JP6460106B2 - 酸化酵素、それをコードするポリヌクレオチド、及びそれらの利用 - Google Patents
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Description
項1.下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードするポリヌクレオチド(以下、本発明ポリヌクレオチド(A)と記すこともある。);
項2.前記アミノ酸配列をコードする塩基配列のコドン使用頻度を大腸菌のコドン使用頻度に合わせるように選択されたコドンを含む改変された(altered)塩基配列を有する前項1記載のポリヌクレオチド;
項3.宿主細胞内において機能可能なプロモーターと前項1または2記載のポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
項4.前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター(以下、本発明組換えベクター(A)と記すこともある。);
項5.前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド又は前項4記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体;
項6.宿主細胞が微生物または大腸菌である前項5記載の形質転換体;
項7.前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを保有する形質転換体;
項8.宿主細胞内で複製可能なベクターに、前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを組込む工程を含む組換えベクターの製造方法;
項9.前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは前項4記載の組換えベクターを宿主細胞に導入する工程を含む形質転換体の製造方法;
項10.下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードするポリヌクレオチド(以下、本発明ポリヌクレオチド(B)と記すこともある。);
項11.宿主細胞内において機能可能なプロモーターと前項10記載のポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
項12.前項10または11記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター(以下、本発明組換えベクター(B)と記すこともある。);
項13.前項10または11記載のポリヌクレオチド又は前項12記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体;
項14.宿主細胞が微生物または大腸菌である前項13記載の形質転換体;
項15.前項10または11記載のポリヌクレオチドを保有する形質転換体;
項16.宿主細胞内で複製可能なベクターに、前項10または11記載のポリヌクレオチドを組込む工程を含む組換えベクターの製造方法;
項17.前項10または11記載のポリヌクレオチドまたは前項12記載の組換えベクターを宿主細胞に導入する工程を含む形質転換体の製造方法;
項18.前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドと前項10または11記載のポリヌクレオチドとを含有する組換えベクター(以下、本発明組換えベクター(AB)と記すこともある。);
項19.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドをさらに含む前項18記載の組換えベクター(以下、本発明組換えベクター(ABC)と記すこともある。);
項20.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質がロイシン脱水素酵素である前項19記載の組換えベクター;
項21.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列が、下記(C1)から(C3)のいずれかのアミノ酸配列:
(C1)配列番号7で示されるアミノ酸配列、
(C2)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列に対して90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(C3)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列;
である前項19または20記載の組換えベクター;
項22.前項18から21のいずれか一項に記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体;
項23.宿主細胞が微生物または大腸菌である前項22記載の形質転換体;
項24.i)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有するポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド、
ii)前項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、及び
iii)前項10または11記載のポリヌクレオチド;
を保有する形質転換体;
項25.下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質(以下、本発明タンパク質(A)と記すこともある。);
項26.下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質(以下、本発明タンパク質(B)と記すこともある。);
項27.(1)下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質と、
下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質とのいずれか又は両者を、
α−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させて、対応するα−オキソカルボン酸化合物を得る工程、及び
(2)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質を、工程(1)で得られたα−オキソカルボン酸化合物に作用させて、対応するL−α−アミノ酸化合物を得る工程、
を含むL−α−アミノ酸化合物の製造方法(以下、本発明製造方法と記すこともある。);
項28.α−ヒドロキシカルボン酸化合物が含硫α−ヒドロキシカルボン酸化合物であり、対応するα−オキソカルボン酸化合物が含硫α−オキソカルボン酸化合物であり、対応するL−α−アミノ酸化合物が含硫L−α−アミノ酸化合物であり、工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力を少なくとも有するタンパク質である前項27記載の製造方法;
項29.含硫α−ヒドロキシカルボン酸化合物が式(1):
式中、R1は水素又は置換されていてもよい炭素数1−8のアルキル基を表す;
で示される化合物であり、含硫α−オキソカルボン酸化合物が、式(2):
式中、R1は前記と同じ意味を表す;
で示される化合物であり、含硫L−α−アミノ酸化合物が、式(3):
式中、R1は前記と同じ意味を表す;
で示される化合物である、前項28記載の製造方法;
項30.α−ヒドロキシカルボン酸化合物がα−ヒドロキシ−イソカプロン酸であり、対応するα−オキソカルボン酸化合物がα−オキソ−イソカプロン酸であり、対応するL−α−アミノ酸化合物がL−ロイシンであり、工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力を少なくとも有するタンパク質である前項27記載の製造方法;
項31.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質がロイシン脱水素酵素である前項27から30のいずれか一項に記載の製造方法;
項32.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列が、下記(C1)から(C3)のいずれかのアミノ酸配列:
(C1)配列番号7で示されるアミノ酸配列、
(C2)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列に対して90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(C3)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列;
である前項27から31のいずれか一項に記載の製造方法;
項33.工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される前項27から32のいずれか一項に記載の製造方法;
項34.前記形質転換体が、前項5、6、7、13、14、15、22、23または24のいずれか一項に記載の形質転換体である前項33記載の製造方法;
項35.α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される前項27から34のいずれか一項に記載の製造方法;
項36.前記形質転換体が、前項22、23または24のいずれか一項に記載の形質転換体である前項35記載の製造方法;
項37.工程(1)が、還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質の存在下で行われる前項27から36のいずれか一項に記載の製造方法;
項38.還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質がα−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力をさらに有するタンパク質である前項37記載の製造方法;
項39.還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される前項37または38記載の製造方法;
項40.工程(2)が、酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質の存在下で行われる前項27から39のいずれか一項に記載の製造方法;
項41.酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質がα−ヒドロキシカルボン酸化合物を酸化して対応するα−オキソカルボン酸化合物に変換する能力をさらに有するタンパク質である前項40に記載の製造方法;
項42.酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される前項40または41記載の製造方法;及び
項43.工程(1)と工程(2)とが一つの反応系で行われる前項27から42のいずれか一項に記載の製造方法;
等を提供するものである。
アミノ酸の改変を人為的に行う手法としては、例えば、改変しようとするアミノ酸を含むアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドに対してランダムに変異導入を施し、その後このポリヌクレオチドを常法により発現させる手法も挙げられる。ここでランダムに変異を導入する手法としては、例えば、上記のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを鋳型とし、当該ポリヌクレオチドの全長を増幅できるようなプライマー対を用い、基質に用いるdATP、dTTP、dGTP、dCTPの各々の添加濃度を通常とは変化させた反応条件や、或いはポリメラーゼの反応を促進させるMg2+の濃度を通常よりも増加させた反応条件でPCRを行う方法等が挙げられる。このようなPCRの手法としては、例えば、Method in Molecular Biology, (31), 1994, 97-112 に記載される方法があげられる。
このような微生物を入手できる菌株保存機関として、例えば、下記の菌株保存機関を挙げることができる。
1.IFO(Institute of Fermentation Osaka:財団法人醗酵研究所)コレクション
現在は、独立行政法人 製品評価技術基盤機構 生物遺伝資源部門(NBRC)に移管されている。微生物の入手に際してはNBRCに購入を申し込めばよく、購入申込には例えばNBRCのホームページにアクセスすればよい。
2.ATCC(American Type Culture Collection)
住商ファーマインターナショナル株式会社 ATCC事業グループを通じて入手可能であり、微生物の購入に際しては、例えば当該グループのホームページにアクセスすればよい。ATCCから微生物を直接購入してもよい。
3.JCM(理化学研究所微生物系統保存施設 (Japan Collection of Microorganisms, JCM)
現在は、独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンター (RIKEN BRC) 微生物材料開発室に移管されている。微生物の入手に際しては当該機関に購入を申し込めばよく、例えば当該機関のホームページのカルチャーコレクションに関するサイトにアクセスすればよい。
4.IAMカルチャーコレクション
現在は、IAMカルチャーコレクション保存菌株のうち、細菌、酵母、糸状菌については独立行政法人 理化学研究所バイオリソースセンター微生物材料開発室(JCM)に、微細藻類については独立行政法人 国立環境研究所微生物系統保存施設(NIES)に移管されている。微生物の入手に際してはこれらの機関に購入を申し込めばよく、例えばこれらの機関のホームページのカルチャーコレクションに関するサイトにアクセスすればよい。
使用されるライブラリーがプラスミドベクターを用いて作製されている場合にはコロニーハイブリダイゼーションを利用するとよい。具体的には、ライブラリーのDNAを宿主微生物に導入することにより形質転換体を取得し、得られた形質転換体を希釈した後、該希釈物を寒天培地上にまき、コロニーが現われるまで培養する。
使用されるライブラリーがファージベクターを用いて作製されている場合にはプラークハイブリダイゼーションを利用するとよい。具体的には、宿主微生物とライブラリーのファージとを感染可能な条件下で混合し、さらに軟寒天培地と混合した後、該混合物を寒天培地上にまき、プラークが現われるまで培養する。
このように調製されたメンブレンを用いて、プローブのハイブリダイゼーションを行う。ハイブリダイゼーションは、例えば、J.Sambrook, E.F.Frisch, T.Maniatis著「Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2nd edition(1989)」 Cold Spring Harbor Laboratory Press等の記載に準じて行うことができる。
プローブに用いるDNAは、放射性同位元素により標識されたものや、蛍光色素で標識されたものであってもよい。
プローブに用いるDNAを放射性同位元素により標識する方法としては、例えば、Random Primer DNA Labeling Kit(タカラバイオ社製)等を利用することにより、PCR反応液中のdCTPを(α−32P)dCTPに替えて、プローブに用いるDNAを鋳型にしてPCRを行う方法が挙げられる。
プローブに用いるDNAを蛍光色素で標識する場合には、例えば、ECL Direct Nucleic Acid Labeling and Detection System(GEヘルスケア社製)等を用いることができる。
ハイブリダイゼーションは、例えば、以下の通りに行うことができる。
450から900mMの塩化ナトリウム及び45から90mMのクエン酸ナトリウムを含みドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を0.1から1.0重量%の濃度で含み、変性した非特異的DNAを0から200μl/mlの濃度で含み、場合によってはアルブミン、フィコール、ポリビニルピロリドン等をそれぞれ0から0.2重量%の濃度で含んでいてもよいプレハイブリダイゼーション液(好ましくは900mMの塩化ナトリウム、90mMのクエン酸ナトリウム、1.0重量%のSDS及び100μl/mlの変性Calf-thymusDNAを含むプレハイブリダイゼーション液)を上記のようにして作製したメンブレン1cm2当たり50から200μlの割合で準備し、該プレハイブリダイゼーション液に前記メンブレンを浸して42から65℃で1から4時間保温する。
次いで、例えば、450から900mMの塩化ナトリウム及び45から90mMのクエン酸ナトリウムを含み、SDSを0.1から1.0重量%の濃度で含み、変性した非特異的DNAを0から200μg/mlの濃度で含み、場合によってはアルブミン、フィコール、ポロビニルピロリドン等をそれぞれ0から0.2重量%の濃度で含んでいてもよいハイブリダイゼーション溶液(好ましくは、900mMの塩化ナトリウム、90mMのクエン酸ナトリウム、1.0重量%のSDS及び100μg/mlの変性Calf-thymusDNAを含むハイブリダイゼーション溶液)と前述の方法で調製して得られたプローブ(メンブレン1cm2当たり1.0×104から2.0×106cpm相当量)とを混合した溶液をメンブレン1cm2当たり50から200μlの割合で準備し、該ハイブリダイゼーション溶液に浸し42から65℃で12から20時間保温する。
該ハイブリダイゼーション後、メンブレンを取り出し、15から300mMの塩化ナトリウム1.5から30mMクエン酸ナトリウム及び0.1から1.0重量%のSDS等を含む42から65℃の洗浄液(好ましくは15mMの塩化ナトリウム、1.5mMのクエン酸ナトリウム及び1.0重量%のSDSを含む65℃の洗浄液)等を用いて洗浄する。洗浄したメンブレンを2xSSC(300mM塩化ナトリウム、30mMクエン酸ナトリウム)で軽くすすいだ後、乾燥する。このメンブレンを例えばオートラジオグラフィー等に供してメンブレン上のプローブの位置を検出することにより、用いたプローブとハイブリダイズするDNAのメンブレン上の位置に相当するクローンを元の寒天培地上で特定し、これを釣菌することにより、当該DNAを有するクローンを単離する。
このようにして得られるクローンを培養して得られる培養菌体から、目的とするポリヌクレオチドを調製することができる。
ここで、「機能可能な形で接続されてなる」とは、目的とするポリヌクレオチドを宿主細胞に導入することにより宿主細胞を形質転換させた際に、当該ポリヌクレオチドが、プロモーターの制御下に発現するようにプロモーターと結合された状態にあることを意味する。
宿主細胞としては、例えば、Escherichia属、Bacillus属、Corynebacterium属、Staphylococcus属、Streptomyces属、Saccharomyces属、Kluyveromyces属、Pichia属、Rhodococcus属及びAspergillus属に属する微生物等があげられる。
ポリヌクレオチド又は組換えベクターを宿主細胞へ導入する方法としては、用いられる宿主細胞に応じて通常使われる導入方法を適用することができ、例えば、「Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2nd edition」(1989), Cold Spring Harbor Laboratory Press、「Current Protocols in Molecular Biology」(1987), John Wiley & Sons, Inc. ISBNO-471-50338-X等に記載される塩化カルシウム法や、「Methods in Electroporation:Gene Pulser /E.coli Pulser System」 Bio-Rad Laboratories, (1993)等に記載されるエレクトロポレーション法等をあげることができる。
得られた形質転換体が目的とするポリヌクレオチドを保有していることは、例えば、「Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2nd edition」(1989), Cold Spring Harbor Laboratory Press等に記載される通常の方法に準じて、制限酵素部位の確認、塩基配列の解析、サザンハイブリダイゼーション、ウエスタンハイブリダイゼーション等を行うことにより、確認することができる。
炭素源としては、例えば、グルコース、デキストリン、シュークロース等の糖類、グリセロール等の糖アルコール、フマル酸、クエン酸、ピルビン酸等の有機酸、動物油、植物油及び糖蜜が挙げられる。これらの炭素源の培地への添加量は培養液に対して通常0.1から30%(w/v)程度である。
