である1)〜3)のいずれか1項記載の組成物。
5)前記長鎖ペプチド抗原が23〜120個のアミノ酸から成る1)〜4)のいずれか1項記載の組成物。
6)長鎖ペプチド抗原に含まれるT細胞認識エピトープの間に、2〜10個のチロシン、2〜10個のスレオニン、2〜10個のヒスチジン、2〜10個のグルタミン及び2〜10個のアスパラギンから成る群から選択される配列を含む1)〜5)のいずれか1項記載の組成物。
7)前記疎水化多糖がプルラン及びコレステリル基を含む、1)〜6)のいずれか1項記載の組成物。
8)前記免疫増強剤が、TLR(Toll様受容体)アゴニスト(CpGオリゴDNA又はPoly-IC RNA)、STINGアゴニスト又はRLR(RIG-I様受容体)アゴニストから成る群から選択される少なくとも一つである3)〜7)のいずれか1項記載の組成物。
これらのうち、TLRアゴニスト(CpGオリゴDNA又はPoly-IC RNA)を用いることが好ましい。
10)前記抗原搭載ナノゲル及び免疫増強剤の投与経路が、皮下、皮内、筋肉内、腫瘍内及び静脈内からなる群から選択される少なくとも一つの経路によって投与される1)〜9)のいずれか1項記載の組成物。
これらのうち、皮下投与又は静脈内投与を用いることが好ましい。
11)前記抗原搭載ナノゲル及び免疫増強剤が、前記抗原に特異的なT細胞を含む医薬組成物の投与の少なくとも1日前に投与される1)〜10)のいずれか1項記載の組成物。
12)静脈内投与されたときに腫瘍局所のマクロファージに選択的に物質を送達するデリバリーシステムであって、プルラン及びコレステリル基を含む疎水化多糖から成る粒子径80nm以下のナノゲル。
13)免疫チェックポイント阻害剤に抵抗性を持つ腫瘍に有効な治療薬を特定するための非ヒト哺乳類腫瘍モデルであって、前記腫瘍がマウス繊維肉腫CMS5aであり、非ヒト哺乳類がマウスである非ヒト哺乳類腫瘍モデル。
本発明の前処置薬は、腫瘍特異的抗原蛋白質又は腫瘍間質特異的抗原蛋白質に由来するCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ及びCD4陽性ヘルパーT細胞認識エピトープを同時に含む1種類以上の合成長鎖ペプチド抗原又は組換え蛋白質抗原をデリバリーシステムである疎水化多糖ナノゲルに搭載した薬剤と、1種類以上の免疫増強剤によって構成されることを特徴とする。
前記合成長鎖ペプチド抗原は、T細胞認識エピトープを少なくとも2つ以上含む23〜120個のアミノ酸から成るポリペプチドであることが好ましい。前記合成長鎖ペプチド抗原は、T細胞認識エピトープを少なくとも2つ以上含む23〜80個のアミノ酸から成るポリペプチドであることが好ましい。前記合成長鎖ペプチド抗原が、T細胞認識エピトープを少なくとも2つ以上含む23〜60個のアミノ酸から成るポリペプチドであることが好ましい。
前記CD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープが、腫瘍特異的抗原蛋白質又は腫瘍間質特異的抗原蛋白質のアミノ酸配列の一部であることが好ましい。前記CD4陽性ヘルパーT細胞認識エピトープが、腫瘍特異的抗原蛋白質又は腫瘍間質特異的抗原蛋白質のアミノ酸配列の一部であることが好ましい。
前記腫瘍特異的抗原蛋白質が、MAGEファミリー、NY-ESO-1/LAGE、SAGE、XAGE、HER2、PRAME、Ras、5T4、WT1、p53、MUC-1、hTERT、RHAMM、Survivin、EGFRvIII、HPV E6、MART-1、gp100、CEA、IDO、Brachyury、Mesothelin、PSA及びPSMAからなる群から選択されることが好ましい。前記腫瘍間質特異的抗原蛋白質が、FAP、VEGFRファミリー及びTEM1からなる群から選択されることが好ましい。
前記免疫増強剤が、可溶性TLRアゴニスト又は可溶性STINGアゴニスト又は可溶性RLRアゴニストを含むことが好ましい。可溶性TLRアゴニストとして、CpGオリゴDNA又はPoly-IC RNAが例示される。可溶性STINGアゴニストとして、cdGMP等の環状ジヌクレオチド、DMXAA等のxanthenone誘導体が例示される。可溶性RLRアゴニストとして、5'-三リン酸化二本鎖RNAが例示される。
