JP6698870B2 - 血液成分選択吸着濾材および血液フィルター - Google Patents
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Description
すなわち、以下の構成により上記課題を達成することができることを見出した。
[2] セルロースアシレートが有するアシル基の置換度が1.00〜2.90の範囲である、[1]に記載の血液成分選択吸着濾材。
[3] セルロースアシレートが有するアシル基の炭素数が4以下である、[1]または[2]に記載の血液成分選択吸着濾材。
[4] セルロースアシレートが有するアシル基が少なくともアセチル基を含む、[1]〜[3]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[5] セルロースアシレートが、血液と接触する部材の表面の少なくとも一部を構成している、[1]〜[4]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[6] 不織布または多孔質膜である、[1]〜[5]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[7] 平均繊維径が1nm以上5μm以下であり、かつ、平均繊維長が1mm以上1m以下である繊維からなる不織布である、[1]〜[5]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[8] 血液成分のうち、血球成分を選択的に吸着する、[1]〜[7]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[9] 血液成分のうち、白血球成分を選択的に吸着する、[1]〜[8]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材。
[10] [1]〜[9]のいずれかに記載の血液成分選択吸着濾材を充填してなる、血液フィルター。
以下に記載する構成要件の説明は、本発明の代表的な実施態様に基づいてなされることがあるが、本発明はそのような実施態様に限定されるものではない。
なお、本明細書において、「〜」を用いて表される数値範囲は、「〜」の前後に記載される数値を下限値および上限値として含む範囲を意味する。
本発明の血液成分選択吸着濾材(以下、単に「本発明の吸着濾材」とも略す。)は、セルロースアシレートを含有する。
また、本発明の吸着濾材は、ガラス転移温度が126℃以上であり、平均貫通孔径が0.1〜50μmであり、かつ、比表面積が1.0〜100m2/gである。
ここで、「セルロースアシレート」とは、セルロースの水酸基、すなわち、β−1,4結合しているグルコース単位の2位、3位および6位に有する遊離の水酸基を構成する水素原子の一部または全部がアシル基で置換されているセルロースエステルをいう。
このような効果を奏する理由は詳細には明らかではないが、本発明者らは以下のように推測している。
すなわち、本発明においては、セルロースアシレートが、直接またはタンパク質を介して血液成分(特に白血球)と吸着することができるため、平均貫通孔径および比表面積の設計の自由度が増し、また、セルロースアシレートを含有することにより、濾材のガラス転移温度が高くなり、滅菌処理などで高温状態に晒されても目詰まりなどの不具合を抑制することができると考えられる。
ここで、「ガラス転移温度」とは、示差走査熱量測定(Differential Scanning Calorimeter:DSC)を用いて昇温速度10℃/分で測定したときに得られるセルロースアシレートのガラス転移に由来する曲線において、低温側のベースラインを高温側に延長した直線と、ガラス転移の階段状変化部分の曲線の変曲点で引いた接線と、の交点の温度として求めることができる。なお、測定は2サイクルで行い、第2サイクルの曲線から上記方法で求める温度をガラス転移温度とする。その際、第1サイクルにおいては、非結晶性の場合にはガラス転移終了時より少なくとも30℃高い温度まで、結晶性の場合には融解ピーク終了時より少なくとも30℃高い温度まで、昇温速度10℃/分で加熱し、それぞれの温度に10分間保った後、ガラス転移温度より約50℃低い温度まで急冷して行う。また、第2サイクルは、第1サイクルに続けて行い、昇温速度10℃/分で加熱して得られた曲線をガラス転移点の算出に用いる。
また、「ガラス転移温度」は、本発明の吸着濾材に含まれるセルロースアシレートの置換度、置換基の種類などにより適宜調整することができる。
