JP6705608B2 - ゴナドトロピンの生理活性を増強するリガンド - Google Patents
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Description
ン(CG)の生理活性を増強する卵胞刺激ホルモン(FSH)リガンドである。
重鎖可変ドメインが次のCDRを含み、
‐配列GFTFSSSY(配列番号5)によって規定されるVH−CDR1、
‐配列IYAGTGGT(配列番号6)によって規定されるVH−CDR2、
‐配列ARHGSYFDY(配列番号7)によって規定されるVH−CDR3、且つ
軽鎖可変ドメインが次のCDRを含む
‐配列QSVDYDGDSY(配列番号8)によって規定されるVL−CDR1、
‐配列AASによって規定されるVL−CDR2、
‐配列QQSNEDPYT(配列番号9)によって規定されるVL−CDR3
ことを特徴とするリガンドである。
‐CNCM I−4803ハイブリドーマにより産生されるCF12モノクローナル抗体、
‐単独または混合物として使用される上の抗体のVH断片またはVL断片、
‐上の抗体のFab、Fab’、F(ab’)2、Fv、dsFvまたはscFv断片またはナノボディ。好ましくは、それはFab断片またはscFv断片である、
‐それぞれ2つ、3つ、または4つのscFv断片からなる二価体、三価体、または四価体(ディアボディ、トリアボディ、テトラボディ)、
‐上の抗体のパラトープ、および意中の動物またはヒトに対する免疫原性を最小限にするように改変されている定常領域を含む組換え抗体。例えば、それはキメラ(ヒト化、ヒツジ化、ヤギ化、ウシ化、ブタ化等)抗体または完全ヒト化、ヒツジ化、ヤギ化、ウシ化、ブタ化抗体である。
ン依存的不妊問題または低受胎問題を軽減するためにFSHの生理活性、LHの生理活性、および絨毛性ゴナドトロピン(CG)の生理活性を増強するための本発明に従うリガンドでもある。
注射は全て腹膜内注射でマウス(Balb/c)に行われた。5匹のマウスを使用した。
組換えヒトFSH(rhFSH)の数回の注射によって免疫を行った。完全フロイントアジュバントと共に50μgのrhFSHを使用して1回目の注射(0日目)を行った。その後、次の順序で数回のブースター注射を行った。
‐21日目および35日目:不完全フロイントアジュバントと50μgのrhFSHのブースター注射、
‐55日目、56日目および57日目:アジュバント無しの30μgのrhFSH βサブユニットの注射、
‐58日目:融合。
RD Biotechが販売するFastElysaアイソタイピングキット(参照番号RDB3255)を製造業者の推奨に従って使用してCF12抗体のアイソタイピングを行った。
CNCM I−4803ハイブリドーマによって分泌されるCF12抗体の重鎖可変部分(VH)と軽鎖可変部分(VL)のヌクレオチド配列を以下のプロトコルに従ってそれらのメッセンジャーRNA(mRNA)から決定した。
相補性DNAを合成した。
(a)scFv抗体断片の構築
CF12抗体に由来する一本鎖可変断片(scFv)の合成遺伝子がATG:バイオシンセティクスGmbH(ドイツ)によって合成された。
3)の融合体から各配列を設計した。発現プラスミドへのそれらの挿入を可能にするため、それらの配列の両脇にPstIとSalIの制限酵素部位が付加された。所望によりHis6ペプチドの除去を可能にする追加の配列をVLの3’末端とSalI部位との間に付加した。大腸菌での発現向けにコドンを最適化した。scFv合成遺伝子の構築を図によって表現したものが下に詳述されている。
細菌培養物
50μg/mlのアンピシリンを含む5mlの2×YT培地に前培養物を37℃で一晩にわたって調製した。翌日、500μlのこの前培養物を500mlの同じ培地に接種し、1.4のOD600nmが得られるまで150RPM、37℃で培養した。0.1mMのIPTGを添加することでscFvの合成を150RPM、16℃で16時間にわったって誘導した。
その培養培地を4500g、4℃で30分間にわたって遠心分離した。調製の後の部分は4℃で実施した。細菌のペリプラズムを抽出するため、沈殿物を10mlのTES(0.2Mトリス、pH8、0.5M EDTA、0.5Mショ糖)に再懸濁し、30分間にわたってインキュベートし、その後で4分の1に希釈された15mlのTESをそれに添加し、続いて30分間にわたってさらにインキュベートした。その細菌抽出物を10000gで30分間にわたって遠心分離した。上清をPBSに対して一晩にわたって透析した。その透析された上清をscFvの精製のためにすぐに処理するか、または使用するまで−20℃で貯蔵した。
前記ペリプラズムを5000g、4℃で20分間にわたって遠心分離した。その上清をHIS−Select(登録商標)ニッケルアフィニティーゲル(シグマ・アルドリッチ、ミズーリ州、米国)と共に4℃で1時間にわたって撹拌しながらインキュベートした。0に近いOD280nmが得られるまで、0.3MのNaClを含むpH8の0.05Mリン酸ナトリウム緩衝液でそのゲルを洗浄し、その次にそのゲルに添加された20mMのイミダゾールを含む同じ緩衝液で洗浄した。その後で0.3MのNaClと250mMのイミダゾールを含むpH8の0.05Mリン酸ナトリウム緩衝液でscFvを溶出した。その溶離液をPBSに対して一晩にわたって透析した。その溶離液は−20℃で貯蔵されている。
