JP6789107B2 - 血液検査キット及び血液分析方法 - Google Patents

血液検査キット及び血液分析方法 Download PDF

Info

Publication number
JP6789107B2
JP6789107B2 JP2016255673A JP2016255673A JP6789107B2 JP 6789107 B2 JP6789107 B2 JP 6789107B2 JP 2016255673 A JP2016255673 A JP 2016255673A JP 2016255673 A JP2016255673 A JP 2016255673A JP 6789107 B2 JP6789107 B2 JP 6789107B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
blood
plasma
concentration
test kit
component
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2016255673A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2018105829A (ja
Inventor
光 浦野
光 浦野
晋哉 杉本
晋哉 杉本
功 米久保
功 米久保
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Leisure Inc
Fujifilm Corp
Original Assignee
Leisure Inc
Fujifilm Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Leisure Inc, Fujifilm Corp filed Critical Leisure Inc
Priority to JP2016255673A priority Critical patent/JP6789107B2/ja
Priority to EP17888174.4A priority patent/EP3564667B1/en
Priority to PCT/JP2017/047204 priority patent/WO2018124275A1/ja
Priority to CN201780080683.8A priority patent/CN110114672B/zh
Publication of JP2018105829A publication Critical patent/JP2018105829A/ja
Priority to US16/454,062 priority patent/US11166659B2/en
Application granted granted Critical
Publication of JP6789107B2 publication Critical patent/JP6789107B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483Physical analysis of biological material
    • G01N33/487Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/49Blood
    • G01N33/491Blood by separating the blood components
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/15Devices for taking samples of blood
    • A61B5/150007Details
    • A61B5/150755Blood sample preparation for further analysis, e.g. by separating blood components or by mixing
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/15Devices for taking samples of blood
    • A61B5/150007Details
    • A61B5/150351Caps, stoppers or lids for sealing or closing a blood collection vessel or container, e.g. a test-tube or syringe barrel
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D39/00Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/14Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
    • B01D39/20Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of inorganic material, e.g. asbestos paper, metallic filtering material of non-woven wires
    • B01D39/2003Glass or glassy material
    • B01D39/2006Glass or glassy material the material being particulate
    • B01D39/2013Glass or glassy material the material being particulate otherwise bonded, e.g. by resins
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/02Devices for withdrawing samples
    • G01N1/10Devices for withdrawing samples in the liquid or fluent state
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/38Diluting, dispersing or mixing samples
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/14Devices for taking samples of blood ; Measuring characteristics of blood in vivo, e.g. gas concentration within the blood, pH-value of blood
    • A61B5/1405Devices for taking blood samples
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/15Devices for taking samples of blood
    • A61B5/150007Details
    • A61B5/150015Source of blood
    • A61B5/150022Source of blood for capillary blood or interstitial fluid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/15Devices for taking samples of blood
    • A61B5/150007Details
    • A61B5/150343Collection vessels for collecting blood samples from the skin surface, e.g. test tubes, cuvettes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2239/00Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D2239/08Special characteristics of binders
    • B01D2239/086Binders between particles or fibres
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06Fluid handling related problems
    • B01L2200/0605Metering of fluids
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/02Identification, exchange or storage of information
    • B01L2300/025Displaying results or values with integrated means
    • B01L2300/028Graduation
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/04Closures and closing means
    • B01L2300/041Connecting closures to device or container
    • B01L2300/042Caps; Plugs

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Ecology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Hydrology & Water Resources (AREA)
  • Geology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)