疎水基としては、例えば1本鎖及び2本鎖のアルキル基又はステロール残基を、100単糖あたり1〜5個(重量比で5%以下)の割合で導入したものが好ましく、100単糖あたり1〜3個(重量比で3%以下)の割合で導入したものがより好ましい。疎水基は、アルキル基又はステロール残基に限定されず、封入される抗原の分子量や等電点に応じて封入率のよいものを選択できる。ステロール残基としては、例えばコレステロール、スチグマステロール、β−シトステロール、ラノステロール、エルゴステロール残基などが挙げられる。好ましくは、コレステロール残基を用いることができる。アルキル基としては、炭素数が20以下のものが好ましく、炭素数が10〜18のアルキル基を用いることがより好ましい。アルキル基は、直鎖又は分岐鎖のいずれを用いることもできる。
疎水化多糖としては、リンカーを介して結合したものを用いることができる。
疎水化多糖としては、非イオン性であることが好ましい。合成長鎖ペプチド抗原又は組換え蛋白質抗原を搭載した疎水化多糖ナノゲル粒子が、生理的条件下でゼータ電位が−2.0mV〜+2.0mVのものが好ましい。合成長鎖ペプチド抗原又は組換え蛋白質抗原を搭載した疎水化多糖ナノゲル粒子の粒子径が80nm以下であることが好ましい。
本発明の前処置薬は、通常、抗原搭載ナノゲルと免疫増強剤を混合した製剤又は別個の製剤としたキットとして、皮下、静脈内、筋肉内への非経口投与に適した剤型の製剤とすることができる。目的の免疫を誘導するのに必要な抗原搭載ナノゲルの投与量は、適宜決定できる。例えば、通常の投与量としては、合成長鎖ペプチド抗原又は組換え蛋白質抗原として、0.1mg/回〜10mg/回程度の量を用いることができる。投与回数は、2〜20回が適当である。投与間隔は、前処置薬と抗原特異的T細胞輸注の間隔として、1日〜2週間の間で選択する。
抗原搭載ナノゲル、免疫増強剤及び抗原特異的T細胞輸注を用いる治療薬の適用の対象は、免疫チェックポイント阻害剤に抵抗性の腫瘍を有するヒトが挙げられる。腫瘍の種別は特に限定されないが、例えば前立腺がん、大腸がん、メラノーマ、頭頸部がん、食道がん、胃がん、結腸・直腸がん、肝臓がん、胆のう・胆管がん、膵臓がん、肺がん、乳がん、卵巣がん、膀胱がん、腎臓がん、睾丸がん、骨・軟部肉腫、悪性リンパ腫、白血病、子宮頚がん、皮膚がん、脳腫瘍等が挙げられる。
<実施例1>
1.材料と方法
抗マウスCD16/CD32抗体(クローン93)、PE標識抗マウスPD-L1抗体(クローン9G2)、APC-Cy7標識抗CD45抗体(クローン30-F11)及びPE-Cy7標識抗PD-1抗体(クローン29F.1A12)はバイオレジェンドから購入した。V450標識抗CD8抗体(クローン53-6.7)はeバイオサイエンスから購入した。ウシ胎児血清(FBS)はバイオウェストから購入した。RPMI1640培地(2-メルカプトエタノール添加)は細胞科学研究所から購入した。赤血球溶血溶液(0.15M NH4Cl/10mM KHCO3/0.1mM EDTA.Na2 pH 7.2)は三重大学で作製した。マウス大腸がんCT26細胞株(CRL-2638)はATCCから購入し、三重大学で継代したものを用いた。マウス線維肉腫CMS7細胞株及びマウス線維肉腫CMS5a細胞株はメモリアルスローンケタリングがん研究所より入手し、三重大学で継代したものを用いた。ヒトNY-ESO-1抗原遺伝子はメモリアルスローンケタリングがん研究所より分譲を受けた。CMS5a細胞株にヒトNY-ESO-1抗原遺伝子を安定導入したCMS5a-NY細胞株は、三重大学で作製され、継代されたものを用いた。雌性BALB/cマウスは6〜12週齢のものを日本SLCから購入し、三重大学医学部動物センターにて飼育した。動物実験のプロトコールは、三重大学医学部の倫理委員会の承認を得た。