窒素源としては、例えば、肉エキス、ペプトン、酵母エキス、麦芽エキス、大豆粉、コーン・スティープ・リカー(Corn Steep Liquor)、綿実粉、乾燥酵母、カザミノ酸等の天然有機窒素源、アミノ酸類、硝酸ナトリウム等の無機酸のナトリウム塩、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸のアンモニウム塩、フマル酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の有機酸のアンモニウム塩及び尿素が挙げられる。これらのうち有機酸のアンモニウム塩、天然有機窒素源、アミノ酸類等は多くの場合には炭素源としても使用することができる。これらの窒素源の培地への添加量は培養液に対して通常0.1から30%(w/v)程度である。
有機塩や無機塩としては、例えば、カリウム、ナトリウム、マグネシウム、鉄、マンガン、コバルト、亜鉛等の塩化物、硫酸塩、酢酸塩、炭酸塩及びリン酸塩を挙げることができる。具体的には、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、塩化コバルト、硫酸亜鉛、硫酸銅、酢酸ナトリウム、炭酸カルシウム、リン酸水素一カリウム及びリン酸水素二カリウムが挙げられる。これらの有機塩及び/又は無機塩の培地への添加量は培養液に対して通常0.0001から5%(w/v)程度である。
tacプロモーター、trcプロモーター、T7lacプロモーター及びlacプロモーター等のアロラクトースで誘導されるタイプのプロモーターと、目的とするタンパク質をコードするポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドが導入されてなる形質転換体の場合には、目的とするタンパク質の生産を誘導するための誘導剤として、例えば、isopropyl thio-β-D-galactoside(IPTG)を培地中に少量加えることもできる。lacUV5プロモーターの支配下にT7 RNAポリメラーゼ遺伝子が組み込まれたバクテリオファージDE3の溶原菌(λDE3 lysogen)に、T7ファージプロモーターと目的とするタンパク質をコードするポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドが導入されてなる形質転換体を培養する場合にも、目的とするタンパク質の生産を誘導するための誘導剤として、IPTGを培地に少量加えてもよい。
培養温度は、該形質転換体が生育可能な範囲で適宜変更できるが、通常約15℃から約40℃である。培地のpHは約6から約8の範囲が好ましい。培養時間は、培養条件によって異なるが通常約1日間から約5日間が好ましい。
形質転換体の培養物から遠心分離等により細胞を集めた後、これを超音波処理、ダイノミル処理、フレンチプレス処理等の物理的破砕法又は界面活性剤若しくはリゾチーム等の溶菌酵素を用いる化学的破砕法等によって破砕する。得られた破砕液から遠心分離、メンブレンフィルター濾過等により不純物を除去することにより無細胞抽出液を調製し、これを陽イオン交換クロマトグラフィー、陰イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、金属キレートクロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等の分離精製方法を適宜用いて分画することによって、目的とするタンパク質を精製することができる。
クロマトグラフィーに使用される担体としては、例えば、カルボキシメチル(CM)基、ジエチルアミノエチル(DEAE)基、フェニル基若しくはブチル基を導入したセルロース、デキストリン又はアガロース等の不溶性高分子担体が挙げられる。市販の担体充填済カラムを用いることもでき、かかる市販の担体充填済カラムとしては、例えば、Q-Sepharose FF、Phenyl-Sepharose HP(商品名、いずれもGEヘルスケア社製)、TSK−gel G3000SW(商品名、東ソー社製)等が挙げられる。
目的とするタンパク質が、そのアミノ末端又はカルボキシ末端領域に、連続する数残基のヒスチジンが付加されたタンパク質である場合は、金属キレートアフィニティカラムを用いて、当該タンパク質を精製することができる。目的とするタンパク質がグルタチオンSトランスフェラーゼと融合されたタンパク質として産生される場合は、グルタチオンSトランスフェラーゼモノクローナル抗体カラムを用いてこれを精製することができる。
形質転換体を用いた工業的な生産を考慮すれば、生きた形質転換体を用いるよりも該形質転換体を死滅化させた処理物を用いる方が、製造設備の制限が少ないという点では好ましい。形質転換体の死滅化処理方法としては、例えば、物理的殺菌法(加熱、乾燥、冷凍、光線、超音波、濾過、通電)や、化学薬品を用いる殺菌法(アルカリ、酸、ハロゲン、酸化剤、硫黄、ホウ素、砒素、金属、アルコール、フェノール、アミン、サルファイド、エーテル、アルデヒド、ケトン、シアン及び抗生物質)が挙げられる。一般的には、これらの殺菌法のうちできるだけ目的とするタンパク質の酵素活性を失活させず、かつ反応系への残留や汚染などの影響が少ない処理方法を選択することが望ましい。
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードする。
本発明タンパク質(A)は、上記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列を有する。
改変されるアミノ酸の数は、改変が生じた上記アミノ酸配列を有するタンパク質が、改変前のタンパク質と同様の能力、即ち2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力とα−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を発揮することのできる範囲内の数であれば良い。
本発明ポリヌクレオチド(A)がコードするアミノ酸配列の(A3)または本発明タンパク質(A)のアミノ酸配列の(A3)における「複数のアミノ酸」としては、例えば、2、3、4、5、6、7、10、15、20、25、30、35、40、45もしくは48個のアミノ酸が挙げられる。
アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、pK、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン;(2)バリン、イソロイシン、ロイシン;(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン;(5)リジン、アルギニン;(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
アミノ酸の付加としては、例えば、タンパク質のアミノ酸配列のアミノ末端又はカルボキシ末端への、連続する6残基程度のヒスチジンを含む7残基程度から25残基程度のアミノ酸の付加を挙げることができる。より具体的には、タンパク質のアミノ酸配列のアミノ末端への、配列番号44で示されるアミノ酸配列の付加や、タンパク質のアミノ酸配列のカルボキシ末端への、配列番号45で示されるアミノ酸配列の付加を挙げることができる。
上記のポリヌクレオチドとしては、具体的には、配列番号4または13で示される塩基配列を有するポリヌクレオチド、配列番号4または13で示される塩基配列において、その一部の塩基が欠失、置換もしくは付加された塩基配列を有するポリヌクレオチド、または、配列番号4または13で示される塩基配列と90%、95%、98%又は99%以上の配列同一性を有する塩基配列を有するポリヌクレオチドがあげられる。
(A5-1)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列V109Iと記すこともある。);
(A5-2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列G191Dと記すこともある。);
(A5-3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列Q246Rと記すこともある。);
(A5-4)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換及び191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列V109I/G191Dと記すこともある。);
(A5-5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列V109I/Q246Rと記すこともある。);
(A5-6)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列G191D/Q246Rと記すこともある。);及び
(A5-7)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列(以下、改変アミノ酸配列V109I/G191D/Q246Rと記すこともある。)。
改変アミノ酸配列V109I/G191D/Q246Rの具体例としては、配列番号5で示されるアミノ酸配列を挙げることができる。配列番号5で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、配列番号6で示される塩基配列を挙げることができる。
例えば、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)等のアクロモバクター属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法(例えば、「新 細胞工学実験プロトコール」(東京大学医科学研究所制癌研究部編、秀潤社、1993年)に記載された方法)に準じてDNAライブラリーを調製し、調製されたDNAライブラリーを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてPCRを行うことにより、配列番号3で示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、配列番号3で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、又は配列番号4で示される塩基配列を有するポリヌクレオチド等を増幅して本発明ポリヌクレオチド(A)を調製することができる。
上記のPCRに用いられるプライマーの5’末端側又は3’末端側又はその両方には、制限酵素認識配列等が付加されていてもよい。
上記のPCRの条件としては、例えば、4種類のdNTPを各々20μM、2種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々15pmol、Taqpolymeraseを1.3U及び鋳型となるDNAライブラリーを混合した反応液を94℃で2分間保温した後、94℃で10秒間次いで65℃で30秒間次いで72℃で90秒間の保温サイクルを10回行い、次いで、94℃で10秒間次いで65℃で30秒間次いで72℃で1分と5秒間の保温サイクルを20回行い、さらに72℃で7分間保持する条件が挙げられる。
具体的には例えば、発現させる微生物細胞(例えば、大腸菌)におけるコドン使用頻度に近いコドン使用頻度となるように、配列番号3で示されるアミノ酸配列に含まれる各々のアミノ酸に対応するコドンを選択し、目的とするアミノ酸配列をコードする塩基配列を設計する。大腸菌等におけるコドン使用頻度の情報は、例えば、当業者に公知のDNAデータベース(GenBank、EMBL、DDBJ等)を利用して得ることができる。
目的とするアミノ酸配列に含まれる各アミノ酸の個数を求める。ポリヌクレオチドを発現させる微生物細胞のコドンの平均出現頻度に最も近くなるように、上記で求めた個数のアミノ酸について使用するコドンを割り当てる。同一コドンがなるべく連続しないように、それぞれのコドンの使用順番をつける。N末端側のアミノ酸から順番に、各アミノ酸について決定した順番通りにコドンを選び、そのアミノ酸残基のコドンと仮決定する。これらの手順を繰り返しC末端までの全アミノ酸のコドンを仮決定し、最後に終止コドンを配置する。仮決定されたコドンからなる塩基配列について、微生物細胞において遺伝子の転写を阻害する塩基配列や、以降の操作で使用する制限酵素が認識する塩基配列が存在しないことを確認する。このような塩基配列が存在した場合には、この塩基配列にかかるコドンを別の部分で使用したコドンと交換する。このような塩基配列設計の際に、後の操作のために適当な制限酵素が認識する塩基配列を5’末端側および3’末端側に付加しておくことが好ましい。
このようにして設計された塩基配列を有するポリヌクレオチドの合成は、PCRを用いた長鎖DNA合成法を用いて行うことができる(細胞工学別冊、植物細胞工学シリーズ7「植物のPCR実験プロトコール」、95−100頁、島本巧・佐々木卓治監修秀潤社、1997年7月1日刊行)(以下、本法をAssembly PCR法と記すこともある)。当該方法では、長い合成オリゴヌクレオチドプライマーのみを使用してDNAを合成する。プライマーの対は、プライマーの各々の3’末端に約10bpから約12bpの相補鎖又はオーバーラップを持つように合成され、互いのプライマーを鋳型としてDNA合成を行う。プライマーの全長としては、例えば、約60merから約100mer等を挙げることができる。好ましくは、例えば、約80merから約100mer等が挙げられる。
これらオリゴヌクレオチドプライマーを順番にPCR反応により結合することにより、目的の塩基配列を有するDNAを得る。得られたDNAを常法に従いクローニングベクターに導入し、クローニングする。得られたクローンの塩基配列をDNAシークエンサーで確認し、目的の塩基配列を有するポリヌクレオチドが得られたことを確認する。このようにして、例えば、配列番号13で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドを人工合成して、本発明ポリヌクレオチド(A)を得ることができる。
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードする。
本発明タンパク質(B)は、上記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列を有する。
改変されるアミノ酸の数は、改変が生じた上記アミノ酸配列を有するタンパク質が、改変前のタンパク質と同様の能力、即ち2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力とα−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を発揮することのできる範囲内の数であれば良い。
本発明ポリヌクレオチド(B)がコードするアミノ酸配列の(B3)または本発明タンパク質(B)のアミノ酸配列の(B3)における「複数のアミノ酸」としては、例えば、2、3、4、5、6、7、8、10、12、15、もしくは17個のアミノ酸が挙げられる。
アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、pK、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン;(2)バリン、イソロイシン、ロイシン;(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン;(5)リジン、アルギニン;(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
アミノ酸の付加としては、例えば、タンパク質のアミノ酸配列のアミノ末端又はカルボキシ末端への、連続する6残基程度のヒスチジンを含む7残基程度から25残基程度のアミノ酸の付加を挙げることができる。より具体的には、タンパク質のアミノ酸配列のアミノ末端への、配列番号44で示されるアミノ酸配列の付加や、タンパク質のアミノ酸配列のカルボキシ末端への、配列番号45で示されるアミノ酸配列の付加を挙げることができる。
上記のポリヌクレオチドとしては、具体的には、配列番号2で示される塩基配列を有するポリヌクレオチド、配列番号2で示される塩基配列において、その一部の塩基が欠失、置換もしくは付加された塩基配列を有するポリヌクレオチド、または、配列番号2で示される塩基配列と95%、98%又は99%以上の配列同一性を有する塩基配列を有するポリヌクレオチドがあげられる。
例えば、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)等のアクロモバクター属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法(例えば、「新 細胞工学実験プロトコール」(東京大学医科学研究所制癌研究部編、秀潤社、1993年)に記載された方法)に準じてDNAライブラリーを調製し、調製されたDNAライブラリーを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてPCRを行うことにより、配列番号1で示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、配列番号1で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、又は配列番号2で示される塩基配列を有するポリヌクレオチド等を増幅して本発明ポリヌクレオチド(B)を調製することができる。
上記のPCRに用いられるプライマーの5’末端側又は3’末端側又はその両方には、制限酵素認識配列等が付加されていてもよい。
上記のPCRの条件としては、例えば、4種類のdNTPを各々20μM、2種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々15pmol、Taqpolymeraseを1.3U及び鋳型となるDNAライブラリーを混合した反応液を94℃で2分間保温した後、94℃で10秒間次いで65℃で30秒間次いで72℃で90秒間の保温サイクルを10回行い、次いで、94℃で10秒間次いで65℃で30秒間次いで72℃で1分と5秒間の保温サイクルを20回行い、さらに72℃で7分間保持する条件が挙げられる。
具体的には例えば、発現させる微生物細胞(例えば、大腸菌)におけるコドン使用頻度に近いコドン使用頻度となるように、配列番号1で示されるアミノ酸配列に含まれる各々のアミノ酸に対応するコドンを選択し、目的とするアミノ酸配列をコードする塩基配列を設計する。
上述のようにして調製されたポリヌクレオチドの塩基配列は、F.Sanger, S.Nicklen, A.R.Coulson著、Proceeding of Natural Academy of Science U.S.A.(1977) 74: 5463-5467頁等に記載されているダイデオキシターミネーター法等により解析することができる。塩基配列分析用の試料調製には、例えば、パーキンエルマー社のABI PRISM Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit等の市販の試薬を用いてもよい。
上述のようにして得られるポリヌクレオチドを、宿主細胞において機能可能なプロモーターの下流に接続されるようにベクターに挿入し、得られた組換えベクターを宿主細胞に導入して形質転換体を取得する。得られた形質転換体の培養物をα−ヒドロキシカルボン酸(例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸)に作用させる。反応生成物中の対応するα−オキソカルボン酸(例えば、2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸又はα−オキソ−イソカプロン酸)の量を分析することにより、得られたポリヌクレオチドが目的とする能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードすることが確認できる。
微生物で機能可能なプロモーターとしては、上述のような、大腸菌内で機能可能な合成プロモーター等をあげることができる。アクロモバクター・デニトリフィカンスにおいて本発明ポリヌクレオチド(A)又は本発明ポリヌクレオチド(B)の発現を制御しているプロモーターを利用してもよい。
本発明ポリヌクレオチド(B)、又は、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドをベクターに組み込むことにより、本発明組換えベクター(B)を作製することができる。
i)本発明ポリヌクレオチド(A)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(A)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;と、