ここで、「平均貫通孔径」とは、特開2012−046843号公報の<0093>段落に記載された方法と同様、パームポロメータ(西華産業製 CFE−1200AEX)を用いた細孔径分布測定試験において、GALWICK(Porous Materials,Inc社製)に完全に濡らしたサンプルに対して空気圧を2cc/minで増大させて評価する。具体的には、GALWICKに完全に濡らした膜状サンプルに対して、膜の片側に2cc/minで空気を一定量送り込み、その圧力を測りながら、膜の反対側へ透過してくる空気の流量を測定する。この方法で、まず、GALWICKに濡れた膜状サンプルについて、圧力と透過空気流量とのデータ(以下、「ウェットカーブ」ともいう。)を得る。次いで、濡れていない、乾燥状態の膜状サンプルでも同様のデータ(以下、「ドライカーブ」ともいう。)を測定し、ドライカーブの流量の半分に相当する曲線(ハーフドライカーブ)とウェットカーブとの交点の圧力を求める。その後、GALWICKの表面張力(γ)、濾材との接触角(θ)および空気圧(P)とを下記式(I)に導入し、平均貫通孔径を算出することができる。
平均貫通孔径=4γcosθ/P ・・・(I)
ここで、「比表面積」は、窒素吸着によるBET(Brunauer-Emmett-Teller)法を用いて測定した測定値をいう。
また、「比表面積」は、セルロースアシレートからなる繊維の繊維径、および、繊維表面への凹凸の付与などにより適宜調整することができる。
厚みは、マイクロメータ(ミツトヨ製)を用いて濾材の膜厚を10か所で測定し、各測定値を平均することで求めることができる。
本発明においては、血液成分(特に白血球)の選択的な除去率がより向上する理由から、セルロースアシレートが有するアシル基の置換度が1.00〜2.90の範囲であることが好ましく、2.00〜2.90の範囲であることがより好ましく、2.80〜2.90の範囲であることが更に好ましい。
ここで、「置換度」とは、セルロースの水酸基を構成する水素原子へのアシル基の置換度(以下、「アシル化度」ともいう。)をいい、13C−NMR法により測定したセルロースアシレートの炭素の面積強度比を比較することにより算出することができる。
また、「置換度」は、例えば、セルロースアシレートの合成時に部分加水分解時間を変更する方法、および、不織布や多孔質膜を作製した後にアルカリけん化する方法などにより適宜調整することができる。
また、置換するアシル基は、1種類のみ(例えば、アセチル基のみ)であってもよく、2種以上であってもよい。
なお、以下の説明において、アシル基がアセチル基であるセルロースアシレートを「酢酸セルロース」ともいう。
また、セルロースアシレートの重量平均分子量(Mw)は特に限定されないが、繊維複合体の力学強度の観点から、100000以上であることが好ましく、100000〜500000であることがより好ましく、150000〜300000であることが更に好ましい。
なお、本明細書における重量平均分子量や数平均分子量は、ゲル浸透クロマトグラフィ(GPC)法により以下の条件で測定したものである。
・装置名: HLC−8220GPC(東ソー)
・カラムの種類:TSK gel Super HZ4000およびHZ2000(東ソー)
・溶離液:ジメチルホルムアミド(DMF)
・流量:1ml/分
・検出器:RI
・試料濃度:0.5%
・検量線ベース樹脂:TSK標準ポリスチレン(分子量1050、5970、18100、37900、190000、706000)
上述したセルロースアシレートの合成方法は、発明協会公開技報(公技番号2001−1745、2001年3月15日発行、発明協会)p.7〜12の記載も適用できる。
セルロースの原料としては、例えば、広葉樹パルプ、針葉樹パルプおよび綿花リンターなどに由来する原料が好適に挙げられる。中でも、綿花リンターに由来する原料が、ヘミセルロース量が少なく、繊維径の均一性が向上したナノファイバーを作製できる理由から好ましい。
セルロースの原料は、アシル化に先立って、活性化剤と接触させる処理(活性化)を行うことが好ましい。
活性化剤としては、具体的には、例えば、酢酸、プロピオン酸および酪酸などが挙げられ、中でも、酢酸が好ましい。
活性化剤の添加量は、5%〜10000%であることが好ましく、10%〜2000%であることがより好ましく、30%〜1000%であることが更に好ましい。
添加方法は、噴霧、滴下、浸漬などの方法から選択できる。
活性化時間は、20分〜72時間が好ましく、20分〜12時間がより好ましい。