各細胞株を皮下移植し、1週間後に腫瘍を回収した。腫瘍は、次に示す方法で免疫組織化学染色した。O.C.T.コンパウンド(サクラファインテック)に包埋し凍結した腫瘍を3μm厚で薄切し、得られた腫瘍切片について風乾を2時間行った。乾燥した腫瘍切片に対して氷冷したアセトンで15分間の固定を行い、免疫染色に用いた。腫瘍切片をPBSで3回洗浄した後、4℃でブロッキング液(1%ウシ血清アルブミン(BSA)及び5%Blocking One Histo(ナカライテスク)含有PBS)に浸漬し、ブロッキングを行った。1μg/mLの濃度で抗マウスCD16/CD32抗体をブロッキング液に希釈した。この抗体を用いて、湿潤箱内で腫瘍切片に対して室温で30分間の処理を行い、Fcγ受容体をブロックした。次に、ブロッキング液に1μg/mLの濃度で希釈したPE標識抗マウスPD-L1抗体を用いて、湿潤箱内で腫瘍切片に対して室温で1時間の染色を行った。0.02%Tween20含有PBSで3回の洗浄を行った後、腫瘍切片をProlong Gold antifade reagent with DAPI(ライフテクノロジーズ)に浸漬し、蛍光顕微鏡BX53F(オリンパス)又は共焦点レーザ走査型顕微鏡LSM780(カールツァイス)を用いて観察した。得られた顕微鏡観察像について、Photoshop Element(アドビシステムズ)を用いて画像処理を行った。
ヒトの免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍は、免疫チェックポイント分子の発現欠如やCD8陽性T細胞の腫瘍浸潤が見られないという特徴を示す(非特許文献5)。これと同じ特徴を示すマウス腫瘍を検索するため、種々のマウスがん細胞株がBALB/cマウスに皮下移植された後に形成する腫瘍を回収し、免疫チェックポイント分子PD-L1及びPD-1の発現、並びにCD陽性T細胞の浸潤数を測定した。図1(A)には、CT26腫瘍、CMS7腫瘍、CMS5a-NY腫瘍及びCMS5a腫瘍の腫瘍局所におけるPD-L1分子の発現を免疫染色法で解析した結果を示した。CT26腫瘍、CMS7腫瘍及びCMS5a-NY腫瘍では、PD-L1を発現する多数の細胞が観察されるのに対し、CMS5a腫瘍ではPD-L1発現細胞の数が極めて少なかった。図1(B)には、各腫瘍の腫瘍局所におけるCD3陽性T細胞におけるPD-1の発現頻度をフローサイトメトリー法で解析した結果を示した。CMS5a腫瘍は他の腫瘍と比較して、PD-1発現CD3陽性T細胞の割合が最も低かった。図1(C)には、各腫瘍の腫瘍局所へ浸潤したCD8陽性T細胞の頻度を示した。CMS5a腫瘍は他の腫瘍と比較して、腫瘍局所浸潤CD8陽性T細胞の頻度が著しく低かった。以上の結果から、マウス線維肉腫CMS5a細胞株がマウスに皮下移植されて形成する腫瘍は、ヒトの免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍と同じ特徴を示すことを見出した。
1.材料と方法
抗マウスCTLA-4抗体 (クローン9D9)は、MDアンダーソンがんセンターのJames P. Allison博士から分譲されたハイブリドーマを用いて三重大学で作製した。抗マウスGITR抗体(クローンDTA-1)は、大阪大学の坂口志文博士から分譲されたハイブリドーマを用いて三重大学で作製した。抗マウスPD-1抗体(クローンRMP1-14)は順天堂大学の八木田秀雄博士より分譲されたものを用いた。ウシ胎児血清(FBS)はバイオウェストから購入した。RPMI1640培地(2-メルカプトエタノール添加)は細胞科学研究所から購入した。マウス大腸がんCT26細胞株(CRL-2638)はATCCから購入し、三重大学で継代したものを用いた。マウス線維肉腫CMS7細胞株及びマウス線維肉腫CMS5a細胞株はメモリアルスローンケタリングがん研究所より入手し、三重大学で継代したものを用いた。ヒトNY-ESO-1抗原遺伝子は、メモリアルスローンケタリングがん研究所より分譲された。CMS5a細胞株にヒトNY-ESO-1抗原遺伝子を安定導入したCMS5a-NY細胞株は、三重大学で作製され継代されたものを用いた。雌性BALB/cマウスは6週齢〜12週齢のものを日本SLCから購入し、三重大学医学部動物センターにて飼育した。動物実験のプロトコールは、三重大学医学部の倫理委員会の承認を得た。
