JP6275203B2

JP6275203B2 - 脂肪酸およびその誘導体の生産

Info

Publication number: JP6275203B2
Application number: JP2016126210A
Authority: JP
Inventors: ジェイ・ディ・キースリング; フ・ジハオ; クリス・ソマービル; ジョージ・チャーチ; デイビッド・ベリー; リサ・フリードマン; アンドレアス・シャーマー; シェイン・ブルベイカー; スティーブン・ビー・デル・カーデイレ
Original assignee: アールイージーライフサイエンシズリミテッドライアビリティカンパニー
Priority date: 2006-05-19
Filing date: 2016-06-27
Publication date: 2018-02-07
Anticipated expiration: 2027-05-18
Also published as: KR20090029708A; JP5933909B2; JP2016178943A; EP2157170B1; ES2529176T3; ES2528482T3; WO2007136762A3; EP2024491B1; EP2194119A2; DK2840131T3; CA2650773A1; CA2650773C; MX2008014603A; MX344588B; MX356086B; JP2010505388A; EP2157170A1; ES2763624T3; EP2194119A3; EP2024491A2

Description

関連出願とのクロスリフェレエンス
本出願は、2006年5月19出願の米国仮出願第60/802,016号、2006年5月19出願の米国仮出願第60/801,995号、2007年3月28日出願の米国仮出願 60/908,547および2007年2月13日出願のPCT出願番号 PCT/US2007/003736からの優先権を主張し、これらはすべて引用により本明細書に含まれる。

分野
脂肪酸生合成経路からの生成物(脂肪酸誘導体)を生産する遺伝子操作された微生物、およびその使用方法が提供される。

背景
技術開発に伴って、燃料源への依存が高まっており、かかる燃料源はますます制限され取得が困難となってきている。今までにない速度で起こっている化石燃料の燃焼により、世界の燃料需要はすぐに現在の燃料の供給を上回ってしまうであろう。

そのため、太陽光、水力、風力、およびバイオマスなどの再生可能エネルギー源を利用する努力がなされてきている。石油源に由来しない燃料の新しい源を作るためのバイオマスの利用(即ち、バイオ燃料)が１つの選択肢として現れている。バイオ燃料 (バイオディーゼル)は、長鎖アルカンおよびエステルでできている生分解性、クリーンな燃焼の可燃燃料である。バイオディーゼルは、「真の」バイオディーゼルと称される純粋な形態、または、通常の石油ディーゼルといくらかの濃度にて混合物として、ほとんどの内燃ディーゼルエンジンにおいて利用可能である。バイオディーゼルを作る現在の方法は、トリアシルグリセリド(主に植物油)のエステル交換を含み、これは脂肪酸エステルと望ましくない副産物であるグリセリンの混合物を導き、したがって、経済的非効率をもたらす異種の生成物および廃棄物が生じる。

概要
脂肪酸生合成経路に由来する生成物(脂肪酸誘導体)を合成することができ、所望によりかかる生成物を発酵ブロスに放出することが出来る組換え微生物が本明細書に開示される。かかる脂肪酸誘導体はとりわけ、バイオ燃料および特殊化学製品として有用である。これらバイオ燃料および特殊化学製品は、さらなる製品、例えば、栄養サプリメント、ポリマー、パラフィン代用品およびパーソナルケア製品の製造に利用できる。

本明細書に開示される組換え微生物は、これらに限定されないが以下を含む様々な脂肪酸誘導体を生じるよう操作することが出来る：短鎖アルコール、例えば、エタノール、プロパノール、イソプロパノールおよびブタノール、脂肪アルコール、脂肪酸エステル、炭化水素およびろうエステル(wax ester)。

一つの例において、本開示は、再生可能な炭素源から生じる脂肪酸誘導体を生産し、所望によりそれを放出するように微生物を改変する方法を提供する。かかる微生物は、例えば、脂肪酸誘導体を生産し、ある例においては分泌するために、再生可能な炭素源を代謝することができる１以上のタンパク質をコードする外来性 DNA 配列を導入することにより、遺伝子操作される。改変された微生物は、出発物質として再生可能な炭素源 (バイオマス)を用いて有用な脂肪酸誘導体を生産するために発酵プロセスにおいて利用可能である。いくつかの例において、既存の遺伝子操作しやすい微生物が、生育、生産の制御および生合成経路効率を下げる副反応の低減または排除のためのその経路の操作の容易性により用いられる。さらに、かかる改変された微生物は、貯蔵または輸送のための特定の方法の必要なく、直接バイオ燃料として利用可能な燃料を作るために再生可能な炭素源を消費するためにも利用できる。別の例において、炭化水素を天然に生産する微生物が、脂肪酸生産を高める外来性核酸配列の発現により炭化水素を過剰生産するように操作される。

規定された炭素鎖長、分枝、および飽和レベルを有する脂肪酸誘導体を生産する微生物を本明細書において提供する。具体的な例において、均質な生成物の生産は、発酵および分離に伴う総コストを低下させる。いくつかの例において、少なくとも１つのチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14)、および少なくとも１つのろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)をコードする１以上の外来性核酸配列を含む微生物が提供される。別の例において、少なくとも１つのチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14) および少なくとも１つのアルコールアセチルトランスフェラーゼ (2.3.1.84)をコードする１以上の外来性核酸配列を含む微生物が提供される。さらに別の例において、少なくとも１つのチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14)、少なくとも１つのアシル-CoAレダクターゼ (EC 1.2.1.50)および少なくとも１つのアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)をコードする１以上の外来性核酸配列を含む微生物が提供される。少なくとも１つのチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14)および少なくとも１つの脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (1.1.1.*)をコードする１以上の外来性核酸配列を発現する微生物も提供される。外来性核酸配列によってコードされるチオエステラーゼペプチドは、均質な生成物を提供するために選択されうる。

いくつかの例において、脂肪酸誘導体を生産するよう操作される微生物は、大腸菌(E.
coli)、ゼット・モビリス(Z. mobilis)、ロドコッカス・オパクス(Rhodococcus opacus)、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)、ビブリオ・ファーニッシ(Vibrio furnissii)、サッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)、ラクトコッカス・ラクティス(Lactococcus lactis)、ストレプトマイセテス(Streptomycetes)、ステノトロホモナス・マルトフィリア(Stenotrophomonas maltophila)、シュードモナス(Pseudomonas)またはミクロコッカス・ロイテウス(Micrococus leuteus)およびそれらの類縁体である。

別の例において、炭化水素を内因的に生産する微生物を、脂肪酸生合成経路を本明細書に記載のように最適化することによって炭化水素を過剰生産するよう操作することが出来る。炭化水素を生産することが知られており、本明細書に提供する教示を用いて炭化水素を過剰生産するよう操作されうる例示的な微生物としては、アルスロバクター・エスピー(Arthrobacter sp.)、バシラス・エスピー(Bacillus sp.)、ボツリオコッカス・ブラウニ(Botryococcus braunii)、クロマチウム・エスピー(Chromatium sp.)、クラドスポリウム・レシナ(Cladosporium resina)(ATCC22711)、クロストリジウム・パステウリアヌム・ブイケーエム(Clostridium pasteurianum VKM)、クロストリジウム・テナノモルフム(Clostridium tenanomorphum)、クロストリジウム・アシディウリキ(Clostridium acidiurici)、コリネバクテリウム種(Corynebacterium spieces)、シアノバクテリア種(cyanobacterial spieces)(ノストック・ムスコルム(Nostoc muscorum)、アナシスティス(Anacystis)(シネココッカス(Synechococcus))・ニドゥランス(nidulans)、フォルミジウム・ルリダム(Phormidium luridum)、クロログロエア・フリツキ(Chlorogloea fritschii)、トリコデスミウム・エリタエウム(Trichodesmium erythaeum)、オシラトリア・ウィリアムシ(Oscillatoria williamsii)、ミクロコレウス・キトノプラセイス(Microcoleus chthonoplaseis)、コッコクロリス・エラベンス(Coccochloris elabens)、アグメネルム・クアドルプリカツム(Agmenellum quadruplicatum)、プレクトネマ・テレブランス(Plectonema terebrans)、エム・ヴァギナツス(M vaginatus)およびシー・スコプロルム(C. scopulorum)) 、デスルフォビブリオ・デスルフリカンス(Desulfovibrio desulfuricans)(ATCC29577)、キネオコッカス・ラジオトレランス(Kineococcus radiotolerans)(BAA-149)、ミクロコッカス・ルテウス(Micrococcus luteus)(FD533、ATCC 272、381、382、ISU、540、4698、7468、27141)、ミクロコッカス・エスピー(Micrococcus sp.)(ATCC 146、398、401、533)、ミクロコッカス・ロセウス(Micrococcus roseus)(ATCC 412、416、516)、ミクロコッカス・リソデイクチクス(Micrococcus lysodeikticus)、マイコバクテリウム種(Mycobacterium spieces)、ペニシリウム・エスピー(Penicillium sp.)、アスペルギルス・エスピー(Aspergillus sp.)、トリコデルマ・ビリダ(Trichoderma virida)、プルラリア・プルランス(Pullularia pullulans)、ジェオトガリコッカス・エスピー(Jeotgalicoccus sp.) (エム・カンディカンス(M. candicans))(ATCC 8456)、ロドシュードモナス・スフェロイド(Rhodopseudomonas spheroids)、クロロビウム・エスピー(Chlorobium sp.)、ロドスピリリウム・ルブラム(Rhodospirillium rubrum)(ATCC11170)、ロドミクロビウム・バニエリ(Rhodomicrobium vannielii)、ステノトロフォモナス・マルトフィリア(Stenotrophomonas maltophilia)(ATCC 13637、17444、17445、17666、17668、17673、17674、17679、17677)、サッカロマイコデス・ルドウィギ (Saccharomycodes ludwigii)(ATCC 22711)、サッカロマイセス・エスピー(Saccharomyces sp.) (オビフォルムス(oviformus)、ルドウィギ(ludwiggi)、トロピカリス(tropicalis))、ビブリオ・ファーニッシ M1、ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus) MP-1、ビブリオ・ポンチクス(Vibrio ponticus)、セッラティア・マリノルブラ(Serratia marinorubra)、ウスティラゴ・マイディス(Ustilago maydis)、ウスティラゴ・ヌダ(Ustilago nuda)、ウロシスティス・アグロピリ(Urocystis agropyri)、スファセロテカ・レイリアナ(Sphacelotheca reiliana)、およびティレティア・エスピー(Tilletia sp.)(フォエチダ(foetida)、カリエス(caries)、コントロヴェルサ(controversa))が挙げられる。

脂肪酸誘導体の生産を可能とする外来性核酸配列を発現するよう操作されていることに加えて、微生物はさらに１以上の機能的に欠失または減弱された内因性遺伝子を有しうる。例えば、ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3) およびそれらの組合せが減弱化されうる。

脂肪酸誘導体の生産を可能とする外来性核酸配列を発現するよう操作されていることに加えて、微生物はさらに１以上の過剰発現されるさらなる遺伝子を有しうる。例えば、pdh、panK、aceEF (ピルビン酸および 2-オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ複合体のE1p
デヒドロゲナーゼ成分およびE2p ジヒドロリポアミドアシルトランスフェラーゼ成分をコードする、受入番号: NP_414656、NP_414657、EC: 1.2.4.1. 2.3.1.61、2.3.1.12)、accABCD /fabH /fabD/fabG/acpP/fabF (FASをコードする、受入番号: CAD85557、CAD85558、NP_842277、NP_841683、NP_415613、EC: 2.3.1.180、2.3.1.39、1.1.1.100、1.6.5.3、2.3.1.179)、脂肪-アシルCoAレダクターゼをコードする遺伝子 (受入番号: AAC45217、EC 1.2.1.-)、UdhAまたは類似の遺伝子 (ピリジンヌクレオチドトランスヒドロゲナーゼをコードする、受入番号: CAA46822 、EC:1.6.1.1) および脂肪-アシルCoAレダクターゼをコードする遺伝子(受入番号: AAC45217、EC 1.2.1.-)。

いくつかの例において、本明細書に記載する微生物は、発酵ブロス１リットル当たり少なくとも 1 mgの脂肪酸誘導体を生産する。別の例において、微生物は発酵ブロス１リットル当たり少なくとも 100 mg/L、500 mg/L、1 g/L、5 g/L、10 g/L、20 g/L、25 g/L、30 g/L、35 g/L、40 g/L、50 g/L、100 g/L、または 120 g/Lの脂肪酸誘導体を生産する。いくつかの例において、脂肪酸誘導体は微生物から生産および放出され、さらに別の例において、微生物は生成物の分離の前に溶解される。

いくつかの例において、脂肪酸誘導体は、少なくとも 8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、または34 炭素長の炭素鎖を含む。いくつかの例において少なくとも 50%、60%、70%、80%、85%、90%、または 95%の作られる脂肪酸誘導体生成物は、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、または 34 炭素長の炭素鎖を含む。さらに別の例において、少なくとも 60%、70%、80%、85%、90%、または 95%の脂肪酸誘導体生成物は 1、2、3、4、または5の不飽和点を含む。