活性化温度は、0℃〜90℃が好ましく、20℃〜60℃がより好ましい。
さらに活性化剤に硫酸などのアシル化の触媒を0.1〜10質量%加えることもできる。
セルロースとカルボン酸の酸無水物とをブレンステッド酸またはルイス酸(「理化学辞典」第五版(2000年)参照)を触媒として反応させることで、セルロースの水酸基をアシル化することが、均一なセルロースアシレートを合成する上で好ましく、また、分子量の制御も可能である。
セルロースアシレートを得る方法は、例えば、アシル化剤として2種のカルボン酸無水物を混合または逐次添加により反応させる方法;2種のカルボン酸の混合酸無水物(例えば、酢酸とプロピオン酸との混合酸無水物)を用いる方法;カルボン酸と別のカルボン酸の酸無水物(例えば、酢酸とプロピオン酸の酸無水物)を原料として反応系内で混合酸無水物(例えば、酢酸とプロピオン酸との混合酸無水物)を形成させてセルロースと反応させる方法;置換度が3に満たないセルロースアシレートを一旦合成し、酸無水物や酸ハライドを用いて、残存する水酸基を更にアシル化する方法;などが挙げられる。
また、6位置換度の大きいセルロースアシレートの合成については、特開平11−5851号、特開2002−212338号や特開2002−338601号などの公報に記載がある。
カルボン酸の酸無水物としては、炭素数が2〜6のカルボン酸の酸無水物が好ましく、具体的には、無水酢酸、プロピオン酸無水物、酪酸無水物などが好適に挙げられる。
酸無水物は、セルロースの水酸基に対して1.1〜50当量添加することが好ましく、1.2〜30当量添加することがより好ましく、1.5〜10当量添加することが更に好ましい。
アシル化触媒には、ブレンステッド酸またはルイス酸を使用することが好ましく、硫酸または過塩素酸を使用することがより好ましい。
アシル化触媒の添加量は、0.1〜30質量%であることが好ましく、1〜15質量%であることがより好ましく、3〜12質量%であることが更に好ましい。
アシル化溶媒としては、カルボン酸を使用することが好ましく、炭素数2以上7以下のカルボン酸を使用することがより好ましく、具体的には、例えば、酢酸、プロピオン酸および酪酸などを用いることが更に好ましい。これらの溶媒は混合して用いてもよい。
アシル化の反応熱による温度上昇を制御するために、アシル化剤は予め冷却しておくことが好ましい。
アシル化温度は−50℃〜50℃が好ましく、−30℃〜40℃がより好ましく、−20℃〜35℃が更に好ましい。
反応の最低温度は−50℃以上が好ましく、−30℃以上がより好ましく、−20℃以上が更に好ましい。
アシル化時間は0.5時間〜24時間が好ましく、1時間〜12時間がより好ましく、1.5時間〜10時間が更に好ましい。
アシル化時間の制御により、分子量の調整が可能である。
アシル化反応の後に、反応停止剤を加えることが好ましい。
反応停止剤は、酸無水物を分解するものであればよく、具体的には、水、炭素数1〜3のアルコールおよびカルボン酸(例えば、酢酸、プロピオン酸、酪酸等)が挙げられ、中でも水とカルボン酸(酢酸)との混合物が好ましい。
水とカルボン酸との組成は、水が5〜80質量%であることが好ましく、10〜60質量%であることがより好ましく、15〜50質量%であることが更に好ましい。
アシル化反応停止後に中和剤を添加してもよい。
中和剤としては、例えば、アンモニウム、有機4級アンモニウム、アルカリ金属、2族の金属、3−12族金属、または、13−15族元素の、炭酸塩、炭酸水素塩、有機酸塩、水酸化物もしくは酸化物などを挙げることができる。具体的には、ナトリウム、カリウム、マグネシウムまたはカルシウムの、炭酸塩、炭酸水素塩、酢酸塩または水酸化物が好適に挙げられる。
上述したアシル化により得られたセルロースアシレートは、全置換度がほぼ3に近いものであるが、所望の置換度(例えば、2.8程度)に調整する目的で、少量の触媒(例えば、残存する硫酸などのアシル化触媒)と水との存在下で、20〜90℃に数分〜数日間保つことによりエステル結合を部分的に加水分解し、セルロースアシレートのアシル置換度を所望の程度まで減少させることができる。なお、部分加水分解は、残存触媒を上記中和剤を用いて、適宜停止させることができる。
ろ過は、アシル化の完了から再沈殿までの間のいかなる工程において行ってもよい。ろ過に先立って適切な溶媒で希釈することも好ましい。
セルロースアシレート溶液を、水またはカルボン酸(例えば、酢酸、プロピオン酸など)水溶液と混合し、再沈殿させることができる。再沈殿は連続式、バッチ式どちらでもよい。