Description

本発明は、微量の血液検体中の対象成分を分析するための血液検査キット及び血液分析方法に関する。
一般に、採血には、医師等一定の有資格者が注射器を用いて静脈から血液を採取する一般採血と、検査対象者が、自分の手の指等に採血針を刺して血液を採取する自己採血とがある。
一般採血により採取された血液は、採取容器に密閉された状態で医療機関又は検査機関に輸送され、そこで検査が行われている。血液を血球と血漿とに分離せずに輸送する場合には、医療機関又は検査機関にて遠心分離機により血液を血球と血漿とに分離した後に検査が行われる。また、検査対象者が行う自己採血では、採血後の血液は分離膜により血球と血漿とに分離され、この分離された状態で検査場所に輸送され、そこで検査が行われる。
特許文献1には、自己採血により採取された血液検体の検査方法が記載されている。具体的には、1)容量を定量することなしに採取した定量すべき成分を含有する未知容量の生体試料と一定量の指示物質を含有する一定量の水性溶液とからなる定量用試料を調製する工程、2)一定量の指示物質を含有する一定量の水性溶液中の指示物質の濃度(C1)と定量用試料中の指示物質の濃度(C2)とから生体試料の希釈倍率(a)を求める工程、3)定量用試料中の定量すべき成分の濃度(Y)を求める工程、4)上記2)で求めた生体試料希釈倍率(a)と上記3)で求めた定量用試料中の定量すべき物質の濃度(Y)とから生体試料中の定量すべき成分を決定する工程を含む生体試料中の定量すべき成分の定量方法が記載されている。
特許文献2には、検体中の分析対象成分量を測定し、さらにこれ以外の恒常的に検体中に元来存在する標準成分の量を測定し、この標準成分の量と、検体中での標準成分の既知濃度とから検体の量を決定し、この検体量と、分析対象成分量とから、検体中の分析対象成分の濃度を決定する定量分析法が記載されている。
また、特許文献3には、血液希釈定量器具を用いてヒトや動物から微量血液を採取しそのまま又は希釈したのち一定量を他の機器や容器又は直接試薬に供給することが記載されている。さらに特許文献4には、希釈用水溶液中の指示物質の吸光度を利用して、生物学的試料中の定量すべき成分の濃度を定量する方法が記載されている。
現在、市販されている血液検査キットにおいては、特許文献1に記載されているような指示物質、いわゆる内部標準物質を用いる方法が採用されている。
一方、血液中の構成成分、例えば代謝産物、蛋白質、脂質、電解質、酵素、抗原及び抗体などの種類及び濃度の測定は通常全血を遠心分離して得られる血漿又は血清を検体として行われている。しかしながら、遠心分離は手間と時間がかかるため、遠心分離を行うためには専用の装置が必要となり、少なくとも10分以上かかるため、遠心分離にかわって、濾過により全血から血漿を分離する方法が検討されてきた。この濾過方法には、ガラス繊維濾紙をカラムに充填し、カラムの一方から全血を注入し、加圧や減圧を行って他方から血漿を得るいくつかの方法が特許文献5及び特許文献6に記載されている。また、ガラス繊維による血液濾過が、特許文献7及び特許文献8に記載されている。
特開2003−161729号公報 特開2001−330603号公報 特開2009−122082号広報 特開2009−109196号広報 特開平2−208565号公報 特開平4−208856号広報 特開昭57−53661号広報 特開2000−254461号広報
特許文献1に記載の方法においては、血液検体が微量である場合には、血液検体量に対する希釈液の割合を高くすることが必要になる。しかし、この場合、血液検体を希釈する前後での希釈液の体積変化率が非常に小さくなるため、内部標準物質の濃度の変化率が小さくなり、測定値の繰り返し再現性が低下するという問題がある。
特許文献2には、健常者全血約100μLを多孔質膜に滴下し、血球を分離して血清を展開した後に、150μLの生食等張PBS(Phosphate−buffered saline: pH7.4)を添加して得た液を遠心分離して得られた上清を分析試料として分析しているが、100μL未満の採血については記載されていない。
特許文献3の方法では、10μLの血液量をマイクロピペットで正確に採取して分析しているが、採血に不慣れな患者が採取する場合には一定量を正確に採取することは難しく、誤差を含む採血で検査をした場合には測定値に誤差が含まれる結果となる。
特許文献4に記載の測定方法は希釈倍率が10倍程度の測定であり、希釈倍率をさらに高めて希釈血液量を十分に確保する場合には、特許文献1と同様に、測定値の繰り返し再現性が低下するという問題がある。
上述の通り、微量の血液検体を使用する場合について測定値の繰り返し再現性が高い血液分析方法が望まれている。本発明者らは、分析を精度高く行う為には、従来から提案されている内部標準物質を用いることでは充分ではないと考え、外部標準物質を用いる方法を検討した。
また、血液濾過を行うために、特許文献5〜7に記載のガラス繊維を使用することは、血液濾過時の圧力上昇が低く抑えられ、血球を破壊することなく分離可能であり簡易的に分離が可能な方法であるが、ガラス繊維に含まれるナトリウム及び塩化物等の成分が希釈液に溶出し、測定に影響を与えるという幣害がある。特許文献8には、この課題を解決するために、ガラス繊維表面に炭素薄膜被膜を真空下での蒸着により行い、ナトリウムの溶出量を抑えているが、真空蒸着によるガラス繊維の製造には、コスト及び時間がかかるという問題があった。
本発明は、微量血液を緩衝液で希釈して成分を定量分析する方法として、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析する方法において、血液検査キットの部材から溶出する標準成分濃度を実質的に影響のないレベルに抑えることを可能とし、例えば、特許文献1及び特許文献2の従来技術にはない精度で、正確に希釈倍率を求めて成分の定量分析をする血液検査キット及び血液分析方法を提供することを目的とする。本発明は、さらに内部標準を用いて希釈倍率を求める方法を併用することで、さらに精度を高めることが可能な血液検査キット及び血液分析方法を提供することを目的とする。
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、血液検体を希釈するための希釈液と、 希釈液が収納された第一の収容器具と、希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための分離器具と、分離器具を保持するための保持器具と、回収した血漿を収容するための第二の収容器具と、収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具とを含む血液検査キットにおいて、樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されている分離器具を使用することによって、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明によれば以下の発明が提供される。
(1) 血液検体を希釈するための希釈液と、
上記希釈液が収納された第一の収容器具と、
上記希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための分離器具と、
上記分離器具を保持するための保持器具と、
回収した血漿を収容するための第二の収容器具と、
収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具と、
を含む、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析するための、血液検査キットであって、
上記分離器具が、樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されている、血液検査キット。
(2) 上記樹脂が、アクリル系樹脂、ウレタン系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂及びエポキシ系樹脂からなる群から選択される樹脂である、(1)に記載の血液検査キット。
(3) 上記樹脂のコーティング量が、ガラス繊維の質量に対して1〜10質量%である、(1)又は(2)に記載の血液検査キット。
(4) 上記希釈液の容量が、血漿の容量の4倍以上である、(1)から(3)のいずれか一に記載の血液検査キット。
(5) 血液中に恒常的に存在する上記標準成分が、ナトリウムイオン又は塩化物イオンである、(1)から(4)のいずれか一に記載の血液検査キット。
(6) 血液中に恒常的に存在する上記標準成分が、ナトリウムイオン又は塩化物イオンと、さらに、別の血液中に恒常的に存在する標準成分である、(1)から(5)のいずれか一に記載の血液検査キット。
(7) 上記別の標準成分が、総タンパク又はアルブミンである、(6)に記載の血液検査キット。
(8) (1)から(7)の何れか一に記載の血液検査キットを用いて、採取された血液検体を希釈液で希釈する工程と、
血液中に恒常的に存在する標準成分の標準値を用いて希釈倍率を決定する工程と、
血液検体中の対象成分の濃度を分析する工程と、
を含む、血液分析方法。
本発明の血液検査キット及び血液分析方法によれば、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度の分析を精度よく行うことができる。
図1は、本発明の実施の態様に係る血液検査キットの断面図である。 図2は、希釈液へのナトリウムイオンの許容溶出濃度(希釈液に溶出する許容溶出濃度)を算出した結果を示す。 図3は、樹脂でコーティングされていないガラス繊維の走査型電子顕微鏡(SEM)写真である。 図4は、樹脂でコーティングされたガラス繊維のSEM写真である。
以下、本発明の実施の形態を説明する。なお、X〜Yで示される範囲は、上限Xと下限Yの値を含む。血液中に恒常的に存在する標準成分のことを、外部標準物質又は外部標準ということがある。また、血液中に存在しない標準成分のことを、内部標準物質又は内部標準ということがある。
微量の血液を採取する方法として濾紙を用い血液分析を行う方法が特開平10−104226号公報に開示されている。また濾紙の代わりに血液保持性の高い多孔質材を用いる方法が特許文献2に開示されている。これらの方法では、素材に吸収された血液成分を緩衝液などで抽出して測定することになるため、血液に恒常的に存在する外部標準物質であるナトリウムイオン、塩化物イオン、カルシウムイオン、蛋白などを、血液を溶出して再溶解した場合の緩衝液による希釈率を見積もる基準物質として用いる。しかしながらこれらの方法では、血液の採取量はさまざまで、採取した血液の希釈率が高くなってしまうとその後の分析精度が下がり、結果がばらつき、一旦血液を凝集させて固化するために分析対象となる成分の安定性の保証が不十分であることがあった。また、乾燥した試料から生体成分を抽出する緩衝液は、pH調整や生体成分安定化のためにNaOHやNaCl、HClを添加した緩衝液を利用する必要がある。このため、試料の成分で比較的高い濃度で存在し、恒常性があり、個体間差が少ないナトリウムイオンや塩化物イオンの濃度を外部標準として、希釈された元の他の生体成分濃度の補正をすることに利用できないという問題があった。