ii)本発明ポリヌクレオチド(B)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;とをベクターに組み込むことにより、本発明組換えベクター(AB)を作製することができる。
例えば、
a)本発明ポリヌクレオチド(A)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(A)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;と、
b)本発明ポリヌクレオチド(B)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
と、
c)本タンパク質(C)のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
とをベクターに組み込むことにより、本発明組換えベクター(ABC)を作製することができる。
α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有する上記タンパク質として、より具体的には、Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic 23 (2003) 239-247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素、及び、前記ロイシン脱水素酵素のアミノ酸配列において、113番目のアラニンがグリシンに変換されたアミノ酸配列を有するタンパク質を挙げることができる。
配列番号42で示されるアミノ酸配列は、Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic 23 (2003) 239-247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素のアミノ酸配列である。
配列番号7で示されるアミノ酸配列は、配列番号42で示されるアミノ酸配列において、113番目のアラニンがグリシンに変換されたアミノ酸配列である。
(C1)配列番号7で示されるアミノ酸配列、
(C2)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列に対して90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(C3)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列において1若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を挙げることもできる。
改変されるアミノ酸の数は、改変が生じた上記アミノ酸配列を有するタンパク質が、α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を発揮することのできる範囲内の数であれば良い。本タンパク質(C)の上記アミノ酸配列の(C3)における「複数のアミノ酸」としては、例えば、2、3、4、5、6、7、10、15、18、20、25、30、35、36もしくは40個のアミノ酸が挙げられる。
アミノ酸の置換としては、例えば、疎水性、電荷、pK、立体構造上における特徴等の類似したアミノ酸への保存的置換をあげることができる。このような置換としては、具体的には例えば、(1)グリシン、アラニン;(2)バリン、イソロイシン、ロイシン;(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン;(5)リジン、アルギニン;(6)フェニルアラニン、チロシン等のグループ内での置換が挙げられる。
アミノ酸の付加としては、例えば、アミノ酸配列のアミノ末端又はカルボキシ末端への、連続する6残基程度のヒスチジンを含む約20残基のアミノ酸の付加を挙げることができる。より具体的には、タンパク質のアミノ酸配列のアミノ末端への、配列番号44で示されるアミノ酸配列の付加や、タンパク質のアミノ酸配列のカルボキシ末端への、配列番号45で示されるアミノ酸配列の付加を挙げることができる。
本タンパク質(C)の上記アミノ酸配列の(C2)における「90%以上の配列同一性」としては、例えば90、95、98または99%以上の配列同一性が挙げられる。
例えば、配列番号42で示されるアミノ酸配列をコードする、配列番号43で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドの増幅用プライマーとして、配列番号14で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号15に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成する。配列番号42で示されるアミノ酸配列の113番目のアラニンをグリシンに変換するための変異導入用プライマ−として、配列番号16で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号17で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成する。
上記DNAライブラリーを鋳型として、配列番号14で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号15で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてPCRを行うことにより、配列番号43で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドを増幅する。増幅されたポリヌクレオチドをベクターに組み込んで、配列番号43で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドを含有する組換えベクターを得る。得られた組換えベクターを鋳型として、配列番号16で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号17で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてPCRを行い、得られたPCR産物をDpn Iで処理した後、大腸菌に導入する。得られた形質転換体が保有する組換えベクターの塩基配列を分析し、目的のアミノ酸変異が導入されたアミノ酸配列、すなわち、配列番号42で示されるアミノ酸配列において113番目のアラニンがグリシンへ置換されたアミノ酸配列(配列番号7で示されるアミノ酸配列)、をコードするポリヌクレオチドを得る。配列番号7で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列としては、配列番号8で示される塩基配列が挙げられる。
上記(C1)から(C3)のいずれかのアミノ酸配列をコードするコドンとして、大腸菌におけるコドン使用頻度に合わせるようにコドンを選択することによって塩基配列を設計し、設計された塩基配列からなるポリヌクレオチドを化学合成することにより、本ポリヌクレオチド(C)を調製することもできる。
微生物で機能可能なプロモーターとしては、上述のような、大腸菌内で機能可能な合成プロモーター等をあげることができる。Bacillus sphaericusなどのバシラス属に属する微生物において本ポリヌクレオチド(C)の発現を制御しているプロモーターを利用してもよい。
上述のようにして得られるポリヌクレオチドを、宿主細胞において機能可能なプロモーターの下流に接続されるようにベクターに挿入し、得られた組換えベクターを宿主細胞に導入して形質転換体を取得する。得られた形質転換体の培養物をα−オキソカルボン酸(例えば、2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸又はα−オキソ−イソカプロン酸)に作用させる。反応生成物中の対応するL−α−アミノ酸(例えば、L−メチオニン又はL−ロイシン)の量を分析することにより、得られたポリヌクレオチドが目的とする能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードすることが確認できる。
宿主細胞としては、例えば、Escherichia属、Bacillus属、Corynebacterium属、Staphylococcus属、Streptomyces属、Saccharomyces属、Kluyveromyces属、Pichia属、Rhodococcus属及びAspergillus属に属する微生物等があげられる。
本発明ポリヌクレオチド(B)、又は、宿主細胞内において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドを宿主細胞に導入することにより、本発明ポリヌクレオチド(B)、又は、宿主細胞内において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドを保有する形質転換体を得ることができる。かかる形質転換体としては、外来の上記ポリヌクレオチドが宿主細胞の染色体に導入されてなる形質転換体、すなわち、外来の上記ポリヌクレオチドを染色体上に保有する形質転換体を挙げることもできる。
a)本発明ポリヌクレオチド(A)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(A)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;と、
b)本発明ポリヌクレオチド(B)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
と、
c)本タンパク質(C)のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
とを宿主細胞に導入することにより、
a)本発明ポリヌクレオチド(A)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(A)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;と、
b)本発明ポリヌクレオチド(B)、もしくは、宿主細胞において機能可能なプロモーターと本発明ポリヌクレオチド(B)とが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
と、
c)本タンパク質(C)のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド;
とを保有する形質転換体を得ることができる。
上記a)のポリヌクレオチド、b)のポリヌクレオチド及びc)のポリヌクレオチドは、それぞれ別のベクターに組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよいし、これらのうち1以上が同じベクター上に組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよい。1以上のポリヌクレオチドを単一のベクターに組み込む場合は、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域を目的とするポリヌクレオチドのそれぞれに連結してベクターに組み込んでもよいし、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして目的とするポリヌクレオチドを発現させるようにベクターに組み込んでもよい。上記a)のポリヌクレオチド、b)のポリヌクレオチド及びc)のポリヌクレオチドのいずれか、又は、これらのうち1以上が、宿主細胞の染色体上に保有されてもよい。
本発明タンパク質(B)は、例えば、本発明ポリヌクレオチド(B)を保有する形質転換体を培養し本発明タンパク質(B)を発現させることにより、製造することができる。
本タンパク質(C)は、例えば、本ポリヌクレオチド(C)を保有する形質転換体を培養し本タンパク質(C)を発現させることにより、製造することができる。
本発明ポリヌクレオチド(A)、本発明ポリヌクレオチド(B)又は本ポリヌクレオチド(C)を保有する形質転換体の培養物から本発明タンパク質(A)、本発明タンパク質(B)又は本タンパク質(C)を精製する方法としては、タンパク質の精製において使用される通常の方法を適用することができる。
本発明タンパク質(A)を含む画分及び本発明タンパク質(B)を含む画分は、例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸を酸化して2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸を優先的に生産する能力又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸を酸化してα−オキソ−イソカプロン酸を優先的に生産する能力を指標にして選抜することができる。
本タンパク質(C)を含む画分は、例えば、2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸をアミノ化してL−メチオニンを優先的に生産する能力又はα−オキソ−イソカプロン酸をアミノ化してL−ロイシンを優先的に生産する能力を指標にして選抜することができる。
(1)本発明タンパク質(A)と本発明タンパク質(B)とのいずれか又は両者を、α−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させて、対応するα−オキソカルボン酸化合物を得る工程、及び
(2)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質を、工程(1)で得られたα−オキソカルボン酸化合物に作用させて、対応するL−α−アミノ酸化合物を得る工程、
を含む、L−α−アミノ酸化合物の製造方法である。
R2−CH(OH)COOH (4)
式中、R2は水素であるか、炭素数1−10の線状、分岐鎖状もしくは環式のアルキル基であるか、置換基のアミド、アミノ、モノアルキルアミノ、ジアルキルアミノ、モノアルキルアミド、ジアルキルアミド、アルコキシ、アルキルチオ、ヒドロキシ、メルカプト、カルボキシルもしくはアルコキシカルボニルを有する炭素数1−10の線状もしくは分岐鎖状のアルキル基であるか、または、1H−イミダゾリル基、フェニル基、3’−インドリル基、p−ヒドロキシフェニル基もしくはp−アルコキシフェニル基であり、前記置換基に含まれるアルキル及びアルコキシの炭素数はそれぞれ1−3である;
で示されるα−ヒドロキシカルボン酸が挙げられる。
上記L−α−アミノ酸化合物としては、L−アスパラギン、L−アスパラギン酸、L−システイン、L−グルタミン、L−グルタミン酸、L−ヒスチジン、L−セリン、L−スレオニン、L−トリプトファン、L−チロシン、L−アラニン、グリシン、L−イソロイシン、L−ロイシン、L−メチオニン、L−フェニルアラニン及びL−バリンが挙げられ、好ましくは、L−アラニン、グリシン、L−イソロイシン、L−ロイシン、L−メチオニン、L−フェニルアラニンまたはL−バリンが挙げられる。
上記含硫α−ヒドロキシカルボン酸としては、式(1):
式中、R1は水素又は置換されていてもよい炭素数1−8のアルキル基を表す;
で示される含硫α−ヒドロキシカルボン酸が例示される。
上記式(1)で示される含硫α−ヒドロキシカルボン酸に、本発明タンパク質(A)と本発明タンパク質(B)とのいずれか又は両者を作用させて得られる含硫α−オキソカルボン酸化合物としては、式(2):
式中、R1は前記と同じ意味を表す;
で示される含硫α−オキソカルボン酸が例示される。
上記式(2)で示される含硫α−オキソカルボン酸に、本タンパク質(C)を作用させて得られる含硫L−α−アミノ酸化合物としては、式(3):
で示される含硫L−α−アミノ酸が例示される。
式(1)で示される含硫α−ヒドロキシカルボン酸としては、具体的には例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(エチルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(プロピルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(ブチルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(ペンチルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(ヘキシルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(ヘプチルチオ)酪酸、2−ヒドロキシ−4−(オクチルチオ)酪酸を挙げることができる。
式(2)で示される含硫α−オキソカルボン酸としては、具体的には例えば、2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(エチルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(プロピルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(ブチルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(ペンチルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(ヘキシルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(ヘプチルチオ)酪酸、2−オキソ−4−(オクチルチオ)酪酸を挙げることができる。
式(3)で示される含硫L−α−アミノ酸としては、具体的には例えば、2−アミノ−4−(メチルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(エチルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(プロピルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(ブチルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(ペンチルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(ヘキシルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(ヘプチルチオ)酪酸、2−アミノ−4−(オクチルチオ)酪酸を挙げることができる。
本発明製造方法の工程(1)において、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸を基質とした場合は、工程(1)において2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸が得られ、工程(2)においてL−メチオニンが得られる。
本発明タンパク質(A)をα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるために、具体的には、例えば、本発明タンパク質(A)、本発明タンパク質(A)の固定化物、本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなり本発明タンパク質(A)を産生する形質転換体の培養物、又は、前記形質転換体の処理物を、本発明製造方法の工程(1)の反応系に提供することができる。
本発明タンパク質(B)をα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるために、具体的には、例えば、本発明タンパク質(B)、本発明タンパク質(B)の固定化物、本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなり本発明タンパク質(B)を産生する形質転換体の培養物、又は、前記形質転換体の処理物を、本発明製造方法の工程(1)の反応系に提供することができる。