再沈殿後、洗浄処理することが好ましい。洗浄は水または温水を用い、pH、イオン濃度、電気伝導度、元素分析等で洗浄終了を確認できる。
洗浄後のセルロースアシレートは、安定化のために、弱アルカリ(Na、K、Ca、Mg等の炭酸塩、炭酸水素塩、水酸化物、酸化物)を添加するのが好ましい。
50〜160℃でセルロースアシレートの含水率を2質量%以下にまで乾燥することが好ましい。
ここで、「血液と接触する部材の表面」とは、本発明の吸着濾材と血液とが接触する部分の表面を言い、例えば、本発明の吸着濾材が不織布である場合には、不織布を構成する繊維の表面をいい、本発明の吸着濾材が多孔質膜である場合には、多孔質膜の表面および内部空隙の壁面をいう。
また、不織布としては、平均繊維径が1nm以上5μm以下であり、かつ、平均繊維長が1mm以上1m以下である繊維からなる不織布であることが好ましく、平均繊維径が100nm以上1000nm未満であり、かつ、平均繊維長が1.5mm以上1m以下であるナノファイバーからなる不織布であることがより好ましく、平均繊維径が100nm以上800nm以下であり、かつ、平均繊維長が2.0mm以上1m以下であるナノファイバーからなる不織布であることが更に好ましい。
なお、平均繊維径および平均繊維長は、不織布を作製する際のセルロースアシレート溶液の濃度を調節することで調整することができる。
繊維からなる不織布の表面を、透過型電子顕微鏡(Transmission Electron Microscope:TEM)像、または、走査型電子顕微鏡(Scanning Electron Microscope:SEM)像を観察する。
構成する繊維の大きさに応じて1000〜5000倍から選択される倍率で電子顕微鏡画像による観察を行う。ただし、試料、観察条件や倍率は下記の条件を満たすように調整する。
(1)観察画像内の任意箇所に一本の直線Xを引き、この直線Xに対し、20本以上の繊維が交差する。
(2)同じ画像内で直線Xと垂直に交差する直線Yを引き、直線Yに対し、20本以上の繊維が交差する。
上記のような電子顕微鏡観察画像に対して、直線Xに交錯する繊維、直線Yに交錯する繊維の各々について少なくとも20本(すなわち、合計が少なくとも40本)の幅(繊維の短径)を読み取る。こうして上記のような電子顕微鏡画像を少なくとも3組以上観察し、少なくとも40本×3組(すなわち、少なくとも120本)の繊維径を読み取る。
このように読み取った繊維径を平均して平均繊維径を求める。
すなわち、繊維の繊維長は、上述した平均繊維径を測定する際に使用した電子顕微鏡観察画像を解析することにより求めることができる。
具体的には、上記のような電子顕微鏡観察画像に対して、直線Xに交錯する繊維、直線Yに交錯する繊維の各々について少なくとも20本(すなわち、合計が少なくとも40本)の繊維長を読み取る。
こうして上記のような電子顕微鏡画像を少なくとも3組以上観察し、少なくとも40本×3組(すなわち、少なくとも120本)の繊維長を読み取る。
このように読み取った繊維長を平均して平均繊維長を求める。
本発明においては、ナノファイバーの作製方法は特に限定されないが、電界紡糸法(以下、「エレクトロスピニング法」ともいう。)を利用して作製する方法が好ましく、例えば、上述したセルロースアシレートが溶媒に溶解している溶液を、5℃以上40℃以下の範囲内の一定温度としてノズルの先端から出し、溶液とコレクタとの間に電圧をかけて、溶液からコレクタにファイバを噴出することで作製することができる。具体的には、特開2016−053232号公報の<0014>〜<0044>段落ならびに図1および図2に示す方法などにより作製することができる。
また、不織布の作製方法も限定されず、例えば、特開2016−053232号公報の図1に示すナノファイバー製造装置110により、不織布120を製造することができる。
一方、多孔質膜の作製方法も限定されず、例えば、セルロースアシレートと、セルロースアシレートが溶解する良溶媒と、セルロースアシレートが溶解せず、かつ、セルロースアシレートが溶解する溶媒と相分離しやすい貧溶媒とを含む塗布液を用いることにより、塗布後の乾燥時に、溶解したセルロースアシレートが析出すると同時に貧溶媒が相分離し、この貧溶媒が揮発してなくなることで、空孔が形成された多孔質膜を形成することができる。
本発明の血液成分選択吸着濾材の製造工程において、ナノファイバー製造装置を用いた不織布を製造する工程中、または、不織布を製造する工程の後に、繊維同士を接着するために加熱融着工程や接着剤処理工程を含んでもよい。