一方、採取した微量血液を内部標準入り緩衝液で希釈し、内部標準物質の希釈倍数から希釈血漿中の未知量の存在する成分量を定量する方法として特許文献1に記載の方法が開示されている。内部標準物質としてはN−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン・ナトリウム塩(HSDA)、あるいはアシッドブルー9(ブリリアントブルーFCF)が利用されており、血液を安定に保持するための緩衝剤や防腐剤が用いられている。このような処方は、血液を凝固させないことでその成分の安定性を維持することを実現したが、やはり血液採取量がばらつき、採取量が少ない場合には、希釈後の内部標準物質の希釈率が小さくなることや、血液成分量そのものが低下する為に、検査精度の信頼性が低下することが問題であった。また、緩衝液で希釈する方法は生体成分がpH7.4の生理的条件の緩衝液で保存され、輸送中の安定性にも優れているが、内部標準添加緩衝液への試料による内部標準の希釈率が小さく、少ない試料添加では測定誤差が生じ易い問題があった。
さらにこれら先行技術の実施例では、抽出する緩衝液にはリン酸緩衝生理食塩水が生体成分の安定保持に優れているので利用されているが、リン酸緩衝生理食塩水にはナトリウムイオンや塩化物イオンが含まれている。そのためナトリウムイオンや塩化物イオンは外部標準として利用できず、カルシウムイオン、蛋白等が利用されている。従って、微量血液での血液検査を精度高く行う為には、従来技術にあるように希釈率を補正する外部標準物質の使用や、従来提案されている内部標準物質を含有する緩衝液の使用では検査精度の確保が充分でなかった。
また、血液中の恒常性物質とはいえ、例えば、ナトリウムイオンにおいては、正常値134〜146mmol/Lの分布の幅を有するため、より正確な希釈倍率を算出することが必要となる。希釈倍率の精度が低下すると検査精度に悪影響を与えて、検査の信頼性を損なってしまうリスクが高まってしまう。特に、キットを構成する部材から緩衝液中に溶出する外部標準物質による汚染(いわゆるコンタミ)が多少なりともあった場合に、血液採取量が多かったり少なかったりすると、コンタミの希釈倍率算出に与える影響度が異なってしまう。特許文献2には、このようなキットを構成する部材から緩衝液中に溶出する外部標準物質のコンタミの希釈倍率算出に与える影響度を一定にすることに関しては、一切言及していない。
また、特許文献1には、内部標準に関する記載はあるが、外部標準と併用することに関する記載はない。従って、外部標準のコンタミに関する記載はなく、コンタミを防止するための具体的な手段は一切提案されていない。
本発明は、微量血液検体を緩衝液で希釈して対象成分の濃度を分析するためのキットにであって、血液中に恒常的に存在する外部標準を用いて対照成分の分析を行うに際して、従来技術にはない精度で希釈倍率を求めることができる、血液検査キットを提供することを目的とする。そのための解決手段として、血液検査キットの部材から溶出する標準成分濃度を実質的に影響のないレベルに抑えたものであり、具体的には、分離器具が、樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されているものである。また、好ましい態様においては、外部標準を用いるのみならず、内部標準を用いることとしている。
本発明により、血液中の分析対象成分を測定する測定方法において、患者自らが血液を希釈後に血漿分離するときに、血漿分離部材として樹脂でコーティングされたガラス繊維を用いることで、キットを構成する部材から溶出する恒常性のある標準成分を極力抑えることができる。これにより、血液に由来する恒常性のある標準成分を十分に精度高く検出することで、分析対象成分の定量を精度よく行うことができる、血液検査キット及び血液分析方法を実現することが可能となる。また、さらに内部標準を用いて希釈倍率を求める方法を併用することで、さらに精度を高めることが可能な血液検査キット及び血液分析方法を提供する。
[1]血液検査キット及び血液分析方法
本発明の血液検査キットは、
血液検体を希釈するための希釈液と、
上記希釈液が収納された第一の収容器具と、
上記希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための分離器具と、
上記分離器具を保持するための保持器具と、
回収した血漿を収容するための第二の収容器具と、
収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具と、
を含む、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析するための、血液検査キットであって、
上記分離器具が、樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されている血液検査キットである。
血液検体中の対象成分の濃度を分析するとは、対象成分の濃度を決定すること(即ち、対象成分を定量すること)、又は対象成分の濃度が所定の基準値以上であるか所定の基準値以下であるかを決定することなどを包含し、分析の形態は特に限定されない。
〔採血方法と量〕
本発明の血液検査キットは、血液検体を採取するために使用される。本発明の血液検査キットによる血液の採取は、対象者自身が行ってもよく、医師等の有資格者が行ってもよい。
好ましい態様では、患者本人が、ランセットなどのナイフ付の器具を用いて指先などを傷つけて皮膚外にでた血液を採取する。患者の負担を減らすために、侵襲性低く血液を採取することが好ましく、血液を採取するときに無痛、あるいは、痛みが非常に少ない状態で採血できることがより好ましく、その場合、傷の深さ、大きさは小さいことが望ましく、採取できる血液も非常に少なくなる。従って、本発明の血液検査キットで採取される検体の容量(すなわち、採血量)は100μL以下であることが好ましい。このように少ない患者の採血量でも、本発明では、血液検査キットの部材から、希釈液中に溶出しうる血液に恒常的に存在する標準成分濃度を実質的に影響のないレベルに抑え、また、血液に恒常的に存在する標準成分として、例えば、ナトリウムイオン、又は塩化物イオンを用いることで、測定精度よく分析対象物を測定するための方法を提供することが可能となる。
〔血液に恒常的に存在する標準成分〕
上記のように、血漿成分の希釈倍率の高い希釈血漿の希釈後の対象成分について、希釈前の血液の血漿中に存在する濃度を正確に分析するためには、希釈液中にあらかじめ存在する物質の濃度の変化率から求める方法では、濃度の変化の割合が非常に小さくなるために測定誤差が大きく、また、測定の再現性が悪化する弊害がある。従って本発明の血液検査キットは、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析するための、血液検査キットである。
ここで、標準成分を「用いて」とは、標準成分についての標準値(恒常値)に基づき、対象成分の濃度を分析するための希釈倍率を決定する意である。したがって、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析することは、血液中に恒常的に存在する標準成分の恒常値(標準値)に基づき希釈倍率を決定し、対象成分の濃度を分析することでもある。
血液中に恒常的に存在する標準成分は、例えば、ナトリウムイオン、塩化物イオン、カリウムイオン、マグネシウムイオン、カルシウムイオン、総タンパク、及びアルブミン等が挙げられる。血液検体の血清及び血漿中に含まれるこれらの標準成分の濃度は、ナトリウムイオン濃度は、134〜146mmol/L(平均値:142mmol/L)、塩化物イオン濃度は、97〜107mmol/L(平均値:102mmol/L)、カリウムイオン濃度は、3.2〜4.8mmol/L(平均値:4.0mmol/L)、マグネシウムイオン濃度は、0.75〜1.0mmol/L(平均値:0.9mmol/L)、カルシウムイオン濃度は、4.2〜5.1mmol/L(平均値:4.65mmol/L)、総タンパク濃度は、6.7〜8.3g/100mL(平均値:7.5g/100mL)、アルブミン濃度は、4.1〜5.1g/100mL(平均値:4.6g/100mL)である。本発明では、患者の痛みを和らげるために採血する血液量が非常に少ない場合における対象成分の測定を可能にするためのものであり、微量の血液を希釈液で希釈した際に、希釈液中に存在する「血液中に恒常的に存在する標準成分」の濃度を精度よく測定する必要がある。希釈倍率が高くなると、もともと血液中に存在する成分の希釈液中の濃度が低下し、希釈倍率によっては濃度測定時に、測定誤差を含む可能性がある。従って、微量な血液成分を希釈倍率高く希釈したときに、上記標準成分を十分に精度高く検出するためには、微量な血液中に高い濃度で存在する標準成分を測定することが好ましい。本発明では、血液検体中に恒常的に存在する成分の中でも高濃度に存在する、ナトリウムイオン(Na+)又は塩化物イオン(Cl-)を用いることが好ましい。更には、上述の血液中に恒常的に存在する標準成分の中でも血液中に存在する量が一番高いナトリウムイオンを測定することが最も好ましい。ナトリウムイオンは、平均値が標準値(基準範囲の中央値)を表し、その値は、142mmol/Lであり、血漿中の総陽イオンの90モル%以上を占める。本発明においては、血液中に恒常的に存在する標準成分が、ナトリウムイオン又は塩化物イオンと、さらに、別の血液中に恒常的に存在する標準成分であることも好ましい。この場合、別の標準成分は、総タンパク又はアルブミンであることが好ましい。
被検者の血液中における血漿成分の占有率は、容積の比率で約55%であるが、被検者の塩分摂取量の変化などで変動する。そのため、本発明の血液検査キットを用いる場合は、血漿中に恒常的に存在する標準成分の標準値を用いて血漿の希釈倍率を決定し、決定された希釈倍率を用いて血液検体の血漿中の対象成分の濃度を分析する。希釈倍率を決定する方法としては、血漿の希釈液中の外部標準物質(例えば、ナトリウムイオンなど)の測定値(濃度X)と、血液検体の血漿中に含まれる上記外部標準物質(例えば、ナトリウムイオンなど)の既知濃度値(濃度Y;ナトリウムイオンの場合には142mmol/L)とから、血液検体中の血漿成分の希釈倍率(Y/X)を算出することにより希釈倍率を求めることができる。この希釈倍率を用いて、血漿の希釈液中の対象成分の測定値(濃度Z)を測定し、この測定値に希釈倍率を掛け合わせることにより、実際に血液検体の血漿中に含まれる分析対象成分の濃度[Z×(Y/X)]を測定することが可能となる。
ナトリウムイオン濃度及び塩化物イオン濃度は、例えば、炎光光度法、ガラス電極法、滴定法、イオン選択電極法、酵素活性法等により測定することができる。
ナトリウムイオンの測定ではナトリウムイオンにより酵素ガラクトシダーゼは酵素活性が活性化することから、緩衝液で希釈された非常に低濃度のナトリウムイオン(24mmol/L以下)試料を数μLで測定する酵素的測定法を用いることができる。この方法は生化学・免疫自動分析装置に適応でき、ナトリウムイオン測定のために別の測定機器を必要としない点で効率性が高く経済的である。
また、部材に由来する標準成分の量を規定した血液検査キットが実際に使用されているか、また、血液の希釈と血漿の回収の方法が正常に行われているか確証するためには、血漿中の別の標準成分から独立に希釈倍率を追加的に求めて、その値が上で求めた希釈倍率と一致することを確認することが好ましい。一致するとは、2つの測定値(a,b)において、それらの差のそれらの平均値に対する割合、すなわち(a−b)/{(a+b)/2}×100が、20%以下であることであり、好ましくは10%以下であることであり、より好ましくは5%以下であることである。これにより、血液検体中の対象成分の濃度の分析が正常に行われていることの検証が可能となる。ここで、ナトリウムイオン又は塩化物イオン以外の血漿中に恒常的に存在する標準成分の例としては、総タンパク又はアルブミンから選択されることが好ましく、総タンパクであることがより好ましい。総タンパクの測定法は、ビューレット法や、紫外吸収法、ブレッドフォード法、ローリー法、ビシンコニン酸(Bicinchoninic Acid:BCA)法、蛍光法など公知の方法があり、測定試料の特性や感度、試料量などに応じて適宜使用する方法を選択することができる。