脂肪酸誘導体を生産する方法も提供される。これらの方法は、本明細書に記載する微生物を培養する工程および発酵ブロスから生成物を分離する工程を含む。

[本発明1001]
accA (EC 6.4.1.2)、accB (EC 6.4.1.2)、accC (EC 6.4.1.2)、accD (EC 6.4.1.2)、 aceE (EC 1.2.4.1、2.3.1.61、2.3.1.12)、aceF (EC 1.2.4.1、2.3.4.16、2.3.1.12)、 acpP (AAC74178)、fadD (EC 2.3.1.86)、cer1 (EC 4.1.99.5)、fabA (EC4.2.1.60)、fabB (EC 2.3.1.41)、fabD (EC 2.3.1.39)、fabG (EC 1.1.1.100)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabI
(EC 1.3.1.9)、fabZ(EC 4.2.1.-)、リパーゼ (EC 3.1.1.3)、マロニル-CoA デカルボキシラーゼ (EC 4.1.1.9、4.1.1.41)、panD (EC 4.1.1.11)、panK (EC 2.7.1.33)、pdh (EC
1.2.4.1)、udhA (EC 1.6.1.1) およびそれらの組合せから選択される少なくとも1つのペプチド、およびろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1002]
accA (EC 6.4.1.2)、accB (EC 6.4.1.2)、accC (EC 6.4.1.2)、accD (EC 6.4.1.2)、 aceE (EC 1.2.4.1、2.3.1.61、2.3.1.12)、aceF (EC 1.2.4.1、2.3.4.16、2.3.1.12)、 acpP (AAC74178)、fadD (EC 2.3.1.86)、cer1 (EC 4.1.99.5)、fabA (EC4.2.1.60)、fabB (EC 2.3.1.41)、fabD (EC 2.3.1.39)、fabG (EC 1.1.1.100)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabI
(EC 1.3.1.9)、fabZ(EC 4.2.1.-)、リパーゼ (EC 3.1.1.3)、マロニル-CoA デカルボキシラーゼ (EC 4.1.1.9、4.1.1.41)、panD (EC 4.1.1.11)、panK (EC 2.7.1.33)、pdh (EC
1.2.4.1)、udhA (EC 1.6.1.1) およびそれらの組合せから選択される少なくとも1つの
ペプチド、およびアルコールアセチルトランスフェラーゼ (2.3.1.84)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1003]
accA (EC 6.4.1.2)、accB (EC 6.4.1.2)、accC (EC 6.4.1.2)、accD (EC 6.4.1.2)、 aceE (EC 1.2.4.1、2.3.1.61、2.3.1.12)、aceF (EC 1.2.4.1、2.3.4.16、2.3.1.12)、 acpP (AAC74178)、fadD (EC 2.3.1.86)、cer1 (EC 4.1.99.5)、fabA (EC4.2.1.60)、fabB (EC 2.3.1.41)、fabD (EC 2.3.1.39)、fabG (EC 1.1.1.100)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabI
(EC 1.3.1.9)、fabZ(EC 4.2.1.-)、リパーゼ (EC 3.1.1.3)、マロニル-CoA デカルボキシラーゼ (EC 4.1.1.9、4.1.1.41)、panD (EC 4.1.1.11)、panK (EC 2.7.1.33)、pdh (EC
1.2.4.1)、udhA (EC 1.6.1.1) 、それらの組合せから選択される少なくとも1つのペプチド、およびアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1004]
accA (EC 6.4.1.2)、accB (EC 6.4.1.2)、accC (EC 6.4.1.2)、accD (EC 6.4.1.2)、 aceE (EC 1.2.4.1、2.3.1.61、2.3.1.12)、aceF (EC 1.2.4.1、2.3.4.16、2.3.1.12)、 acpP (AAC74178)、fadD (EC 2.3.1.86)、cer1 (EC 4.1.99.5)、fabA (EC4.2.1.60)、fabB (EC 2.3.1.41)、fabD (EC 2.3.1.39)、fabG (EC 1.1.1.100)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabI
(EC 1.3.1.9)、fabZ(EC 4.2.1.-)、リパーゼ (EC 3.1.1.3)、マロニル-CoA デカルボキシラーゼ (EC 4.1.1.9、4.1.1.41)、panD (EC 4.1.1.11)、panK (EC 2.7.1.33)、pdh (EC
1.2.4.1)、udhA (EC 1.6.1.1) およびそれらの組合せから選択される少なくとも1つのペプチド、および脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (1.1.1.*)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1005]
ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3) およびそれらの組合せから選択される1以上の減弱された内因性核酸配列、およびろうシンターゼ (EC 2.3.1.75) またはアシルトランスフェラーゼ (EC2.3.1.84)を含む第二のペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1006]
ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3) およびそれらの組合せから選択される1以上の減弱された内因性核酸配列、および、アルコールアセチルトランスフェラーゼ (EC 2.3.1.84)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1007]
ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3) およびそれらの組合せから選択される1以上の減弱された内因性核酸配列、および、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1008]
ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3)
およびそれらの組合せから選択される1以上の減弱された内因性核酸配列、および、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (1.2.1.*)を含むペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む微生物。
[本発明1009]
大腸菌である本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1010]
さらに脂肪酸誘導体を含む本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1011]
さらにACP、Sfa、またはそれらの組合せをコードする外来性核酸配列を含む本発明1010の微生物。
[本発明1012]
分枝鎖ケト酸デヒドロゲナーゼ複合体の1以上の成分(EC 1.2.4.4)、llve (EC 2.6.1.42)、lpd (EC 1.8.1.4)、Ccr (EC1.1.19)、IcmA (EC5.4.99.2)、IcmB (5.4.99.13)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabF (EC 2.3.1.179)、fabH3 (EC 2.3.1.180)、fabC3(NP_823468)、ベータ-ケトアシル-ACP シンターゼ II (EC 2.3.1.180)、エノイル-CoA レダクターゼ (EC 1.3.1.34)、エノイル-CoA イソメラーゼ (EC 4.2.1.-)、およびそれらの組合せから選択される酵素をコードする1以上の外来性核酸配列を発現し、脂肪酸誘導体が分枝のものである本発明1010の微生物。
[本発明1013]
チオエステラーゼ (3.1.2.-、3.1.1.- )をコードする1以上の外来性核酸配列を発現する本発明1010の微生物。
[本発明1014]
fabB (EC2.3.1.41)、fabK (EC 1.2.1.9)、fabL (EC 1.2.1.9)、fabM (5.3.3.14)、fadE
(EC 1.3.99.3、1.3.99.-) およびそれらの組合せから選択される酵素をコードする1以上の外来性核酸配列を発現し、脂肪酸誘導体が不飽和のものである本発明1010の微生物。
[本発明1015]
fadEが減弱されている本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1016]
accABCE、fadD が過剰発現されている本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1017]
微生物が少なくとも 10 mg/Lの脂肪酸エステル、10 mg/L の脂肪アルコール、10 mg/Lの炭化水素または少なくとも 10 mg/Lのろうを含む発酵ブロスを含む容器内にある本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1018]
脂肪酸誘導体が約 1から約 5の二重結合を含む本発明1010の微生物。
[本発明1019]
脂肪酸誘導体が炭素鎖長約 8から約 30を含む本発明1010の微生物。
[本発明1020]
脂肪酸誘導体が約 1から約 5の分枝点を含む本発明1010の微生物。
[本発明1021]
A側および B側を有する脂肪酸エステルまたはろうをさらに含む本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1022]
A側およびB側が微生物によって生産される本発明1021の微生物。
[本発明1023]
A側、B側、またはA側およびB側の両方が、約 1から約 5の二重結合を含む本発明1021の微生物。
[本発明1024]
A側、B側、またはA側およびB側の両方が炭素鎖長約 1から約 26を含む本発明1021の微生物。
[本発明1025]
A側、B側、またはA側およびB側の両方が、約 1 から約 5の炭素分枝点を含む本発明1021の微生物。
[本発明1026]
A側、B側、またはA側およびB側の両方が、1から5のシクロプロピル部分を含む本発明1021の微生物。
[本発明1027]
アルスロバクター・エスピー、バシラス・エスピー、ボツリオコッカス・ブラウニ、クロマチウム・エスピー、クラドスポリウム・レシナ (ATCC22711)、クロストリジウム・パステウリアヌム・ブイケーエム、クロストリジウム・テナノモルフム、クロストリジウム・アシディウリキ、コリネバクテリウム種、シアノバクテリア種 (ノストック・ムスコルム、アナシスティス (シネココッカス)・ニドゥランス、フォルミジウム・ルリダム、クロログロエア・フリツキ、トリコデスミウム・エリタエウム、オシラトリア・ウィリアムシ、ミクロコレウス・キトノプラセイス、コッコクロリス・エラベンス、アグメネルム・クアドルプリカツム、プレクトネマ・テレブランス、エム・ヴァギナツス、およびシー・スコプロルム) 、デスルフォビブリオ・デスルフリカンス (ATCC29577)、キネオコッカス・ラジオトレランス (BAA-149)、ミクロコッカス・ルテウス (FD533、ATCC 272、381、382、ISU、540、4698、7468、27141)、ミクロコッカス・エスピー(ATCC 146、398、401、533)、ミクロコッカス・ロセウス (ATCC 412、416、516)、ミクロコッカス・リソデイクチクス、マイコバクテリウム種、ペニシリウム・エスピー、アスペルギルス・エスピー、トリコデルマ・ビリダ、プルラリア・プルランス、ジェオトガリコッカス・エスピー(エム・カンディカンス)(ATCC 8456)、ロドシュードモナス・スフェロイド、クロロビウム・エスピー、ロドスピリリウム・ルブラム (ATCC11170)、ロドミクロビウム・バニエリ、ステノトロフォモナス・マルトフィリア (ATCC 13637、17444、17445、17666、17668、17673、17674、17679、17677)、サッカロマイコデス・ルドウィギ (ATCC 22711)、サッカロマイセス・エスピー(オビフォルムス、ルドウィギ、トロピカリス)、ビブリオ・ファーニッシ M1、ビブリオ・マリヌス MP-1、ビブリオ・ポンチクス、セッラティア・マリノルブラ、ウスティラゴ・マイディス、ウスティラゴ・ヌダ、ウロシスティス・アグロピリ、スファセロテカ・レイリアナ、またはティレティア・エスピー(フォエチダ、カリエス、コントロヴェルサ)である本発明1001-1008のいずれかの微生物。
[本発明1028]
本発明1003、1004、1007または1008のいずれかの微生物を脂肪アルコールを生産するのに十分な条件下で培養する工程; および脂肪アルコールを分離する工程を含む、脂肪アルコールの生産方法。
[本発明1029]
本発明1001、1002、1006、1007 または1021-1025のいずれかの微生物を脂肪酸エステルを生産するのに十分な条件下で培養する工程; および脂肪酸エステルを分離する工程を含む、脂肪酸エステルの生産方法。
[本発明1030]
本発明1001、1002、1006、1007 または 1021-1025のいずれかの微生物をろうを生産するのに十分な条件下で培養する工程; およびろうを分離する工程を含む、ろうの生産方法。
[本発明1031]
accA (EC 6.4.1.2)、accB (EC 6.4.1.2)、accC (EC 6.4.1.2)、accD (EC 6.4.1.2)、 aceE (EC 1.2.4.1、2.3.1.61、2.3.1.12)、aceF (EC 1.2.4.1、2.3.4.16、2.3.1.12)、 acpP (AAC74178)、fadD (EC 2.3.1.86)、cer1 (EC 4.1.99.5)、fabA (EC4.2.1.60)、fabB (EC 2.3.1.41)、fabD (EC 2.3.1.39)、fabG (EC 1.1.1.100)、fabH (EC 2.3.1.180)、fabI
(EC 1.3.1.9)、fabZ(EC 4.2.1.- )、リパーゼ (EC 3.1.1.3)、マロニル-CoA デカルボキシラーゼ (EC 4.1.1.9、4.1.1.41)、panD (EC 4.1.1.11)、panK (EC 2.7.1.33)、pdh (EC
1.2.4.1)、udhA (EC 1.6.1.1) およびそれらの組合せから選択される第一のポリペプチドをコードする1以上の外来性核酸配列を含む、アルスロバクター・エスピー、バシラス・エスピー、ボツリオコッカス・ブラウニ、クロマチウム・エスピー、クラドスポリウム・レシナ (ATCC22711)、クロストリジウム・パステウリアヌム・ブイケーエム、クロストリジウム・テナノモルフム、クロストリジウム・アシディウリキ、コリネバクテリウム種、シアノバクテリア種 (ノストック・ムスコルム、アナシスティス (シネココッカス)・ニドゥランス、フォルミジウム・ルリダム、クロログロエア・フリツキ、トリコデスミウム・エリタエウム、オシラトリア・ウィリアムシ、ミクロコレウス・キトノプラセイス、コッコクロリス・エラベンス、アグメネルム・クアドルプリカツム、プレクトネマ・テレブランス、エム・ヴァギナツス、およびシー・スコプロルム) 、デスルフォビブリオ・デスルフリカンス (ATCC29577)、キネオコッカス・ラジオトレランス (BAA-149)、ミクロコッカス・ルテウス (FD533、ATCC 272、381、382、ISU、540、4698、7468、27141)、ミクロコッカス・エスピー(ATCC 146、398、401、533)、ミクロコッカス・ロセウス (ATCC 412、416、516)、ミクロコッカス・リソデイクチクス、マイコバクテリウム種、ペニシリウム・エスピー、アスペルギルス・エスピー、トリコデルマ・ビリダ、プルラリア・プルランス、ジェオトガリコッカス・エスピー (エム・カンディカンス)(ATCC 8456)、ロドシュードモナス・スフェロイド、クロロビウム・エスピー、ロドスピリリウム・ルブラム (ATCC11170)、ロドミクロビウム・バニエリ、ステノトロフォモナス・マルトフィリア (ATCC
13637、17444、17445、17666、17668、17673、17674、17679、17677)、サッカロマイコデス・ルドウィギ (ATCC 22711)、サッカロマイセス・エスピー (オビフォルムス、ルドウィギ、トロピカリス)、ビブリオ・ファーニッシ M1、ビブリオ・マリヌス MP-1、ビブリオ・ポンチクス、セッラティア・マリノルブラ、ウスティラゴ・マイディス、ウスティラゴ・ヌダ、ウロシスティス・アグロピリ、スファセロテカ・レイリアナ、またはティレティア・エスピー(フォエチダ、カリエス、コントロヴェルサ) から選択される微生物であり、野生型微生物と比較して多量の炭化水素を生産する微生物。
[本発明1032]
ackA (EC 2.7.2.1)、ackB (EC 2.7.2.1)、adhE (EC 1.1.1.1、1.2.1.10)、fabF (EC 2.3.1.179)、 fabR (受入番号 NP_418398)、fadE (EC 1.3.99.3、1.3.99.-)、GST (EC 6.3.2.3)、gpsA (EC 1.1.1.94)、 ldhA (EC 1.1.1.28)、pflB (EC 2.3.1.54)、plsB (EC 2.3.1.15)、poxB (EC 1.2.2.2)、pta (EC 2.3.1.8)、グルタチオンシンターゼ (EC 6.3.2.3) およびそれらの組合せから選択される1以上の減弱された内因性核酸配列を含む、アルスロバクター・エスピー、バシラス・エスピー、ボツリオコッカス・ブラウニ、クロマチウム・エスピー、クラドスポリウム・レシナ (ATCC22711)、クロストリジウム・パステウリアヌム・ブイケーエム、クロストリジウム・テナノモルフム、クロストリジウム・アシディウリキ、コリネバクテリウム種、シアノバクテリア種 (ノストック・ムスコルム、アナシスティス (シネココッカス)・ニドゥランス、フォルミジウム・ルリダム、クロログロエア・フリツキ、トリコデスミウム・エリタエウム、オシラトリア・ウィリアムシ、ミクロコレウス・キトノプラセイス、コッコクロリス・エラベンス、アグメネルム・クアドルプリカツム、プレクトネマ・テレブランス、エム・ヴァギナツス、およびシー・スコプロルム) 、デスルフォビブリオ・デスルフリカンス (ATCC29577)、キネオコッカス・ラジオトレランス (BAA-149)、ミクロコッカス・ルテウス (FD533、ATCC 272、381、382、ISU、540、4698、7468、27141)、ミクロコッカス・エスピー(ATCC 146、398、401、533)、ミクロコッカス・ロセウス (ATCC 412、416、516)、ミクロコッカス・リソデイクチクス、マイコバクテリウム種、ペニシリウム・エスピー、アスペルギルス・エスピー、トリコデルマ・ビリダ、プルラリア・プルランス、ジェオトガリコッカス・エスピー (エム・カンディカンス)(ATCC 8456)、ロドシュードモナス・スフェロイド、クロロビウム・エスピー、ロドスピリリウム・ルブラム (ATCC11170)、ロドミクロビウム・バニエリ、ステノトロフォモナス・マルトフィリア (ATCC 13637、17444、17445、17666、17668、17673、17674、17679、17677)、サッカロマイコデス・ルドウィギ (ATCC 22711)、サッカロマイセス・エスピー(オビフォルムス、ルドウィギ、トロピカリス)、ビブリオ・ファーニッシ M1、ビブリオ・マリヌス MP-1、ビブリオ・ポンチクス、セッラティア・マリノルブラ、ウスティラゴ・マイディス、ウスティラゴ・ヌダ、ウロシスティス・アグロピリ、スファセロテカ・レイリアナ、およびティレティア・エスピー(フォエチダ、カリエス、コントロヴェルサ) から選択される微生物であり、野生型微生物と比較して多量の炭化水素を生産する微生物。
[本発明1033]
ろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)、アルコールアセチルトランスフェラーゼ (2.3.1.84)、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)、および脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (1.1.1.*) から選択される酵素をさらに発現する本発明1031または1032のいずれかの微生物。
[本発明1034]
分枝鎖ケト酸デヒドロゲナーゼ複合体の1以上の成分(EC 1.2.4.4)、llve (EC 2.6.1.42)、lpd (EC 1.8.1.4)、ccr (EC1.1.19)、IcmA (EC5.4.99.2)、IcmB (5.4.99.13)、fabH (EC 2.3.1.180)、ACP (受入番号 NP_626635)、fabF (EC 2.3.1.179)、fabH3 (EC 2.3.1.180)、fabC3 (NP_823468)、ベータ-ケトアシル-ACP シンターゼ II (EC 2.3.1.180)、エノイル-CoA レダクターゼ (EC 1.3.1.34)、エノイル-CoA イソメラーゼ (EC 4.2.1.-)、およびそれらの組合せから選択される酵素をコードする1以上の核酸配列を発現し、脂肪酸誘導体が分枝したものである本発明1031および1032のいずれかの微生物。
[本発明1035]
チオエステラーゼ (3.1.2.-、3.1.1.-) をコードする1以上の外来性核酸配列を発現する本発明1031および1032のいずれかの微生物。
[本発明1036]
FadA (EC 2.3.1.16 )、FadI (EC 2.3.1.16)、 FadB (EC 2.3.1.41)、FadJ (EC 4.2.1.17、 EC 5.1.2.3、EC 5.3.3.8、EC 1.1.1.35)、FabK (EC 1.2.1.9)、FabL (EC 1.2.1.9)、FabM (5.3.3.14) およびそれらの組合せから選択される酵素をコードする1以上の外来性核酸配列を発現する本発明1031および1032のいずれかの微生物。
[本発明1037]
以下の工程を含む精製脂肪酸誘導体を得る方法：
本発明1001-1028、および 1031-1036のいずれかの微生物を脂肪酸誘導体を生産するのに十分な条件下で培養する工程;
脂肪酸誘導体を有機相中に分離させる工程;および、
有機相から脂肪酸誘導体を精製する工程。
[本発明1038]
以下を含むバイオ燃料組成物:
少なくとも約85%の脂肪酸誘導体、ここで脂肪酸誘導体は8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1 または 22:3からなる群から選択される炭素鎖を含む; および
バイオ燃料組成物の曇り点を約 0℃未満に低下させるのに十分な少なくとも1つの添加剤。
[本発明1039]
以下を含むバイオ燃料組成物:
少なくとも約17%の脂肪酸誘導体、ここで脂肪酸誘導体は、8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1または 22:3からなる群から選択される炭素鎖を含む;および、
少なくとも約 80% の従来型のディーゼル燃料。
[本発明1040]
約 -10.9から約 -15.4のδ¹³Cを有する脂肪酸誘導体を含み、脂肪酸誘導体が組成物における生物由来材料の少なくとも約 85%を占める、バイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1041]
下記式の脂肪酸誘導体を含むバイオ燃料組成物または原材料：
[化1]

［式中、
Xは、CH₃、-CH₂OR¹; -C(O)OR²;または-C(O)NR³R⁴;
Rは、各nについて独立に、非存在、H または低級脂肪族;
nは、8から34の整数; および、
R¹、R²、R³およびR⁴ は独立にH および低級アルキルから選択される;］
ここで脂肪酸誘導体は約 -10.9 から約 -15.4のδ¹³Cを有し;脂肪酸誘導体が組成物における生物由来材料の少なくとも約 85%を占める。
[本発明1042]
脂肪酸誘導体が組成物における生物由来脂肪酸由来材料の少なくとも約85%を占める本発明1040のバイオ燃料組成物。
[本発明1043]
脂肪酸誘導体が少なくとも約 1.003の現代炭素比 (f_M ¹⁴C)を有する本発明1041のバイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1044]
Rが各nについて、独立にH、メチル、エチル、イソプロピル、イソブチル、sec-ブチルおよびシクロペンテニルから選択される本発明1041のバイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1045]
下記式：
[化2]

が少なくとも1つのアルケニル部分を含む本発明1041のバイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1046]
脂肪酸誘導体が、8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1または 22:3からなる群から選択される炭素鎖を含む本発明1041のバイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1047]
バイオ燃料組成物中にさらに低級アルコールを含む本発明1041のバイオ燃料組成物または原材料。
[本発明1048]
低級アルコールが、エタノール、ブタノール、ヘキサノールまたはそれらの組合せから選択される本発明1047のバイオ燃料組成物。
[本発明1049]
さらに界面活性剤を含む本発明1047のバイオ燃料組成物。
[本発明1050]
バイオ燃料組成物がマイクロエマルジョンを含む本発明1047のバイオ燃料組成物。
[本発明1051]
以下を含むバイオ燃料組成物:
少なくとも約 55%の脂肪酸誘導体、ここで脂肪酸誘導体は8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1または22:3からなる群から選択される炭素鎖を含む;および、
バイオ燃料組成物の曇り点を約 0℃未満に低下させるのに十分な少なくとも1つの添加剤。
[本発明1052]
脂肪酸誘導体が約 -10.9から約 -15.4のδ¹³Cを有する本発明1051のバイオ燃料組成物。
[本発明1053]
さらに低級アルコールを含む本発明1051のバイオ燃料組成物。
[本発明1054]
以下を含むバイオ燃料組成物:
少なくとも約 11%の脂肪酸誘導体、ここで脂肪酸誘導体は8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1 または22:3からなる群から選択される炭素鎖を含む;および、
少なくとも約 80%の従来型のディーゼル燃料。
[本発明1055]
下記式の脂肪酸誘導体を含むバイオ燃料組成物または原材料：
[化3]

［式中、
X は、CH_3、-CH₂OR¹; -C(O)OR²; または-C(O)NR³R⁴;
Rは、各 nにつき独立に、非存在、Hまたは低級アルキルであり、少なくとも1つの R は低級アルキルである;
nは8から34の整数;
R¹、R²、R³およびR⁴ は独立にHおよび低級アルキルから選択される; ］および、
脂肪酸誘導体は約 -10.9から約 -15.4のδ¹³Cを有する。
[本発明1056]
脂肪酸誘導体がバイオ燃料組成物の少なくとも約 10%である本発明1055のバイオ燃料組成物。
[本発明1057]
下記式の脂肪酸誘導体から実質的になるバイオ燃料組成物：
[化4]

［式中、
Xは、CH_3、-CH₂OR¹; -C(O)OR²; または-C(O)NR³R⁴;
Rは、各nにつき独立に、非存在、H または低級アルキル;
nは、 8から 34の整数;および、
R¹、R²、R³ およびR⁴ は独立にHおよび低級アルキルから選択される;］
ここで脂肪酸誘導体は約 -10.9から約 -15.4のδ¹³C を有する。
[本発明1058]
バイオ燃料が.1%未満のグリセリンを含む本発明1038-1057のいずれかのバイオ燃料。
[本発明1059]
バイオ燃料が 0.1%未満のエステル交換触媒を含む本発明1038-1058のいずれかのバイオ燃料。
これらおよびその他の例は、以下の詳細な記載においてさらに記載する。

図面の簡単な説明
図1はFAS 生合成経路を示す。

図2は、ろう(wax)を生産する生合成経路を示す。ろうは、宿主細胞内で生産されたアルコールを用いて宿主細胞中で生産されうるかまたは、外来性アルコールを培地に添加することによって生産されうる。ろうを生産するよう設計された微生物は、外来性核酸配列およびチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14) 配列を用いてろうシンターゼ酵素(EC 2.3.1.75)を生産する。ろうの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素 EC 2.3.1.85)、アシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (EC 1.1.1.*)、アシル-CoAレダクターゼ (1.2.1.50) およびアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)が含まれる。

図3は、脂肪アルコールを生産する生合成経路を示す。規定された炭素鎖長を有する脂肪アルコールは、チオエステラーゼ(EC 3.1.2.14)、およびアシル-CoAレダクターゼ(EC 1.2.1.50)、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1) と脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1*)との組合せをコードする外来性核酸配列を発現させることによって生産されうる。脂肪アルコールの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素EC 2.3.1.85)、およびアシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)が含まれる。

図4は、脂肪酸エステルを生産する生合成経路を示す。規定された炭素鎖長を有する脂肪酸エステルは、様々なチオエステラーゼ(EC 3.1.2.14)、アシル-CoAレダクターゼ (1.2.1.50)、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)、および脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1*)の組合せ、ならびに、アセチルトランスフェラーゼ (EC 2.3.1.84)を外来性に発現させることにより生産されうる。脂肪酸エステルの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素 EC
2.3.1.85)およびアシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)が含まれる。

図5は、pCDFDuet-1-fadD-acr1および様々なチオエステラーゼ遺伝子を含むプラスミドで共形質転換された実施例4に記載の株による脂肪アルコール生産を示す。この株を振盪フラスコ中で0.4% グルコースを含むM9 ミネラル培地で25℃で好気的に培養した。飽和C10、C12、C14、C16 および C18 脂肪アルコールが同定された。少量の C16:1およびC18:1 脂肪アルコールもいくつかのサンプルにおいて検出された。脂肪アルコールを細胞ペレットから酢酸エチルを用いて抽出し、N-トリメチルシリル (TMS) イミダゾールを用いて誘導体化し、検出を向上させた。

図6は、生産株からの脂肪アルコールの放出を示す。生産された脂肪アルコールのおよそ 50% が37℃で培養された場合に細胞から放出された。

図7A-7D は、アルコールアセチルトランスフェラーゼ (AAT、EC 2.3.1.84)を発現する生産宿主およびろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)を発現する生産宿主により生産されたオクチルオクタノエート (C8C8)のGS-MS スペクトルを示す。図7Aは、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはADP1 (ろうシンターゼ)を発現した。図7B は、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはSAATを発現した。図7Cは、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはADP1 (ろうシンターゼ)またはSAATを含んでいなかった。図7Dは、C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B) （ここでpHZ1.43 プラスミドはSAATを発現した)により生産されたC8C8のマススペクトルおよびフラグメンテーションパターンを示す。

図8は、 A. baylyi ADP1 (WSadp1) からのろうシンターゼが生産宿主においてCuphea hookeriana からのチオエステラーゼ遺伝子と共発現された場合に作られたエチルエステルの分布を示す。

図9Aおよび9Bは、 GC/MS 分析のクロマトグラムを示す。図9Aは、プラスミド pCDFDuet-1-fadD-WSadp1、pETDuet-1-‘tesAで形質転換された大腸菌 LS9001 株の培養物のエチル抽出物のクロマトグラムを示す。エタノールを発酵に加えた。図9Bは、エチルヘキサデカノエートおよび参照として用いたエチルオレエートのクロマトグラムを示す。

図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。

略語および用語
以下の用語および方法の説明は、本開示を詳細に説明するため、および本開示を実施する当業者へのガイドのために提供する。本明細書において用いる場合、「含む」とは、「包含する」という意味であり、単数形「ある」または「１つの」または「その」は、特に断りのない限り複数形を包含する。例えば、「細胞を含む」という記載は、１または複数のかかる細胞を包含し、「チオエステラーゼを含む」という記載は、１以上のチオエステラーゼペプチドおよび当業者に知られたその均等物に対する言及を包含する、といった具合である。用語「または」とは、特に断りのない限り、記載された選択肢である複数の要素の１つの要素または２以上の要素の組合せを意味する。例えば、「チオエステラーゼ活性または脂肪アルコール-形成アシル-CoAレダクターゼ活性」という表現は、チオエステラーゼ活性、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ活性、または脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ活性とチオエステラーゼ活性との両方の組合せを指す。

特に断りのない限り、本明細書において用いるすべての技術および科学用語は本開示が属する分野の当業者に一般に理解される意味と同じ意味を有する。本明細書に記載するものと類似または同等の方法および材料が本開示の実施または試験において使用できるが、好適な方法および材料を以下に記載する。材料、方法および実施例は単に例示のためのものであり、限定の意図はない。本開示のその他の特徴は以下の詳細な説明および請求の範囲から明らかである。

受入番号: 本明細書にわたり、受入番号は、米国の国立衛生研究所により維持されるNCBI データベース (National Center for Biotechnology Information)に由来する。受入番号は、2007年3月27日にデータベースにおいて提供されているものである。

酵素分類番号 (EC): 本明細書にわたり提供されているEC 番号は東京大学に部分的に支援されているKyoto Encyclopedia of Genes and Genomicsに維持されているKEGG Ligand データベースに由来する。EC番号は、2007年3月27日にデータベースにおいて提供されているものである。

減弱する:あるものの影響、活性または強度を弱めることである。一例において、フィードバック阻害または生成物または反応物ではない組成物によって起こる阻害(非経路特異的フィードバック)に対する特定の酵素の感受性は、酵素活性が化合物の存在によって影響されないように弱められる。例えば、fabH 遺伝子およびその対応するアミノ酸配列は温度感受性であり、温度変化に対する感受性を低下するよう変化されうる。fabH 遺伝子の減弱は分枝アミノ酸が望ましい場合に利用できる。別の例において、活性が低くなるよう改変された酵素は減弱されたと称されうる。

酵素の機能的欠失は、酵素の減弱のために用いられ得る。機能的欠失は、遺伝子配列または遺伝子配列の転写を制御する配列に対してなされる突然変異、部分的または完全な欠失、挿入、またはその他の変異であって、遺伝子産物の生産を低下または阻害するか、または遺伝子産物を非機能的にするものである (即ち、plsB 遺伝子に対する本明細書に記載する突然変異)。例えば、大腸菌におけるfabRの機能的欠失は、脂肪酸生合成経路の抑制を低下させ、大腸菌により不飽和の脂肪酸(UFA)を生産させる。いくつかの例において、機能的欠失は、ノックアウト突然変異として記載される。