本発明の血液フィルターは、上述した本発明の血液成分選択吸着濾材を充填してなる、血液フィルターである。
このような血液フィルターとしては、例えば、血液成分選択吸着濾材が不織布の形態である場合は、不織布を平膜状でハウジングにセットしたモジュールや、不織布を筒状とした濾材をハウジングにセットしたスパイラル型のモジュールなどが挙げられる。
<酢酸セルロースの合成>
セルロース(原料:綿花リンター)に、酢酸および硫酸を混合し、反応温度を40℃以下に保ちながらアセチル化した。
原料となるセルロースが消失してアセチル化が完了した後、さらに40℃以下で加熱を続けて、所望の重合度に調整した。
次いで、酢酸水溶液を添加して残存する酸無水物を加水分解した後、60℃以下で加熱を行うことで部分加水分解を行い、下記表1に示す置換度に調整した。
残存する硫酸を過剰量の酢酸マグネシウムにより中和した。酢酸水溶液から再沈殿を行い、さらに、水での洗浄を繰り返すことにより、酢酸セルロースを合成した。
合成した酢酸セルロースを、ジクロロメタン88%およびメタノール12%の混合溶媒に溶解させ、3.5g/100cm3の酢酸セルロース溶液を調製し、複数のノズルを有するナノファイバー製造装置を用いて、20×30cmの酢酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
不織布を作製する際に、ナノファイバー製造装置における一部のノズルにおいて、酢酸セルロース溶液に代えてポリビニルアルコール(PVA)水溶液を用いて紡糸し、紡糸後に水に浸漬してPVAを除去した以外は、実施例1と同様の方法で、酢酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
下記表1に示す置換度に調整した以外は、実施例1と同様の方法で、酢酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
アシル基をアセチル基からプロピオニル基に変更し、下記表1に示す置換度に調整した以外は、実施例1と同様の方法で、プロピオン酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
アシル基をアセチル基からブチリル基に変更し、下記表1に示す置換度に調整した以外は、実施例1と同様の方法で、ブタン酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
酢酸セルロースに代えて、下記表1に示す置換度のカルボキシメチルセルロースを用いた以外は、実施例1と同様の方法で、カルボキシメチルセルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
酢酸セルロースに代えて下記表1に示す置換度のエチルセルロースを用い、混合溶媒に代えてメチルエチルケトンを用いた以外は、実施例1と同様の方法で、エチルセルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
下記表1に示す置換度に調整した以外は、実施例1と同様の方法で、酢酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
実施例1と同様の方法でナノファイバー不織布を作製した後、0.5N水酸化ナトリウム水溶液に5%のエタノールを加え、48時間浸漬した。
浸漬後、純水中に浸漬し、次いで洗浄し、乾燥して、脱アシル化セルロースからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。なお、同様の条件で脱アシル化した酢酸セルロースの置換度は0.00であるため、下記表1中、比較例5の置換度は、無置換であるため「0.00」と表記している。
<ドープの調製>
以下に示す組成のドープを調製した。
具体的には、酢酸セルロースをジメチルクロライドに溶解し、この溶液にメタノールを少量ずつ添加した。次いで、この溶液にグリセリンと純水とを少量ずつ添加して未溶解物が殆どない状態の溶液とし、濾紙で濾過することにより、ドープを調製した。
(ドープ組成)
・酢酸セルロース(酢化度60.8%)・・・5質量部
・グリセリン・・・0.2質量部
・ジメチルクロライド・・・55質量部
・メタノール・・・34質量部
・純水・・・6質量部
調製したドープをギヤ−ポンプで送液し、さらに、ろ過を行ってから、エンドレスバンド上に載せて搬送されるポリエチレンテレフタレート(PET)フィルム上にダイから流延した。