〔血液中に存在しない標準成分〕
好ましい態様の一つとして、本発明の血液検査キットを用いて、血液中に恒常的に存在する標準成分とともに、血液中に存在しない標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析することができる。
血液中に存在しない標準成分は、キット中の希釈液(後述する。)に、所定の濃度になるように添加して用いることができる。血液中に存在しない標準成分としては、血液検体中に全く含まれないか、若しくは含まれていたとしても極微量である物質を使用することができる。血液中に存在しない標準成分としては、血液検体中の対象成分の測定に干渉を与えない物質、血液検体中の生体酵素の作用を受けて分解しない物質、希釈中で安定な物質、血球膜を透過せず血球中に含まれない物質、緩衝液の保存容器に吸着しない物質、精度良く測定できる検出系が利用できる物質を用いることが好ましい。
血液中に存在しない標準成分としては、希釈液に添加した状態で長期間保管しても安定な物質が好ましい。血液中に存在しない標準成分の例としては、グリセロール三リン酸、アルカリ金属としてLi、Rb、Cs、又はFr、そしてアルカリ土類金属としてはSr、Ba、又はRaが挙げられ、これらの中で、Li及びグリセロール三リン酸が好ましい。
これらの血液中に存在しない標準成分は、血液希釈後の濃度測定時に第二の試薬を添加することで発色させ、その発色濃度から希釈血液中の濃度を求めることができる。例えば、希釈液に添加したリチウムイオンの測定は、キレート比色法(ハロゲン化ポルフィリンキレート法:パーフルオロ−5,10,15,20−テトラフェニル−21H,23H−ポルフィリン)を利用して生化学自動分析装置で大量試料を微量の試料で容易に測定できる。
血液中に恒常的に存在する標準成分とともに、血液中に存在しない標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析するための血液検査キットを用いること、すなわち2つの標準成分を併用することで、より信頼性の高い分析が実現可能となる。
2つの標準成分を併用する態様において、血液中に恒常的に存在する標準成分としてナトリウムイオンを、血液中に存在しない標準成分としてリチウムイオンを用い、ナトリウムイオンの測定をβ−ガラクトシダーゼ活性が比例関係にあることを利用した酵素活性法で行い、リチウムイオンの測定を上述のキレート比色法で測定する場合には、血液検体の希釈倍率は、下記式1から4のいずれかの式で算出することができる。
上記式において、A、B、C、D、B’及びXは、以下のように定義される。
A : 緩衝液を発色させた際の吸光度
B : 血漿添加後の吸光度変化量
C : 血漿ナトリウム中央値142 mmol/Lの吸光度
D : 血漿希釈後のナトリウムイオン濃度における吸光度
B’: 血漿ナトリウムの吸光度から算出した希釈倍率による、希釈血漿中の血液中に存在しない標準成分の吸光度の補正値
X : 血漿希釈倍数
希釈率を求める際のもう一つの算出方法として、二乗平均法を用いた式5で算出し、希釈液中の分析対象成分の濃度に、式5で算出した希釈率を乗じて血液検体の成分中の対象成分の濃度を分析する態様も好ましい。
血液検体の成分中の対象成分の濃度は、希釈液中の対象成分の濃度から、上記希釈倍率に基づいて算出できる。
〔希釈液〕
本発明の血液検査キットは、採取した血液検体を希釈するための希釈液を含む。血液検体を希釈するための希釈液は、希釈倍率を求めるために使用する血液中に恒常的に存在する標準成分を含有しない希釈液であることが好ましい。本明細書において「含有しない」とは、「実質的に含有しない」ことを意味する。ここで、「実質的に含有しない」とは、希釈倍率を求める時に使用する恒常性のある物質をまったく含まないか、あるいは含まれていたとしても、血液検体を希釈した後の希釈液の恒常性のある物質の測定に影響を及ぼさない程度の極微量の濃度で含まれる場合を意味する。血液中に恒常的に存在する標準成分として、ナトリウムイオン又は塩化物イオンを用いる場合には、希釈液としては、ナトリウムイオン又は塩化物イオンを実質的に含有しない希釈液を使用する。
本発明においては、患者又は被検者が採血した血液検体を希釈した後、医療機関又は検査機関に輸送して対象成分の濃度を分析することができる。採血から分析までには長時間かかる可能性があることから、その間に、血液の希釈液中において対象成分が分解や変性することを防止することが好ましい。血液のpHは、健常者では通常pH7.30〜7.40程度で一定に保たれている。従って、対象成分が分解や変性するのを防止するために、希釈液は、pH6.5〜pH8.0、好ましくはpH7.0〜pH7.5、更に好ましくはpH7.3〜pH7.4のpH域で緩衝作用を有する緩衝液であることが好ましく、希釈液は、pHの変動を抑える緩衝成分を含有する緩衝液であることが好ましい。
緩衝液の種類としては、酢酸緩衝液(Na)、リン酸緩衝液(Na)、クエン酸緩衝液(Na)、ホウ酸緩衝液(Na)、酒石酸緩衝液(Na)、Tris(トリス(ヒドロキシメチル)アミノエタン)緩衝液(Cl)、HEPES([2−[4−(2−ヒドロキシエチル)−1−ピペラジニル]エタンスルホン酸])緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水(Na)等が知られている。これらの中でpH7.0〜pH8.0付近の緩衝液としては、リン酸緩衝液、Tris緩衝液、HEPES緩衝液が代表的なものである。しかしながら、リン酸緩衝液はリン酸のナトリウム塩が含まれていること、Tris緩衝液は、解離pKaが8.08であるため、pH7.0〜pH8.0付近で緩衝能を持たせるためには通常は塩酸と組み合わせて使用されること、HEPESのスルホン酸の解離のpKaは7.55であるが、イオン強度一定での緩衝溶液を調製するため、通常は水酸化ナトリウムと塩化ナトリウムとHEPESの混合物が用いられることから、これらはpHを一定に保つ作用を有する緩衝液としては有用であるが、本発明において外部標準物質として用いることが好ましい物質であるナトリウムイオンあるいは塩化物イオンを含有するため、本発明への適用は好ましくない。
本発明のキットに含まれる希釈液としては、ナトリウムイオン又は塩化物イオンを含有しない緩衝液を用いることが好ましい。本発明で用いる希釈液は好ましくは、2−アミノ−2−メチル−1−プロパノール(AMP)、2−エチルアミノエタノール、N−メチル−D−グルカミン、ジエタノールアミン、及びトリエタノールアミンからなる群から選択される少なくとも1種のアミノアルコール化合物、並びにGood’s緩衝液(グッドバッファー)でpKaが7.4付近の緩衝剤であるHEPESとも称する2−[4−(2−ヒドロキシエチル−1−ピペラジニル]エタンスルホン酸)(pKa=7.55)、TESとも称するN−トリス(ヒドロキシメチル)メチル−2−アミノエタンスルホン酸(pKa=7.50)、MOPSとも称する3−モルホリノプロパンスルホン酸(pKa=7.20)、及びBESとも称する(N,N−ビス(2−ヒドロキシエチル)−2−アミノエタンスルホン酸(pKa=7.15)からなる群から選択される緩衝剤を含む希釈液である。上記の中でも、2−アミノー2−メチル−1−プロパノール(AMP)とHEPES、TES、MOPS又はBESとの組み合わせが好ましく、さらに、2−アミノー2−メチル−1−プロパノール(AMP)とHEPESとの組み合わせが最も好ましい。
上記緩衝液を調製するためには、アミノアルコールとGood’s緩衝液を1:2〜2:1、好ましくは1:1.5〜1.5:1、更に好ましくは1:1の濃度比で混合すればよい。緩衝液の濃度は限定されないが、アミノアルコール又はGood’s緩衝液の濃度は、0.1〜1000mmol/L、好ましくは、1〜500mmol/L、さらに好ましくは10〜100mmol/Lである。
緩衝液中には、分析対象成分を安定に保つことを目的にキレート剤、界面活性剤、抗菌剤、防腐剤、補酵素、糖類等が含有されていてもよい。キレート剤としては、エチレンジアミン四酢酸塩(EDTA)、クエン酸塩、シュウ酸塩等が挙げられる。界面活性剤としては、例えば、陽イオン界面活性剤、陰イオン界面活性剤、両性界面活性剤又は非イオン界面活性剤が挙げられる。防腐剤としては、たとえば、アジ化ナトリウムや抗性物質等が挙げられる。補酵素としては、ピリドキサールリン酸、マグネシウム、亜鉛等が挙げられる。赤血球安定化剤の糖類としては、マンニトール、デキストロース、オリゴ糖等が挙げられる。特に、抗生物質の添加により、手指採血時に手指表面から一部混入する細菌の増殖を抑えることができ、生体成分の細菌による分解の安定化を図ることができる。
これらの緩衝液は血液に恒常的に存在する標準成分や内部標準物質を含まず、測定系に干渉を与えないことが重要である。また、これらの緩衝液で希釈された成分は生化学・免疫自動分析装置での種々の測定法でも測定に干渉しないこと、さらに血球が溶血をしないことや生体成分が37℃でも安定に保存できることが好ましい。
血液検体に全血を使用する場合には、希釈した血液中の血球成分をフィルターなどにより分離する必要から、緩衝液の浸透圧を血液と同等(285mOsm/kg(mOsm/kgは、溶液の水1kgが持つ浸透圧で、イオンのミリモル数をあらわす))又はそれ以上とすることにより血球の溶血を防止することができる。浸透圧は、対象成分の測定、及び血液中に恒常的に存在する標準成分の測定に影響しない塩類、糖類又は緩衝剤等により、等張に調整することができる。
緩衝液で希釈された血漿ナトリウムイオンを血液に恒常的に存在する標準成分として測定する方法には炎光光度計、原子吸光法、そしてイオン選択電極法がある。本発明では微量な血液を手指から採取して緩衝液で希釈した試料は僅か150μL程度であり、生化学成分や免疫検査項目を10項目以上測定することから血液に恒常的に存在する標準成分の測定は数μLの微量で測定できることが好ましい。また、多数の試料を分析する必要から、市販の生化学・免疫自動分析装置に適応できることが好ましい。
〔希釈液の量、希釈倍率〕
血液検査として、肝機能、腎機能、メタボリズムなど、特定の臓器、特定の疾患を検査する場合には、臓器や疾患に特有の複数の測定対象成分の情報を入手して、臓器の状態、生活習慣の予測などを行うために、一般的には、複数の測定対象成分の分析が同時に行われる。例えば、肝臓の状態を検査するためには、一般的には、ALT(アラニントランスアミナーゼ)、AST(アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ)、γ―GTP(γグルタミルトランスペプチダーゼ)、ALP(アルカリホスファターゼ)、総ビリルビン、総タンパク、アルブミン等、数種類以上もの物質の血液中の濃度が測定される。このように、複数の対象成分を一つの血液検体から測定するためには、再測定の可能性も考慮して、希釈された血液の量はある程度必要となる。従って、採取した血液を希釈する希釈液は、ある程度の量を確保することが重要である。キットにおける希釈液の量は、血漿の容量の4倍以上(すなわち希釈倍率は、血漿の容量の5倍以上)であることが好ましく、10倍以上がより好ましく、14倍以上が更に好ましい。例えば、採血量を50μLとすると、血液量中の血漿量の比が0.55の場合、血漿の容量は27.5μLと計算でき、希釈液が360μLであれば、希釈倍率は14倍となる。なお、血漿を基準とした場合の希釈倍率から、計算で求めた血漿量をR、希釈液量をSとすると、(R+0.55×S)/Rを求めることにより、血液検体を基準とした希釈倍率が概算できる。血液分析に使用する希釈液の量は、血液検体の容量に対しては2.7倍以上であることが好ましく、6.0倍以上であることがより好ましく、8.2倍以上が更に好ましい。
〔血液検体の希釈物から血漿を分離回収するための分離器具〕