当業者であれば酵素活性を減弱させる多くの方法が存在することを理解している。例えば、減弱は、核酸配列を変化させることによりアミノ酸配列変化を導入すること、より活性の低いプロモーターの制御下に遺伝子をおくこと、目的遺伝子を標的化する干渉RNA、リボザイムまたはアンチセンス配列を発現させること、またはその他の当該技術分野で知られた技術により達成することが出来る。

炭素源:一般に、原核または単純な真核細胞生育のための炭素の源として使用するために好適な基質または化合物をいう。炭素源は様々な形態であり得、これらに限定されないが、ポリマー、炭水化物、酸、アルコール、アルデヒド、ケトン、アミノ酸、ペプチド等が含まれる。これらには、例えば、様々な単糖、例えば、グルコース、オリゴ糖、多糖、セルロース性材料、キシロース、およびアラビノース、二糖、例えば、スクロース、飽和または不飽和脂肪酸、コハク酸、乳酸、酢酸、エタノール等またはそれらの混合物が含まれる。炭素源はさらに光合成産物であってもよく、これに限定されないが、グルコースが含まれる。

cDNA (相補的 DNA):内部の非コードセグメント (イントロン) および転写を規定する調節配列を欠くDNA片である。cDNAは、細胞から抽出したメッセンジャー RNAからの逆転写により合成されうる。

欠失: 核酸分子からの１以上のヌクレオチドまたはタンパク質からの１以上のアミノ酸の除去であり、その両側の領域が一緒にされ連結される。

検出可能:存在していることが確認できること。例えば、反応物からの生成物の生産、例えば、C18 脂肪酸の生産は、以下の実施例11に示す方法を用いて検出可能である。

DNA: デオキシリボ核酸。DNAはほとんどの生物の遺伝子材料を含む長鎖ポリマーである(いくつかのウイルスは、リボ核酸、RNAを含む遺伝子を有する)。 DNA ポリマーにおける反復単位は４種類のヌクレオチドであり、そのそれぞれはアデニン、グアニン、シトシンおよびチミンの４つの塩基の１つを含み、それはデオキシリボース糖に結合しており、糖にはリン酸基が結合している。DNA 分子におけるコドンと称されるヌクレオチドのトリプレットがペプチドにおけるアミノ酸をコードする。コドンという用語はまた、DNA 配列が転写されるmRNAにおける３つのヌクレオチドの対応する(および相補的な) 配列についても用いられる。

内因性:核酸分子および特定の細胞または微生物に言及して本明細書において用いる場合、細胞中にあって組換え操作技術を用いて細胞に導入されたものではない核酸配列またはペプチドをいう。例えば、遺伝子は、細胞が元々天然から単離された場合に細胞中に存在していた。遺伝子は、制御配列、例えば、転写または翻訳を活性化するプロモーターまたはエンハンサー配列が組換え技術を介して改変された場合も内因性であると考えられる。

外来性:核酸分子および特定の細胞に言及して本明細書において用いる場合、天然にみられる特定の細胞に起因していない核酸分子をいう。したがって、非天然核酸分子は細胞にいったん導入されると細胞に対して外来性であるとみなされる。天然の核酸分子も特定の細胞に対して外来性であることがある。例えば、細胞 X から単離された全長コード配列は、そのコード配列が細胞 Yに導入されると、XとYとが同じ細胞タイプであっても細胞
Yに対して外来性核酸である。

発現:遺伝子にコードされる情報が細胞の構造および機能、例えば、タンパク質、トランスファー RNA、またはリボソーム RNAに変換されるプロセスである。発現した遺伝子には mRNAに転写され、次いでタンパク質に翻訳されるものもあるし、RNAに転写されるがタンパク質に翻訳されないものもある (例えば、トランスファーおよびリボソーム RNA)。

脂肪エステル: 脂肪酸からできたあらゆるエステルを含む。脂肪酸における炭素鎖は本明細書に記載する修飾のあらゆる組合せを含みうる。例えば、炭素鎖は１以上の不飽和点、１以上の分枝点、例えば環状分枝を含み得、短鎖または長鎖に操作されうる。脂肪酸エステルを形成するためにはあらゆるアルコールが利用でき、例えば、脂肪酸生合成経路由来のアルコール、生産宿主により非脂肪酸生合成経路を介して生産されたアルコール、および発酵ブロスにおいて供給されるアルコールが挙げられる。

脂肪酸誘導体:宿主生物の脂肪酸生合成経路から部分的にはできている生成物を含む。脂肪酸生合成経路は、本明細書に記載のように脂肪酸誘導体を生産するよう操作されうる脂肪酸シンターゼ酵素を含み、いくつかの例においてさらなる酵素とともに発現されて所望の炭素鎖特徴を有する脂肪酸誘導体を生産することができる。例示的な脂肪酸誘導体としては、例えば、短鎖および長鎖アルコール、炭化水素および脂肪酸エステル、例えばろうが挙げられる。

発酵ブロス:微生物(即ち、炭素を活性に代謝する微生物)の生命を支持するあらゆる培地を含む。発酵培地は通常炭素源を含む。炭素源は、さらなる酵素の有無に拘わらず、微生物によってエネルギーのために利用されうるあらゆるものでありうる。

炭化水素: 元素、炭素 (C) および水素 (H)を含む化学物質を包含する。すべての炭化水素は、炭素バックボーンおよびそのバックボーンに結合した水素原子からなる。この用語は、用語「脂肪族炭化水素」の短縮形として用いられることがある。基本的に３つのタイプの炭化水素が存在する: (1)少なくとも１つの芳香族環を有する芳香族炭化水素; (2) アルカンとも称され、二重、三重または芳香族結合を有さない、飽和炭化水素;および(3)炭素原子間に１以上の二重または三重結合を有し、アルケン、アルキンおよびジエンに分けられる不飽和炭化水素。液体の地質から抽出された炭化水素は、石油 (逐語的には「ロックオイル」)またはミネラルオイルと称され、ガス状の地質由来の炭化水素は天然ガスと称される。すべてが有機化学物質の生産のための原材料としての燃料および原料の重要な源であり、石油地質学の手段を用いて地球の地表面下に通常見いだされる。堆積岩中の石油備蓄はエネルギーおよび化学工業のための炭化水素の主な源である。炭化水素は経済的に非常に重要である。というのはそれらは主な化石燃料 (石炭、石油、天然ガス、等) およびバイオ燃料ならびにプラスチック、ろう、溶媒および油の構成成分を包含するからである。

単離: 「単離された」生物学的成分 (例えば、核酸分子、タンパク質、または細胞)は実質的に成分が天然に存在するその他の生物学的成分、例えば、その他の染色体および染色体外 DNA およびRNA、およびタンパク質から分離または精製されている。「単離された」核酸分子およびタンパク質は、標準的精製方法によって精製された核酸分子およびタンパク質を含む。この用語はまた、宿主細胞において組換え発現により調製された核酸分子およびタンパク質、ならびに化学合成された核酸分子およびタンパク質も包含する。

一例において、単離されているとは、それが由来する生物の天然ゲノムにおいてそれが直近に隣接している配列の両方(一方は5’末端および一方は3’末端)に直近していない天然核酸分子をいう。

微生物: 古細菌ドメイン、真正細菌ドメインおよび真核生物ドメインに由来する原核および真核微生物種を含み、後者には酵母および糸状菌、原生動物、藻類、またはより高等の原生生物が含まれる。用語「微生物細胞」および「微生物(microbe)」は微生物という用語と互換的に用いられる。

核酸分子: RNAと DNA 分子との両方を包含し、限定されないが、cDNA、ゲノム DNA、およびmRNAが含まれる。合成核酸分子、例えば、化学合成されたものまたは組換え生産されたものが含まれる。核酸分子は二本鎖または一本鎖であり得る。一本鎖である場合、核酸分子はセンス鎖またはアンチセンス鎖であり得る。さらに、核酸分子は環状または直鎖状であり得る。

作動可能に連結:第一の核酸配列が第二の核酸配列と機能的関係に位置している場合、第一の核酸配列は第二の核酸配列に作動可能に連結している。例えば、プロモーターがコード配列の転写または発現に影響する場合、プロモーターはコード配列に作動可能に連結している。一般に、作動可能に連結した DNA 配列は近接しており、２つのタンパク質コード領域を連結する必要がある場合、同じリーディングフレーム内にある。単一のメッセンジャー RNAとしてタンデムに転写される別々の遺伝子の立体配置はオペロンと称される。したがって単一のプロモーターの転写調節下に、例えばプラスミドベクター中に遺伝子を近接させることは、合成オペロンを構成する。

ORF (オープンリーディングフレーム): 一連の、終止コドンなしにアミノ酸をコードするヌクレオチドトリプレット (コドン)。これら配列は通常ペプチドへと翻訳されうる。

過剰発現: ある遺伝子が、その遺伝子の内因性転写速度と比較して高い速度で転写されるようにされている場合である。いくつかの例において、過剰発現はさらにその遺伝子の内因性翻訳速度と比較して遺伝子の翻訳の高い速度も含む。過剰発現を試験する方法は当該技術分野で周知であり、例えば転写された RNA レベルはrtPCRを用いて評価でき、タンパク質レベルはSDS pageゲル分析を用いて評価できる。

精製:精製という用語は完全に純粋であることを要求するわけではない; むしろ、それは相対的用語として意図される。したがって、例えば、精製脂肪酸誘導体調製物、例えば、ろう、または脂肪酸エステル調製物は、生成物が細胞内の環境におけるよりも生成物がより高濃度にあるものである。例えば、精製ろうは、それに付随しうる細胞成分 (核酸、脂質、炭水化物、及びその他のペプチド)から実質的に分離されたものである。別の例において、精製ろう調製物は、ろうが実質的に汚染物質、例えば、発酵の後に存在しうるもの、を含まないものである。

一例において、脂肪酸エステルはサンプルの少なくとも約 50重量%が脂肪酸エステルで構成されている場合、例えばサンプルの少なくとも約 60%、70%、80%、85%、90%、92%、95%、98%、または99% あるいはそれ以上が脂肪酸エステルから構成されている場合、精製されている。ろう、脂肪アルコールおよび脂肪酸エステルの精製に用いうる方法の例としては、以下の実施例11に記載の方法が挙げられる。

組換え:組換え核酸分子またはタンパク質は、天然ではない配列を有するもの、配列の２つの別々のセグメントの人工的組合せにより作られた配列を有するもの、またはその両方である。この人工的組合せは、例えば、核酸分子またはタンパク質の単離されたセグメントの化学合成または人工的操作によって、例えば、遺伝子操作技術によって達成されうる。組換えはまた、人工的に操作されているが、核酸が単離された生物にみられるものと同じ調節配列およびコード領域を含む核酸分子を記載するのにも用いられる。組換え細胞または微生物は、外来性核酸分子、例えば、組換え核酸分子を含むものである。

放出:化合物の細胞の内側(細胞内)から細胞の外側(細胞外)への移動である。移動は能動的であっても受動的であってもよい。放出が能動的である場合、それは１以上のトランスポーターペプチドによって促進され得、いくつかの例においてそれはエネルギーを消費しうる。放出が受動的である場合、それは膜を横切る拡散を介して起こり得、細胞外環境から連続的に所望の化合物を回収することによって促進され得、さらなる拡散が促進される。化合物の放出は細胞の溶解によっても達成されうる。

界面活性剤:それが溶解されている液体の表面張力を低下させることが出来る物質である。それは典型的には水溶性頭部と炭化水素鎖または尾部から構成される。水溶性基は親水性であり、イオン性または非イオン性であり得、炭化水素鎖は疎水性である。界面活性剤は様々な製品、例えば、洗浄剤および洗剤に用いられており、織物、革および紙の補助剤として、化学的プロセスにおいて、化粧品および医薬品において、食品産業および農業においても使用されている。さらに、それは環境にアクセスしにくいことが見いだされている粗製油の抽出および単離を助けるためにまたは水乳濁液としても利用されうる。

異なる用途を特徴とする４つのタイプの界面活性剤が存在する。アニオン性界面活性剤は洗浄剤様活性を有し、一般に洗浄用途に用いられる。カチオン性界面活性剤は長鎖炭化水素を含み、タンパク質および合成ポリマーの処理にしばしば用いられ、あるいは織物柔軟剤およびヘアコンディショナーの成分である。両性界面活性剤も長鎖炭化水素を含み、典型的にはシャンプーに用いられる。非イオン性界面活性剤は一般にクリーニング製品に用いられる。

形質転換または組換え細胞:例えば分子生物学技術によって例えば、アシル-CoA シンターゼをコードする核酸分子といった核酸分子が導入された細胞である。形質転換は核酸分子が細胞に導入されうるあらゆる技術を含み、例えば、これらに限定されないが、ウイルスベクターによるトランスフェクション、コンジュゲーション、プラスミドベクターによる形質転換、および裸のDNAの、エレクトロポレーション、リポフェクション、およびパーティクルガン加速による導入が挙げられる。

生成物の生産を可能とする条件下:所望の生成物、例えば、脂肪酸、炭化水素、脂肪アルコール、ろう、または脂肪酸エステルを微生物が生産するのを可能とするあらゆる発酵条件である。発酵条件には、通常、温度範囲、通気レベル、および一緒にすると微生物の生育を可能とする培地の選択が含まれる。例示的な培地としてはブロスまたはゲルが含まれる。一般に、培地は炭素源、例えば、グルコース、フルクトース、セルロース等を含み、これは微生物によって直接代謝されうるか、あるいは酵素が炭素源の代謝を促進するために培地中に使用されうる。培養条件が生成物の生産を可能とするかを決定するために、微生物を24、36、または48 時間培養すればよく、サンプルを得て分析するとよい。例えば、細胞が培養されるサンプルまたは培地における細胞を、所望の生成物の存在について試験するとよい。生成物の存在を試験する場合、例えば、以下の実施例に提供するアッセイを用いることが出来る。

ベクター:細胞に導入されると、形質転換細胞を生じる核酸分子である。ベクターは、細胞中でそれを複製可能とする核酸配列、例えば、複製起点を含みうる。ベクターはまた、１以上の選択可能マーカー遺伝子および当該技術分野において知られているその他の遺伝的要素を含みうる。

ろう:決められたセットの物理的条件下で固体または柔軟な物質を形成する様々な脂肪酸エステルである。ろうと称される脂肪酸エステルは一般にろうではない脂肪酸エステルよりも長い炭素鎖を有する。例えば、ろうは一般に室温で柔軟な物質を形成する。

詳細な説明
I.脂肪酸誘導体の生産
外来性 DNA 配列が形質転換される宿主生物は改変された宿主生物でもよく、例えば、アシル-ACPまたはアシル-CoAの生産を上昇させるよう、脂肪酸誘導体および中間体の異化を低下させるよう、または生合成経路の特定の点でのフィードバック阻害を低下させるよう改変された生物であってもよい。本明細書に記載する遺伝子を改変することに加えて、さらなる細胞資源を、脂肪酸、例えば、乳酸、コハク酸を過剰生産するよう転用してもよく、および/または、酢酸経路を減弱させてもよく、アセチル-CoA カルボキシラーゼ (ACC)を過剰発現させてもよい。本明細書に記載する生産宿主に対する改変は、ゲノムの改変、染色体外発現系、またはその組合せを介するものであってよい。経路の概観を、図1および2に提供する。

A.アセチル-CoA - マロニル-CoA からアシル-ACP
脂肪酸シンターゼ (FAS)はアシル鎖の開始および伸長を触媒するペプチドの一群である(Marrakchi et al.、Biochemical Society、30:1050-1055、2002)。アシルキャリアタンパク質 (ACP)はFAS 経路における酵素とともに、生産される脂肪酸の長さ、飽和および分枝の程度を制御する。FASに含まれうる酵素としては、 AccABCD、FabD、FabH、FabG、FabA、FabZ、FabI、FabK、FabL、FabM、FabB、および FabFが挙げられる。所望の生成物に応じて、これらの遺伝子の１以上が減弱または過剰発現されうる。

例えば、生産宿主における脂肪酸生合成経路は、前駆体であるアセチル-CoAおよびマロニル-CoAを用いる (図2)。これら成分を過剰生産するよう操作された大腸菌またはその他の宿主生物は、特定の生産物 (例えば、脂肪酸エステル、炭化水素、脂肪アルコール)を提供するための後での遺伝子操作工程のための出発点として役立ちうる。数種類の改変を組み合わせてまたは別々に行うことが出来、それにより宿主株によるアセチル CoA/マロニル CoA/脂肪酸および脂肪酸誘導体生産が上昇する。例えば、アセチル CoA 生産を上昇させるために、すべて構成的、またはその他の制御可能なプロモーターの制御下にある、pdh、panK、aceEF、(ピルビン酸および2-オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ複合体のE1p デヒドロゲナーゼ成分および E2p ジヒドロリポアミドアシルトランスフェラーゼ成分をコードする)、fabH /fabD/fabG/acpP/fabF、およびいくつかの例においてさらなる脂肪-アシルCoAレダクターゼおよびアルデヒドデカルボニラーゼをコードするDNAを有するプラスミドを構築できる。これらの遺伝子の例示的なGenbank 受入番号は以下の通り: pdh (BAB34380、AAC73227、AAC73226)、panK (coaAとしても知られる、AAC76952)、aceEF (AAC73227、AAC73226)、fabH (AAC74175)、fabD (AAC74176)、fabG (AAC74177)、acpP (AAC74178)、fabF (AAC74179)。

さらに、対応する遺伝子のヌルまたは欠失突然変異を含む条件的に複製可能なまたは複製不可能なプラスミドによる形質転換により、またはプロモーターまたはエンハンサー
配列を置換することにより操作された微生物において、fadE、gpsA、ldhA、pflb、adhE、pta、poxB、ackA、および/または ackB をノックアウトしてもよいし、それらの発現レベルを低下させてもよい。これらの遺伝子の例示的な Genbank 受入番号は以下の通り;
fadE (AAC73325)、gspA (AAC76632)、ldhA ( AAC74462)、pflb (AAC73989)、adhE (AAC74323)、pta (AAC75357)、poxB (AAC73958)、ackA (AAC75356)、および ackB (BAB81430)。

その結果得られる操作された微生物は、所望の環境、例えば、グリセロールが制限された環境(培養培地において1% w/v未満)において培養するとよい。したがって、かかる微生物はアセチル-CoA 生産レベルが上昇する。マロニル-CoA 過剰生産は、上記の微生物を、デノボに合成されたプラスミドに含まれるaccABCD (アセチル CoA カルボキシラーゼ、例えば受入番号 AAC73296、EC 6.4.1.2) をコードするDNA により操作することによって影響されうる。脂肪酸過剰生産は、デノボに合成されたプラスミドにリパーゼ (例えば受入番号 CAA89087、CAA98876)をコードするDNAをさらに含めることによって達成できる。

いくつかの例において、アセチル-CoA カルボキシラーゼ (ACC)は、その細胞内濃度を例えばネイティブな発現レベルと比較して少なくとも 2-倍、例えば、少なくとも 5-倍、または少なくとも 10-倍上昇させるように過剰発現される。

さらに、plsB (例えば受入番号 AAC77011) D311E 突然変異をアシル-CoAのプールに対する制限を除くために利用できる。

さらに、sfa遺伝子(FabAのサプレッサー、例えば受入番号 AAN79592)の過剰発現を生産宿主に含めて、モノ不飽和脂肪酸の生産を上昇させることが出来る(Rock et al.、J. Bacteriology 178:5382-5387、1996)。

B.アシル-ACP から脂肪酸
脂肪酸誘導体の均質な集団の生産のために生産宿主を操作するために、１以上の内因性遺伝子を減弱または機能的に欠失させることができ、１以上のチオエステラーゼを発現させることが出来る。例えば、C10 脂肪酸誘導体は、 C18:1-ACPを使用するチオエステラーゼ C18 (例えば受入番号AAC73596およびP0ADA1 )の減弱、およびC10-ACPを使用するチオエステラーゼ C10 (例えば受入番号 Q39513)の発現により生産できる。このようにして、炭素鎖長10を有する脂肪酸誘導体の比較的均質な集団が結果として得られる。別の例において、C14 脂肪酸誘導体は非-C14 脂肪酸を生産する内因性チオエステラーゼを減弱させ、チオエステラーゼ受入番号 Q39473 (C14-ACPを使用する)を発現させることにより生産することができる。さらに別の例において、C12 脂肪酸誘導体は C12-ACPを使用するチオエステラーゼ (例えば受入番号 Q41635)を発現させ、非-C12 脂肪酸を生産するチオエステラーゼを減弱することによって生産することができる。アセチル CoA、マロニル CoA、および脂肪酸過剰生産は当該技術分野において知られている方法、例えば細胞溶解の後に放射性前駆体、HPLC、およびGC-MSを用いることによって確認することが出来る。

表 1
チオエステラーゼ

*Mayer et al.、BMC Plant Biology 7:1-11、2007

C.脂肪酸からアシル-CoA
生産宿主は、様々な長さの脂肪酸を生産することが知られているペプチドを用いて操作することができる。脂肪酸を作る１つの方法は、１以上のアシル-CoA シンターゼペプチド (EC 2.3.1.86)の発現を上昇させること、または１以上のアシル-CoA シンターゼペプチド(EC 2.3.1.86)のより活性な形態を発現させることを含む。

本明細書において用いる場合、アシル-CoA シンターゼは、酵素分類番号 EC 2.3.1.86におけるペプチド、ならびに脂肪酸からアシル-CoAの変換を触媒することが出来るその他のあらゆるペプチドを含む。さらに、当業者であれば、いくつかのアシル-CoA シンターゼペプチドはその他の反応を同様に触媒すること、例えばいくつかのアシル-CoA シンターゼペプチドは脂肪酸に加えてその他の基質を受け入れることを理解している。かかる非特異的アシル-CoA シンターゼペプチドも、それゆえ含まれる。アシル-CoA シンターゼペプチド配列は公共源から入手できる。例示的なGenBank 受入番号を図10に提供する。