その精製されたscFvを15%ポリアクリルアミドゲル上での電気泳動によってクマシーブルーによる染色後に分析し、且つ、Sephadex(商標)75 10/300
GLカラム(参照番号17−5174−01、GEヘルスケア、ドイツ)上での排除クロマトグラフィーによって分析した。
CF12抗体の特異性およびその抗体のscFvの特異性をELISA法により検討した。評価される各ホルモンはpH9.6の0.1M炭酸ナトリウム緩衝液中に10μg/mlの濃度で調製され、ELISAプレート上でウェル当たり100μlの割合で分配された。吸着時間は+4℃で18時間であった。洗浄を5回行った後に0.1%ツイーンおよび1%BSAを添加した100μlのPBSでウェルを37℃で45分間にわたって処理し、その後、各抗体またはscFvを100μl/ウェルの割合で分配し、37℃で1時間にわたってインキュベートした。評価される各ホルモンに対して、抗体については10〜250μg/mlの範囲、scFvについては10〜150または200μg/mlの範囲に応じた様々な濃度でその抗体およびscFvを分配した。
吸着されている様々なホルモンへの濃度を上げて(飽和状態(Bmax)まで)、用意された抗体の結合の発現に基づき、CF12 scFvによってELISA法で定量可能な結合を得ることができた。発現後に得られた光学密度単位として結果が表されている。
FSHの生理活性に対する本発明のリガンドの増強作用の証明が、FSH単独か、またはFSH/モノクローナル抗体(MAb)複合体のどちらかで刺激された様々な細胞種または細胞株を用いて得られた生物学的応答を比較することにより行われた。
最初にヒトFSH(hFSH)に対するCF12 MAbの増強作用の特徴がウシFSH受容体を内在的に発現するウシ顆粒膜細胞上で解析された。
様々な種のFSHに対する前記MAbの増強作用がヒトFSH受容体を安定的に発現するHEK293細胞上で測定された。この系により、37℃で1時間にわたるFSH単独か、またはFSH/MAb複合体による刺激の後のFSH受容体の活性化に続くcAMP産生を測定することが可能になった。
独か、またはFSH/モノクローナル抗体複合体を用いて得られた用量応答曲線を比較することが可能になった。組換えヒトFSH(ゴナールF、セローノ・ラボラトリー)を用いて得られた結果は、CF12抗体が0.5ng/mlで140%、および1ng/mlと3ng/mlの濃度でそれぞれ160%のホルモン活性増強作用を有していることを示している。この作用は対応のあるt検定(ウィルコクソン検定)によって3ng/mlのヒトFSHのポイントで有意(p<0.01)である。
様々な種のFSHに対する前記MAbの増強作用がヒトFSH受容体およびGloSensor(商標)ベクター(プロメガ、フランス)を安定的に発現するHEK293細胞上でリアルタイムに測定された。この細胞系により、アゴニスト(FSHのみ、またはFSH/モノクローナル抗体複合体)でのFSH受容体の刺激の後のcAMP産生をリアルタイムでモニターすることが可能になった。GloSensor(商標)タンパク質へのcAMPの結合の後、GloSensor(商標)基質(プロメガ、フランス、参照番号E1291)が加水分解され、それによりPolarStar Optimaリーダー(BMG Labtech、ドイツ)によって測定され、且つ、RLU(相対発光単位)で表される発光が放射された。この安定株はフランス、37380、ヌジリー、ヴァル・ド・ロワールにあるINRA(フランス国立農学研究所)センターのシグナル伝達システムのバイオロジーおよびバイオインフォマティクスチームによって開発され、これらのアッセイのために利用可能とさせてもらった。
CF12モノクローナル抗体の増強作用をヒト、ヒツジおよびブタのFSHの生理活性
に対して特徴解析した。
ヒト顆粒膜細胞がReverchonら (Reverchon et al., Human Reprod., 27(6): 1790-1800, 2012)[11]に記載されているように回収され、培養された。
している。hFSH/CF12抗体複合体を用いる刺激の下で得られた最大cAMP分泌レベルは、hFSHに対して正常に応答した細胞培養物を用いて得られた最大分泌レベルと等しい6pmol/mlと15pmol/mlの間にある(図12)。前記用量応答曲線の各々についてGraphPad Prismによって測定されたEC50値が表13に示されている。
インビトロで特徴解析された後、前記モノクローナル抗体の増強作用をFSHの生理活性に対するその抗体の作用についてはメスのラットにおいて、およびそれらが同じく認識するLH/CGの生理活性に対するその抗体の作用についてはオスのラットにおいてインビボで特徴解析した。