本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物と、本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物とが、本発明製造方法の工程(1)の反応系に提供されてもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドと本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドとの両者が同一の宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物が、上記反応系に提供されてもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドと本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドは、それぞれ別のベクターに組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよいし、同じベクター上に組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよい。両ポリヌクレオチドを単一のベクターに組み込む場合は、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域を両ポリヌクレオチドのそれぞれに連結してベクターに組み込んでもよいし、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして両ポリヌクレオチドを発現させるようにベクターに組み込んでもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドと本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドのいずれか、又は、両方が、宿主細胞の染色体上に保有されてもよい。
本発明製造方法の工程(1)において、α−ヒドロキシカルボン酸化合物(例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸等の含硫α−ヒドロキシカルボン酸又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸)の酸化反応の進行に伴い、反応液中のNAD+は還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(以下、NADHと記すこともある。)に変換される。変換により生じたNADHは、NADHを酸化型(NAD+)に変換する能力を有するタンパク質を作用させることにより元のNAD+に戻すことができるので、上記工程(1)の反応系内には、NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をさらに存在させてもよい。上記工程(1)の反応系内に、NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をさらに存在させる場合には、反応系内における補因子の量は、通常、触媒量でよく、基質であるα−ヒドロキシカルボン酸化合物の量と等モルかまたはそれ以下である。
NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質としては、例えば、リンゴ酸脱水素酵素等の有機酸脱水素酵素、還元酵素、アルコール脱水素酵素、アルデヒド脱水素酵素、アミノ酸脱水素酵素、又は、NADH酸化酵素が挙げられる。アミノ酸脱水素酵素としては、本タンパク質(C)を挙げることができ、より具体的には、Bacillus属に属する微生物のロイシン脱水素酵素を挙げることができる。
NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質がNADH酸化酵素である場合には、反応系内にFAD等を共存させることにより、該タンパク質の活性が増強される場合もあり、例えば、反応液にFAD等を加えてもよい。NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質がNADH酸化酵素である場合には、反応液中の酸素が消費され、過酸化水素に変換される。変換により生じた過酸化水素は、過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質により元の分子状酸素に戻すことができるので、上記工程の反応系内に、過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をさらに共存させてもよい。過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質としては、例えば、カタラーゼが挙げられる。
NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物と、過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物とが、上記反応系に提供されてもよい。
NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドと過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドとの両者が同一の宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物が、上記反応系に提供されてもよい。NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドと過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、それぞれ別のベクターに組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよいし、同じベクター上に組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよい。両ポリヌクレオチドを単一のベクターに組み込む場合は、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域を両ポリヌクレオチドのそれぞれに連結してベクターに組み込んでもよいし、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして両ポリヌクレオチドを発現させるようにベクターに組み込んでもよい。NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドと過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドのいずれか、又は、両方が、宿主細胞の染色体上に保有されてもよい。
本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチド、本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチド、NADHをNAD+に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び、過酸化水素を分子状酸素に変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドからなる群から選ばれる2以上のポリヌクレオチドが同一の宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物が、上記反応系に提供されてもよい。
反応の終点は、例えば、反応液中のα−ヒドロキシカルボン酸化合物(例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸等の含硫α−ヒドロキシカルボン酸化合物又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸)の量を液体クロマトグラフィー等により分析することにより決めることができる。
反応時間は適宜選択することができ、通常約0.5時間から約10日間の範囲である。
例えば、反応液の有機溶媒抽出操作、濃縮操作等の後処理を、必要によりカラムクロマトグラフィー、蒸留等と組み合わせて行うことにより、目的とする化合物を精製する方法が挙げられる。
本タンパク質(C)をα−オキソカルボン酸化合物に作用させるために、具体的には、例えば、本タンパク質(C)、本タンパク質(C)の固定化物、本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなり本タンパク質(C)を産生する形質転換体の培養物、又は、前記形質転換体の処理物を、上記工程(2)の反応系に提供することができる。
この際に用いられる水は、緩衝水溶液であってもよい。該緩衝水溶液に用いられる緩衝剤としては、例えば、トリスヒドロキシメチルアミノメタンや、リン酸ナトリウムもしくはリン酸カリウム等のリン酸アルカリ金属塩、酢酸ナトリウムもしくは酢酸カリウム等の酢酸アルカリ金属塩、又は、これらの混合物が挙げられる。
本発明製造方法の工程(2)においては、水に加えて有機溶媒を反応系に共存させることもできる。用いられる有機溶媒としては、例えば、t−ブチルメチルエーテル、ジイソプロプルエーテル、テトラヒドロフラン等のエーテル類;ギ酸エチル、酢酸エチル、酢酸プロピル、酢酸ブチル、プロピオン酸エチル、プロピオン酸ブチル等のエステル類;トルエン、ヘキサン、シクロヘキサン、ヘプタン、イソオクタン等の炭化水素類;メタノール、エタノール、2−プロパノール、ブタノール、t−ブチルアルコール等のアルコール類;ジメチルスルホキシド等の有機硫黄化合物、アセトン等のケトン類、アセトニトリル等のニトリル類、及びこれらの混合物が挙げられる。
NAD+をNADHに変換する能力を有するタンパク質としては、例えば、蟻酸脱水素酵素やリンゴ酸脱水素酵素等の有機酸脱水素酵素、グルコース脱水素酵素、アルコール脱水素酵素、アルデヒド脱水素酵素、又は、アミノ酸脱水素酵素が挙げられる。
本発明製造方法の工程(2)において、本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドとNAD+をNADHに変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドとの両者が同一の宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物が、前記反応系に提供されてもよい。本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドとNAD+をNADHに変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、それぞれ別のベクターに組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよいし、同じベクター上に組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよい。両ポリヌクレオチドを単一のベクターに組み込む場合は、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域を両ポリヌクレオチドのそれぞれに連結してベクターに組み込んでもよいし、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして両ポリヌクレオチドを発現させるようにベクターに組み込んでもよい。本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドとNAD+をNADHに変換する能力を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドのいずれか、又は、両方が、宿主細胞の染色体上に保有されてもよい。
反応時間は適宜選択することができ、通常約0.5時間から約10日間の範囲である。
例えば、反応液のろ過、晶析、有機溶媒抽出操作、濃縮操作等の後処理を、必要によりカラムクロマトグラフィー、蒸留等と組み合わせて行うことにより、目的とする化合物を精製する方法が挙げられる。
この場合、本発明タンパク質(A)、本発明タンパク質(B)及び本タンパク質(C)は、それぞれ種々の形態で上記反応系に提供され得る。
本発明タンパク質(A)、本発明タンパク質(B)及び本タンパク質(C)は、精製されたタンパク質の形態で上記反応系に提供されてもよいし、これらタンパク質を産生する微生物又は該微生物の処理物に含まれる形態で上記反応系に提供されてもよい。
本発明タンパク質(A)、本発明タンパク質(B)及び本タンパク質(C)は、これらタンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で上記反応系に提供されてもよい。
例えば、本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物と、本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物とのいずれか又は両者と、本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物とが、上記反応系に提供されてもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドと本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドとのいずれか又は両者と、本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドとが同一の宿主細胞に導入されてなる形質転換体又はその処理物が、上記反応系に提供されてもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドと本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチドとのいずれか又は両者と、本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドは、それぞれ別のベクターに組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよいし、同じベクター上に組み込まれて宿主細胞へ導入されてもよい。複数のポリヌクレオチドを単一のベクターに組み込む場合は、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域を上記ポリヌクレオチドのそれぞれに連結してベクターに組み込んでもよいし、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして上記ポリヌクレオチドを発現させるようにベクターに組み込んでもよい。本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチド、本発明タンパク質(B)をコードするポリヌクレオチド及び本タンパク質(C)をコードするポリヌクレオチドのいずれか、又は、2以上が、宿主細胞の染色体上に保有されてもよい。
工程(1)におけるα−ヒドロキシカルボン酸化合物(例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸等の含硫α−ヒドロキシカルボン酸又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸)の酸化反応の進行に伴い、反応液中のNAD+はNADHに変換される。工程(2)におけるα−オキソカルボン酸(例えば、2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸等の含硫α−オキソカルボン酸又はα−オキソ−イソカプロン酸)の還元的アミノ化反応の進行に伴い、反応液中のNADHはNAD+に変換される。よって、本発明製造方法の工程(1)と工程(2)とを一つの反応系で行うと、補酵素(NAD+及びNADH)を触媒量にてリサイクルすることができる。
反応の終点は、例えば、反応液中のα−ヒドロキシカルボン酸化合物(例えば、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸等の含硫α−ヒドロキシカルボン酸化合物又はα−ヒドロキシ−イソカプロン酸)の量を液体クロマトグラフィー等により分析することにより決めることができる。
反応時間は適宜選択することができ、通常約0.5時間から約10日間の範囲である。
反応液からのL−α−アミノ酸(例えば、L−メチオニン等の含硫L−α−アミノ酸又はL-ロイシン)の回収は、上述の本発明製造方法の工程(2)の場合と同様に行うことができる。
2本の500ml容フラスコに培地(水100mlにグルコース2g、ポリペプトン0.5g、酵母エキス0.3g、肉エキス0.3g、硫酸アンモニウム0.2g、リン酸2水素カリウム0.1g、硫酸マグネシウム7水和物0.05gを溶解し、2NのHClでpHを6に調整したもの)をそれぞれ100mlずつ入れ、121℃で15分間滅菌した。ここに、同組成の培地中で30℃にて48時間振盪培養したアクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)ATCC55564株の培養液をそれぞれ0.3mlずつ加え、30℃で24時間振盪培養した。得られた培養液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、生じた沈殿を集めた。得られた沈殿を0.85%食塩水50mlで洗浄して、3.5gの湿菌体を得た。
得られた菌体から、QIAprep Genomic-tip System (Qiagen社製)を用いて染色体DNA(以下、染色体DNA(A)と記す。)を得た。
(1)プライマー合成
配列番号9から12で示される塩基配列をそれぞれ有するオリゴヌクレオチドプライマーを合成する。
配列番号9で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号10で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、上記染色体DNA(A)を鋳型にして下記反応液組成でPCRを行った。
染色体DNA(A)溶液 1.5μl
dNTP(各2mMのmixture) 10μl
プライマー(50pmol/μl) 各0.3μl
2xbuffer 25μl
KOD-FX(1U/μl、東洋紡社製) 1μl
超純水 11.9μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NdeI及びXhoIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpET−22b(ノバジェン社製)を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらプラスミドのうちの1つが保有する約1.1kbの挿入DNAの塩基配列を分析したところ、当該DNAが配列番号2で示される塩基配列を有することが判明した。このプラスミドをpET774と名付けた。配列番号2で示される塩基配列は配列番号1で示されるアミノ酸配列をコードする。プラスミドpET774は、配列番号1で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号11で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号12で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、上記染色体DNA(A)を鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
染色体DNA(A)溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NdeI及びXhoIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化された約1.0kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpET−22b(ノバジェン社製)を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.0kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらプラスミドのうちの1つが保有する約1.0kbの挿入DNAの塩基配列を分析したところ、当該DNAが配列番号4で示される塩基配列を有することが判明した。このプラスミドをpET43と名付けた。配列番号4で示される塩基配列は配列番号3で示されるアミノ酸配列をコードする。プラスミドpET43は、配列番号3で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
(1)本発明タンパク質(B)