CT26細胞株、CMS7細胞株、CMS5a細胞株及びCMS5a-NY細胞株を10%FBS含有RPMI1640培地中で、T75培養フラスコ(コーニング)を用いて培養した。各細胞株を0.5%トリプシン含有リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を用いて剥離し、10%FBS含有RPMI1640培地に懸濁した。懸濁液を遠心分離(400×g、5分、4℃)した後に上清を除いた。RPMI1640培地を用いて2回洗浄した後、1×106個/100μLの濃度でRPMI1640培地に懸濁した。この懸濁液を100μL/個体の用量で、BALB/cマウスの後背部に皮下移植した(1群当たり4匹)。腫瘍移植後7、9及び11日目に、PBSに希釈した抗マウスPD-1抗体(150μg)、抗マウスCTLA-4抗体(100μg)及び抗マウスGITR抗体(100μg)を免疫チェックポイント阻害剤として同時に腹腔内投与した。腫瘍移植後は経時的に腫瘍の長径と短径を測定し、計算式(長径×短径×短径×0.5)に従って腫瘍体積を算出した。統計解析は、マイクロソフトエクセル(マイクロソフト)を用いたノンパラメトリック検定により行った。
実施例1の結果から、マウス線維肉腫CMS5a細胞株がBALB/cマウスに皮下移植されて形成する腫瘍は免疫チェックポイント阻害剤に対し抵抗性を示すことが予想された。そこで、各マウスがん細胞株を皮下移植して腫瘍を形成させたBALB/cマウスに対し、免疫チェックポイント阻害剤である抗PD-1抗体、抗CTLA-4抗体及び抗GITR抗体の併用療法による治療実験を試みた。結果を図2に示した。CT26腫瘍、CMS7腫瘍及びCMS5a-NY腫瘍では、免疫チェックポイント阻害剤併用療法による腫瘍増殖抑制が明確に認められた。これに対し、CMS5a腫瘍は、免疫チェックポイント阻害剤併用療法に全く反応せず、未治療群と同様の増殖を示した。このことから、CMS5a腫瘍は、免疫チェックポイント阻害剤に強い抵抗性を示すことが明らかとなった。実施例1の結果と併せ、CMS5a腫瘍はヒトの免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍の良いモデルであると考えた。CMS5a腫瘍を評価系として用いることで、ヒトの免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対して有効な治療法の探索ができることが分かった。
1.材料と方法
コレステリルプルラン(略称CHP、商品名CHP-80T)は(株)日油より入手した。不完全フロイントアジュバント(略称IFA、型番F5506)はシグマアルドリッチより購入した。長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲルは以下の通りに調製した。Bio-Synthesisで化学合成された長鎖ペプチド抗原(MENペプチド:SNPARYEFLYYYYYYQYIHSANVLYYYYYYRGPESRLL(配列番号1)又はp121ペプチド:NDHIAYFLYQILRGLQYIHSANVLHRDLKPSNLLLNT(配列番号2))を10mg/mLの濃度でジメチルスルホキシド(略称DMSO、ナカライテスク)に溶解した。CHPは10mg/mLの濃度で6M尿素(ナカライテスク)含有リン酸緩衝生理食塩水(PBS)に溶解した。1mL(10mg)の長鎖ペプチド抗原溶液と20mL(200mg)のCHP溶液を混合し、暗所にて4℃で穏やかに撹拌しながら一晩放置した。混合液を透析膜(カット分子量:3,500、サーモサイエンティフィック)に移し、透析外液として容積比100倍以上の0.6M尿素含有PBSに対し4℃で2時間から一晩透析した。更に、透析外液として容積比100倍以上の0.06M尿素含有PBSを用い、4℃で2時間から一晩透析した。再び、透析外液として容積比100倍以上のPBSを用い、4℃で2時間から一晩透析した。透析内液を回収し、孔径0.22μmの濾過滅菌フィルター(PVDF膜製、ミリポア)で濾過後、Nanodrop 2000(サーモサイエンティフィック)を用いて280nmにおけるUV吸収を測定した。長鎖ペプチド抗原の分子吸光係数(1mg/mL=4.181)からその最終濃度を求めた。