D.アシル-CoAから脂肪アルコール
生産宿主はアシル-CoAから脂肪アルコールを生産することが知られているポリペプチドを用いて操作することができる。脂肪アルコールを作る１つの方法は、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1.*)、またはアシル-CoAレダクターゼ (EC 1.2.1.50) およびアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)の発現を上昇させることまたはそれらのより活性な形態を発現させることを含む。以下、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1.*)、アシル-CoAレダクターゼ(EC 1.2.1.50) およびアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)を脂肪アルコール形成ペプチドと総称する。いくつかの例において３つのすべての脂肪アルコール形成遺伝子を生産宿主において過剰発現させるとよく、さらに別の例において１以上の脂肪アルコール形成遺伝子を過剰発現させるとよい。

本明細書において用いる場合、脂肪アルコール形成ペプチドは、酵素分類番号 EC 1.1.1.*、1.2.1.50、および1.1.1.1におけるペプチド、ならびにアシル-CoAから脂肪アルコールへの変換を触媒することが出来るその他のすべてのペプチドを含む。さらに、当業者であれば、いくつかの脂肪アルコール形成ペプチドはその他の反応も同様に触媒すること、例えばいくつかのアシル-CoAレダクターゼペプチドは脂肪酸に加えてその他の基質も受け入れることを理解している。かかる非特異的ペプチドも、それゆえ含まれる。脂肪アルコール形成ペプチド配列は公共源から入手できる。例示的な GenBank 受入番号を図10に提供する。

脂肪アルコールは炭化水素に基づく界面活性剤とも記載される。界面活性剤生産のために、微生物は再生可能な炭素源から界面活性剤を生産するよう改変される。かかる微生物は、脂肪酸を脂肪アルデヒドに変換することができるタンパク質をコードする第一の外来性 DNA 配列と脂肪アルデヒドをアルコールに変換することができるタンパク質をコードする第二の外来性 DNA 配列とを含む。いくつかの例において、第一の外来性 DNA 配列は脂肪酸レダクターゼをコードする。一つの態様において、第二の外来性 DNA 配列は哺乳類ミクロソームアルデヒドレダクターゼまたは長鎖アルデヒドデヒドロゲナーゼをコードする。さらなる例において、第一および第二の外来性 DNA 配列は、 Arthrobacter
AK 19、Rhodotorula glutinins、Acinobacter sp 株 M-1、または Candida lipolyticaからの複数酵素複合体に由来する。一つの態様において、第一および第二の異種 DNA 配列はAcinobacter sp 株 M-1または Candida lipolyticaからの複数酵素複合体に由来する。

界面活性剤生産に利用できる脂肪酸を長鎖アルコールに変換するタンパク質をコードする異種 DNA 配列のさらなる源としては、これらに限定されないが、Mortierella alpina (ATCC 32222)、Crytococcus curvatus、(Apiotricum curvatumとも称される)、Alcanivorax jadensis (T9T =DSM 12718 =ATCC 700854)、Acinetobacter sp. HO1-N、(ATCC 14987)およびロドコッカス・オパクス (PD630 DSMZ 44193)が挙げられる。

一例において、脂肪酸誘導体は6から36 炭素原子に限定された炭素原子を含有する飽和または不飽和界面活性剤生成物である。別の例において、界面活性剤生成物は24から 32
炭素原子に限定された炭素原子を含有する。

界面活性剤を生産するために適当な宿主は真核または原核微生物のいずれでもよい。例示的な宿主としては、Arthrobacter AK 19、Rhodotorula glutinins、Acinobacter sp
株 M-1、Arabidopsis thalania、または Candida lipolytica 、サッカロマイセス・セレビシエ、およびアセチル CoA カルボキシラーゼを発現するよう操作された大腸菌が挙げられる。脂質および油の形態で高レベルの界面活性剤前駆体を合成する生得的な能力を示す宿主、例えば、ロドコッカス・オパクス、Arthrobacter AK 19、Rhodotorula glutinins、アセチル CoA カルボキシラーゼを発現するよう操作された大腸菌、及びその他の油性細菌、酵母、および真菌も利用可能である。

E. 脂肪アルコールから脂肪エステル
生産宿主は様々な長さの脂肪エステルを生産することが知られているポリペプチドを用いて操作することができる。脂肪エステルを作る１つの方法は、１以上のアルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチド (EC 2.3.1.84)の発現を上昇させることまたはそのより活性な形態を発現させることを含む。これらのペプチドはアセチル-CoA とアルコールとからCoAおよび酢酸エステルを形成する反応を触媒する。いくつかの例において、アルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドは、選択されたチオエステラーゼ
ペプチド、FAS ペプチドおよび脂肪アルコール形成ペプチドとともに発現させることが出来、それによって炭素鎖長、飽和および分枝の程度が制御できる。場合によっては、bkd オペロンを、分枝脂肪酸前駆体の生産を可能にするために共発現させることができる。

本明細書において用いる場合、アルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドは、酵素分類番号 EC 2.3.1.84におけるペプチド、ならびにアセチル-CoAとアルコールとからCoAおよび酢酸エステルを形成する変換を触媒することが出来るあらゆるその他のペプチドを含む。さらに、当業者であれば、アルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドはその他の反応も同様に触媒すること、例えばいくつかのアルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドは脂肪アルコールまたはアセチル-CoA チオエステルに加えてその他の基質、即ち例えば、その他のアルコールおよびその他のアシル-CoA チオエステルを受け入れることを認識しているであろう。かかる非特異的または多様な特異性のアルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドも、それゆえ含まれる。アルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチド配列は公共源から入手可能である。例示的な GenBank 受入番号を図10に提供する。特定のアルコール O-アセチルトランスフェラーゼペプチドの活性を特徴づけるアッセイは当該技術分野で周知である。ドナーアシル基またはアクセプターアルコール部分に対する新規な活性および特異性を有する操作された
O-アセチルトランスフェラーゼおよび O-アシルトランスフェラーゼを作ることが可能である。操作された酵素は、当該技術分野においてよく記載されている合理的および進化的
アプローチを介して作成することが出来る。

F.アシル-CoAから脂肪エステル(バイオディーゼルおよびろう)
生産宿主は、アシル-CoAとアルコールから脂肪酸エステルを生産することが知られているペプチドを用いて操作することができる。いくつかの例において、アルコールは発酵培地中に提供され、別の例において、生産宿主が本明細書に記載のようにアルコールを提供しうる。当業者であれば、構造的に、脂肪酸エステルは A および B側を有していることを認識しているであろう。本明細書に記載のように、エステルのA側はアルコールにより寄与される炭素鎖を記載するために用いられ、エステルのB側はアシル-CoAにより寄与される炭素鎖を記載するために用いられる。いずれの鎖も飽和または不飽和であってよく、分枝していてもしていなくてもよい。生産宿主は脂肪アルコールまたは短鎖アルコールを生産するよう操作することができる。生産宿主はまた、特定のアシル-CoA 分子を生産するよう操作することもできる。本明細書において用いる場合、脂肪酸エステルは、脂肪アシル-チオエステルおよびアルコールに由来するエステルであり、エステルのA側およびB側は独立に長さにおいて異なっていてもよい。一般に、エステルのA側は少なくとも 1、2、3、4、5、6、7、または8 炭素の長さであり、エステルのB側は、8、10、12、14、16、18、20、22、24、または26 炭素の長さである。A側およびB側は、直鎖または分枝鎖、飽和または不飽和であってよい。

脂肪エステルの生産、例えばアシル-CoAとアルコールからのろうの生産は、既知のポリペプチドを用いて操作することができる。本明細書において用いる場合、ろうは長鎖脂肪酸エステルであり、エステルのA側およびB側は長さにおいて独立に異なっていてもよい。一般に、エステルのA側は少なくとも 8、10、12、14、16、18、20、22、24、または26
炭素の長さである。同様に、エステルのB側は少なくとも 8、10、12、14、16、18、20、22、24、または26 炭素の長さである。A側および B側は、モノ-、ジ-、トリ- 不飽和であってよい。脂肪エステルの生産、例えばアシル-CoAとアルコールからのろうの生産は既知のポリペプチドを用いて操作することができる。脂肪エステルを作る１つの方法は、１以上のろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)の発現を上昇させることまたはそれらのより活性な形態を発現させることを含む。

本明細書において用いる場合、ろうシンターゼは、酵素分類番号 EC 2.3.1.75におけるペプチド、ならびにアシル-チオエステルの脂肪エステルへの変換を触媒することが出来るその他のあらゆるペプチドを含む。さらに、当業者であれば、いくつかのろうシンターゼペプチドはその他の反応も同様に触媒すること、例えばいくつかのろうシンターゼペプチドは短鎖アシル-CoAと短鎖アルコールとを受け入れて脂肪エステルを生産することを認識しているであろう。かかる非特異的ろうシンターゼも、それゆえ含まれる。ろうシンターゼペプチド配列は公共源から入手可能である。例示的な GenBank 受入番号を図10に提供する。ろうシンターゼ活性を同定する方法は米国特許第7,118,896号に提供されており、これは引用により本明細書に含める。

具体的な例において、所望の生成物が脂肪エステルに基づくバイオ燃料である場合、微生物は、再生可能エネルギー源から作られる脂肪エステルを生産するよう改変される。かかる微生物は、発現されると該微生物に再生可能エネルギー源から飽和、不飽和または分枝脂肪エステルを合成する能力を付与するろうエステルシンターゼをコードする外来性 DNA 配列を含む。いくつかの態様において、ろうエステル合成タンパク質としては、これらに限定されないが以下が挙げられる: 脂肪酸エロンガーゼ(elongase)、アシル-CoAレダクターゼ、アシルトランスフェラーゼまたはろうシンターゼ、脂肪アシルトランスフェラーゼ、ジアシルグリセロールアシルトランスフェラーゼ、アシル-coA ろう
アルコールアシルトランスフェラーゼ、二機能性ろうエステルシンターゼ/アシル-CoA:ジアシルグリセロールアシルトランスフェラーゼ、これらはSimmondsia chinensis、Acinetobacter sp. 株 ADP1 (以前はAcinetobacter calcoaceticus ADP1)、Pseudomonas aeruginosa、Fundibacter jadensis、Arabidopsis thaliana、または Alkaligenes eutrophusからの複数酵素複合体から選択される。一つの態様において、脂肪酸エロンガーゼ、アシル-CoAレダクターゼまたはろうシンターゼは、Alkaligenes eutrophus およびろうおよび脂肪酸エステルを生産することが文献公知であるその他の生物由来の複数酵素複合体からのものである。

脂肪エステル生産に有用なろう合成タンパク質をコードする異種 DNAのさらなる源としては、これらに限定されないが、Mortierella alpina (例えば ATCC 32222)、Crytococcus curvatus、(Apiotricum curvatumとも称される)、Alcanivorax jadensis (例えば T9T =DSM 12718 =ATCC 700854)、Acinetobacter sp. HO1-N、(例えば ATCC 14987) およびロドコッカス・オパクス (例えば PD630、DSMZ 44193)が挙げられる。

本明細書に記載する方法は、様々な長さの脂肪エステルの生産を可能とする。一例において、脂肪エステル生成物は、炭素原子含量が24から46 炭素原子である飽和または不飽和脂肪エステル生成物である。一つの態様において、脂肪エステル生成物は炭素原子含量が24 から32 炭素原子である。別の態様において、脂肪エステル生成物の炭素含量は14および20 炭素である。別の態様において、脂肪エステルはC18:1のメチルエステルである。別の態様において、脂肪酸エステルはC16:1のエチルエステルである。別の態様において、脂肪エステルはC16:1のメチルエステルである。別の態様において、脂肪酸エステルはオクタノールのオクタデシルエステルである。

脂肪エステルの生産に有用な宿主は真核または原核微生物であり得る。いくつかの態様において、かかる宿主としては、これらに限定されないが、サッカロマイセス・セレビシエ、Candida lipolytica、大腸菌、Arthrobacter AK 19、Rhodotorula glutinins、Acinobacter sp 株 M-1、Candida lipolytica 及びその他の油性微生物が挙げられる。

一例においてAcinetobacter sp. ADP1由来の座位 AAO17391におけるろうエステルシンターゼ(Kalscheuer and Steinbuchel、J. Biol. Chem. 278:8075-8082、2003に記載、引用により本明細書に含める)が用いられる。別の例において、Simmondsia chinensis由来の座位 AAD38041におけるろうエステルシンターゼが用いられる。

所望により、ろうエステル排出輸送体、例えば、 FATP ファミリーのメンバーを、ろうまたはエステルの細胞外環境への放出の促進のために利用できる。利用できるろうエステル排出輸送体の一例はDrosophila melanogaster由来の座位 NP_524723における脂肪酸 (長鎖) 輸送タンパク質 CG7400-PA、アイソフォーム Aである。

G. アシル-ACP、アシル-CoAから炭化水素
多様な微生物が、炭化水素、例えば、アルカン、オレフィンおよびイソプレノイドを生産することが知られている。これらの炭化水素の多くは脂肪酸生合成に由来する。これらの炭化水素の生産は、ネイティブな宿主における脂肪酸生合成に関与する遺伝子を制御することによって制御することが出来る。例えば、藻類ボツリオコッカス・ブラウニにおける炭化水素生合成は、脂肪アルデヒドの脱カルボニルを介して起こる。脂肪アルデヒドは脂肪アシル - チオエステルの脂肪-アシルCoAレダクターゼによる還元によって生産される。したがって、最終的なアルカンの構造は、アルカン生合成に導かれる脂肪酸鎖長を制御する特定の遺伝子、例えば、チオエステラーゼを発現するようボツリオコッカス・ブラウニを操作することによって制御することが出来る。ボツリオコッカス・ブラウニにおける分枝鎖脂肪酸生合成をもたらす酵素の発現は、分枝鎖アルカンの生産をもたらす。脂肪酸の不飽和化を生じさせる遺伝子の導入はオレフィンの生産をもたらす。これら遺伝子のさらなる組合せは、生産される炭化水素の最終的構造に対するさらなる制御を提供しうる。より高いレベルのネイティブなまたは操作された炭化水素を生産するために、脂肪酸およびその前駆体の生合成またはその他の生成物への分解に関与する遺伝子を発現、過剰発現、または減弱させることができる。これらアプローチのそれぞれは脂肪アルコールの還元を介してアルカンを生産するVibrio furnissi M1 およびその機能的ホモログにおけるアルカンの生産に適用できる (脂肪アルコール生合成および生産の操作について上記参照)。これらアプローチのそれぞれは、Micrococcus leuteus、ステノトロフォモナス・マルトフィリア、Jeogalicoccus sp. (ATCC8456)の多くの株および関連微生物により生産されるオレフィンの生産にも適用できる。これら微生物は脂肪酸前駆体のヘッドトゥーヘッドの縮合に由来する長鎖内部オレフィンを生産する。本明細書に記載する方法を用いて脂肪酸前駆体の構造およびレベルを制御することにより、様々な鎖長、分枝、および飽和レベルのオレフィンの形成が導かれる。

炭化水素は、一級アルコールの還元のための進化したオキシド/レダクターゼを用いて生産することもできる。一級脂肪アルコールは微生物、例えば、ビブリオ・ファーニッシ M1においてアルカンを生産するのに用いられることが知られている(Myong-Ok、J. Bacteriol.、187:1426-1429、2005)。NAD(P)H 依存的オキシド/レダクターゼが原因となる触媒である。合成 NAD(P)H 依存的オキシドレダクターゼは進化的操作の使用を介して生産することができ、生産宿主において発現させて脂肪酸誘導体を生産することができる。当業者であれば脂肪アルコールレダクターゼの所望の活性を有するための「進化」のプロセスが周知であることを理解している (Kolkman and Stemmer Nat Biotechnol. 19:423-8、2001、Ness et al.、Adv Protein Chem. 55:261-92、2000、Minshull and Stemmer Curr Opin Chem Biol. 3:284-90、1999、Huisman and Gray Curr Opin Biotechnol. Aug;13:352-8、2002、および米国特許出願 2006/0195947参照)。 NAD(P)H 依存的オキシドレダクターゼのライブラリーは標準的方法、例えば、変異性 PCR、部位特異的ランダム突然変異誘発、部位特異的飽和突然変異誘発、または部位指向特異的突然変異誘発によって作成される。さらに、ライブラリーは天然 NAD(P)H 依存的オキシドレダクターゼコード配列の「シャッフリング」を介して作成されうる。ライブラリーは好適な宿主、例えば、大腸菌にて発現される。オキシド/レダクターゼライブラリーの異なるメンバーを発現する個々のコロニーは次いで脂肪アルコールの還元を触媒しうるオキシド/レダクターゼの発現について分析される。例えば、各細胞は、全細胞生体変換、細胞抽出物、透過性細胞、または精製酵素としてアッセイされうる。脂肪アルコールレダクターゼは、分光光度法または蛍光定量法でNAD(P)Hの脂肪アルコール依存的酸化をモニターすることによって同定される。アルカンの生産は GC/MS、TLC、またはその他の方法によってモニターされる。このようにして同定されたオキシド/レダクターゼは、アルカン、アルケン、および関連分枝炭化水素の生産に用いられる。これはインビトロまたはインビボで達成される。後者は、進化した脂肪アルコールレダクターゼ遺伝子を脂肪アルコールを生産する生物、例えば、本明細書に記載するものにおいて発現させることによって達成される。脂肪アルコールはアルカンを生産するであろうアルコールレダクターゼのための基質として作用する。その他のオキシドレダクターゼもこの反応を触媒するように操作され得、例えば、分子状水素、グルタチオン、FADH、またはその他の還元補酵素を使用する。

II.脂肪酸誘導体生産を上昇させるための生産株の遺伝子操作
脂肪酸誘導体の生産のための生合成経路に関与する異種 DNA 配列は、当該技術分野で周知の技術、例えばエレクトロポレーション、リン酸カルシウム沈降法、DEAE-デキストラン媒介トランスフェクション、リポソーム-媒介トランスフェクション、コンジュゲーション、形質導入等を用いて宿主細胞に安定にまたは一過性に導入されうる。安定な形質転換のために、DNA 配列はさらに、選択可能マーカー、例えば、抗生物質耐性、例えばネオマイシン、テトラサイクリン、クロラムフェニコール、カナマイシンに対する耐性、栄養要求欠損を補完する遺伝子等を含みうる。

本開示の様々な態様は、代謝または生合成経路に関与するタンパク質をコードする異種
DNA 配列を含む発現ベクターを利用する。好適な発現ベクターとしては、これらに限定されないが、ウイルスベクター、例えば、バキュロウイルスベクター、ファージベクター、例えば、バクテリオファージベクター、プラスミド、ファージミド、コスミド、フォスミド、細菌人工染色体、ウイルスベクター (例えば、ワクシニアウイルス、ポリオウイルス、アデノウイルス、アデノ-随伴ウイルス、SV40、単純ヘルペスウイルス等に基づくウイルスベクター)、P1-に基づく人工染色体、酵母プラスミド、酵母人工染色体、および特定の目的宿主(例えば、大腸菌、シュードモナス・ピスムおよびサッカロマイセス・セレビシエ)に特異的なその他のベクターが挙げられる。

有用な発現ベクターは形質転換宿主細胞の選択のための表現形質を提供する１以上の
選択可能マーカー遺伝子を含みうる。選択可能マーカー遺伝子は選択培養培地において培養された形質転換宿主細胞の生存または生育に必要なタンパク質をコードする。選択可能マーカー遺伝子を含むベクターで形質転換されていない宿主細胞は培養培地で生育できない。典型的な選択遺伝子は (a) 抗生物質またはその他の毒素、例えば、アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキサート、またはテトラサイクリンに耐性を付与するタンパク質、(b)栄養要求欠損を補完するタンパク質、または(c)複合培地から入手できない必須栄養素を供給するタンパク質をコードし、例えば、バチルスのためのD-アラニンラセマーゼをコードする遺伝子が挙げられる。別の態様において、選択可能マーカー遺伝子は、ジヒドロ葉酸レダクターゼをコードするもの、またはネオマイシン耐性を付与するもの (真核細胞培養における使用のため)、またはテトラサイクリンまたはアンピシリン耐性を付与するもの (原核宿主細胞、例えば、大腸菌における使用のため)である。

発現ベクターにおいて生合成経路遺伝子産物をコードするDNA 配列は適当な発現制御配列(プロモーター、エンハンサー等)に作動可能に連結して、コードされた遺伝子産物の合成を導く。かかるプロモーターは微生物またはウイルス起源であってよく、CMVおよびSV40が挙げられる。使用する宿主/ベクター系に応じて、多数の好適な転写および翻訳制御要素、例えば構成的および誘導可能プロモーター、転写エンハンサー要素、転写ターミネーター等のいずれもが発現ベクターにおいて利用できる (例えば、Bitter et al.、 Methods in Enzymology、153:516- 544、1987参照)。

原核宿主細胞における使用に好適なプロモーターとしては、これらに限定されないが、T4、T3、Sp6およびT7 ポリメラーゼを認識できるプロモーター、バクテリオファージラムダのP_R および P_L プロモーター、大腸菌のtrp、recA、熱ショック、および lacZ プロモーター、枯草菌のアルファ-アミラーゼおよびシグマ-特異的プロモーター、バチルスのバクテリオファージのプロモーター、ストレプトマイセスプロモーター、バクテリオファージラムダの int プロモーター、pBR322のベータ・ラクタマーゼ遺伝子のbla プロモーター、およびクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ遺伝子のCAT プロモーターが挙げられる。原核プロモーターは Glick、J. Ind. Microbiol. 1:277、1987;
Watson et al.、MOLECULAR BIOLOGY OF THE GENE、4th Ed.、Benjamin Cummins (1987);およびSambrook et al.、前掲により概説されている。

真核宿主における使用に好適な真核プロモーターの非限定的な例はウイルス起源のものであり、マウスメタロチオネイン I 遺伝子のプロモーター(Hamer et al.、J. Mol.
Appl. Gen. 1:273、1982);ヘルペスウイルスのTK プロモーター (McKnight、Cell 31:355、1982); SV40 初期プロモーター (Benoist et al.、Nature (London) 290:304、1981);ラウス肉腫ウイルスプロモーター;サイトメガロウイルスプロモーター (Foecking et
al.、Gene 45:101、1980);酵母 gal4 遺伝子プロモーター (Johnston、et al.、PNAS (USA) 79:6971、1982; Silver、et al.、PNAS (USA) 81:5951、1984); および IgG プロモーター (Orlandi et al.、PNAS (USA) 86:3833、1989)が挙げられる。