プラスミドpET774を用いてE.coli BL21(DE3)株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地800mlに接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られた培養液を遠心分離し、湿菌体を得た。この湿菌体約4.9gを、0.5M NaClと5mMイミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)(以下、バインディングバッファーと記すこともある。)40mlに懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、遠心上清液約28mlを得た。
得られた遠心上清液の約10mlを流速5ml/minでアフィニティカラム(HisTrap HP、ゲルベッド5ml、GEヘルスケア社製)にアプライした。このカラムに約25mlのバインディングバッファーを流速5ml/minで流して非吸着タンパク質を溶出させた。その後、流速を維持したまま、0.5M NaClと29.75mM イミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)約35mlを流して、非吸着タンパク質および低吸着タンパク質を溶出させた。
次いで、47.5ml流す間にイミダゾール濃度を29.75mMから500mMに増やすグラジエント溶出により吸着タンパク質を溶出させ、イミダゾール濃度が120mMから270mM付近の画分25mlを分取した。得られた画分をAmicon Ultra-15(ミリポア社製)に供して脱塩濃縮および0.5M Tris-HCl(pH9)へのバッファー交換を行い、約2mlの精製酵素液(40gタンパク質/L)を得た。得られた精製酵素液の2倍希釈液0.31mlと、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩(東京化成社製)50mg、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.04ml、硫酸アンモニウム40mg、及びロイシン脱水素酵素(和光純薬社製)60Uとを混合し、30℃で24時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩の量に対してL−メチオニンは35.3%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
プラスミドpET43を用いてE.coli BL21(DE3)株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地800mlに接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られた培養液を遠心分離し、湿菌体を得た。この湿菌体約5.2gを、0.5MのNaClと5mMイミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)(即ち、バインディングバッファー)40mlに懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、遠心上清液約28mlを得た。
得られた遠心上清液の約10mlを流速5ml/minでアフィニティカラム(HisTrap HP、ゲルベッド5ml、GEヘルスケア社製)にアプライした。このカラムに約25mlのバインディングバッファーを流速5ml/minで流して非吸着タンパク質を溶出させた。その後、流速を維持したまま、0.5M NaClと29.75mM イミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)約35mlを流して、非吸着タンパク質および低吸着タンパク質を溶出させた。
次いで、47.5ml流す間にイミダゾール濃度を29.75mMから500mMに増やすグラジエント溶出により吸着タンパク質を溶出させ、イミダゾール濃度が120から270mM付近の画分25mlを分取した。得られた画分をAmicon Ultra-15(ミリポア社製)に供して脱塩濃縮および0.5M Tris-HCl(pH9)へのバッファー交換を行い、約2mlの精製酵素液(9gタンパク質/L)を得た。得られた精製酵素液0.62mlをAmicon Ultra-15(ミリポア社製)にて2倍濃縮した。得られた0.31mlの濃縮液と、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩(東京化成社製)50mg、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.04ml、硫酸アンモニウム40mg、及びロイシン脱水素酵素(和光純薬社製)60Uとを混合し、30℃で24時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩の量に対してL−メチオニンは36.9%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
実施例2(1)で調製された精製酵素液(40gタンパク質/L)の2倍希釈液0.31mlと実施例2(2)で調製された精製酵素液(9gタンパク質/L)の2倍濃縮液0.31mlとを混合し、Amicon Ultra-15(ミリポア社製)にて2倍濃縮した。得られた酵素液0.31mlと、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩(東京化成社製)50mg、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.04ml、硫酸アンモニウム40mg、及びロイシン脱水素酵素(和光社製)60Uとを混合し、30℃で3時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩の量に対してL−メチオニンは47.0%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
Bacillus sphaericus IFO3525株を滅菌したLB培地100ml中で培養し、菌体0.4gを得た。この菌体からQiagen Genomic Tip (Qiagen社製)を用い、それに付属のマニュアルに記載の方法にしたがって染色体DNA(以下、染色体DNA(B)と記す。)を精製した。
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 23 (2003) 239−247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素をコードする塩基配列をもとに、配列番号14で示される塩基配列(GCCATGGAAATCTTCAAGTATATGG)を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号15で示される塩基配列(GGGCCCGGGTTAACGGCCGTTCAAAATATT)を有するオリゴヌクレオチドプライマーとを合成する。
配列番号14で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号15で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーとを用い、上記染色体DNA(B)を鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
染色体DNA(B)溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 0.4μl
プライマー(4pmol/μl) 2μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 35.1μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NcoI及びSmaIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びSmaIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoIとXbaIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrcLDと名付けた。
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 23 (2003) 239−247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素をコードする塩基配列を基にして、前記酵素の113番目のアラニンをグリシンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号16で示される塩基配列(GTCGCTATATTACCGGTGAAGATGTTG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号17で示される塩基配列(CAACATCTTCACCGGTAATATAGCGAC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号16で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号17で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例3(1)に記載の組換えベクタ−pTrcLDを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrcLDのDNA溶液 0.4μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.8μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで55℃にて1分間次いで68℃にて5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体の各々からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定し、設計どおりの変異が導入されていることを確認した。配列番号8で示される塩基配列を有するプラスミドをpTrcLD(A113G)と名付けた。配列番号8で示される塩基配列は配列番号7で示されるアミノ酸配列をコードする。
(3−1)塩基置換のための部位特異的変異導入
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 23 (2003) 239−247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素をコードする塩基配列を基にして、993番目のアデニンをシトシンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号18で示される塩基配列(GATAGTATTCCAACCTATGTTGCGGC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号19で示される塩基配列(GCCGCAACATAGGTTGGAATACTATC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。
配列番号18で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号19で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例3(2)に記載の組換えベクタ−pTrcLD(A113G)を鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrcLD(A113G)のDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra(上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrcLD(A113G)ndと名付けた。
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 23 (2003) 239-247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素をコードする塩基配列を基にして、配列番号20で示される塩基配列(GGGCATATGGAAATCTTCAAGTATATGG)を有するオリゴヌクレオチドプライマー(センスプライマー)と、配列番号21で示される塩基配列(GGATCCTTAACGGCCGTTCAAAATATT)を有するオリゴヌクレオチドプライマー(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号20で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号21で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用い、実施例3(3−1)に記載の組換えベクターpTrcLD(A113G)ndを鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
pTrcLD(A113G)ndのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NdeI及びBamHIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpET−15b(ノバジェン製)を制限酵素NdeI及びBamHIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から10コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NdeI及びBamHIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。4つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。このようにして得られるプラスミドは、組換えベクターpTrcLD(A113G)ndにコードされるロイシン脱水素酵素のアミノ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む20アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号44:MetGlySerSerHisHisHisHisHisHisSerSerGlyLeuValProArgGlySerHis)が付加されたタンパク質を発現可能なように設計されている。得られたプラスミドのうちの1つをpETLD(A113G)と名付けた。
組換えベクターpETLD(A113G)を用いてE.coli BL21(DE3)株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地800mlに接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られた培養液を遠心分離し、約6gの湿菌体を得た。この湿菌体約6gを、0.5MのNaClと5mMイミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)(即ち、バインディングバッファー)40mlに懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、遠心上清液約25mlを得た。
得られた遠心上清液の約10mlを、流速5ml/minでアフィニティカラム(HisTrap HP、ゲルベッド5ml、GEヘルスケア社製)にアプライした。このカラムに約25mlのバインディングバッファーを流速5ml/minで流して非吸着タンパク質を溶出させた。その後、流速を維持したまま、0.5M NaClと29.75mM イミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)約35mlを流して、非吸着タンパク質および低吸着タンパク質を溶出させた。次いで、47.5ml流す間にイミダゾール濃度を29.75mMから500mMに増やすグラジエント溶出により吸着タンパク質を溶出させ、イミダゾール濃度が160mMから443mM付近の画分30mlを分取した。得られた画分をAmicon Ultra−15(ミリポア社製)に供して、脱塩濃縮および0.5M Tris−HCl(pH9)へのバッファー交換を行い、約2mlの画分(32.6gタンパク質/L)を得た。この画分を以下、ロイシン脱水素酵素(A113G)精製酵素液と記す。
実施例2(1)で調製された精製酵素液(40gタンパク質/L)の2倍希釈液0.31mlと実施例2(2)で調製された精製酵素液(9gタンパク質/L)の2倍濃縮液0.31mlとを混合し、Amicon Ultra-15(ミリポア社製)にて2倍濃縮した。得られた酵素液0.31mlと、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩(東京化成社製)50mg、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.04ml、硫酸アンモニウム40mg、及び実施例3(4)で調製されたロイシン脱水素酵素(A113G)精製酵素液(32.6gタンパク質/L)0.15mlとを混合し、30℃で1時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸のカルシウム塩の量に対してL−メチオニンは49.9%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
(1)本発明ポリヌクレオチド(A)を含有する組換えベクター
配列番号13で示される塩基配列の5‘末端に塩基配列ccatggct、3’末端に塩基配列ggatccが、それぞれ付加された塩基配列を有する二本鎖DNAを調製する。配列番号13で示される塩基配列は配列番号3で示されるアミノ酸配列をコードする。
調製された約1.0kbの二本鎖DNAを制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化させ、酵素消化されたDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli JM109株を形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoIとBamHIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.0kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。得られたプラスミドの塩基配列を決定し、目的とする塩基配列を有するプラスミドをpTrc43SCと名付けた。
(2−1)本ポリヌクレオチド(C)を含有する組換えベクター
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic 23 (2003) 239−247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素の塩基配列を基にして、561番目のグアニンをアデニンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号22で示される塩基配列(CGTAGCTTACAAACTTTGCGAGTATTTAC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号23で示される塩基配列(GTAAATACTCGCAAAGTTTGTAAGCTACG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号22で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号23で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例3の(3)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)ndを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrcLD(A113G)ndのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrcLD(A113G)ndhdと名付けた。
配列番号24で示される塩基配列(CCATGGCTATGAAAAAGCTCTCCATCGCCC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号25で示される塩基配列(CAAGCTTGCTAGCCTTCGTGCGGCAGGGCTTC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用いて、実施例1(2)に記載のプラスミドpET774を鋳型にして下記反応液組成でPCRを行った。