本発明の血液検査キットにより採取された血液検体は、分析が行われるまで、希釈された状態で長時間経過する可能性がある。その間に、例えば赤血球の溶血が起こると、血球内に存在する物質や酵素などが血漿あるいは血清中に溶出して検査結果に影響を与えたり、溶出したヘモグロビンが有する吸収により、分析対象成分の光学的な吸収などの光情報で分析対象成分量を測定する場合に影響を及ぼす可能性がある。従って、溶血を防止することが好ましい。そのため、血液検体の希釈物から血漿を分離回収するための分離器具を血液検査キットに含む態様が好ましい。分離器具の好ましい例は、分離膜である。分離膜は、例えば血液検体の希釈液に圧力を加えることによって、血球成分は分離膜で捕獲し、血漿成分を通過させて、血球を分離して血漿成分を回収するように用いることができる。分離膜の中ではガラス繊維が好ましく、本発明では、ガラス繊維を用いる。血液を分離する前後では、抗凝固剤を用いることが好ましい。また、測定の精度を確保するために、分離膜を通過した血漿が血球側へ逆流しないことが好ましく、そのためには具体的には、特開2003−270239号公報に記載の、逆流防止手段をキットの構成要素とすることができる。
〔樹脂コーティングされたガラス繊維〕
本発明の血液検査キットにおいては、希釈した血漿中に含まれうる血液検査キットの部材に由来する血液中に恒常的に存在する標準成分の量を実質的に影響のないレベルに抑える必要がある。代表的な血液中に恒常的に存在する標準成分はナトリウムイオンであるが、分離器具の部材であるガラス繊維は成分としてナトリウムイオンを含有しており、低濃度域でナトリウムイオン濃度を検出したい場合には、ナトリウムイオンが溶出して影響が生じる。一般的にはガラス繊維を純水により洗浄することで溶出するナトリウムイオン濃度を一時的に低下させることは可能であるが、加温経時により溶出するナトリウムイオン濃度は再び増加する場合がある。ここで、ナトリウムイオンを含有しない樹脂によりガラス繊維表面をコーティングすることで、ガラス繊維からのナトリウムイオン溶出を抑止することが可能となる。また、ナトリウムイオン以外にも血液中に恒常的に存在する標準成分となる塩化物イオン等を含まない樹脂をガラス繊維表面にコーティングして使用することも可能である。樹脂でコーティングされていないガラス繊維の一例のSEM写真を図3に示し、樹脂でコーティングされたガラス繊維の一例のSEM写真を図4に示す。図3及び図4の対比から、ガラス繊維を構成する各繊維の表面上に樹脂がコーティングされていることが分かる。
好ましい樹脂の種類としては、アクリル系樹脂、ウレタン系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂、エポキシ系樹脂等が挙げられるが、特に限定されない。ガラス繊維に対する樹脂の付着量としては、分離機能に影響を与えない量であれば、特に限定されないが、好ましくは1〜10重量%である。1質量%以上であれば、ガラス繊維の表面を十分に覆い尽くすこと可能になり好ましい。10質量%以下であれば、ガラス繊維の間に樹脂が溜まることなく、空隙率の低下も起こらずに本来の血球を分離する機能に影響することなく樹脂コーティングが可能となる。樹脂コーティングされたガラス繊維は、ガラス繊維を樹脂溶液又はエマルジョン液中に浸漬処理し、その後乾燥させることにより製造される。この方法によれば、コストが低く、製造も大量に処理することが可能であり、しかも、真空蒸着による製膜に必要となる高価な製造装置も使用せずにコーティングが可能であり、簡便なすぐれた製造方法である。
この部材に由来する標準成分の量は、血液検体の希釈率の測定に大きな影響を与えずに、対象成分の濃度の分析が精度よく行える量である必要がある。血液検査キットの部材に由来する希釈液中のナトリウムイオン量(血液由来でないナトリウムイオン量、即ち、コンタミ成分)が、血漿中のナトリウムイオン量の3%程度かそれ以下に抑えることで、希釈倍率の算出を3%程度の誤差精度を維持可能となる。例えば、希釈液の量を360μLとし、血液採血量を60μL、血漿成分の占める割合を55%とした場合、希釈液に含まれうるキットの部材に由来するナトリウム成分の量が、希釈液に対し、0.30mmol/L以下であるとすると、血漿由来のナトリウムイオンに対して、2.3質量%程度にとどまるため、検査精度を2%強程度の誤差精度の範囲内に維持できることがわかる。希釈液に含まれうるキットの部材に由来するナトリウム成分の量は、少ないことが好ましく、0.20mmol/L以下が好ましく、0.15mmol/L以下がより好ましく、0.10mmol/L以下が更に好ましい。
上記の計算のように、部材に由来する標準成分の量が血漿中のナトリウムイオン量の2%以下であれば、希釈倍率の算出が許容される精度に維持できるので、例えば、希釈液を360μLとし、希釈倍率が3〜25倍の範囲において、希釈液へのナトリウムイオンの許容溶出濃度(希釈液に溶出する許容溶出濃度)を算出した。結果を図2に示す。血漿成分に対する希釈液での希釈倍率が5倍においては、希釈液中の部材に由来するナトリウムイオンの許容濃度は0.70mmol/L程度、即ち希釈液360μLに対してナトリウムイオンの許容溶出量は5.8μg程度であり、また、希釈倍率20倍においては、希釈液へのナトリウムイオンの許容溶出濃度は0.16mmol/L程度、即ち、希釈液360μLに対して、1.3μg程度となり、希釈倍率が高くなるにつれて、急激に希釈液に溶出するナトリウムイオンの許容溶出量が厳しくなり、より少ない希釈液の溶出量がコンタミとして、希釈倍率の精度を低下させてしまうことが判る。
血液検査キットにおいては、通常、血液を採取する吸引器にはファイバーロットが使用されており、このファイバーロットには抗凝固剤としてEDTAのナトリウム塩が使用されている。また、血漿を分離回収するための器具としてガラス繊維が使用されており、これにはソーダガラス、炭酸ナトリウム等の微量のナトリウムイオンが含まれている。ソーダガラスは、ケイ砂(SiO2)、炭酸ナトリウム(Na2CO3)、炭酸カルシウム(CaCO3)を混合して融解することにより得られる。ガラス繊維を保持するためのガスケットの素材、及び収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具がゴム製であれば、除タンパクのためのNaOH洗浄、及び成形の際に使用される離型剤(硝酸ナトリウム、亜硝酸ナトリウム等の混合物)等の残渣分として微量のナトリウムイオンが含まれる場合がある。プラスチック(樹脂)成形品である部材は、表面に微量Naが含まれる場合がある。樹脂成形に使用する離型剤中に金属元素としてスズ、亜鉛、カルシウムなどとともに、ナトリウムが含まれるからである。
上述のように、血球が分離可能となる分離膜としては、ガラス繊維が使用される。これらがキットに由来するナトリウムイオンとして、希釈液中に混入することを防止するために、ガラス繊維を樹脂でコーティングする。ガラス繊維以外の部材からの溶出量は、本発明者らが確認したところによると、全体の10%前後であり、ガラス繊維からのナトリウムイオンの溶出を防止することで、血漿中のナトリウムイオン量に対して、2%以下のナトリウムイオンのコンタミ量に抑えることが可能となり、対象検体の分析を高精度に行うことが可能となることがわかった。
本発明の血液検査キットは、血液検体を希釈するための希釈液、希釈液が収容された第一の収容器具、希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための分離器具(樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されるもの)、分離器具を保持するための保持器具、回収した血漿を収容するための第二の収容器具、及び収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具を有する。本発明の血液検査キットの一例としては、血液検体の成分を希釈するための希釈液、希釈液が収容された第一の収容器具、希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための樹脂をコーティングしたガラス繊維、樹脂をコーティングしたガラス繊維を保持するための保持器具、回収した血漿を収容するための第二の収容器具、及び収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具、皮膚に傷をつけて血液を皮膚外に染み出させる針又はランセット、傷に貼る絆創膏又は消毒部材(例えば、イソプロパノール(70%イソプロパノールなど)又はエタノールなどを含浸させた不織布)、及び取扱説明書、等を備えることができる。
第一の収容器具、及び第二の収容器具は、1つの器具を第一の収容器具及び第二の収容器具として兼用してもよいし、別々の器具を備える態様であってもよい。収容器具内にある血液を希釈した希釈液を、患者、あるいは、希釈倍率の測定や分析対象成分の分析を行う測定者に確認可能とするために、第一の収容器具、及び第二の収容器具は、透明な素材でできていることが好ましい。
分離器具を保持する保持器具は、ガスケットである態様が好ましい。また、封止器具としては、収容器具が筒状の形状をした器具などの場合には、開口に蓋をすることが可能なキャップや、螺旋状の溝を有する蓋、あるいはゴム栓などを使用することができる。
上記の構成により、希釈液により血液を希釈した後に、直ちに血漿と血球を分離する機能を血液と希釈液の混合容器に付与することにより、血液成分の安定性と 血球細胞からの溶血による成分の変動の影響を排除し、血液採取後の試料の安定性を付与できる。
本発明の血液検査キットは、100μL以下の採血量であっても、測定精度よく分析対象成分を分析できる方法を実現可能とするものであり、患者に、100μL以下の少ない採血量でも精度よく測定することが可能であること等の情報が記載された取り扱い説明書を含むキットであることが好ましい。
〔血液検査キットの具体例〕
好ましい態様の一つにおいて、キットの好ましい具体的な器具としては、例えば、特許第3597827号公報の図1から図13に記載された器具で、樹脂をコーティングしたガラス繊維を分離器具として使用したものを使用することができる。特許第3597827号公報の図1を、本願の図1として援用する。
血液分離器具1は採血容器2(希釈液が収容された収容器具、第一の収容器具ということもある。血液検体の希釈物を収容するための収容器具でもある。)と、採血容器2に嵌挿可能な筒体3(回収した血漿を収容するための第二の収容器具)と、筒体3に冠着可能なキャップピストン4と、キャップピストン4の下端に設けられた密閉蓋5(封止器具)とを備え、使用前は、図1に示すように、採血容器2の上端開口部はキャップ6によりパッキン7を介して密閉されている。本発明における希釈された血液検体を収容するための収容器具は、図1の構成においては、採血容器2と筒体3の組み合わせに対応する。すなわち、希釈された血液検体を収容するための収容器具は1個でも2個以上の組み合わせでもよい。
採血容器2は透明な材質製で円筒状を成し、その上端部には、外面に螺子部8が形成され、内面に係止部9が突設されている。また、採血容器2の下端部には、逆円錐状の底部10が形成され、底部10の周囲に円筒状の脚部11が形成されている。脚部11は、血液の分析検査時に使用するサンプルカップと同一外径を有しており、好ましくは、その下端の対向する位置にそれぞれ鉛直方向にスリット溝12が形成されている。さらに、採血容器2内には、図1に示されているように、所要量、例えば、500mm3の希釈液13が予め入れられていてもよい。