雌性BALB/cマウスは6週齢〜12週齢のものを日本SLCから購入した。DUC18マウスはワシントン大学より分譲され、三重大学で繁殖させたものを用いた。マウスは三重大学医学部動物センターにて飼育した。動物実験のプロトコールは、三重大学医学部の倫理委員会の承認を得た。
BALB/cマウスに皮下移植して形成したCMS5a腫瘍を評価系として用いて、ヒトの免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対して有効な治療法を探索した。その結果、図3(A)に示すように、前処置薬として長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲルと免疫増強剤(CpGオリゴDNA)を皮下投与した後に抗原特異的T細胞輸注を行うと、CMS5a腫瘍の増殖が顕著に抑制されることを見出した。この治療効果は、デリバリーシステムとして、IFAを用いた場合には認められなかった。図3(B)に示すように、前処置薬の投与経路は皮下投与に代えて、静脈内投与でも効果的であることが分かった。図3(C)に示すように、前処置薬に含まれる免疫増強剤はCpGオリゴDNAに限らずPoly-IC RNAでも良いことが分かった。
図4(A)に示すように、前処置薬から長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲルを除くと、治療効果は認められなかった。図4(B)に示すように、前処置薬から免疫増強剤(CpGオリゴDNA)を除くと、治療効果は認められなかった。以上の結果より、抗原特異的T細胞輸注の前処置薬には、長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲルと免疫増強剤が必須であることが分かった。図4(C)に示すように、抗原特異的T細胞輸注を省略し、前処置薬のみとしても治療効果は認められなかった。
このように、本発明の前処置薬を抗原特異的T細胞輸注と併用することで、免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍を治療し得ることが明らかとなった。
1.材料と方法
Rhodamine標識CHPナノゲルは、京都大学・秋吉一成博士より分譲されたものを用いた。APC-Cy7標識抗マウスCD45抗体(クローン30-F11)、FITC標識抗マウスCD8抗体(クローン53-6.7)、PE標識抗マウスCD11b抗体(クローンM1/70)、Pacific blue標識抗マウスF4/80抗体(クローンBM8)及びPE-Cy7標識抗マウスCD11c抗体(クローンN418)は、バイオレジェンドより購入した。PerCP-Cy5.5標識抗マウスCD4抗体(クローンRM4-5)はBDバイオサイエンスから購入した。APC標識抗マウスB220抗体(クローンRA3-6B2)はeバイオサイエンスから購入した。ウシ胎児血清(FBS)はバイオウェストから購入した。RPMI1640培地(2-メルカプトエタノール添加)は細胞科学研究所から購入した。赤血球溶血溶液(0.15M NH4Cl/10mM KHCO3/0.1mM EDTA.Na2 pH 7.2)は三重大学で作製した。マウス線維肉腫CMS5a細胞株はメモリアルスローンケタリングがん研究所より分譲され、三重大学で継代したものを用いた。雌性BALB/cマウスは6週齢〜12週齢のものを日本SLCから購入し、三重大学医学部動物センターにて飼育した。動物実験のプロトコールは、三重大学医学部の倫理委員会の承認を得た。
T細胞はCD45陽性かつCD4陽性もしくはCD45陽性かつCD8陽性、B細胞はCD45陽性かつB220陽性、マクロファージはCD45陽性かつCD11b陽性かつCD11c陽性かつF4/80陽性の集団として検出した。各免疫細胞におけるRhodamine陽性細胞をCHPナノゲル取り込み細胞として検出した。