pET774のDNA溶液 1.5μl
dNTP(各2mMのmixture) 10μl
プライマー(50pmol/μl) 各0.3μl
2xbuffer 25μl
KOD-FX(1U/μl、東洋紡社製) 1μl
超純水 11.9μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NcoI及びHindIIIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びHindIIIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoI及びHindIIIより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrc774NHと名付けた。
配列番号26で示される塩基配列(CGGATCCGAGGAAACAGACCATGG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号27で示される塩基配列(GCTGCAGCCTAGCCTTCGTGCGGCAGGGCTTC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを用いて、実施例5(2−2)に記載のプラスミドpTrc774NHを鋳型にして下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc774NHのDNA溶液 1.5μl
dNTP(各2mMのmixture) 10μl
プライマー(50pmol/μl) 各0.3μl
2xbuffer 25μl
KOD-FX(1U/μl、東洋紡社製) 1μl
超純水 11.9μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素BamHI及びPstIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
実施例5(2−1)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)ndhdを制限酵素BamHI及びPstIにより二重消化させ、酵素消化されたプラスミドDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素BamHI及びPstIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.1kbのDNAがプラスミドpTrcLD(A113G)ndhdに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrcLD(A113G)/774と名付けた。
配列番号28で示される塩基配列(GCTGCAGCAGGAAACAGACCATGG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号29で示される塩基配列(CAAGCTTGTTAGCCACGGGCTTCCCACACC)で示されるオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用いて、実施例5(1)に記載のプラスミドpTrc43SCを鋳型にしてExpand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc43SCのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素PstI及びHindIIIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化された約1.0kbのDNAを精製した。
実施例5(2−3)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)/774を制限酵素PstI及びHindIIIにより二重消化させ、酵素消化されたプラスミドDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素PstI及びHindIIIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.0kbのDNAがプラスミドpTrcLD(A113G)/774に挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrcLD(A113G)/774/43SCと名付けた。
得られた遠心上清液の0.34mlをAmicon Ultra-15(ミリポア社製)にて3.4倍濃縮した。得られた濃縮遠心上清液0.1ml、アンモニア水を用いpH9に調製した2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸(東京化成社製)の40%水溶液を0.35ml、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.05ml、及び硫酸アンモニウム20mgを混合し、30℃で1時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。93.5g/LのL−メチオニンが生成していることがわかった。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸の量に対してL−メチオニン収率は30.4%であった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
(1)配列番号3で示されるアミノ酸配列を有する本発明タンパク質(A)をコードするポリヌクレオチドを含有する組換えベクター
(1−1)
配列番号30で示される塩基配列(CCATATGTCTCAAAAACCAAAAATCATCG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号31で示される塩基配列(ACTCGAGGCCACGGGCTTCCCACACCTGCG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)を合成する。配列番号30で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号31で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、実施例5の(1)に記載のプラスミドpTrc43SCを鋳型にしてExpand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc43SCのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NdeI及びXhoIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化された約1.0kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpET−22b(ノバジェン製)を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化させ、酵素消化されたDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から10コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NdeI及びXhoIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。4つのプラスミドにおいて、それぞれ約1.0kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpET43SCcHisと名付けた。プラスミドpET43SCcHisは、配列番号3で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号32で示される塩基配列(GCCATGGCTATGTCTCAAAAACCAAAAATC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号33で示される塩基配列(GGATCCTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)を合成する。配列番号32で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号33で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、実施例7(1−1)に記載のプラスミドpET43SCcHisを鋳型にしてExpand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液でPCRを行った。
pET43SCcHisのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NcoI及びBamHIを加えて、DNAを二重消化させ、酵素消化されたDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化させ、酵素消化されたDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から10コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。4つのプラスミドにおいて、前記約1.0kbのDNAが挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrc43SCcHisと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHisは、配列番号3で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列を基にして、325番目のグアニンをアデニンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号34で示される塩基配列(CGCTGTTGCTGATATTACCATCGGCCTG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号35で示される塩基配列(CAGGCCGATGGTAATATCAGCAACAGCG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号13に示される塩基配列における325番目のグアニンのアデニンへの置換は、配列番号3で示されるアミノ酸配列における109番目のバリンのイソロイシンへの置換をもたらす。
配列番号34で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号35で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(1−2)に記載のプラスミドpTrc43SCcHisを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHisのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g325aと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g325aは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において109番目のバリンのイソロイシンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列を基にして、572番目のグアニンをアデニンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号36で示される塩基配列(GGCGGCATACGTCGATCGTGACGAGCTG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号37で示される塩基配列(CAGCTCGTCACGATCGACGTATGCCGCC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号13に示される塩基配列における572番目のグアニンのアデニンへの置換は、配列番号3で示されるアミノ酸配列における191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換をもたらす。
配列番号36で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号37で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(1−2)に記載のプラスミドpTrc43SCcHisを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHisのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g572aと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g572aは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列を基にして、737番目のアデニンをグアニンに置換するための変異導入プライマ−として、配列番号38で示される塩基配列(GCAGCACTGGTACGGGCACTGCGCTCTG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号39で示される塩基配列(CAGAGCGCAGTGCCCGTACCAGTGCTGC)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号13に示される塩基配列における737番目のアデニンのグアニンへの置換は、配列番号3で示されるアミノ酸配列における246番目のグルタミンのアルギニンへの置換をもたらす。
配列番号38で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号39で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(1−2)に記載のプラスミドpTrc43SCcHisを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHisのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-a737gと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-a737gは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列における572番目のグアニンをアデニンに変換するための変異導入プライマ−である、配列番号36で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号37で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(2)に記載のプラスミドpTrc43SCcHis-g325aを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHis-g325aのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g325a/g572aと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572aは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において109番目のバリンのイソロイシンへの置換及び191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列における737番目のアデニンをグアニンに変換するための変異導入プライマ−である、配列番号38で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号39で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(2)に記載のプラスミドpTrc43SCcHis-g325aを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHis-g325aのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g325a/a737gと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g325a/a737gは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において109番目のバリンのイソロイシンへの置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列における737番目のアデニンをグアニンに変換するための変異導入プライマ−である、配列番号38で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号39で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(3)に記載のプラスミドpTrc43SCcHis-g572aを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHis-g572aのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g572a/a737gと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g572a/a737gは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号13に示される塩基配列における737番目のアデニンをグアニンに変換するための変異導入プライマ−である、配列番号38で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号39で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例7(5)に記載のプラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572aを鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pTrc43SCcHis-g325a/g572aのDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
上記組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて5.5分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gと名付けた。プラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gは、配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換を有する改変(altered)アミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
(1)
プラスミドpTrc43SCcHis、pTrc43SCcHis-g325a/g572a、pTrc43SCcHis-g325a/a737g、または、プラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gを用いてE.coli JM109株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地20mlにそれぞれ接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られたそれぞれの培養液を遠心分離し、約0.1gの湿菌体を得た。湿菌体それぞれ約0.1gを、0.5MのNaClと5mMイミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)(即ち、バインディングバッファー)1mlにそれぞれ懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を13000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、それぞれ遠心上清液約0.7mlを得た。