筒体3は透明な材質製で円筒状を成し、その上端部には拡径部14が形成されている。拡径部14は薄肉部15を介して本体部16と接続されている。筒体3の下端部には、縮径部18が形成され、縮径部18の内面には係止突起部19が形成されている。さらに、縮径部18の下端部には外鍔部20(保持器具)が形成され、外鍔部20の下端開口部は濾過膜21(樹脂をコーティングしたガラス繊維)により覆われ、濾過膜21は血液中の血漿の通過を許容し、血球の通過を阻止するようになっている。
縮径部18の外周にはシリコンゴム製のカバー22が装着されている(図1)。
キャップピストン4は、略円筒状の摘み部26と、摘み部26と同心で下方に延びる心棒部27とで構成されている。摘み部26の内側上端部には筒体3の拡径部14が嵌合可能な円筒状の空間28が形成され、また、その下方は螺刻され、螺子に螺合可能となっている。心棒部27はその下端部29がピン状に形成され、下端部29に密閉蓋5が着脱可能に設けられている(図1参照)。密閉蓋5はシリコンゴム製である。
血液検体の希釈物からの血漿の分離回収操作は、具体的には、次のように行う。希釈液を収容する採血容器2に、採取した血液を投入した後、採血容器2の上部を持って泡立てないように注意しながら血液と希釈液とを十分に振り混ぜる。次に、樹脂をコーティングしたガラス繊維21を保持する筒体3(血漿、血球分離時のシリンダ側面への回りこみによる液漏れを防止)を、樹脂をコーティングしたガラス繊維が下になるように採血容器2に差し込み、ゆっくりと一定のスピードで採血容器2の底面まで濾過膜を押し下げる。このとき、筒体3の樹脂をコーティングしたガラス繊維を通って血漿が上部に上がり、血球は採血容器2の下部に残る。その後、キャップピストン4を筒体3にゆっくりと差し込んで、密閉栓5により逆流による血漿と血球の混合を防止する。
上記した器具による血液分離方法の詳細は、特許第3597827号公報の段落番号0023〜0026並びに図12及び図13に記載されており、その内容は本明細書に引用される。
本発明の血液検査キットに含まれる各々の要素の個数は特に限定されず、各々1個でもよいし、2個以上の複数でもよい。
本発明の血液検査キットに含まれる部材の材料は、破損しにくさ、衛生面、価格等の観点から、合成樹脂であることが好ましい。例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリ塩化ビニリデン、ポリスチレン、ポリ酢酸ビニル、ポリウレタン、ポリエチレンテレフタレート、ポリ乳酸、アクリロニトリルブタジエンスチレン樹脂(ABS樹脂)、アクリロニトリルスチレン樹脂(AS樹脂)、アクリル樹脂(PMMA)、ポリカーボネート、シリコーン樹脂等が挙げられる。
本発明の血液検査キットは、種々の部材のすべてを、収納容器に収納した形態として提供することができる。
[2]その他
本発明はまた、本明細書の上記[1]で説明した構成の血液検査キットを用いた血液分析方法を提供する。血液分析方法は、ヒトに対する医療行為(医師が行う行為)である態様とヒトに対する医療行為ではない態様(例えば、採血者が患者自身であり、かつ分析者が医師以外の者である態様、非ヒト動物に対する態様、等)が含まれる。本発明の血液分析方法は、対象者自身が血液を採取する自己採血で実施してもよいし、医師等の有資格者が注射器を使用して血液を採取する一般採血においても実施してもよい。好ましい態様としては、患者本人が、ランセットなどのナイフ付の器具を用いて指先などを傷つけて皮膚外に滲み出た血液を採取する。
本発明の血液検査キットを用いた分析の対象となる生体試料は血液であり、血液とは、血清又は血漿を含む概念である。血液の起源はヒトに限定されず、ヒト以外の動物(非ヒト動物)である哺乳類、鳥類、魚類等であっても良い。ヒト以外の動物としては、例えば、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、イヌ、ネコ、マウス、クマ、パンダ等が挙げられる。好ましくは、生体試料の起源はヒトである。
本発明の血液検査キットを用いて分析を行う場合、分析の対象成分は限定されず、血液中に含まれるあらゆる物質が対象となる。例えば臨床診断に用いられる血液中の生化学検査項目、腫瘍マーカーや肝炎のマーカー等各種疾患のマーカー等が挙げられ、タンパク質、糖、脂質、低分子化合物等が挙げられる。また、測定は物質濃度だけでなく、酵素等の活性を有する物質の活性も対象となる。各対象成分の分析は、公知の方法で行うことができる。
以下、本発明の実施例、比較例及び参考例について説明する。
(参考例1)
1.希釈液組成
希釈液を以下の組成で調製した。浸透圧は、OSMOATAT OM−6040(アークレイ(株)社製)を用いて測定した値を表示した。浸透圧の単位は、溶液の水1kgが持つ浸透圧で、イオンのミリモル数をあらわす。
HEPES 50mmol/L
2−アミノー2−メチル−1−プロパノール(AMP) 50mmol/L
D−マンニトール 284mmol/L
塩化リチウム 1mmol/L
EDTA−2K 0.8mmol/L
PALP(ピリドキサールリン酸) 0.05mmol/L
チアベンダゾール 0.0001質量%
アミカシン硫酸塩 0.0003質量%
硫酸カナマイシン 0.0005質量%
メロペネム三水和物 0.0005質量%
浸透圧 355mOsm/kg
pH 7.4
2.ナトリウム濃度の測定
1.で調製した希釈液のナトリウム濃度の測定には、β−ガラクトシダーゼがナトリウムで活性化することを利用し、それぞれの希釈液中のナトリウム濃度とβ−ガラクトシダーゼ活性が比例関係にあることを利用した酵素活性法により行った。具体的には、ナトリウムイオンを含まない精製水で血液の希釈液を5倍希釈した後、3μLを秤量し下記のように調製した第一試薬52μLを加えて、37℃で5分間加温し、下記のように調製した第二試薬を26μL加え、1分間の吸光度の変化をJCA−BM6050型生化学自動分析装置(日本電子(株)社製)を用いて主波長410nm、副波長658nmで吸光度を測定することにより求めた。あらかじめ作成した検量線から、ナトリウムの濃度を測定した。
(ナトリウム測定試薬の調製)
以下の組成のナトリウム測定試薬を調製した。
第一試薬
HPEPS・LiOH(pH8.0) 100mmol/L
D−マンニトール 60mmol/L
N−アセチルシステイン 30mmol/L
硫酸マグネシウム 1.52mmol/L
β−ガラクトシダーゼ 1.1kU/L
TritonX−100 0.05質量%
第二試薬
HPEPS・LiOH(pH8.0) 100mmol/L
o−Nitrophenyl−β−D−Galactpyranoside 15mmol/L
ガラス繊維から溶出するナトリウムイオン濃度は以下の手順による実験で求めた。
厚みが0.5〜0.8mmのガラス繊維を直径6.3mmの円形に刃物を使って打ち抜き、それを4枚重ねて保持器具であるホルダに収納し、分離器具を構成した。収納容器に収納された、上記のように作製した希釈液360μLの中にガラス繊維を収納したホルダを浸漬させ、十分に混和した後、その希釈液の上澄み液をピペットで取り出し、ナトリウムイオン濃度を、上記のナトリウム測定試薬を使用して10回測定した。一方、抗凝固剤を含む血液吸引部材、及びその他部材から溶出するナトリウムイオン濃度は、全ての分離器具で濾過操作して得られた希釈液の総ナトリウムイオン濃度(10回測定)から、ガラス繊維を収納したホルダの寄与分を差し引いたナトリウムイオン濃度を求めた。
樹脂コーティングされたガラス繊維(GF/DVA:製品名(GEヘルスケア社製)、VF2:製品名(GEヘルスケア社製))と一般のガラス繊維(ADF:製品名(日本ポール社製))について、また、抗凝固剤を含む血液吸引部材、及びその他部材について、希釈液中に溶出するNaイオン量の平均値とばらつきの尺度である変動係数CV(coefficient of variaition)(%)を求めた。結果を表1に示した。なお、GF/DVA:製品名(GEヘルスケア社製)における樹脂は、ポリビニルアルコールであり、VF2:製品名(GEヘルスケア社製))における樹脂は、ポリビニルアルコールである。また、GF/DVA:製品名(GEヘルスケア社製)、並びにVF2:製品名(GEヘルスケア社製))においては、樹脂のコーティング量が、ガラス繊維の質量に対して6質量%である。
図2に、一般のガラス繊維(ADF)を使用した場合と、樹脂でコーティングされたガラス繊維(GF/DVA、VF2)を使用した場合における希釈液に溶出するナトリウムイオンの希釈液に対する濃度レベルを点線で記入した。
図2及び表1の結果から、血液中に存在する恒常性のある成分であるナトリウムイオンを標準物質に用いた場合において、血液検査キットの部材であるガラス繊維を樹脂でコーティングすることで、希釈液に溶出するナトリウムの希釈液に対する濃度を平均値で0.09mmol/Lに低下させ、かつ、CVも低下させることができ、高い希釈倍率までの広い範囲において、高精度の希釈倍率を算出するための希釈液へのナトリウムイオンの許容溶出濃度を十分にクリアできることが判った。
(参考例2)
1.微量血液検体を希釈した希釈液の調製
ボランティアの患者から、インフォームドコンセントを行った後に静脈から注射器で採取した30mLの血液を採血管に得た。この採血した血液の半分から予め遠心分離機により血漿を得た。90μL、19μLをそれぞれ10回ずつマイクロピペットで正確に秤量し、参考例1で調製した希釈液と同じ希釈液の360μLにそれぞれ混合した。血漿混合した希釈液を参考例1で使用したガラス繊維(GF/DVA、ADF)を収納したホルダを用いて濾過した。この濾過後の希釈血漿を試料として、参考例1と同様にして、ナトリウムイオン濃度の測定を行い、希釈倍率の測定と測定した希釈倍率のばらつきの指標であるCV(%)を求めた。結果を表2に示した。
表2から、樹脂コーティングを行ったガラス繊維を用いた場合に、血液と希釈液の混合液を濾過して血漿混合液を得る段階で、ナトリウム成分の混入量が非常に少なく、血漿を希釈したときの希釈倍率が、実際の希釈倍率値と同じ倍率が得られ、しかも測定間でのばらつきも低く抑えられることがわかった。
(実施例1)
1.ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ)の測定
参考例2で注射器を用いて静脈から採血した直後に、採血した同じ患者の指先からランセットを用いて血液を指先の皮膚外ににじませた後に、30μL〜40μL程度の液体を採取し、参考例1で調製した希釈液と同じ希釈液360μL中に血液を混合した。この血液と希釈液の混合液を、参考例1及び2で使用した樹脂コーティングガラス繊維(GF/DVA)で濾過して血球成分を分離し、血液検体の血漿成分の希釈液を得た。その後、希釈液を密閉して、検査が可能な別の施設へと輸送し、輸送後に、希釈液を取り出して、参考例2の血液中のナトリウムイオンを用いた希釈倍率の測定方法と同様にして、希釈倍率を測定したところ、18.7倍の希釈倍率であった。このことから、採血量は40μL弱であることがわかった。この希釈検体中のALT、ASTの濃度を、市販の測定キット(トランスアミナーゼCII−テストワコー:和光純薬工業(株)社製)を用いて測定したところ、参考例2で調製した参考水準1において濾過していない遠心分離で得た血漿の希釈液を用いて測定した、ALT値は18U/L、AST値は37U/Lとの結果に対して、上記のように指先から採取した血液を希釈した希釈液から分析した、ALT値は18U/L、AST値35U/Lであり、ほぼ一致した結果が得られ、本発明の効果を確認した。
1 血液分離器具
2 採血容器
3 筒体
4 キャップピストン
5 密閉蓋
6 キャップ
7 パッキン
8 螺子部
9 係止部
10 底部
11 脚部
12 スリット溝
13 希釈液
14 拡径部
15 薄肉部
16 本体部
18 縮径部
19 係止突起部
20 外鍔部
21 濾過膜
22 カバー
26 摘み部
27 心棒部
28 空間
29 下端部
31 段差部
33 上端部
34 頂部

