JP5839810B2 - フィブリノゲンを産生するトランスジェニックカイコ - Google Patents
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Description
ヒト肝臓のcDNAライブラリーから、フィブリノゲンの3つのサブユニットAα、Bβ、γのcDNA断片をPCRにより増幅し、適宜サブクローニングしながらシグナル配列の入れ替え、開始コドンATGの付加、UTR配列の付加を順次行ない、カイコ中部絹糸腺用の発現ベクターに挿入するための各サブユニットcDNA断片を調製した。以下、各サブユニットごとにcDNA断片の調製を詳述する。なお、PCR反応は50μlで行い、Ex Taqは5ユニット、KODは1ユニットを用いた。
cDNAライブラリーから次の反応条件でAα鎖cDNA断片(以下Alpha)を増幅した。1回目のPCR産物をアガロースゲルで電気泳動し、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
cDNAライブラリーから次の反応条件でBβ鎖cDNA断片(以下Beta)を増幅した。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
cDNAライブラリーから次の反応条件でγ鎖cDNA断片(以下Gamma)を増幅した。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
インビトロジェン社GATEWAYシステムを用いて、エントリーベクターpENTR/D-TOPOにクローニングした断片をpXINSECT-DEST38にサブクローニングした。ここから挿入断片を切り出して、公知のカイコ中部絹糸腺用発現ベクターに挿入した。Bβ鎖を発現するベクターと、Aα鎖及びγ鎖を発現するベクターの2つを作製した。詳細を以下に記載する。
上記で調製したpENTR-UTRbetaより、GATEWAYシステムを用いてpXINSECT-DEST38に挿入遺伝子をサブクローニングした。得られたFibrinogen-β/pXINSECTからSmaI消化によってFibrinogen-β cDNAを切り出し、公知のカイコ形質転換用ベクターpMSG1.1R(J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008))のNruIサイトに挿入し、カイコ形質転換用のFibrinogen-β/pMSG1.1Rを完成した(図1)。なお、pMSG1.1Rベクターは、中部絹糸腺細胞内で機能するセリシン1遺伝子プロモーターPser1により挿入遺伝子を中部絹糸腺内で発現させるベクターであり、エンハンサーとしてバキュロウイルス由来のhr3を、また導入遺伝子の発現マーカーとして、カイコの眼及び神経系で機能するプロモーター3xP3に制御された赤色蛍光タンパク質遺伝子DsRedを含む。
上記で調製したpENTR-UTRalpha及びpENTR-UTRgammaより、GATEWAYシステムを用いてpXINSECT-DEST38に挿入遺伝子をそれぞれサブクローニングした(Fibrinogen-α/pXINSECT及びFibrinogen-γ/pXINSECT)。
(1) Bβ導入カイコの作出
上記で構築した遺伝子導入用ベクターFibrinogen-β/pMSG1.1Rを塩化セシウム超遠心法で精製した後、ヘルパープラスミドであるpHA3PIG(Nat. Biotechnol. 18, 81-84 (2000))とプラスミド量が1:1になるように混合した。エタノール沈殿により濃縮し、遺伝子導入用ベクターとpHA3PIGの濃度がそれぞれ200μg/mlになるようにインジェクションバッファー(0.5 mMリン酸バッファー pH 7.0, 5 mM KCl)に溶解し、卵注入用のDNA溶液を得た。このDNA溶液を、産卵後2〜8時間の前胚盤葉期のカイコ卵(カイコ胚)に約15〜20 nl/卵の液量で微量注入し、卵を25℃でインキュベートした。合計3,032個の注入卵から600個が孵化した。ここから得られた生殖可能な成虫を交配し、112グループのF1卵塊を得た。産卵日から5〜6日目のF1卵塊を蛍光実体顕微鏡で観察し、マーカー遺伝子の発現すなわち眼や神経系からの赤色蛍光を確認できた卵を選抜した。Bβ発現カイコの卵を含む卵塊が7グループ得られた。これらを孵化させ飼育したところ、複数の卵塊に由来するトランスジェニックカイコが正常に発育し、生殖能力を有する成虫になった。各成虫を野生型のカイコと交配し、Bβ導入カイコを6系統得た。