得られたそれぞれの遠心上清液に約0.3mlのバインディングバッファーを追加して約1mlとした後、これをアフィニティカラム(HisTrap HP、ゲルベッド1ml、GEヘルスケア社製)にアプライした。このカラムに約3mlのバインディングバッファーを流して非吸着タンパク質を溶出させた。その後、0.5M NaClと500mM イミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)約2mlを流して、それぞれの吸着タンパク質を溶出させ、溶出液を集めた。それぞれの溶出液約2mlをAmicon Ultra-15(ミリポア社製)に供して脱塩濃縮及び0.5M Tris-HCl(pH9)へのバッファー交換を行い、それぞれ約0.4mlの精製酵素液を得た。それぞれの精製酵素液のタンパク質濃度を測定した。pTrc43SCcHis導入形質転換体からの精製酵素液のタンパク質濃度は3.1gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/g572a導入形質転換体からのそれは2.5gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/a737g導入形質転換体からのそれは3.1gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737g導入形質転換体からのそれは3.2gタンパク質/Lであった。
得られた精製酵素液をそれぞれ0.45gタンパク質/Lになるように希釈し、得られた希釈酵素液0.06mlを41℃で30分間熱処理した後、4℃に冷却した。得られた酵素液0.045mlと0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.055mlとを混合し、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸カルシウム(東京化成社製)が47mM、NAD+が3.2mMとなるよう添加して、30℃で保温した。前記反応液の吸光度を340nmの波長で10秒ごとに約10分間測定した。1分間に1μmolのNAD+を還元させる酵素量を1Uとして、酵素活性を求めた。対照として、熱処理を行わなかった希釈酵素液を用いて同様に反応を行い、反応液の吸光度を測定し、酵素活性を求めた。熱処理を行わなかった希釈酵素液を用いた反応での酵素活性を100%として、熱処理した希釈酵素液の残存活性を算出した。結果を表2に示す。
プラスミドpTrc43SCcHis、pTrc43SCcHis-g325a、pTrc43SCcHis-g572a、pTrc43SCcHis-a737g、pTrc43SCcHis-g325a/g572a、pTrc43SCcHis-g572a/a737g、pTrc43SCcHis-g325a/a737g、または、プラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gを用いてE.coli JM109株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地20mlにそれぞれ接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られたそれぞれの培養液を遠心分離し、約0.1gの湿菌体を得た。湿菌体それぞれ約0.1gを、0.5MのNaClと5mMイミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)(即ち、バインディングバッファー)1mlにそれぞれ懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を12000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、それぞれ遠心上清液約0.7mlを得た。
得られたそれぞれの遠心上清液に約0.3mlのバインディングバッファーを追加して約1mlとした後、これをアフィニティカラム(HisTrap HP、ゲルベッド1ml、GEヘルスケア社製)にアプライした。このカラムに約3mlのバインディングバッファーを流して非吸着タンパク質を溶出させた。その後、0.5M NaClと500mM イミダゾールとを含む20mMリン酸バッファー(pH7.4)約2mlを流して、それぞれの吸着タンパク質を溶出させ、溶出液を集めた。それぞれの溶出液約2mlをAmicon Ultra-15(ミリポア社製)に供して脱塩濃縮及び0.5M Tris-HCl(pH9)へのバッファー交換を行い、それぞれ約0.4mlの精製酵素液を得た。それぞれの精製酵素液のタンパク質濃度を測定した。pTrc43SCcHis導入形質転換体からの精製酵素液のタンパク質濃度は2.3gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a導入形質転換体からのそれは2.9gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g572a導入形質転換体からのそれは2.9gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-a737g形質転換体からのそれは4.2gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/g572a導入形質転換体からのそれは2.1gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g572a/a737g導入形質転換体からのそれは3.3gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/a737g導入形質転換体からのそれは2.6gタンパク質/L、pTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737g導入形質転換体からのそれは2.7gタンパク質/Lであった。
得られた精製酵素液をそれぞれ0.45gタンパク質/Lになるように希釈し、得られた希釈酵素液0.06mlを40.5℃で30分間熱処理した後、4℃に冷却した。得られた酵素液0.045mlと0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.055mlとを混合し、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸カルシウム(東京化成社製)が47mM、NAD+が3.2mMとなるよう添加して、30℃で保温した。前記反応液の吸光度を340nmの波長で10秒ごとに約10分間測定した。1分間に1μmolのNAD+を還元させる酵素量を1Uとして、酵素活性を求めた。対照として、熱処理を行わなかった希釈酵素液を用いて同様に反応を行い、反応液の吸光度を測定し、酵素活性を求めた。熱処理を行わなかった希釈酵素液を用いた反応での酵素活性を100%として、熱処理した希釈酵素液の残存活性を算出した。結果を表3に示す。
Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic 23 (2003) 239−247に記載されたBacillus sphaericus IFO3525株由来のロイシン脱水素酵素の塩基配列を基にして、561番目のグアニンをアデニンに変換するための変異導入プライマ−として、配列番号22で示される塩基配列(CGTAGCTTACAAACTTTGCGAGTATTTAC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号23で示される塩基配列(GTAAATACTCGCAAAGTTTGTAAGCTACG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。
配列番号22で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号23で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマ−に用いて、実施例3の(3−2)に記載のプラスミドpETLD(A113G)を鋳型にして、QuikChange II Site−Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社製)を用いた以下の反応液組成でPCRを行った。
[反応液組成]
pETLD(A113G)のDNA溶液 1μl
dNTP mix(上記Kitに含まれる) 1μl
センスプライマ−(50μM) 0.4μl
アンチセンスプライマ−(50μM) 0.4μl
10xbuffer(上記Kitに含まれる) 5μl
PfuUltra (上記Kitに含まれる) 1μl
超純水 41.2μl
[PCR反応条件]
上記反応液組成の反応液が入った容器を、サーマルサイクラー(PERKIN ELMER−GeneAmp PCR System2400)にセットし、95℃で1分間保温した後、95℃にて50秒間次いで60℃にて1分間次いで68℃にて6.8分間の保温サイクルを12回行った後、4℃で保存した。
得られたPCR反応液に、DpnI restriction enzyme(上記Kitに含まれる)を1μl添加した後、37℃で1時間保温した。得られた保温液を用いてE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体からプラスミドを抽出した後、ダイデオキシ法により変異箇所の塩基配列を決定した。設計どおりの変異が導入されていることが確認されたプラスミドをpETLD(A113G)hdと名付けた。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から10コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoI及びBamHIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。4つのプラスミドにおいて、約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrcLD(A113G)nhと名付けた。プラスミドpTrcLD(A113G)nhは、配列番号7で示されるアミノ酸配列のアミノ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む20アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号44:MetGlySerSerHisHisHisHisHisHisSerSerGlyLeuValProArgGlySerHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号24で示される塩基配列(CCATGGCTATGAAAAAGCTCTCCATCGCCC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号40で示される塩基配列(GCTGCAGCTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)で示されるオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用い、実施例1の(2)に記載のプラスミドpET774を鋳型にして、下記反応液組成でPCRを行った。
プラスミドpET774のDNA溶液 1.5μl
dNTP(各2mMのmixture) 10μl
プライマー(50pmol/μl) 各0.3μl
2xbuffer 25μl
KOD-FX(1U/μl、東洋紡社製) 1μl
超純水 11.9μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NcoI及びPstIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びPstIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoIとPstIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、約1.1kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrc774chNPと名付けた。プラスミドpTrc774chNPは、配列番号1で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号26で示される塩基配列(CGGATCCGAGGAAACAGACCATGG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号40で示される塩基配列(GCTGCAGCTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)で示されるオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用いて、実施例9(1−2)に記載のプラスミドpTrc774chNPを鋳型にして、下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc774chNPのDNA溶液 1.5μl
dNTP(各2mMのmixture) 10μl
プライマー(50pmol/μl) 各0.3μl
2xbuffer 25μl
KOD-FX(1U/μl、東洋紡社製) 1μl
超純水 11.9μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.1kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素BamHI及びPstIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.1kbのDNAを精製した。
実施例9(1−1)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)nhを制限酵素BamHI及びPstIにより二重消化させ、酵素消化されたプラスミドDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素BamHIとPstIとにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、約1.1kbのDNAがプラスミドpTrcLD(A113G)nhに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをプラスミドpTrcLD(A113G)nh/774chと名付けた。
配列番号32で示される塩基配列(GCCATGGCTATGTCTCAAAAACCAAAAATC)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と、配列番号41で示される塩基配列(CAAGCTTGTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とを合成する。配列番号32で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーと配列番号41で示されるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、実施例7の(1−1)に記載のプラスミドpET43SCcHisを鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
pET43SCcHisのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素NcoI及びHindIIIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.0kbのDNAを精製した。
プラスミドベクターpTrc99A(GEヘルスケア社製)を制限酵素NcoI及びHindIIIにより二重消化させ、酵素消化されたベクターDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から10コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素NcoI及びHindIIIにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。4つのプラスミドにおいて、約1.0kbのDNAが上記ベクターに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrc43SCchNHと名付けた。プラスミドpTrc43SCchNHは、配列番号3で示されるアミノ酸配列のカルボキシ末端に、連続する6残基のヒスチジンを含む8アミノ酸からなるアミノ酸配列(配列番号45:LeuGluHisHisHisHisHisHis)が付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質を発現可能なように設計されている。
配列番号28で示される塩基配列(GCTGCAGCAGGAAACAGACCATGG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号41で示される塩基配列(CAAGCTTGTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用いて、実施例9(1−4)に記載のプラスミドpTrc43SCchNHを鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc43SCchNHのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素PstI及びHindIIIを加えて、DNA断片を二重消化させ、酵素消化された約1.0kbDNAを精製した。
実施例9(1−3)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)nh/774chを制限酵素PstI及びHindIIIにより二重消化させ、酵素消化されたプラスミドDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素PstIとHindIIIとにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した6つのプラスミドにおいて、約1.0kbのDNAがプラスミドpTrcLD(A113G)nh/774chに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドの1つをpTrcLD(A113G)nh/774ch/43SCchと名付けた。
配列番号28で示される塩基配列(GCTGCAGCAGGAAACAGACCATGG)を有するオリゴヌクレオチド(センスプライマー)と配列番号41で示される塩基配列(CAAGCTTGTCAGTGGTGGTGGTGGTGGTG)を有するオリゴヌクレオチド(アンチセンスプライマー)とをプライマーに用い、実施例7の(8)に記載のプラスミドpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gを鋳型にして、Expand High Fidelity PCR System(ロシュ・ダイアグノスティック社製)を用いた下記反応液組成でPCRを行った。
pTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737gのDNA溶液 1μl
dNTP(各2.5mMのmixture) 1μl
プライマー(20pmol/μl) 各0.4μl
5xbuffer(with MgCl2) 10μl
enz.expandHiFi (3.5x103U/ml) 0.5μl
超純水 36.7μl
その後、上記PCR反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供した。約1.0kbのDNAのバンドが検出された。
残りのPCR反応液に制限酵素PstI及びHindIIIを加えてDNAを二重消化させ、酵素消化された約1.0kbのDNAを精製した。
実施例9(1−5)に記載のプラスミドpTrcLD(A113G)nh/774ch/43SCchを制限酵素PstI及びHindIIIにより二重消化させ、酵素消化された約6.4kbのプラスミドDNAを精製した。
これらの精製されたDNAを混合し、T4 DNAリガーゼでライゲーションし、得られたライゲーション液でE.coli DH5αを形質転換した。