CF12抗体およびそのscFvの増強作用を生殖補助医療治療の背景でヒトの生殖において使用されているヒトFSHの様々な調製物、すなわちゴナールFとピュレゴン(そ
れぞれメルクセローノ・ラボラトリーとメルクシェリングプラウ・ラボラトリーに由来する組換えFSH)、およびフォスティモンとメノピュール(それぞれラボラトワール・ジェニエーブルとメルクシェリングプラウによって販売されている抽出型FSH)に対して検討した。
ヒトFSHに対して作製されたCF12抗体のインビボ作用をヒトFSHの様々な調製物の生理活性とヒツジFSHの生理活性に対して評価した。
に有意な170%の増加が示されており、平均重量がそれらのメスにおいて100gの体重当たり79.51±2.178mgの卵巣から100gの体重当たり134.8±4.985mgの卵巣まで増加している(***、p<0.001)。
含まないバッチにおける89mgの平均重量に対してCF12 scFvを含むバッチにおける170mgの平均重量、p<0.01)、151%の増加がhFSHであるピュレゴンについて記録され(scFvを含まないバッチにおける86mgの平均重量に対してCF12 scFvを含むバッチにおける130mgの平均重量、p<0.05)、そして148%の増加がhFSHであるフォスティモンについて記録された(scFvを含まないバッチにおける77mgの平均重量に対してCF12 scFvを含むバッチにおける114mgの平均重量、P<0.05)。ノンパラメトリックt検定(マン・ホイットニー検定)を用いて分析を行った。卵巣応答の増加の程度がCF12完全抗体を用いて得られた増加の程度と等しい(同じ倍率)ことが留意されるべきである。この有意で重要な結果は、scFvによるにしても、または完全抗体によるにしても循環ゴナドトロピンの全く同一の増強作用をインビボで得ることができ、器官における生理学的応答を確実に増強することができることを示している。
ヒツジLHは非常に高価であるため、これらの生物学的アッセイは、容易に入手でき、非常に純粋であり、且つ、安価な形態であるhCGを用いて実施された。前記抗体の作用を抽出型hCG(ヒト絨毛性ゴナドトロピン)の2種類の調製物、すなわち一方の生殖補助医療処置の背景でのヒトの生殖に使用されるENDO5000(シェリングプラウ・ラボラトリー)と他方の獣医学で使用されるコルロン(MSDラボラトリー)に対して検討した。
いラットを使用して前記プロトコルを実施した。5日目にそれらのラットの体重を測定し、その後で殺処理した。それらのラットの精嚢(SV)を取り出し、解剖し、そしてそれらの重量を量った。様々なバッチを用いて得られた結果を比較し、まとめるために精嚢重量が100gの体重当たりのmgとして表されている。各実験において、5匹のラットからなるバッチに対して前記条件の各々を検査した。同じ実験を数回繰り返した。
−それぞれ33匹と36匹という数の動物において、SVの平均重量はhCGであるコルロンで処置されたラットでは29.36mg/100gであったのに対して前記複合体で処置されたラットでは51.40mg/100g(175%の増加)であり(図11B)、
−それぞれ18匹と20匹という数の動物において、SVの平均重量はhCGであるEndo5000で処置されたラットでは25.35mg/100gであり、前記複合体で処置されたラットでは50.54mg/100gであった(208%の増加)(図11C)。
げっ歯類動物(小動物)においてCF12モノクローナル抗体の増強作用をインビボで実証し、特徴解析した後、多産でより大型の家畜、すなわち雌羊においてFSHの活性に対する各抗体の作用を研究することを目的とした。
最後(3月末)に行われたプロトコルの間に評価した。それらのプロトコルは全て、プロゲストゲン(45mgの酢酸フルロゲストン(FGA);MSD)を染み込ませた膣内スポンジを14日間にわたって差し込むことにより排卵周期を予め同期させた雌羊に対して行われた。対照雌羊(生理食塩水バッチ)、ブタFSH処理で刺激された雌羊(FSHバッチ)、および抗体だけを用いて刺激された雌羊(抗体バッチ)において排卵応答(排卵回数)および高品質の1つ以上の機能的黄体の樹立(プロゲステロン分泌の程度)を比較することにより増強作用を分析した。
排卵の測定パラメーターおよび樹立された黄体の機能的品質の測定パラメーターを使用してCF12(IgM)およびそのscFvの増強作用を検討および比較した。注射用量は1mgを2回であった。
−CF12抗体バッチ(n=7)は前記スポンジの撤去の24時間前に1mgの抗体の筋肉内注射を受け、そのスポンジが撤去されるときに2回目の1mgの注射を受けた。
−CF12 scFvバッチ(n=5)は前記スポンジの撤去の24時間前に1mgのscFvの筋肉内注射を受け、そのスポンジが撤去されるときに2回目の1mgの注射を受けた。
−「対照」バッチ(n=9)は前記スポンジの撤去の24時間前とその撤去時に生理食塩水の筋肉内注射を受けた。