Claims (6)

  1. 血液検体を希釈するための希釈液と、
    前記希釈液が収納された第一の収容器具と、
    前記希釈液で希釈された血液検体から血漿を分離回収するための分離器具と、
    前記分離器具を保持するための保持器具と、
    回収した血漿を収容するための第二の収容器具と、
    収容した血漿を第二の収容器具内に維持するための封止器具と、
    を含む、血液中に恒常的に存在する標準成分を用いて血液検体中の対象成分の濃度を分析するための、血液検査キットであって、
    前記分離器具が、樹脂をコーティングしたガラス繊維から構成されていて、前記樹脂が、ウレタン系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂及びエポキシ系樹脂からなる群から選択される樹脂であり、前記樹脂のコーティング量が、ガラス繊維の質量に対して1〜10質量%である、血液検査キット。
  2. 前記希釈液の容量が、血漿の容量の4倍以上である、請求項1に記載の血液検査キット。
  3. 血液中に恒常的に存在する前記標準成分が、ナトリウムイオン又は塩化物イオンである、請求項1又は2に記載の血液検査キット。
  4. 血液中に恒常的に存在する前記標準成分が、ナトリウムイオン又は塩化物イオンと、さらに、別の血液中に恒常的に存在する標準成分である、請求項1からのいずれか一項に記載の血液検査キット。
  5. 前記別の標準成分が、総タンパク又はアルブミンである、請求項に記載の血液検査キット。
  6. 請求項1からの何れか一項に記載の血液検査キットを用いて、採取された血液検体を希釈液で希釈する工程と、
    血液中に恒常的に存在する標準成分の標準値を用いて希釈倍率を決定する工程と、
    血液検体中の対象成分の濃度を分析する工程と、
    を含む、血液分析方法。
JP2016255673A 2016-12-28 2016-12-28 血液検査キット及び血液分析方法 Active JP6789107B2 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016255673A JP6789107B2 (ja) 2016-12-28 2016-12-28 血液検査キット及び血液分析方法
EP17888174.4A EP3564667B1 (en) 2016-12-28 2017-12-28 Blood test kit and blood analysis method
PCT/JP2017/047204 WO2018124275A1 (ja) 2016-12-28 2017-12-28 血液検査キット及び血液分析方法
CN201780080683.8A CN110114672B (zh) 2016-12-28 2017-12-28 血液检查试剂盒及血液分析方法
US16/454,062 US11166659B2 (en) 2016-12-28 2019-06-27 Blood test kit and blood analysis method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016255673A JP6789107B2 (ja) 2016-12-28 2016-12-28 血液検査キット及び血液分析方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2018105829A JP2018105829A (ja) 2018-07-05
JP6789107B2 true JP6789107B2 (ja) 2020-11-25