微生物宿主細胞は、誘導可能プロモーターに作動可能に連結した生合成経路遺伝子産物をコードする異種 DNA 配列により遺伝子的に改変されうる。誘導可能プロモーターは当該技術分野で周知である。好適な誘導可能プロモーターとしては、これらに限定されないが、タンパク質、代謝産物または化学物質によって影響を受けるプロモーターが挙げられる。これらとしては:ウシ白血病ウイルスプロモーター、メタロチオネインプロモーター、デキサメタゾン-誘導可能 MMTV プロモーター、SV40 プロモーター、MRP polIII プロモーター、テトラサイクリン-誘導可能 CMV プロモーター (例えば、ヒト最初期 CMV プロモーター)ならびにtrpおよびlac オペロン由来のものが挙げられる。

いくつかの例において、遺伝子的に改変される宿主細胞は構成的プロモーターに作動可能に連結された生合成経路遺伝子産物をコードする異種 DNA 配列により遺伝子的に改変される。好適な構成的プロモーターは当該技術分野において知られており、例えば、構成的アデノウイルス主要後期プロモーター、構成的 MPSV プロモーター、および構成的 CMV プロモーターが挙げられる。

いくつかの例において、改変された宿主細胞は、生合成経路に関与する単一のタンパク質をコードする外来性 DNA 配列により遺伝子的に改変されたものである。別の態様において、改変された宿主細胞は生合成経路に関与する２以上のタンパク質をコードする外来性 DNA 配列、例えば、生合成経路における第一および第二の酵素をコードする外来性 DNA 配列により遺伝子的に改変されたものである。

宿主細胞が遺伝子的に改変されて生合成経路に関与する２以上のタンパク質を発現する場合、かかるDNA 配列はそれぞれ単一または別々の発現ベクターに含まれうる。かかるDNA 配列が単一の発現ベクターに含まれる場合、いくつかの態様において、ヌクレオチド
配列は共通の制御要素 (例えば、プロモーター)に作動可能に連結しており、例えば、共通の制御要素が単一の発現ベクターにおけるすべての生合成経路タンパク質をコードするDNA 配列の発現を制御する。

改変された宿主細胞が生合成経路に関与する２以上のタンパク質をコードする異種 DNA
配列により遺伝子的に改変されている場合、DNA 配列の１つは誘導可能プロモーターに作動可能に連結し、１以上のDNA 配列は構成的プロモーターに作動可能に連結していてもよい。

いくつかの態様において、生合成経路中間体の細胞内濃度 (例えば遺伝子的に改変された宿主細胞における中間体濃度)は最終生成物の収量をさらに追加するよう高められ得る。中間体の細胞内濃度は多数の方法で高められ得、例えば、これらに限定されないが、生合成経路のための基質の培養培地中の濃度の上昇;生合成経路において活性な酵素の触媒活性の上昇;生合成経路において活性な酵素のための基質 (例えば一次基質)の細胞内量の上昇; 等が挙げられる。

いくつかの例において、脂肪酸誘導体または中間体は細胞の細胞質中に生産される。細胞質濃度は多数の方法で高められ得、例えば、これらに限定されないが、脂肪酸の補酵素
Aへの結合によるアシル-CoA チオエステルの形成が挙げられる。さらに、アシル-CoAの濃度は細胞におけるCoAの生合成の上昇によっても高められ得、例えば、パントテン酸生合成に関与する遺伝子(panD)の過剰発現またはグルタチオン生合成に関与する遺伝子(グルタチオンシンターゼ)のノックアウトによってなされる。

III.炭素鎖特徴
本明細書に提供する教示を用いて一定範囲の生成物を生産することができる。かかる生成物としては、炭化水素、脂肪アルコール、脂肪酸エステルおよびろうが挙げられる。かかる生成物のいくつかはバイオ燃料および特殊化学製品として有用である。かかる生成物は微生物において設計および生産されうる。生成物は分枝点、飽和レベル、および炭素鎖長を含むよう生産され得、これらの生成物は多くの用途における使用のために望ましい出発物質となる (図10は様々な脂肪酸誘導体を作るために単独でまたは組み合わせて用いられうる様々な酵素の説明を提供する)。

別の例において、様々な種または操作された変異体に由来する外来性 FAS 遺伝子の発現を宿主細胞に導入することができ、その結果、ネイティブな宿主のものとは構造的に(長さ、分枝、不飽和度等において)異なる脂肪酸代謝産物の生合成が導かれる。これら異種遺伝子産物はまた宿主細胞における天然の複雑な調節機構によって影響を受けないよう選択または操作することができ、それゆえ所望の商品の生産のためにより制御可能な様式で機能する。例えば、バチルス・スブチリス、サッカロマイセス・セレビシエ、ストレプトマイセス・エスピーピー、ラルストニア、ロドコッカス、コリネバクテリア、ブレビバクテリア、マイコバクテリア、油性酵母等に由来するFAS 酵素を生産宿主において発現させることが出来る。

当業者であれば、生産宿主が操作されて脂肪酸生合成経路から特定のレベルの不飽和、分枝、または炭素鎖長を含む脂肪酸を生産する場合、その結果得られる操作された脂肪酸は、脂肪酸誘導体の生産に利用できることを認識している。したがって、生産宿主から作られた脂肪酸誘導体は、操作された脂肪酸の特徴を示しうる。例えば、生産宿主は操作されて分枝、短鎖脂肪酸をつくり得、そして脂肪アルコール生産に関連する本明細書に提供する教示を用いて(即ちアルコール形成酵素、例えば、 FARを含む)、生産宿主は分枝した短鎖脂肪アルコールを生産する。同様に、炭化水素は規定されたレベルの分枝、不飽和、および/または炭素鎖長を有する脂肪酸を生産するよう生産宿主を操作することにより生産され得、したがって、均一な炭化水素集団が作られる。さらに、不飽和アルコール、脂肪酸エステル、または炭化水素が望ましい場合、脂肪酸生合成経路を操作して、低レベルの飽和脂肪酸を生産させることができ、さらなるデサチュラーゼが飽和生成物の生産を低めるよう発現されうる。

A.飽和
生産宿主は、生産宿主をfabBを過剰発現するよう操作することにより、または低温で生産宿主を培養することにより(例えば 37℃未満)、不飽和脂肪酸を生産するよう操作されうる。FabBはシス-δ³デセノイル-ACPを優先し、大腸菌における不飽和脂肪酸生産がもたらされる。FabBの過剰発現により、かなりのパーセンテージの不飽和脂肪酸の生産が導かれる(de Mendoza et al.、J. Biol. Chem.、258:2098-101、1983)。これら不飽和脂肪酸は、脂肪酸誘導体、例えば、脂肪アルコール、エステル、ろう、オレフィン、アルカン等を生産するよう操作された生産宿主において中間体として利用することが出来る。当業者であれば、fabAの減弱、またはFabBの過剰発現および特定のチオエステラーゼの発現により (以下に記載)、所望の炭素鎖長を有する不飽和脂肪酸誘導体が生産されうることを理解している。あるいは、脂肪酸生合成のリプレッサー、FabR (Genbank 受入番号 NP_418398 )を欠失させてもよく、それによっても大腸菌における不飽和脂肪酸生産が上昇する (Zhang et al.、J. Biol. Chem. 277:pp. 15558、2002.)。不飽和脂肪酸のさらなる上昇はFabM (トランス-2,シス-3-デセノイル-ACP イソメラーゼ、Genbank 受入番号 DAA05501) の過剰発現およびStreptococcus pneumoniae からのFabK (トランス-2-エノイル-ACP
レダクターゼ II、Genbank 受入番号 NP_357969)の発現制御 (Marrakchi et al.、J. Biol. Chem. 277: 44809、2002)、および大腸菌 Fab I ((トランス-2-エノイル-ACP レダクターゼ、Genbank 受入番号 NP_415804)の欠失により達成できる。さらに、不飽和脂肪酸エステルのパーセンテージを高めるためには、微生物は、fabB (β-ケトアシル-ACP シンターゼ I、受入番号: BAA16180、EC:2.3.1.41をコードする)、Sfa (fabAのサプレッサー、受入番号: AAC44390をコードする)および gnsA およびgnsB (ともに secG ヌル突然変異体サプレッサー、a.k.a. 冷ショックタンパク質、受入番号: ABD18647.1、AAC74076.1をコードする)を過剰発現するとよい。

いくつかの例において、内因性 fabF 遺伝子を減弱することができ、それにより生産されるパルミトレイン酸 (C16:1)のパーセンテージが上昇する。

B.環状部分を含む分枝
分枝点、環状部分、およびそれらの組合せを含む脂肪酸誘導体を本明細書に提供する教示を用いて生産することができる。

直鎖状脂肪酸(sFA)を天然に生産する微生物を１以上の外来性核酸配列を発現させることによって分枝鎖脂肪酸 (brFA)を生産するように操作することができる。例えば、大腸菌は直鎖状脂肪酸(sFA)を天然に生産する。大腸菌をbrFAを生産するよう操作するために、いくつかの遺伝子を導入し、発現させて、分枝前駆体を提供し (bkd オペロン)、分枝前駆体からの脂肪酸生合成を開始させることができる(fabH)。さらに、生物はbrFAの伸長(例えば ACP、FabF) および/または通常sFAを導き、導入された遺伝子と競合しうる対応する大腸菌遺伝子(例えば、 FabH、FabF)の欠失のための遺伝子を発現することが出来る。

分枝アシル-CoAである 2-メチル-ブツリル-CoA、イソバレリル-CoAおよびイソブツリル-CoAはbrFAの前駆体である。ほとんどの brFA-含有微生物においてそれらは分枝アミノ酸(イソロイシン、ロイシンおよびバリン)から２工程で合成される(以下に詳細に記載する) (Kadena、Microbiol. Rev. 55: pp. 288、1991)。微生物を brFAを生産するよう、またはbrFAを過剰生産するよう操作するために、これら２工程における１以上の酵素の、発現または過剰発現を操作するとよい。例えば、いくつかの例において、生産宿主は１工程を達成しうる内因性酵素を有し得、それゆえ、第二工程に関与する酵素のみを組換えにより発現させなければならない。

分枝脂肪酸の形成における第一工程は、対応するα-ケト酸の分枝鎖アミノ酸アミノトランスフェラーゼによる生産である。大腸菌はかかる酵素、IlvE (EC 2.6.1.42; Genbank 受入番号 YP_026247)を有している。いくつかの例において、異種分枝鎖アミノ酸アミノトランスフェラーゼを発現させてはならない。しかし、アミノトランスフェラーゼ反応が脂肪酸誘導体生産のために選択された宿主生物におけるbrFA 生合成の律速であると判明すれば、大腸菌 IlvE またはその他の分枝鎖アミノ酸アミノトランスフェラーゼ、例えばラクトコッカス・ラクティスからのilvE (Genbank 受入番号 AAF34406)、シュードモナス・プチダからのilvE (Genbank 受入番号 NP_745648) またはストレプトマイセス・コエリカラーからのilvE (Genbank 受入番号 NP_629657)を宿主微生物において過剰発現させることができる。

第二工程、α-ケト酸の対応する分枝鎖アシル-CoAへの酸化的脱炭酸は、分枝鎖 α-ケト酸デヒドロゲナーゼ複合体(bkd; EC 1.2.4.4.)により触媒され(Denoya et al. J.
Bacteriol. 177:pp. 3504、1995)、これは E1α/β(デカルボキシラーゼ)、E2 (ジヒドロリポイルトランスアシラーゼ) および E3 (ジヒドロリポイルデヒドロゲナーゼ) サブユニットからなり、ピルビン酸およびα-ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ複合体に類似している。表2は、生産宿主において発現されて分枝鎖アシル-CoA 前駆体を提供しうるいくつかの微生物からの可能性のあるbkd 遺伝子を示す。基本的には、brFAを有する、および/または、分枝鎖アミノ酸上で生育するあらゆる微生物は、生産宿主、例えば、大腸菌における発現のための単離 bkd 遺伝子の源として利用できる。さらに、大腸菌はE3 成分 (そのピルビン酸デヒドロゲナーゼ複合体の一部として; lpd、EC 1.8.1.4、Genbank 受入番号 NP_414658)を有し、それはそれゆえ、E1α/βおよび E2 bkd 遺伝子のみを発現するのに十分であり得る。

表 2
選択された微生物からのBkd 遺伝子

別の例において、イソブツリル-CoAは生産宿主、例えば大腸菌においてクロトニル-CoA
レダクターゼ (Ccr、EC 1.1.1.9)およびイソブツリル-CoA ムターゼ (ラージサブユニット IcmA、EC 5.4.99.2; スモールサブユニット IcmB、EC 5.4.99.13 ) (Han and Reynolds J. Bacteriol. 179:pp. 5157、1997)の共発現を介して作ることが出来る。クロトニル-CoAは大腸菌およびその他の微生物における脂肪酸生合成の中間体である。選択された微生物からのccrおよびicm 遺伝子の例を表3に示す。

表3
選択された微生物からのccrおよびicm 遺伝子

bkd 遺伝子の発現に加えて(上記参照)、brFA 生合成の開始は、分枝鎖アシル CoAに対する特異性を有するβ-ケトアシル-アシル-キャリアタンパク質シンターゼ III (FabH、EC 2.3.1.41) を利用する (Li et al. J. Bacteriol. 187:pp. 3795、2005)。かかる FabHの例を表 4に挙げる。あらゆるbrFA-含有微生物の脂肪酸生合成に関与するFabH 遺伝子を生産宿主において発現させることが出来る。天然には brFAを作らない生産宿主からのBkd およびFabH 酵素は brFA 生産を支持しないことがあり得、それゆえ、BkdおよびFabHは組換えにより発現されうる。同様に、Bkd およびFabH 生産の内因性レベルはbrFAの生産に十分でないことがあり得、それゆえ、それらは過剰発現されうる。さらに、脂肪酸生合成機構のその他の成分を発現させることが出来、例えば、アシルキャリアタンパク質 (ACP) およびβ-ケトアシル-アシル-キャリアタンパク質シンターゼ II 候補はアシルキャリアタンパク質 (ACP) およびβ-ケトアシル-アシル-キャリアタンパク質シンターゼ II (fabF、EC 2.3.1.41)である (候補は表 4に挙げる)。これらの遺伝子の発現に加えて、内因性脂肪酸生合成経路におけるいくつかの遺伝子は生産宿主において減弱されうる。例えば、大腸菌においてbrFA 生合成を干渉する可能性の最も高い候補はfabH (Genbank 受入番号 # NP_415609) および/または fabF 遺伝子(Genbank 受入番号 # NP_415613)である。

上記のように、brFA 合成およびアルコール合成を支持する遺伝子を発現させることの組合せを介して分枝鎖アルコールが生産されうる。例えば、アルコールレダクターゼ、例えば、Acinetobacter baylyi ADP1からのAcr1がbkd オペロンと共発現される場合、大腸菌はイソペンタノール、イソブタノールまたは 2-メチルブタノールを合成することができる。同様に、Acr1が ccr/icm 遺伝子と共発現される場合、大腸菌はイソブタノールを合成することができる。

生産宿主、例えば、大腸菌をω-環状脂肪酸(cyFA)を合成することができる生物に変換するために、いくつかの遺伝子が導入され発現されなければならず、それによって環状前駆体であるシクロヘキシルカルボニル-CoAが提供される (Cropp et al. Nature Biotech. 18:pp. 980、2000)。表 4に示す遺伝子 (fabH、ACP および fabF)は発現されるとω-環状脂肪酸の開始および伸長を可能としうる。あるいは、相同性遺伝子が cyFAを作る微生物から単離され得、大腸菌において発現されうる。

表4
brFAを有する選択された微生物からのFabH、ACPおよびfabF 遺伝子

以下の遺伝子の発現は大腸菌におけるシクロヘキシルカルボニル-CoAの提供に十分である: ストレプトマイセス・コリヌスのアンサトリエニン遺伝子クラスターからのansJ、ansK、ansL、chcA およびansM (Chen et al.、Eur. J. Biochem. 261:pp. 1999、1999) またはストレプトマイセス sp. HK803 のホスラクトマイシン B 遺伝子クラスターからのplmJ、plmK、plmL、chcA およびplmM (Palaniappan et al.、J. Biol. Chem. 278:pp. 35552、2003)とともに、 S. collinus、S. avermitilisまたはS. coelicolorからのchcB 遺伝子 (Patton et al. Biochem.、39:pp. 7595、2000) (Genbank 受入番号について表5参照)。

表5
シクロヘキシルカルボニル-CoA合成のための遺伝子

chcAのみがGenbank entry U72144においてアノテーションされており、ansJKLM はChen
et al.による(Eur. J. Biochem. 261:pp. 1999、1999)。

表4に挙げる遺伝子 (fabH、ACP およびfabF)はω-環状脂肪酸の開始および伸長を起こらせるのに十分である。というのはそれらは広い基質特異性を有しうるからである。これらのいずれかの遺伝子と表5からのansJKLM/chcABまたはpmlJKLM/chcAB 遺伝子の共発現がcyFAを生じない場合は、cyFAを作る微生物からのfabH、ACP および/または fabF ホモログを単離し(例えば縮重 PCR プライマーまたは異種 DNA プローブの使用により)、共発現させればよい。表6はω-環状脂肪酸を含む選択された微生物を示す。

表 6
ω-環状脂肪酸を含む微生物の例

* cyFA 生合成の前駆体としてシクロヘプチルカルボニル-CoAを使用しシクロヘキシルカルボニル-CoAを使用しない。

C.エステル特徴
当業者であれば、エステルはA側とB側とを含むことを理解している。本明細書に記載のように、B側には宿主生物におけるデノボ合成から生産される脂肪酸が寄与する。いくつかの例において、宿主がさらに操作されてアルコール、例えば脂肪アルコールを作る場合、A側もまた宿主生物により生産される。さらに別の例において、A側は培地において提供されうる。本明細書に記載のように、所望のチオエステラーゼ遺伝子を選択することにより、B側、および脂肪アルコールが作られる場合、A側は、特定の炭素鎖特徴を有するよう設計されうる。これらの特徴には、不飽和点、分枝、および所望の炭素鎖長が含まれる。長鎖脂肪酸エステルを作る例示的な方法であって、AおよびB側が生産宿主によって生産される方法を以下の実施例6に提供する。同様に、実施例5は、中鎖脂肪酸エステルを作る方法を提供する。AおよびB側の両方が生産宿主によって寄与される場合、それらは類似の炭素鎖特徴を有する脂肪酸生合成経路中間体を用いて生産される。例えば、生産される脂肪酸エステルの少なくとも 50%、60%、70%、または80%は、 6、4、または 2 炭素、長さにおいて変動するA側および B側を有する。A側およびB側はまた、類似の分枝および飽和レベルを示す。

A側に寄与するための脂肪アルコールの生産に加えて、宿主はその他の短鎖アルコール、例えば、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、イソブタノール、およびブタノールを当該技術分野で周知の技術を用いてA側上に取り込むために生産しうる。例えば、ブタノールは宿主生物によって作られうる。ブタノール生産細胞を作るために、LS9001 株 (以下の実施例1に記載)をさらに操作して大腸菌 K12からのatoB (アセチル-CoA アセチルトランスフェラーゼ) 、Butyrivibrio fibrisolvensからのβ -ヒドロキシブチリル-CoA デヒドロゲナーゼ、Clostridium beijerinckii からのクロトナーゼ、Clostridium beijerinckii からのブチリル CoA デヒドロゲナーゼ、Cladosporium fulvum からのCoA-アシル化アルデヒドデヒドロゲナーゼ (ALDH) およびClostridium acetobutylicumのアルデヒド-アルコールデヒドロゲナーゼをコードするadhE をpBAD24 発現ベクターにおいてprpBCDE プロモーター系の下で発現させることが出来る。同様に、エタノールはKalscheuer et al.、Microbiology 152:2529-2536、2006に教示される方法を用いて生産宿主において生産され得、これは引用により本明細書に含める。

IV.発酵
脂肪酸誘導体の生産および単離は特定の発酵技術の使用によって促進されうる。生産を最大化させ、コストを削減する１つの方法は、炭化水素生成物に変換される炭素源のパーセンテージを上昇させることである。通常の細胞の生活環において、炭素は、細胞機能、例えば、脂質、糖類、タンパク質、有機酸および核酸の生産に用いられる。生育に関連する活性に必要な炭素の量を減らすと、炭素源の出力への変換効率を高めることが出来る。これは、所望の密度、例えば、対数増殖期のピークに達する密度までまず微生物を培養することにより達成できる。かかる点において、複製チェックポイント遺伝子が細胞の増殖の停止に利用されうる。具体的には、クオラムセンシングメカニズム(Camilli and Bassler Science 311:1113、2006; Venturi FEMS Microbio Rev 30:274-291、2006;および Reading and Sperandio FEMS Microbiol Lett 254:1-11、2006に概説)を利用して、遺伝子、例えば、 p53、p21、またはその他のチェックポイント遺伝子を活性化することが出来る。細胞複製を停止するよう活性化され得、大腸菌において生育できる遺伝子としては
umuDC 遺伝子が挙げられ、その過剰発現は静止期から対数増殖期への進行を停止する (Murli et al.、J. of Bact. 182:1127、2000)。 UmuCは非コード損傷に対する損傷乗り越え合成を行うことが出来るDNA ポリメラーゼであり、これは多くのUVおよび化学物質突然変異誘発の機構の基礎である。umuDC 遺伝子産物は損傷乗り越え合成のプロセスに用いられ、DNA損傷チェックポイントとしても働く。UmuDC 遺伝子産物には UmuC、UmuD、umuD’、UmuD’₂C、UmuD’₂ およびUmuD₂が含まれる。同時に、生成物生産遺伝子は活性化され、したがって複製および維持経路が用いられる必要性が最小となり、一方脂肪酸誘導体が作られる。