−「FSH」バッチ(n=11)は前記スポンジの撤去の24時間前に100μgのブタFSH(pFSH)の筋肉内注射を受け、そのスポンジの撤去の12時間前に90μgの筋肉内注射を受けた。
Fvで処置された雌羊の曲線とFSHで処置された雌羊の曲線との間の差は有意ではなく、したがって傾向を表している。
−排卵誘導に対する有効性に関して(100%の雌羊が排卵し、且つ、総数について雌羊当たり1.3個および0.8個追加の黄体が得られる)、
−黄体期を通してより多くのプロゲステロン分泌を有する樹立された黄体の品質に関して良好な結果を生じた。
ラット、メスのラットおよび雌羊においてCF12モノクローナル抗体の増強作用をインビボで実証し、且つ、特徴解析した後、そのモノクローナル抗体の増強作用をヒトに近い種、すなわちカニクイザル(Macaca fascicularis)において検討した。このため、ヒトFSH(hFSH)に対する前記抗体の増強作用を評価することを目的として少なくとも36か月齢の思春期のメスのサルに対して試験を行った。
0分後に単独で注射された。
CF12の増強作用を最初にhFSHについて評価した。このため、1〜3と表示された3つのプロトコルを実施した。
(1)25IUのhFSHの単回注射で処置される動物:処置の1日目における25IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の皮下注射(「hFSH 25IU X1」)、
(2)CF12+hFSHで処置される動物:処置の1日目と5日目に25IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の20分間にわたる注射から20分後にCF12抗体(400μg)の皮下注射を行った(「hFSH 25IU+CF12 X2」)、
(3)8日間にわたって25IUのhFSHで処置される動物:8日間にわたる25IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の毎日の皮下注射(「hFSH 25IU X8」)。
あった。したがって、400μgのCF12+25IUのhFSHの2回の注射によって25IUのhFSHの8回の注射よりも良好な卵胞の成長が誘導され、それぞれ4.83mm2/卵胞に対して2.05mm2/卵胞であった。卵胞の成長に対するその複合体の効果は、被刺激卵胞の面積の減少が顕著であるFSHの8回の注射を含む処置と対照的に11日目まで一定であった。この結果は、循環FSHが内在性のものであるか、または外因性のものであるかに関係なく、メスのサルにおけるその循環FSHに対するCF12のインビボでの増強作用を示している。実際には、FSHの半減期は1時間未満なので、処置の1日目と5日目にCF12が25IUのhFSHと共に注射されたときに観察された効果は共注射されたFSHの効果だけによるものとすることができず、前記メスのサルの内在性FSHの効果も反映している。
次に37.5IUのhFSHの注射後に後から単独で注射されたCF12の増強作用を検討した。このため、GnRHの注射から15日後に1から4と表示された4つのプロトコルに着手した。プロトコルにつき1匹のメスのサルを処置した。
(1)12日間にわたって37.5IUのhFSHで処置される動物:12日間にわたる37.5IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の毎日の皮下注射(「hFSH 37.5IU X12」)、
(2)毎日37.5IUのhFSHで処置され、且つ、2日毎に400μgのCF12で処置される動物:12日間の37.5IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の毎日の皮下注射とhFSHの注射から20分後における400μgの用量のCF12抗体の2日毎の注射(「hFSH 37.5IU X12+400μg CF12 X6」)、
(3)毎日37.5IUのFSHで処置され、且つ、2日毎に70μgのCF12で処置される動物:12日間の37.5IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の毎日の皮下注射とhFSHの注射から20分後における70μgの用量のCF12抗体の2日毎の注射(「hFSH 37.5IU X12+70μg CF12 X6」)、
(4)8日間にわたって75IUのFSHで処置される動物:8日間にわたる75IUのヒトFSH(ゴナールF(登録商標)プレフィルドペン、メルクセローノ)の毎日の皮下注射(「hFSH 75IU X8」)。
CF12 X6」と「hFSH 75IU X8」については11個の卵母細胞であり、hFSH 37.5IU X12については8個の卵母細胞であった。hFSH 37.5IU X12+70μg CF12 X6で処置されたメスのサルは、穿刺の日の前に自然に排卵が起きたことを示す若い黄体を卵巣に示した。