図3(B)に示したように、本発明の前処置薬は、皮下投与又は静脈内投与のいずれにおいても、免疫チェックポイント阻害剤抵抗性のCMS5a腫瘍に対して同様の治療効果を示した。前処置薬の作用機序を解明するため、CMS5a腫瘍を皮下移植したBALB/cマウスに皮下投与又は静脈内投与されたRhodamine標識CHPナノゲルのリンパ節及び腫瘍局所に存在する免疫細胞への取り込みを測定した。図5に示すように、皮下投与されたCHPナノゲルは、投与部位所属リンパ節のマクロファージに良く取り込まれた。一方、静脈内投与されたCHPナノゲルは、腫瘍局所のマクロファージに良く取り込まれた。その他の免疫細胞への取り込みは認められなかった。リンパ節又は腫瘍局所のマクロファージが、CHPナノゲルにより送達された長鎖ペプチド抗原を取り込み、輸注された抗原特異的T細胞へ提示することで、抗原特異的T細胞の活性を増強していると考えられた。CHPナノゲルが静脈内投与された場合には、腫瘍局所のマクロファージに選択的に物質輸送する能力があることが明らかとなった。
1.材料と方法
ウシ胎児血清(FBS)はバイオウェストから購入した。RPMI1640培地(2-メルカプトエタノール添加)は細胞科学研究所から購入した。赤血球溶血溶液(0.15M NH4Cl/10mM KHCO3/0.1mM EDTA.Na2 pH 7.2)は三重大学で作製した。マウス線維肉腫CMS5a細胞株はメモリアルスローンケタリングがん研究所より分譲され、三重大学で継代したものを用いた。雌性BALB/cマウスは6週齢〜12週齢のものを日本SLCから購入した。変異型ERK2特異的TCR遺伝子導入マウス(DUC18マウス)はワシントン大学より分譲され、三重大学で繁殖させたものを用いた。各マウスは、三重大学医学部動物センターにて飼育した。動物実験のプロトコールは、三重大学医学部の倫理委員会の承認を得た。
T75培養フラスコ(コーニング)を用い、マウス線維肉腫CMS5a細胞株を10%FBS含有RPMI1640培地中で培養した。培養した細胞を0.5%トリプシン含有リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を用いて剥離し、10%FBS含有RPMI1640培地に懸濁した。遠心分離(400×g、5分、4℃)した後に上清を除き、RPMI1640培地を用いて2回洗浄した。細胞を1×106個/100μLの濃度でRPMI1640培地に懸濁し、100μL/個体の用量でBALB/cマウスの後背部に皮下移植した(1群当たり5匹)。腫瘍移植7日後に、実施例3と同様にして調製した長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲル(MENペプチドとして60μg、PBSに溶解)とCpGオリゴDNA1668(50μg、PBSに溶解、ジーンデザイン)を混合して尾静脈内投与した。18時間後に、投与マウスの腫瘍、肺、肝臓、脾臓及びリンパ節から抗原提示細胞を次に示す方法で分離した。
腫瘍はミルテニー製の分離キット(Tumor Dissociation Kit(型番130-096-730))を、肺はミルテニー製の分離キット(Lung Dissociation Kit(型番130-095-927))を、肝臓はミルテニー製の分離キット(Liver Dissociation Kit(型番130-105-807)))を、それぞれ用いて、メーカー推奨プロトコルに従って処理した後、遊離した細胞をRPMI1640培地中に懸濁した。
実施例4において、静脈内投与されたCHPナノゲルは腫瘍局所のマクロファージに選択的に取り込まれることが明らかとなった。静脈内投与された長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲルは腫瘍局所のマクロファージに取り込まれた後に、輸注された抗原特異的T細胞に提示され、抗原特異的T細胞の活性を増強していると考えられた。腫瘍局所マクロファージによる抗原提示反応を確認するために、次の実験を行った。変異型ERK2のCD8陽性T細胞認識エピトープを含む長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲル及びCpGオリゴDNAを静脈内投与したCMS5a腫瘍皮下移植BALB/cマウスから、腫瘍並びに種々の組織に局在するCD11b陽性マクロファージを回収した。これを抗原提示細胞として、変異型ERK2特異的TCR遺伝子導入マウス由来CD8陽性T細胞と試験管内で共培養した。投与された長鎖ペプチド抗原に含まれる変異型ERK2由来CD8陽性T細胞認識エピトープをCD11b陽性マクロファージが提示していれば、変異型ERK2特異的TCR遺伝子導入マウス由来CD8陽性T細胞は活性化して増殖する。T細胞の増殖は、フローサイトメトリーを用いたCFSE希釈試験により測定し、抗原提示の指標とした。