上記と同様にして、遺伝子導入用ベクターFibrinogen-α&γ/pMSG3.1MGを精製し、ヘルパープラスミドと共にカイコ卵に微量注入した。合計3,336個の注入卵から1,050個が孵化した。ここから得られた生殖可能な成虫を交配し、233グループのF1卵塊を得た。眼や神経系からの緑色蛍光に基づき卵を選抜し、Aα/γ発現カイコの卵を含む卵塊を17グループ得た。正常に発育した成虫を野生型カイコと交配し、Aα/γ導入カイコを14系統得た。
上記で得られたBβ導入カイコ系統及びAα/γ導入カイコ系統について、繭中への目的タンパク質の分泌をウエスタンブロットにより調べた。繭を裁断して8M尿素を含む緩衝液(8 M尿素、50 mMトリス塩緩衝液、pH 8.0)に浸漬し、80℃、5分間加温した後、遠心して得られた上清をウエスタンブロットに付した。結果の一部を図4に示す。Aα/γ導入カイコについては、Aα鎖及びγ鎖の両者が繭中に分泌されていることが確認できた。しかしながら、Bβ導入カイコでは繭中にBβ鎖を検出することができなかった。
繭へのBβ鎖分泌が確認できないBβ導入カイコと、繭へのAα鎖及びγ鎖分泌が確認できたAα/γ導入カイコを交配し、Aα/Bβ/γ導入カイコを複数系統得た。これら複数系統のカイコについては、卵又は幼虫の段階で励起光を照射し、赤色蛍光と緑色蛍光が合わさって黄色の蛍光が観察されることを確認した。このカイコの繭に含まれるタンパク質を上記と同様に抽出してSDS-ポリアクリルアミドゲルで泳動しCBB染色して観察したところ、Aα鎖、Bβ鎖、γ鎖いずれも明瞭なバンドが検出された(図6)。
セリシンプロモーターに、バキュロウイルス(BmNPV)由来のエンハンサーであるhr3と、同じくBmNPV由来のトランスアクチベーターであるIE1遺伝子を組み合わせると、セリシンプロモーターの活性が大幅に増大することが知られている(特許第4271122号公報参照)。カイコでの組換えタンパク質発現にも応用されており、IE1タンパク質を中部絹糸腺で発現するトランスジェニックカイコ系統が知られている(FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)、Biotechnol Bioeng 106, 860-870 (2010))。公知のIE1発現カイコを用いて、Aα/Bβ/γ導入カイコでの導入遺伝子の発現量の増加を試みた。
Aα/Bβ/γ導入カイコの繭からフィブリノゲンを効率よく抽出するため、抽出条件を検討した。
カイコで製造したヒトフィブリノゲンがトロンビンと反応して凝固(fibrin clot)を作ることができるかを確認した。
Claims (6)
- フィブリノゲンのサブユニットBβ遺伝子を絹糸腺細胞内で機能するプロモーターの下流に含むベクターを導入した第1のカイコと、フィブリノゲンのサブユニットAα遺伝子及びγ遺伝子を絹糸腺細胞内で機能するプロモーターの下流に含むベクターを導入した第2のカイコとを交配させることにより、前記3つのサブユニット遺伝子をカイコに導入し、絹糸腺細胞内でAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現するカイコを選抜することを含む、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコの作出方法。
- 前記絹糸腺が中部絹糸腺であり、前記プロモーターがセリシン遺伝子のプロモーターである請求項1記載の方法。
- Aα遺伝子、Bβ遺伝子及びγ遺伝子がエンハンサーと共に導入される請求項1又は2記載の方法。
- 前記エンハンサーがバキュロウイルス由来のhr3である請求項3記載の方法。
- トランスアクチベーターをさらにカイコに導入することを含む請求項1ないし4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記トランスアクチベーターがバキュロウイルス由来の転写因子IE1である請求項5記載の方法。
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