Family

ID=62709459

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2016255673A Active JP6789107B2 (ja) 2016-12-28 2016-12-28 血液検査キット及び血液分析方法

Country Status (5)

Country Link
US (1) US11166659B2 (ja)
EP (1) EP3564667B1 (ja)
JP (1) JP6789107B2 (ja)
CN (1) CN110114672B (ja)
WO (1) WO2018124275A1 (ja)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101749932B1 (ko) * 2015-09-25 2017-06-23 주식회사 엔바이오텍 지방조직 유래 기질혈관분획 분리용 키트 및 이를 이용한 지방조직 유래 기질혈관분획의 분리 방법
DE102018211293A1 (de) 2017-07-10 2019-01-10 Ngk Spark Plug Co., Ltd. Einheit zur Montage einer lichtemittierenden Vorrichtung
CN112904022B (zh) * 2021-03-05 2024-07-16 上海玮驰仪器有限公司 一种抗体检测试剂盒及其使用方法
CN113373030A (zh) * 2021-04-28 2021-09-10 任楚宇 一种具有自毁功能的核酸检测样品存储装置

Family Cites Families (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS597827B2 (ja) 1977-05-23 1984-02-21 東レ株式会社 親水化処理剤
DE3029579C2 (de) 1980-08-05 1985-12-12 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und Mittel zur Abtrennung von Plasma oder Serum aus Vollblut
DE3610429A1 (de) * 1986-03-27 1987-10-01 Boehringer Mannheim Gmbh Gerinnungsneutrale, hydrophile glasfasern
JPH02208565A (ja) 1989-02-09 1990-08-20 Fuji Photo Film Co Ltd 血液から血漿を分離する方法、器具、およびこれを用いる分析要素
JPH04208856A (ja) * 1990-12-03 1992-07-30 Sanwa Kagaku Kenkyusho Co Ltd 全血から血清又は血漿を分離する方法および器具
JPH09196911A (ja) * 1996-01-19 1997-07-31 Fuji Photo Film Co Ltd 血液濾過ユニット
JPH10104226A (ja) 1996-09-30 1998-04-24 Masaki Kobayashi 血液検体採集カード
JP2000254461A (ja) * 1999-03-09 2000-09-19 Fuji Photo Film Co Ltd ガラスフィルター
JP2001221794A (ja) * 1999-12-01 2001-08-17 Srl Inc 血清分離シートを使用した血液検体の生化学的検査
US6936473B2 (en) 2000-01-05 2005-08-30 Leisure, Inc. Method of preparing a biological sample for quantification
JP3643011B2 (ja) * 2000-05-18 2005-04-27 アークレイ株式会社 定量分析法
US7323144B2 (en) * 2002-03-18 2008-01-29 Leisure, Inc. Apparatus for separating biological sample and separating method of the same
JP2006038512A (ja) * 2004-07-23 2006-02-09 Fuji Photo Film Co Ltd 血液濾過用ガラス繊維フィルター、血液濾過器具および血液分析素子
WO2006017703A1 (en) * 2004-08-05 2006-02-16 Akers Biosciences, Inc. Blood separator and method of separating a fluid fraction from whole blood
JP2009109196A (ja) 2007-10-26 2009-05-21 Panasonic Corp 希釈倍率導出方法、定量方法、及び分析装置
JP2009122082A (ja) 2007-11-13 2009-06-04 Seiri Kagaku Kenkyusho:Kk 血液希釈定量器具
CN101862564B (zh) * 2010-03-16 2012-03-21 苏州市玮琪生物科技有限公司 一种微量血样预处理系统及其制备工艺
ITFI20110078A1 (it) * 2011-04-20 2012-10-21 Gianfranco Liguri Metodo per la determinazione di analiti nel plasma diluito ottenuto da sangue intero, e dispositivo atto a realizzarlo
WO2014064921A1 (ja) * 2012-10-22 2014-05-01 パナソニック株式会社 フィルターデバイス
WO2016013115A1 (ja) * 2014-07-25 2016-01-28 株式会社 リージャー 希釈生体試料成分の分析方法

Also Published As

Publication number Publication date
US11166659B2 (en) 2021-11-09
EP3564667A1 (en) 2019-11-06
EP3564667A4 (en) 2019-12-25
CN110114672B (zh) 2020-11-06
US20190313958A1 (en) 2019-10-17
WO2018124275A1 (ja) 2018-07-05
CN110114672A (zh) 2019-08-09
JP2018105829A (ja) 2018-07-05
EP3564667B1 (en) 2021-09-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10697870B2 (en) Blood test kit and analyzing method using the same
US11166659B2 (en) Blood test kit and blood analysis method
WO2017006963A1 (ja) 血液検査キット、及びそれを用いた分析方法
US10788478B2 (en) Blood test kit, member thereof, and method for manufacturing the same
US10634661B2 (en) Blood analysis method and blood test kit
JP6789108B2 (ja) 血液分析方法及び血液検査キット
US10739361B2 (en) Blood analysis method and blood test kit
US11179081B2 (en) Blood analysis method and blood test kit
US11442070B2 (en) Blood analysis method and blood test kit
WO2017006964A1 (ja) 血液検査キット、その部材及びそれらの製造方法
WO2017006965A1 (ja) 血液分析方法及び血液検査キット

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20190227

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20200407

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200605

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20201006

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20201102

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 6789107

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250