この流延膜を20〜40℃の乾燥風により20分間乾燥した。
エンドレスバンドから、フィルムをPETとともに剥ぎ取り、これを15分間、80〜120℃で熱風乾燥して巻き取り機で巻き取った。なお、PET上の酢酸セルロースには、多数の微細孔が形成されていた。
剥離バーを用いて、酢酸セルロース微細多孔質膜をPETから分離し、血液成分選択吸着濾材とした。
不織布を作製する際に、ナノファイバー製造装置における一部のノズルにおいて、酢酸セルロース溶液に代えてポリビニルアルコール(PVA)水溶液を用いて紡糸し、紡糸後に水に浸漬してPVAを除去した以外は、実施例1と同様の方法で、酢酸セルロースナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
不織布の厚みを5倍とし、作製後の不織布を膜厚方向に1MPaの圧力で圧縮処理を施した以外は、実施例1と同様の方法で、血液成分選択吸着濾材を得た。
ポリアクリロニトリルを、N,N−ジメチルホルムアミド(DMF)に溶解させ、3.5g/100cm3のポリアクリロニトリルを調製し、複数のノズルを有するナノファイバー製造装置を用いて、20×30cmのポリアクリロニトリルナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
不織布を作製する際に、ナノファイバー製造装置における一部のノズルにおいて、酢酸セルロース溶液に代えてポリビニルアルコール(PVA)水溶液を用いて紡糸し、紡糸後に水に浸漬してPVAを除去した以外は、実施例8と同様の方法で、ポリアクリロニトリルナノファイバーからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
ポリウレタン14質量%、メチルセルロース14質量%、塩化カルシウム2水和物1.4質量%となるようにNMPに溶解させた。
次いで、この溶液をPETフィルム上に塗布し、50℃で50質量%NMP水溶液中に浸漬して凝固させた。
次いで、純水で洗浄し、55℃オーブン中で乾燥してポリウレタン多孔質膜を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
ポリプロピレンを、デカリンとアセトンとDMFとの質量比が8:1:1となる混合溶媒に12.5質量%となるように溶解させ、複数のノズルを有するナノファイバー製造装置を用いて、20×30cmのポリプロピレンからなる不織布を作製し、血液成分選択吸着濾材とした。
特開平5−87808号公報に記載された方法を参考に、酢酸セルロースペレットを射出成型で3.2mmφビーズを形成後、メタノール中で50℃1時間抽出操作を5回行い、15時間風乾してさらに80℃で5時間乾燥させることで、血液成分選択吸着濾材を得た。
セルロースアセテートプロピオネート(Eastman Chemical 社製、CAP-482-20)を、ジクロロメタン88%およびメタノール12%の混合溶媒に溶解させ、7.5g/100cm3のセルロースアセテートプロピオネート溶液を調製した。複数のノズルを有するナノファイバー製造装置を用いて、20×30cmのセルロースアセテートプロピオネートファイバーからなる不織布を作製した。
続いて、作製した不織布を定温乾燥機中で、200℃で5分間処理後に取り出し、血液成分選択吸着濾材とした。
セルロースアセテートブチレート(Eastman Chemical 社製、CAB-381-20)を、ジクロロメタン88%およびメタノール12%の混合溶媒に溶解させ、7.5g/100cm3のセルロースアセテートブチレート溶液を調製した。複数のノズルを有するナノファイバー製造装置を用いて、20×30cmのセルロースアセテートブチレートファイバーからなる不織布を作製した。
続いて、作製した不織布を定温乾燥機中で、180℃で5分間処理後に取り出し、血液成分選択吸着濾材とした。
実施例13のナノファイバー製造装置における一部のノズルに供給する溶液を、セルロースアセテートプロピオネート溶液に代えて、ジクロロメタン88%およびメタノール12%の混合溶媒に実施例1の酢酸セルロースを溶解させて5.8g/100cm3とした溶液に変更して紡糸し、酢酸セルロースファイバーとセルロースアセテートプロピオネートファイバーからなる不織布を作製した。それぞれの溶液を供給したノズルの本数比は酢酸セルロース溶液:セルロースアセテートプロピオネート溶液=2:1とした。
続いて、作製した不織布を定温乾燥機中で、230℃で5分間処理後に取り出し、血液成分選択吸着濾材とした。