炭化水素生成物に変換される入力炭素のパーセンテージはコスト推進要因である。効率的であるほど(即ちパーセンテージが高いほど)、プロセスは安価となる。酸素-含有炭素源 (即ち、グルコースおよびその他の炭水化物に基づく源)について、酸素は二酸化炭素の形態で放出されなければならない。2 酸素原子が放出される度に、１炭素原子が放出され、最大理論的代謝効率は ~34% (w/w) となる(脂肪酸由来生成物について)。この値はしかし、その他の炭化水素生成物および炭素源については変化する。文献における典型的な効率は ~<5%である。炭化水素生成物を生産する操作された微生物は 1、3、5、10、15、20、25、および 30%を超える効率を有しうる。一例において微生物は約 10%から約 25%の効率を示す。別の例において、かかる微生物は約 25%から約 30%の効率を示し、別の例においてかかる微生物は >30%の効率を示す。

最終生成物が細胞から放出されるいくつかの例において、連続プロセスを実施することが出来る。このアプローチにおいて、脂肪酸誘導体を生産する生物を含むリアクターは複数の方法で組み立てられうる。一例において、培地の一部が除かれ放置される。脂肪酸誘導体は水層から分離され、それはまた、発酵チャンバに戻される。

一例において、発酵チャンバは連続的還元が行われている発酵物を封入する。この例において、安定な還元環境が作られるであろう。電子のバランスは二酸化炭素の放出(気体形態における)により維持されるであろう。NAD/H および NADP/H バランスを増強する努力は電子のバランスの安定化において役立ちうる。

細胞内 NADPHの利用能はまたNADH:NADPH トランスヒドロゲナーゼを発現するよう生産宿主を操作することによっても増強されうる。１以上の NADH:NADPH トランスヒドロゲナーゼの発現は解糖において生産されたNADH をNADPHに変換し、それは脂肪酸誘導体の生産を促進する。

組換え宿主微生物から輸送タンパク質を介して脂肪酸誘導体を連続的に生産および排出するシステムが本明細書に開示される。多くの輸送および流出タンパク質が多様な化合物を排出するよう働き、特定のタイプの脂肪酸誘導体に対して選択的であるように進化しうる。したがって、いくつかの態様においてABC トランスポーターをコードする外来性 DNA 配列が組換え宿主微生物によって機能的に発現され、それによって微生物は脂肪酸誘導体を培養培地に排出する。一例において、ABC トランスポーターはCaenorhabditis elegans、Arabidopsis thalania、Alkaligenes eutrophus またはRhodococcus erythropolis
(座位 AAN73268)由来のABC トランスポーターである。別の例において、ABC トランスポーターは、CER5 (座位At1g51500 または AY734542)、AtMRP5、AmiS2およびAtPGP1から選択されるABC トランスポーターである。いくつかの例において、ABC トランスポーターは
CER5である。さらに別の例において、CER5 遺伝子はArabidopsis由来である(座位 At1g51500、AY734542、At3g21090 およびAt1g51460)。

輸送タンパク質は、例えば、以下から選択される流出タンパク質であり得る: 大腸菌由来のAcrAB、TolC およびAcrEF または Thermosynechocossus elongatus BP-1由来のtll1618、tll1619 およびtll0139。

さらに、輸送タンパク質は、例えば、Drosophila melanogaster、Caenorhabditis elegans、Mycobacterium tuberculosis またはサッカロマイセス・セレビシエから選択される脂肪酸輸送タンパク質 (FATP)または哺乳類 FATPのいずれかでありうる。FATPはさらに基質の流れの方向を反転させるために逆転した膜領域により再合成されうる。具体的には、タンパク質の親水性ドメイン (または膜ドメイン)を構成するアミノ酸配列はそれぞれの特定のアミノ酸について同じコドンを維持しつつ逆転されうる。かかる領域の同定は当該技術分野で周知である。

生産宿主はまた脂肪酸誘導体を放出する内因性の能力について選択されうる。生成物の生産および発酵ブロスへの放出の効率は細胞内生成物の細胞外生成物に対する比として表現されうる。いくつかの例において比は、5:1、4:1、3:1、2:1、1:1、1:2、1:3、1:4、または 1:5でありうる。

生産宿主はさらに組換えセルロソーム、例えば、PCT出願番号 PCT/US2007/003736に記載のものを発現するよう操作され得、これは生産宿主がセルロース性材料を炭素源として利用することを可能にする。例えば、生産宿主はさらにインベルターゼ (EC 3.2.1.26)を発現するよう操作され得、それによってスクロースが炭素源として利用可能となる。

同様に、生産宿主はIngram et al.の米国特許第5,000,000、5,028,539、5,424,202、5,482,846、および5,602,030号に記載の教示を用いて操作され得、それによって生産宿主は炭素を効率的に同化し得、セルロース性材料が炭素源として利用可能になる。

IV.生産後プロセシング
発酵において生産された脂肪酸誘導体は発酵培地から分離されうる。脂肪酸誘導体を水性培地から分離するために知られているあらゆる技術を利用できる。本明細書において提供する１つの例示的な分離プロセスは二相(二相性) 分離プロセスである。このプロセスは、遺伝子操作された生産宿主を脂肪酸誘導体を生産するのに十分な条件下で培養すること、誘導体を有機相に回収することおよび有機相を水性発酵ブロスから分離することを含む。この方法はバッチおよび連続発酵設定の両方において実施できる。

二相性分離は脂肪酸誘導体が比較的混ざり合わないことを利用して分離を容易にする。混ざり合わないこととは、化合物が水に比較的溶解できないことをいい、化合物の分配係数によって規定される。分配係数、Pは、有機相にある化合物の平衡濃度(二相性システムにおいて有機相は通常生産プロセスにおいて脂肪酸誘導体によって形成される相であるが、いくつかの例において有機相は供給されうる(例えば、生成物分離を促進するためのオクタン層)）を水相 (即ち発酵ブロス)において平衡にある濃度によって割ったものであると規定される。二相系について記載する場合、Pは通常logPとして議論される。logPが10の化合物は有機相に10:1に分配され、logPが 0.1の化合物は水相に10:1に分配される。当業者であれば、生産される脂肪酸誘導体が高い logP値を有するように発酵ブロスと有機相とを選択することにより、脂肪酸誘導体は発酵槽において非常に低濃度であっても有機相に分離されることを理解している。

本明細書に記載する方法により生産された脂肪酸誘導体は発酵ブロスならびに細胞質において比較的混ざり合わない。それゆえ、脂肪酸誘導体は細胞内または細胞外のいずれかで有機相に回収される。生成物の有機相における回収は、脂肪酸誘導体の細胞機能に対する影響を小さくし、生産宿主がより多くの生成物を生産することを可能とする。言い換えると、脂肪酸誘導体の濃度は宿主細胞に対する顕著な影響を有さない。

本明細書に記載のように生産される脂肪アルコール、脂肪酸エステル、ろう、および炭化水素は均質な化合物の生産を可能とし、ここで少なくとも 60%、70%、80%、90%、または95%の生産された脂肪アルコール、脂肪酸エステルおよびろうは、 4未満の炭素、または 2未満の炭素のみ変動する炭素鎖長を有する。これらの化合物は比較的均一な程度の飽和を有するよう生産され得、例えば、少なくとも 60%、70%、80%、90%、または95%の脂肪アルコール、脂肪酸エステル、炭化水素およびろうはモノ-、ジ-、またはトリ- 不飽和である。かかる化合物は直接燃料、パーソナルケア添加剤、栄養サプリメントとして利用できる。かかる化合物はまた、後の反応、例えばエステル交換、水素化、水素化、熱分解のいずれかまたは両方を介した触媒的クラッキングまたはエポキシド化反応によりその他の生成物を作るための原材料としても利用できる。

V.燃料組成物
本明細書に記載する脂肪酸誘導体は燃料として利用できる。当業者であれば、燃料の意図される目的に応じて、異なる脂肪酸誘導体を生産および利用できることを理解している。例えば、寒冷気候において使用されることが意図される自動車燃料のためには、分枝脂肪酸誘導体が望ましく、本明細書に提供する教示を用いて、分枝炭化水素、脂肪酸エステルおよびアルコールを製造できる。本明細書に記載する方法を用いて、所望の燃料品質を有する比較的均質な脂肪酸誘導体を含む燃料を生産することができる。かかる燃料は、炭素フィンガープリント法、石油由来燃料またはトリグリセリド由来バイオディーゼルと比較した場合に不純物が無いことにより特徴づけられ得、さらに、脂肪酸誘導体に基づく燃料をその他の燃料または燃料添加剤と組み合わせて所望の性質を有する燃料を生産することができる。

A.炭素フィンガープリント法
生物学的に生産された脂肪酸誘導体は、燃料、例えば、アルコール、ディーゼルおよびガソリンのための新しい原材料である。脂肪酸誘導体を用いて作られたいくつかのバイオ燃料は再生可能な源から生産されているわけではなく、したがって、新規な組成物である。かかる新規な燃料は二重炭素-同位体フィンガープリント法に基づいて石油化学の炭素由来の燃料とは区別されうる。さらに、特定の生物由来の炭素源(例えば、グルコース対グリセロール) は二重炭素-同位体フィンガープリント法により判定できる (米国特許第7,169,588号参照、これは引用により本明細書に含める) 。

この方法は有用なことに化学的に同一の材料を識別し、生成物における炭素をバイオスフェア (植物) 成分の生育の源 (および可能であれば年数)によって割り当てる。同位体である、¹⁴C および ¹³Cはこの問題に対して補完的情報を提供する。核半減期が5730年である放射炭素日付同位体 (¹⁴C)は、明確に検体の炭素を化石 (「死んだ」) およびバイオスフェア (「生きた」) 原材料に割り当てることを可能にする[Currie、L. A. "Source Apportionment of Atmospheric Particles," Characterization of Enviuronmental Particles、J. Buffle and H. P. van Leeuwen、Eds.、1 of Vol. I of the IUPAC Enviuronmental Analytical Chemistry Series (Lewis Publishers、Inc) (1992) 3 74]。放射炭素日付における基本的な前提は、大気中の¹⁴C 濃度の一定性が生きた生物中の¹⁴Cの一定性を導くことにある。単離されたサンプルを扱う場合、サンプルの年齢は以下の関係 t=(-5730/0.693)ln(A/A.sub.O) (式5)によっておよそ推定でき、ここでt=年齢、5730年は放射炭素の半減期、およびAおよびA.sub.Oはそれぞれサンプルおよび現代の標準の¹⁴C比活性である[Hsieh、Y.、Soil Sci. Soc. Am J.、56、460、(1992)]。しかし1950年からの大気中の核実験および1850年からの化石燃料の燃焼のために、¹⁴Cは第二の地球化学時間特性を獲得している。大気中の CO2におけるその濃度--およびしたがって生きたバイオスフェアにおけるその濃度は--1960年代中頃の核実験のピークにおいてはおよそ二倍となっている。それ以来徐々に定常状態宇宙線生成 (大気中) 基底同位体率 (¹⁴C /¹²C)は約1.2x10¹²に戻っており、おおよその緩和「半減期」は7-10年である(この後者の半減期は文字通りに解釈してはならず; むしろ原子力時代の始まりからは詳細な大気の核の入力/崩壊関数を使用して大気およびバイオスフェア ¹⁴Cの変動を追跡しなくてはならない)。この後者のバイオスフェア ¹⁴C時間特徴が最近のバイオスフェア炭素の年数付けの保証を提供する。¹⁴C は加速器質量分析 (AMS)により測定でき、「現代炭素比(fraction of modern carbon)」 (f_M)という単位により結果が与えられる。f_M はNational Institute of Standards and Technology (NIST) Standard Reference Materials (SRMs) 4990Bおよび 4990Cにより規定され、これらはそれぞれシュウ酸標準 HOxIおよびHOxIIとして知られている。基本的定義は¹⁴C /¹²C 同位体比 HOxIの0.95倍に関連する (AD 1950を参照)。これは崩壊を修正した産業革命前の木におよそ匹敵する。現在生きているバイオスフェア(植物材料)については、f_M はおよそ1.1である。

安定な炭素同位体比 (¹³C /¹²C)は源の識別および割当への補完的な経路を提供する。所定の生物由来材料における¹³C /¹²C 比は二酸化炭素が固定された時点の大気中の二酸化炭素における¹³C /¹²C 比と一致し、また正確な代謝経路を反映する。地域的変動も起こる。石油、C3 植物(広葉)、C.sub.4 植物(イネ科植物)、および海洋炭酸塩はすべて¹³C
/¹²Cおよび対応するデルタ¹³C値が有意に異なっている。さらに、C3およびC4 植物の脂質は代謝経路の結果として同じ植物の炭水化物成分に由来する材料とは異なる分析となる。測定の精度の範囲内で、¹³C は同位体分別効果によって大きな変動を示し、本発明にとってもっとも顕著なのは光合成機構である。植物における炭素同位体比における相違の主な原因は、植物における光合成炭素代謝の経路、特に一次カルボキシル化の際に起こる反応、即ち大気中 CO₂の最初の固定における相違と密接に関連している。植物の２つの大きいクラスは、「C3」(またはカルビン・ベンソン) 光合成回路を組み込むものと、「C4」(またはハッチ・スラック) 光合成回路を組み込むものである。 C3 植物、例えば、広葉樹および針葉樹は、温帯気候領域において優勢である。C3 植物において、一次 CO₂ 固定またはカルボキシル化反応には、酵素リブロース-1,5-二リン酸カルボキシラーゼが関与し、最初の安定な生成物は3-炭素化合物である。一方、C4 植物には、暖地型牧草、トウモロコシおよびサトウキビなどの植物が含まれる。C4 植物においては、さらなる酵素、ホスホエノール-ピルビン酸カルボキシラーゼを伴うさらなるカルボキシル化反応が一次カルボキシル化反応である。第一の安定な炭素化合物は4-炭素酸であり、これは後で脱炭酸される。こうして放出される CO₂ は再び C3回路によって固定される。

C4およびC3 植物の両方がある範囲の¹³C /¹²C 同位体比を示すが、典型的な値は約-10〜-14/mil (C4)および -21〜-26/ mil (C3)である [Weber et al.、J. Agric. Food Chem.、45、2942 (1997)]。石炭および石油は一般にこの後者の範囲に入る。¹³C 測定尺度は元々ピー・ディー・ベレムナイト(PDB) 石灰石によって設定されたゼロにより規定され、ここで値はこの材料からの変位の千当たり部数によって示される。「Δ¹³C 」値は千当たり部数(per mil)、%の略であって、以下のように計算される:

PDB 参照物質 (RM)がなくなって以来、一連の代替的なRMがIAEA、USGS、NIST、およびその他の選択された国際的同位体研究室の協力によって開発された。PDBからのmil当たり変位の表記が Δ¹³Cである。マス 44、45 および46の分子イオンに対する高精度安定比質量分析 (IRMS)によってCO₂に対して測定がなされる。

脂肪酸誘導体および関連するバイオ燃料、化学物質、および混合物は、石油化学物質由来の対応物と¹⁴C (fM)および二重炭素-同位体フィンガープリント法によって完全に識別でき、新規組成物であることが示される。

本明細書に記載する脂肪酸誘導体はバイオ燃料および化学物質の生産において有用性を有する。本発明により提供されるこの新規な脂肪酸誘導体に基づく生成物の組成物はさらに石油化学物質源のみに由来する物質から二重炭素-同位体フィンガープリント法に基づいて区別することが出来る。これら生成物を識別する能力は商業目的でこれら材料を追跡することにおいて有益である。例えば、「新しい」および「古い」炭素同位体プロファイルの両方を含む燃料または化学物質は「古い」材料のみからできている燃料および化学物質から識別できる。したがって、本発明の材料はその特有のプロファイルに基づいて、競争の規定および寿命の決定のために商業利用できる。

いくつかの例において、δ¹³C が約 -10.9から約 -15.4の脂肪酸誘導体を含むバイオ燃料組成物が作られ、ここで脂肪酸誘導体は組成物における生物由来材料 (再生可能資源、例えば、セルロース性材料および糖に由来する)の少なくとも約 85% を占める。別の例において、バイオ燃料組成物は下記式を有する脂肪酸誘導体を含む：

［式中、
Xは、CH_3、-CH₂OR¹; -C(O)OR²; または-C(O)NR³R⁴;
Rは各 nについて独立に非存在、Hまたは低級脂肪族;
nは 8〜34の整数、例えば、10〜24;および、
R¹、R²、R³およびR⁴は独立にHおよび低級アルキルから選択される］。
典型的には、Rが低級脂肪族である場合、R は分枝、非分枝または環状低級アルキルまたは低級アルケニル部分である。例示的な R基としては、限定されないが、メチル、イソプロピル、イソブチル、sec-ブチル、シクロペンテニル等が挙げられる。脂肪酸誘導体はさらにδ¹³Cが約 -10.9 から約 -15.4であるとして特徴づけられ;脂肪酸誘導体が組成物における生物由来材料の少なくとも約 85% を占める。いくつかの例においてバイオ燃料組成物における脂肪酸誘導体は現代炭素比(f_M ¹⁴C)少なくとも約 1.003、1.010、または 1.5を有することを特徴とする。

B.脂肪酸誘導体
様々な脂肪酸エステルについてのセタン価(centane number) (CN)、粘度、融点、および燃焼熱が例えば、Knothe、Fuel Processing Technology 86:1059-1070、2005において特徴づけられており、これは引用により本明細書に含める。本明細書に提供する教示を用いて、生産宿主を Knothe、Fuel Processing Technology 86:1059-1070、2005に記載の脂肪酸エステルのいずれかを生産するよう操作することができる。

アルコール (短鎖、長鎖、分枝または不飽和)は、本明細書に記載する生産宿主によって生産することができる。かかるアルコールは直接燃料として利用可能であるし、あるいはそれらは、エステル、即ち上記のようにエステルのA側を作るために利用することが出来る。かかるエステルは単独でまたはその他の本明細書に記載する脂肪酸誘導体と組合せて、有用な燃料である。

同様に、本明細書に記載する微生物から生産される炭化水素はバイオ燃料として利用可能である。かかる炭化水素に基づく燃料は、分枝点、規定された飽和度、および特定の炭素長を含むよう設計することが出来る。バイオ燃料として単独でまたはその他の脂肪酸誘導体と組合せて使用する場合、炭化水素はさらに、添加剤またはその他の従来型の燃料 (アルコール、トリグリセリド由来のディーゼルおよび石油に基づく燃料)と組み合わされてもよい。

C.不純物
本明細書に記載する脂肪酸誘導体はバイオ燃料の製造に有用である。かかる脂肪酸誘導体は脂肪酸から直接作られ、トリグリセリドの化学的加工から作られるものではない。したがって、開示された脂肪酸誘導体を含む燃料は、トリグリセリド由来のバイオ燃料、例えば、植物油および脂肪に由来する燃料に通常付随するものよりも少ない不純物を含有する。

本明細書に記載する粗脂肪酸誘導体バイオ燃料 (脂肪酸誘導体をその他の燃料、例えば、従来型の燃料と混合する前のもの)は、石油化学的ディーゼルまたはバイオディーゼルよりも少ないエステル交換触媒を含有する。例えば、脂肪酸誘導体は、約 2%未満、1.5%、1.0%、0.5%、0.3%、0.1%、0.05%、または0%のエステル交換触媒またはエステル交換触媒に起因する不純物を含みうる。エステル交換触媒としては、例えば、水酸化物触媒、例えば、 NaOH、KOH、LiOH、および酸性触媒、例えば、鉱酸触媒およびルイス酸触媒が挙げられる。エステル交換触媒に起因する触媒および不純物としては、これらに限定されないが、スズ、鉛、水銀、カドミウム、亜鉛、チタン、ジルコニウム、ハフニウム、ホウ素、アルミニウム、リン、ヒ素、アンチモン、ビスマス、カルシウム、マグネシウム、ストロンチウム、ウラン、カリウム、ナトリウム、リチウム、およびそれらの組合せが挙げられる。

同様に、本明細書に記載する粗脂肪酸誘導体バイオ燃料(脂肪酸誘導体をその他の燃料、例えば、石油化学的ディーゼルまたはバイオディーゼルと混合する前のもの) は、トリグリセリドから作られたバイオ燃料よりも少ないグリセロール (またはグリセリン)を含む。例えば、脂肪酸誘導体は、約 2%未満、1.5%、1.0%、.5%、.3%、.1%、.05%、または0%のグリセロールを含みうる。

脂肪酸誘導体に由来する粗バイオ燃料はまた、トリグリセリドからできたバイオディーゼルと比較して少ない遊離アルコール (即ち、エステルを作るために用いられるアルコール)を含む。これは部分的には生産宿主によるアルコールの利用効率に起因する。例えば、脂肪酸誘導体は、約 2%未満、1.5%、1.0%、.5%、.3%、.1%、.05%、または 0%の遊離アルコールを含む。

開示された脂肪酸誘導体に由来するバイオ燃料は、さらに石油由来ディーゼルと比較して硫黄濃度が低いことによっても特徴づけられ得る。例えば、脂肪酸誘導体由来のバイオ燃料は約 2%未満、1.5%、1.0%、.5%、.3%、.1%、.05%、または 0%の硫黄を有しうる。

D.添加剤
燃料添加剤は燃料またはエンジンの性能を増強するために用いられる。例えば、燃料添加剤は、凍結/ゲル化点、曇り点、潤滑性、粘度、酸化安定性、発火性、オクタンレベルおよび引火点を変化させるために利用されうる。米国においては、すべての燃料添加剤は環境保護庁に登録しなければならず、燃料添加剤を販売する会社および燃料添加剤の名称は公共に庁のウェブサイトから入手でき、庁に接触することによっても入手できる。当業者であれば本明細書に記載する脂肪酸誘導体は所望の性質を付与するために１以上のかかる添加剤と混合されうることを理解している。

当業者であれば、本明細書に記載する脂肪酸誘導体は、その他の燃料、例えば、トリグリセリド由来のバイオディーゼル、様々なアルコール、例えば、エタノールおよびブタノール、および石油由来生成物、例えば、ガソリンと混合できることを理解するであろう。いくつかの例において、ゲル化点の低い脂肪酸誘導体、例えば、 C16:1 エチルエステルまたは C18:1 エチルエステルが生産される。このゲル化点の低い脂肪酸誘導体をトリグリセリド由来のバイオディーゼルと混合すると燃料全体としてのゲル化点が低下する。同様に、脂肪酸誘導体、例えば、 C16:1 エチルエステルまたはC18:1 エチルエステルは石油由来ディーゼルと混合されると少なくともそしてしばしば5%を超えるバイオディーゼルである混合物が提供されうる。いくつかの例において、混合物は少なくとも 20%またはそれ以上の脂肪酸誘導体を含む。