得られた形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを含有するLB寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から8コロニーを無作為に選抜した。選抜されたコロニーをそれぞれ50μg/mlのアンピシリンを含有する滅菌LB培地2mlに接種し、試験管中で37℃、17時間振盪培養した。それぞれの培養菌体からQIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen社製)を用いてプラスミドを取り出した。取り出されたプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素PstIとHindIIIとにより二重消化した後、アガロースゲル電気泳動に供した。6つのプラスミドにおいて、約1.0kbのDNAが上記約6.4kbのプラスミドDNAに挿入されていることが確認された。これらのプラスミドのうちの1つをpTrcLD(A113G)nh/774ch/43SCMchと名付けた。
プラスミドpTrcLD(A113G)nh/774ch/43SCchを用いてE.coli JM109株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地20mlに接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られた培養液を遠心分離し、湿菌体を得た。この湿菌体約0.1gを0.5M Tris-HClバッファー(pH9)1mlに懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、遠心上清液約0.7mlを得た。
得られた遠心上清液の0.1ml、アンモニア水を用いpH9に調製した2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸(東京化成社製)の40%水溶液を0.4ml、NAD+10mg、及び硫酸アンモニウム20mgを混合し、30℃で18時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。85.1g/LのL−メチオニンが生成していることがわかった。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸の量に対してL−メチオニン収率は21.5%であった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
プラスミドpTrcLD(A113G)nh/774ch/43SCMchを用いてE.coli JM109株を形質転換した。得られた形質転換体を0.1mMのIPTGと50μg/mlのアンピシリンとを含有する滅菌LB培地20mlに接種し、30℃、15時間振盪培養した。得られた培養液を遠心分離し、湿菌体を得た。この湿菌体約0.1gを0.5M Tris-HClバッファー(pH9)1mlに懸濁し、マルチビーズショッカー(安井器械社製)及びガラスビーズ(0.1mmΦ)を用いて、2500rpmにて20分間破砕処理した。得られた破砕液を8000rpm、4℃にて10分間遠心分離し、遠心上清液約0.7mlを得た。
得られた遠心上清液の0.1ml、アンモニア水を用いpH9に調製した2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸(東京化成社製)の40%水溶液を0.4ml、NAD+10mg、及び硫酸アンモニウム20mgを混合し、30℃で2時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。82.5g/LのL−メチオニンが生成していることがわかった。反応に用いた2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸の量に対してL−メチオニン収率は20.8%であった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
実施例2(1)で調製された本発明タンパク質(B)の精製酵素液(40gタンパク質/L)の2倍希釈液0.1mlと、実施例2(2)で調製された本発明タンパク質(A)の精製酵素液(9gタンパク質/L)の2倍濃縮液0.1mlと、実施例3(4)で調製されたロイシン脱水素酵素(A113G)精製酵素液(32.6gタンパク質/L)の2倍希釈液0.1mlとを混合し、Amicon Ultra-15(ミリポア社製)にて濃縮し、0.1mlの精製酵素混合液を得た。得られた精製酵素混合液0.1ml、アンモニア水を用いpH9に調製したDL‐α‐ヒドロキシイソカプロン酸(ACROS ORGANICS社製)の40%水溶液を0.1ml、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.3ml、及び硫酸アンモニウム20mgを混合し、30℃で18時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いたDL‐α‐ヒドロキシイソカプロン酸の量に対してL−ロイシンは60.9%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
実施例2(1)で調製された本発明タンパク質(B)の精製酵素液(40gタンパク質/L)の2.5倍希釈液0.1mlと、実施例8(1)でpTrc43SCcHis-g325a/g572a/a737g形質転換体から調製された本発明タンパク質(A)の精製酵素液(3.2gタンパク質/L)の4.5倍濃縮液0.1mlと、実施例3(4)で調製されたロイシン脱水素酵素(A113G)精製酵素液(32.6gタンパク質/L)の2倍希釈液0.1mlとを混合し、Amicon Ultra-15(ミリポア社製)にて濃縮し、0.1mlの精製酵素混合液を得た。得られた精製酵素混合液0.1ml、アンモニア水を用いpH9に調製したDL‐α‐ヒドロキシイソカプロン酸(ACROS ORGANICS社製)の40%水溶液を0.1ml、NAD+10mg、0.5M Tris-HCl緩衝液(pH9.0)0.3ml、及び硫酸アンモニウム20mgを混合し、30℃で18時間振とうした。この反応液につき下記条件で液体クロマトグラフィーによる含量分析を行った。反応に用いたDL‐α‐ヒドロキシイソカプロン酸の量に対してL−ロイシンは88.0%生成していることがわかった。
カラム:UNISON UK−C18(4.6mmφ×25cm、3μm)
移動相:50mM リン酸を含む12mM 1−ヘプタンスルホン酸ナトリウム水溶液(A液)とアセトニトリル(B液)をA液(%):B液(%)=90:10の割合で混合
流量:0.8ml/分
カラム温度:37℃
検出:210nm
[配列表フリ−テキスト]
PCRのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号13
デヒドロゲナーゼをコードするポリヌクレオチド
配列番号14−41
PCRのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号44−45
設計されたアミノ酸配列
Claims (43)
- 下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7、または10のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードするポリヌクレオチド。 - 前記アミノ酸配列をコードする塩基配列のコドン使用頻度を大腸菌のコドン使用頻度に合わせるように選択されたコドンを含む改変された塩基配列を有する請求項1記載のポリヌクレオチド。
- 宿主細胞内において機能可能なプロモーターと請求項1または2記載のポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド又は請求項4記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体。
- 宿主細胞が微生物または大腸菌である請求項5記載の形質転換体。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを保有する形質転換体。
- 宿主細胞内で複製可能なベクターに、請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを組込む工程を含む組換えベクターの製造方法。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項4記載の組換えベクターを宿主細胞に導入する工程を含む形質転換体の製造方法。
- 下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7,8,10,12,15あるいは17のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
をコードするポリヌクレオチド。 - 宿主細胞内において機能可能なプロモーターと請求項10記載のポリヌクレオチドとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド。
- 請求項10または11記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター。
- 請求項10または11記載のポリヌクレオチド又は請求項12記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体。
- 宿主細胞が微生物または大腸菌である請求項13記載の形質転換体。
- 請求項10または11記載のポリヌクレオチドを保有する形質転換体。
- 宿主細胞内で複製可能なベクターに、請求項10または11記載のポリヌクレオチドを組込む工程を含む組換えベクターの製造方法。
- 請求項10または11記載のポリヌクレオチドまたは請求項12記載の組換えベクターを宿主細胞に導入する工程を含む形質転換体の製造方法。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドと請求項10または11記載のポリヌクレオチドとを含有する組換えベクター。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチドをさらに含む請求項18記載の組換えベクター。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質がロイシン脱水素酵素である請求項19記載の組換えベクター。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列が、下記(C1)から(C3)のいずれかのアミノ酸配列:
(C1)配列番号7で示されるアミノ酸配列、
(C2)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列に対して90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(C3)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列において1、2、3、4、5、6、7、10、15、18、20、25、30、35、36あるいは40 のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列;
である請求項19または20記載の組換えベクター。 - 請求項18から21のいずれか一項に記載の組換えベクターが宿主細胞に導入されてなる形質転換体。
- 宿主細胞が微生物または大腸菌である請求項22記載の形質転換体。
- i)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有するポリヌクレオチド、または、当該ポリヌクレオチドと宿主細胞内において機能可能なプロモーターとが機能可能な形で接続されてなるポリヌクレオチド、
ii)請求項1から3のいずれか一項に記載のポリヌクレオチド、及び
iii)請求項10または11記載のポリヌクレオチド;
を保有する形質転換体。 - 下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7、または10のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質。 - 下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7,8,10,12,15あるいは17のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質。 - (1)下記(A1)から(A5)のいずれかのアミノ酸配列:
(A1)配列番号3で示されるアミノ酸配列、
(A2)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A3)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7、または10のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(A4)i)配列番号4または13で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(A5)i)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、109番目のバリンのイソロイシンへの置換、191番目のグリシンのアスパラギン酸への置換及び246番目のグルタミンのアルギニンへの置換からなる群から選ばれる1以上のアミノ酸置換を有する改変アミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質と、
下記(B1)から(B4)のいずれかのアミノ酸配列:
(B1)配列番号1で示されるアミノ酸配列、
(B2)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対して95%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、
(B3)i)配列番号1で示されるアミノ酸配列において1、2,3,4,5,6,7,8,10,12,15あるいは17のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(B4)i)配列番号2で示される塩基配列の相補配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされるアミノ酸配列であって、かつ、ii)2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力と、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力とのいずれか又は両者を有するタンパク質のアミノ酸配列;
を有するタンパク質とのいずれか又は両者を、α−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させて、対応するα−オキソカルボン酸化合物を得る工程、及び
(2)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質を、工程(1)で得られたα−オキソカルボン酸化合物に作用させて、対応するL−α−アミノ酸化合物を得る工程、
を含むL−α−アミノ酸化合物の製造方法。 - α−ヒドロキシカルボン酸化合物が含硫α−ヒドロキシカルボン酸化合物であり、対応するα−オキソカルボン酸化合物が含硫α−オキソカルボン酸化合物であり、対応するL−α−アミノ酸化合物が含硫L−α−アミノ酸化合物であり、工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、2−ヒドロキシ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体を酸化して対応する2−オキソ−4−(メチルチオ)酪酸誘導体に変換する能力を少なくとも有するタンパク質である請求項27記載の製造方法。
- α−ヒドロキシカルボン酸化合物がα−ヒドロキシ−イソカプロン酸であり、対応するα−オキソカルボン酸化合物がα−オキソ−イソカプロン酸であり、対応するL−α−アミノ酸化合物がL−ロイシンであり、工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、α−ヒドロキシ−イソカプロン酸誘導体を酸化して対応するα−オキソ−イソカプロン酸誘導体に変換する能力を少なくとも有するタンパク質である請求項27記載の製造方法。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質がロイシン脱水素酵素である請求項27から30のいずれか一項に記載の製造方法。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列が、下記(C1)から(C3)のいずれかのアミノ酸配列:
(C1)配列番号7で示されるアミノ酸配列、
(C2)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列に対して90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列、または
(C3)i)配列番号7で示されるアミノ酸配列において1、2、3、4、5、6、7、10、15、18、20、25、30、35、36あるいは40のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、ii)α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質のアミノ酸配列;
である請求項27から31のいずれか一項に記載の製造方法。 - 工程(1)においてα−ヒドロキシカルボン酸化合物に作用させるタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される請求項27から32のいずれか一項に記載の製造方法。
- 前記形質転換体が、請求項5、6、7、13、14、15、22、23または24のいずれか一項に記載の形質転換体である請求項33記載の製造方法。
- α−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される請求項27から34のいずれか一項に記載の製造方法。
- 前記形質転換体が、請求項22、23または24のいずれか一項に記載の形質転換体である請求項35記載の製造方法。
- 工程(1)が、還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質の存在下で行われる請求項27から36のいずれか一項に記載の製造方法。
- 還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質がα−オキソカルボン酸化合物をアミノ化して対応するL−α−アミノ酸化合物に変換する能力をさらに有するタンパク質である請求項37記載の製造方法。
- 還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは還元型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を酸化型に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される請求項37または38記載の製造方法。
- 工程(2)が、酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質の存在下で行われる請求項27から39のいずれか一項に記載の製造方法。
- 酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質がα−ヒドロキシカルボン酸化合物を酸化して対応するα−オキソカルボン酸化合物に変換する能力をさらに有するタンパク質である請求項40に記載の製造方法。
- 酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたは酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸を還元型に変換する能力を有するタンパク質が、当該タンパク質をコードするポリヌクレオチドが宿主細胞に導入されてなる形質転換体若しくはその処理物に含まれる形態で反応系に提供される請求項40または41記載の製造方法。
- 工程(1)と工程(2)とが一つの反応系で行われる請求項27から42のいずれか一項に記載の製造方法。
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