X12+400μg CF12 X6」処置と「hFSH 37.5IU X12+70μg CF12 X6」処置との間で観察された応答の差も、CF12が及ぼす増強作用が用量依存的であり、70μgの用量が卵巣に対して最も強い刺激を誘導することを示している。
CF12抗体のエピトープが、天然型立体構造と非天然型立体構造を区別することを可能にするボロノイ図と様々なスコア関数進化的学習法による最適化を用いるタンパク質構造モデリングに基づくプロテインドッキングアルゴリズム(Bernauer et al., Bioinformatics 2007, 5:555, [14]; Bernauer et al., Bioinformatics 2008, 24:652, [15]; Bourquard et al., PLoS One 2011, 6:e18541, [16] および Bourquard et al., Sci. Reports 2015, 5:10760 [17])を用いて様々な種の性腺刺激ホルモンに対して決定された。
ヒツジFSHおよびヒトFSHの生物活性を増強する能力を評価するためにCF12抗体の様々な断片を構築した。「CF12 VL」と呼ばれる軽可変鎖だけを含む断片、「CF12 VH」と呼ばれる重可変鎖だけを含む断片、および本発明の実施例1第4段落に記載されている基準のCF12 scFvのVH−VL配列(配列番号10および配列番号11)と比較して逆のVL−VH順で構築された「リバースCF12 scFv」を作製した。
CF12抗体から得られたCF12 VL断片とリバースCF12 scFv断片をコードする合成遺伝子がATG:バイオシンセティクスGmbH(ドイツ)によって合成された。リバースCF12 scFvはCF12 scFvのCF12 VL−リンカー−CF12 scFvのCF12 VHという融合体から構成される。各合成遺伝子はpSW1プラスミド[7]の配列を融合することにより設計されており、HindIII部位とPelBタンパク質をコードする配列の末端との間に含まれ、そして合成予定の目的のタンパク質の配列(配列番号27および配列番号31)の横にXhoI制限部位が付加される。それらの配列はpSW1プラスミドのHindIII部位とXhoI部位の間に挿入されている。大腸菌での発現向けにコドンを最適化した。
本発明の実施例2において先に記載されたプロトコルに従い、ヒトFSH受容体とGlosensor(登録商標)システムが安定的に形質移入されたHEK293細胞株を用いてヒトFSHの生理活性に対する「CF12 VL」断片、「CF12 VH」断片および「リバースCF12 scFv」断片のインビトロ作用を検討した。単独の、または混合物としての「CF12 VL」断片および「CF12 VH」断片をそれぞれ40nMで検査した。リバースCF12 scFvをちょうど基準CF12 scFvのように80nMの濃度で検査した。ヒトFSHを0.1nMで検査した。
VH断片およびリバースCF12 scFv断片の増強作用のインビボ測定
インビトロで特徴解析された後、hFSHの生理活性に対する様々なCF12断片の増強作用がメスのラットにおいてインビボで検討された。
1- Patent EP 1518863
2- International application WO 2012/066519
3- Brochet et al., Nucl. Acids Res., 36: W503-508, 2008
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5- Giudicelli et al., Nucl. Acids Res., 33: D256-261, 2005
6- Corpet, Nucl. Acids Res., 16(22): 10881-10890, 1988
7- Ward et al. Nature, 341: 544-546, 1989)
8- Li et al., Afr. J. Biotechnol., 9(50): 8549-8554, 2010
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11- Reverchon et al., Human Reprod., 27(6): 1790-1800, 2012
12- Steelman SL, Pohley FM., Endocrinology, 53: 604-616, 1953
13- Scobey et al, Reprod. Biol. Endocr. 3 :61, 2005
14- Bernauer et al., Bioinformatics, 5: 555, 2007
15- Bernauer et al., Bioinformatics, 24: 652, 2008
16- Bourquard et al., PLoS One, 6:e18541, 2011
17- Bourquard et al., Sci. Reports, 5:10760, 2015
18- Fan and Hendrickson, Nature, 433: 269, 2005.