例えば、少なくとも約 20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、85%、90%または 95% の炭素鎖が8:0、10:0、12:0、14:0、14:1、16:0、16:1、18:0、18:1、18:2、18:3、20:0、20:1、20:2、20:3、22:0、22:1または22:3の脂肪酸誘導体を含むバイオ燃料組成物を作ることが出来る。かかるバイオ燃料組成物はさらに、曇り点を約 5℃未満、または0℃に低下させうる曇り点を低下させる添加剤、界面活性剤またはマイクロエマルジョンから選択される少なくとも１つの添加剤、少なくとも約 5%、10%、15%、20%、30%、40%、50%、60%、70% または80%、85%、90%、または95%のトリグリセリド由来のディーゼル燃料、石油由来ガソリンまたは石油由来ディーゼル燃料を含みうる。

図1はFAS 生合成経路を示す。図2は、ろう(wax)を生産する生合成経路を示す。ろうは、宿主細胞内で生産されたアルコールを用いて宿主細胞中で生産されうるかまたは、外来性アルコールを培地に添加することによって生産されうる。ろうを生産するよう設計された微生物は、外来性核酸配列およびチオエステラーゼ (EC 3.1.2.14) 配列を用いてろうシンターゼ酵素(EC 2.3.1.75)を生産する。ろうの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素 EC 2.3.1.85)、アシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)、脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (EC 1.1.1.*)、アシル-CoAレダクターゼ (1.2.1.50) およびアルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)が含まれる。図3は、脂肪アルコールを生産する生合成経路を示す。規定された炭素鎖長を有する脂肪アルコールは、チオエステラーゼ(EC 3.1.2.14)、およびアシル-CoAレダクターゼ(EC 1.2.1.50)、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1) と脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1*)との組合せをコードする外来性核酸配列を発現させることによって生産されうる。脂肪アルコールの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素EC 2.3.1.85)、およびアシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)が含まれる。図4は、脂肪酸エステルを生産する生合成経路を示す。規定された炭素鎖長を有する脂肪酸エステルは、様々なチオエステラーゼ(EC 3.1.2.14)、アシル-CoAレダクターゼ (1.2.1.50)、アルコールデヒドロゲナーゼ (EC 1.1.1.1)、および脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (FAR、EC 1.1.1*)の組合せ、ならびに、アセチルトランスフェラーゼ (EC 2.3.1.84)を外来性に発現させることにより生産されうる。脂肪酸エステルの生産を高めるよう調節されうるその他の酵素には、脂肪酸合成に関与する酵素 (FAS 酵素 EC 2.3.1.85)およびアシル-CoA シンターゼ (EC 2.3.1.86)が含まれる。図5は、pCDFDuet-1-fadD-acr1および様々なチオエステラーゼ遺伝子を含むプラスミドで共形質転換された実施例4に記載の株による脂肪アルコール生産を示す。この株を振盪フラスコ中で0.4% グルコースを含むM9 ミネラル培地で25℃で好気的に培養した。飽和C10、C12、C14、C16 および C18 脂肪アルコールが同定された。少量の C16:1およびC18:1 脂肪アルコールもいくつかのサンプルにおいて検出された。脂肪アルコールを細胞ペレットから酢酸エチルを用いて抽出し、N-トリメチルシリル (TMS) イミダゾールを用いて誘導体化し、検出を向上させた。図6は、生産株からの脂肪アルコールの放出を示す。生産された脂肪アルコールのおよそ 50% が37℃で培養された場合に細胞から放出された。図7A-7D は、アルコールアセチルトランスフェラーゼ (AAT、EC 2.3.1.84)を発現する生産宿主およびろうシンターゼ (EC 2.3.1.75)を発現する生産宿主により生産されたオクチルオクタノエート (C8C8)のGS-MS スペクトルを示す。図7Aは、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはADP1 (ろうシンターゼ)を発現した。図7B は、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはSAATを発現した。図7Cは、株 C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B)の酢酸アセチル抽出物を示し、ここでpHZ1.43 プラスミドはADP1 (ろうシンターゼ)またはSAATを含んでいなかった。図7Dは、C41(DE3、ΔfadE/pHZ1.43)/pRSET B+pAS004.114B) (ここでpHZ1.43 プラスミドはSAATを発現した)により生産されたC8C8のマススペクトルおよびフラグメンテーションパターンを示す。図8は、 A. baylyi ADP1 (WSadp1) からのろうシンターゼが生産宿主においてCuphea hookeriana からのチオエステラーゼ遺伝子と共発現された場合に作られたエチルエステルの分布を示す。図9Aおよび9Bは、 GC/MS 分析のクロマトグラムを示す。図9Aは、プラスミド pCDFDuet-1-fadD-WSadp1、pETDuet-1-‘tesAで形質転換された大腸菌 LS9001 株の培養物のエチル抽出物のクロマトグラムを示す。エタノールを発酵に加えた。図9Bは、エチルヘキサデカノエートおよび参照として用いたエチルオレエートのクロマトグラムを示す。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。図10は、脂肪酸誘導体生産を高めるために過剰発現または減弱されうる様々な遺伝子を同定する表を示す。この表はまた、脂肪酸誘導体生成物の構造を変化させるよう調節されうる様々な遺伝子も同定する。当業者であれば、脂肪酸誘導体の構造を変化させるのに用いられる遺伝子のいくつかは、脂肪酸誘導体の生産も上昇させることを理解するであろう。

図1はアシル-ACPの合成に直接関与する酵素を示すFAS 経路の図である。ろう/脂肪酸エステル、および脂肪アルコールの生産を上昇させるために、１以上の酵素が過剰発現または突然変異されてフィードバック阻害を低下させうる。さらに、非脂肪酸に基づく生成物を作る中間体を代謝する酵素(副反応)は、脂肪酸生合成経路を介した炭素の流れを上昇させるために機能的に欠失または減弱されうる。以下の実施例1、2、および8は、脂肪酸生産を上昇させるために改変された例示的な生産宿主を提供する。

図2、3 および4は、脂肪アルコールおよびろう/脂肪酸エステルをそれぞれ作るよう操作されうる生合成経路を示す。図2に示すように、各基質 (アセチル-CoA、マロニル-CoA、アシル-ACP、脂肪酸、およびアシル-CoA)の各生成物 (アセチル-CoA、マロニル-CoA、アシル-ACP、脂肪酸、およびアシル-CoA) への変換は、示された酵素クラスのメンバーである数種類のポリペプチドを用いて達成することが出来る。以下の実施例は、特定の脂肪アルコールおよびろう/脂肪酸エステルおよび炭化水素を生産するよう操作されたまたは操作されうる微生物を記載する。

実施例 1、生産宿主構築
例示的な生産宿主は LS9001である。LS9001 はfadE 遺伝子 (アシル-CoA デヒドロゲナーゼ)を機能的に欠失させるようOverexpress.com (Saint Beausine、France)からのC41(DE3)を改変することによって作られた。

簡単に説明すると、大腸菌のfadE ノックアウト株は、fadEの上流の約 830 bpを増幅するプライマー YafV_NotI およびIvry_Olならびに、fadEの下流の約 960 bpを増幅するプライマーLpcaf_olおよび LpcaR_Bamを用いて作られた。オーバーラップ PCR を用いて全長fadE 遺伝子のインフレームの欠失のためのコンストラクトを作成した。fadE 欠失コンストラクトを対抗選択のためのSacB 遺伝子を含む温度感受性プラスミド pKOV3にクローニングし、fadEの染色体欠失を Link et al.、J. Bact. 179:6228-6237、1997の方法にしたがって作った。その結果得られた株は、脂肪酸および脂肪アシル-CoAを分解することが出来なかった(この機能的欠失を本明細書においてΔfadEと称する)。

生産宿主に含まれうるさらなる改変は、大腸菌におけるアセチル-CoA カルボキシラーゼ活性を担う４つの遺伝子(accA、B、CおよびD、受入番号: NP_414727、NP_417721、NP_417722、NP_416819、EC 6.4.1.2)を担持するプラスミドの導入を含む。 accABCD 遺伝子を２工程でバイシストロン性オペロンとしてpACYCDuet-1 (Novagen、Madison、WI)の NcoI/HindIII およびNdeI/AvrII 部位にクローニングし、その結果得られたプラスミドを
pAS004.126と命名した。

生産宿主に含まれうるさらなる改変には以下が含まれる: aceEF (ピルビン酸および2-オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ複合体のE1p デヒドロガーゼ成分およびE2p ジヒドロリポアミドアシルトランスフェラーゼ成分をコードする)の過剰発現;およびかかるタンパク質をコードすることが当該技術分野において知られているいずれかの生物、例えば、大腸菌、Nitrosomonas europaea (ATCC 19718)、バチルス・スブチリス、サッカロマイセス・セレビシエ、ストレプトマイセス・エスピーピー、ラルストニア、ロドコッカス、コリネバクテリア、ブレビバクテリア、マイコバクテリア、油性酵母等からのfabH/fabD/fabG/acpP/fabF (FASをコードする)を生産宿主において発現させることが出来る。同様に、生産宿主を操作して大腸菌ホモログの代わりにまたは大腸菌ホモログに加えてPisum
savitum 由来のaccABCD (アセチル co-A カルボキシラーゼをコードする)を発現させることが出来る。しかし、生産宿主がブタノールも生産する場合、 Pisum savitum ホモログを発現させることはあまり望ましくない。

いくつかの例示的な生産宿主において、遺伝子はLink、et al.、J. Bacteriol. 179:6228-6237、1997の方法を用いてノックアウトまたは減弱されうる。例えば、ノックアウトまたは減弱されうる遺伝子としては、 gpsA (生合成 sn-グリセロール 3-リン酸デヒドロゲナーゼをコードする、受入番号 NP_418065、EC: 1.1.1.94); ldhA (乳酸デヒドロゲナーゼをコードする、受入番号 NP_415898、EC: 1.1.1.28); pflb (ギ酸アセチルトランスフェラーゼ 1をコードする、受入番号: P09373、EC: 2.3.1.54); adhE (アルコールデヒドロゲナーゼをコードする、受入番号: CAA47743、EC: 1.1.1.1、1.2.1.10); pta (ホスホトランスアセチラーゼをコードする、受入番号: NP_416800、EC: 2.3.1.8); poxB (ピルビン酸オキシダーゼをコードする、受入番号: NP_415392、EC: 1.2.2.2); ackA (酢酸キナーゼをコードする、受入番号: NP_416799、EC: 2.7.2.1) およびそれらの組合せが挙げられる。

同様に、PlsB[D311E] 突然変異をLS9001に導入して fadE 欠失についての上記方法を用いてPlsBを減弱させることができる。いったん導入されると、この突然変異はリン脂質生産に転用される炭素の量を低下させる(図1参照)。簡単に説明すると、PlsB[D311E]をコードする対立遺伝子はアスパラギン酸 311のためのGAC コドンをグルタミン酸のためのGAA コドンにより置換することにより作成される。この変化した対立遺伝子は遺伝子合成により作られ、染色体 plsB 野生型対立遺伝子は突然変異体 plsB[D311E] 対立遺伝子に
Link et alの方法 (上記参照)を用いて交換される。

実施例 2、生産宿主改変
以下のプラスミドを脂肪酸誘導体の合成に用いられる様々なタンパク質の発現のために構築した。コンストラクトは標準的分子生物学方法を用いて作成し、すべてのクローニングされた遺伝子はIPTG-誘導可能プロモーター(T7、tacまたは lac プロモーター)の制御下に置いた。

大腸菌の’tesA 遺伝子 (リーダー配列を有さないチオエステラーゼ A 遺伝子受入番号 NP_415027 (Cho and Cronan、The J. of Biol. Chem.、270:4216-9、1995、EC: 3.1.1.5、3.1.2.-))を NdeI/AvrII で消化した pETDuet-1 (本明細書に記載するpETDuet-1はNovagen、Madison、WIから入手可能である)にクローニングした。Umbellularia California、Cuphea hookeriana およびCinnamonum camphorum 由来のFatB-型植物チオエステラーゼ (TE) をコードする遺伝子(受入番号: UcFatB1=AAA34215、ChFatB2=AAC49269、ChFatB3=AAC72881、CcFatB=AAC49151）を個々に３種類のベクターにクローニングした: (i) NdeI/AvrII で消化した pETDuet-1、(ii) XhoI/HindIII で消化した pBluescript KS+ (Stratagene、La Jolla、CA)( N-末端 lacZ::TE 融合タンパク質を作るために使用)および(iii) XbaI/HindIIIで消化した pMAL-c2X (New England Lab、Ipswich、MA) (n-末端 MalE::TE 融合を作るために使用)。大腸菌由来のfadD 遺伝子 (アシル-CoA シンゼターゼをコードする)を、そのNdeI/AvrII部位内にAcinetobacter baylyi ADP1由来のacr1 遺伝子 (アシル-CoAレダクターゼ) を含むNcoI/HindIII で消化したpCDFDuet-1 誘導体にクローニングした。表7はいくつかの例示的な生産株を作るために作成されたプラスミドの概要を提供し、当業者であれば異なるプラスミドおよびゲノム改変を同様の株の達成のために利用できることを認識するであろう。

表7
生産宿主において用いられたプラスミドの概要

選択された発現プラスミドは、適合性のレプリコンおよび抗生物質耐性マーカーを含み、そして４つのプラスミド発現系が確立できる。それゆえ、LS9001は、(i) TE-発現プラスミドのいずれか、(ii) acr1も発現するFadD-発現プラスミド、および(iii) ろうシンターゼ発現プラスミドにより共形質転換されうる。IPTGにより誘導されると、その結果得られた株は、炭素源、例えば、グルコースから上昇した濃度の脂肪アルコールを生産する。生産される脂肪アルコールの炭素鎖長および飽和の程度は発現されるチオエステラーゼ遺伝子に依存する。

実施例 3、組換え大腸菌株における脂肪アルコールの生産
脂肪アルコールを生産宿主において外来性のチオエステラーゼ遺伝子およびアシル-CoAレダクターゼ遺伝子 (FAR)を発現させることにより生産した。より具体的には、プラスミドpCDFDuet-1-fadD-acr1 (アシル-CoAレダクターゼ) およびpETDuet-1-’tesA (チオエステラーゼ)を大腸菌株 LS9001 (実施例 1に記載)に形質転換し、対応する形質転換体を100 mg/L のスペクチノマイシンおよび 50 mg/Lのカルベニシリンを追加したLBプレートにおいて選択した。LS9001/pCDFDuet-1-fadD-acr1 の４つの形質転換体を独立に 50 mg/Lのカルベニシリンおよび100 mg/L のスペクチノマイシンを追加した3 mLの M9 培地に接種した。形質転換体を含むサンプルを25℃でシェーカー (250 rpm) でOD₆₀₀が0.5となるまで培養した。1.5 mLの各サンプルを30 mLの上記の培地を含む250 mL フラスコに移した。その結果得られた培養物を25℃でシェーカーで OD₆₀₀が0.5 -1.0となるまで培養した。 IPTGを次いで終濃度1 mMとなるように添加し、培養を40 時間続けた。

細胞を次いで4000 rpmで沈降させ、細胞ペレットを1.0 mL のメタノールに懸濁した。3
mLの酢酸エチルを次いで懸濁した細胞と混合した。3 mLのH₂Oを次いで混合物に添加し、混合物を20 分間超音波処理した。その結果得られたサンプルを4000 rpmで5 分間遠心分離し、脂肪アルコールを含む有機相 (上相)を GC/MS 分析に供した。総アルコール (テトラデカノール、ヘキサデカノール、ヘキサデセノールおよびオクタデセノールを含む)収率は約 1-10 mg/Lであった。空のベクターのみを担持する大腸菌株を同様に培養した場合、0.2-0.5 mg/Lのみの脂肪アルコールが酢酸エチル抽出物中にみられた。

実施例 4、生産宿主からの脂肪アルコールの生産および放出
Acr1 (アシル-CoAレダクターゼ)を、唯一の炭素およびエネルギー源としてグルコース上で培養した大腸菌で発現させた。大腸菌は少量の脂肪アルコール、例えば、ドデカノール (C12:0-OH)、テトラデカノール (C14:0-OH)およびヘキサデカノール (C16:0-OH)を生産した。別のサンプルにおいて、大腸菌においてFadD (アシル-CoA シンゼターゼ) を acr1と共に発現させたところ、脂肪アルコール生産の５倍の上昇が観察された。

別のサンプルにおいて、acr1、fadD、accABCD (アセチル-CoA カルボキシラーゼ) (実施例 1に記載のように構築したaccABCDを担持するプラスミド)を野生型大腸菌C41(DE3)および大腸菌 C41(DE3 ΔfadE、アシル-CoA デヒドロゲナーゼを欠く株）において様々な別個のチオエステラーゼ(TE)とともに発現させた。この結果さらに脂肪アルコール生産が上昇し、脂肪アルコールプロファイルが改変された (図5参照)。例えば、大腸菌 ‘tesA (pETDuet-1-‘tesA) のこの系における過剰発現は、C12:0-OH、C14:0-OH およびC16:0-OHのおよそ60-倍の上昇を達成し、 C14:0-OH が主要な脂肪アルコールであった。非常に類似の結果がChFatB3 酵素 (pMAL-c2X-TEcuにおけるCuphea hookeriana由来FatB3)を発現させた場合に得られた。 UcFatB1 酵素 (pMAL-c2X-TEucにおけるUmbellularia californicain由来FatB1)を発現させた場合、脂肪アルコール生産はおよそ 20-倍上昇し、C12:0-OH が主な脂肪アルコールであった。

ChFatB3 およびUcFatB1の発現もそれぞれ顕著な量の不飽和脂肪アルコール C16:1-OH およびC14:1-OHの生産を導いた。脂肪アルコールの存在は tesAの発現から作られたサンプルの上清においてもみられた(図6)。37℃においておよそ等量の脂肪アルコールが上清および細胞ペレットにみられ、25℃ではおよそ 25%の脂肪アルコールが上清にみられた。

実施例 5、中鎖脂肪酸エステル
様々な植物における酢酸アシル生産を担うアルコールアセチルトランスフェラーゼ (AAT、EC 2.3.1.84)は、中程度の長さのろう、例えば、オクチルオクタノエート、デシルオクタノエート、デシルデカノエート等を生産するために利用できる。中鎖アルコール
(例えば、 C6、C8)および中鎖アシル-CoA (または脂肪酸、例えば、 C6またはC8)から合成された脂肪エステルは比較的低い融点を有する。例えば、ヘキシルヘキサノエートは融点が-55℃であり、オクチルオクタノエートは融点が -18から-17℃である。これら化合物の低い融点によりこれらはバイオ燃料として使用するための良好な候補となる。

この実施例において、SAAT 遺伝子を生産宿主 C41(DE3、ΔfadE)において大腸菌由来fadDおよび acr1 (A. baylyi ADP1由来アルコールレダクターゼ) とともに共発現させ、オクタン酸を発酵ブロスに提供した。この結果、オクチルオクタノエートが生産された。同様に、A. baylyi ADP1由来のろうシンターゼ遺伝子を生産宿主においてSAAT 遺伝子の代わりに発現させた場合、オクチルオクタノエートが生産された。

組換え SAAT 遺伝子は DNA 2.0 (Menlo Park、CA 94025)を用いて合成した。合成された DNA は公表された遺伝子配列 (受入番号 AF193789)に基づき、NcoI部位を除くように改変した。合成された SAAT 遺伝子 (BamHI-HindIII 断片として)をBamHIと HindIIIとで直鎖化した pRSET B (Invitrogen、Calsbad、California)にクローニングした。その結果得られたプラスミド、pHZ1.63Aを、大腸菌由来fadD 遺伝子およびA. baylyi ADP1由来acr1 遺伝子を担持するpAS004.114Bととも大腸菌生産宿主に共形質転換した。形質転換体を2%グルコースを含む3 mLのM9 培地で培養した。IPTG 誘導および0.02%のオクタン酸の添加の後、培養を25℃で 40 時間続けた。その後、3 mLの酢酸アセチルを全培養物に添加し、ミキサーで数回混合した。酢酸アセチル相を GC/MSで分析した。

驚くべきことに、酢酸アセチル抽出物において、酢酸アシルはみられなかった。しかし、新規な化合物がみられ、化合物はオクチルオクタノエートであった。一方 SAAT 遺伝子を有さない対照株[C41(DE3、ΔfadE)/pRSET B+pAS004.114B]はオクチルオクタノエートを生産しなかった。A. baylyi ADP1由来のろうシンターゼ遺伝子がpHZ1.43によって担持される株 [C41(DE3、ΔfadE)/pHZ1.43 B+pAS004.114B]もオクチルオクタノエートを生産した(図7B参照)。

SAAT 活性がオクチルオクタノエートを生産するという知見は以前報告されておらず、これは、中鎖ろう、例えば、オクチルオクタノエート、オクチルデカノエートの生産を可能とし、これらは融点が低く、トリグリセリドに基づくバイオディーゼルにかわるバイオ燃料としての使用のための良好な候補である。

実施例 6、大腸菌株 LS9001 におけるろうエステルの生産
ろうエステルを脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ、チオエステラーゼ、およびろうシンターゼを発現するよう大腸菌生産宿主を操作することによって生産した。したがって、生産宿主はエステルのAおよびB側の両方を生産し、両方の側の構造はチオエステラーゼ遺伝子発現により影響を受けた。