図6に示すように、長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲル及びCpGオリゴDNAを静脈内投与すると、腫瘍局所マクロファージによる長鎖ペプチド抗原の提示が確認された。リンパ節由来のマクロファージは、弱いながらも長鎖ペプチド抗原の提示が認められた。その他の組織のマクロファージでは長鎖ペプチド抗原の提示が検出されなかった。これらのマクロファージは、長鎖ペプチド抗原搭載CHPナノゲル及びCpGオリゴDNAを取り込んでいないか、取り込んでいても抗原提示する能力を欠いている可能性があると考えられた。これらの結果から、CHPナノゲルは、静脈内投与された場合には、腫瘍局所のマクロファージに選択的に物質輸送、特に抗原を輸送し、抗原提示させる能力があることが明らかとなった。
本実施形態によれば、免疫チェックポイント阻害剤の標的分子を発現しておらず同阻害剤に抵抗性を示す腫瘍について、治療に有用な医薬品を提供できた。このデリバリーシステムである疎水化多糖ナノゲルと合成長鎖ペプチド抗原又は組換え蛋白質抗原を含む抗原搭載ナノゲル及び免疫増強剤を前処置薬として用いることで、抗原特異的T細胞輸注の抗がん作用を増強する効果を得られた。
Claims (8)
- 免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対するT細胞輸注療法において、抗原に特異的なT細胞の投与する前に投与される医薬組成物であって、前記抗原に由来するCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ及びCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ、又はCD8陽性細胞傷害性T細胞認識エピトープ及びCD4陽性ヘルパーT細胞認識エピトープを含む長鎖ペプチド抗原又は蛋白質抗原を疎水化多糖ナノゲルに搭載した抗原搭載ナノゲルと、免疫増強剤とを含有する医薬組成物であって、
前記疎水化多糖がプルラン及びコレステリル基を含み、前記免疫増強剤が、TLR(Toll様受容体)アゴニスト(CpGオリゴDNA又はPoly-IC RNA)、STINGアゴニスト又はRLR(RIG-I様受容体)アゴニストからなる群から選択される少なくとも一つである医薬組成物。 - 免疫チェックポイント阻害剤抵抗性腫瘍に対するT細胞輸注療法において、請求項1に記載の医薬組成物と、当該医薬組成物を投与した後に投与するための前記抗原に特異的なT細胞とを含む医薬組成物。
- 前記抗原に特異的なT細胞が、前記抗原を認識するT細胞受容体又はキメラ抗原受容体を発現するT細胞である、請求項1または2に記載の組成物。
- 前記長鎖ペプチド抗原が23〜120個のアミノ酸から成る請求項1〜3のいずれか1項記載の組成物。
- 長鎖ペプチド抗原に含まれるT細胞認識エピトープの間に、2〜10個のチロシン、2〜10個のスレオニン、2〜10個のヒスチジン、2〜10個のグルタミン及び2〜10個のアスパラギンから成る群から選択される配列を含む請求項1〜4のいずれか1項記載の組成物。
- 前記抗原が腫瘍特異的抗原蛋白質又は腫瘍間質特異的抗原蛋白質である請求項1〜5のいずれか1項記載の組成物。
- 前記抗原搭載ナノゲルの投与経路が、皮下、皮内、筋肉内、腫瘍内及び静脈内からなる群から選択される少なくとも一つの経路によって投与される請求項1〜6のいずれか1項記載の組成物。
- 前記抗原搭載ナノゲルが、前記抗原に特異的なT細胞を含む医薬組成物の投与の少なくとも1日前に投与される請求項1〜7のいずれか1項記載の組成物。
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