Claims (14)
- FSHの生理活性、黄体形成ホルモン(LH)の生理活性、および絨毛性ゴナドトロピン(CG)の生理活性を増強する卵胞刺激ホルモン(FSH)リガンドであって、前記リガンドが抗体または抗体断片であり、
重鎖可変ドメインが次のCDRを含み、
‐配列GFTFSSSY(配列番号5)によって規定されるVH−CDR1、
‐配列IYAGTGGT(配列番号6)によって規定されるVH−CDR2、
‐配列ARHGSYFDY(配列番号7)によって規定されるVH−CDR3、且つ
軽鎖可変ドメインが次のCDRを含む
‐配列QSVDYDGDSY(配列番号8)によって規定されるVL−CDR1、
‐配列AASによって規定されるVL−CDR2、
‐配列QQSNEDPYT(配列番号9)によって規定されるVL−CDR3
ことを特徴とする前記リガンド。 - FSHの生理活性、黄体形成ホルモン(LH)の生理活性、および絨毛性ゴナドトロピン(CG)の生理活性を増強する卵胞刺激ホルモン(FSH)リガンドであって、前記リガンドが抗体または抗体断片であり、
重鎖可変ドメインが配列番号2または30の配列を含み、および/または、
軽鎖可変ドメインが配列番号4または28の配列を含むことを特徴とする前記リガンド。 - 前記リガンドがFab、Fab’、F(ab’)2、Fv、dsFv、scFv、ディアボディ、トリアボディ、テトラボディ、ナノボディ(登録商標)、重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインからなる群より選択されることを特徴とする、請求項1又は2に記載のリガンド。
- 前記リガンドがCNCM I−4803ハイブリドーマにより産生されるCF12モノクローナル抗体であることを特徴とする、請求項1に記載のリガンド。
- 前記scFvのペプチド配列が配列番号11の配列であることを特徴とする、請求項3に記載のリガンド。
- 請求項1から5の何れか一項に記載のリガンドとFSHとの複合体、
請求項1から5の何れか一項に記載のリガンドとLHまたは絨毛性ゴナドトロピン(CG)ホルモンとの複合体
から選択されるリガンド−ゴナドトロピン複合体。 - 請求項1から5の何れか一項に記載のリガンドを含む医薬品。
- 請求項6に記載の複合体を含む医薬品。
- メスの哺乳類動物において排卵または多排卵を誘導するための、請求項7または8に記載の医薬品。
- メスの哺乳類動物において循環内在性プロゲステロンレベルを上昇させるための、請求項7から9の何れか一項に記載の医薬品。
- メスの哺乳類動物において排卵または多排卵を誘導するための医薬組成物であって、請求項1から5の何れか一項に記載のリガンドおよび/または請求項6に記載の複合体および薬学的に許容可能な担体を含むことを特徴とする前記医薬組成物。
- FSH、LHおよび/またはCGをさらに含むことを特徴とする、請求項11に記載の医薬組成物。
- 哺乳類動物の不妊性または低受胎性の治療および/または予防のための、請求項11または12に記載の医薬組成物。
- メスの哺乳類動物における生殖を刺激するための請求項11から13の何れか一項に記載の医薬組成物。
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