より具体的には、A. baylyi ADP1由来ろうシンターゼ (WSadp1と称する、受入番号 AA017391、EC: 2.3.175)を A. baylyi ADP1 由来のゲノム DNAを鋳型として用いて以下のプライマーにより増幅した。プライマーは、(1) WSadp1_NdeI、5’-TCATATGCGCCCATTACATCCG -3’ および(2) WSadp1_Avr、5’- TCCTAGGAGGGCTAATTTAGCCCTTTAGTT-3’であった。 PCR産物を NdeI およびAvrIIで消化し、pCOALDeut-1 にクローニングし、 pHZ 1.43を得た。WSadp1 を担持するプラスミドをpETDuet-1’tesAおよびpCDFDuet-1-fadD-acr1の両方と共に大腸菌株 LS9001に共形質転換し、形質転換体を50 mg/Lのカナマイシン、50 mg/L のカルベニシリンおよび100 mg/L のスペクチノマイシンを追加したLBプレートで選択した。３つの形質転換体を3 mLの LBKCS (50 mg/Lのカナマイシン、50 mg/Lのカルベニシリン、100 mg/L のスペクチノマイシンおよび10 g/Lのグルコースを追加したLBブロス) に接種し、37℃のシェーカー (250 rpm)で培養した。培養物のOD₆₀₀が0.5 に達すると、1.5
mL の各培養物を50 mLの LBKCSを含む250 mL フラスコに移し、フラスコをシェーカー (250 rpm)で 37℃で培養物のOD₆₀₀が0.5-1.0となるまで培養した。IPTGを次いで終濃度1 mMにて添加した。誘導した培養物を37℃ シェーカーでさらに40-48 時間培養した。

培養物を次いで50 mL コニカルチューブに入れ、細胞を 3500 X gで10 分間遠沈した。細胞ペレットを次いで5 mLの酢酸エチルと混合した。酢酸エチル抽出物をGC/MSで分析した。ろう (C16C16、C14:1C16、C18:1C18:1,C2C14、C2C16、C2C16:1、C16C16:1 および C2C18:1を含む)の細胞内収率は約 10 mg/Lであった。空のベクターのみを含む大腸菌株を同様に培養した場合、0.2 mg/Lのみのろうが酢酸エチル抽出物にみられた。

実施例 7、生産宿主からの脂肪-エチルエステルの生産および放出
LS9001 株を A. baylyi由来ろうシンターゼ遺伝子を担持するプラスミド(プラスミド
pHZ1.43)、Cuphea hookeriana由来チオエステラーゼ遺伝子を担持するプラスミド(プラスミド pMAL-c2X-TEcu)および大腸菌由来fadD 遺伝子を担持するプラスミド (プラスミド pCDFDuet-1-fadD)で形質転換することによって改変した。この組換え株を25℃で50mg/Lのカナマイシン、100 mg/Lのカルベニシリンおよび 100 mg/Lのスペクチノマイシンを含む3 mLの M9 培地で培養した。IPTG 誘導の後、培地を終濃度 1% エタノールおよび2% グルコースとなるよう調整した。培養物を IPTG 誘導後40 時間培養した。細胞を 3500
X g で 10 分間の遠心分離により消費培地から分離した。細胞ペレットを3 mLの M9 培地に再懸濁した。細胞懸濁液および消費培地を次いで1体積の酢酸エチルにより抽出した。その結果得られた細胞懸濁液からの酢酸エチル相および上清を GC-MS 分析に供した。結果はC16 エチルエステルがもっとも主要なエステル種 (このチオエステラーゼについて予想されるとおり、表1参照)であり、生産された脂肪酸エステルの20%が細胞から放出されたことを示した(図8参照)。pCOLADuet-1 (ろうシンターゼ遺伝子について空のベクター)、pMAL-c2X-TEuc ( U. california由来fatB含有)およびpCDFDuet-1-fadD (大腸菌由来fadD 遺伝子 )を含む対照大腸菌株 C41(DE3、ΔfadE) は検出可能な量の脂肪-エチルエステルを生産することができなかった。脂肪酸エステルを市販のパルミチン酸エチルエステルを参照として用いて定量した。脂肪酸エステルは、メタノールまたはイソプロパノールを発酵ブロスに添加する以外は本明細書に記載する方法を用いても作られ、予測される脂肪酸エステルが生産された。

実施例 8、組換え大腸菌株において生産される脂肪-エチルエステルの組成に対する様々なチオエステラーゼの影響
チオエステラーゼ、FatB3 (C. hookeriana)、TesA (大腸菌)、および FatB (U. california) をろうシンターゼ (A. baylyi)と同時に発現させた。pHZ1.61と称するプラスミドを NotI-AvrII 断片 (acr1 遺伝子担持) を pHZ1.43由来のNotI-AvrII 断片により置換することにより構築し、fadDおよびADP1 ろうシンターゼが１つのプラスミドにあり、両方のコード配列が別々の T7 プロモーターの制御下にあるようにした。pHZ1.61の構築により実施例 6に記載の３つのプラスミドシステムではなく２つのプラスミドシステムを使用することが可能となった。 pHZ1.61を様々な上記のチオエステラーゼ遺伝子を担持する様々なプラスミドの何れかと共に大腸菌 C41(DE3、ΔfadE)に共形質転換した。

これら形質転換体によって生産される総脂肪酸エチルエステル(上清および細胞内脂肪酸エチルエステル)を本明細書に記載する技術を用いて評価した。脂肪酸エチルエステルの収率および組成を表 8に要約する。

表 8
組換え大腸菌 C41(DE3、ΔfadE)/pHZ1.61および様々なチオエステラーゼ遺伝子を担持するプラスミドによる脂肪酸エチルエステルの収率(mg/L)および組成

注: ‘TesA、pETDuet-1-‘tesA; chFatB3、pMAL-c2X-TEcu; ucFatB、pMAL-c2X-TEuc; pMAL、pMAL-c2X、本研究に用いたチオエステラーゼ遺伝子について空のベクター。

実施例 9、生産宿主構築
脂肪酸生産を制御する遺伝子は微生物の間で保存されている。例えば、表 9は炭化水素を生産する微生物において発現することが知られている本明細書に記載する多くの遺伝子のホモログを示す。脂肪酸生産を上昇させ、それゆえ、微生物、例えば、表 9に示すものにおける炭化水素生産を上昇させるために、異種遺伝子、例えば、大腸菌由来のものを発現させることができる。当業者であれば表 9に示す微生物に内因性の遺伝子を、本明細書に記載する方法を用いて過剰発現、または減弱させることができることを理解している。さらに、図10に示す遺伝子を内因的に炭化水素を生産する微生物において発現または減弱させて規定された炭素鎖長、飽和点および分枝点を有する特定の炭化水素の生産を可能とすることが出来る。

例えば、アセチル-CoA カルボキシラーゼをコードする外来性核酸配列がK. radiotoleransに導入される。以下の遺伝子はK. radiotoleransにおけるアセチル-CoA カルボキシラーゼタンパク質生成物を含む; アセチル CoA カルボキシラーゼ、アルファサブユニット (accA/ ZP_00618306)、アセチル-CoA カルボキシラーゼ、ビオチンカルボキシルキャリアタンパク質 (accB/ ZP_00618387)、アセチル-CoA カルボキシラーゼ、ビオチンカルボキシラーゼサブユニット (accC / ZP_00618040)、およびアセチル-CoA カルボキシラーゼ、ベータ (カルボキシルトランスフェラーゼ) サブユニット (accD/ ZP_00618306)。これらの遺伝子をプラスミドにクローニングし、K. radiotolerans 発現系、例えば、Ruyter et al.、Appl Environ Microbiol. 62:3662-3667、1996に開示の発現系の制御下で合成アセチル-CoA カルボキシラーゼオペロン (accABCD)を作らせる。プラスミドの K. radiotoleransへの形質転換は脂肪酸生産を促進する。K. radiotoleransの炭化水素生産株を操作して本明細書に開示される方法を用いて特定の炭素鎖長を有する分枝、不飽和炭化水素を作ることが出来る。

表9
炭化水素生産宿主

表9について、受入番号は 2007年4月15日のGenBank、Release 159.0 からのものである。EC 番号は、2007年4月のKEGG、Release 42.0 (＋05/09/07までの、およびその日を含む日々のアップデート) からのものである。Erwinia amylovora 株 Ea273 についての結果は、Sanger sequencing center、5/9/07の完全ショットガン配列から得、Erwiniaについての位置はSanger 偽染色体上の位置を示し、Vibrio furnisii M1からの配列は9/28/06のLS9 VFM1 偽染色体、v2 buildからのものであり、完全遺伝子を含み、フランキング配列を含みうる。

実施例 10、さらなる例示的な生産株
以下の表10は、さらなる例示的な生産株を示す。２例の生合成経路が脂肪酸、脂肪アルコールおよびろうエステルの生産のために記載されている。遺伝子操作された宿主は、大腸菌からのaccABCD 遺伝子、大腸菌からの‘tesA 遺伝子および大腸菌からのfadD 遺伝子の発現を宿主細胞にクローニングすることによって生産できる。宿主細胞はリストに加えて大腸菌、酵母から選択しうる。これらの遺伝子は実施例1 および2に上記する１以上の遺伝子操作を含むよう改変された宿主細胞へと形質転換されうる。表10に示すように、さらなる生産宿主を示した外来性遺伝子を用いて作ることが出来る。

表10
遺伝子操作された生産株の作成に有用な遺伝子の組合せ

実施例 11、発酵
宿主微生物をprpBCDE プロモーター系の下でpBAD24において大腸菌からのumuC およびumuDを適当な最終-生成物の生産遺伝子によるこの遺伝子のデノボ合成を介して発現させるよう操作することができる。スモールスケールの炭化水素生成物の生産のために、pBAD24(アンピシリン耐性および最終生成物合成経路を有する)ならびに pUMVC1 (カナマイシン耐性およびアセチル CoA/マロニル CoA 過剰発現系を有する) を担持する大腸菌 BL21(DE3) 細胞を37℃で2L フラスコ中の、75 μg/mL アンピシリンおよび50 μg/ml カナマイシンを追加した500 ml LB 培地中で>200 rpmで振盪しながら培養物の OD₆₀₀ が > 0.8となるまで一晩インキュベートした。OD₆₀₀が> 0.8に達すると、細胞に25 mM プロピオン酸ナトリウム (pH 8.0)を補給し、操作した遺伝子系を活性化して、生産させ、細胞増殖を停止させた (umuCおよび umuD タンパク質の活性化を介して)。誘導は 6 時間30℃で行った。インキュベーションの後、培地を GC-MSを用いて生成物について調査する (以下に記載のように)。

ラージスケールの生成物の生産のためには、操作された微生物を10 L、100 Lまたはそれ以上のバッチで培養し、発酵させ、適当な場合プラスミドにコードされる特定の遺伝子に基づいた所望の生成物の発現を誘導する。pBAD24 (アンピシリン耐性および最終生成物合成経路を有する)ならびに pUMVC1 (カナマイシン耐性およびアセチル-CoA/マロニル-CoA 過剰発現系を有する)を担持する大腸菌 BL21(DE3) 細胞を 500 mL の種培養物からインキュベートし、LB 培地 (グリセロール非含有) 中での10 L 発酵 (100 L 発酵のために5 L)にて 3℃で >200 rpm で振盪しながら培養物の OD₆₀₀ が> 0.8に達するまで (典型的には 16 時間) 50 μg/mL カナマイシンおよび75 μg/mL アンピシリンとともにインキュベートする。培地を 25 mM プロピオン酸ナトリウム (pH 8.0)を維持するよう連続的に補給するよう処理し、操作された遺伝子系を生産ならびに細胞増殖の停止のために活性化する (umuCおよびumuD タンパク質の活性化を介して)。培地に連続的にグルコースを補給し濃度 90g/100 mLを維持する。１時間の誘導の後、全細胞体積の10%を超えないアリコートを１時間毎に取り出し、撹拌せずに放置し、炭化水素生成物が表面に上昇し、自発的な相分離が起こるようにする。炭化水素成分を次いで収集し、水相を反応チャンバに戻す。反応チャンバは連続的に作動させる。OD₆₀₀が 0.6を下回ると、細胞を種培養物から培養した新しいバッチと交換する。

ろうエステル生産のために、単離に続いて、ろうエステルを簡単に1 M HClで洗浄してエステル結合を開裂させ蒸留水で徹底的に洗浄してpH 7に戻す。

実施例 12、生成物特徴決定
脂肪アルコールおよび脂肪酸エステルを特徴づけ、定量するために、電子衝撃質量分析
(MS)検出に結合したガスクロマトグラフィー (GC)を用いた。脂肪アルコールサンプルをまず過剰の N-トリメチルシリル (TMS) イミダゾールで誘導体化して検出感受性を高めた。脂肪酸エステルは誘導体化は必要なかった。脂肪アルコール-TMS 誘導体と脂肪酸エステルとの両方を酢酸エチルなどの適当な揮発性溶媒に溶解した。サンプルを30m DP-5 キャピラリーカラムで以下の方法を用いて分析した。GC/MS カラムへの1 μL スプリットレス注入の後、オーブンを100℃に3 分間維持した。温度を20℃/分の速度で320℃に上げた。オーブンを320℃にさらに5 分間維持した。キャリアガスであるヘリウムの流速は1.3
mL/分であった。MS 四極子(quadrapole)は50から550 m/zを走査する。生成物ピークの保持時間およびフラグメンテーションパターンを確実な参照と比較してピークの実体を確認した。

例えば、ヘキサデコン酸エチルエステルは 10.18 分にて溶出した (図9A および9B)。284 マスユニットの親イオンが容易に観察された。マス断片化の際に生じた娘イオンはより豊富であった。これは80 マスユニットのもっとも優勢な娘イオンを含んでいた。誘導体化脂肪アルコールヘキサデカノール-TMSは10.29 分に溶出し、313の親イオンが観察できた。もっとも優勢なイオンは299マスユニットのM-14イオンであった。

定量を様々な濃度の適当な確実な参照を注入することにより上記のGC/MS 方法によって行った。この情報を用いて応答 (全統合イオン計数)対濃度により標準曲線を作成した。

均等物
本発明の特定の実施例が明示的に本明細書に開示されるが、上記の明細書および実施例は例示的なものであり限定的なものではない。本発明の多くの改変が実施例を含む本明細書を読むと当業者に明らかであろう。本発明の完全な範囲は均等物の完全な範囲と共に実施例および明細書を参照してかかる改変と共に決定されるべきである。

Claims

チオエステラーゼ(EC 3.1.2.-、またはEC 3.1.1.- )を含むポリペプチドをコードする外来性核酸配列、アシルCoAシンゼターゼ（fadD）を含むポリペプチドをコードする外来性核酸配列、ろうエステルシンターゼ(EC 2.3.1.75)を含むポリペプチドをコードする外来性核酸配列、およびアセチルCoAカルボキシラーゼ(EC 6.4.1.2)を含むポリペプチドをコードする外来性核酸配列を含む微生物であって、これらの核酸配列が該微生物中で発現している、微生物。
大腸菌（E.coli）である、請求項1の微生物。
さらに脂肪酸エステルを含む、請求項1の微生物。
分枝鎖ケト酸デヒドロゲナーゼ複合体の１以上の成分(EC 1.2.4.4)、Ilve(EC 2.6.1.42)、lpd(EC 1.8.1.4)、Ccr(EC 1.1.19)、IcmA(EC 5.4.99.2)、IcmB(EC 5.4.99.13)、fabH(EC 2.3.1.180)、fabF(EC 2.3.1.179)、fabH3(EC 2.3.1.180)、fabC3、ベータ-ケトアシル-ACP シンターゼ II(EC 2.3.1.180)、エノイル-CoA レダクターゼ(EC 1.3.1.34)、エノイル-CoA イソメラーゼ(EC 4.2.1.-)、およびそれらの組合せからなる群から選択される酵素をコードする１以上の外来性核酸配列を発現し、脂肪酸エステルが分枝のものである、請求項3の微生物。
fabB(EC 2.3.1.41)、fabK(EC 1.2.1.9)、fabL(EC 1.2.1.9)、fabM(EC 5.3.3.14)、fadE(EC 1.3.99.3、または1.3.99.-)、およびそれらの組合せからなる群から選択される酵素をコードする１以上の外来性核酸配列を発現し、脂肪酸エステルが不飽和のものである、請求項3の微生物。
fadEが減弱されている、請求項１の微生物。
該fadDが発現している、請求項１の微生物。
少なくとも10 mg/Lの脂肪酸エステル、または少なくとも10 mg/Lのろうを含む発酵ブロスを含む容器内にある、請求項１の微生物。
1〜5の二重結合を含む脂肪酸エステルの生産における請求項3の微生物の使用。
炭素鎖長8〜30を含む脂肪酸エステルの生産における請求項3の微生物の使用。
1〜5の分枝点を含む脂肪酸エステルの生産における請求項3の微生物の使用。
アルコールにより寄与されるA側およびアシルCoAにより寄与されるB側を有する脂肪酸エステルまたはろうをさらに含む、請求項1の微生物。
A側およびB側が微生物によって生産される、請求項12の微生物。
脂肪酸エステルのA側、B側、またはA側およびB側の両方が1〜5の二重結合を含む脂肪酸エステルの生産における請求項12の微生物の使用。
脂肪酸エステルのA側、B側、またはA側およびB側の両方が炭素鎖長1〜26を含む脂肪酸エステルの生産における請求項12の微生物の使用。
脂肪酸エステルのA側、B側、またはA側およびB側の両方が1〜5の分枝点を含む脂肪酸エステルの生産における請求項12の微生物の使用。
脂肪酸エステルのA側、B側、またはA側およびB側の両方が1〜5のシクロプロピル部分を含む脂肪酸エステルの生産における請求項12の微生物の使用。
アルスロバクター・エスピー(Arthrobacter sp.)、バシラス・エスピー(Bacillus sp.)、ボツリオコッカス・ブラウニ(Botryococcus braunii)、クロマチウム・エスピー(Chromatium sp.)、クラドスポリウム・レシナ(Cladosporium resina)、クロストリジウム・パステウリアヌム・ブイケーエム(Clostridium pasteurianum VKM)、クロストリジウム・テナノモルフム(Clostridium tenanomorphum)、クロストリジウム・アシディウリキ(Clostridium acidiurici)、コリネバクテリウム種(Corynebacterium species)、シアノバクテリア種(cyanobacterial species)(ノストック・ムスコルム(Nostoc muscorum)、アナシスティス (シネココッカス)・ニドゥランス(Anacystis (Synechococcus) nidulans)、フォルミジウム・ルリダム(Phormidium luridum)、クロログロエア・フリツキ(Chlorogloea fritschii)、トリコデスミウム・エリタエウム(Trichodesmium erythaeum)、オシラトリア・ウィリアムシ(Oscillatoria williamsii)、ミクロコレウス・キトノプラセイス(Microcoleus chthonoplaseis)、コッコクロリス・エラベンス(Coccochloris elabens)、アグメネルム・クアドルプリカツム(Agmenellum quadruplicatum)、プレクトネマ・テレブランス(Plectonema terebrans)、エム・ヴァギナツス(M vaginatus)、シー・スコプロルム(C. scopulorum))、デスルフォビブリオ・デスルフリカンス(Desulfovibrio desulfuricans)、キネオコッカス・ラジオトレランス(Kineococcus radiotolerans)、ミクロコッカス・ルテウス(Micrococcus luteus)、ミクロコッカス・エスピー(Micrococcus sp.)、ミクロコッカス・ロセウス(Micrococcus roseus)、ミクロコッカス・リソデイクチクス(Micrococcus lysodeikticus)、マイコバクテリウム種(Mycobacterium species)、ペニシリウム・エスピー(Penicillium sp.)、アスペルギルス・エスピー(Aspergillus sp.)、トリコデルマ・ビリダ(Trichoderma virida)、プルラリア・プルランス(Pullularia pullulans)、ジェオトガリコッカス・エスピー(Jeotgalicoccus sp.)、エム・カンディカンス(M. candicans)、ロドシュードモナス・スフェロイド(Rhodopseudomonas spheroids)、クロロビウム・エスピー(Chlorobium sp.)、ロドスピリリウム・ルブラム(Rhodospirillium rubrum)、ロドミクロビウム・バニエリ(Rhodomicrobium vannielii)、ステノトロフォモナス・マルトフィリア(Stenotrophomonas maltophilia)、サッカロマイコデス・ルドウィギ(Saccharomycodes ludwigii)、サッカロマイセス・エスピー(Saccharomyces sp.)(オビフォルムス(oviformis)、ルドウィギ(ludwiggi))、カンジダ・トロピカリス(Candida tropicalis)、ビブリオ・ファーニッシ(Vibrio furnissii)M1、ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)MP-1、ビブリオ・ポンチクス(Vibrio ponticus)、セッラティア・マリノルブラ(Serratia marinorubra)、ウスティラゴ・マイディス(Ustilago maydis)、ウスティラゴ・ヌダ(Ustilago nuda)、ウロシスティス・アグロピリ(Urocystis agropyri)、スファセロテカ・レイリアナ(Sphacelotheca reiliana)、またはティレティア・エスピー(Tilletia sp.)(フォエチダ(foetida)、カリエス(caries)、コントロヴェルサ(controversa))である、請求項１の微生物。
請求項1〜8,12,13または18に記載の微生物を脂肪酸エステルを生産するのに十分な条件下で培養する工程; および脂肪酸エステルを分離する工程を含む、脂肪酸エステルの生産方法。
アルコールアセチルトランスフェラーゼ(EC 2.3.1.84)、アルコールデヒドロゲナーゼ(EC 1.1.1.1)、および脂肪アルコール形成アシル-CoAレダクターゼ (EC 1.1.1.*)からなる群から選択される酵素をさらに発現する、請求項18の微生物。
分枝鎖ケト酸デヒドロゲナーゼ複合体の１以上の成分(EC 1.2.4.4)、Ilve(EC 2.6.1.42)、lpd(EC 1.8.1.4)、Ccr(EC 1.1.19)、IcmA(EC 5.4.99.2)、IcmB(EC 5.4.99.13)、fabH(EC 2.3.1.180)、ACP、fabF(EC 2.3.1.179)、fabH3(EC 2.3.1.180)、fabC3、ベータ-ケトアシル-ACP シンターゼ II(EC 2.3.1.180)、エノイル-CoA レダクターゼ(EC 1.3.1.34)、エノイル-CoA イソメラーゼ(EC 4.2.1.-)、およびそれらの組合せからからなる群から選択される酵素をコードする１以上の核酸配列を発現し、脂肪酸エステルが分枝のものである、請求項18の微生物。
脂肪酸エステルを有機相中に分離させる工程;および、
有機相から脂肪酸エステルを精製する工程
をさらに含む、請求項19の方法。
該アセチルCoAカルボキシラーゼが発現している、請求項１の微生物。