なお、下記表1中、アルファベット表記で示す材質は、それぞれ以下に示す通りの材質である。
CA:酢酸セルロース
CP:プロピオン酸セルロース
CB:酪酸セルロース
CMC:カルボキシメチルセルロース
EC:エチルセルロース
PU:ポリウレタン
PAN:ポリアクリロニトリル
PP:ポリプロピレン
CAP:セルロースアセテートプロピオネート
CAB:セルロースアセテートブチレート
作製した血液成分選択吸着濾材について、以下に示す評価を行う前に、高圧蒸気滅菌器を用いて、134℃、30分の条件で高圧蒸気滅菌処理を行った。
シリンジのフランジ部を上にして立て、底部に濾材をセットした。
次いで、ヒトの全血を1.5ml滴下し、一定圧力を加えて濾過し、シリンジ下部から採取し、血液分析により濾材透過前後の白血球数を求め、下記式から白血球除去率を算出した。結果を下記表1に示す。
白血球除去率=〔1−(濾材透過後白血球数/濾材透過前白血球数)〕×100%
シリンジのフランジ部を上にして立て、底部に濾材をセットした。
次いで、ヒトの全血を1.5ml滴下し、一定圧力を加えて濾過した後、さらに20ml濾過した。
次いで、再び1.5mLを濾過した際の濾過速度を測定し、最初の1.5ml濾過速度と比較して、以下に示す3段階で評価した。結果を下記表1に示す。
1: 最初の速度の1倍以上1.2倍未満
2: 最初の速度の1.2倍以上2倍未満
3: 最初の速度の2倍以上
また、比表面積が1.0m2/gより小さい不織布を血液成分選択吸着濾材として用いた場合は、白血球の除去率が劣ることが分かった(比較例2)。
また、セルロースアシレートに相当しないセルロース系材料を含有する不織布を血液成分選択吸着濾材として用いた場合は、白血球の除去率が劣ることが分かった(比較例3〜5)。
また、平均貫通孔径が0.1〜50μmの範囲外となる不織布を血液成分選択吸着濾材として用いた場合は、白血球の除去率が劣るか、目詰まりを起こすことが分かった(比較例6および7)。
また、セルロース系の材料以外の材料を含有する不織布を血液成分選択吸着濾材として用いた場合は、白血球の除去率が劣るか、目詰まりを起こすことが分かった(比較例8〜11)。これは、高圧蒸気滅菌処理により、濾材が変形されたことが主な原因として考えられる。
また、貫通孔を有さず、比表面積が1.0m2/g未満のビーズを用いた濾材は、白血球の除去率が劣ることが分かった(比較例12)。
Claims (10)
- セルロースアシレートを含有し、
ガラス転移温度が126℃以上であり、平均貫通孔径が0.1〜50μmであり、かつ、比表面積が1.0〜100m2/gである、血液成分選択吸着濾材。 - 前記セルロースアシレートが有するアシル基の置換度が1.00〜2.90の範囲である、請求項1に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 前記セルロースアシレートが有するアシル基の炭素数が4以下である、請求項1または2に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 前記セルロースアシレートが有するアシル基が少なくともアセチル基を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 前記セルロースアシレートが、血液と接触する部材の表面の少なくとも一部を構成している、請求項1〜4のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 不織布または多孔質膜である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 平均繊維径が1nm以上5μm以下であり、かつ、平均繊維長が1mm以上1m以下である繊維からなる不織布である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 血液成分のうち、血球成分を選択的に吸着する、請求項1〜7のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 血液成分のうち、白血球成分を選択的に吸着する、請求項1〜8のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材。
- 請求項1〜9のいずれか1項に記載の血液成分選択吸着濾材を充填してなる、血液フィルター。
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